JP5791047B2 - コイヘルペスウイルス特異的抗体及びその抗原 - Google Patents

Description

本発明は、抗コイヘルペスウイルス特異的抗体、コイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチド、コイヘルペスウイルス病の診断キット、及びコイヘルペスウイルスの検出キットに関する。

コイヘルペスウイルス病は、コイヘルペスウイルス（Koi herpes virus；ＫＨＶ）に感染することによりマゴイやニシキゴイに発生する病気で、発病すると行動が緩慢になったり餌を食べなくなるが、目立った外部症状は少なく、鰓の退色やびらん（ただれ）などが見られ、幼魚から成魚までに発生する、死亡率が高いコイの病気である。

コイヘルペスウイルス病は、１９９８年５月にイスラエルにて、最初の発症の報告がなされた。その後、同じイスラエルにおいて、その年の秋と翌年の春との２度発症し、輸出用のコイを含めて約６００トンのコイが死滅した。被害総額は４００万ドルを超えるものであった。その後も世界各国（イスラエル、英国、ドイツ、オランダ、ベルギー、米国、インドネシア、台湾）で次々と発症の報告がなされた。

わが国においても２００３年（平成１５年）１１月に農林水産省が茨城県の霞ヶ浦においてコイヘルペスウイルス病を疑うコイを確認したと発表して以来、青森、山梨、三重、岡山、宮崎と各地でコイヘルペスウイルス病の発生が報告されている。農林水産省でも感染経路の特定をはじめとして、この病気の拡散防止について努めているところである。

自然界や養殖場でウイルスによる感染症が発生したとき、その原因となる病原体を同定することは感染症の新たな伝播の阻止あるいは予防・治療において極めて重要である。従来、魚類病原体を含めて一般細菌、ウイルス、カビ等を同定するに当たっては、その形態、生化学的性状、又は免疫学的手法を用いた生物化学的性状の観察が行われていたが、現在では、生化学及び分子遺伝学の発展に伴い、その病原体が有する染色体ＤＮＡやＲＮＡ、病原体構成物質や病原体の代謝物による同定・検出も可能になった。

コイヘルペスウイルスを対象とした遺伝子診断、コイヘルペスウイルス遺伝子検出方法としては、コイ組織中のコイヘルペスウイルスをコンベンショナルＰＣＲにより特異的に検出するＰＣＲ法（非特許文献１、２、及び３参照）や、ＬＡＭＰ法（Loop-Mediated Isothermal Amplification）によりコイヘルペスウイルスを迅速かつ高感度に検出する方法（非特許文献４参照）が知られている。また、コイヘルペスウイルス遺伝子を高感度・高精度かつ迅速に検出することができるコイヘルペスウイルス検出用プライマーセットやコイヘルペスウイルス検出用プローブに関する技術が、本発明者により提案されている（特許文献１参照）。

ウイルス感染を診断する手段としては、遺伝子診断のほか、免疫学的ないし血清学的検定が用いられることがある。中でも、コイヘルペスウイルスが分類されるヘルペスウイルスでは、一度罹患すると病気の症状が治まった後も、体内に潜伏感染することが報告されており、前記ＰＣＲ等を用いた遺伝子診断では、感染源の特定や、感染歴の特定は行えない。そのため、特異的な抗体の開発が重要であり、例えば、市販されているコイヘルペスウイルス抗体として、Anti-Koi Herpes virus (KHV) monoclonal antibody（AQUATIC diagnostic Ltd.製）がある。また、コイヘルペスウイルスの感染歴を調べる方法としては、ＥＬＩＳＡ法が有効であるという報告(非特許文献５参照)がある。しかし、固相に吸着させる抗原の調整は煩雑である。

一方、コイヘルペスウイルス病の予防を目的とした、ワクチンに関する技術が提案されている。この種の技術として、濃縮した不活化コイヘルペスウイルス、又は不活化したコイヘルペスウイルス感染細胞を抗原として含有するコイヘルペスウイルス病を予防することが可能な注射ワクチン（特許文献２参照）や、超音波処理したコイヘルペスウイルスとリン脂質とを溶液中に共存させた状態で超音波処理を行ってリポソームを調製するリポソームワクチン（特許文献３参照）や、細菌毒素のＡＢ５クラスメンバーのＢサブユニットに融合したコイヘルペスウイルス起源の抗原タンパク質からなる融合タンパク質、又はタンパク質複合体を含むワクチン組成物（特許文献４参照）が知られている。また、コイヘルペスウイルスのグリコプロテインをコードする遺伝子や膜タンパク質をコードする遺伝子を用いた、コイヘルペスウイルス病に対する防御免疫を誘導するためのコイ用ＤＮＡワクチンが、本発明者により提案されている（特許文献５参照）。しかしながら、コイヘルペスウイルスの主要抗原について開示した例はない。

国際公開第２００７／１１９５５７号 特開２００７−２２３９１３号公報 国際公開第２００６／０９０８１６号 特表２００８−５３１４７８号公報 国際公開第２００７／１１９２７９号

Diseases of aquatic organisms, 2002 Mar 11;48(2):101-108. Journal of Fish Diseases, 2002 25 (3):171-178. Fish Pathology, 2005 40:37-39. Virology Journal, 2005 2:83. Journal of Fish Diseases, 2009 32 (4):311-320.

