JP5611209B2 - 炎症性状態の治療 - Google Patents

Description

発明の分野

本発明は、炎症性状態（例えば炎症性腸疾患、特に潰瘍性大腸炎（ＵＣ）及びクローン病（ＣＤ）、中でも劇症型の潰瘍性大腸炎及びクローン病）を治療するための製品及び方法に関する。

発明の背景

劇症型潰瘍性大腸炎は、白血球数増多及び激しい腹痛を特徴とする、潰瘍性大腸炎が悪化した状態である。現在、劇症型潰瘍性大腸炎の患者は高用量のステロイドを用いて治療される。第ＩＩＩ相試験において、抗ＴＮＦαを用いた治療が研究されている。両薬剤とも一般的な炎症阻害剤である。これらは症例の約５０％に有効であるが、深刻な有害作用を伴う。治療が成功しても、劇症型潰瘍性大腸炎は再発する傾向がある。

医学的処置が奏功しない劇症型潰瘍性大腸炎の患者では、迅速な外科的介入が必須である。潰瘍性大腸炎は、常に大腸（結腸）に限定される。最後の手段として、結腸を切除し、外付けのイレオストーマ（ｉｌｅｏｓｔｏｍａ）が造設される。少なくとも６カ月の回復期、時には直腸断端の炎症の更なる医学的処置の後、腸の連続性を回復するために、回腸直腸吻合術又は回腸嚢を用いた再建手術のいずれかが大半の患者で行われる。これらの手術は、１日に約６回の軟便及び水分・ミネラルバランスの崩れを伴う。クローン病でも劇症型（劇症型クローン結腸炎）の発現があり得る。これも、緊急の医学的及び／又は外科的介入を必要とする重篤な状態である。

炎症はクローン病患者の消化管のいかなる部分にも起こり得るが、一般に、小腸の最遠位部及び大腸の最初の部分（回盲部）に限定される。抗炎症薬（例えばステロイド、アザチオプリン）は症状を緩和するが、医学的処置ではこの疾患を治すことはできない。狭窄及びフィステルが生じた腸管部の切除を伴う外科手術の適応は患者の約５０％にあるが、その半分が再発し、更なる外科手術を必要とする。したがって、ＩＢＤの炎症を抑え、個々の患者での再発を予防することができる方法は強く求められている。

国際公開第２００８／０３８７８５号には、細胞（特に活性化白血球、ガン細胞）及びサイトカインを血液から除去するための細胞吸着カラムが記載されている。

炎症性腸疾患は、罹患した腸における炎症及び白血球浸潤を特徴とする。

ケモカインは、炎症における細胞の動員及び活性化に関わるサイトカイン分子の一群である。ケモカインは、免疫系の種々の細胞亜集団の走化及び活性化を引き起こす。ケモカインの活性は、主として白血球表面のケモカイン受容体との強固な結合を介して現れる。本発明は、炎症部位へのケモカイン受容体発現細胞の動員の増加を特徴とする炎症性状態（特に慢性炎症性状態）の治療に、ケモカインとその受容体を発現する細胞との相互作用を利用できるという知見に基づく。すなわち、本発明は、炎症性ケモカインの高レベル発現の誘導により引き起こされる炎症部位への炎症性白血球の動員を減少させることに役立つ。これは、そのような炎症性ケモカインを使用して患者の炎症性白血球を捕獲することによって達成される。より具体的には、白血球（特に（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種）がＩＢＤの炎症の開始及び維持に関与している。したがって、循環血液からのその除去は、そのような炎症を緩和し更には除去する可能性がある。本発明者らは、活動性ＩＢＤ患者の腸の生検試料のフローサイトメトリーにより、（活性化）Ｔリンパ球、単球、好中性及び好酸性顆粒球は、炎症性部位に豊富に存在し循環末梢血にも存在する細胞であることを明らかにした。

すなわち、第１の態様において、本発明は、少なくとも１種のケモカインが直接的又は間接的に固定化された固相担体であって、該ケモカインの受容体を発現する細胞（特に本明細書に記載の（活性化）白血球（単球、リンパ球等））を患者の末梢血から除去することが可能な担体を提供する。ケモカインは炎症性ケモカイン、すなわち傷害又は感染に応答して細胞又は組織により高レベルで誘導される（炎症性白血球を動員する働きがある）ケモカインである。

本発明において、「ケモカイン」という語は、ビオチン化その他の方法で標識されたケモカインを含む。「ケモカイン」という語は、ケモカイン受容体との結合能を保持する（すなわち本発明との関係で機能的である）限り、ケモカインの修飾型及び切断型を含む。タンパク質合成（例えば産物の均一性及び収率）を改善するために修飾を施してもよい。修飾は、ケモカイン中の少なくとも１種のアミノ酸についてのアミノ酸の付加、置換、欠失その他の修飾を含んでもよい。修飾は、野生型アミノ酸から、非天然アミノ酸（例えばノルロイシン（ＮＬｅｕ））や誘導体化アミノ酸（例えばピログルタミン酸（ｐｙｒｏＧｌｕ））への置換を含んでもよい。本発明のカラムの貯蔵及び使用中の副産物形成を最小化するために、そのような修飾を施してもよい。標識を改善するために修飾を施してもよく、例えば、ビオチン化を容易にするためにポリエチレングリコール（ＰＥＧ）スペーサーを挿入してもよい。ケモカインのビオチン化及び／又は蛍光色素その他の標識基とのコンジュゲーションは、受容体の結合能に実質的に影響を与えないように行われる。ケモカインの非選択的標識は受容体結合活性を損なう可能性があるので、部位特異的なビオチン化その他の標識が好ましい。ビオチン化その他の標識は一般に、タンパク質のＣ末端又はＣ末端側で行うのが好ましい。これは、これらの領域での修飾は（受容体結合能に対する影響が小さい点で）一般に許容性が高いとの知見に基づく。切断は、Ｎ又はＣ末端アミノ酸のいずれか又は両方の欠失を含んでもよい。切断型は一般に、ケモカインが正しく折り畳まれる（例えばケモカインの折り畳み構造を保持する）のに必要な残基を保持するが、これは、（白血球（の表面）で発現した）受容体との結合能を保持しなければならないという条件と合致する。ある実施形態では、切断型は、含まれるアミノ酸が野生型アミノ酸配列よりも１〜１００個（例えば１、２、３、４、５個）少なくてもよい。もちろん、切断型は、本明細書で説明される更なる修飾を含んでもよい。ある実施形態では、修飾型又は切断型は、全長野生型ケモカインと４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％以上のアミノ酸配列相同性を有してもよい（ここで、欠失はアミノ酸配列の相違として計算される）。ある実施形態では、分子間の共通配列（すなわち欠失されていないアミノ酸）について、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％のアミノ酸配列相同性があってもよい。修飾及び切断の両方を含み本発明での使用に特に適した本発明のケモカインの例は、本明細書で詳細に説明される。切断されたＴＥＣＫは、全長成熟タンパク質の１〜７４番目の残基に対応し（すなわち７５〜１２７番目のアミノ酸及び（アミノ酸２３個の）Ｎ末端シグナルペプチドを欠き）、ケモカインの折り畳みを保持する。更に、鎖の構築中の残基の酸化を防ぐため、メチオニンからノルロイシンへの置換が導入されている。合成中に産物が均一になるように、Ｎ末端グルタミン残基はピログルタミンで置換されている。７２位のリジン残基のε−官能基におけるＰＥＧスペーサーを介してビオチン化が行われている。直鎖分子（すなわち、７２番目のアミノ酸の位置にＰＥＧスペーサー及びビオチン分子がない分子）のアミノ酸配列は、配列番号１のアミノ酸配列を含むか、それから本質的になるか、それからなる配列である。本発明のケモカインは、任意の適当な手段により合成できる。ケモカインは、修飾、標識等が容易になることから、好ましくは化学的に合成される。組換えＤＮＡベースの手法を、標識・修飾技術と適宜組み合わせて使用してもよい。すなわち、本発明は、（成熟型）ＣＣＬ２５（すなわちシグナルペプチド（最初の２３個のアミノ酸を含む。）を欠く型）の１〜７４番目のアミノ酸を含むか、それから本質的になるか、それからなる切断型ＣＣＬ２５タンパク質をコードする核酸分子も提供する。このタンパク質は、成熟ＣＣＬ２５アミノ酸配列の７５〜１２７番目のアミノ酸を欠く。本発明は、そのような核酸分子を含むベクター及びそのようなベクターを含む宿主細胞にも関する。ベクターは、核酸分子に作動可能に連結されて、対応するｍＲＮＡ分子の転写を促進する適当なプロモーターを更に含んでもよい。宿主細胞は、ＣＣＬ２５の１〜７４番目のアミノ酸を含む（すなわち７５〜１２７番目のアミノ酸及び（アミノ酸２３個の）Ｎ末端シグナルペプチドを欠く）切断型ＣＣＬ２５タンパク質をコードする核酸分子の転写及び翻訳によって該タンパク質を発現することが可能なものであってもよい。

