JP5401465B2 - 有機化合物 - Google Patents

Description

本発明は、ＤＰＰ−IVにより媒介される状態を処置するのに有効である、新たなジペプチジルペプチダーゼ−IV（ＤＰＰ−IV）阻害剤を提供する。ＤＰＰ−IVは、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）の不活性化に関与することが発見された。ＧＬＰ−１は、膵臓インスリン分泌の主要な刺激物質であって、糖処理に対して直接的な有益効果をもたらすことから、ＤＰＰ−IV阻害は、インスリン非依存性糖尿病（ＮＩＤＤＭ）のような状態を処置するための魅力的な試みであると考えられる。

本発明は、遊離型または薬学的に許容され得る酸付加塩の形態での、式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）：

［式中、
Ｒ'は、

を表し；そして
Ｒ''は、水素、ヒドロキシ、Ｃ_１−Ｃ_７アルコキシ、Ｃ_１−Ｃ_８アルカノイルオキシ、またはＲ_５Ｒ_４Ｎ−ＣＯ−Ｏ−{ここで、Ｒ_４およびＲ_５は独立して、置換されていないか、またはＣ_１−Ｃ_７アルキル、Ｃ_１−Ｃ_７アルコキシ、ハロゲンおよびトリフルオロメチルから選択される置換基で置換されているＣ_１−Ｃ_７アルキルまたはフェニルであり、またここで、Ｒ_４はさらに水素であるか；またはＲ_４およびＲ_５は一緒になってＣ_３−Ｃ_６アルキレンを表す。}を表す。］
の化合物（本発明の化合物）に関する。

本発明はまた、Ｒ''が水素を表す、先に記載した式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）の化合物にも関する。
好ましい態様において、先に記載した式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）の化合物は、実質的には純粋な形態である。

本発明の化合物は、遊離型で、または酸付加塩の形態で存在することができる。他の塩もまた、例えば、本発明の化合物を単離するまたは精製するのに有用であるが、薬学的に許容され得る（すなわち、無毒の、生理学的に許容され得る）塩が好ましい。好ましい酸付加塩は塩酸塩であるが、メタンスルホン酸、硫酸、リン酸、クエン酸、乳酸および酢酸の塩もまた利用され得る。

本発明の化合物は、光学活性異性体またはジアステレオ異性体の形態で存在し得て、クロマトグラフィーのような従来技術により、分離して回収することができる。

本発明を記載するために使用する様々な用語の定義を以下に収載する。これらの定義は、それらが本明細書中で使用される場合、具体的な例で特に限定されない限り、個々に、またはより大きな基の一部として、その用語に適用する。

“アルキル”という用語は、１〜１０個の炭素原子、好ましくは１〜７個の炭素原子、最も好ましくは１〜５個の炭素原子を有する、直鎖状または分岐鎖状の炭化水素基を示す。例となるアルキル基には、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、ｔ−ブチル、イソブチル、ペンチル、ヘキシル等が含まれる。
“アルカノイル”という用語は、アルキル−Ｃ(Ｏ)−を示す。

“置換アダマンチル”という用語は、アルキル、−ＯＲ_１または−ＮＲ_２Ｒ_３［ここで、Ｒ_１、Ｒ_２およびＲ_３は独立して、水素、アルキル、(Ｃ_１−Ｃ_８アルカノイル)、カルバミル、または−ＣＯ−ＮＲ_４Ｒ_５（ここで、Ｒ_４およびＲ_５は独立して、アルキル、非置換または置換アリールであり、またここで、Ｒ_４およびＲ_５のうち一方はさらに水素であるか、またはＲ_４およびＲ_５は一緒になってＣ_２−Ｃ_７アルキレンを表す。）である。］から選択される、１つまたはそれ以上の、例えば、２つの置換基で置換されているアダマンチル、すなわち、１−または２−アダマンチルを示す。

“アリール”という用語は、フェニルを表すのが好ましい。置換フェニルは、例えば、アルキル、アルコキシ、ハロゲンおよびトリフルオロメチルから選択される、１つまたはそれ以上の、例えば、２つの置換基で置換されているフェニルであるのが好ましい。

“アルコキシ”という用語は、アルキル−Ｏ−を示す。
“ハロゲン”または“ハロ”という用語は、フッ素、塩素、臭素およびヨウ素を示す。
“アルキレン”という用語は、２〜７個の炭素原子の、好ましくは３〜６個の炭素原子、最も好ましくは５個の炭素原子の直鎖橋を示す。

“実質的には純粋な”という用語は、本発明の文脈において、血液中に見い出されるような生体物質が実質的には含まれない、とりわけ、そのような生体物質が１０％未満、好ましくは１％未満、また最も好ましくは含まれないことを意味すると理解される。

本発明の化合物は、例えば、反応性の(２−シアノピロリジノ)カルボニルメチレン化合物を適当な置換アミンと結合させることを含む工程により製造され得る；より詳しくは、式Ｉの化合物の製造に関して、それは、式II：

［式中、Ｙは、反応基（好ましくは、臭素、塩素またはヨウ素のようなハロゲン）である。］
の化合物を、式III：
ＮＨ_２(ＣＨ_２)_ｎ−Ｒ III
［式中、Ｒは、先に定義した通りである。］
の化合物と反応させて、得られた式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）の化合物を、遊離型での、または酸付加塩の形態で回収することを含む。

式ＹＡもしくはＹＢの化合物の前駆体を製造するための別の工程は、特許出願 ＷＯ ０１／０６８６０３に記載されており、または式ＸＡもしくはＸＢの化合物に関してはＷＯ ０５／０９５３３９に記載されている。以下に記載する工程を使用して、特許出願 ＷＯ ０１／０６８６０３またはＷＯ ０５／０９５３３９に記載されており、また式中、Ｒ'が−ＯＨである化合物のＯ−グルクロニド型を得ることができる。

該Ｒ'部分は、当業者に周知のいずれかの方法により、または化学式ＩＡもしくはＩＢの構造に関して本明細書中で後に記載する工程により、化学構造に結合させることができる。ラット肝ホモジネートを触媒として使用する調製用生物変換によって、ビルダグリプチンのＯ−グルクロニドは、本明細書中で後記の通りに製造されている。

ビルダグリプチン（ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７−ＮＸまたはガルバス(Galvus)(登録商標)）は、現在、アメリカ合衆国の食品医薬品局（ＦＤＡ）により規制再審査を受けているジペプチジルペプチダーゼ−４（ＤＰＰ−４）阻害剤の群の新たな経口血糖降下（抗糖尿病）薬である。出願人は、驚いたことに、ビルダグリプチンのＯ−グルクロニド（図ＡＡ）がビルダグリプチンと同程度に活性なままであることを発見した。出願人は、驚いたことに、ビルダグリプチンのＯ−グルクロニドが、ＤＰＰ−４酵素を阻害する点でビルダグリプチンと同等に強力であることに加えて、ＤＰＰ−８またはＤＰＰ−９酵素を阻害する点ではあまり強力でないことを発見した。あるＤＰＰ−４阻害剤のアダマンチル基を置換することが薬理学的特性の改善を与えるであろうことは、特に予期されぬことである。ビルダグリプチンのＯ−グルクロニドは、さらなる薬物動態学的または薬理学的利点、例えば、より少ない副作用、より良いバイオアベイラビリティを提供することができる。

最も好ましい態様において、ビルダグリプチンのＯ−グルクロニド（図ＡＡ）は、実質的には純粋な形態である。

本発明の方法は、従来方法で行われ得る。例えば、式IIの化合物を、１〜３当量、好ましくは３当量の、式IIIの一級アミンと反応させる。その反応は、塩化メチレンまたは環状エーテル（例えば、テトラヒドロフラン）のような不活性な有機溶媒の存在下に行われるのが好都合である。その温度は、約０℃〜約３５℃、好ましくは約０℃〜約２５℃の間であるのが好ましい。

本発明の化合物は、従来方法で、例えば、クロマトグラフィーにより、その反応混合物から単離されて精製され得る。

その出発物質はまた、従来方法でも製造され得る。式IIの化合物は、次の二段階反応スキームにより製造され得る。

工程１は、式IVのピロリジンの、僅かにモル過剰のハロアセチルハライド（例えば、ブロモアセチルブロミドまたはクロロアセチルクロリド）および塩基（例えば、炭酸カリウムまたはトリエチルアミン）との反応を伴う。その反応は、テトラヒドロフランまたは塩素化脂肪族炭化水素（例えば、塩化メチレン）のような不活性な有機溶媒の存在下、約０℃〜約２５℃の温度で、好ましくは約０℃〜約１５℃の温度で行われるのが好都合である。

工程２は、工程１で製造した式Ｖの化合物の、１〜２当量の無水トリフルオロ酢酸（ＴＦＡＡ）での脱水に関する。その脱水は、テトラヒドロフランまたは塩素化脂肪族炭化水素（例えば、塩化メチレン）のような不活性な有機溶媒の存在下、約０℃〜約２５℃の温度で、好ましくは約０℃〜約１５℃の温度で行うのが好ましい。

