JP5483515B2 - インテグリンα−4サブユニットのアンタゴニストを使用する線維症の処置のための方法 - Google Patents
インテグリンα−4サブユニットのアンタゴニストを使用する線維症の処置のための方法 Download PDFInfo
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Description
本願は、米国仮出願第60/130,847号(1999年4月22日出願)および米国特許出願第60/137,214号(1999年6月1日出願)の出願日の利益を主張する。
フィブロネクチンおよびコラーゲンは、結合組織に見出される細胞外マトリックスの完全性を維持するために本質的なタンパク質である。これらのタンパク質の産生は、高度に調節されたプロセスであり、そしてその妨害は、組織線維症の進行に導き得る。線維性細胞の形成は、損傷後の治癒の通常の有益なプロセスの一部であるが、いくつかの状況において、腺維性物質に異常な蓄積が存在し、その結果、これは、最終的に、器官不全に導く(Borderら(1994)New Engl.J.Med.331:1286−1292)。任意の器官への損傷は、型通りの生理学的応答に導く:血小板誘導止血、続いて、炎症性細胞および活性化された線維芽細胞の流入。これらの細胞型由来のサイトカインは、新しい細胞外マトリックスおよび血管(肉芽組織)の形成に導く。肉芽組織の生成は、注意深く調整されたプログラムであり、ここで、プロテアーゼインヒビターおよび細胞外マトリックスタンパク質の発現は、上方制御され、そしてプロテアーゼの発現が減少され、細胞外マトリックスの蓄積に導く。
本発明は、被験体における線維症を処置する方法を提供する。本発明者らは、肺線維症を有するマウスにα1またはα4サブユニットを含むインテグリンのアンタゴニストを投与することによって、線維症の病因におけるα1およびα4サブユニットを含むインテグリンのアンタゴニストの可能な役割を調べた。本明細書に示されるように、全コラーゲン蓄積および肺線維症性損傷の程度の両方に対するこれらのアンタゴニストを有する有利な効果は、α1および/またはα4を含むインテグリンが、抗線維症治療のための適切な標的であり得ることを示唆する。本発明の1つの局面は、線維症状態を有する被験体に、α4サブユニットを含むインテグリンとα4サブユニットを含むインテグリンに対するリガンドとの間の相互作用のアンタゴニストを含む有効量の組成物を投与する工程を包含する方法である。そのアンタゴニストは、α4インテグリン結合因子またはα4インテグリンリガンド結合因子である。好ましいα4インテグリン結合因子は、a)VLA−4およびα4β7のそれらのそれぞれのα4リガンドとの相互作用をアンタゴナイズする抗体ホモログ;b)VLA−4のそのα4リガンドとの相互作用をアンタゴナイズする抗体ホモログ;およびc)α4β7のそのα4リガンドとの相互作用をアンタゴナイズする抗体ホモログからなる群から選択される。他の実施形態において、抗体ホモログは、ヒト抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体およびそれらのフラグメントからなる群から選択される。
(I.定義)
特許請求された発明の主題をより明確にかつ簡潔に指摘するために、以下の定義が、以下の説明および添付の特許請求の範囲に使用される特定の用語について提供される。
インテグリンvery late抗原(VLA)スーパーファミリーは、構造的にかつ機能的に関連した糖タンパク質から作製され、これらの糖タンパク質は、ほぼ全ての哺乳動物細胞型に対する種々の組み合わせにおいて見出される、(αおよびβ)ヘテロダイマーの膜貫通レセプター分子からなる。(総説について、以下を参照のこと:E.C.Butcher,Cell,67,1033(1991);D.Coxら,「The Pharmacology of the Integrins」Medicinal Reaserch Rev.(1994)およびV.W.Englemanら,「Cell Adhesion Integrins as Pharmaceutical Targets」,Ann.Report in Medicinal Chemistry,31巻,J.A.Bristol,編;Acad.Press,NY,1996,191頁)。VLAファミリーのインテグリンには、(現在のところ)VLA−1、−2、−3、−4、−5、−6、−9、および−11が挙げられ、ここで、これらの分子の各々は、それぞれ、α鎖(α1、α2、α3、α4、α5、α6など)に非共有結合したβ1鎖を含む。