ケモカイン受容体は、種々の遊走細胞（例えばリンパ球、顆粒球、抗原提示細胞）だけでなく、特定の非遊走細胞（例えば上皮細胞、線維芽細胞）でも発現する。前述のように、本発明のケモカインは、少なくとも１種のケモカインの受容体を発現する細胞を患者の末梢血から除去することが可能となるように固相担体に固定化される。本発明の好適なケモカインの各々に対する受容体は表１の通りである。場合により、ケモカインが結合可能な受容体は２個以上あり得る。ケモカインのそのような特性は、好都合なことに、炎症性状態の一因となる種々の受容体発現細胞を捕捉することによる更に効率的な治療を可能にする。ある実施形態では、担体は、種々の炎症促進性細胞の捕捉を増加させるために複数のケモカインを担持する。

ＩＢＤ患者に見られる炎症は、循環血液から腸粘膜への抗原提示細胞（ＡＰＣ）及びＴ細胞の連続的供給により維持される。細胞のこの連続的蓄積は、ケモカイン及びその受容体により調節される。すなわち、ケモカインは、炎症中の種々の免疫細胞亜集団の動員及び活性化に関わる分子である。炎症を起こした腸粘膜で産生される局所性ケモカインの１つはＴＥＣＫ（胸腺発現ケモカイン。ＣＣＬ２５とも呼ばれる。）である。循環血液中の単球及びリンパ球は、ＴＥＣＫ受容体（ケモカイン受容体９（ＣＣＲ９））を介してこのケモカインを認識する。これらの細胞はＣＣＲ９受容体を介してＴＥＣＫと結合し、腸の炎症部位に遊走し始める（１）。炎症粘膜に到達すると、単球はＡＰＣに変わる。循環ＣＣＲ９発現Ｔ細胞も腸の炎症部位に移動し、そこで活性型になる。マウスモデルにおいて、遺伝子欠失によるＣＣＲ９又はそのリガンドＴＥＣＫの除去又は抗体阻害は、Ｔ細胞の腸への遊走を減少させる（２）。ＣＣＲ９−ＴＥＣＫ相互作用は、単球及びＴ細胞の腸管全体（小腸及び結腸）への遊走において中心的な役割を担うものと思われる。最近の研究により、健康なヒト及びＩＢＤを患うヒトの大腸内におけるＣＣＲ９及びＴＥＣＫの両方の存在が確認されている。ＣＤ又はＵＣのいずれかの患者から採取した結腸組織の研究では、免疫組織染色によりＣＣＲ９発現Ｔ細胞の存在が明らかにされている。更に、結腸における受容体アゴニストＴＥＣＫの存在も確認されている（３）。ＩＢＤ患者において、ＣＣＲ９を発現する（循環血液中の）単球及びＴ細胞を腸の炎症への到達前に除去し、それにより炎症を減少させるのは合理的である。固相担体に固定化したビオチン化ＴＥＣＫ（ｂＴＥＣＫ）を担持したカラム（これは、ＣＣＲ９を発現する単球及びＴ細胞を循環血液から捕獲する。）を使用することによって、炎症の持続が抑制され、粘膜の修復が可能となる。同様の理屈は、炎症を起こした腸の領域への白血球の動員に関わる種々のケモカインにも適用できる。例えば、ＩＬ−８は腸粘膜により分泌され、ＩＬ−８受容体との相互作用を介して好中球を誘引する。ＣＣＲ６は、腸へのＴｈ１７細胞の遊走及び炎症組織におけるエフェクターＴ細胞のバランス／分布を調節する（１４）。すなわち、固相担体に固定化したＣＣＬ２０も、炎症性状態（例えばＩＢＤ）を治療するのに有用である。

本発明のケモカインは、炎症性疾患において発現量の増加が見られるとの事実に基づいて選択された。更に、適当なタイプの細胞に存在するケモカイン受容体は、炎症部位への該受容体発現細胞の動員を介して、そのような炎症性疾患の発症に関与することが示された。本発明のケモカインには、ＭＩＰ−１ａ、ＭＩＰ−１ｂ、ＭＣＰ−１、ＭＣＰ−２、ＭＣＰ−３、ＭＣＰ−４、ＴＡＲＣ、ＭＤＣ、ＭＩＰ−３、ＭＩＰ−３ａ、ＭＩＰ３ｂ、ＭＩＰ−４、Ｉ−３０９、ＨＣＣ−１、ＨＣＣ−２、ＳＬＣ、ＩＬ−８、ＧＲＯａ、ＧＲＯｂ、ＧＲＯｇ、ＲＡＮＴＥＳ、ＮＡＰ−２、ＥＮＡ７８、ＧＣＰ−２、ＩＰ−１０、ＭＩＧ、Ｉ−ＴＡＣ、ＳＤＦ、フラクタルカイン、リンホタクチン、エオタキシン、エオタキシン−２、Ｉ−３０９、ＢＬＣ、ＣＣＬ２５のいずれか少なくとも１種が含まれる。本発明の特に好適なケモカインには、ＭＩＰ−１ａ、ＭＩＰ−１ｂ、ＭＩＰ−３ａ、ＭＩＰ−３ｂ、ＭＩＰ−４、ＳＬＣ、ＭＣＰ−１、ＭＣＰ−２、ＭＣＰ−３、ＭＣＰ−４、ＴＡＲＣ、ＭＤＣ、ＩＬ−８、ＩＰ−１０、ＭＩＧ、Ｉ−ＴＡＣ、フラクタルカイン、ＣＣＬ−２５、ＲＡＮＴＥＳが含まれる。本発明の最も好適なケモカインには、活性化Ｔリンパ球への結合を好むケモカイン、特にＭＩＰ−１ａ、ＭＣＰ、ＩＰ−１０、ＭＩＧ、ＩＴＡＣ、ＣＣＬ２５が含まれる。「結合を好む」とは、ケモカインが、非活性化Ｔリンパ球及び／又は他の血球よりも活性化Ｔリンパ球に結合する傾向が強いことを意味する。特定の実施形態において、ケモカインはＣＣＬ２５である。ＣＣＬ２５は、ＣＣＲ９を発現する細胞（特に（活性化）リンパ球（ＣＤ４、ＣＤ８リンパ球）、単球（例えばＣＤ−１４陽性単球））への結合を好む。

表１は、本発明で有用なケモカインの詳細（承認された遺伝子記号（ＨＵＧＯ遺伝子命名法委員会）、遺伝子名、配列情報等）を提供する。各ケモカインの受容体も記載されている。

本発明のケモカインは、当分野で既知の方法（例えば国際公開第００／５００８８（Ａ２）号（参照されることにより本明細書に組み込まれる。）に記載の方法）によってビオチン化することができる。ケモカインの受容体結合能に重大な影響を与えない任意の標識法を使用することができるが、上述の通り、ケモカインの部位特異的標識が好ましい。種々の部位特異的ビオチン化ケモカイン及び天然ケモカインが、例えばＡｌｍａｃ，Ｃｒａｉｇａｖｏｎ，ＵＫから市販されている。特定の実施形態において、少なくとも１種のケモカインはスペーサー基を介してビオチン化される。スペーサーは、ビオチン基がケモカインの活性（特にケモカインのその受容体との結合）に影響を与えるのを防ぐために使用してもよい。ケモカインの受容体結合特性の保持を促進する任意の適当なスペーサーを使用してもよい。特定の実施形態において、スペーサーはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）スペーサーである。ＰＥＧは、受容体結合能を損なうことなくビオチンのケモカインへの結合を可能にする（そして、ケモカインはストレプトアビジンとの相互作用を介して固相担体に固定化される。）有効なスペーサーであることは本明細書に示されている。

本発明のケモカインを固定化する固相担体材料は、当分野で知られている。有用な担体材料は、血球が凝固し又は担体に付着するように血球（特にリンパ球）を活性化することのない材料である。抗凝固特性を付与する薬剤で処理された担体（特にヘパリン化担体）を使用するのは有利である。あるいは、患者の血液を、担体にアプライする前に抗凝固剤（例えばヘパリン）で処理してもよい。有用な担体材料は、高分子量炭水化物、特に１００ｋＤａ以上の分子量を有する炭水化物（例えばアガロース（微粒子型。架橋されていてもよい）、セルロース）を含む。他の好適な担体物質は、ポリマー（例えばカルボキシル化ポリスチレン）及びガラスである。本発明の担体は、好ましくは粒子状又は繊維状である。担体粒子は、規則的な形態（例えば球、ビーズ）であっても不規則な形態であってもよい。担体粒子は多孔質であっても非多孔質であってもよい。担体の好ましい平均粒径は５０μｍ〜２ｍｍである。固相担体にケモカインを固定化する方法は当分野において知られている。ケモカインは、担体に直接的又は間接的に固定化することができる。直接的な固定化は適当なリンカーにより行うことができる。ケモカインの間接的な固定化は、好ましくはビオチン分子とアビジン分子の相互作用を利用して行う。ケモカインのビオチン化及び固相担体に固定化されたストレプトアビジンの使用は、固相担体へのケモカインの確実な接着を可能にする。具体的には、この方法は、例えば、ビオチン化された形のケモカインを提供すること、表面にストレプトアビジンが固定化された固相担体を提供すること、担体をビオチン化ケモカインの水溶液と接触させること、及び担体を水性溶媒ですすぐことを含む。また、担体へのケモカインの間接的な固定化のために、抗体−抗原相互作用を利用してもよい。そのような実施形態では、担体を、特定のペプチド配列又は小分子ハプテンに対する既知の親和性を有する抗体又はその断片若しくは派生体を用いて誘導体化してもよい。ペプチド配列又はハプテンのケモカインの表面又は内部への導入は、対応する抗体又はその断片若しくは派生体で被覆された固相担体への固定化を促進する。したがって、直鎖分子の中にペプチド配列又はハプテンが含まれるようにケモカインを修飾してもよいし、それを側鎖又は標識として付加してもよい。任意の適当な抗体−抗原対を使用してもよい。抗体の断片又は派生体は、適当な抗原に対する特異的結合親和性を保持する任意の断片又は派生体であってもよい。例としては、Ｆａｂ、ｓｃＦＶ、ＶＨドメイン、ナノボディ、重鎖抗体、ヒト化非ヒト抗体が挙げられる。結合活性（すなわちケモカインのその受容体への結合）が損なわれることなく、ケモカインを相互作用パートナーの一方で、固相担体を他方の相互作用パートナーで誘導体化することができる限り、他の高親和性相互作用をケモカインの固定化のために利用できる。