その製造を本明細書中に詳しく記載しない限り、出発物質として使用する化合物は、既知であるか、または既知の方法で、もしくは既知の方法に類似した方法で、もしくは実施例に記載する方法に類似した方法で、既知の化合物から製造され得る。

例えば、式IIIの一級アミン化合物は既知であって、文献、例えば、Khim. -Farm. Zh. (1986), 20(7), 810-15に記述されている手順により製造され得る。

最終的に、本発明の化合物は、遊離型で得られるか、または塩形成基が存在するなら、その塩として得られる。

塩基性基を有する本発明の化合物は、酸付加塩、とりわけ、薬学的に許容され得る酸付加塩へと転換することができる。これらは、例えば、鉱酸（例えば、硫酸、リン酸もしくはハロゲン化水素酸）のような無機酸と、または有機カルボン酸と形成される。塩酸と形成される塩が好ましい。

遊離化合物とそれらの塩の形態での化合物との密接な関係から考えて、ある化合物がこの文脈において示されるときはいつでも、もしそのようなものがその状況下に可能であるかまたは適当であるならば、対応する塩もまた意図される。

それらの塩を含め、該化合物はまた、それらの水和物の形態で得ることもでき、またはそれらの結晶化に使用する他の溶媒が含まれる。

本発明にはまた、例えば、ＤＰＰ−IVを阻害するのに有用な医薬組成物であって、薬学的に許容され得る担体または希釈剤、および治療上有効な量の式Ｉの化合物またはその薬学的に許容され得る酸付加塩を含む医薬組成物も含まれる。

またさらに別の態様において、本発明は、ＤＰＰ−IVを阻害する方法であって、そのような処置を必要とする哺乳動物に、本発明の化合物またはその薬学的に許容され得る酸付加塩の治療上有効な量を投与することを含む方法を提供する。

さらなる態様において、本発明は、ＤＰＰ−IV阻害により媒介される状態を処置する方法であって、そのような処置を必要とする哺乳動物に、先の本発明の化合物またはその薬学的に許容され得る酸付加塩の治療上有効な量を投与することを含む方法を提供する。

本発明はまた、例えば、ＤＰＰ−IVレベルの上昇と関連のある疾患または状態の予防または処置のための薬物の製造に関する、本発明による化合物またはその薬学的に許容され得る塩の使用にも関する。

上述の通り、式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩は全て、ＤＰＰ−IVを阻害するのに有用である。本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩の、ＤＰＰ−IVを阻害する能力は、ヒト結腸癌細胞抽出物由来のＤＰＰ−IV活性を阻害する試験化合物の能力を測定する、Caco−２ ＤＰＰ−IVアッセイを使用して実証され得る。そのヒト結腸癌細胞株 Caco−２は、American Type Culture Collection（ＡＴＣＣ ＨＴＢ ３７）から得られた。ＤＰＰ−IV発現を誘発するための細胞の分化は、Reisherらにより、Proc. Natl. Acad. Sci.、第９０巻、５７５７−５７６１頁（１９９３）において“Increased expression of intestinal cell line Caco-2”と題された論文に記載されているように達成された。細胞抽出物を、１０mＭ トリス(Tris) ＨＣl、０.１５Ｍ ＮaＣl、０.０４ t.i.u. アプロチニン、０.５％ ノニデット−Ｐ４０、pＨ ８.０中で可溶化した細胞から調製し、これを３５,０００ｇにて４℃で３０分間遠心分離して、細胞片を除去する。該アッセイは、アッセイ緩衝液（２５mＭ トリス ＨＣl pＨ ７.４、１４０mＭ ＮaＣl、１０mＭ ＫＣl、１％ ウシ血清アルブミン）中で最終体積１２５μlに希釈した、可溶化Caco−２タンパク質２０μgをマイクロタイタープレートのウェルに加えることにより行われる。室温で６０分間インキュベーションした後、１mＭ 基質（Ｈ−アラニン−プロリン−pＮＡ；pＮＡは、ｐ−ニトロアニリンである。）２５μlを加えることにより、その反応を開始させる。その反応を室温で１０分間行った後、２５％ 氷酢酸１９μl体積を加えて、その反応を停止させる。試験化合物を、典型的には、添加物として３０μl加えて、そのアッセイ緩衝液の体積を９５μlまで減少させる。アッセイ緩衝液中の遊離pＮＡの０−５００μＭ 溶液を使用して、遊離ｐ−ニトロアニリンの標準曲線を作成する。作成した曲線は線形であって、基質消費（１分間あたりに切断された基質のナノモル(nmole)単位での触媒活性）の補間に使用される。モレキュラーデバイス社(Molecular Devices)のUV Max マイクロタイタープレートリーダーにおいて吸光度を４０５nmで測定することにより、終点を決定する。

ＩＣ_５０として表される、試験化合物のＤＰＰ−IV阻害剤としての効力は、４−パラメーターロジスティック関数を使用して、８−ポイントの用量−反応曲線から計算される。

本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩の、ＤＰＰ−IVを阻害する能力はまた、Kubotaらにより、Clin. Exp. Immunol.、第８９巻、１９２−１９７頁（１９９２）において“Involvement of dipeptidylpeptidase IV in an in vivo immune response”と題された論文に記載されているアッセイの変更版を使用して、ヒトおよびラット血漿中のＤＰＰ−IV活性に対する試験化合物の効果を測定することによっても実証され得る。簡単に言えば、血漿５μlを９６ウェルの平底マイクロタイタープレート（ファルコン社(Falcon)）に加えた後、インキュベーション緩衝液（２５mＭ ＨＥＰＥＳ、１４０mＭ ＮaＣl、１％ ＲＩＡ−グレードのＢＳＡ、pＨ ７.８）中の８０mＭ ＭgＣl_２５μlを加える。室温で６０分間インキュベーションした後、０.１mＭ 基質（Ｈ−グリシン−プロリン−ＡＭＣ；ＡＭＣは、７−アミノ−４−メチルクマリンである。）を含むインキュベーション緩衝液１０μlの添加により、その反応を開始させる。そのプレートをアルミ箔で覆って（または暗所に保管して）、室温で２０分間インキュベートする。２０分間反応させた後、サイトフルオル(CytoFluor) ２３５０ 蛍光光度計（励起３８０nm；発光４６０nm；感度設定４）を使用して、蛍光を測定する。試験化合物を、典型的には、添加物として２μl加えて、そのアッセイ緩衝液の体積を１３μlまで減少させる。アッセイ緩衝液中のＡＭＣの０−５０μＭ 溶液を使用して、遊離ＡＭＣの蛍光−濃度曲線を作成する。作成した曲線は線形であって、基質消費（１分間あたりに切断された基質のナノモル(nmole)単位での触媒活性）の補間に使用される。先のアッセイと同様に、ＩＣ_５０として表される、試験化合物のＤＰＰ−IV阻害剤としての効力は、４−パラメーターロジスティック関数を使用して、８点の用量−反応曲線から計算される。

ＤＰＰ−IVを阻害するそれらの能力から考えて、本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩は、ＤＰＰ−IV阻害により媒介される状態を処置するのに有用である。先の事項および該文献における発見に基づき、本明細書中に開示する化合物は、インスリン非依存性糖尿病、関節炎、肥満、同種移植およびカルシトニン−骨粗鬆症のような状態の処置において有用であることが予期される。加えて、グルカゴン様ペプチド（例えば、ＧＬＰ−１およびＧＬＰ−２）の役割およびそれらのＤＰＰ−IV阻害との関連に基づき、本明細書中に開示する化合物は、例えば、鎮静もしくは抗不安効果をもたらすのに、または手術後の異化変化およびストレスに対するホルモン応答を軽減するのに、または心筋梗塞後の死亡率および罹患率を減少させるのに、またはＧＬＰ−１および／もしくはＧＬＰ−２レベルにより媒介され得る先の効果に関係した状態の処置において有用であることが予期される。

より具体的には、例えば、本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩は、経口グルコース負荷に対する初期インスリン応答を改善し、また従って、インスリン非依存性糖尿病を処置するのに有用である。本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩の、経口グルコース負荷に対する初期インスリン応答を改善する能力は、次の方法により、インスリン抵抗性ラットにおいて測定され得る。

高脂肪食（飽和脂肪＝カロリー５７％）を２−３週間摂食させた雄のスプラーグ−ドーリー(Sprague-Dawley)ラットを、試験日に約２時間絶食させ、８−１０のグループに分けて、ＣＭＣ中の試験化合物を１０μmol／kgで経口投与した。その試験化合物の３０分後、１ｇ／kgの経口グルコースボーラスを試験動物の胃に直接投与した。慢性頸静脈カテーテルから様々な時点で得た血液試料を、血漿グルコースおよび免疫反応性インスリン（ＩＲＩ）濃度、並びに血漿ＤＰＰ−IV活性に関して分析した。リンコリサーチ社(Linco Research)（セントルイス、ミズーリ州）製の特異的抗ラットインスリン抗体を使用する二重抗体ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）法により、血漿インスリンレベルをアッセイした。そのＲＩＡは、５％未満のアッセイ内およびアッセイ間変動で０.５μＵ／mLの検出下限を有する。データは、対照動物の平均の増加％として表される。経口投与では、試験した各々の化合物が初期インスリン応答を増幅し、これがインスリン抵抗性試験動物における耐糖能の改善をもたらした。次の結果が得られた。