(a):「機能的等価物」は、標準的なハイブリタイゼイション条件下で第二のポリヌクレオチドにハイブリダイズする第一のポリヌクレオチドであり、そして/または第一のポリヌクレオチド配列に変質させる。最も好ましくは、それは、インテグリンアンタゴニストタンパク質の活性を有する変異体タンパク質をコードする;
(b)「機能的等価物」は、発現の際に、第二のポリペプチドによってコードされるアミノ酸配列をコードする第一のポリペプチドである。
本願は、インテグリンおよびそのフラグメントを含むα1サブユニットおよび/またはα4サブユニットに対するアンタゴニストが肺線維症の処置に使用され得ること
(A.インテグリンアンタゴニスト)
本発明の目的のためには、インテグリンアンタゴニストは、リガンド−レセプター相互作用により誘導される正常機能が改変される(すなわち、妨げられるか、遅くなるか、またはその他の改変)ような、インテグリンとその同族のリガンドまたはレセプターとの間の任意の相互作用のアンタゴニストであり得る。インテグリンアンタゴニストの1つの好ましい実施形態は、α4インテグリンとそのリガンドとの相互作用(例えば、VCAM−1/VLA−4相互作用)のアンタゴニストである。これは、VCAM−1および/またはVLA−4媒介結合を阻害またはブロックし得るか、または例えば、VLA−4−リガンド媒介VLA−4シグナル伝達またはVCAM−1−リガンド媒介VCAM−1シグナル伝達を阻害またはブロックすることにより、VCAM−1および/またはVLA−4の機能をその他調節し得る薬剤(例えば、ポリペプチドまたは他の分子)であり、そして急性脳傷害の処置において、好ましくは抗VLA−1抗体と同じ様式で有効である。
他の好ましい実施形態では、細胞表面α1および/またはα4インテグリン(例えば、VLA−1、VLA−4またはα4β7)ならびに/あるいはα1および/またはα4インテグリンの細胞表面リガンド(例えば、それぞれ、コラーゲンまたはVCAM−1)に結合する(ブロックすることまたはコートすることを含む)ために本発明の方法において使用されるアンタゴニストは、抗VLA−1または抗VLA−4および/または抗コラーゲンおよび/または抗VCAM−1のモノクローナル抗体または抗体ホモログ(前述の定義のような)である。処置、特にヒトの処置に好ましい抗体およびホモログには、ヒト抗体ホモログ、ヒト化抗体ホモログ、キメラ抗体ホモログ、Fab、Fab’、F(ab’)2おおよびF(v)抗体フラグメント、ならびに抗体重鎖または軽鎖のモノマーまたはダイマーあるいはそれらの混合物が含まれる。VLA−4に対するモノクローナル抗体は、本発明の方法における好ましい結合因子である。
用語「小分子」インテグリンアンタゴニストは、例えば、細胞の表面上のVLA−4に結合するか、または細胞の表面上のVCAM−1に結合することによりVLA−4/VCAM相互作用をブロックすることによってインテグリン/インテグリンリガンド相互作用を乱し得る化学的因子(すなわち、有機分子)をいう。このような小分子はまた、それぞれのVLA−4およびVCAM−1レセプターに結合し得る。VLA−4およびVCAM−1小分子インヒビターは、それ自体ペプチド、半ペプチド性化合物または非ペプチド性化合物(例えば、VCAM−1/VLA−4相互作用のアンタゴニストである小有機分子)であり得る。本明細書中で定義される「小分子」は、抗体または甲体ホモログを包含することを意図しない。例示的な小分子の分子量は一般に1000未満である。
モノクローナル抗体(例えば、抗インテグリンモノクローナル抗体を含む)を作製するための技術は周知である(例えば、Mendrickら、1995、Lab.Invest.72:367−375(マウス抗−α1β1および抗−α2β1に対するmAb);Sonnenbergら、1987、J.Biol.Chem.262:10376−10383(マウス抗−α6β1に対するmAb);Yaoら、1996、J Cell Sci 1996 109:3139−50(マウス抗−α7β1に対するmAb);Hemlerら、1984、J Immunol 132:3011−8(ヒトα1β1に対するmAb);Pischelら、1987、J Immunol 138:226−33(ヒトα2β1に対するmAb);Waynerら、1988、J Cell Biol 107:1881−91(ヒトα3β1に対するmAb);Hemlerら、1987、J Biol Chem 262:11478−85(ヒトα4β1に対するmAb);Waynerら、1988、J Cell Biol 107:1881−91(ヒトα5β1に対するmAb);Sonnenbergら、1987、J.Biol.Chem.262:10376−10383(ヒトα6β1に対するmAb);A Wangら、1996、Am.J.Respir.Cell Mol.Blol.15:664−672(ヒトα9β1に対するmAb);Daviesら、1989、J Cell Biol 