コイ科魚類に感染するヘルペスウイルス（Cyprinid herpes virus；ＣｙＨＶ）としては、コイヘルペスウイルス；ＫＨＶ（Cyprinid herpes virus-3；ＣｙＨＶ−３ともいう）の他に、ウイルス性のコイ乳頭腫症の原因であるコイ乳頭腫症ウイルス（Cyprinid herpes virus-1；ＣｙＨＶ−１、又はＣＨＶ）や、キンギョの造血器壊死を引き起こすCyprinid herpes virus-2（ＣｙＨＶ−２）が報告されている。同じＣｙＨＶに分類されるコイヘルペスウイルスとコイ乳頭腫症ウイルスは、その血清学上、交差性が高いという報告があり(St-Hilaireet al., 2009)、従来の抗コイヘルペスウイルス抗体は、コイヘルペスウイルスのみを正確に検出できるものではなかった。またウイルスの検出感度も低いという問題があった。一方、コイヘルペスウイルスに対する抗体やワクチンの開発や、ＥＬＩＳＡなどに有用な、コイヘルペスウイルス主要抗原については明らかになっていなかった。本発明の課題は、コイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドや、コイヘルペスウイルス特異的であって、他のＣｙＨＶ、特にコイ乳頭腫症ウイルスに対する交差性を示さない抗体や、これら抗原又は抗体を用いた検査キット、検出キットを提供することにある。

本発明者は、上記課題を解決するため鋭意研究し、コイヘルペスウイルスゲノムＤＮＡの全長の約７０倍の塩基配列長に相当するコイヘルペスウイルスＤＮＡライブラリー８５０００個について、コイヘルペスウイルスに特異的で、かつ抗コイヘルペスウイルス抗体とよく反応するエピトープ領域の探索を行った。その結果、配列番号１又は３に示される領域を抗原とする抗体が、コイ乳頭腫症ウイルスとの交差性を示さず、コイヘルペスウイルスに対する検出感度も高いこと、配列番号１又は３に示される領域がコイヘルペスウイルスの主要抗原として有用であること、並びに、これらの抗体及び抗原を用いることによりコイヘルペスウイルス病の正確な診断が可能となることを見い出し、本発明を完成するに至った。

すなわち本発明は、（１）（Ａ）配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列からなるペプチド、又は（Ｂ）配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドや、（２）上記（１）に記載のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドで免疫することにより得られ、上記（１）に記載のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドを特異的に認識する抗コイヘルペスウイルス特異的抗体や、（３）抗コイヘルペスウイルス特異的ポリクローナル抗体であることを特徴とする上記（２）記載の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体や、（４）抗コイヘルペスウイルス特異的モノクローナル抗体であることを特徴とする上記（２）に記載の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体や、（５）抗コイヘルペスウイルス特異的モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞ＯＲＦ６８（７Ｃ６）（ＮＩＴＥ ＢＰ−９１９）や、（６）上記（１）に記載の抗原ペプチドを含有することを特徴とするコイヘルペスウイルス病の診断キットや、（７）上記（２）〜（５）のいずれかに記載の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体を含有することを特徴とするコイヘルペスウイルスの検出キットに関する。

本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドによれば、コイヘルペスウイルス特異的であって、コイ乳頭腫症ウイルスに対する交差性を示さない抗体を作製することができる。また、本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチド、又は、コイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドに対する抗体を用いることにより、コイヘルペスウイルス病の正確な診断やコイヘルペスウイルスの正確な検出を行うことができる。

（Ａ）抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び、（Ｂ）抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体のコイヘルペスウイルスに対する特異性をウエスタンブロットで解析した結果を示す図である。 Ａ）市販抗ＫＨＶモノクローナル抗体、Ｂ）抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び、Ｃ）抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体のコイヘルペスウイルスに対する特異性と検出感度をＥＬＩＳＡで解析した結果を示す図である。 抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２モノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原に対する特異性をウエスタンブロットで解析した結果を示す図である。図中、Ｍは分子量マーカー、Ａは組換えＫＨＶ−ＯＲＦ６２のＳＤＳ−ＰＡＧＥ、レーン１〜１２は、順に抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２モノクローナル抗体２Ｅ１０、１０Ｄ１０、２Ａ１、４Ｂ７、５Ｇ６、４Ｆ１２のＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原（レーン１〜６）、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原（レーン７〜１２）それぞれを示す。 抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８モノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原に対する特異性をウエスタンブロットで解析した結果を示す図である。図中、Ｍは分子量マーカー、Ａは組換えＫＨＶ−ＯＲＦ６８のＳＤＳ−ＰＡＧＥ、レーン１〜１６は、順に抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８モノクローナル抗体１０Ｅ６、７Ｃ６、８Ｄ１０、１２Ａ２、１Ｆ３、５Ｇ５、９Ｃ７、１０Ｆ９のＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原（レーン１〜８）、ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原（レーン９〜１６）それぞれを示す。 抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８モノクローナル抗体７Ｃ６のＣＨＶ、ＣｙＨＶ−２、ＫＨＶに対する特異性をウエスタンブロットで解析した結果を示す図である。図中、Ｍは分子量マーカーを示す。 抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８モノクローナル抗体７Ｃ６のＣＨＶ、ＣｙＨＶ−２、ＫＨＶに対する特異性を蛍光抗体法で解析した結果を示す図である。