ＤＰＰ−IV阻害により媒介される状態を処置するために使用されるべき、本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩の正確な投与量は、宿主、処置される状態の性質および重症度、投与方法、並びに使用する特定の化合物を含め、幾つかの要素に依存する。しかしながら、一般に、本発明の化合物、または対応する薬学的に許容され得る酸付加塩が、０.００２−５、好ましくは０.０２−２.５mg／kg（体重）の一日投与量で、または大部分のより大きな霊長類に関しては、０.１−２５０、好ましくは１−１００mgの１日投与量で、経腸的に、例えば、経口的に、または非経口的に、例えば、静脈内に、好ましくは経口的に投与される場合、ＤＰＰ−IV阻害により媒介される状態は有効に処置される。典型的な経口投与量単位は、１日１〜３回、０.０１−０.７５mg／kgである。通常、小用量を最初に投与して、処置中の宿主にとって最適な投与量が決定されるまで、その投与量を徐々に増加させる。投与量の上限は、副作用により課せられるものであって、処置される宿主に対しての試験により決定することができる。

本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩は、１つまたはそれ以上の薬学的に許容され得る担体、また場合により、１つまたはそれ以上の他の従来的な医薬アジュバントと組み合わせて、錠剤、カプセル剤、カプレット剤等の形態で、経腸的に、例えば、経口的に、または無菌注射溶液剤もしくは懸濁液剤の形態で、非経口的に、例えば、静脈内に投与され得る。経腸および非経口組成物は、従来的な方法により製造され得る。本発明の化合物を含む適当な製剤の例は、特許出願 ＷＯ ２００５／０６７９７６またはＷＯ ２００６／０７８５９３に記載されている。

従って、本発明はまた、少なくとも１つの薬学的に許容され得る担体または希釈剤と共に、遊離型または薬学的に許容され得る酸付加塩の形態での、請求項１〜４のいずれかに記載の化合物、または本明細書中に記載する化合物を含む医薬組成物にも関する。

本発明による医薬組成物は、ＤＰＰ４活性により媒介される状態の処置のための、人間を含め、哺乳動物への、経口または直腸のような経腸；経皮および非経腸投与に適当なものである。そのような状態には、耐糖能異常、２型糖尿病および肥満が含まれる。

従って、本発明の薬理学的に活性な化合物は、経腸または非経腸適用のいずれかに適当な賦形剤または担体と併用または混合して、その有効量を含む医薬組成物の製造において使用され得る。
ａ）希釈剤、例えば、ラクトース、デキストロース、スクロース、マンニトール、ソルビトール、セルロースおよび／またはグリシン；
ｂ）滑沢剤、例えば、シリカ、タルカム、ステアリン酸、そのマグネシウムもしくはカルシウム塩および／またはポリエチレングリコール；
錠剤に関してはまた、
ｃ）結合剤、例えば、ケイ酸アルミニウムマグネシウム、デンプン糊、ゼラチン、トラガカント、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウムおよび／またはポリビニルピロリドン；
所望により、
ｄ）崩壊剤、例えば、デンプン、寒天、アルギン酸もしくはそのナトリウム塩、または発泡性混合物；および／または
ｅ）吸収剤(absorbant)、着色料、香料および甘味料；
と共に、活性成分を含む錠剤およびゼラチンカプセル剤が好ましい。

注射用組成物は、水性等張溶液剤または懸濁液剤であるのが好ましく、そして坐剤は、脂肪乳濁剤または懸濁液剤から有利に製造される。

該組成物は、無菌化され得、そして／または保存剤、安定化剤、湿潤剤もしくは乳化剤のようなアジュバント、溶解促進剤、浸透圧を調節するための塩および／または緩衝液を含み得る。加えて、それらはまた、他の治療上有益な物質も含み得る。該組成物は、各々、従来的な混合法、造粒法またはコーティング法により製造されて、活性成分を約０.１−７５％、好ましくは約１−５０％含む。

経皮適用に適当な製剤には、治療上有効な量の本発明の化合物が担体と共に含まれる。有利な担体には、宿主の皮膚への通過を補助するために、吸収性の薬理学的に許容され得る溶媒が含まれる。特徴的に、経皮デバイスは、裏打ち材、化合物を場合により担体と共に含む貯蔵部、場合により、化合物を、制御された、また予定された速度で、長時間にわたり、宿主の皮膚へ送達するための速度制御バリア、およびそのデバイスを皮膚に固定するための手段を含むバンデージの形態である。

従って、本発明は、ジペプチジルペプチダーゼ−IV阻害により媒介される状態、好ましくは、耐糖能異常、２型糖尿病および肥満の処置のための、先に記載した医薬組成物を提供する。

本発明はまた、ジペプチジルペプチダーゼ−IV阻害により媒介される状態、好ましくは、耐糖能異常、２型糖尿病および肥満の処置のための、先に記載した医薬組成物の使用も提供し、ここで、（請求項１〜４のいずれかに定義するような）本発明の化合物は、別の治療薬、例えば、以下に記載するような１つまたは２つの追加薬と組み合わせて投与される。

該医薬組成物は、治療上有効な量の、本明細書中に（例えば、請求項１〜４に）定義するような本発明の化合物を、単独で、または別の治療薬と組み合わせて、例えば、各々、当業界で報告されているような有効な治療用量で含み得る。そのような治療薬には、
ａ）インスリン、インスリン誘導体および模倣薬のような抗糖尿病薬；スルホニル尿素、例えば、グリピジド、グリブリドおよびアマリール(Amaryl)のようなインスリン分泌促進物質；メグリチニド、例えば、ナテグリニドおよびレパグリニドのようなインスリン分泌促進スルホニル尿素受容体リガンド；ＰＴＰ−１１２のようなタンパク質チロシンホスファターゼ−１Ｂ（ＰＴＰ−１Ｂ）阻害剤；ＳＢ−５１７９５５、ＳＢ−４１９５０５２、ＳＢ−２１６７６３、ＮＮ−５７−０５４４１およびＮＮ−５７−０５４４５のようなＧＳＫ３（グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３）阻害剤；ＧＷ−０７９１およびＡＧＮ−１９４２０４のようなＲＸＲリガンド；Ｔ−１０９５のようなナトリウム依存性グルコース共輸送体阻害剤；ＢＡＹ Ｒ３４０１のようなグリコーゲンホスホリラーゼＡ阻害剤；メトホルミンのようなビグアニド；
アカルボースのようなα−グルコシダーゼ阻害剤；ＧＬＰ−１（グルカゴン様ペプチド−１）、エキセンディン−４のようなＧＬＰ−１類似体およびＧＬＰ−１模倣薬；並びにビルダグリプチンのようなＤＰＰIV（ジペプチジルペプチダーゼIV）阻害剤；
ｂ）３−ヒドロキシ−３−メチル−グルタリル補酵素Ａ（ＨＭＧ−ＣoＡ）還元酵素阻害剤、例えば、ロバスタチン、ピタバスタチン、シンバスタチン、プラバスタチン、セリバスタチン、メバスタチン、ベロスタチン、フルバスタチン、ダルバスタチン、アトルバスタチン、ロスバスタチンおよびリバスタチンのような抗高脂血症薬；スクアレン合成酵素阻害剤；ＦＸＲ（ファルネソイドＸ受容体）およびＬＸＲ（肝臓Ｘ受容体）リガンド；コレスチラミン；フィブラート系薬剤；コレスチラミンのようなニコチン酸胆汁酸結合樹脂；フィブラート系薬剤；ニコチン酸および他のＧＰＲ１０９アゴニスト；エゼチミブのようなコレステロール吸収阻害剤；ＣＥＴＰ阻害剤（コレステロールエステル転送タンパク質阻害剤）；並びにアスピリン；
ｃ）オルリスタット、シブトラミンおよびカンナビノイド受容体１（ＣＢ１）アンタゴニスト、例えば、リモナバンのような抗肥満薬；そして
ｄ）抗高血圧薬、例えば、エタクリン酸、フロセミドおよびトルセミドのようなループ利尿薬；ベナゼプリル、カプトプリル、エナラプリル、ホシノプリル、リシノプリル、モエキシプリル、ペリンドプリル(perinodopril)、キナプリル、ラミプリルおよびトランドラプリルのようなアンジオテンシン変換酵素（ＡＣＥ）阻害剤；ジゴキシンのようなＮa−Ｋ−ＡＴＰアーゼ膜ポンプの阻害剤；中性エンドペプチダーゼ（ＮＥＰ）阻害剤；オマパトリラト、サムパトリラトおよびファシドトリルのようなＡＣＥ／ＮＥＰ阻害剤；カンデサルタン、エプロサルタン、イルベサルタン、ロサルタン、テルミサルタンおよびバルサルタンのようなアンジオテンシンIIアンタゴニスト、特にバルサルタン；ジテキレン、ザンキレン、テルラキレン、アリスキレン、ＲＯ ６６−１１３２およびＲＯ ６６−１１６８のようなレニン阻害剤；アセブトロール、アテノロール、ベタキソロール、ビソプロロール、メトプロロール、ナドロール、プロプラノロール、ソタロールおよびチモロールのようなβ−アドレナリン受容体遮断薬；ジゴキシン、ドブタミンおよびミルリノンのような強心薬；アムロジピン、ベプリジル、ジルチアゼム、フェロジピン、ニカルジピン、ニモジピン、ニフェジピン、ニソルジピンおよびベラパミルのようなカルシウムチャネル遮断薬；アルドステロン受容体アンタゴニスト；並びにアルドステロン合成酵素阻害剤；
ｅ）フェノフィブラート、ピオグリタゾン、ロシグリタゾン、テサグリタザル、ＢＭＳ−２９８５８５、Ｌ−７９６４４９、特許出願 ＷＯ ２００４／１０３９９５に具体的に記載された化合物、すなわち、実施例１〜３５の化合物もしくは請求項２１に具体的に記載された化合物、または特許出願 ＷＯ ０３／０４３９８５に具体的に記載された化合物、すなわち、実施例１〜７の化合物もしくは請求項１９に具体的に記載された化合物、またとりわけ、(Ｒ)−１−{４−[５−メチル−２−(４−トリフルオロメチル−フェニル)−オキサゾール−４−イルメトキシ]−ベンゼンスルホニル}−２,３−ジヒドロ−１Ｈ−インドール−２−カルボン酸またはその塩のようなペルオキシソーム増殖剤活性化受容体のアゴニスト；
が含まれる。

