JP5424331B2 - 肝疾患診断用バイオマーカー - Google Patents
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Description
配列A;Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln
配列B;His Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln
配列C;Lys His Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln
項2:高分子キニノーゲンの全長、及び/又は高分子キニノーゲン由来の部分ペプチドが修飾体を含む項1記載のバイオマーカー。
配列D;Asn Gly Phe Lys Ser His Ala Leu Gln Leu Asn Asn Arg Gln Ile
配列E;Asn Gly Phe Lys Ser His Ala Leu Gln Leu Asn Asn Arg Gln Ile Arg
項8:項7のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、慢性肝炎及びASCを識別する抗体。
a)NAFLD患者生体試料中において、健常者生体試料中と比較し減少または消失する、項1又は2に記載の高分子キニノーゲン全長からなるキニノーゲン系マーカー。
b)NAFLD患者生体試料中において、健常者と比較して増加する場合に、NAFLDに罹患していると判定する、項1又は2記載の部分ペプチドA、B、及びCからなる群から選ばれた少なくとも一つである、キニノーゲン系マーカー。
c)高分子キニノーゲン全長に、部分ペプチドA、B、及びCからなる群から選ばれた少なくとも一つを組み合わせ、健常者と比較して全長マーカーが減少し、部分ペプチドA、B、及びCからなる群から選ばれた少なくとも一つが増加していることをもって、NAFLD罹患しているとするキニノーゲン系マーカーによる検出方法。
d)慢性肝炎及びASC患者生体試料中において、健常者又は他の肝疾患患者の生体試料中と比較し減少または消失する、項7に記載の補体C4全長に含まれるC4系マーカー。
e)慢性肝炎及びASC患者生体試料中において、該マーカーが健常者と比較して多く存在する場合に、慢性肝炎、ASCに罹患していると判定する、項7に記載の補体C4由来のC4a、C4b、 C4c、及び部分ペプチドD、Eからなる群から選ばれた少なくとも一つであるC4系マーカー。
f)補体C4全長に、C4由来の部分ペプチドC4a、C4b、 C4c、D及びEからなる群から選ばれた少なくとも一つを組み合わせ、健常者と比較して全長に含まれるC4系マーカーが減少し、併せて、部分ペプチドC4a、C4b、 C4c、D及びEからなる群から選ばれた少なくとも一つが増加していることをもって、慢性肝炎、ASCに罹患しているとするC4系マーカーによる検出方法。
g)高分子キニノーゲン全長の減少若しくは消失、及び/又は部分ペプチドA、B、Cの少なくとも一つの増加若しくは発現を検出し、C4全長に含まれるC4系マーカーが減少し、C4由来の部分ペプチドC4a、C4b、 C4c、D、Eの少なくとも一つの増加若しくは発現を検出することにより、NAFLD、慢性肝炎及びASCを識別する項14に記載のキニノーゲン系マーカーとC4系マーカーとの併用による検出方法。
h)高分子キニノーゲン全長の増加若しくは発現の検出及び/又は部分ペプチドA、B、Cの少なくとも一つの減少若しくは消失を検出し、C4の増加若しくは検出及び/又は部分ペプチドC4a、C4b、 C4c、D、Eの少なくとも一つの減少若しくは消失を検出することにより、健常者、NAFLD、慢性肝炎及びASCを識別する項14に記載のキニノーゲン系マーカーとC4系マーカーとの併用による検出方法。
i)高分子キニノーゲン全長の増加若しくは発現の検出及び/又は部分ペプチドA、B、Cの少なくとも一つの減少若しくは消失を検出し、併せて、C4の減少若しくは消失及び/又は部分ペプチドD、Eの少なくとも一つの増加若しくは検出することにより、健常者、NAFLD、慢性肝炎及びASCを識別する項14に記載のキニノーゲン系マーカーとC4系マーカーとの併用による検出方法。
本発明のNAFLDの識別に際しては、前述の血清中のキニノーゲン全長、部分ペプチドA、B、Cをマーカーとして直接使用することもできるが、定法によりこれらのマーカーを認識する抗体を作成し、その抗体をもって診断するのが簡便で望ましい。かかる抗体は、公知技術を用いて作製することができる。なお、抗体は、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体、またはF(ab)フラグメントおよびFvフラグメント、一本鎖抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、およびFab発現ライブラリを含むがこれに限定されないその抗原結合タンパク質を包含する。キニノーゲンを特異的に認識するには、モノクローナル抗体が好ましい。