109:1817−26(ヒトαVβ1に対するmAb);Sanchez−Mardridら、1982、Pro Natl Acad Sci USA 79:7489−93(ヒトαLβ2に対するmAb);Diamondら、1993、J Cell Biol 120:1031−43(ヒトαMβ2に対するmAb);Stackerら、1991、J Immunol 146:648−55(ヒトαXβ2に対するmAb);Van der Vierenら、1995、Immunity 3:683−90(ヒトαDβ2に対するmAb);Bennettら、1983、Proc Natl Acad Sci USA 80:2417−21(ヒトαIIbβ3に対するmAb);Hessleら、1984、Differentiation 26:49−54(ヒトα6β4に対するmAb);Weinackerら、1994、J Biol Chem 269:6940−8(ヒトαVβ5に対するmAb);Weinackerら、1994、J Biol Chem 269:6940−8(ヒトαVβ6に対するmAb);Cerf−Bensussanら、1992、Eur J Immunol 22:273−7(ヒトαEβ7に対するmAb);Nishimuraら、1994、J Biol Chem 269:28708−15(ヒトαVβ8に対するmAb);Bossyら、1991、EMBO J 10:2375−85(ヒトα8β1に対するポリクローナル抗血清);Camperら、1998、J.Biol.Chem.273:20383−20389(ヒトα10β1に対するポリクローナル抗血清)を参照)。
単離されたα4インテグリンアンタゴニストのフラグメント(例えば、本明細書中に記載される抗体ホモログのフラグメント)はまた、当業者に公知の方法を使用して、組換え方法によってか、タンパク質分解性消化によってか、または化学合成によって、効率的に産生され得る。組換え方法では、ポリペプチドの内部または末端フラグメントは、単離されたハリネズミポリペプチドをコードするDNA配列の一端(末端フラグメントについて)または両端(内部フラグメントについて)から1以上のヌクレオチドを除去することによって生成され得る。変異誘発されたDNAの発現が、ポリペプチドフラグメントを産生する。「末端をかじる(end nibbling)」エンドヌクレアーゼでの消化もまた、一連のフラグメントをコードするDNAを生成し得る。タンパク質のフラグメントをコードするDNAはまた、無作為剪断、制限消化、または両方の組み合わせによって生成され得る。タンパク質フラグメントは、インタクトなタンパク質から直接的に生成され得る。ペプチドは、タンパク質分解酵素(プラスミン、トロンビン、トリプシン、キモトリプシン、またはペプシンを含むが、これらに限定されない)によって、特異的に切断され得る。これらの酵素の各々は、攻撃するペプチド結合の型に対して特異的である。トリプシンは、ペプチド結合の加水分解を触媒し、ここでカルボニル基は、塩基性アミノ酸(通常、アルギニンまたはリシン)由来である。ペプシンおよびキモトリプシンは、芳香族アミノ酸(例えば、トリプトファン、チロシン、およびフェニルアラニン)からのペプチド結合の加水分解を触媒する。切断されたタンパク質フラグメントの代替的なセットは、タンパク質分解酵素に対して感受性である部位での切断を避けることによって生成され得る。例えば、弱塩基性溶液中におけるエチルトリフルオロ酢酸でのリシンのε−アミノ酸基の反応は、ブロックされたアミノ酸残基を生じ、この隣接したペプチド結合は、もはやトリプシンによる加水分解に対して感受性ではない。タンパク質は、タンパク質分解酵素に対して感受性であるペプチド結合を作製するように改変され得る。例えば、β−ハロエチルアミンでのシステイン残基のアルキル化は、トリプシンによって加水分解されるペプチド結合を生じる(Lindley(1956)、Nature 178:647)。さらに、特定の残基でペプチド鎖を切断する化学試薬が使用され得る。例えば、臭化シアンは、メチオニン残基でペプチドを切断する(GrossおよびWitkip(1961)、J.Am.Chem.Soc.83、1510)。従って、変更因子、タンパク質分解酵素、および/または化学試薬の種々の組み合わせでタンパク質を処理することによって、タンパク質は、フラグメントの重複のない所望される長さのフラグメントに分割され得るか、または所望される長さの重複フラグメントに分割され得る。