本発明において、「コイヘルペスウイルス」とは、Koi herpes virus（ＫＨＶ）、すなわち、Cyprinid herpes virus-3（ＣｙＨＶ−３）のことをいう。また、「コイヘルペスウイルス特異的」とは、コイヘルペスウイルスに由来する抗原又は抗コイヘルペスウイルス抗体と反応し、他のＣｙＨＶ、特にコイ乳頭腫症ウイルスに由来する抗原又は抗コイ乳頭腫症ウイルス抗体と反応しないことをいう。

本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドとしては、配列表の配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるペプチド（以下、ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原ということがある）、配列表の配列番号３に示されるアミノ酸配列からなるペプチド（以下、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原ということがある）、及び配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるペプチド、並びに、配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列からなるペプチドの部分ペプチドであって、コイヘルペスウイルス特異的抗原決定基を含むペプチドのいずれかであって、抗コイヘルペスウイルス抗体と反応し、抗コイ乳頭腫症ウイルス抗体と反応せず、抗原として用いると、コイ乳頭腫症ウイルスと交差性を示さない抗コイヘルペスウイルス抗体を作ることができるペプチドであれば特に制限されない。

本発明の配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるペプチド、及び配列番号３に示されるアミノ酸配列からなるペプチドは、コイヘルペスウイルス抗原コード領域であって、いずれもコイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１）株、又はコイヘルペスウイルスＵ（ＫＨＶ−Ｕ）株のゲノムＤＮＡ上にコードされている。配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるペプチドは、卵巣腫瘍様システインプロテアーゼドメイン（OTU-like cystein protease domain）を含むタンパクの翻訳領域「ＫＨＶ ＯＲＦ６２」の一部分であり、低複雑性領域及びコイルドコイルのモチーフに富むアミノ酸配列からなり、ＫＨＶ−ＵのゲノムＤＮＡ（ACCESSION No. NC_009127）の１１４７９７〜１１６５０６のプラス鎖側の塩基配列（配列番号２）にコードされている。配列番号３に示されるアミノ酸配列からなるペプチドは、ミオシン様タンパクの翻訳領域「ＫＨＶ ＯＲＦ６８」の一部分であり、ＡＡＡ（ATPase associated with a variety of cellular activities）ＡＴＰａｓｅドメインを含み、低複雑性領域及びコイルドコイルのモチーフに富むアミノ酸配列からなり、ＫＨＶ−ＵのゲノムＤＮＡの１３１９６３〜１３０４６１のマイナス鎖側の塩基配列（配列番号４）にコードされている。

上記配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるペプチドとしては、配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列において、例えば１〜１０個、好ましくは１〜５個、より好ましくは１〜３個、例えば１個など任意の数のアミノ酸が欠失、置換、又は付加されたアミノ酸配列からなるペプチドを挙げることができる。

上記配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列からなるペプチドの部分ペプチドであって、コイヘルペスウイルス特異的抗原決定基を含むペプチドのうち、配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるペプチドの部分ペプチドとしては、配列番号１に示されるアミノ酸配列に含まれる連続したアミノ酸配列からなるアミノ酸残基数６〜５７０個のペプチド断片を、また、配列番号３に示されるアミノ酸配列からなるペプチドの部分ペプチドとしては、配列番号３に示されるアミノ酸配列に含まれる連続したアミノ酸配列からなるアミノ酸残基数６〜５０１個のペプチド断片を、それぞれ挙げることができる。上記配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列からなるペプチドの部分ペプチドは、好ましくは低複雑性領域及び／又はコイルドコイルのモチーフを含むアミノ酸配列からなり、より好ましくは部分ペプチドの８０％以上のアミノ酸残基が低複雑性領域及び／又はコイルドコイルのモチーフを構成する部分ペプチドからなる。これらの部分ペプチドは、部分ペプチドを抗原とする抗体を定法に従い作製して、かかる抗体とコイヘルペスウイルスやコイ乳頭腫症ウイルスとの反応をウエスタンブロット法やＥＬＩＳＡ等の公知の免疫測定法で測定し、コイヘルペスウイルスを特異的に検出し得る場合にコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドであると確認することができる。

また、上記コイヘルペスウイルス特異的抗原決定基（エピトープ）とは、コイヘルペスウイルス特異的抗体により認識されるが、コイ乳頭腫症ウイルスに対する抗体により認識されないアミノ酸残基の集合の最小単位をいい、配列番号１又は配列番号３に示されるアミノ酸配列の一部分と一致する６〜１０個のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を意味する。

本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドの取得及び作製の方法は特に制限されず、コイヘルペスウイルスから単離したペプチド、化学合成したペプチド、又は遺伝子組換えにより作製したペプチドのいずれであってもよい。例えば、ＫＨＶ−ＵのゲノムＤＮＡ（ACCESSION No. NC_009127）配列に基づき、配列の１１４７９７〜１１６５０６の領域や、１３１９６３〜１３０４６１の領域を増幅するプライマーを用いてＰＣＲを行い、得られたＤＮＡ断片を、好適な発現系に導入することにより本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドを取得することができる。あるいは、公知の融合タンパク質発現系に導入して、融合タンパク質として発現させることもできる。また、Ｆｍｏｃ法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）、ｔＢｏｃ法（t−ブチルオキシカルボニル法）等の化学合成法に従って合成することができる。

