JP5713351B2 - 妊孕性検査方法、妊孕性検査キット、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、及び抗体 - Google Patents
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Description
一方、精子形成過程の減数分裂後に起こる形態学的変化には、エネルギー代謝に利用される酵素において、精子細胞特異的な構造もしくは機能変化が認められるとされ、精子特異的なhexokinase(非特許文献2参照。)、phosphoglucose isomerase(非特許文献3参照。)、aldolase(非特許文献4参照。)、glyceraldehyde 3−phosphate dehydrogenase(非特許文献5参照。)、phosphoglycerate kinase(非特許文献6参照。)、phosphoglycerate mutase(非特許文献7参照。)、enolase(非特許文献8参照。)などが活性化される。非特許文献5では、glyceraldehyde 3−phosphate dehydrogenaseのノックアウトマウス(オス)が不妊となり、精子の運動不良が認められることから、これら精子特異的な解糖系の酵素機能における異常は不妊の原因となる可能性が示唆される。
本発明は、上記課題に鑑みてなされたものであり、精子運動におけるエネルギー供給に関わる酵素機能に基づいた妊孕可能性の推定、及び不妊症の原因の同定を可能にする妊孕性検査・診断方法を提供することを目的とする。
(1)ヒトから採取された生体サンプルについて、ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出する検出工程を有し、前記検出工程において、翻訳開始コドンのアデニンを第1位の塩基としたときに、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の、第75位の塩基、第138位の塩基、及び第539位の塩基からなる群より選択される1以上の塩基の変異の有無を検出する、妊孕性検査方法。
(2)前記検査方法の検出行程において、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の、第75位の塩基及び第539位の塩基からなる群より選択される1以上の変異の有無を検出する、妊孕性検査方法。
(3)下記の(a)又は(b)の塩基配列:
(a)配列番号3で表される塩基配列において、101番目の塩基がグアニンからシトシンに置換されており、当該101番目の塩基を含む10〜100の連続した塩基配列;
(b)前記(a)の塩基配列と相補的な塩基配列;
からなるポリヌクレオチド。
(4)下記の(c)又は(d)の塩基配列:
(c)配列番号5で表される塩基配列において、101番目の塩基がグアニンからアデニンに置換されており、当該101番目の塩基を含む10〜100の連続した塩基配列;
(d)前記(c)の塩基配列と相補的な塩基配列;
からなることを特徴とするポリヌクレオチド。
(5)配列番号1で表される塩基配列において、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の第75位の塩基又は第539位の塩基が置換されており、この置換された塩基を含む10〜100の連続した塩基配列と、相同的又は相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチド。
(6)配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドにおいて、第138位の塩基がシトシンに置換された塩基配列からなる、ポリヌクレオチド。
(7)上記(5)に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる、ポリペプチド。
(8)上記(5)に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなるポリペプチドと結合し、かつ、配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドと結合しない、抗体。
(9)ヒトから採取された生体サンプルについて、発現しているPGAM4ポリペプチドの変異の有無を、上記(8)に記載の抗体を使用することで検出する検出工程を有する、妊孕性検査方法。
(10)ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出するための試薬を含み、前記ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出するための試薬が、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の第75位の塩基、第138位の塩基、及び第539位の塩基からなる群より選択される1以上の塩基の変異の有無を検出することができる、ヒトの妊孕性検査キット。