配列B;His Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln(439〜456番目)
配列C;Lys His Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln(438〜456番目)
本発明のマーカーによるNAFLDの診断は、次の方法により可能である。例えば、質量分析による場合は、健常者ピーク強度の平均値に標準偏差を足したカットオフ値を用いて閾値を設定し、NAFLDか否かを診断する。キニノーゲンの各部分ペプチドA、B、Cを、各々単独でNAFLD診断用のマーカーとして使用する場合には、定法によりその感度(陽性正答率)と特異度(陰性正答率)を求めることにより、高い感度と特異度で診断することができる。例えば、表1に示すように1942m/zのピークを用いると、NAFLD患者44例中40例をNAFLDと診断(感度90.99%)、健常者24例中21例を健常者と診断(特異度87.5%)することができる。
配列D;Asn Gly Phe Lys Ser His Ala Leu Gln Leu Asn Asn Arg Gln Ile
配列E;Asn Gly Phe Lys Ser His Ala Leu Gln Leu Asn Asn Arg Gln Ile Arg
本発明によれば、図16に示すように先ずキニノーゲン系マーカーを用いて、健常者とNAFLDを識別し、次いでC4系のマーカーを組み合わせことにより、NAFLD の患者における慢性肝炎とASC患者を簡便に識別することが出来る。とくに慢性肝炎の進展を簡便に判別し、適切な治療方針を早期に適切に立てることが出来る。
[1]クリンプロットシステムによる血清ペプチドの検出
(1)材料と方法
血清試料として、NAFLD患者44例、及び健常者血清24例を用いた。血清5μlをWCXビーズに添加し、WCXビーズに血清蛋白質のペプチドを吸着させた。未吸着のペプチドを洗浄除去した後、溶出液を加え、WCXビーズに吸着したペプチドを溶出した。
(2)結果
NAFLD患者群と健常者群のスペクトルから、さらにNAFLD患者群で有意に増加しているピーク(P<0,05)を検出し、さらに、ピーク強度50以上のピークを選抜した。ピークのリストを表1に示す。また、NAFLD患者と健常者の典型的なスペクトルパターンを図3(A)に示す。これらのピークの内、1942m/z、2079m/z、及び2207m/zのピーク(図3(B))は、他のピークと比べ特にピーク強度が高かった(表1)。
[2]NAFLDマーカーとしてのキニノーゲンの同定
1942m/z、2079m/z、及び2207m/zのピークに由来するペプチドを同定するため、MS/MSイオンサーチ法を行った。詳細を以下に記す。
(1)材料と方法
MS/MSスペクトルの取得は、次のように行った。まず、ペプチドとマトリックスの結晶を薄膜法で調製した。アンカーチップのアンカー表面に、予めCCAの飽和アセトン溶液を塗布し、CCAの薄膜を作製した。次に、NAFLD患者血清のクリンプロット溶出液1μlを薄膜上に滴下し、5分間静置して、溶出液中のペプチドとCCAを結晶化させた。静置後、結晶を0.1%TFA3μlで3回洗浄した。
(2)結果
図4に、(A)1942m/z、(B)2079m/z、及び(C)2207m/zのMS/MSスペクトルを示す。これらのスペクトルのピーク情報とマッチするペプチドを検索したところ、3本のピークすべてが高分子キニノーゲンの一部であることが分かった。高分子キニノーゲンのアクセッション番号とペプチド配列を表2に示す。
[3]NAFLD患者血清における全長キニノーゲンの分解
同定されたペプチドは高分子キニノーゲンのドメイン5の一部である。なお、キニノーゲン蛋白質の全長は分子量約120kDaである。同定された3つのピークは、全長の一部であるため、NAFLD発症に伴い、キニノーゲンの分解が亢進している可能性がある。なお、NAFLDとキニノーゲンとの関連はこれまで知られていない。そこで、抗キニノーゲン抗体を用いたウエスタンブロッティングを用いて、NAFLD患者において、全長キニノーゲンが分解されているのかどうかを調べた。
(1)材料と方法(ポリクローナル抗体)