本発明の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体としては、本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドを特異的に認識する抗体であれば特に制限されず、その種類としてモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、一本鎖抗体等を例示することができる。また抗体の免疫グロブリンのクラスとしては特に制限されず、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ等のいずれのアイソタイプを選択することができ、抗体の形態としては、全抗体、又はＦａｂ断片やＦ（ａｂ’）２断片等の抗体断片、ＣＤＲ、多機能抗体、単鎖抗体（ＳｃＦｖ）などを用いることができる。本発明の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体は、例えば、前記本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチド、又はこれらの部分ペプチドを動物の静脈、腹腔、又は皮下に注射して免疫し、続いて免疫した動物から採血して、抗血清又はポリクローナル抗体として作製することができる。また、前記コイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチド、又はこれらの部分ペプチドを所定の動物の静脈、腹腔、又は皮下に注射して免疫し、続いて免疫した動物から脾臓細胞、リンパ節細胞、末梢血細胞等の抗体産生細胞を採取し、これらと腫瘍細胞とを細胞融合して、適切な選択培地を用いてハイブリドーマを選択し、モノクローナル抗体として産生させて作製することもできる。

本発明の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体の作製方法において、免疫する動物としては、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ウマ、サル、ニワトリ、コイ、キンギョ等が例示されるが、モノクローナル抗体を作製する場合は、腫瘍細胞が入手しやすいマウス、ラット、ウサギが好ましい。前記ペプチドには、必要に応じて、スカシ貝ヘモシアニン（keyhole limpet hemocyanin）、卵白アルブミン（ovalbumin）、ウシ血清アルブミン（bovine serum albumin）等のキャリアタンパクを付加することができ、免疫には、アジュバントを併用することができる。免疫の間隔、回数、投与量は、例えば、免疫の間隔を３日〜４週間、回数を１〜１０回、投与量を１００μｇ〜１００ｍｇの範囲で選択できるが、これらの条件に制限されるものではない。細胞融合には、エレクトロポレーション、プロトプラスト細胞融合法等の公知の手段を用いることができ、ハイブリドーマの選択には、ＨＡＴ（hypoxanthine/aminopterin/thymidine）培地を用いた方法等を用いることができる。抗体は、前記モノクローナル抗体産生ハイブリドーマをＭＥＭ培地等の適切な低タンパク培地で培養して培養液上清から回収するほか、前記モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを腫瘍細胞が由来する動物の腹腔内に注射して腹水を回収して作製することができる。さらに、本発明の抗体は、採血された血清、培養液上清、又は腹水から、定法に従い、ゲル濾過、塩析、アフィニティー精製・ＩｇＧ精製等を組み合わせて精製することもできる。

本発明のモノクローナル抗体としては、具体的には、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体４Ｂ７、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体２Ａ１、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体２Ｅ１０、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体４Ｆ１２、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体５Ｇ６や、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１Ｆ３、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体５Ｇ５、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体９Ｃ７、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１０Ｆ９、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体８Ｄ１０、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１２Ａ２、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１０Ｅ６を挙げることができる。これらの中でも、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０は、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８にコードされるペプチドに対して交差反応性を示さず、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１０Ｅ６は、ＫＨＶ−ＯＲＦ６２にコードされるペプチドに対して交差反応性を示さないことから好ましい。また、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６は、ＫＨＶ由来の抗原と反応するがＣＨＶ及びＣｙＨＶ−２由来の抗原と反応することがなくコイヘルペスウイルス特異的であることから特に好ましい。

本発明のハイブリドーマ細胞ＯＲＦ６８（７Ｃ６）は、コイヘルペスウイルス特異的な抗体である抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６を産生するハイブリドーマである。ハイブリドーマ細胞ＯＲＦ６８（７Ｃ６）は、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２丁目５番８号）に２０１０年３月２４日付で、受託番号 ＮＩＴＥ ＢＰ−９１９として寄託されている。

本発明のコイヘルペスウイルス病の診断キットとしては、本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドを抗原として含むキットであって、試料中の抗体との抗原抗体反応を指標としてコイヘルペスウイルスに対する抗体を検出するキットであれば特に制限されず、また、本発明のコイヘルペスウイルスの検出キットは、本発明のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドを特異的に認識する抗コイヘルペスウイルス特異的抗体を含むキットであって、試料中の抗原との抗原抗体反応を指標としてコイヘルペスウイルスの抗原を検出又は定量するキットであれば特に制限されない。キットに含まれる抗コイヘルペスウイルス特異的抗体としては、抗コイヘルペスウイルス特異的モノクローナル抗体が好ましく、例えば、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６を用いることができる。

本発明のコイヘルペスウイルス病の診断キットに含まれる抗原や、コイヘルペスウイルスの検出キットに含まれる抗体は、遊離の状態で用いることができるほか、適宜、マイクロタイタープレートやビーズ、試験管等に固定化することができる。固定化する固相としては、例えば、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、ポリ塩化ビニル、ポリアクリルアミド、ポリメタクリレート等の合成高分子やシリカゲル、ガラス等の無機高分子等が挙げられる。また、指標とする抗原抗体反応は、公知の免疫測定法の原理に基づき確認することができればよく、本発明の抗体、あるいは公知の二次抗体をアルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ等の酵素、蛍光色素、放射性物質、金コロイド等で標識して試薬とすることができる。また、キットには、ブロッキング溶液、緩衝液、界面活性剤、保存剤、安定剤等の公知の添加剤が含まれてもよい。