あるいは、ケモカインは、当分野で確立されたバイオコンジュゲーション技術を用いて固相担体に直接的に固定化することができる。例えば、タンパク質の一次配列内のアミノ官能基を介した、臭化シアン活性化固相担体へのタンパク質の直接的な固定化がある。あるいは、タンパク質内のスルフヒドリル官能基を用いて、ハロゲン化アルキル誘導体化担体又は遊離チオール官能基を含む担体にタンパク質を直接的に固定化することができる。更なる実施形態において、α−チオエステル官能基を含むタンパク質を、天然の化学的連結反応を用いて、１，２−アミノチオール部分（例えばＮ末端システイン）を含む担体に直接的に固定化することができる。あるいは、ケトン及びアルデヒドで修飾したタンパク質を、ヒドラゾン／オキシム結合形成連結反応を用いて、ヒドラジニル、ヒドラジド及びアミノキシ官能基で誘導体化した固相担体に固定化することができる（逆もまた同様）。あるいは、「クリック」ケミストリーを用いて固相担体にタンパク質を固定化することにより、タンパク質及び担体を、相互に反応性のある適当な化学官能基（アジド及びアルキン）で誘導体化することができる。他の実施形態では、シュタウディンガー連結化学を用いて、適切に誘導体化したタンパク質を適切に誘導体化した固相担体に固定化することができる。

本発明は、少なくとも１種のケモカインが固定化された前述の固相担体が充填されたアフェレーシスカラムを提供する。このカラムには、少なくとも１種のケモカインが直接的又は間接的に固定化された固相担体であって、ケモカインの受容体を発現する細胞（特に本明細書に記載の（活性化）白血球（単球、リンパ球等））を患者の末梢血から除去することを可能にする担体が充填される。本発明の好適な実施形態において、アフェレーシスカラムには、ストレプトアビジンが固定化された担体であって、少なくとも１種のビオチン化ケモカインが担体上のストレプトアビジンに結合した担体が充填される。担体は、（架橋されていてもよい）高分子量炭水化物（例えばアガロース）であることが好ましい。「充填」とは、（末梢）血液が固相担体と接触してカラムを流れるようにカラムが固相担体を支持又は収容することを意味する。ある実施形態において、固相担体は、連続的に血液が流れるカラム内のマトリックスとなる。

本発明のカラムは、ケモカイン受容体を発現する細胞を血液試料から除去することを可能にする担体を支持するために使用される。より具体的には、カラムを使用して、（ＩＢＤ）患者の末梢血から（活性化）白血球（特に（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種）を除去することができる。個々の患者の細胞プロファイルに応じて特定のケモカインが選択され、そのようなＴリンパ球、単球、好中性若しくは好酸性顆粒球又は腸の炎症に関わる他の活性化細胞を特異的に除去する担体が調製される。

すなわち、本発明はまた、対応するケモカイン受容体を発現する細胞（特に白血球（例えば（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種））を患者（特に炎症性疾患、中でも炎症性腸疾患（ＩＢＤ）の患者）の末梢血から除去する方法であって、細胞を固相担体に接着させるのに十分な時間、収集した末梢血を、担体に固定化された少なくとも１種のケモカインと接触させるステップと、細胞を除去した血液を担体から分離するステップと、を含む方法を提供する。この方法はエクスビボ又はインビトロの方法であってもよい。ある実施形態において、本方法は、患者から末梢血を収集するステップを接触ステップの前に更に含む。更なる実施形態において、本方法は、除去した血液を患者に注入するステップを分離ステップの後に更に含む。これは完全な白血球アフェレーシス療法である。すなわち、白血球アフェレーシス療法は、患者から末梢血を収集するステップと、対応するケモカイン受容体を発現する細胞（特に白血球（例えば（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種））を固相担体に接着させるのに十分な時間、収集した末梢血を、担体に固定化した少なくとも１種のケモカインと接触させるステップと、対応するケモカイン受容体を発現する細胞（特に白血球（例えば（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種））を除去した血液を担体から分離するステップと、除去した血液を患者に注入するステップと、を含む。末梢血は患者から連続的に収集してもよい。同様に、除去した血液は、本明細書に記載の適切な回路を使用して患者に連続的に注入してもよい。担体は、血液が流れるカラム内に配置してもよい。これは、例えば適当なポンプを用いて達成してもよい。血液をカラムに流すことにより、固相担体に固定化されたケモカインが、受容体を発現する白血球を捕捉し、その結果血液から白血球を除去し、炎症性状態への白血球の関与を防ぐことが可能となる。

すなわち、本発明は、炎症性疾患（例えばＩＢＤ）の治療、又は対応するケモカイン受容体を発現する細胞（特に白血球（例えば（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種））が患者の末梢血中に存在することを特徴とする疾患の治療における、本発明のカラム又は担体の使用を提供する。本発明はまた、治療に使用されるケモカイン（特に炎症性疾患（例えばＩＢＤ）の治療のためのケモカイン）であって、固相担体に固定化されたケモカインを提供する。本発明は更に、炎症性疾患（例えばＩＢＤ）の治療用の医薬品の製造におけるケモカインの使用であって、ケモカインが固相担体に固定化されている使用に関する。

本発明の担体及びカラムについて記載した全ての実施形態は、適宜変更してこれらの態様に適用される（簡潔化のために繰り返さない）。

本発明はまた、ビオチン化ケモカインと複合体を形成したストレプトアビジンコート磁気マイクロビーズを製造する方法を提供する。この方法は、水性溶媒中に懸濁したストレプトアビジンコート磁気マイクロビーズを提供するステップと、ビオチン化ケモカインの水溶液を提供するステップと、これらの懸濁液及び水溶液を混合するステップと、この混合物をインキュベートするステップと、ビオチン化ケモカインと複合体を形成したストレプトアビジンコート磁気マイクロビーズを（場合により磁気的手段で）分離するステップと、ビオチン化ケモカインと複合体を形成したストレプトアビジンコート磁気マイクロビーズを水性溶媒で洗浄するステップと、を含む。

本発明のビオチン化ケモカインと複合体を形成したストレプトアビジンコート磁気マイクロビーズは、対応するケモカイン受容体を有する（発現する）血球とそのような受容体を欠く血球とを分離するのに使用することができる。この分離は、末梢血に対して磁気分離器を用いて行うことが好ましい。本発明の好適な態様では、分離後、末梢血を、その末梢血を取得したヒトに再び注入する。

本発明の方法及び医学的使用は、個々の患者又は患者群のニーズに合わせて改変することができる。腸粘膜細胞に対して活性化した細胞を循環血液から除去することによって、ＩＢＤの炎症過程における重要因子を制御することができる。本発明の方法は、潰瘍性大腸炎又はクローン病（特に劇症型（潰瘍性）大腸炎又は劇症型クローン病）を治療し又は回復させるのに特に有効である。

本発明の方法及び医学的使用はまた、対応するケモカイン受容体を発現する細胞（特に白血球（例えば（活性化）Ｔ細胞、（活性化）単球、（活性化）好中球、（活性化）好酸球）又は腸壁の深い部分に位置する抗原に対して活性化する他のタイプの細胞）を除去することによってクローン病患者を治療するために使用することができる。

本発明のより一般的な態様において、本発明のカラム又は担体は、対応するケモカイン受容体を発現する細胞（特に白血球（例えば（活性化）Ｔリンパ球、（活性化）単球、（活性化）好中性顆粒球、（活性化）好酸性顆粒球の少なくとも１種））が患者の末梢血中に存在することを特徴とする疾患の治療に使用される。