タンパク質のアミノ酸配列改変体は、タンパク質またはその特定の部分をコードするDNAの無作為変異誘発によって調製され得る。有用な方法としては、PCR変異誘発および飽和変異誘発(saturation mutagenesis)が挙げられる。無作為アミノ酸配列改変体のライブラリーはまた、縮重オリゴヌクレオチド配列のセットを合成することによって生成され得る。改変されたDNAおよびペプチドを用いて、所定のタンパク質のアミノ酸配列改変体を生成する方法は、当該分野において周知である。このような方法の以下の例は、本発明の範囲を限定することを意図されず、単に例示的技術を例証するために提供される。当業者は、他の方法もまたこれに関して有用であることを認識する。
無作為ではない変異誘発(すなわち、方向付けられた変異誘発)は、単離されたポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の特定の部分に特定の配列または変異を提供し、その単離されたポリペプチドの既知のアミノ酸配列の残基の欠失、挿入、または置換を含む改変体を提供する。変異部位は、例えば、以下によって個々にまたは連続して改変され得る:(1)最初に、保存的アミノ酸で置換し、次いで達成される結果に依存して、より過激な選択肢で置換する工程;(2)標的残基を欠失させる工程;または(3)位置付けられた部位に隣接して同一または異なるクラスの残基を挿入する工程、あるいは選択肢1〜3の組み合わせ。
改変体は、アミノ酸配列においてか、もしくは配列を含まない様式、またはその両方において、本明細書中に記載された他のインテグリンアンタゴニストと異なり得る。本発明の最も好ましいポリペプチドは、インビボまたはインビトロでの化学的誘導体化(例えば、N末端の)、ならびにアセチル化、メチル化、リン酸化、アミド化、カルボキシル化、またはグリコシル化における可能な変化を含む、好ましい非配列改変を有する。
本発明の広範な範囲において、単一のポリマー分子が、α1インテグリンアンタゴニストまたはα4インテグリンアンタゴニストとの結合体化に使用され得るが、1より多いポリマー分子が同様に結合され得ることもまた意図される。本発明の結合体化されたα4インテグリンアンタゴニスト組成物は、インビボおよび非インビボでの両方の適用における有用性を見い出し得る。さらに、その結合体化ポリマーは、その最終的な用途適用に適切なように、任意の他の基、部分または他の結合体種を利用し得ることも認識される。例として、UV分解耐性または抗酸化、あるいは他の特性または特徴をポリマーに付与する官能性部分を、そのポリマーに共有結合させることが、いくつかの適用において有用であり得る。さらなる例として、ポリマーを反応性にし、そしてそのポリマーを薬物分子に架橋し得るようにポリマーを官能化し、結合体化された材料全体の種々の特性または特徴を増強することが、いくつかの適用において有利であり得る。従って、ポリマーは、結合体化されたα4インテグリンアンタゴニスト組成物のその意図される目的に対する効力を排除しない、任意の官能性、反復基、連結または他の構成構造を含み得る。本発明の他の目的および利点は、以後の開示および添付の特許請求の範囲からより十分に明らかである。
キャリア材料と組み合わせて単回投薬形態を生じ得る活性成分の量は、処置される被験体、および特定の投与形態に依存して変化する。しかし、任意の特定の被験体についての特定の投薬および処置レジメンは、使用される特定の化合物の活性、年齢、体重、一般的な健康状態、性別、食餌、投与時間、排泄速度、薬物の組み合わせ、ならびに処置する主治医の判断および処置される特定の疾患の重篤度を含む、種々の因子に依存する。活性成分の量はまた、その成分と同時に投与される治療薬剤または予防薬剤(もしあれば)に依存する。
本発明の方法において、本発明のアンタゴニストは、非経口的に投与され得る。本明細書中で使用される場合、用語「非経口的」は、皮下、静脈内、筋内、関節内、滑膜内(intra−synovial)、胸骨内、髄腔内(intrathecal)、肝臓内、病変内および頭蓋内の注射または注入技術を含む。所望の用量は、1日1回以上、静脈内に、経口的に、直腸内に、非経口的に、鼻内に、局所的に、または吸入によって被験体に投与される。所望の用量はまた、連続的な静脈内注入によっても与えられる。
多数の証拠は、広く使用されているブレビオマイシン(BL)げっ歯類モデルにおいて肺繊維症における炎症性細胞およびメディエーターの関与を記録している。このモデルは、多数のヒトの疾患の要素を有する繊維症の特徴的な事実を示し、そしてBL誘導肺繊維症をヒト化学療法における副作用を十分に理解するので、魅力的である。げっ歯類におけるBLの気管内(IT)点滴注入は、繊維発生の機構を研究するため、および潜在的に所望される抗繊維症化合物をスクリーニングするために広く用いられる。BL誘導肺毒性の最初の原因が、それが鉄およびDNAに結合するとすぐに活性酸素種(ROS)の生成に帰するが、肺繊維症の最終的な徴候を導く過程は、種々の炎症性メディエーターの放出に関与する(GiriおよびWang,Comments Toxicol.,3:145−176(1989))。