本発明のコイヘルペスウイルス病の診断キットや、コイヘルペスウイルスの検出キットの試料としては、特に制限されないが、例えば、マゴイやニシキゴイのエラ、表皮、肝臓、腎臓などの組織や血液を挙げることができる。

以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。

１−１．抗原領域の決定
以下の方法で、コイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１）株のゲノムＤＮＡからファージライブラリーを作製し、コイヘルペスウイルス抗原領域のスクリーニングを行った。

１−２．ＫＨＶゲノムＤＮＡの調製
コイ鰭由来ＫＦ−１細胞を７５ｃｍ^２フラスコ１０本に培養し、９０％程度のコンフルエントになった時点で、コイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１）株を接種し、細胞変性効果（cytopathic effect、ＣＰＥ）が十分に現れるまで、２５℃で約２週間培養を行った。続いて、Gilad et al. (2002)らの方法を参考に、以下の手順でコイヘルペスウイルスの精製、及びゲノムＤＮＡの抽出を行った。コイヘルペスウイルスを接種しＣＰＥ形成されたＫＦ−１細胞の培養フラスコを−８０℃で２４時間以上冷凍した後、室温で解凍して、１０℃で２０分間、３５００×ｇで遠心分離を行い、ウイルスの含まれる上清を回収した。上清は、１０℃で９０分間、９５３００×ｇでさらに遠心分離し、得られたペレットを１ｍＬのＴＮＥ ｂｕｆｆｅｒ（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ７．５）に懸濁し、ホモジナイズした後、１０−６０％のショ糖濃度で密度勾配遠心を行った。１０℃で１８時間、７７０００×ｇで遠心分離し、底面に近い２バンドを回収し、ＴＮＥ ｂｕｆｆｅｒに溶解して、１０℃で１時間、１５１０００×ｇで遠心分離した。得られたウイルスペレットはＴＮＥ ｂｕｆｆｅｒに懸濁して、精製ＫＨＶとした。

前記精製ＫＨＶを５６℃で３時間、プロテイナーゼＫにより処理した後、７０℃で２０分間の条件で失活させ、コイヘルペスウイルスのゲノムＤＮＡをフェノール／クロロホルム／イソアミルアルコール（２５：２４：１）混合溶液により抽出した。続いて、０．１倍量の３Ｍ 酢酸ナトリウムと２．５倍量の９５％エタノールを添加して、エタノール沈殿を行った。遠心分離後のペレットを７０％エタノールで洗浄し、乾燥した後、ＴＥ ｂｕｆｆｅｒに懸濁して、精製ゲノムＤＮＡとした。

１−３．ファージライブラリーのスクリーニング
前記精製ゲノムＤＮＡを、制限酵素Ｓａｕ３ＡＩを用いた部分消化により断片化した。得られた０．５〜２ｋｂのＤＮＡ断片をファージミドベクターｐＢＫ−ＣＭＶ（STRATAGENE社製）のＢａｍＨＩサイトに挿入し、遺伝子発現ファージライブラリーを構築した。続いて、定法に従い、ファージＤＮＡのパッケージングを行い、得られたファージを大腸菌に感染させて、プレート上にプラークを形成させ、形成したファージをニトロセルロース膜に転写して、抗ＫＨＶウサギ血清（東京海洋大学水族病理学研究室 福田教授より分与）と反応させた。得られた陽性ファージからＤＮＡを単離して、陽性ファージがコードする抗原コード領域の塩基配列を定法により解析した。その結果、配列番号２及び配列番号４に示される塩基配列が特定され、ＫＨＶ−ＯＲＦ６２の部分配列である配列番号１、及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８の部分配列である配列番号３からなるＫＨＶ主要抗原領域が得られた。

１−４．組換えタンパク質(抗原)の作製
ＫＨＶ−ＯＲＦ６２、及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８の部分からなる主要抗原領域のＤＮＡ断片を前記精製ゲノムＤＮＡからＰＣＲにより増幅して得た。ＫＨＶ−ＯＲＦ６２の増幅には、ＢａｍＨＩ認識配列を付加したＰＣＲプライマーKHV_62expF（AAGGATCCCATATGGATCAGATTCCCCCCGTCCCAT；配列番号５）、及びＥｃｏＲＩ認識配列を付加したKHV_62expR（TTGAATTCTCACATCGCGGTGGCGTCAAACTT；配列番号６）を用い、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８の増幅には、ＢａｍＨＩ認識配列を付加したＰＣＲプライマーKHV_68expF（AAGGATCCCATATGGATCAGTTCAAGCAGACCACGG；配列番号７）、及びＥｃｏＲＩ認識配列を付加したKHV_68expR（TTGAATTCTCACTGCGACTCGAGCCTGGAGTT；配列番号８）を用いた。