電気泳動サンプルの調製は以下のように行った。まず、NAFLD患者と健常者の血清5μlとPBS45μlを混合し、ここにアセトン400μl添加した。-80℃で一晩放置することで血清蛋白質をアセトン沈殿した。沈殿した蛋白質を遠心分離で回収し、電気泳動用サンプルバッファーに溶解後、100℃で5分処理することで、蛋白質を完全に変性、還元し、8%アクリルアミドゲルでSDS-PAGEを行い、蛋白質を分離した。分離した蛋白質をPVDF膜に転写し、5%スキムミルク/0.05% Tween20/PBSでブロッキング後、夫々、キニノーゲン全長には、RABBITANTI HUMAN HMW-KININOGEN Catalog Number 5575−4957(AbD serotec社製)、一方、同定した部分ペプチドCを特異的に認識する抗体には、K438-Q456 peptidesに特異的な Rabbit-anti-human- kininogen(シグマアルドリッチジャパン社に外注)を用いて1時間反応させた。続いて、HRP標識2次抗体で処理した後、ECLWestern Blotting Detection System(GEヘルスケア社)で特異的バンドを検出した。
(2)結果
抗キニノーゲンポリクローナル抗体(上記のAbD Serotec社製 RABBIT ANTI HUMANHMW-KININOGEN)によるウエスタンブロッティングの結果を図5に示す。健常者において、19例中18例で約120kDaの全長の高分子キニノーゲンが検出された。また、約65kDaの高分子キニノーゲンの重鎖のバンドと約45kDaの軽鎖のバンドが検出された。これに対し、NAFLD患者では、37例中36例で全長の高分子キニノーゲンのバンドが消失していた。同様に同定ペプチドを特異的に認識するRabbit-anti-human- kininogen(シグマアルドリッチジャパン社に外注)の結果を図6に示す。健常者において、4例中4例で約120kDaの全長の高分子キニノーゲンが検出された。NAFLD患者では、8例中8例で全長の高分子キニノーゲンのバンドが消失していた。以上の結果、NAFLD患者において、全長の高分子キニノーゲンが減少していることが分かった。
(3)材料と方法(モノクローナル抗体)
電気泳動サンプルの調製は以下のように行った。まず、NAFLD患者と健常者の血清5μlとPBS45μlを混合し、ここにアセトン400μl添加した。-80℃で一晩放置することで血清蛋白質をアセトン沈殿した。沈殿した蛋白質を遠心分離で回収し、電気泳動用サンプルバッファーに溶解後、100℃で5分処理することで、蛋白質を完全に変性、還元し、8%アクリルアミドゲルでSDS-PAGEを行い、蛋白質を分離した。分離した蛋白質をPVDF膜に転写し、5%スキムミルク/0.05% Tween20/PBSでブロッキング後、抗キニノーゲンモノクローナル抗体と反応させた。抗キニノーゲン抗体としては、(Mouse-monoclonal)HMW Kininogen Light Chainantibody [1.B.709]:Catalog Number:GTX14514(Gene Tex,Inc.社製)を使用した。一方、同定ペプチドCを含む部位を特異的に認識する抗キニノーゲンモノクローナル抗体には、K438-S531 peptides に特異的な(Mouse-monoclonal) Anti-human-kininogen/Kininostatin Antibody:Catalog Number:MAB1569(R&D Systems社製)を使用した。抗体を加えて1時間反応させた。続いて、HRP標識2次抗体で処理した後、ECL Western Blotting Detection System(GEヘルスケア社)で特異的バンドを検出した。
(4)結果
抗キニノーゲンモノクローナル抗体(上記Gene Tex, Inc.社製 HMW Kininogen Light Chainantibody [1.B.709])を用いたウエスタンブロッティングの結果を図7に示す。約45kDaの軽鎖のバンドが検出されたが、健常者とNAFLDの有意差は確認できなかった。一方、同定した部分ペプチドCを含む部位を特異的に認識する抗キニノーゲンモノクローナル抗体(上記のR&D Systems社製Anti-human-kininogen/Kininostatin Antibody)の結果を図8に示す。健常者において、16例中15例で約120kDaの全長の高分子キニノーゲンが検出された。NAFLD患者では、40例中36例で全長の高分子キニノーゲンのバンドが消失していた。以上の結果、NAFLD患者において、全長の高分子キニノーゲンが減少していることが分かった。
[5]抗キニノーゲン抗体によるキニノーゲンペプチドの検出
これらのマーカーを診断に利用することを考えると、マーカーに対する抗体を用いてより特異的にピークを検出する必要がある。そこで次に、抗キニノーゲン抗体を用いてキニノーゲンを免疫沈降法で検出することを試みた。
(1)材料と方法