BL誘導肺傷害の病因を、水腫、出血、および好中球およびマクロファージによって優位にされる細胞浸潤によって最初に誘導する。肺の脈管の空間、肺の間質性の空間、および肺胞の空間における炎症性白血球の過剰蓄積は、ROSおよびタンパク質分解酵素の生成による小脈管傷害および実質傷害を負わせ得る。好中球は、実質的な量のミエロペルオキシダーゼ(MPO)を含み、MPOは、H202との反応においてClから次亜塩素酸(HOCI)に酸化し得、そして好中球誘導HOClは、細胞毒性の原因として公知である。マクロファージ誘導ROSおよび好中球誘導ROSは、強化された繊維増殖性応答を媒介する、炎症前(proinflammatory)サイトカインおよび繊維形成誘導性サイトカインの産生を刺激し得る(PhanおよびKunkel,Exp.Lung Res,18:29−43(1992))。大きな炎症性細胞浸潤の近くで、線維芽細胞過程は、活性化線維芽細胞の過増殖性応答によってさらに特徴付けられる。線維芽細胞様細胞は、肺コラーゲン含量における決定的な上昇、およびコラーゲン型の超微細な外観および空間的な配置における異常性の主な原因である。
(材料および方法)
非特異的コントロール抗体(1E6)およびα4サブユニットを含むインテグリン(PS2)に対する抗体を用いた。1E6は、マウス抗ヒトLFA3(ドメイン1)IgG1モノクロナール抗体である。Miller,Hochman,Meier,Tizard,Bixler,RosaおよびWallner(1992)J.Exp.Med.178:211−222を参照のこと。PS/2を、Miyakeら、J.Exp.Med.,173:599−607(1991)の方法によって産生する。
マウスを、ケージあたり4匹ずつ飼育し、そしてAnimal WelfareのためのNIHの説明書に従って世話をした。このマウスを、全ての処置の前に1週間その設備において順応させた。12h/12hの明/暗サイクルを維持し、そして任意に水およびRodent Laboratory Chowを利用した。動物を、4つの実験群に無作為に分けた:1)SA+SA;2)BL+IE6;3)BL+SA;および4)BL+PS2。マウスを、キサラジンおよび塩酸ケタミン知覚運動麻痺の下で生理食塩水または0.08ユニット/100μl/マウスのBLの単一用量を用いて気管内(IT)注射した。IT点滴注入後、このマウスは、1週間に3回IE6、SAまたはPS2(0.2ml/マウス中100μg)のIP注射を受けた。BL点滴注入から21日目に、マウスを、気管支肺胞の洗浄液体(BALF)分析、生化学的分析、および組織病理学的分析のためにペントバルビタール知覚運動麻痺の下で屠殺した。
知覚運動麻酔の後、腹腔を開き、続いて下行腹大動脈の採血を行った。この肺を、シリンジに装着したブラント(blunt)針を用いて気管をカニューレ挿入することによって洗浄のために調整した。洗浄を、1mlアリコートで渡される冷等張生理食塩水の3mlを用いて実行した。BALFのアリコートを、細胞総数について分けた。残りのBALFを、1500gで20分間4℃で遠心分離し、得られた上清を、アリコートにし.次いで−70℃で保存した。BALFの後、肺葉を、非実質組織を離れてすぐに解剖し、液体窒素で急速凍結し、そして−70℃で保存した。
肺マロンジアルデヒド当量を、Ohkawaら、Anal.Biochem.,95:351(1979)の方法によって分別していないホモジネート中の全量のチオバルビツール酸反応産物から推定した。肺ヒドロキシプロリンアッセイに関しては、1mlのホモジネートを、0.25ml氷冷50%(w/v)トリクロロ酢酸を用いて沈殿し、遠心分離し、そしてこの沈殿物を、2mlの6N HCl中で18時間110℃で加水分解した、ヒドロキシプロリン含量を、Woessner,J.F.,Arch.Biochem.Biophys.,93:440(1961)によって記載された技術によって測定した。
プロリルヒドロキシラーゼ基質(プロコラーゲン)の調製およびプロリルヒドロキシラーゼアッセイの方法は、Giri,S.N.ら、Exp.Mol.Pathol.39:317(1983)に記載される。簡潔には、10日齢ニワトリ胚から単離された新鮮な脛骨を、無プロリン培地において37℃で、6時間[3H]−プロリンを用いて標識した。洗浄によって非取り込み標識を除去した後、この組織をホモジナイズし、そして3000gで20分間4℃で遠心分離した。得られた上清を、大規模に透析し、非取り込み標識を除去した。標識したプロコラーゲン基質をアリコートにし、そして−70℃で保存した。全量2mlの酵素アッセイのためのインキュベーション混合物は、硫酸鉄(II)アンモニウム(0.1mmol/l)、α−ケトグルタル酸(0.1mmol/l)、[3H]プロリンプロコラーゲン(200,00dpm)、肺ホモジネート(0.2ml)、アスコルビン酸(0.5mmol/l)、およびTRIS塩酸緩衝液(0.1mol/l、pH7.8)からなる。この反応を、Dubnoff代謝振盪機において30分間37℃で振盪した後、0.2mlの50%トリクロロ酢酸を添加した。反応の間、トリチウム化した水を、プロリルヒドロキシル化に対する化学量論比において放出し、そしてこれを酵素活性の測定として用いる。この反応系のトリチウム化した水を、反応混合物全体の減圧蒸留によって分離し、そして放射能を計測した。この酵素活性を、30分あたりの全肺あたりの放出されたトリチウム化された水のdpmとして示した。