以下、非限定的な実施形態及び実施例を参照して本発明を詳細に説明する。

健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ４＋Ｔ細胞によるビオチン化ＭＩＰ−１αへの結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ８＋Ｔ細胞によるビオチン化ＭＩＰ−１αへの結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ１４＋単球によるビオチン化ＭＩＰ−１αへの結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ４＋Ｔ細胞によるビオチン化ＭＣＰ−１への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ８＋Ｔ細胞によるビオチン化ＭＣＰ−１への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ１４＋単球によるビオチン化ＭＣＰ−１への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ４＋Ｔ細胞によるビオチン化ＣＣＬ２５への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ８＋Ｔ細胞によるビオチン化ＣＣＬ２５への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ１４＋単球によるビオチン化ＣＣＬ２５への結合を示す。 ＣＤ患者の末梢血から取得したＣＤ４＋Ｔ細胞によるビオチン化ＣＣＬ２５への結合を示す。 ＣＤ患者の末梢血から取得したＣＤ８＋Ｔ細胞によるビオチン化ＣＣＬ２５への結合を示す。 ＣＤ患者の末梢血から取得したＣＤ１４＋単球によるビオチン化ＣＣＬ２５への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ４＋Ｔ細胞によるＩＬ−８への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ８＋Ｔ細胞によるＩＬ−８への結合を示す。 健康なドナーの末梢血から取得したＣＤ１６＋単球によるＩＬ−８への結合を示す。 プラスチック筺体及び上部を示す。分配プレート（２）及び安全フィルターユニット（３及び４）が見えるようにしている。 白血球アフェレーシスシステムの全体を示す。 空気検出器及び光学検出器（４）を備えるポンプを示す。 一人の供血者におけるＣＣＲ９発現細胞集団の減少を示す。全細胞集団はカラム通過の影響を受けていない。 一人のＩＢＤ患者におけるＣＣＲ９発現細胞集団の減少を示す。全細胞集団はカラム通過の影響を受けていない。 一人の供血者からの血球の活性化マーカー（カラム通過前後）を示す。 小型器具通過前後の細胞のＩＦＮ−γ分泌を示す。 カラム通過前後のＰＨＡ抗原刺激細胞についての結果を示す。 細胞を高濃度のｂＴＥＣＫとインキュベートした後の細胞死についての結果を示す。 折り畳まれた精製ビオチン−ＴＥＣＫ（Ｎｌｅｕ）のＨＰＬＣの結果を示す。 折り畳まれた精製ビオチン−ＴＥＣＫ（Ｎｌｅｕ）のエレクトロスプレーイオン化タンデム質量分析（ＥＳ／ＭＳ）のデータを示す。

好適な実施形態の説明

材料及び方法：
末梢血白血球の単離：
健康な供血者又はＩＢＤ患者のヘパリン化末梢血を４％パラホルムアルデヒドで４分間固定し、０．８３％塩化アンモニウム溶液で１５分間溶血させ、ＦＡＣＳ緩衝液で２回洗浄して、血液白血球の懸濁液を得た。

ケモカイン：
白血球を、次のビオチン化及びアレクサ（Ａｌｅｘａ）６４７フルオル（Ｆｌｕｏｒ）（登録商標）標識ケモカインと共に４℃の暗所で３０分間インキュベートした。ケモカイン：ＣＣＬ２５（０．１ｎｇ／μＬ、０．５ｎｇ／μＬ及び５ｎｇ／μＬ）、ＭＩＰ−１α又はＭＣＰ−１（１０ｎｇ／μＬ及び５０ｎｇ／μＬ）。その後、細胞をＦＡＣＳ緩衝液で洗浄し、フローサイトメトリーで解析した。実施例で使用したケモカインは全て、Ａｌｍａｃ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｓｃｏｔｌａｎｄ Ｌｔｄ，Ｅｄｉｎｂｕｒｇｈ，Ｓｃｏｔｌａｎｄにより提供された。

フローサイトメトリーアッセイ：
フローサイトメトリーアッセイを、２レーザーＦＡＣＳ Ｃａｌｉｂｕｒサイトメーター（ＢＤ Ｉｍｍｕｎｏｃｙｔｏｍｅｔｒｙ ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，Ｃａ，ＵＳＡ）を用いて行った。各試料について、１万個の細胞を数えてこれを解析した。データ解析には、Ｂｅｃｔｏｎ ＤｉｃｋｉｎｓｏｎのＣｅｌｌ Ｑｕｅｓｔ Ｐｒｏソフトウェアを使用した。

実施例１（単球のＭＩＰ−１αへの結合）：
ビオチン化ＭＩＰ−１αを用いた実験において、健康なドナーの末梢血から得られた単球の約９０％が、３０分のインキュベーション後、サイトカインと結合した（図１ｃ）が、ＣＤ４＋及びＣＤ８＋リンパ球は結合しなかった（図１ａ及び１ｂ）。

実施例２（単球のＭＣＰ−１への結合）：
ビオチン化ＭＣＰ−１を用いた実験において、健康なドナーの末梢血から得られた単球の約９０％が、３０分のインキュベーション後、サイトカインと結合した（図１ｆ）が、ＣＤ４＋及びＣＤ８＋リンパ球は結合しなかった（図１ｄ及び１ｅ）。

実施例３（血球のＣＣＬ２５への親和性）：
ビオチン化ＣＣＬ２５を用いた実験において、健康なドナーの末梢血由来のＴ細胞（ＣＤ４＋リンパ球、ＣＤ８＋リンパ球）又は単球（ＣＤ１４＋単球）のいずれもビオチン化ケモカインと結合しなかった（図２ａ、２ｂ及び２ｃ）。他方、クローン病の患者由来のＣＤ８＋リンパ球の約８０％、ＣＤ４＋リンパ球及び単球の約９０％がＣＣＬ２５と結合した（図２ｄ、２ｅ及び２ｆ）。

実施例４（血球のビオチン化ＩＬ−８への親和性）：
図３に、健康なドナーから得られたＣＤ４＋リンパ球（図３ａ）、ＣＤ８＋リンパ球（図３ｂ）及びＣＤ１６＋好中球（図３ｃ）のビオチン化ＩＬ−８（ＣＸＣＬ８）への結合を示す。３０分のインキュベーション後、ＣＤ１６＋好中球は全てＩＬ−８と結合した。他方、ＣＤ４＋リンパ球及びＣＤ８＋リンパ球との結合は観察されなかった。

実施例５（血球アフェレーシスのためのケモカインカラムの調製）：
２５ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．０）及び１５０ｍＭ ＮａＣｌの水溶液に懸濁した（２００ｍｌ、約５０％、ｖ／ｖ）７５μｍ〜３００μのストレプトアビジン架橋アガロース（ＰｒｏＺｙｍｅ，Ｓａｎ Ｌｅａｎｄｒｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）ビーズに、同じ緩衝液中のビオチン化ＭＩＰ−１α（Ａｌｍａｃ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）７５μｇの溶液を２２℃で加え、３分間、手でゆっくり攪拌した。更に２０分間放置した後、担体を濾別し、中性のリン酸ナトリウム／塩化ナトリウム水溶液で３回洗浄し、ガラスカラム（内径２５ｍｍ、長さ１２ｃｍ）に充填した。

実施例６（実施例６のケモカインカラムを用いた、健康なドナーの末梢血からの単球の分離）：
健康な男性ドナー由来のヘパリン化末梢血を、ＣＤ４＋リンパ球、ＣＤ８＋リンパ球及びＣＤ１４単球についてフローサイトメトリーによって解析した。血液１００ｍｌを１分あたり約８ｍｌの速度でカラムに通し、ＦＡＣＳ緩衝液で洗浄した。カラム通過後の血液を同じ細胞について解析した。単球の約９５％がカラムに保持され、ＣＤ４＋及びＣＤ８＋リンパ球はいずれもその９０％超が回収された。

実施例７（ビオチン化ＭＩＰ−１αと複合体を形成したストレプトアビジンコンジュゲート磁気ビーズの調製）：
ストレプトアビジンコンジュゲート磁気ビーズ（ＭａｇＣｅｌｌｅｃｔ Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ Ｆｅｒｒｏｆｌｕｉｄ，１ｍｌ，Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ，ＵＳＡ）の水性懸濁液を、２５ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ７．０）及び１５０ｍＭ ＮａＣｌの５０ｍｌ中のＭＩＰ−１α（Ａｌｍａｃ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）３０μｇと混合し、１時間、ゆっくり攪拌した。粒子を同じ溶媒２０ｍｌで３回洗浄し、４℃の懸濁液中で保存した。

実施例８（実施例８のストレプトアビジン磁気ビーズを用いた、健康なドナーの末梢血からのＣＤ１４＋単球の分離）：
実施例７の健康なドナー由来のヘパリン化血液１００ｍｌを、ビオチン化ＭＩＰ−１αと複合体を形成したストレプトアビジンコンジュゲート磁気ビーズと混合し、４０分間、ゆっくり攪拌した。粒子を磁気分離器で血液から分離し、この血液をＣＤ１４＋単球、ＣＤ４＋リンパ球及びＣＤ８＋リンパ球について解析した。ＣＤ１４＋単球を検出することはほとんどできなかったが、ＣＤ４＋及びＣＤ８＋リンパ球は概ね元の量で存在した。

実施例９（目的に合わせて改変した白血球アフェレーシス）：
カラムの設計及び特性：
はじめに：
アフェレーシスは、血液成分（例えば抗体、低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）、血球）の除去のために使用される確立された療法である。白血球アフェレーシスは、白血球（ｗｈｉｔｅ ｂｌｏｏｄ ｃｅｌｌ，ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ）の除去に使用されるアフェレーシスである。患者を体外の血液循環システムに接続し、血液を患者の一方の腕の静脈から取り出し、カラムデバイスを通過させ、患者のもう一方の腕に戻す。白血球アフェレーシス治療の副作用には、頭痛、目まい、低血圧、動悸、紅潮のような軽度の事象（患者の０．１〜５％に観察される。）を含む様々のものがある。