(11)前記試薬が、抗PGAM4抗体である、上記(10)記載の妊孕性検査キット。
(12)前記試薬が、ヒトPGAM4遺伝子の変異検出部位の塩基を含む領域を増幅することができるプライマーセットである、上記(10)記載の妊孕性検査キット。
各プライマーは、たとえばホスホロアミダイト法等の公知の方法によって合成することができ、たとえばApplied Biosystems Inc.の392型シンセサイザー等を取扱説明書に従って使用することによって簡単に合成することができる。
一方、各プライマーに蛍光標識が付されていない場合、ダイターミネータ法によって塩基配列を決定することができる。この場合、上記妊孕性検査キットには、上記のプライマーの組に加えて、A、T、G、Cの各単量体からなるデオキシリボ核酸、蛍光標識されA、T、G、Cの各単量体からなるジデオキシリボ核酸(所謂ダイターミネータ)、及びポリメラーゼ等がさらに含まれていてもよい。
インベーダープローブ2は、ターゲット遺伝子1と相補的な塩基配列を有し、かつ、3’末端の塩基がターゲット遺伝子1の変異(又は一塩基多型)検出部位1aと対応するように設計される(いずれの塩基とも相補的な塩基ではない)。一方、アレルオリゴ3は、ターゲット遺伝子1とは無関係な塩基配列であるフラップ3bと、ターゲット遺伝子1と相補的な塩基配列を有し、かつ、5’末端の塩基がターゲット遺伝子1の変異(又は一塩基多型)検出部位1aに相補するように設計されたヌクレオチド3aとが連結したものである。ここで、フラップ3bは、ヌクレオチド3aの5’末端側に連結されている。
このように設計されたインベーダープローブ2とアレルオリゴ3をターゲット遺伝子1とハイブリダイゼーションさせると、ターゲット遺伝子1に対してアレルオリゴ3とインベーダープローブ2が重なり合った構造をとりながらハイブリダイズし、変異検出部位1aにおいてインベーダープローブ2がアレルオリゴ3の下に1塩基のみ侵入する。すると、フラップエンドヌクレアーゼ(「クリアベース(cleavase)」ともいう)4がこの侵入構造を認識し、アレルオリゴ3を重なった塩基の3’側で切断する。その結果、フラップ3bと変異検出部位とが連結したフラップ遊離体3cが生成される。
フレットプローブ5は、5’末端側が自身とハイブリダイゼーションでき、かつ、3’末端側がフラップ3bとハイブリダイゼーションできるヌクレオチド5aと、蛍光色素5bと、クエンチャー(発光抑制体)5cとからなる。ここで、ヌクレオチド5aは、 3’末端がフラップ遊離体3cと相補的な塩基配列となっている。また、蛍光色素5bは、ヌクレオチド5aの5’末端に結合している。ただし、フレットプローブ5においては、クエンチャー5cにより蛍光色素5bの蛍光が抑制されている。
このようなフレットプローブ5に対してフラップ遊離体3cがハイブリダイゼーションすると、フラップ遊離体3cの変異検出部位について、再び3進入構造が形成される。その結果、上述のフラップエンドヌクレアーゼ4がこの侵入構造を再び認識し、フレットプローブ5の5’末端部分が切断される。その結果、フレットプローブ5の5’末端に結合していた蛍光色素5bが遊離し、蛍光が生じる。
上記の構成により、被験者のPGAM4遺伝子において上記の塩基が変異型置換している場合は、ターゲット遺伝子にハイブリダイズしたヌクレオチド3aの5’末端にインベーダープローブ2の3’末端が侵入することにより、ヌクレオチド3cが切り出されて蛍光が生じる。一方、被験者のPGAM4遺伝子が野生型である場合は、インベーダープローブ2の末端部分による侵入構造が形成されないのでヌクレオチド3cが切り出されないため蛍光が生じない。
なお、上記の各方法において、PGAM4遺伝子のセンス鎖(コドンをコードする側の鎖)を調べることによって置換変異の有無を判定する構成について詳細に説明したが、アンチセンス鎖を調べることによっても同様に判定することができるのはいうまでもない。
一般的には、動物は遊離ペプチドによって免疫化することができる。ただし、遊離ペプチドを高分子キャリア(たとえば、ヒーホールリンペットヘモシアニン(KLH)または破傷風トキシド)にカップリングすることによって効率的に免疫化できるようになる場合もある。たとえば、システインを含有するペプチドは、m−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル(MBS)のようなリンカーによってキャリアにカップリングすることができる。一方、他のペプチドは、グルタルアルデヒドのようなより一般的な連結剤を使用してキャリアにカップリングすることができる。