キニノーゲン部分ペプチドの特異的な検出は抗キニノーゲン抗体を用いた免疫沈降法で行った。NAFLD患者血清10μlにPBS40μlを混合した後、上記のポリクローナル抗体としては、RABBIT ANTI HUMAN HMW-KININOGEN(AbD Serotec社製)又はRabbit-anti-human- kininogen(シグマアルドリッチジャパン社に外注)を、モノクローナル抗体としてはHMW Kininogen LightChain antibody [1.B.709](GeneTex,Inc.社製)又は、Anti-human-kininogen/KininostatinAntibody: Catalog Number:MAB1569(R&D Systems社製)10μlを添加し、1時間氷浴上(4℃)で静置することで、血清中の抗原と抗体を反応させた。続いて、50%プロテインAセファロースビーズ30μlを添加し、10分毎に転倒混和しながら、1時間氷浴上で静置した後、遠心分離操作によって沈殿と上清に分けた。沈殿ビーズをPBS400μlで5回洗浄して未吸着の蛋白質・ペプチドを除去した後、50%アセトニトリル30μlを添加してビーズに結合した蛋白質・ペプチドを遠心分離によって溶出した。溶出液20μlを50mM酢酸ナトリウム(pH4.5)80μlで希釈した後、CM10に30分間震盪処理した。スポットを洗浄、風乾した後、20%飽和CCA/50%アセトニトリル/0.5% TFA0.5μLを2回添加した。SELDIで測定し、同定したキニノーゲン部分ペプチドが検出されるのかどうかを調べた。
(2)結果
ポリクローナル抗体による免疫沈降の結果を図9に示す。AbD Serotec社製RABBIT ANTI HUMAN HMW-KININOGENに比べて、シグマアルドリッチジャパン社製Rabbit-anti-human- kininogenで処理したNAFLD患者血清のほうが、ピーク強度が大きかった。
[6]プロテインチップシステムを用いたキニノーゲン由来ピークの検出(SELDI)
プロテインチップシステム(バイオラッド社)は、プロテインチップとSELDIらなり、クリンプロット同様血清診断マーカーの探索に有用である。チップ表面が様々な官能基で標識されており、ここに血清を処理することで蛋白質・ペプチドを捕捉し、SELDIで測定することでピークを検出する。そこで次に、キニノーゲン由来の部分ペプチドピーク(1942m/z、 2079m/z、及び2207m/z)がプロテインチップシステムでも検出されるのかどうかを調べた。
(1)材料と方法
血清のプロテインチップへの処理は次のようにして行った。血清5μlにウレアバッファー(7Mウレア、2Mチオウレア、4% CHAPS、1% DTT、2% アンフォライト)を45μl添加し、氷浴上で10分間静置することで、血清蛋白質を変性させた。次いで450μlの50mM酢酸ナトリウムpH4.5で希釈し、冷却状態(4℃)で、10,000rpmで5分間遠心操作をかけた。上清をチューブに移して氷浴上で保存した。この希釈上清100μlを予め平衡化した陽イオン交換チップCM10(バイオラッド社)に添加した。室温で30分浸透処理した後、50mM 酢酸ナトリウムpH4.5の100μlで3回洗浄、更に超純水で2回洗浄した。風乾後、スポットに50%飽和CCA 0.5μlを2回添加し、ペプチドとCCAの混合結晶を調製した。ピークの検出はSELDIで行なった。
(2)結果
NAFLD患者群と健常者群のスペクトルから、さらにNAFLD患者群で有意に増加しているピーク(P<0,05)を検出し、さらに、ピーク強度5以上のピークを選抜した。ピークのリストを表3に示す。また、NAFLD患者と健常者の典型的なスペクトルパターンを図11(A)に示す。実施例1と同様、高分子キニノーゲン由来ピークである、1942m/z、2079m/z、及び2207m/zのピーク(図11(B))は、健常者と比べNAFLD患者で有意に増加することが分かった(表3)。サンプル毎にピーク強度をプロットしても、NAFLD患者で著しく高値を示すことは明らかであった(図11(C))。
[1]クリンプロットシステムによる血清ペプチドの検出
(1)材料と方法
血清試料として、ASC19例、健常者24例を用いた。血清5μlをWCXビーズに添加し、WCXビーズに血清蛋白質のペプチドを吸着させた。未吸着のペプチドを洗浄除去した後、溶出液を加え、WCXビーズに吸着したペプチドを溶出した。
(2)結果
ASC患者群と健常者群のスペクトルから、さらに有意に増加しているピーク(P<0,05)を検出し、さらに、ピーク強度50以上のピークを選抜した。ピークのリストを表4に示す。また、ASCと健常者の典型的なスペクトルパターンを図12(A)に示す。これらのピークの内、1738m/z及び1896m/z(図12(B))は、他のピークと比べ特にピーク強度が高かった(表4)。