各々の場合において、特に、化合物クレームおよび実施例の最終生成物において、最終生成物、医薬品製剤およびクレームの内容は、これらの論文および特許出願を参照することにより、本出願に組み込まれる。

従って、本発明は、
ｉ）請求項１〜４のいずれかに記載の化合物；および
ii）
ａ）抗糖尿病薬；
ｂ）抗高脂血症薬；
ｃ）抗肥満薬；
ｄ）抗高血圧薬；
ｅ）ペルオキシソーム増殖剤活性化受容体のアゴニスト；
から選択される少なくとも１つの化合物；
ii）１つまたはそれ以上の薬学的に許容され得る担体；
を含む医薬組成物を包含する。

他の具体的な抗糖尿病化合物は、Patel Monaにより、Expert Opin Investig Drugs, 2003, 12(4), 623-633において図１〜７に記載されており、これらは、参照することにより本明細書中に組み込まれる。本発明の化合物は、他の活性成分と同時に、その前に、またはその後に、同じもしくは異なる投与経路により別々に、または同じ医薬品製剤で一緒に投与され得る。

コード番号、一般名または商品名により特定される治療薬の構造は、標準概論“メルクインデックス(Merck Index)”の現行版から、またはデータベース、例えば、Patents International（例えば、IMS World Publications）から取得され得る。その対応する内容は、参照することによりここに組み込まれる。

従って、本発明は、治療上有効な量の本発明の化合物を、好ましくは、抗糖尿病薬、抗高脂血症薬、抗肥満薬または抗高血圧薬から、最も好ましくは、先に記載した抗糖尿病薬または抗高脂血症薬から選択される、治療上有効な量の別の治療薬と組み合わせて含む医薬組成物を提供する。

本発明はさらに、薬物として使用するための、先に記載した医薬組成物に関する。
本発明はさらに、ジペプチジルペプチダーゼ−IV阻害により媒介される状態、好ましくは、耐糖能異常、２型糖尿病および肥満の処置のための薬物を製造するための、先に記載した医薬組成物または組み合わせの使用に関する。

本発明の化合物、およびそれらの対応する薬学的に許容され得る酸付加塩は、ＤＰＰ−IV阻害により媒介される状態を処置するのに有効である活性物質量を含む経腸および非経口医薬組成物、単位投与量形態でのそのような組成物、および薬学的に許容され得る担体を含むそのような組成物へと製剤化され得る。

本発明の化合物（各々のその下位の範囲および各々の実施例のものを含む）は、鏡像異性的に純粋な形（例えば、ee＞９８％、好ましくは＞９９％）で、またはＲ鏡像異性体と一緒に、例えば、ラセミ体で投与され得る。先の投与量範囲は、本発明の化合物に基づく（Ｒ鏡像異性体の量を除く）。

次の実施例は、本発明により包含される代表的化合物およびそれらの合成を示す。しかしながら、それらが説明を目的とするのみであることは明確に理解されるべきである。

Ｉ．実施例１
ピロリジン、１−[(３−ヒドロキシ−１−アダマンチル)アミノ]アセチル−２−シアノ−、(Ｓ)（ＩＮＮ：ビルダグリプチン）またはＮＶＰ−ＬＡＦ２３７

Ａ．１−アミノアダマンタン−３−オール
Khim. -Farm. Zh.(1986), 20(7), 810-15に見られる合成法を僅かに変更して使用し得る。
９６％ 濃硫酸（２１０mL；３,９４３mmol）および６５％ 硝酸（２１.０mL；２１７.０mmol）の、急速に撹拌された、透明かつ無色の、氷水で冷やした混合物に、１−アダマンチルアミン ＨＣl（９９％）２１.０ｇ（１１２.０mmol）を３０分かけて少量ずつ加える。アダマンチルアミン塩酸塩を加えると、僅かな泡立ちが起こって、その反応は僅かに発熱性である。この泡立った黄色の溶液を氷水温度で約２時間撹拌した後、室温で３０時間撹拌する。次いで、この透明な淡黄色の反応物を氷約１００ｇへと注ぎ入れると、得られた溶液は透明な緑青色である。

その溶液を氷水浴に入れて、３０分間撹拌しておく。次いで、８９％ 純粋なＫＯＨ約５５０ｇ（８.７４mol）を４５分かけて少量ずつ加える。この添加の間、その反応は発熱性である；８０℃に達すると、褐色のＮＯ_２ガスが大量に発生する。添加を終えるまでに、その反応物は、白色の固形物質（生成物と塩の両方）で濃化される。次いで、得られた白色のペーストをブフナー漏斗／セライトパッドへと注ぎ入れて、ＣＨ_２Ｃl_２ １.２Ｌで洗浄する。次いで、そのＣＨ_２Ｃl_２層を水層から抽出して、Ｎa_２ＳＯ_４で乾燥させる。次いで、その溶液を濾過して、濃縮して（回転蒸発器(rotovap)／ポンプ）、１−アミノアダマンタン−３−オールを白色の固形物質として得る。

Ｂ．１−クロロアセチル−２−シアノピロリジン
テトラヒドロフラン１５０mL中の塩化クロロアセチル２０.０ｇ（１８０.０mmol）および炭酸カリウム９７ｇ（０.７０mmol）の機械的に撹拌した溶液に、テトラヒドロフラン５００mL中のＬ−プロリンアミド２０.０ｇ（１８０.０mmol）の溶液を４５分かけて滴下方式で加える。次いで、この反応物を室温でさらに２時間機械的に撹拌する。次いで、その反応物を濾過して、カリウム塩を除去して、濾液をＮa_２ＳＯ_４で乾燥させる。次いで、そのＮa_２ＳＯ_４を濾過によって除去して、この無色の濾液に、無水トリフルオロ酢酸（２５.０mL、０.１８０mmol）を一度に加える。次いで、その反応物を室温で１時間機械的に撹拌して、得られた透明な黄色／橙色の溶液を回転蒸発器(rotovap)によって濃縮する。その濃縮された油状物質に酢酸エチルを加えて、回転蒸発器(rotovap)によって再濃縮することにより、過剰の無水トリフルオロ酢酸を除去する。この除去操作を３回行う。

得られた油状物質を酢酸エチルと水との間に分配する。次いで、生成物を酢酸エチルへと抽出した後、水層を酢酸エチルで２回洗浄する。次いで、合わせた有機層を水およびブラインで連続的に洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥させ、濾過して、濃縮して、１−クロロアセチル−２−シアノピロリジンを黄色の固形物質として得る。

Ｃ．ピロリジン、１−[(３−ヒドロキシ−１−アダマンチル)アミノ]アセチル−２−シアノ−、(Ｓ)
ＣＨ_２Ｃｌ_２（６８.０mL）中のタイトルＡの化合物（１−アミノアダマンタン−３−オール）（５.８０ｇ、３４.７mmol）の不均一な溶液に、Ｋ_２ＣＯ_３ ９.６ｇ（６９mmol）を加える。次いで、この不均一な混合物を氷水浴で冷却して、ＣＨ_２Ｃｌ_２ ２５.０mLに溶解したタイトルＢの化合物（１−クロロアセチル−２−シアノピロリジン）３.０ｇ（１７mmol）の溶液を３０分間かけて滴加する。得られた混合物を０℃で２時間撹拌して、室温で６日間撹拌する。次いで、その反応物を濃縮して、黄色のペースト状物質を得て、これを、二次イオン質量分析計（ＳＩＭＳ）／バイオタージ社(Biotage)のフラッシュクロマトグラフィーシステムおよび溶離液として塩化メチレン中のメタノールの７％ 溶液を使用するシリカゲルで精製して、タイトル化合物を白色の結晶性固形物質（融点１３８℃−１４０℃、^１３Ｃ ＮＭＲ（ppm）＝１１９.５９）として遊離塩基型で得る。