カラム：
カラムは、ＩＢＤのための白血球アフェレーシス治療に使用することが意図されている。カラムは、ｂＴＥＣＫ含有レジンの使用により、ＣＣＲ９−ＴＥＣＫ相互作用を通じて腸ホーミングＣＣＲ９発現白血球を特異的に除去する。カラムは、３つの結合した構成要素、すなわちプラスチック筺体と、ストレプトアビジン（ＳＡ）セファロース（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）（商標）ビッグビーズ（ＢｉｇＢｅａｄｓ）マトリックスと、マトリックスに結合したｂＴＥＣＫと、からなる。治療は、標準的なアフェレーシスと同じ技術を用いて行われる。

プラスチック筺体（図４）：
プラスチック筺体は、マトリックス中の連続的な血流が維持されるように設計されており、透明な本体と赤色の上部からなる。上部は、血液がマトリックス領域全体に均一に広がるように、流入部（１）に分配プレート（２）を備える。このプレートは、より大きな粒子がカラムを流れて患者に流入するのを防ぐ第１の安全バリアである。プラスチック筺体の流入部（１）及び流出部（５）には、安全フィルターユニット（３及び４）が設置されている。安全フィルターユニットは、血球より大きい粒子がカラムを通過するのを防ぐ強固なバリアとなるように設計した３つのフィルターを含む。プラスチック筺体の設計を図４に示す。カラムデバイスの両端に安全フィルター（３及び４）を備える設計は、（例えば、デバイスが逆さまに置かれ、意図した方向と逆に血液が流れる場合の）患者への粒子の漏出リスクを最小限にする。

ストレプトアビジンセファロース（商標）ビッグビーズ：
このデバイスの第２の構成要素は、ストレプトアビジンセファロース（商標）ビッグビーズ（セファロース（商標）ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，Ｓｗｅｄｅｎ）という親和性マトリックスである。セファロース（商標）は、架橋アガロースのビーズ型であり、海藻から抽出した多糖である。セファロース（商標）及びアガロースは、生物医学的アフィニティー技術におけるカラムマトリックスとして一般に使用されている。その最適な分配能力の故に選択されるものであり、親和性結合の利用可能領域が大きい。

ｂＴＥＣＫ：
マトリックスには、このデバイスの第３の構成要素であるｂＴＥＣＫが結合している。このｂＴＥＣＫペプチドはヒトケモカインＴＥＣＫの合成改変型であり、切断及びビオチン化されているが、ＴＥＣＫ受容体ＣＣＲ９への結合親和性は保持している。改変ＴＥＣＫをビオチン化することによって、セファロース（商標）マトリックス中でストレプトアビジン分子と結合できる。ビオチン−ストレプトアビジン結合は、最も強い生物学的相互作用の１つであることが知られており、４×１０^−１４ＭのオーダーのＫｄを有する。カラム中のストレプトアビジン・ビオチン両結合部位の計算比率は１０：１である。したがって、マトリックスとｂＴＥＣＫの間の結合は即時型であり、マトリックスからのｂＴＥＣＫ脱結合のリスクは最小化される。

アフェレーシスシステム：
白血球アフェレーシスを行うために、次の構成要素が必要である。カラム、管システム、４００８ＡＤＳポンプ（Ｆｒｅｓｅｎｉｕｓ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃａｒｅ）。

回路：
システムを図５に示す。右腕及び左腕の静脈に刺された無菌Ｖｅｎｆｌｏｎ針を通じて患者（１）は体外回路に接続される。生理食塩水バッグ（３）も接続され、生理食塩水はＡＣＤポンプ（２）で注入される。血液は、血液ポンプ（４）によって無菌管システムを通じて患者の一方の腕から取り出され、カラム（６）を通過し、患者に戻される。管システムは、標準の透析ルアーロックによりカラムに接続される。カラムの接続部は、正しい組み立てのために色分けされている。流入用の赤色の管は赤色のカラム上部へ、流出用の青色の管は患者側へ接続される。空気検出器（８）がある。注入口圧センサー（５）及びＰｖｅｎセンサー（７）は、回路の圧力のモニタリングのために使用される。

４００８ＡＤＳポンプ：
アフェレーシスポンプ（Ｆｒｅｓｅｎｉｕｓ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃａｒｅ）は、体外循環における流入、流出、圧力をモニターし、泡捕獲器及び空気検出器により空気を識別する。泡捕獲器内には血塊捕獲フィルターが設置されている。ポンプはまた、明（例えば、管システム内に存在する生理食塩水又は空気）と暗（例えば、管システム内に存在する血液）とを識別する光学検出器を備える。

空気検出器及び光学フィルターが見えるようになっているポンプの模式図を図６に示す。ポンプシステムが空気の泡及び光学的な変動を検出した場合又は体外の圧力値が規定範囲外になった場合、ポンプはすぐに止まり、見て分かる／聞き取れる警報を発する。

図６の凡例：
１．モニタ
２．廃棄物袋用ホルダ
３．モジュール（左から右−血液ポンプ、ＡＣＤポンプ、空気検出器）
４．更なるモジュールのための予備のスペース
５．吸収体ホルダ
６．点滴検出器
７．ＩＶポール

患者の準備：
各治療期間の前に抗凝固剤を患者に投与する。５０００ＩＥヘパリンを有する無菌生理食塩水を体外システムへの呼び水として使用し、その後、各治療期間の開始時に、４０００ＩＥヘパリンを用いるボーラス注入を回路に加える。

白血球アフェレーシスの時間と流速：
アフェレーシスシステムは３０〜６０ｍＬ／ｍｉｎの流速で行う。血液１８００ｍＬを循環させた後、治療を終了させる。

保存条件：
カラムデバイスは１〜２５℃で保存して、凍結及び温度上昇は避ける。３カ月を超える安定性データは、機能性に関して時間経過又は温度（室温及び冷蔵温度）による違いを示していない。カラムは、使用するまで冷蔵状態で保持する。激しい振動及び衝撃に起因するような物理的損傷は避ける。これらの推奨からはずれて保存されたカラムは使用しない。

輸送条件：
カラムデバイスは冷蔵状態で輸送して、凍結や温度上昇は避ける。激しい振動及び衝撃に起因するような物理的損傷は避ける。

実施例１０（非臨床試験）：
はじめに：
早くも１９７０年代には、ドナーのヒツジの腸管膜リンパ節から採取したリンパ球が、レシピエントへの移動後、腸の中で蓄積することが観察された（４、５）。これらの最初の動物試験は、体内の異なる区画を標的とした循環リンパ球の特異的ホーミング能力を示唆した。ネズミモデルにおける更なる試験は、異なるＴ細胞小集団の器官特異性を司るいくつかのシグナル伝達経路を明らかにした。Ｌ−セレクチン（ＣＤ６２Ｌとしても知られる。）は、腸管膜リンパ節へのリンパ球の遊走を司る細胞表面タンパク質であることが示された（６）。腸血管の内膜において、ＭａｄＣＡＭ１及びＴＥＣＫが、粘膜に結合したリンパ球及び単球の接着性や遊出に関与することが見出された。これらの研究は、免疫細胞の対応受容体、すなわちα４β７及びＣＣＲ９に注目させた（２）。この状況において、クローン病のマウスモデルの１つであるＴＮＦδＡＲＥは、α４β７経路がＴＥＣＫＣＣＲ９依存的移行から独立して働き、腸ホーミングの原因となる主要メカニズムであることを示唆した（７、８）。他方、他のマウスモデルでは、炎症粘膜への腸ホーミングに関してＴＥＣＫ−ＣＣＲ９相互作用が同様に重要であることが明らかになった。粘膜炎症の減弱は、ＴＥＣＫ−／−及びＣＣＲ９−／−ネズミモデルで見られ、また、ＴＥＣＫ−ＣＣＲ９結合を抗体で阻害した場合に観察される（９〜１２）。すなわち、異なるホーミングメカニズムの影響は、選択する動物モデルによって決まるようである。ネズミモデルにおけるいくつかの試験では、ＣＣＲ９発現Ｔ細胞が小腸を選好することが示唆されている。他方、潰瘍性大腸炎マウスモデルＭＤＲ１ａ−／−で見られる結腸限定の粘膜炎症はＣＣＲ９発現リンパ球への依存性を示す。ＣＣＲ９遮断タンパク質ＣＣＸ２８２−Ｂの投与後、結腸における炎症傷害が明らかに消失することは、結腸粘膜においてもＴＥＣＫ−ＣＣＲ９相互作用が重要な役割を担うことを示唆する（３）。ＴＥＣＫ−ＣＣＲ９ホーミングメカニズムの治療への示唆がいくつかのヒト試験をもたらし、マウスで観察されたように、ＣＣＲ９発現Ｔ細胞がヒト小腸に蓄積することが分かった（２、３、１３）。ＣＤ患者において、ＣＣＲ９発現リンパ球は、健康対照と比較して腸管膜リンパ節中で顕著に増加する（１３）。追加的試験では、ＣＤ又はＵＣ患者の結腸の炎症粘膜におけるＴＥＣＫ及びＣＣＲ９発現Ｔ細胞の存在が明らかになっている。健康対照も結腸粘膜にＣＣＲ９発現免疫細胞を有することが分かり、その受容体が腸関連免疫システムの正常機能において重要な役割を担うことが明らかになった（３）。炎症性腸疾患に関して、利用可能な動物モデルは必ずしもヒト腸炎に対応しない。そこで、非臨床的証明のために、ＩＢＤ患者の血液試料をインビトロの実験に使用することに焦点が当てられた。更に、白血球アフェレーシスカラムに使用されるｂＴＥＣＫタンパク質はヒトＣＣＲ９表面タンパク質に特異的であり、このことはインビボの動物有効性試験の実行可能性を制限する。

