JP5683866B2 - 細菌性細胞溶解素の精製方法 - Google Patents
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Description
[1] 以下のステップ:
a)細菌性細胞溶解素を発現する細胞の培養物を増殖させるステップ;
b)細菌性細胞溶解素を含む培養物から抽出物を調製するステップ;
c)抽出物中に含まれる可溶性の凝集した細菌性細胞溶解素を、界面活性剤の存在下で、高塩(好ましくは0.6〜2Mの塩)条件下で、疎水性相互作用クロマトグラフィー材料と結合させるステップ;
d)界面活性剤の存在下で、低塩(好ましくは0〜0.2Mの塩)条件下で、細菌性細胞溶解素を溶出させるステップ、
を含む、細菌性細胞溶解素の精製方法。
e)細菌性細胞溶解素から界面活性剤を除去するステップ;
f)変性剤を添加することにより細菌性細胞溶解素を可溶化するステップ;
g)細菌性細胞溶解素からその変性剤を除去するステップ、
をさらに含む、上記[1]に記載の方法。
モラクセラ・カタラーリス(Moraxella catarrhalis)由来の抗原をさらに含む、上記[41]〜[44]に記載の免疫原性組成物。
方法
本発明の方法は、ニューモリシンなどの細菌性細胞溶解素の精製方法である。細胞溶解素、例えばニューモリシンは、単一のカラムクロマトグラフィーステップのみを用いて精製され、カラムに再ローディングする必要はない。タンパク質は、界面活性剤および塩の存在下で、疎水性相互作用カラムに凝集形態で結合する。これらの条件下でカラムに結合するタンパク質はほとんどなく、単一ステップで細胞溶解素の精製が可能になる。
a)細菌性細胞溶解素を発現する細胞の培養物を増殖させるステップ;
b)細菌性細胞溶解素を含む培養物から抽出物を調製するステップ;
c)該抽出物中に含まれる可溶性の凝集した細菌性細胞溶解素を、界面活性剤(好ましくは脂肪族界面活性剤)の存在下で、高塩(好ましくは0.5〜2Mの塩)条件下で、疎水性相互作用クロマトグラフィー材料と結合させるステップ;
d)界面活性剤(好ましくは脂肪族界面活性剤)の存在下で、低塩(好ましくは0〜0.2Mの塩)条件下で、細菌性細胞溶解素を溶出させるステップ、
を含む、細菌性細胞溶解素の精製方法が提供される。
a)細菌性細胞溶解素を発現する細胞の培養物を増殖させるステップ;
b)細菌性細胞溶解素を含む培養物から抽出物を調製するステップ;
c)該抽出物中に含まれる細菌性細胞溶解素を、0.5〜2Mの塩および0.1%〜5%の界面活性剤を含有する溶液の存在下で、疎水性相互作用クロマトグラフィー材料と結合させるステップ;
d)0.1〜5%の界面活性剤を含有する低塩(好ましくは0〜0.2Mの塩)溶液を用いて、細菌性細胞溶解素を溶出させるステップ、
を含む、細菌性細胞溶解素の精製方法が提供される。
e)細菌性細胞溶解素から界面活性剤を除去するステップ;
f)変性剤を添加することにより細菌性細胞溶解素を可溶するステップ;
g)細菌性細胞溶解素からその変性剤を除去するステップ、
を含むことが好ましい。
本発明の方法により精製された細胞溶解素(好ましくはニューモリシン)は、化学的処理による無毒化のさらなる任意ステップに供することができる。この追加のステップは、細胞溶解素(好ましくはニューモリシン)を動物またはヒトに投与しようとする場合に特に有利である。野生型ニューモリシンは毒性が高い。毒性が低下している突然変異型ニューモリシンタンパク質が幾つか単離されているが、これらは、そのニューモリシンを内服投与した場合に問題となり得る残存毒性を依然として持ったままである(WO99/03884、WO90/06951)。あるいはまた、多糖にコンジュゲートさせることにより無毒化することが可能である(WO96/05859)。
a)(好ましくはエルマン反応により間接的に測定した場合に)毒素の5〜30個、好ましくは約12〜14個のアミノ酸残基が、好ましくはリジン残基またはアルギニン残基に共有結合する架橋分子により修飾され、他方の末端が(好ましくはシステインで)クエンチングされている;かつ/または、
b)毒素の毒性活性に関与するシステイン側鎖(好ましくは毒素のC末端に向いたもの)が、好ましくはその毒素の一次構造においてそのシステイン残基から2、5、10、20、30または40アミノ酸を超えて離れているその毒素の別の側鎖に(好ましくはリジン残基またはアルギニン残基に)架橋される、