Ａ．Ｄ．ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７（ビルダグリプチンのＯ−グルクロニド）およびＮＶＰ−ＢＲＵ５６３（ビルダグリプチンの標識化Ｏ−グルクロニド）の生体触媒合成
ラット肝ホモジネートの触媒下でのＮＶＰ−ＬＡＦ２３７の酵素的グルクロン酸抱合の反応スキームを図４−１に示す。

３．１．ラット肝ホモジネートの調製
凍結させたラット肝臓の１５ｇ片２つおよび１１ｇ片１つを解凍して、小片に切り分けた。０.５体積相当の氷冷０.９％ ＮaＣl溶液を各々の肝臓片に加えて、ディスポミックス(Dispomix)ブレンダーで混合した後、氷水で冷却しながら、テフロンピスティル(pistil)を１００％の撹拌機スピードで上下に３回動かすことにより、組織を“ポッターＳ(Potter S)”組織ホモジナイザー（ブラウンバイオテック社(Braun Biotech Inc.)、メルスンゲン、ドイツ連邦共和国）でホモジナイズした。そのホモジネートを最終重量８１ｇまで満たして、ベックマンコールター社(Beckmann Coulter)のＪＡ−１０ローターを備えた遠心分離機（フラトン、カリフォルニア州、アメリカ合衆国）型アバンティ(Avanti)Ｊ−ＨＣにおいて１０,０００rpm（＝１７,０００×ｇ）にて４−６℃で３０分間遠心分離した。上澄みは、酵素源として機能した。

４．２．調製規模での生物変換
ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７（ビルダグリプチン）の３４０mg規模でのグルクロン酸抱合条件は、ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７ ５mＭ、ＵＤＰ−グルクロン酸塩（ヤマサ醤油株式会社(Yamasa Co.)、東京都、日本国）２０mＭ、ＭgＣl_２ ２０mＭ、ＨＥＰＥＳ pＨ ８.５ １６０mＭ、ラット肝ホモジネート ２０％ ｖ／ｖ、総体積２２４ml、３７℃で５時間インキュベーション、またさらに３０℃で１４時間インキュベーションであった。その反応を、各々、反応混合物２０mlで満たした５０mlのヌンク社(Nunc)のチューブで行い、これを振盪半径５cmの微生物学的実験用振盪機で１７０rpmにて振盪した。

アセトニトリル２２４mlを加えて、２０℃で１０分間混合することにより、その調製反応を停止させた。８０００rpm（ローター ＪＡ−１０）で１５分間遠心分離した後、ペレットを脱イオン水中の５０％ ｖ／ｖ アセトニトリル５０mlに懸濁させて、再び遠心分離した。合わせた上澄みを減圧下に２５℃で５０mlまで濃縮した。その混濁した濃縮物を５０００rpmで遠心分離して、上澄みをガラス繊維に通して濾過した後、それを分取ＨＰＬＣにかけた。

[^１３Ｃ_５ ^１５Ｎ]標識化ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７（５０mg規模）のグルクロン酸抱合に関して、生体内変換条件は、ＵＤＰ−グルクロン酸塩の濃度が８０mＭであり、ラット肝ホモジネートの濃度が３０％ ｖ／ｖであり、ヌンク社(Nunc)のチューブの充填量が１６.５mlであり、総体積が３３mlであり、反応時間が４時間であり、そして振盪速度が２００rpmであったことを除き、３４０mg規模でのＮＶＰ−ＬＡＦ２３７に関するものと同じであった。

各々のチューブにアセトニトリル１６.５mlを加え、氷上で１５分間インキュベーションした後、混合することにより、その反応を停止させた。１７,０００rpm（ローター ＪＡ−１０）で１５分間遠心分離した後、沈降物を脱イオン水中の５０％ ｖ／ｖ アセトニトリル２０mlに再懸濁させて、再び遠心分離した。合わせた上澄みを減圧下に３０℃で１０mlまで濃縮し、最終体積２５mlまで再び希釈して、最終清澄化のために遠心分離した。ペレットを脱イオン水５mlで再懸濁させて、遠心分離した後、後者２つの上澄みを合わせて、分取ＨＰＬＣにかけた。

変換の測定／分析用ＨＰＬＣ−ＤＡＤ：ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７の３４０mgバッチの１９時間試料５０μlおよび[^１３Ｃ_５ ^１５Ｎ]標識化ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７が入ったバッチの４時間試料２５μlを、各々、水中の５０％ アセトニトリル２００μlと混合して、シグマ社(Sigma)の４Ｋ１５Ｃ 冷凍遠心分離機で遠心分離した。上澄みを分析用ＲＰ_１６−ＨＰＬＣ−ＤＡＤ（アジレントテクノロジー社(Agilent Technologies)、バーゼル、スイス連邦製のＨＰＬＣ−ＤＡＤ １１００シリーズ；クロモリス(Chromolith) パフォーマンス ＲＰ−１８ｅ １００×４.６mm型のクロモリス(Chromolith) ガードカートリッジ ＲＰ−１８ｅ ５×４.６mm（メルク社(Merck)）との２連結カラム；流量２ml／分；移動相Ａ：３mＭ 水性Ｈ_３ＰＯ_４、移動相Ｂ：アセトニトリル；５分で３％から１５％ Ｂまでの勾配；２００−４００nmでのＤＡＤ検出）により分析した。変換は、グルクロニドおよびＮＶＰ−ＬＡＦ２３７の２０５nmでのＵＶ−吸収ピーク領域に基づいた。

５．Ｅ．代謝産物の精製
ａ）ａ）ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸ−２
生物変換された原材料の一部（５mlまたは約１０％）をバッチ ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸ−２の調製に使用した。この体積に、水性１０mＭ ＮＨ_４Ａc ３５mlおよびメタノール８mlを加えた。そのpＨを希酢酸で７に調節した。次いで、この混合物を分取液体クロマトグラフィーのための注入溶液として使用した。

その分取液体クロマトグラフィー−質量分析システムは、２５２５ ポンプ、２７６７ サンプルマネージャー、２９９６ フォトダイオード検出器、５１５ 補給ポンプ、ＺＱ２０００ 質量分析計、並びにマスリンクス(MassLynx)４.０およびフラクションリンクス(FractionLynx)４.０ ソフトウェアを備えた、ウォーターズ社(Waters)の自動精製システム（ウォーターズ社(Waters Corp.)、ミルフォード、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国）で構成されていた。

アトランティス(Atlantis) dＣ１８、５μm、１９mm×１００mm カラム（ウォーターズ社(Waters)）を使用した；流量２０ml／分；移動相Ａ：水性１０mＭ ＮＨ_４Ａc、pＨ ７.０；移動相Ｂ：ＣＨ_３ＣＮ／ＣＨ_３ＯＨ ４：１、１０mＭ ＮＨ_４Ａc；勾配プログラム：０分 ５％ Ｂ；２分 ５％ Ｂ；７分 ２０％ Ｂ；７.１−１２分 ９５％ Ｂ；１２.１−１４分 ５％ Ｂ；注入量 １−５ml。カラム流出物を分け、ごく一部を補給液 ２−プロパノール／Ｈ_２Ｏ／ＨＣＯＯＨ ４００：１００：１とインライン混合して、質量分析計のイオン源へと導入した；残りを２００−６００nmで記録するＤＡＤ検出器に入れた後、画分収集のためのサンプルマネージャーに入れた。

その質量分析計は、正のＥＳＩモードで使用されるＥＳＣiインターフェースを備えていた。３kＶのキャピラリー電圧および３０Ｖのコーン電圧を適用した；質量範囲 ２５０−５５０ダルトン(Ｄa)。

目的画分を５.３−６.７分の時間基準で集めた。１２回のＨＰＬＣ操作から得られた目的画分を合わせ、有機溶媒を減圧下に３０℃で除去して、残りの溶液を−８０℃および０.２ミリバール(mbar)で凍結乾燥させて、ほぼ無色の凍結乾燥物１５mgを得た。

純度をＨＰＬＣ−ＤＡＤおよびＨＰＬＣ−ＭＳにより決定した（２.２.２節を参照。）：塩（酢酸アンモニウム）および水を除けば、バッチ ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸ−２は、＞９７％の純度を有していた。

ｂ）ｂ）ＮＶＰ−ＢＲＵ５６３−ＮＸ−１（安定な標識化グルクロニド）
等体積の２０mＭ ＮＨ_４Ａc溶液を水性抽出物に加えて、ＮＨ_４Ａc濃度を１０mＭとした。この混合物を希酢酸でpＨ ７.０に調節した後、分取液体クロマトグラフィーのための注入溶液として使用した。
その分取液体クロマトグラフィー−質量分析システムを２.１.３.１に記載した。