ウサギ、ラット及びマウスのような動物は、遊離ペプチドまたはキャリア−カップリングペプチドと、Freundのアジュバントとを含むエマルジョンを腹腔内及び/または皮内に注射することにより免疫化することができる。ELISAにより検出できる程度に有用な力価の抗ペプチド抗体を得るためには、約2週間の間隔で追加免疫注射を行うことが望ましい。
そして、免疫化された動物から血液を採取し、血清からIgG画分を抽出することにより抗体を得ることができる。また、抗体を公知の技術によって精製することにより、抗体の力価が向上する。
本発明に係る抗体は、上述したヒト変異型PGAM4ポリペプチドに結合する一方で、ヒト野生型PGAM4ポリペプチドには結合しないものである。それゆえ、上記の手順によって得られた抗体のうち、ヒト野生型PGAM4タンパク質と結合しないものを選出することによって、本発明に係る抗体を得ることができる。上記の選出を容易にするためには、動物に注射する抗原ペプチドとして、ヒト変異型PGAM4ポリペプチドの変異部分とその周辺のアミノ酸配列からなる10残基程度のオリゴペプチドを選択することが望ましい。
上記抗体を用いてヒト変異型PGAM4タンパク質が発現しているか否かを調べ、被験者においてヒト変異型PGAM4タンパク質が発現されていると判定された場合は、ヒトPGAM4遺伝子に上述した置換変異が生じていることが強く示唆され、同時に、その被験者は、妊孕可能性が低い、あるいは不妊症の可能性が高いと推定することができる。また、被験者が不妊症の場合は、不妊症の原因がヒトPGAM4遺伝子の異常に起因していると推定することができる。
より具体的には、本発明に係る妊孕性診断方法の検出工程が、ヒト野生型PGAM4タンパク質と結合し、かつ、異常ヒトPGAM4タンパク質と結合しないことを特徴とする抗体を用いることにより、生体サンプル中にヒト野生型PGAM4タンパク質が存在しているか否かを検出するものであってもよい。また、本発明に係る妊孕性診断キットに含まれるヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出するための試薬として、ヒト野生型PGAM4タンパク質と結合し、かつ、異常タンパク質と結合しないことを特徴とする抗体(抗PGAM4抗体)を用いてもよい。
抗PGAM4抗体を用いてヒトPGAM4タンパク質の発現の有無や発現量を調べ、被験者においてヒトPGAM4タンパク質が発現していないと判定された場合や、ヒトPGAM4タンパク質の発現量が遺伝子変異が生じていない被験者よりも少ないと判定された場合には、ヒトPGAM4遺伝子が欠失または変異していることが示唆され、同時に、その被験者は、妊孕可能性が低い、あるいは不妊症の可能性が高いと推定することができる。また、被験者が不妊症の場合には、不妊症の原因が正常なヒトPGAM4タンパク質が発現していないことによるものと推定することができる。
妊孕性診断キットがウェスタンブロッティングまたはELISAを利用する妊孕性診断方法に好適なキットである場合、妊孕性診断キットには、ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出するための試薬として、抗ヒト野生型PGAM4タンパク質抗体又は抗ヒト変異型PGAM4抗体に加えて、発色反応に必要なペルオキシダーゼ等の特異的酵素で標識した抗グロブリン抗体が含まれていてもよい。
[解析対象者]
非閉塞性不妊症の日本人男性被験者(N=383)を、精子形成の欠損の程度に基づいてサブグループに分割した。これらの不妊症被験者のうち、13%は非閉塞性無精子症であり、31%は重症精子過少症(<5×106細胞/mL)であり、33%が運動無力症であり、残り23%が形態的に異常のないものであった。遺伝的要因を調べたところ、これらの被験者は何れも原発性特発性不妊症であった(Guideline for sperm donation. Fertil Steril. 2004: 82(suppl 1): S9 -S12)。コントロール群(N=251)は産婦人科医院にいる妊婦のもとに生まれた子供の父親であり、妊孕性が確認された男性とした。全ての提供者からは、サンプルがゲノムDNA解析に使用される旨のインフォームドコンセントを取得した(大阪大学病院泌尿器科)。
以下の各工程では、特に断りがない限り、常法又はキットに添付されている取扱説明書に従って各処理を行った。
ゲノムDNAは、プロテアーゼ処理とフェノール抽出により血液サンプル又は精液サンプルから単離し調製した(Sambrook J et al., Isolation of DNA from Mammalian Cells. New York: Cold Spring Harbor Press. 1989: pp. 9.16-9.21)。血液由来ゲノムDNAはGenomiPhi(GEヘルスケアバイオサイエンス社製)を用いて増幅したDNAを使用した。
