JP5398004B2

JP5398004B2 - 改変型グルコース脱水素酵素遺伝子

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Publication number: JP5398004B2
Application number: JP2009548079A
Authority: JP
Inventors: 通済本田; 涼竹中; 史直小林
Original assignee: Ikeda Food Research Co Ltd
Current assignee: Ikeda Food Research Co Ltd
Priority date: 2007-12-28
Filing date: 2008-12-26
Publication date: 2014-01-29
Anticipated expiration: 2028-12-26
Also published as: US20100323378A1; JPWO2009084616A1; EP2241621B1; US8445221B2; CN101970656A; EP2241621A1; WO2009084616A1; EP2241621A4

Description

本発明は、フラビンアデニンジヌクレオチド（FAD）を補酵素とし、グルコースの１位の水酸基を脱水素（酸化）する反応を触媒する、FAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）に関する。より詳細には、改良された基質特異性を有する、改変型GLDポリペプチド、及び改変型GLDをコードするポリヌクレオチド、該酵素の製造方法、該酵素を使用することを特徴とするグルコースの測定方法、グルコース測定試薬組成物、並びにグルコース測定用のバイオセンサ等に関する。尚、本明細書において、特に断りがない限り、グルコース等の単糖類はＤ−体を意味する。

血中グルコース濃度は糖尿病の重要なマーカーである。従来、血中グルコース濃度の測定にはグルコース酸化酵素が用いられてきたが、グルコース酸化酵素は溶存酸素濃度の影響を受け、計測値に誤差が生じるため、近年、酸素の影響を受けないグルコース脱水素酵素も広く使用されている。

酸素の影響を受けない市販のグルコース脱水素酵素として、ピロロキノリンキノン（PQQ）を補酵素とするグルコース脱水素酵素（PQQ-GDH）が知られているが、従来のPQQ-GDHは、マルトースやガラクトース等、グルコース以外の糖類にも反応してしまうという欠点を有している。

これに対して、本発明者のグループは、FADを補酵素とする、新規な可溶性のGLDをアスペルギルス・テレウスFERM BP-08578株から見出し（特許文献１）、遺伝子のクローニングに成功した（特許文献２）。これらのGLDは、溶存酸素の影響を受けず、グルコースの１位の水酸基を酸化し、マルトースやガラクトースに対する作用性（酵素活性）が低い、というこれまでに無い優れた特性を有するものである。

また、特許文献３に開示されているPenicillium lilacinoechinulatum NBRC6231、Penicillium italicum NBRC32032、及びAspergillus oryzae TI株由来のグルコース脱水素酵素、あるいは特許文献４に開示されているAspergillus oryzae BB-56株由来のグルコース脱水素酵素もマルトースやガラクトースに対する作用性が低いことが示されている。

しかしながら、これらの従来のGLDは基質特異性には未だ改良すべき問題があった。

国際公開第2004/058958号パンフレット国際公開第2006/101239号パンフレット国際公開第2007/116710号パンフレット国際公開第2007/139013号パンフレット

従来知られているGLDはキシロースに作用するという欠点があり、キシロース吸収試験を実施中の患者については、実際の血糖値よりも高い値を示すため、使用しない旨の注意喚起もなされている。

従って、グルコースに対するより高い特異性を有するGLDに対するニーズがあり、これを提供することが本発明の解決すべき課題である。

本発明は、上記課題を解決し、グルコースに対する反応性及び基質認識性に優れる一方で、マルトース及びガラクトース、更にキシロースに対する作用性が低いという優れた特性を有する改変型GLDをコードする新規な遺伝子（ポリヌクレオチド）、該遺伝子により組換えられた形質転換細胞を用いる該酵素の製造方法、並びに、得られた該酵素を使用することを特徴とするグルコースの測定方法、グルコース測定試薬組成物、及びグルコース測定用のバイオセンサ等を提供することを目的とする。