のいずれか一方、好ましくは両者が起こるように10〜20オングストロームだけ間隔を空けた反応性基を有する架橋試薬によって、無毒化される。
ワクチン接種についての多糖法に付随する問題は、多糖自体の免疫原性が低いという事実である。これを克服するために、多糖をタンパク質担体とコンジュゲートして、バイスタンダーT細胞効果をもたらしてもよい。本発明の方法は、有利にも、細胞溶解素(好ましくはニューモリシン)を細菌性多糖(例えばリポオリゴ糖、好ましくは莢膜多糖)とコンジュゲートさせるさらなるステップを含んでもよい。
本発明のさらなる実施形態は、本発明の方法により精製される細胞溶解素(好ましくはニューモリシン)である。これは、本発明の方法により製造されるニューモリシン-細菌莢膜多糖コンジュゲートを含む。
本発明のさらなる実施形態は、本発明の方法により得られる細胞溶解素(好ましくはニューモリシン)もしくはニューモリシン-細菌莢膜多糖コンジュゲートと、薬学的に許容される賦形剤と、場合によりアジュバントとを含むワクチンである。
温度を39.5℃まで上昇させることにより大腸菌培養物の誘導を18時間行った後、大腸菌を、17,000gで1時間遠心分離することによりペレット化した。このペレットを25mMのジエタノールアミン(pH9.0)に再懸濁し、Rannie装置内で500PSIにて1パスを用いて大腸菌を機械的に破壊した。1%ラウロイルサルコシン酸ナトリウム(SLS)を破壊した大腸菌に添加し、混合物を室温で1時間インキュベートした後、30,000gで20分間遠心分離して、細胞破砕物をペレット化した。上清を1M NaClおよび1%SLSを含有する20mMリン酸(pH7.0)中で最終的に2.5倍に希釈し、次に、同じ緩衝液(1M NaClおよび1%SLSを含有する20mMリン酸、pH7.0 =平衡化緩衝液)で平衡化したフェニル-セファロースHPカラムにローディングした。カラムを4倍カラム容量の平衡化緩衝液で洗浄し、次に2倍カラム容量の0.5M NaClおよび1%SLSを含有する20mMリン酸緩衝液(pH7.0)で洗浄した。1%SLS含有20mMリン酸緩衝液(pH7.0)を含有する低塩緩衝液をアプライすることにより、カラムからニューモリシンを溶出させた。SDS-PAGE分析を用いてニューモリシンを含む画分を同定し、プールし、その緩衝液を透析濾過により25mMジエタノールアミン(pH9.0)に交換した。
図1に示すように、上記で記載した方法は、単一のクロマトグラフィーステップ後にニューモリシンの高効率な精製をもたらすことができた。パネルAにおけるクーマシーブルー染色ゲルは、塩化ナトリウムが添加されていない低塩緩衝液によるカラムの溶出により、そのカラムからニューモリシンに対応する53kDaのバンドを高度に精製された形態で溶出できたことを示している。約45kDaのずっと薄いバンドもニューモリシンであると考えられる。何故ならば、この第2のバンドは、抗ニューモリシン抗体に結合し(結果は示さず)、またパネルBに示すように抗大腸菌抗体には結合しないからである。パネルBのウエスタンブロットは、精製ニューモリシン中に残存する混入タンパク質を検出する非常に高感度な方法である。この方法により、ごく僅かな混入物を検出できたが、その存在物は、クーマシー染色の検出レベルを下回る低レベルであった。したがって、ニューモリシンは、98〜100%の純度のレベルまで精製される。
精製ニューモリシンは、NHSエステル-マレイミド架橋試薬GMBS(N-(γ-マレイミドブチリルオキシ)スクシンイミドエステル)を用いてスルフヒドリルおよび第一級アミン基を修飾することにより無毒化した。0.5mg/mlの濃度のニューモリシンを、50mMリン酸緩衝液(pH7.0)に対して透析した。GMBSをまずDMSOに溶解させ、それをGMBSが248倍モル過剰となるようニューモリシンに添加した。処理を室温で1時間継続した。過剰なGMBSおよび副生成物を、100mMリン酸ナトリウム(pH6.8)に対する透析により除去した。0.6mg/mlのシステインと室温にて2時間反応させることにより、さらなるマレイミド基をクエンチングした。過剰なシステインを除去するために、サンプルを2mMリン酸ナトリウム(pH7.15)に対して透析した。