アトランティス分取(Atlantis Prep) dＣ１８ ＯＢＤ、５μm、３０mm×１５０mm カラム（ウォーターズ社(Waters)）を使用した；流量４０ml／分；移動相Ａ：水性１０mＭ ＮＨ_４Ａc；移動相Ｂ：ＣＨ_３ＣＮ／ＣＨ_３ＯＨ ４：１＋１０mＭ ＮＨ_４Ａc、pＨ ７.０；勾配プログラム：０分 ５％ Ｂ；２分 ５％ Ｂ；７分 ２０％ Ｂ；７.１−１２分 ９５％ Ｂ；１２.１−１４分 ５％ Ｂ；注入量 ２−６ml。カラム流出物を２.１.３.１に記載した方法と同じ方法で分けた。

その質量分析計は、正のＥＳＩモードで使用されるＥＳＣiインターフェースを備えていた。３kＶのキャピラリー電圧および３０Ｖのコーン電圧を適用した；質量範囲 １００−１０００ダルトン(Ｄa)。

目的画分を７.０−９.０分の時間基準で集めた。１２回のＨＰＬＣ操作から得られた目的画分を合わせ、有機溶媒を減圧下に３０℃で除去して、残りの溶液を−８０℃および０.２ミリバール(mbar)で凍結乾燥させて、ほぼ無色の凍結乾燥物６３mgを得た。

純度をＨＰＬＣ−ＤＡＤおよびＨＰＬＣ−ＭＳにより決定した（２.２.２節を参照。）：塩（酢酸アンモニウム）および水を除けば、バッチ ＮＶＰ−ＢＲＵ５６３−ＮＸ−１は、＞９８％の純度を有していた。

Ｂ．Ｆ．構造同定に関する分析論
１．ＮＭＲ分光法
化合物をＤＭＳＯ−ｄ_６ ５μlに溶解して、直径１mmのＮＭＲチューブを満たした。ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７から、１Ｄ−^１Ｈ スペクトルおよび２Ｄ 等核スペクトルおよび異核スペクトル（ＣＯＳＹ、ＨＳＱＣ、ＨＭＢＣ、ＲＯＥＳＹ）を得た。ＮＶＰ−ＢＲＵ５６３から、^１Ｈ スペクトルを測定した。^１Ｈ｛^１３Ｃ、^１５Ｎ｝マイクロリットルプローブ(Microliterprobe)を使用して、全てのスペクトルをブルカー社(Bruker)のＤＲＸ６００ 分光計にて３００°Ｋで記録した。ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７から、５mmの^１３Ｃ｛^１Ｈ｝クライオプローブ(Cryoprobe)を使用して、^１３Ｃ スペクトルをブルカー社(BRUKER)のＤＲＸ６００ 分光計にて測定した。

２．２．ＨＰＬＣ−質量分析法
その液体クロマトグラフィーは、ウォーターズ社(Waters)のアキュイティ(Acquity)２９９６ ＰＤＡ 検出器を備えた、ウォーターズ社(Waters)のＵＰＬＣ アキュイティ(Acquity)（ウォーターズ社(Waters)）で構成されていた。カラム：アキュイティ(Acquity) ＵＰＬＣ ＢＥＨ Ｃ１８；１.７μm；１.０×１５０mm（ウォーターズ社(Waters)）；流量０.１ml／分；溶離液Ａ：Ｈ_２Ｏ／ＴＦＡ １００：０.１；溶離液Ｂ：アセトニトリル／ＴＦＡ １００：０.１；勾配：０分 ５％ Ｂ；１分 ５％ Ｂ；１１分 ４０％ Ｂ；１３−１６分 ９５％ Ｂ；３０℃；ＵＶ−検出：２００−３５０nm、分解能 ２.４nm；注入量 ５μl。物質を約０.３mg／mlの濃度で水／アセトニトリル ９：１に溶解した。純度の評価を所望のピークの領域−％としてＵＶにより２１０nmで行った。カラム流出物をＭＳのイオン源へと直接導入した。

正のモードでのエレクトロスプレーインターフェイスを備えたＴＳＱ クウォンタム(Quantum) ＡＭ 質量分析計（サーモ社(Thermo)、サンホゼ、カリフォルニア州、アメリカ合衆国）を使用した。それをエクスカリバー(Xcalibur) ソフトウェア バージョン２.０で操作した。２５単位のシースガス設定および５単位の補助ガスを使用して、３kＶのスプレー電圧を適用した。加熱した金属キャピラリーを３００℃で維持した；質量範囲 ２００〜８００ダルトン(Ｄa)。ＭＳ／ＭＳ パラメーター：衝突ガス １.５ミリトル(mTorr) アルゴン；衝突エネルギー ２５Ｖ。

II．Ｇ．結果
Ａ．１．生体触媒合成
２つの調製反応に関して、分析用ＨＰＬＣ−ＤＡＤは、次の変換値を与えた：ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７ ３４０mgが入ったバッチに関しては６６％、そして[^１３Ｃ_５ ^１５Ｎ]標識化ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７（５０mg）が入ったバッチに関しては９４％。

２．グルクロニドの精製
先の節に記載したように、Ｏ−グルクロニド ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸ−２ １５mgを、生体内変換で得られた水性培養抽出物５mlから分取ＨＰＬＣ−ＭＳにより得た。ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７ ３４０mgでの全調製反応から、ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸの４つのバッチ（ＮＸ−１〜ＮＸ−４）を、総量２９５mgのＯ−グルクロニドと共に単離した。

３．構造解明
ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸ−２の質量スペクトルは、４８０.１の[Ｍ＋Ｈ]^＋を示し、分子量が４７９であることを示唆する。これは、ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７のグルクロニドと一致する。ＭＳ／ＭＳ プロダクトイオンスペクトルは、グルクロニド（ｍ／ｚ ３０４）、さらにはまた、グルクロン酸（ｍ／ｚ ２８６）の喪失を示す。

ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸ−２の構造（図３−１）は、ＮＭＲ分光法に基づいて明確に解明された。ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７と比較してのＮＶＰ−ＢＱＳ８６７のＮＭＲスペクトルにおける主要な相違は、主に、グルクロニド部分から得られる共鳴である。グルクロン酸のアノマー１'共鳴の^１Ｈ シフト（４.４２ppm）および^１３Ｃ シフト（９６.４ppm）は、後者が酸素に結合して、窒素には結合していないことを示した。Ｈ−１'からＣ−３までのＨＭＢＣ相関、並びにＨ−１'からＨ−２およびＨ−４までのＲＯＥＳＹ相関は、図３−１に示す構造を明確に裏付けた。

全てのＮＭＲデータおよび相関の解釈は、ＭＳ結果（分子量(ＭＷ)＝４７９、ｍ／ｚ ＭＨ^＋＝４８０.１）と一致する１つの構造のみをもたらす。全ての^１Ｈ シフトおよび^１３Ｃ シフト、並びに関連のある等核相関および異核相関の要約を表３−１に示す。

[Ｕ−ピロリジン、シアノ−^１３Ｃ_５、ピロリジン−^１５Ｎ]標識化ＮＶＰ−ＬＡＦ２３７から生合成された化合物 ＮＶＰ−ＢＲＵ５６３−ＮＸ−３は、安定な標識に関して予期される例外と共に、ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸと同一のスペクトル特性を示した：４８６.２のＭＨ^＋は、ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７−ＮＸのものより６ダルトン(Ｄa)高く、またＭＳ／ＭＳ プロダクトイオンスペクトルにおいて、幾つかのフラグメントもまたシフトする。

（ｉ）図II−１ 表３−１において使用するナンバリングスキームでのＮＶＰ−ＢＱＳ８６７の構造および^１Ｈ スペクトル

別の好ましい化合物は、

である。
最も好ましい態様において、図ＢＢの化合物は、実質的には純粋な形態である。

このＯ−グルクロニド化合物（図ＢＢ）は、本明細書中に記載する工程を適応させることにより得ることができる。Ｒ'が−ＯＨであるものから出発化合物を得るための工程は、特許出願 ＷＯ ０１／０６８６０３またはＷＯ ０５／０９５３３９に記載されている。

塩は、ＨＣＬ塩であり得る。(ＨＣl)＝塩酸塩として。最終生成物のＨＣl塩は全て、溶液が明らかに酸性となるまで、ＨＣlガスをテトラヒドロフラン中の遊離塩基の０.１モル濃度溶液に通した後、その溶媒を除去する（回転蒸発器(rotovap)／ポンプ）ことにより製造される。

アミノ−アダマンタン出発物質は、文献(literatrue)において知られており、または次のように製造することができる。

３,５−ジメチル−１−アダマンチルアミンの製造は、J. Med. Chem,25;1;1982;51-56に記載されている。

３−エチル−１−アダマンチルアミンの製造は、J. Med. Chem,25;1;1982;51-56に記載されている。

３−メトキシ−１−アダマンチルアミンは、次のように製造することができる：
テトラヒドロフラン１５.０ml中の水素化カリウム（０.６８０gm；５.９５mmol）の、撹拌されて、氷水で冷やした懸濁液に、１−アミノアダマンタン−３−オール（１.００ｇ；５.９５mmol）およびテトラヒドロフラン１５.０mlの混合物を３０分かけて滴加する。次いで、得られた混合物をさらに３０分間撹拌した後、ヨードメタン（０.３７０ml；５.９５mmol）を１分かけて滴加する。次いで、得られた乳白色の反応物を室温で１８時間撹拌する。次いで、その混合物を塩化メチレン５０mlで希釈して、濾過して、無機不純物を除去する。次いで、濾液を濃縮して、二次イオン質量分析計（ＳＩＭＳ）／バイオタージ(Biotage)装置、並びに溶離液として塩化メチレン中の１９％ メタノールおよび１％ 水酸化アンモニウムを使用するシリカゲルで精製して、３−メトキシ−１−アダマンチルアミンを不透明な油状物質として得る。