標的細胞集団のインビトロ除去：
ＣＣＲ９発現細胞を除去する能力を調べるために、ｂＴＥＣＫ結合マトリックスを用いてインビトロ試験を行った。血液を供血者及びＩＢＤ患者から収集し、ｂＴＥＣＫ結合マトリックスを含むカラムデバイスを通過させた。血液試料をカラム通過前後に取得し、ＣＣＲ９発現細胞の除去についてフローサイトメトリー（ＦＡＣＳ）によって解析した。
これらの結果は、マトリックス灌流後に、標的集団であるＣＤ１４陽性ＣＣＲ９発現細胞が顕著に減少したことを示すが、全ＣＤ１４陽性細胞は変化していない。健康なドナー及びＩＢＤ患者の血液を用いて除去試験を行い、同様の効果を確認した。これらの結果をそれぞれ図７及び図８に示す。

結論として、これらのインビトロの結果は、カラムによりＣＣＲ９発現細胞の５０〜７５％が特異的に減少することを示す。ＣＣＲ９を発現しない細胞は変化しなかった。

実施例１１（毒物学的評価及び安全性試験）：
曝露：
カラムデバイスによる患者の曝露は、２つの異なる方法で行われ得る。第一に、デバイスの中のｂＴＥＣＫを含む化学物質への血液及び血球の局所的曝露、第二に、デバイスから放出され、戻る血液によって患者へ投与されるｂＴＥＣＫを含む化学物質への全身的曝露。両方の場合において、全曝露を評価する可能性は制限されるが、マトリックス安定性試験により、セファロース、ストレプトアビジン及びｂＴＥＣＫへの全身曝露が明らかになる。以下を参照されたい。しかし、プラスチック及びフィルター材料は、ＦＤＡ／ＩＳＯ１０９９３の標準的要件並びにＵＳＰクラスＶＩ生物学的評価要件を満たすので、照射殺菌後に実際、デバイスのこれらの部分由来の毒性化合物の曝露はごくわずかであると結論づけることができる。更に、カラムの異なる構成要素間の任意の相互作用を示唆するデータはない。

マトリックスの安定性：
マトリックスの安定特性について、カラムの活性試験中に物質のいかなる漏出が起こるかどうかを判断するために試験をした。マトリックスを充填したカラムを、３０〜１００ｍｌ／ｍｉｎで、２ＬのＰＢＳ（リン酸−緩衝食塩水）を用いてポンプシステム内ですすぎ、製造ステップの残留粒子を洗い流した。カラム通過前後の液体試料を採取し、生成物の漏出について顕微鏡及びＥＬＩＳＡで解析した。
２ＬのＰＢＳでカラムをすすいだ後、マトリックス材料の目に見える漏出は観察されなかった。

結合安定性について、ＥＬＩＳＡを用いて試験をした。脱離したｂＴＥＣＫを検出するために、ストレプトアビジン抗体とウェルを４℃で１時間インキュベートした。脱離したストレプトアビジンを検出するために、ビオチン化ペルオキシダーゼとウェルを室温で１時間インキュベートした。これらの試験結果は、マトリックスからのセファロース粒子、ストレプトアビジン又はｂＴＥＣＫの漏出を示さなかった。

生物学（毒物学）的データ：
強力な受容体−リガンド親和性により、ｂＴＥＣＫが細胞のその特異的受容体ＣＣＲ９を誘引し、結合することによって、所望の生物学的効果、消化管（腸ホーミング細胞）を標的とした活性化白血球の特異的除去をもたらす。受容体を発現しない血球は、カラムを通過し、患者に戻る。カラムの使用目的において曝露も多様な逆の生物学的（毒性）効果をもたらす可能性があり、医療デバイスのＩＳＯ １０９９３−１のカテゴリーに従って、これを評価しなければならない。仮の局所曝露に基づいて、血液をカラム領域にわたって均一に分配する場合、血液、特に血球は悪影響を受ける可能性がある。デバイス内のケモカインｂＴＥＣＫ又は任意の化学物質は、細胞毒性及び血液不適合性などの局所効果をもたらす可能性がある。更に、免疫細胞のいかなる活性化を調べることは最も重要である。患者は、灌流中、カラムデバイス又はプラスチック管から放出されたｂＴＥＣＫ又は任意の化学物質にも全身的に曝露し、これは生物学（毒物学）的効果をもたらす可能性がある。これらの化学物質は種々の全身的効果をもたらす可能性があり、細胞毒性、感作、刺激及び皮内の反応性、全身毒性（急性）、亜急性及び亜慢性毒性並びに血液不適合性をＩＳＯ １０９９３−１に従って評価する必要がある。９ｋＤａの切断型として合成されビオチン化したｂＴＥＣＫの生物学的効果を証明するために様々な試験を行った。

細胞特異的除去及びインビトロのＦＡＣＳ（蛍光活性化細胞選別）による解析：
ＩＢＤ患者の血液に対するマトリックス及びｂＴＥＣＫを用いた細胞除去試験に関して、フルサイズカラムデバイスの工程を模擬実験する小型器具を使用した。プラスチック管の上部に設置したナイロンフィルターを用いて模擬実験を行った。血液をマトリックスと穏やかに混合し、フィルターを通過させて収集管に入れる。濾過されていない血液及び濾過した血液の試料を溶解した後、抗体染色し、更にＦＡＣＳを用いて解析した。
供血者の血液試料を収集し、ｂＴＥＣＫ結合マトリックスを含むカラムの原型を用いて細胞除去試験を行った。カラム通過前後に試料を取得し、溶解し、抗体で染色し、更にＦＡＣＳを用いて解析した。
ｂＴＥＣＫ受容体発現細胞の特異的除去は、小型器具及びカラムデバイスの原型の両方において成功した。この除去はＣＣＲ９発現細胞集団において特異的であることも示すことができた。例えば、図８及び７において、ＣＣＲ９陽性細胞ＣＤ１４及びリンパ球（ＣＤ４及びＣＤ８）は極めて減少し、１／５未満がカラムを通過したが、ＣＤ１４及びリンパ球集団の総数はカラム通過後変わらなかった。

活性化、増殖及び細胞死：
目的は、カラムデバイスを通過した細胞の活性化及び機能特性を研究することであった。

活性化マーカー：
溶解した細胞を１０％ＨＵＳ（ヒト抗体血清）と共に室温で１５分間インキュベートし、細胞表面にあるＦｃ受容体と細胞との非特異的結合を防いだ。細胞を、活性化マーカー；ＣＤ６９（リンパ球）、ＣＤ６６ｂ（顆粒球）及びＨＬＡ−ＤＲ（単球）について染色した。細胞をＦＡＣＳＡｒｉａで採取し、ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェアにより解析した。活性化マーカーを有する試験細胞の数は、カラム通過前後において同じであった（図９参照）。

サイトカイン放出：
炎症性サイトカイン放出試験であるインターフェロンγ（ＩＦＮγ）分泌アッセイキットを使用して、マトリックスとの接触前後の細胞の活性化を調べた。分泌試験は、刺激後にＩＦＮγを産生する細胞の数及びどの表現型かを示す。４人の供血者の末梢単核血液細胞（ＰＢＭＣ）を、Ｆｉｃｏｌｌ分離をした。細胞を、細胞培地（１％Ｐｅｓｔ＋１％Ｌ−Ｇｌｕｔ＋５％ＨＵＳを有するＲＰＭＩ）に１×１０^６細胞／ｍｌの濃度で再懸濁した。マトリックスをＰＢＳで洗浄し、０．１μｇ／ｍｌのｂＴＥＣＫと混合した。細胞懸濁液の半分を、マトリックスを有する小型器具に通過させた。濾過していない及び濾過した細胞を、４８ウェルプレートに５０００００／ウェルの割合で加え、３７℃で１６時間インキュベートした。ＰＭＡ（５０ｎｇ／ｍｌ）＋イオノマイシン（１μｇ／ｍｌ）を陽性対照として細胞に加えた。１６時間後、表面に結合及び分泌したＩＦＮγの量について細胞を解析した。ＦＡＣＳ解析のための他のＭａｂは、ＣＤ３、ＣＤ１４及びＤＡＰＩであった。ＩＦＮγ分泌に顕著な変化はなかった（図１０参照）。

［３Ｈ］の取り込みを伴う増殖アッセイ：
一人の供血者のヘパリン化全血のＰＢＭＣを、Ｆｉｃｏｌｌ分離により単離し、調製した。細胞の数を数え、細胞培地（ＲＰＭＩ＋１０％ＢＧＳ＋１％ｐｅｓｔ及び１％Ｌ−ｇｌｕｔ）で２×１０^６細胞／ｍｌに希釈した。細胞懸濁液の半分を、ｂＴＥＣＫの２００ｎＭ（０．２μｇ／ｍｌ）と結合したマトリックス（ＳＡ濃度４ｍｇ／ｍｌ）を有する小型器具に通過させた。プロトコルに従い、２×１０^６細胞／ｍｌの細胞懸濁液を５０μｌ／ウェル（１０００００細胞）の割合で、９６ウェルプレートの３ウェルずつに加えた。５０μｌ／ウェルの細胞培地を陰性対照として、５０μｌ／ウェルのＰＨＡ（植物性血球凝集素）抗原（５μｇ／ｍｌ）を陽性対照として使用した。２、３及び４日間まで３７℃で細胞をインキュベートした。細胞の回収の前に、チミジン［３Ｈ］２５μｌをウェルに加え、３７℃で１８時間更にインキュベートした。１８時間後、細胞を回収し、取り込まれた［３Ｈ］をシンチレーターで計測する。増殖の証拠としての［３Ｈ］の取り込みは、カラム通過前後の細胞において同じであった（図１１参照）。