BALFにおける細胞総数を、Wang,Q.ら、Lab.Invest.,67:234−242(1992)において記載されるように決定した。このBALFにおける全白血球数を、使用者の説明書に従いCoulter counter(Model F,Coulter Electronics,Inc.,Hialeah,FL)によって推定した。
BALF上清におけるタンパク質含量を、Bio−Radタンパク質アッセイ(Bio−Rad Laboratories,Richmond,CA)を用いて決定し、そしてウシ血清アルブミンを標準として用いた。
各々の処理群由来の3〜4匹の動物を、この実験の最後に組織病理学的評価および免疫組織化学的評価のために無作為に選択した。この動物の腹腔を開き、その後、下行腹大動脈の採血を行った。その後すぐに、この肺組織を、上記のWangらに記載のように組織学的分析のために調製した。ブラント針を用いて気管をカニューレ挿入した後、胸腔を開き、次い心臓および肺の両方を、まとめて取り出した。この肺を、30cmの水の圧力で気管を介してZ−fix溶液を用いて固定した。右上葉および尾部葉ならびに左葉を、後でパラフィンにおいてブロックし、包み込み、7μm切片に切断し、そしてヘマトキシリンおよびエオシンを用いて染色した。αSMAの免疫組織化学的染色のために、この肺組織切片のパラフィンを外し、そして内因性のペルオキシダーゼをブロックした。次いで、染色されるべき切片を、ブロッキングヤギ血清で30分間処理し、そして1次モノクロナール抗αSMA抗体(Sigma Chemical Co.,St Louis,MO)を用いて16時間インキュベートした。
動物データを、全肺毎に基づいて表し、そして平均±標準誤差(SE)として報告した。データを二元配置分散分析(two−way analysis of variance)(SIGMASTAT)およびStudent−Newman−Keuls法を用いて4群内で比較した。P≦0.05の値を有意とみなした。
(マウス肺における脂質過酸物化)
脂質過酸化物化の指数としての肺マロンジアルデヒド当量を種々の群のマウスでアッセイした。BL点滴注入は、SA+SA群およびBL+PS2群と比較して、BL+IE6群およびBL+SA群の両方でマウス肺におけるマロンジアルデヒド当量を有意に増大させた(データは示さず)。PS2での処置は、BL誘導肺脂質過酸化物化を有効にブロックした。なぜなら、BL+PS2群における肺マロンジアルデヒドに等しいレベルは、SA+SA群のレベルと異ならないからである。
肺ヒドロキシプロリン(肺コラーゲンレベルの重要な指数)を、4群のマウスについて決定した。BLのIT点滴注入は、BL+IE6群およびBL+SA群において肺ヒドロキシプロリンレベルを、それぞれSA+SAコントロール群の185%および205%に有意に上昇させた。BL+PS2群における肺ヒドロキシプロリンレベルのBL誘導増加は、BL+SA群と比較して、PS2での処置により35%まで有意に低減した。BL+TR群における肺ヒドロキシプロリンレベルは、IT SAコントロール(SA+SA)群のレベルより有意には高くなかった。
種々の群の肺におけるプロリルヒドロキシラーゼ活性は、BL単独により、BL+SA群における肺ヒドロキシラーゼ活性がSA+SAコントロール群の207%に有意に増大したことを示した。PS2は、BL+SA群においてBL処置により上昇したプロリルヒドロキシラーゼ活性を有意に低下させた。
生理食塩水またはBLをIT点滴注入して21日後の種々の群のBALFにおける総細胞数は、生理食塩水コントロール群(SA+SA)と比較して、BL+IE6群およびBL+SA群由来のBALFにおける総細胞数がBL処置により増大したが、BL+IE6群のみがSA+SA群より有意に高いレベルを有したことを示した。BL+PS2群におけるBALF細胞数は、SA+SA群の細胞数と異ならなかった。
4実験群についてのBALF上清のタンパク質含有量は、BLのIT点滴注入により、SA+SA群と比較して、BL処置群全てのBALFタンパク質が有意に増大することを明らかにした。しかし、BL+PS2群におけるPS2での処置により、BALF上清タンパク質におけるBL誘導増加が減少したが、差異は統計的に有意ではなかった。