[2]肝疾患マーカーとしての配列D及びEの同定
1738m/z、及び1896m/zのピークに由来するペプチドを同定するため、MS/MSイオンサーチ法を行った。詳細を以下に記す。
(1)材料と方法
MS/MSスペクトルの取得は、次のように行なった。まず、ペプチドとマトリックスの結晶を薄膜法で調製した。アンカーチップのアンカー表面に、予めCCAの飽和アセトン溶液を塗布し、CCAの薄膜を作製した。次に、ASC患者血清のクリンプロット溶出液1μlを薄膜上に滴下し、5分間静置して、溶出液中のペプチドとCCAを結晶化させた。静置後、結晶を0.1%TFA3μlで3回洗浄した。
(2)結果
図13に、1738m/z(A)、及び1896m/z(B)のMS/MSスペクトルを示す。これらのスペクトルのピーク情報とマッチするペプチドを検索したところ、2本のピークすべてがC4由来の分解生成物であることが分かった。それらのペプチド配列を表5に示す。
[3]ELISA法による血清蛋白濃度の検出
肝がんや肝硬変などで補体系が活性化されることは公知である。しかしながら、比較的初期の肝疾患とも云うべき、ASC、NAFLD(SS、NASH)のC4aや活性化経路に特異的な因子を定量することで初期の肝疾患の新規マーカーが見出される可能性があり、本発明の課題である(初期の)肝疾患マーカーをより多く提供する目的にも適う。そこで次に、かかるキャリアや肝疾患患者において、C4aの活性化の指標となる因子を定量することにした。
(1)材料と方法
C4aの血清濃度の測定には、C4a Enzyme Immunoassay BD OptEIA Set(日本ベクトン・ディッキンソン株式会社、以下、BD社と略す。)を用いた。試料として、ASC30例、肝炎患者(CH)30例、肝硬変患者(LC)2例、肝がん患者(HCC)5例、SS12例、NASH 25例、健常者25例の血清を用いた。本キットの96穴プレートの各ウェルには、C4a モノクローナル抗体が固定化されている。
(2)結果
C4aの血清中の蛋白質濃度を図15に示す。健常者に比べ、ASCでは高値(P<0,05)を示した。従って、血中のC4a濃度を測定することで、ASCの診断マーカーとして、他の疾病との差別化が可能となる。以上の結果、C4a濃度は、ASCの高値マーカーとなることが示唆された。
[4]プロテインチップシステムを用いたC4由来の部分ペプチドの検出
プロテインチップシステム(バイオラッド社)は、プロテインチップとSELDIらなり、クリンプロット同様血清診断マーカーの探索に有用である。チップ表面が様々な官能基で標識されており、ここに血清を処理することで蛋白質・ペプチドを捕捉し、SELDIで測定することでピークを検出する。そこで次に、C4の部分ペプチド由来のピーク(1738m/z、1896m/z)がプロテインチップシステムでも検出されるのかどうかを調べた。
(1)材料と方法
試料としては、ASC患者及び健常者の血清を用いた。血清のプロテインチップへの処理は次のように行った。血清5μlにウレアバッファー(7M ウレア、2M チオウレア、4% CHAPS、1% DTT、2% アンフォライト)を45μl添加し、氷浴上で10分間静置することで、血清蛋白質を変性させた。これに450μlの50mM 酢酸ナトリウムpH4.5を加えて希釈し、この希釈液100μlを予め平衡化した陽イオン交換チップCM10(バイオラッド社)に添加した。室温で30分浸透処理した後、50mM 酢酸ナトリウムpH4.5で3回洗浄、更に超純水で2回洗浄し、風乾後、スポットに50%飽和CCA0.5μlを2回添加し、ペプチドとCCAの混合結晶を調製した。ピークの検出はSELDIで行った。
(2)結果
ASC群と健常者群のスペクトルから、特にASC群で有意に増加しているピーク(P<0,05)を検出し、さらに、ピーク強度5以上のピークを選抜した。ピークの同定結果を表6に示す。また、ASCと健常者の典型的なスペクトルパターンを図16に示す。図16(A)に示すように、クリンプロットシステムと同様、C4由来ピークである、1738m/z、1896m/zのピークは、健常者と比べASCで有意に増加することが分かった(表6)。図16(C)に示すように、サンプル毎にピーク強度をプロットしても、ASCで著しく高値を示すことは明らかであった。
キニノーゲン系マーカーとしてキニノーゲンに対する抗体を用いて健常者とNAFLDを識別した例を示す。
(1)材料と方法
血清試料として健常者11例、NASH5例、単純性脂肪肝5例を用いた。
(2)結果
以上の結果より、H1からH11は健常者の血清、平均値±標準偏差=0.937 ±0.117。また、N4からS42はそれぞれN:NASH患者、S:単純性脂肪肝を意味し、平均値±標準偏差=0.383 ±0.224であった。図18から、健常者のキニノーゲンは1付近を示し、NAFLD患者は0.5付近以下であると判定された。