溶血活性
溶血アッセイを用いて、無毒化ニューモリシンの残存毒性を評価した。ニューモリシンの連続2倍希釈物を、ヒツジ赤血球と共にインキュベートした。遠心分離した後、上清をイムノプレートに移し、放出されたヘモグロビンを、405nmでの光学密度の読み取りを用いて測定した。結果は、OD曲線の中点に対応するng/ml(ニューモリシン)として表した。このアッセイを、無毒化ニューモリシンを37℃で7日間インキュベートした後で繰り返して、無毒化の可逆性をモニターした。
無毒化ニューモリシンの抗原性を、ELISAにより評価した。ELISAプレートをモルモット抗-ニューモリシン抗体で被覆した。ニューモリシンの希釈物を含有するサンプルを、このプレート内で、室温で1時間インキュベートした。洗浄した後、結合したニューモリシンを、西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートさせた、ニューモリシンに対するウサギ・ポリクローナル抗体を用いて検出した。このプレートを洗浄した後、基質反応を用いて、各ウェルに結合したニューモリシンの量を評価した。
無毒化ニューモリシンタンパク質をSDS-PAGE(Novex 4〜20%ポリアクリルアミドゲルゲル Invitrogen)上で泳動し、クーマシーブリリアントブルーを用いてそのタンパク質を可視化した。図2に示すように、GMBSで処理すると、PLYの分子量が53kDaから約56kDaへと僅かに増大した。この増大は、複数のアミノ酸残基がGMBSで修飾されたことによる。分子量が約110kDaおよび170kDaの薄いバンドの出現から判るように、PLYの一部が多量体形態へと変換されるが、大部分のPLYは、本質的に単量体形態のままである。PLYを37℃で7日間インキュベートしたところ、SDS-PAGEでのPLYの外観は実質的に変化しなかったが、このことは修飾PLYが変性またはその後の共有結合した多量体の形成を生じないことを示している。
OFAラット3匹からなる群を、食塩水、アジュバントQS21(US5,057,540)、ニューモリシン、アジュバント添加ニューモリシン、ホルムアルデヒド無毒化ニューモリシン、アジュバント添加ホルムアルデヒド無毒化ニューモリシン、GMBD無毒化ニューモリシン、アジュバント添加GMBD無毒化ニューモリシン、NHS-アセテート無毒化ニューモリシン、またはアジュバント添加NHS-アセテート無毒化ニューモリシンの筋肉内(脛骨筋)接種により、一回免疫した。免疫した3日後、全てのラットを屠殺し、脛骨筋を組織学的実験用に調製した。脛骨筋をホルマリンで固定し、2mmの切片に切断し、これを脱水し、パラフィン包埋した。7μmの切片を切り出し、マッソン・トリクローム(Trichrome Masson)法を用いて染色した後で、顕微鏡観察により調べた。
OF1マウス20匹からなる群を、天然ニューモリシンまたはGMBS処理ニューモリシンのいずれかで鼻腔内チャレンジし、これらのマウスをその後9日間にわたりモニターした。
OF1マウス20匹からなる群を、0日目、14日目および28日目の3回にわたり、5μgのニューモリシンおよびアジュバントとしての5μgのMPLおよび50μgのリン酸アルミニウムで筋肉内免疫した。ニューモリシンは、未処理のものか、あるいは上記で記載したGMBS処理を用いて無毒化したものとした。
致死チャレンジモデルでは、対照マウスでは90%の死亡率であった(図4)。GMBS無毒化ニューモリシンで免疫すると、非常に良好な保護が達成され、5%のマウスがその9日後に死亡しただけであった。これを、その後10%のマウスが死亡した天然ニューモリシン接種後にもたらされた保護に匹敵するものであった。
OF1マウス20匹からなる群を、a)アジュバントのみ、またはb)1μgのPhtDとアジュバント、またはc)1μgのPhtDと5μgのGMBS無毒化ニューモリシンとアジュバントで筋肉内投与で免疫した。使用したアジュバントは、50μgのリン酸アルミニウムおよび5μgのMPLからなり、免疫は0日目および14日目に実施した。マウスを、鼻腔内致死用量の5.105CFUの血清型2のS.ニューモニエD39株でチャレンジし、生存をその後10日間にわたりモニターした。