PGAM4遺伝子のタンパク質をコードする翻訳領域を含むDNAを、表1に示したプライマーF及びプライマーRを用いて、表2に示したPCR反応条件に従って増幅した。
なお、プライマーFは、5’末端の塩基が、PGAM4遺伝子の塩基配列において、翻訳開始コドンのアデニンを第1位の塩基とした場合の第−98位の塩基とハイブリダイズするように設計されたプライマーである。一方、プライマーRは、5’末端の塩基が、PGAM4遺伝子の塩基配列において、翻訳開始コドンのアデニンを第1位の塩基とした場合の第850位の塩基とハイブリダイズするように設計されたプライマーである。
不妊症被験者及び妊孕性確認被験者のそれぞれについて、プライマーFとRで増幅されるアンプリコンの塩基配列を解析したところ、表3に示すように、置換変異が合計4個検出された。
このうち、アミノ酸の変化を伴う置換変異は2個であり、このうちの1個は妊孕性確認被験者にも検出されたが、残る1個は妊孕性確認被験者からは全く検出されなかった。また、妊孕性確認被験者からも検出された2個の置換変異のうちの1個は、不妊症被験者に有意に多かった。
一方、アミノ酸の変化を伴わない2個の置換変異のうち、1個は妊孕性確認被験者にも検出されたが、残る1個は妊孕性確認被験者からは全く検出されなかった。
これらの結果から、妊孕性確認被験者からは全く検出されなかった2個の置換変異と、不妊症被験者に有意に多かった1個の置換変異が、妊孕性との相関性があることが確認された。以下、この3個の置換変異について、それぞれ説明する。
Claims (12)
- ヒトから採取された生体サンプルについて、ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出する検出工程を有し、
前記検出工程において、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の、第75位の塩基、第138位の塩基、及び第539位の塩基からなる群より選択される1以上の塩基の変異の有無を検出する、妊孕性検査方法。 - 前記検出工程において、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の、第75位の塩基及び第539位の塩基からなる群より選択される1以上の変異の有無を検出する、請求項1記載の妊孕性検査方法。
- 下記の(a)又は(b)の塩基配列:
(a)配列番号3で表される塩基配列において、101番目の塩基がグアニンからシトシンに置換されており、当該101番目の塩基を含む10〜100の連続した塩基配列;
(b)前記(a)の塩基配列と相補的な塩基配列;
からなるポリヌクレオチド。 - 下記の(c)又は(d)の塩基配列:
(c)配列番号5で表される塩基配列において、101番目の塩基がグアニンからアデニンに置換されており、当該101番目の塩基を含む10〜100の連続した塩基配列;
(d)前記(c)の塩基配列と相補的な塩基配列;
からなるポリヌクレオチド。 - 配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドにおいて、第75位の塩基がシトシンに置換された塩基配列又は第539位の塩基がアデニンに置換された塩基配列からなる、ポリヌクレオチド。
- 配列番号1で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドにおいて、第138位の塩基がシトシンに置換された塩基配列からなる、ポリヌクレオチド。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる、ポリペプチド。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなるポリペプチドと結合し、かつ、配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドと結合しない、抗体。
- ヒトから採取された生体サンプルについて、発現しているPGAM4ポリペプチドの変異の有無を、請求項8に記載の抗体を使用することで検出する検出工程を有する、妊孕性検査方法。
- ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出するための試薬を含み、
前記ヒトPGAM4遺伝子の欠損又は変異の有無を検出するための試薬が、ヒトPGAM4遺伝子の翻訳領域の第75位の塩基、第138位の塩基、及び第539位の塩基からなる群より選択される1以上の塩基の変異の有無を検出することができる、ヒトの妊孕性検査キット。 - 前記試薬が、抗PGAM4抗体である、請求項10記載の妊孕性検査キット。
- 前記試薬が、ヒトPGAM4遺伝子の変異検出部位の塩基を含む領域を増幅することができるプライマーセットである、請求項10記載の妊孕性検査キット。
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