３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの合成：
テトラヒドロフラン１５０ml中の１−アミノアダマンタン−３−オール（５.００ｇ；３０.０mmol）および炭酸カリウム（６.２０ｇ；４５mmol）の混合物に、クロロギ酸ベンジル（４.７０ｇ、３３.０mmol）を１０分間かけて滴下方式で加える。次いで、その混合物を室温で２時間撹拌した後、酢酸エチルと水との間に分配する。次いで、生成物を酢酸エチルへと抽出して、水層を酢酸エチル（１００ml）で２回洗浄する。次いで、合わせた有機層を、２Ｎ 水酸化ナトリウム水溶液１００ml、水およびブラインで連続的に洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させ、濾過して、濃縮して（回転蒸発器(rotovap)／ポンプ）、１−ベンジルカルバモイルアダマンタン−３−オールを収率８５％で白色の固形物質として得る。

塩化メチレン３０ml中の１−ベンジルカルバモイルアダマンタン−３−オール（１.００ｇ：３.３２mmol）およびtert−ブチルイソシアネート（３８０μl、３.３２mmol）の透明な溶液に、塩化トリメチルシリル（２０.０μl、０.１７mmol）を注射器で加える。次いで、この反応物を室温で１８時間撹拌し、濃縮して（回転蒸発器(rotovap)）、二次イオン質量分析計（ＳＩＭＳ）／バイオタージ(Biotage)装置、並びに溶離液としてヘキサン中の２０％ 酢酸エチルを使用するシリカゲルで精製して、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−ベンジルカルバモイルアダマンタンを定量的収率で白色の固形物質として得る。

１リットルのパー(parr)の水素化フラスコにおいて、エタノール（１５０ml）中の３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−ベンジルカルバモイルアダマンタン（１.５０ｇ、３.７５mmol）および１０％ パラジウム炭素（４００mg）の混合物に、水素(５０psi)を加える。次いで、この不透明な黒色の混合物を２４時間振盪する。次いで、その反応物をセライトに通して濾過して、パラジウム触媒を除去して、濃縮して（回転蒸発器(rotovap)／ポンプ）、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンを収率９９％で透明な油状物質として得る。

４−[[[(メトキシフェニル)アミノ]カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの合成に関する手順は、第二段階において、tert−ブチルイソシアネートを等量の４−メトキシフェニルイソシアネートに代替し、塩化メチレンの代わりに１,２−ジクロロエタンを溶媒として使用し、そして反応物を５０℃で１８時間撹拌することを除き、基本的には、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの手順である。最終アミン中間体を油状物質として得る。

３−[[(フェニルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの合成に関する手順は、第二段階において、tert−ブチルイソシアネートを等量のイソシアン酸フェニルに代替し、塩化メチレンの代わりに１,２−ジクロロエタンを溶媒として使用し、そして反応物を５０℃で１８時間撹拌することを除き、基本的には、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの手順である。最終アミン中間体を透明な油状物質として得る。

２−アミノアダマンタン−５−オールを製造するための手順は、出発物質が１−アミノアダマンタンの代わりに２−アミノアダマンタンであることを除き、実施例１と同じである。

求核試薬である３−アセトキシ−１−アミノアダマンタンの合成に関する手順は、１.２当量の塩化アセチル、３.０当量のピリジン、０.１当量の４−ジメチルアミノピリジンおよび１,２−ジクロロメタンを使用し、これらを全て室温で２４時間撹拌する、１−ベンジルカルバモイルアダマンタン−３−オールの標準的アシル化を除き、基本的には、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの手順である。最終アミンを濃厚な油状物質として得る。

３−[[[(ジイソプロピル)アミノ]カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの合成に関する手順は、第二段階において、tert−ブチルイソシアネートを等量の塩化ジイソプロピルカルバモイルに代替し、塩化メチレンの代わりに１,２−ジクロロエタンを溶媒として使用し、そして反応物を８５℃で１８時間撹拌することを除き、基本的には、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの手順である。最終アミン中間体を灰色の固形物質として得る。

３−[[[(シクロヘキシル)アミノ]カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの合成に関する手順は、第二段階において、tert−ブチルイソシアネートを等量のイソシアン酸シクロヘキシルに代替し、塩化メチレンの代わりに１,２−ジクロロエタンを溶媒として使用し、そして反応物を５０℃で１８時間撹拌することを除き、基本的には、３−[[(tert−ブチルアミノ)カルボニル]オキシ]−１−アミノアダマンタンの手順である。最終アミン中間体を濃厚で透明な油状物質として得る。

３−エトキシ−１−アダマンチルアミン（透明な油状物質）を製造するための手順は、ヨードメタンの代わりにヨードエタン（１.３当量）を使用することを除き、３−メトキシ−１−アダマンチルアミンに関するものと同じである。

製剤例：
活性成分であるＮＶＰ−ＢＱＳ８６７を各々５０mg含む錠剤は、次のように製造することができる：

活性成分をラクトースおよびジャガイモデンプン２９２ｇと混合して、ゼラチンのアルコール溶液を使用して、その混合物を湿らせて、篩を用いて造粒する。乾燥させた後、残りのジャガイモデンプン、タルク、ステアリン酸マグネシウムおよび高度に分散するシリカを混合して、その混合物を圧縮して、重量が各々１４５.０mgで活性成分含有量が５０.０mgの錠剤を得て、所望により、これに、その用量をより細かく調節するための割線を付けることができる。

III．実施例２：生物学的実験
略語リスト

IV．物質および方法
Ａ．Ａ．器具使用
タンパク質およびペプチドを含む溶液は全て、シリコン処理したチューブ（ライフシステムズデザイン(Life Systems Design)、メレンシュヴァント、スイス連邦）で扱った。サイビ−ウェル(CyBi-Well) ９６−チャンネルピペッター（サイビオ社(CyBio AG)、イェーナ、ドイツ連邦共和国）を用いて、化合物溶液、さらにはまた、酵素および基質溶液を３８４ウェルのプレート（ブラッククリニプレート(black Cliniplate)；カタログ番号 ９５０４００２０ ラブシステムズ・オユ(Labsystems Oy)、フィンランド共和国）に移した。

１．１．ＦＩ測定のための器具使用
色素としてＡＭＣを用いる蛍光強度（ＦＩ）測定に関して、ウルトラエボルーション(Ultra Evolution)リーダー（テカン社(TECAN)、メンネドルフ、スイス連邦）を使用した。その装置は、蛍光励起および発光捕捉のための、各々、３５０nm（バンド幅２０nm）および５００nm（バンド幅２５nm）のバンドパスフィルターの組み合わせを備えていた。シグナル：バックグラウンド比を増加させるために、適当なダイクロイックミラーを使用した。フィルターおよびダイクロイックミラーは全て、テカン社(TECAN)から購入した。

Ｒh１１０色素を使用するＦＩ測定は、サフィイア２(Safire2)リーダー（テカン社(TECAN)、メンネドルフ、スイス連邦）を用いて行った。そのサフィイア２(Safire2)は、モノクロメーター(monochomator)を搭載した装置であって、蛍光励起および発光捕捉のために、各々、４８５nmおよび５３５nmの波長を採用した。励起と発光パスの両方において、バンド幅を２０nmに設定した。

各々のウェルにおけるフルオロフォアを１回の測定につき３回のフラッシュにより励起した。

２．平均データからのＩＣ _５０ 値の計算
個別のアッセイ操作から得られたデータを平均して、オリジン(Origin) ７.５ＳＲ６（オリジンラブ社((OriginLab Corporation)、ノーサンプトン、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国）のプログラムを使用してプロットした。オリジン(Origin)の内蔵型の非線形回帰ルーチンを使用して、平均したデータを“ロジスティック”関数に当てはめた。
ｙ＝Ａ２＋(Ａ１−Ａ２)／(１＋(ｘ／ＩＣ_５０)^ｐ) （方程式１）
［式中、ｙは、阻害剤濃度ｘでの％阻害である。Ａ１は、最低阻害値、すなわち、０％であり、そしてＡ２は、最大阻害値、すなわち、１００％である。指数ｐは、ヒル(Hill)係数である。］