図5に示すように、D39株でチャレンジすると、対照マウスでは、10日後には75%の死亡率であった。PhtDのみで免疫した場合、有意な保護は達成されず、この群のマウスの70%が10日後に死亡した(p=0.29)。PhtDとGMBS無毒化ニューモリシンとで免疫した場合、有意に良好な保護が達成され、死亡率は50%に低下した(p=0.04)。
精製ニューモリシンの濃度約0.4mg/ml(25mMリン酸カリウム緩衝液、pH7.0中)のストックを、50mMのL-リシンおよび0.1%のホルムアルデヒド(w/v)で40℃にて21日間処理した。
Claims (19)
- ニューモリシンのシステイン残基のスルフヒドリル基とニューモリシンの別のアミノ酸とを架橋する架橋剤で6.5〜8.0のpH条件下で少なくとも15分間ニューモリシンを処理することを含む、ニューモリシンを無毒化する方法であって、架橋剤がGMBS (N-(γ-マレイミドブチリルオキシ)スクシンイミドエステル)である、上記方法。
- 前記架橋剤が第一級アミン基およびスルフヒドリル基との反応性を示す、請求項1に記載の方法。
- 前記架橋剤がリジン残基と反応する、請求項1に記載の方法。
- 前記システイン残基と前記リジン残基が、ニューモリシンの一次構造において2、5、10、15、20、30または40個より多いアミノ酸だけ離れて位置する、請求項3に記載の方法。
- ニューモリシンの毒性が、前記架橋剤を用いた処理後に少なくとも90%低下して、ニューモリシンの無毒化が達成される、請求項1〜4のいずれか1項記載の方法。
- ニューモリシンの溶血活性が、前記架橋剤を用いた処理後に少なくとも90%低下して、ニューモリシンの無毒化が達成される、請求項1〜5のいずれか1項記載の方法。
- 無毒化が実質的に不可逆的である、請求項5または6に記載の方法。
- ニューモリシンの50%超が前記架橋剤による処理後に単量体四次構造を保持する、請求項1〜7のいずれか1項記載の方法。
- ニューモリシンの少なくとも5個のアミノ酸残基が修飾されている、請求項1〜8のいずれか1項記載の方法。
- 前記架橋剤での前記処理を、100mM〜1Mの塩濃度で行う、請求項1〜9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記処理の際、前記架橋剤がニューモリシンと比較して50〜500倍モル過剰で存在する、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記処理の際、前記架橋剤がニューモリシンのリジン残基と比較して2〜20倍モル過剰で存在する、請求項1〜11のいずれか1項に記載の方法。
- 前記処理ステップの際、以下の一方又は両方が起こる、請求項1〜12のいずれか1項に記載の方法:
A) ニューモリシンの5〜30個のアミノ酸残基が、好ましくはリジン残基またはアルギニン残基に共有結合している架橋剤により修飾されるが、架橋の他方の末端はクエンチングされている;および/または、
B) ニューモリシンの毒性活性に関与するシステイン側鎖が、ニューモリシンの一次配列においてそのシステイン残基から好ましくは2、5、10、20、30または40個を超えるアミノ酸だけ離れたニューモリシンの別の側鎖に架橋される。 - 請求項1〜13のいずれか1項の方法によって得られる無毒化ニューモリシン。
- 請求項14に記載の無毒化ニューモリシンに糖が結合しているコンジュゲート。
- 請求項14に記載の無毒化ニューモリシンまたは請求項15に記載のコンジュゲートと、薬学的に許容される担体とを含む、免疫学的組成物。
- 請求項14に記載の無毒化ニューモリシンまたは請求項15に記載のコンジュゲートと、薬学的に許容される担体とを含む、ワクチン。
- 請求項14に記載の無毒化ニューモリシンまたは請求項15に記載のコンジュゲートを、薬学的に許容される担体とともにワクチン組成物として製剤化するステップを含む、請求項17に記載のワクチンの製造方法。
- 請求項14に記載の無毒化ニューモリシンまたは請求項15に記載のコンジュゲートを含む、肺炎球菌疾患の治療または予防用薬剤。
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