得られた増幅ＤＮＡ断片を発現ベクターｐＥＴ−２８（Novagen社製）のＢａｍＨＩサイトとＥｃｏＲＩサイトとの間に挿入して組換えプラスミドベクターを作製し、それぞれｐＥＴ−ＫＨＶＯＲＦ６２、ｐＥＴ−ＫＨＶＯＲＦ６８とした。続いて、ｐＥＴ−ＫＨＶＯＲＦ６２、及びｐＥＴ−ＫＨＶＯＲＦ６８を用いて、大腸菌ＢＬ２１株をそれぞれ形質転換し、１Ｌの２×ＹＴ培地（Ｂａｃｔｏ Ｔｒｙｐｔｏｎｅ １．６％、Ｙｅａｓｔ Ｅｘｔｒａｃｔ １．０％、ＮａＣｌ ０．５％）により３７℃で振とう培養した。ＯＤ_６００が０．８に達した時点で、最終濃度が１ｍＭとなるようにＩＰＴＧを添加して組換えタンパク質の発現を誘導し、さらに、４時間振とう培養して組換えタンパク質（抗原）を産生させた。菌体内には、組換えタンパク質の高度凝集物である封入体が形成された。

培養後の大腸菌ＢＬ２１株を集菌し、超音波破砕して、封入体の不溶性画分に含まれる組換えタンパク質を回収した。得られた組換えタンパク質は、Ｎｉ−ＮＴＡアガロ−ス（nickel-nitrilotriacetic acid、Qiagen社製）を用いて精製した。精製された組換えタンパク質のサイズは、ｐＥＴ−ＫＨＶＯＲＦ６２を用いた組換えタンパク質では、６０ｋＤａであり、ｐＥＴ−ＫＨＶＯＲＦ６８を用いた組換えタンパク質では、５６ｋＤａであった。

２−１．マウスポリクローナル抗体の作製
精製した組換えタンパク質２種をそれぞれ抗原（ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原）として、１００μｇで１回、１５０μｇで２回、２００μｇで３回の計６回マウス（ＩＣＲ系統、５周齢）の腹腔に接種して免疫し、６２日後に採血し、４℃で１０分間、５０００ｒｐｍで遠心分離して血清を得た。得られた血清を抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体として、以下の解析に用いた。

２−２．ウエスタンブロットによるポリクローナル抗体の特異性の確認
得られた抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体について、ウエスタンブロット解析による抗原特異性の確認を行った。

前記の培養方法に準じて、ＫＦ−１細胞に、コイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１）株、コイ乳頭腫症ウイルス（ＣＨＶ）をそれぞれ接種し、２５℃で約２週間培養した後、細胞を回収して、ｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１０ｍＭ ＮａＣｌ、０．５％ ＮＰ−４０）で溶解した。続いて、遠心分離を行い、得られた可溶性画分を回収して、ＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセート及びＣＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセートを得て、以下のウエスタンブロッティングに供した。

１レーンあたりのタンパク質量を５０μｇとして、ＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセート、ＣＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセート、及び対照として未感染のＫＦ−１細胞ライセートを、１０％のアクリルアミドゲルでＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した後、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜上にタンパク質をブロッティングした。続いて、ＰＶＤＦ膜を３％スキムミルクを用いて４５分間ブロッキングし、ＴＢＳ ｂｕｆｆｅｒで１００００倍希釈した抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体をそれぞれ添加し、室温で２時間振とうした。

二次抗体として１００００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識抗マウスＩｇＧヤギモノクローナル抗体を用いて、各ポリクローナル抗体の検出を行った。その結果を、図１に示す。抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体による解析の結果、ＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセートで、約１５０ｋＤａのタンパク質が検出された（図１Ａ）。また、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体による解析の結果、ＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセートで、ＯＲＦ６８がコードすると考えられる約２５０ｋＤａのタンパク質と、そのタンパク質がプロセッシングされて生じたと考えられる９０ｋＤａ、７０ｋＤａのタンパク質が検出された（図１Ｂ）。これに対し、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体を用いたいずれの場合でも、未感染のＫＦ−１細胞ライセート及びＣＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセートでは、タンパク質が検出されず、各ポリクローナル抗体は交差性を示さなかった。

２−３．ＥＬＩＳＡによるポリクローナル抗体の特異性の確認
得られた抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体について、ＥＬＩＳＡによる抗原特異性の確認を行った。

上記と同様に、コイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１株（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１株）、及びコイ乳頭腫症ウイルス（ＣＨＶ）をそれぞれ感染させたＫＦ−１細胞を培養後、ｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１０ｍＭ ＮａＣｌ、０．５％ ＮＰ−４０）で溶解した。タンパク質濃度が２０μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳで希釈したＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセート、ＣＨＶ感染ＫＦ−１細胞ライセート、及び対照として未感染のＫＦ−１細胞ライセートを、９６ウェルマイクロタイタープレートにコーティングし、５％ＢＳＡでブロッキングしてＥＬＩＳＡプレートを作製した。比較例とした市販の抗ＫＨＶモノクローナル抗体（AQUATIC diagnostic Ltd.製）と、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体とをそれぞれ１：５００、１：１０００、１：２０００、１：４０００、及び１：８０００に希釈し、作製したＥＬＩＳＡプレートで２時間反応させた。

反応後、SensoLyte^TM pNPP Alkaline PhosphataseELISAAssay Kit (ANASPEC社製)を用いて抗体価を測定した。吸光度の測定は４０５ｎｍで行った。その結果を、図２に示す。市販の抗ＫＨＶモノクローナル抗体では、最低希釈倍数の５００倍希釈の場合においても検出感度が得られなかった（図２Ａ）。これに対し、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスポリクローナル抗体、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスポリクローナル抗体では、８０００倍希釈においても十分な検出感度が得られ、また、ＣＨＶ抗原との交差性も認められなかった（図２Ｂ及びＣ）。