Claims (12)
- 高分子キニノーゲンの全長、及び/又は高分子キニノーゲン由来の部分ペプチドを含むマーカーであって、高分子キニノーゲン由来の部分ペプチドが下記配列A、B、及びCのいずれか一つである、非アルコール性脂肪肝疾患を識別するバイオマーカー。
配列A;Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln
配列B;His Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln
配列C;Lys His Asn Leu Gly His Gly His Lys His Glu Arg Asp Gln Gly His Gly His Gln - 高分子キニノーゲンの全長、及び/又は高分子キニノーゲン由来の部分ペプチドが修飾体を含む請求項1記載のバイオマーカー。
- 請求項1又は2記載のバイオマーカー、及び請求項1又は2記載のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、非アルコール性脂肪肝疾患を識別する抗体からなる群から選ばれた少なくとも一つを含む非アルコール性脂肪肝疾患を識別する診断薬。
- 補体C4、及び/又はC4由来の部分ペプチドであって、C4由来の部分ペプチドがC4a、C4b、 C4c、下記配列D、及びEからなる群から選ばれた少なくとも一つである慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別するバイオマーカー。
配列D;Asn Gly Phe Lys Ser His Ala Leu Gln Leu Asn Asn Arg Gln Ile
配列E;Asn Gly Phe Lys Ser His Ala Leu Gln Leu Asn Asn Arg Gln Ile Arg - 請求項4記載のバイオマーカー、及び請求項4記載のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する抗体からなる群から選ばれた少なくとも一つを含む慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する診断薬。
- 請求項1又は2に記載のバイオマーカー、請求項1又は2記載のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、非アルコール性脂肪肝疾患を識別する抗体、請求項3記載の診断薬の少なくとも一つと、請求項4記載のバイオマーカー、請求項4のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する抗体、請求項5記載の診断薬の少なくとも一つとの組み合わせからなる、非アルコール性脂肪肝疾患、慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する診断薬。
- 請求項1又は2に記載のバイオマーカー、請求項1又は2記載のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、非アルコール性脂肪肝疾患を識別する抗体、請求項3記載の診断薬の少なくとも一つを用いて、非アルコール性脂肪肝疾患を識別する検出方法。
- 請求項4記載のバイオマーカー、請求項4のバイオマーカーの少なくとも一つの抗原を認識し、慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する抗体、請求項5記載の診断薬の少なくとも一つを用いて、慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する検出方法。
- 請求項7に記載の検出方法と請求項8に記載の検出方法とを組み合わせてなる、非アルコール性脂肪肝疾患、慢性肝炎及び無症候性ウイルスキャリアを識別する検出方法。
- サンプル中の高分子キニノーゲンを認識し、配列A,B及びCの配列を有する高分子キニノーゲンの部分ペプチドのいずれのペプチドも認識しない抗体を用いることを特徴とする、請求項7乃至9のいずれかの検出方法。
- ELISA法により検出することを特徴とする、請求項10記載の検出方法。
- 非アルコール性脂肪肝疾患を識別する抗体が、サンプル中の高分子キニノーゲンを認識し、配列A,B及びCの配列を有する高分子キニノーゲンの部分ペプチドのいずれのペプチドも認識しない抗体であることを特徴とする、請求項3又は6記載の診断薬。
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