アネキシンＶを用いた細胞死−アポトーシスアッセイ：
Ｆｉｃｏｌｌ分離により、３人の供血者からＰＢＭＣを単離した。細胞をＰＢＳで２回洗浄し、培地（１％Ｌ−ｇｌｕｔ、１％ｐｅｓｔ及び１０％ＢＧＳを有するＲＰＭＩ）に１×１０^６／ｍｌの濃度で再懸濁した。細胞を５μｇ／ｍｌ又は１０μｇ／ｍｌのｂＴＥＣＫで刺激した。細胞を１６時間、２４ウェルプレートの中でインキュベートした。陽性対照として、デキサメタゾン（１μＭ）を使用した。細胞をＰＢＳで２回洗浄し、ＢＤアネキシンＶキットのプロトコルに従って、アネキシンＶを用いて染色した。ＦＡＣＳ解析前に、１００μｌのＤＡＰＩを細胞に加えた。ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェアを用いてＦＡＣＳ Ａｒｉａで試料を解析した。アポトーシス細胞をアネキシンＶ陽性及びＤＡＰＩ陰性として定義した。アネキシンＶ陽性細胞の数は、５又は１０μｇ／ｍｌのｂＴＥＣＫへの曝露後に、顕著に上昇しなかった（図１２参照）。

まとめ：
カラムデバイス通過前後又はｂＴＥＣＫ結合ストレプトアビジンセファロースマトリックスとの直接的な接触後の細胞を用いて試験を行った。マトリックス及びｂＴＥＣＫと接触した細胞に対する効果はなかった又は低かったことを結果は示した。活性化マーカーを有する細胞ＣＤ６９（リンパ球）、ＣＤ６６ｂ（顆粒球）及びＨＬＡ−ＤＲ（単球）の数は、カラム通過前後で同じであった。ＰＢＭＣの増殖能力に影響はなく、サイトカイン放出細胞の量は低かった。最初の臨床試験のカラムデバイスにおいて使用する量の５〜１０倍高いｂＴＥＣＫ量は、細胞死に対してほとんど効果を示さなかった。

毒物学的試験：
インビトロ細胞毒性アッセイ：
カラムマトリックスを用いて、培養哺乳類細胞（Ｌ９２９マウス線維芽細胞）のインビトロ細胞毒性について試験した。ＩＳＯ１０９９３−５溶出試験指針に従って、試験を行った。２０％エタノール中の被覆アガロースビーズの懸濁液として、試験物を供給した。カラムマトリックスを使用目的前に洗浄するように、アガロースビーズを洗浄し、その後、同じ量の無菌等張食塩水（０．９％ＮａＣｌ）に再懸濁し、試験前にエタノールを除去した。完全細胞培地（１０％ウシ胎児血清及び５０μｇ／ｍｌゲンタマイシンを有するＨＡＭ Ｆ１２培地）の中の洗浄した試験物を穏やかな混合により３７℃で２４時間インキュベートすることによって、カラム抽出を準備した。０．２ｍｌ試験物／ｍｌ培地の抽出率（約０．２ｇ／ｍｌ）を使用した。抽出物を希釈しないで及び新鮮な細胞培地で１：３に希釈して試験をした。陰性対照（ポリプロピレン抽出、６ｃｍ^２／ｍｌ）、陽性対照（スズで安定化したポリ塩化ビニル抽出物、０．３ｃｍ^２／ｍｌ）及び完全細胞培地で処理した未処理の対照培養物を含んだ。３つの同じ細胞培養物を４８時間中の各試験時点において処理した。対照処理は適切な反応を生み出し、試験システムの正確な機能及び感度を示した。カラムの希釈していない抽出物及び希釈した抽出物の両方は毒性を示さなかった（細胞毒性の悪性度０）。

溶血性試験：
インビトロ溶血活性（赤血球の溶解）について、カラムマトリックスを試験した。ＩＳＯ １０９９３−４指針に求められるように、溶血試験を行った。物質科学研究所（ＭＳＩ），Ｔｅｎｎｅｓｓｅｅ，ＵＳＡ（１９７９）の提案に従って試験を計画し、無菌食塩水によるウサギの血液の希釈混合物と試験物を直接的に接触させた。２０％エタノール中の被覆アガロースビーズの懸濁液として、試験物を供給した。カラムマトリックスを使用目的前に洗浄するように、アガロースビーズを洗浄し、その後、同じ量の無菌等張食塩水（０．９％ＮａＣｌ）に再懸濁し、試験前にエタノールを除去した。０．２ｍｌ試験物／ｍｌ生理食塩水（約０．２ｇ／ｍｌ）の割合を使用して、試験物を無菌等張食塩水の中に設置した。３７℃で３９分間のインキュベーション後、ウサギの血液（２０μｌ血液／ｍｌ生理食塩水）を加え、更に６０分間インキュベーションを続けた。陰性対照（等張食塩水）及び陽性対照（蒸留水）を含んだ。全処理を３通り行った。インキュベーションの最後に、混合物を５００×ｇで５分間遠心分離した。その後、５４５ｎｍにおける上清液の吸光度を測定した。溶血のパーセンテージを計算した。この試験で使用された条件下、カラムマトリックスで処理した血液試料中の観察される平均溶血量は−０．３％であった。カラムマトリックスはＭＳＩ溶血試験の基準（溶血＜５％）を満たすものと結論づけられる。

ヒト血液における凝固試験：
インビトロのヒト血液試料の凝固速度に影響を与える能力について、カラムマトリックスを試験した。２０％エタノール中の被覆アガロースビーズの懸濁液として、試験物を供給した。カラムマトリックスを使用目的前に洗浄するように、アガロースビーズを洗浄し、その後、同じ量の無菌等張食塩水（０．９％ＮａＣｌ）に再懸濁して、試験前にエタノールを除去した。洗浄した試験物試料（０．２ｍｌ）を試験管に入れた。陰性対照（未処理）及び陽性対照（フラー土）試験管も準備した。新鮮なヒト血液（１ｍｌ）を各試験管に加えた。試験物の割合は、血液１ｍｌあたり試験物約０．２ｍｌであった（約０．２ｇ／ｍｌ）。これらの試験管を約３７℃の水浴に入れ、一定間隔で振盪した。血液の全凝固にかかる時間を記録した。４人の各々の血液で一度、試験物及び各対照を試験した。対照処理の結果は、試験システムの有効性及び感度を示した。
マトリックスで処理した血液の平均凝固時間は、平均陰性対照値の９１％というわずかな減少を示した。しかし、試験における４人のドナーの個体間変動が大きいため、この減少が有意であるとはみなされない。カラムマトリックスは、この試験におけるヒト血液の凝固時間に影響を与えなかったと結論づけられる。

まとめ：
試験の結果及びカラムの評価に基づいて、毒性は非常に低いと結論づけることができる。特定のタイプの毒性や標的臓器は同定されなかった。

実施例１２（ＴＥＣＫ−ＰＥＧ−ビオチン合成の概要）：
標的分子：
ＰＥＧ−ビオチン（ＴＦＡ塩）を有するＬｙｓ７２のε−アミノ側鎖官能基において誘導体化されたＴＥＣＫ（ＭｅｔからＮｌｅｕへの置換）

修飾：
成熟タンパク質の１〜７４残基に対応するヒトＴＥＣＫの切断型は、ケモカインの折り畳みに対応する配列を含む。全長成熟タンパク質は１２７個のアミノ酸である（シグナルペプチドは、１５０個のアミノ酸の未熟タンパク質中の２３個のアミノ酸である）。この配列内のシグナルメチオニンをノルロイシンに変更し、天然配列誘導体の合成中に観察される鎖の構築中のこの残基の酸化を軽減した。生理学的条件下、タンパク質のＮ末端のＧｌｎはｐｙｒｏＧｌｕを形成しやすい。したがって、この配列のＧｌｎ１をピログルタミンで置換して、Ｎ末端Ｇｌｎ及びｐｙｒｏＧｌｕの混合種が生成するのを防いだ。これは合成収率を向上させ、カラムの製造及び使用を経て、均一なケモカイン製剤を保証する。天然に存在する７２位のリジンを、樹脂のビオチン化によって修飾した。ε−アミノ官能基及びビオチンの間に、ＰＥＧスペーサーを組み込んだ。