３−１．モノクローナル抗体の作製
ＫＨＶ−ＯＲＦ６２、及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８の部分からなる主要抗原領域にコードされるペプチドを抗原として抗ＫＨＶモノクローナル抗体を作製した。脾臓細胞は、前記のＫＨＶ−ＯＲＦ６２、又はＫＨＶ−ＯＲＦ６８の部分からなる主要抗原領域にコードされるペプチドで免疫されたマウス（ＩＣＲ系統、５周齢）から脾臓を摘出し、脾臓細胞を分離してＰＢＳで洗浄して調製した。得られた脾臓細胞とミエローマ細胞株ＳＰ２とを混合し、遠心後上清を除去した。細胞融合はＰＥＧ法により行い、２０％ＦＢＳ ＲＰＭＩ１６４０培地に懸濁して所定濃度に希釈し、９６ウェルマイクロタイタープレートに播種して、ＣＯ_２インキュベーターで７〜１０日間培養してハイブリドーマを調製した。得られたハイブリドーマは、ＫＨＶ抗原ペプチドを用いたＥＬＩＳＡによりスクリーニングした。ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原のそれぞれを９６ウェルマイクロタイタープレートにコーティングし、５％ＢＳＡでブロッキングしてＥＬＩＳＡプレートを作製し、プレートの各ウェルにハイブリドーマの培養上清を添加して室温（約２３℃）で１〜２時間反応させた。各ハイブリドーマが産生したモノクローナル抗体のＥＬＩＳＡ抗体価は、SensoLyte^TM pNPP Alkaline PhosphataseELISAAssay Kit (ANASPEC社製)を用いて測定した。その結果、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマとして、ハイブリドーマ４Ｂ７、ハイブリドーマ２Ａ１、ハイブリドーマ１０Ｄ１０、ハイブリドーマ２Ｅ１０、ハイブリドーマ４Ｆ１２、ハイブリドーマ５Ｇ６の６種、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマとして、ハイブリドーマ１Ｆ３、ハイブリドーマ５Ｇ５、ハイブリドーマ９Ｃ７、ハイブリドーマ１０Ｆ９、ハイブリドーマ７Ｃ６、ハイブリドーマ８Ｄ１０、ハイブリドーマ１２Ａ２、ハイブリドーマ１０Ｅ６の８種が選抜された。

３−２．モノクローナル抗体の交差性の確認
得られたハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６２及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８に対する交差性をＥＬＩＳＡ抗体価に基づいて判定した。ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原で免疫して得られた各抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原に対する抗体価を表１に、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原で免疫して得られた各抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原、ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原に対する抗体価を表２にそれぞれ示す。

その結果、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０は、交差反応性を示さず、ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原と反応するがＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原と反応しないモノクローナル抗体であると判定された。また、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６、１０Ｅ６は、交差反応性を示さず、ＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原と反応するがＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原と反応しないモノクローナル抗体であると判定された。

３−３．モノクローナル抗体のアイソタイプの確認
得られたモノクローナル抗体のアイソタイプを判定した。各アイソタイプ特異的抗体に対する抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体のＥＬＩＳＡ値を表３に、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体のＥＬＩＳＡ値を表４にそれぞれ示す。

その結果、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０は、ＩｇＭであると判定された。また、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６及び１０Ｅ６は、ＩｇＧ１であると判定された。

３−４．ウエスタンブロットによるモノクローナル抗体の特異性の確認
得られた抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２モノクローナル抗体、及び抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８モノクローナル抗体について、常法に従いウエスタンブロット解析による抗原特異性の確認を行った。ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原のそれぞれを、１レーンあたりのタンパク質量を５０μｇとして１０％のアクリルアミドゲルでＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した後、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜上にブロッティングした。続いて、ＰＶＤＦ膜を３％スキムミルクを用いて４５分間ブロッキングし、ＴＢＳ ｂｕｆｆｅｒで希釈した前記各抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体をそれぞれ添加し、室温で２時間振とうした。次いで、二次抗体としてＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧヤギ抗体（Jackson ImmunoResearch Laboratories社製）を用いて各モノクローナル抗体の検出を行った。抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２モノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原に対する特異性をウエスタンブロットで解析した結果を図３に、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８モノクローナル抗体のＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原に対する特異性をウエスタンブロットで解析した結果を図４に示す。図３に示す結果から、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０は、約６０ｋＤａのＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原を特異的に検出し、約５６ｋＤａのＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原を検出しないことが確認された。また、図４に示す結果から、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１０Ｅ６及び７Ｃ６は、約５６ｋＤａのＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原を特異的に検出し、約６０ｋＤａのＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原を検出しないことが確認された。