Ｂ．ＩＣ _５０ 値の決定
ＩＣ_５０値の決定に関して、アッセイを３８４ウェルのプレートにて室温で行った。最終アッセイ体積は全て、３０μlであった。試験化合物を９０％（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／水に溶解して、所望のアッセイ濃度の３倍となるまで水（０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳを含む）中に希釈した。各々のアッセイに関して、１ウェルにつき水／ＣＨＡＰＳ（±試験化合物）１０μlを加えた後、プロテアーゼ溶液（アッセイ緩衝液で希釈した；最終アッセイ濃度に関しては、アッセイ条件の節を参照。）１０μlを加えた。室温で１時間インキュベーションした後、基質溶液（最終濃度に関しては、アッセイ条件の節を参照。）１０μlの添加により、その反応を開始させた。１１の最終化合物濃度は、０.９nＭ、３nＭ、９nＭ、３０nＭ、９０nＭ、３００nＭ、９００nＭ、３μＭ、９μＭ、３０μＭおよび９０μＭ、または３nＭ、１０nＭ、３０nＭ、１００nＭ、３００nＭ、１μＭ、３μＭ、１０μＭ、３０μＭ、１００μＭおよび３００μＭのいずれかであった。酵素活性に対する該化合物の効果を線形プログレス曲線から得て、２つの読み取り（１つ目は、基質添加直後（ｔ＝０分）に取ったもの、そして２つ目は、１時間後（ｔ＝６０分）に取ったもの）から決定した。非線形回帰分析ソフトウェア（エックスエルフィット((XLfit)、バージョン４.０；アイディービジネスソリューション社(ID Business Solution Ltd)、ギルドフォード、サリー州、イギリス）を使用して、ＩＣ_５０値を阻害 対 阻害剤濃度のパーセンテージのプロットから計算した。

Ｃ．アッセイ条件
酵素、基質および緩衝液に関する条件は全て、個々のアッセイに関して以下に記載する。

１．ＤＰＰ−２（ジペプチジルペプチダーゼ２）
酵素：ヒトＤＰＰ−２被覆アミノ酸 ３０−４９２；昆虫細胞（バキュロウイルス発現系）において発現され、またそれから精製された。
基質：Ｎle−Ｐro−ＡＭＣ、バイオシンタン社(Biosyntan)（www.biosyntan.de）から購入した、製品番号 ４５７２。
酵素濃度：０.０３nＭ。
基質濃度：２μＭ。
アッセイ緩衝液：１００mＭ クエン酸ナトリウム、pＨ ５.５、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ。

２．ＤＰＰ−IV（ジペプチジルペプチダーゼIV）
酵素：ヒトＤＰＰ−IV被覆アミノ酸 ３９−７６６；昆虫細胞（バキュロウイルス発現系）において発現され、またそれから精製された。
基質：Ｇly−Ｐro−ＡＭＣ、バッケム社(Bachem)（www.bachem.com）から購入した、カタログ番号 Ｉ−１２２５。
酵素濃度：０.０１nＭ。
基質濃度：１０μＭ。
アッセイ緩衝液：２５mＭ トリス(Tris)、pＨ ７.４、１４０mＭ ＮaＣl、１０mＭ ＫＣl、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ。

３．ヒト血漿ＤＰＰ−IV（ヒト血漿中の内因性ジペプチジルペプチダーゼIV）
酵素：男性ドナーの血漿試料から得られた内因性ヒトＤＰＰ−IV。
基質：(Ｈ−Ａla−Ｐro)_２−Ｒh１１０、社内合成。
酵素濃度：約５nＭ。
基質濃度：１０μＭ。
アッセイ溶液：ヒト血漿、緩衝液（２５mＭ トリス(Tris)、pＨ ７.４、１４０mＭ ＮaＣl、１０mＭ ＫＣl、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ）で血漿含有量５０％まで希釈した。

４．ＤＰＰ−８（ジペプチジルペプチダーゼ８）
酵素：ヒトＤＰＰ−８被覆アミノ酸 １−８８２；昆虫細胞（バキュロウイルス発現系）において発現され、またそれから精製された。
基質：Ｇly−Ｐro−ＡＭＣ、バッケム社(Bachem)（www.bachem.com）から購入した、カタログ番号 Ｉ−１２２５。
酵素濃度：０.０５nＭ。
基質濃度：１０μＭ。
アッセイ緩衝液：２５mＭ トリス(Tris)、pＨ ７.４、１４０mＭ ＮaＣl、１０mＭ ＫＣl、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ。

５．ＤＰＰ−９（ジペプチジルペプチダーゼ９）
酵素：ヒトＤＰＰ−９被覆アミノ酸 １−８６３；ピキアパストリス(Pichia pastoris)において発現され、またそれから精製された。
基質：Ｇly−Ｐro−ＡＭＣ、バッケム社(Bachem)（www.bachem.com）から購入した、カタログ番号 Ｉ−１２２５。
酵素濃度：１nＭ。
基質濃度：１０μＭ。
アッセイ緩衝液：２５mＭ トリス(Tris)、pＨ ７.４、１４０mＭ ＮaＣl、１０mＭ ＫＣl、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ。

６．ＦＡＰ（線維芽細胞活性化タンパク質、α）
酵素：細胞質ドメインおよび膜貫通(transmebrane)ドメインを除く、ヒトＦＡＰα被覆アミノ酸 ２７−７６０；昆虫細胞（バキュロウイルス発現系）において発現され、またそれから精製された。
基質：Ｚ−Ｇly−Ｐro−ＡＭＣ、バッケム社(Bachem)（www.bachem.com）から購入した、カタログ番号 Ｉ−１１４５。
酵素濃度：０.１nＭ。
基質濃度：８μＭ。
アッセイ緩衝液：１００mＭ トリス(Tris)、pＨ ７.４、１００mＭ ＮaＣl、１mＭ ＥＤＴＡ、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ。

７．ＰＥＰ（プロリル−エンドペプチダーゼ）
酵素：ヒトＰＥＰ被覆アミノ酸 １−７１０；ピキアパストリス(Pichia pastoris)において発現され、またそれから精製された。
基質：Ｚ−Ｇly−Ｐro−ＡＭＣ、バッケム社(Bachem)（www.bachem.com）から購入した、カタログ番号 Ｉ−１１４５。
酵素濃度：０.０３nＭ。
基質濃度：１０μＭ。
アッセイ緩衝液：１００mＭ トリス(Tris)、pＨ ７.４、１００mＭ ＮaＣl、１mＭ ＥＤＴＡ、０.０５％（ｗ／ｖ）ＣＨＡＰＳ、０.１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ。

Ｖ．Ｄ．結果
化合物 ＮＶＰ−ＢＱＳ８６７に関する全てのＩＣ_５０測定結果を以下の表３−１〜３−７に要約する。hＤＰＰ−IV、ヒト血漿中の内因性ＤＰＰ−IV、hＤＰＰ−８、hＤＰＰ−９、hＦＡＰおよびhＰＥＰに関して。

Claims (11)

1. 遊離型または薬学的に許容され得る酸付加塩の形態での、式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）：
   

   

   ［式中、
   Ｒ'は、
   

   

   を表し；そして
   Ｒ''は、水素、ヒドロキシ、Ｃ_１−Ｃ_７アルコキシ、Ｃ_１−Ｃ_８アルカノイルオキシ、またはＲ_５Ｒ_４Ｎ−ＣＯ−Ｏ−{ここで、Ｒ_４およびＲ_５は独立して、置換されていないか、またはＣ_１−Ｃ_７アルキル、Ｃ_１−Ｃ_７アルコキシ、ハロゲンおよびトリフルオロメチルから選択される置換基で置換されているＣ_１−Ｃ_７アルキルまたはフェニルであり、またここで、Ｒ_４はさらに水素であるか；またはＲ_４およびＲ_５は一緒になってＣ_３−Ｃ_６アルキレンを表す。}を表す。］
   の化合物。
2. Ｒ''が水素を表す、請求項１に記載の式（ＩＡ）、（ＩＢ）、（ＸＡ）、（ＸＢ）、（ＹＡ）または（ＹＢ）の化合物。
3. 

   よりなる群、または、その薬学的に許容され得る酸付加塩から選択される、請求項１に記載の化合物。
4. 

   またはその薬学的に許容され得る塩である、請求項１に記載の化合物。
5. ジペプチジルペプチダーゼ−IVを阻害するための薬物の製造のための、請求項１〜４のいずれかに記載の化合物、もしくはその薬学的に許容され得る酸付加塩の使用。
6. 該薬物を、ジペプチジルペプチダーゼ−IVにより媒介される状態を処置するために使用する、請求項５に記載の使用。
7. ジペプチジルペプチダーゼ−IVにより媒介される状態がインスリン非依存性糖尿病である、請求項６に記載の使用。
8. 少なくとも１つの薬学的に許容され得る担体または希釈剤と共に、遊離型または薬学的に許容され得る酸付加塩の形態での、請求項１〜４のいずれかに記載の化合物を含む医薬組成物。
9. ジペプチジルペプチダーゼ−IVを阻害するための、請求項８に記載の医薬組成物。
10. ジペプチジルペプチダーゼ−IVにより媒介される状態を処置するための、請求項８に記載の医薬組成物。
11. ジペプチジルペプチダーゼ−IVにより媒介される状態がインスリン非依存性糖尿病である、請求項１０に記載の医薬組成物。