マウス肺の組織学的試験により、SA+SA群における正常肺実質組織が明らかになった。しかし、BL+IE6群およびBL+SA群由来の肺は、細胞外線維の蓄積を含む斑状肺胞炎(patchy alveolitis)および多病巣性間質線維症(multifocal interstitial fibrosis)を示した。これらの群におけるマウスの肺は、肥厚化した肺胞間隔壁および隣接する気腔における炎症性細胞を有した。BL+IE6群およびBL+SA群と比較すると、BL+PS2群由来の肺は、はるかに少ない線維症性病巣を有したが、いくつかの葉は、軽度の実質性線維症をなお示した。
BL処置後にマウスにおける線維芽細胞および線維芽細胞様細胞の蓄積を決定するために、本発明者らは、XSMAに対するモノクローナル抗体を使用して、肺組織におけるXSMAの発現を試験した。コントロール群において、血管および気管支平滑筋層に免疫陽性が生じた。BLおよびコントロール抗体または生理食塩水で処置した肺において、線維症性領域内に広範囲かつ強い免疫染色があった(間隙よび胸膜両方において)。しかし、BLおよびPS2処置肺は、BL+IE6群およびBL+SA群と比較して、αSMAのはるかに減少した免疫染色を示した。
IPFは、害の大きな疾患であり現在の治療に対してはあまり応答しない。本研究において、本発明者らは、α4サブユニットを含むインテグリンがIPFを管理する際に他のあり得る標的であるという証拠を提供する。一般に、肺の白血球は、ROS、線維発生サイトカインおよび増殖因子の分泌により肺線維症の進展に関与すると仮定されている。白血球の輸送および活性化状態は、インテグリンのような種々の表面タンパク質により調節される。細胞間相互作用ならびに細胞−ECM相互作用が肺線維症の病理に重要であることは明らかである。活動性肺線維症を有する患者および線維症性肺疾患の動物モデルにおける一致した知見は、線維症を受けた領域における免疫細胞および炎症性細胞の増大した数の蓄積である。
(動物の処置)
雄性C57/BL6マウス(体重28〜30g)を、American Association for Accreditation of Laboratory Animal Careにより認可を受けた施設で、プラスチックケージに入れて4群で飼育した。実験を開始する前に、動物を実験条件に1週間馴らした。マウスは、Rodent Laboratory Chow 5001(Purina Mills,Inc.,St.Louis,MO)および水を自由給餌にし、そして空気がフィルターに通された12時間明/12時間暗サイクルを有する部屋で飼育した。マウスを以下の群に割り当てた。
気管のカニューレ挿入の後に、1mlの5つのアリコートに分けて5mlの等張性生理食塩水で肺を洗浄する。生理食塩水をカニューレを通してシリンジで投与し、胸壁を穏やかにマッサージし、そして液体を引き抜く。液体を4℃で1500g、20分間遠心分離し、そして等張性生理食塩水溶液に再懸濁する。気管支肺胞洗浄標本からの上清のタンパク質含有量をLowryらの方法(J.Biol.Chem.1193:265−275(1951))により、ウシ血清アルブミンを標準物質として用いて決定する。上清中の全白血球数を、Coulter Counter(Coulter Electronics,Hialeah,FL)で決定する。
生化学的研究のために用いた動物の肺を、氷冷等張性生理食塩水で右心室を介してインサイチュで灌流して、左心耳(left auricle)中の開口を介して肺血管系から血液を洗い流す。肺葉を非実質組織を含まないように迅速に切開し、急速凍結するために液体窒素中に入れ、次いで−80℃で保存する。凍結した肺を後に解凍し、そして0.1M KCl、0.02M Tris緩衝液(pH7.6)中、ポリトロンホモジナイザーでホモジナイズする。コラーゲン含有量の尺度としての肺ホモジネートのヒドロキシプロリン含有量を、Woessner,Arch.Biochem.Biophys.93:440−447(1961)の教示により定量する。
肺洗浄の後、胸腔をあけ、そして心臓および肺をまとめて取り出す。肺を0.12Mカコジル酸緩衝液中の1%グルタルアルデヒド−パラホルムアルデヒド固定液(30cm H2O圧で400mOsm)に浸漬する。肺をこの圧力で約2時間固定し、次いで、吸収した気管とともに固定液中で保存する。包埋する前に、心臓および全ての非肺組織を遠慮なく切除して肺を分離し、そして取り出す。組織の塊は、各肺の右上方、左尾側、および左胚葉から、少なくとも2つの矢状板(2〜3mmの厚さ)から切断する。各ブロックを切断し、表面は約1cm2であった。ブロックは、徐々に変化させた一連のエタノールで脱水し、そしてパラフィンに包埋する。切片(5μmの厚さ)をパラフィンブロックから切り出し、そして組織学的評価のためにヘマトキシリンおよびエオシンで染色する。