３−５．モノクローナル抗体によるウイルスの検出（ウエスタンブロット）
ＫＨＶ−ＯＲＦ６２抗原及びＫＨＶ−ＯＲＦ６８抗原との間で交差反応性を示さないことが確認された抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０、並びに抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１０Ｅ６及び７Ｃ６を用いて、コイヘルペスウイルスの特異的な検出の可否を確認するために、ウエスタンブロットによるウイルス抗原の検出を行った。試料としては、ＫＦ−１細胞に、コイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１）株、コイ乳頭腫症ウイルス（ＣＨＶ）、Cyprinid herpes virus-2（ＣｙＨＶ−２）をそれぞれ接種し、２５℃で約２週間培養した後、回収した細胞をｌｙｓｉｓ ｂｕｆｆｅｒで溶解した可溶性画分を用いた。ＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞、ＣＨＶ感染ＫＦ−１細胞、及びＣｙＨＶ−２感染ＫＦ−１細胞から調製した前記試料を、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６２マウスモノクローナル抗体１０Ｄ１０、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体１０Ｅ６及び７Ｃ６をそれぞれ用いて、常法に従いウエスタンブロットを行った。抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６についての結果を図５に示す。ＫＨＶ感染ＫＦ−１細胞（右レーン）では、ＯＲＦ６８がコードするタンパク質がプロセシングされて生じたと考えられる抗原による複数の強いバンドが確認されたのに対し、ＣＨＶ感染ＫＦ−１細胞（左レーン）及びＣｙＨＶ−２感染ＫＦ−１細胞（中央レーン）ではバンドは確認されなかった。なお、各レーンの５０ｋＤａ付近のバンドは、ハイブリドーマ培養液に含まれるウシ胎児血清（ＦＢＳ）に由来するものと確認された。図５に示す結果から、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６は、コイヘルペスウイルス（ＫＨＶ）を特異的に検出し、コイ乳頭腫症ウイルス（ＣＨＶ）及びCyprinid herpes virus-2（ＣｙＨＶ−２）を検出しないことが確認された。抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６を産生するハイブリドーマは、ＫＨＶハイブリドーマ細胞ＯＲＦ６８（７Ｃ６）と命名され、２０１０年３月２４日付で独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに寄託された（受託番号 ＮＩＴＥ ＢＰ−９１９）。

３−６．モノクローナル抗体によるウイルスの検出（蛍光抗体法）
抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６を用いて、蛍光抗体法により細胞中のコイヘルペスウイルスの検出確認を行った。試料としては、チャンバースライド（Lab-Tek chamber slide w/cover Permanox Slide sterile （NUNC社製））を用いてＣＣＢ細胞（common carp brain cell；コイ脳由来株化細胞）をあらかじめ培養し、コイヘルペスウイルスＴＵＭＳＴ１（ＫＨＶ−ＴＵＭＳＴ１）株、コイ乳頭腫症ウイルス（ＣＨＶ）、Cyprinid herpes virus-2（ＣｙＨＶ−２）をそれぞれ接種し、２０℃で７〜１０日間培養したものを用い、対照としてウイルスを感染させていないＣＣＢ細胞を用いた。ＫＨＶ感染ＣＣＢ細胞、ＣＨＶ感染ＣＣＢ細胞、及びＣｙＨＶ−２感染ＣＣＢ細胞から調製した前記試料を、スライドに塗抹し、１００％メタノールで固定した後、ＰＢＳで洗浄した。続いて、塗抹標本上にブロッキング溶液（ＰＢＳ−Ｔ；５０％ スキムミルク，０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０）を添加し、３７℃で３０分間インキュベートした。１次抗体として抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６を添加し、３７℃で１時間反応させた後洗浄した。次いで、２次抗体としてＦＩＴＣ標識抗マウスＩｇＧヤギ抗体（Jackson ImmunoResearch Laboratories社製）を添加し、３７℃で１時間反応させた後洗浄し、封入剤（１０％グリセロール）を添加して蛍光顕微鏡により観察した。その結果を図６に示す。非感染ＣＣＢ細胞（Ａ）、ＣＨＶ感染ＣＣＢ細胞（Ｂ）、ＣｙＨＶ−２感染ＣＣＢ細胞（Ｃ）と比較して、ＫＨＶ感染ＣＣＢ細胞（Ｄ）において強い蛍光が認められたことから、抗ＫＨＶ−ＯＲＦ６８マウスモノクローナル抗体７Ｃ６を用いることにより、コイヘルペスウイルスに感染した細胞或いは組織におけるコイヘルペスウイルス特異的な検出が可能であることが確認された。

本発明の抗原ペプチドは、交差性がなくコイヘルペスウイルスに特異的なポリクローナル抗体やモノクローナル抗体を作製するのに用いられる。本発明のハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体は、コイヘルペスウイルスの特異的検出に用いられる。また、本発明のコイヘルペスウイルスの検査方法は、コイヘルペスウイルス感染魚の感染歴を正確に診断するのに有用である。

Claims (7)

1. 以下の（Ａ）、又は（Ｂ）のペプチドからなるコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチド。
   （Ａ）配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列からなるペプチド。
   （Ｂ）配列番号１又は３に示されるアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるペプチド。
2. 請求項１に記載のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドで免疫することにより得られ、請求項１に記載のコイヘルペスウイルス特異的抗原ペプチドを特異的に認識する抗コイヘルペスウイルス特異的抗体。
3. 抗コイヘルペスウイルス特異的ポリクローナル抗体であることを特徴とする請求項２に記載の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体。
4. 抗コイヘルペスウイルス特異的モノクローナル抗体であることを特徴とする請求項２に記載の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体。
5. 抗コイヘルペスウイルス特異的モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞ＯＲＦ６８（７Ｃ６）（ＮＩＴＥ ＢＰ−９１９）。
6. 請求項１に記載の抗原ペプチドを含有することを特徴とするコイヘルペスウイルス病の診断キット。
7. 請求項２〜５のいずれかに記載の抗コイヘルペスウイルス特異的抗体を含有することを特徴とするコイヘルペスウイルスの検出キット。