７２番目のアミノ酸（Ｋ）の位置でのＰＥＧスペーサー及びビオチン分子の結合前の直鎖状アミノ酸配列（配列番号１）を示す。
Ｈ−ＰｙｒＧＶＦＥＤＣＣＬＡＹＨＹＰＩＧＷＡＶＬＲＲＡＷＴＹＲＩＱＥＶＳＧＳＣＮＬＰＡＡＩＦＹＬＰＫＲＨＲＫＶＣＧＮＰＫＳＲＥＶＱＲＡＮｌｅＫＬＬＤＡＲＮＫＶＦ−ＯＨ
固相ペプチド合成のＦｍｏｃプロトコルを使用して、改変ＴＥＣＫ配列を固相担体に集合させた。
Ｈ−ＰｙｒＧＶＦＥＤＣＣＬＡＹＨＹＰＩＧＷＡＶＬＲＲＡＷＴＹＲＩＱＥＶＳＧＳＣＮＬＰＡＡＩＦＹＬＰＫＲＨＲＫＶＣＧＮＰＫＳＲＥＶＱＲＡＮｌｅＫＬＬＤＡＲＮＫ（Ｄｄｅ）ＶＦ−樹脂
ＦｍｏｃＬｙｓ（Ｄｄｅ）−ＯＨを７２番目の残基として取り込ませ、タンパク質のこの位置の部位特異的標識を促進させた。
ＭｅｔからＮｌｅへの置換。
Ｎ末端のＧｌｎからピログルタミン酸への置換。

Ｄｄｅ保護の除去：
ＤＭＦ（１００ｍｌ）中に２％ヒドラジンを含む溶液を用いた全樹脂（２．５ｇ）の１時間にわたる処理によってＤｄｅ保護基を除去し、２．０ｇの樹脂を得た。

標識ステップ：
１．Ｆｍｏｃ−８−アミノ−３，６−ジオクタン酸の結合：
樹脂（１．５ｇ）をＤＭＦ（２ｍｌ）で膨潤し、その後、Ｆｍｏｃ−８−アミノ−３，６−ジオクタン酸溶液（０．３８ｇ、１ｍｍｏｌ）、ＤＩＣ溶液（２ｍｌ、ＤＭＦ中０．２Ｍ）及びＨＯＣｔ溶液（２ｍｌ、ＤＭＦ中０．２Ｍ）を加えた。混合物を２時間、超音波処理し、その後、ＤＭＦで洗浄した。
２．キャップ：
５分間、樹脂を０．５Ｍ無水酢酸／ＤＭＦ溶液（２０ｍｌ）でキャップし、その後、ＤＭＦで洗浄した。
３．Ｆｍｏｃ脱保護：
各１５分間、ＤＭＦの２０％ピペリジン溶液（５０ｍｌで２回）を用いた処理によりＦｍｏｃ脱保護を行った。樹脂をＤＭＦで洗浄した。
４．ビオチン−ＯＳｕの結合：
ＤＭＦ（１０ｍｌ）中にビオチン−ＮＨＳエステル（３４１ｍｇ、１ｍｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（３４８ｕｌ）を含む溶液を樹脂に加え、３時間、混合物を超音波処理した。樹脂をＤＭＦで完全に洗浄し、その後、ＤＣＭを真空で乾燥した。乾燥樹脂を１．５ｇ得た。

切断：
ＴＩＳ、チオアニソール、水、ＥＤＴ及びフェノールからなるスカベンジャー混合物を含むＴＦＡ（３０ｍｌ）を用いて、乾燥ペプチド樹脂（１．５ｇ）及びこの混合物を切断し、この混合物を室温で６時間攪拌した。この溶液を冷たいエーテルに濾過して入れ、ＴＦＡを用いてこの樹脂をすすいだ。このペプチドを遠心分離にかけ、エーテルで洗浄し、遠心分離にかけ、凍結乾燥し、１．０ｇの粗ペプチドを得た。

折り畳みプロトコル：
粗ペプチド（１００ｍｇ）を６Ｍ ＧｎＨＣｌ（２３３ｍｌ）に溶解し、その後、０．５ｍＭ ＧＳＳＧ及び５ｍＭ ＧＳＨを含む５０ｍＭ ＴＲＩＳ ｐＨ８（４６７ｍｌ）の添加により、２Ｍ ＧｎＨＣｌ濃度に急速に希釈した。この混合物を室温で２．５日間攪拌し、その後、ＨＰＬＣ（Ｊｕｐｉｔｅｒ Ｃ１８， ２５０×４．６ｍｍカラム，１０〜６０％Ｂにより３０分にわたって解析した。所望の産物及び誤って折り畳まれた副産物の形成を、ＨＰＬＣ解析により確認した。

精製：
５０分にわたるＪｕｐｉｔｅｒ Ｃ１８， ２５０×２１ｍｍカラム，９ｍｌ／ｍｉｎ，１０〜６０％Ｂの条件を使用する逆相ＨＰＬＣにより、折り畳まれたタンパク質を精製した。精製折り畳みＮｌｅ−ＴＥＣＫ−Ｂｉｏｔｉｎを１１．１ｍｇ得た。
図１３は、折り畳まれた精製Ｂｉｏｔｉｎ−ＴＥＣＫ（Ｎｌｅｕ）のＨＰＬＣを示す。このタンパク質は、２１．６分の位置の単一ピークで溶出した。
図１４は、折り畳まれた精製Ｂｉｏｔｉｎ−ＴＥＣＫ（Ｎｌｅｕ）のエレクトロスプレーイオン化タンデム質量分析（ＥＳ／ＭＳ）のデータを示す。予想される質量は８９５９．４Ｄａであった。

機能アッセイのデータ：
ｈＣＣＲ９に対するエクオリンアッセイ（Ｅｕｒｏｓｃｒｅｅｎ）におけるアゴニスト活性について、ＴＥＣＫ−Ｂｉｏｔｉｎ−Ｎｌｅを試験し、天然ＴＥＣＫのＥＣ５０が６７．８７ｎＭであることと比較して、ＥＣ５０値が６３．６ｎＭを記録した。

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本発明の範囲は、本明細書に記載の特定な実施形態により限定されるものではない。実際、以上の説明及び添付の図面から、本明細書に記載の実施形態以外に多くの改変形態が存在することは当業者に明らかであろう。そのような改変形態は添付の特許請求の範囲に包含される。更に、本明細書に記載の全ての実施形態は、整合性がある限り、適宜、他の実施形態に適用又は組み合わせ可能なものとする。

様々な刊行物が本明細書で引用されたが、その開示内容は、ここで参照されることによりその全体が本明細書に組み込まれる。

Claims (15)

1. 少なくとも１種のケモカインが直接的又は間接的に固定化された固相担体が充填されたアフェレーシスカラムであって、該担体は、該少なくとも１種のケモカインの受容体を発現する細胞を患者の末梢血から除去することが可能なものであるカラム。
2. 前記少なくとも１種のケモカインがビオチン化されており、前記担体にストレプトアビジンが固定化されており、前記少なくとも１種のビオチン化ケモカインが担体上のストレプトアビジンに結合している、請求項１に記載のカラム。
3. 前記少なくとも１種のケモカインがスペーサー基を介してビオチン化されている、請求項１又は２に記載のカラム。
4. 前記スペーサーがポリエチレングリコールスペーサーである、請求項３に記載のカラム。
5. 前記担体は、１００ｋＤａより大きい分子量を有する炭水化物（該炭水化物は架橋されていてもよい。）を含むかそれからなる、請求項１〜４のいずれか一項に記載のカラム。
6. 前記炭水化物が架橋アガロースである、請求項５に記載のカラム。
7. 前記少なくとも１種のケモカインは、ＣＣＬ２５、ＭＩＰ−１ａ、ＭＩＰ−１ｂ、ＭＣＰ−１、ＭＣＰ−２、ＭＣＰ−３、ＭＣＰ−４、ＴＡＲＣ、ＭＤＣ、ＭＩＰ−３、ＭＩＰ−３ａ、ＭＩＰ−３ｂ、ＭＩＰ−４、Ｉ−３０９、ＨＣＣ−１、ＨＣＣ−２、ＳＬＣ、ＩＬ−８、ＧＲＯａ、ＧＲＯｂ、ＧＲＯｇ、ＲＡＮＴＥＳ、ＮＡＰ−２、ＥＮＡ７８、ＧＣＰ−２、ＩＰ−１０、ＭＩＧ、Ｉ−ＴＡＣ、ＳＤＦ、フラクタルカイン、リンホタクチン、エオタキシン、エオタキシン−２、Ｉ−３０９及びＢＬＣから選択される、請求項１〜６のいずれか一項に記載のカラム。
8. 前記少なくとも１種のケモカインがＣＣＬ２５である、請求項７に記載のカラム。
9. 前記少なくとも１種のケモカインは、配列番号１のアミノ酸配列を含む切断型ＣＣＬ２５ケモカインである、請求項１に記載のカラム。
10. 前記切断型ＣＣＬ２５ケモカインは、７２位（リジン）でビオチン化されていて固相担体へのケモカインの固定化が可能なケモカインである、請求項９に記載のカラム。
11. 前記切断型ＣＣＬ２５ケモカインはビオチンとリジン残基との間にＰＥＧスペーサーを更に含む、請求項１０に記載のカラム。
12. 前記担体は球状、ビーズ状又は不規則粒状であり、５０μｍ〜２ｍｍの平均サイズを有する、請求項１〜１１のいずれか一項に記載のカラム。
13. 前記担体は、抗凝固特性を付与する物質で処理された担体（例えばヘパリン化担体）である、請求項１〜１２のいずれか一項に記載のカラム。
14. 固相担体に固定化されたケモカインであって、炎症性状態の治療において、該ケモカインの受容体を発現する細胞を患者の末梢血から除去するために使用される、ケモカイン。
15. 前記炎症性状態が炎症性腸疾患（ＩＢＤ）である、請求項１４に記載のケモカイン。

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