平均値と平均の標準偏差および標準誤差についてデータを分析する。コンピューターベースの統計パッケージ(SAS/STAT Guide,第6版、Cary,N.C.183〜260頁(1985)を用いて、スチューデントのt検定、χ二乗分布、相関係数、分散分析(ANOVA)および多重比較検定を適用して、コントロール群と処置群との間の有意差を判断する。
この研究において、本発明者らは、インテグリンα1β1に対する中和抗体(抗α1β1)がインビボでのブレオマイシン(BL)誘導肺線維症を減少するという仮定を検定する。雄性C57/BL6マウスに生理食塩水(SA)またはBL(0.1ml中0.08U)気管内(IT)注射し、続いて、抗体(0.2ml中100μg)を1週間に3回、腹腔内(IP)注射する。IT点滴注入して21日後、マウスを気管支肺胞洗浄(BAL)、生化学的分析および組織病理学的分析のために屠殺する。
本発明者らは、生理食塩水およびコントロールIgGで処置したマウスが目に見える病変を有さず、そして正常な薄い外観を有する肺胞間隔壁を示していることを予測する。対照的に、ブレオマイシンおよびコントロールIgGで処置したマウスは、近位の小胞における多病巣性位置からときおり胸膜を含む散在性分布まで変化した病変を有する。本発明者らは、ブレオマイシンおよび抗α1インテグリン抗体で処置したマウスの肺がB群(上記)におけるマウスの肺とより類似しているようであるということを予測する。本発明者らは、D群の動物が、軽度の多病巣性隔壁肥厚化および単核球の小さな凝集とともに、わずかな制限された数の線維症性病変を示すと予測する。
Claims (8)
- 被験体における肺線維症を処置するための組成物であって、有効量の抗α4抗体またはそのフラグメントを含み、該抗体またはそのフラグメントがヒト抗体またはそのフラグメント、キメラ抗体またはそのフラグメント、およびヒト化抗体またはそのフラグメントからなる群から選択され、該そのフラグメントが抗原認識部位を含み、該抗体またはそのフラグメントは、α4β1インテグリンと、(a)VCAM−1および(b)フィブロネクチンからなる群より選択されるα4β1インテグリンリガンドとの間の相互作用のアンタゴニストである、組成物。
- 前記組成物が、0.1〜20mg/kg体重の前記抗体またはそのフラグメントの投薬量で投与されることを特徴とする、請求項1に記載の組成物。
- 請求項1に記載の組成物であって、ここで、前記抗体またはそのフラグメントがヒト化抗体またはそのフラグメントであり、該ヒト化抗体またはそのフラグメントは、細胞株ATCC CRL 11175によって産生される抗体の可変ドメインのポリペプチド配列をコードする核酸配列に、低ストリンジェンシー条件下でハイブリダイズする核酸配列によってコードされる、組成物。
- 請求項1に記載の組成物であって、ここで、前記抗体またはそのフラグメントがヒト化抗体またはそのフラグメントであり、該ヒト化抗体またはそのフラグメントは、細胞株ATCC CRL 11175によって産生される抗体の可変ドメインのポリペプチド配列をコードする核酸配列に、高ストリンジェンシー条件下でハイブリダイズする核酸配列によってコードされる、組成物。
- 被験体における肺線維症を処置するための薬学的組成物の調製のための抗α4抗体またはそのフラグメントを含む組成物の使用であって、該抗α4抗体またはそのフラグメントは、α4β1インテグリンと、(a)VCAM−1;および(b)フィブロネクチンからなる群より選択されるα4β1インテグリンリガンドとの間の相互作用のアンタゴニストであり、該抗体またはそのフラグメントがヒト化抗体、ヒト抗体もしくはキメラ抗体、またはそれらのフラグメントであり、該それらのフラグメントが抗原認識部位を含む、使用。
- 前記組成物は、
(a)0.1mg/kg/日〜10mg/kg/日の前記抗体もしくはそのフラグメントの投薬量で;
(b)1〜14日間の投与期間にわたって;および
(c)1mg/ml以上の該抗体もしくはそのフラグメントの血漿レベルを維持するに十分な量で、
投与されることを特徴とする、請求項1〜4のいずれか1項に記載の組成物、または請求項5に記載の使用。
- 前記抗体もしくはそのフラグメントは、ヒト化マウス21.6抗体またはそのフラグメントである、請求項1〜4のいずれか1項に記載の組成物、または請求項5もしくは6に記載の使用。
- 前記被験体はヒトである、請求項1〜4のいずれか1項に記載の組成物、または請求項5〜7のいずれか1項に記載の使用。
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