本発明は以下の各態様に係るものである。

［態様１］配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列において、37, 69, 72, 73, 76, 78, 102, 217, 228, 240, 356, 407, 424, 437, 527及び530位のアミノ酸からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸残基における置換を含み、且つ、野生型GLDと比較してキシロース作用性／グルコース作用性が低下した改変型GLD。
［態様２］
野生型GLDと比較してキシロース作用性／グルコース作用性が０．８５倍以下に低下した、態様１記載の改変型GLD。
［態様３］
アミノ酸置換が、D72A、G73D、G73A、G73S、G73C、G73Q、G73W、G73Y、G73E、G73H、R102H、Y228H、V356A、及びP527L、並びに、S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I及びT530Aからなる群から選択される、態様１又は２記載の改変型GLD。
［態様４］
配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列において、N64D+R102H+L250Q、G73D、Y228H+A589T、K374Q+P527L、V356A、D72A+G210S、G73A、P527L、D72A、Y228H、G73C、G73H、R102H、D72A+G73D、G73S、G73Q、G73W、G73Y、及びG73E、並びに、S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I及びT530Aからなる群から選択されるアミノ酸置換を有する改変型GLD。
［態様５］
態様１ないし４のいずれか一項に記載の改変型GLDをコードするポリヌクレオチド。
［態様６］
配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドが配列番号２に示される塩基配列を有する、態様５記載のポリヌクレオチド。
［態様７］態様５又は６記載のポリヌクレオチドを保有する組換えベクター。
［態様８］態様７記載の組換えベクターを用いることによって作製された形質転換細胞。
［態様９］大腸菌又はアスペルギルス・オリゼである、態様８記載の形質転換細胞。
［態様１０］態様８又は９の形質転換細胞を培養し、得られた培養物から改変型GLDを採取することを特徴とする、改変型GLDの製造方法。
［態様１１］態様１ないし４のいずれか一項に記載の改変型GLD又は請求項１０記載の製造方法で得られた改変型GLDを使用することを特徴とする、グルコースの測定方法。
［態様１２］態様１ないし４のいずれか一項に記載の改変型GLD又は請求項１０記載の製造方法で得られた改変型GLDを含有することを特徴とする、グルコース測定試薬組成物。
［態様１３］態様１ないし４のいずれか一項に記載の変型GLD又は請求項１０記載の製造方法で得られた改変型GLDを使用することを特徴とする、グルコース測定用のバイオセンサ。

本発明のポリヌクレオチドを利用することにより、グルコースに対する基質認識性に優れ、しかもマルトースやキシロースに対する作用性が低いという優れた特性を有する改変型GLDを、例えば、遺伝子組換え技術により均質かつ大量に生産することが可能となる。

本発明の改変型GLDを用いて得られたグルコース測定のための検量線を示す。

本発明の改変型GLDは、以下の表１（アミノ酸一文字表記）の配列番号１（シグナルペプチドを含む）で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列において、37, 69, 72, 73, 76, 78, 102, 217, 228, 240, 356, 407, 424, 437, 527及び530位のアミノ酸からなる群から選択される少なくとも１つのアミノ酸残基における置換を含み、且つ、野生型GLDに対してキシロース作用性／グルコース作用性が低下していることを特徴とする。

上記のアミノ酸残基における置換の代表的な例として、D72A、G73D、G73A、G73S、G73C、G73Q、G73W、G73Y、G73E、G73H、R102H、Y228H、V356A、及びP527L、並びに、 S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I及びT530Aからなる群から選択されるアミノ酸置換を挙げることが出来る。

本発明の改変型GLDは、本明細書中で定義される「キシロース作用性／グルコース作用性」（％）が野生型GLDと比較して有意な値、例えば、少なくとも0.85倍以下、好ましくは0.5倍以下、より好ましくは0.3倍以下、更に好ましくは0.2倍以下に低下したキシロース作用性を有するものである。尚、キシロース作用性／グルコース作用性は、形質転換体の培養条件及び酵素活性の測定条件等によって変動するので、同一の条件下で野生型GLDと改変型GLDについてキシロース作用性／グルコース作用性（％）を測定して比較する必要がある。

更に、本発明の改変型GLDは、好ましくは、Ｄ−グルコースに対する酵素活性値を１００％とした場合、マルトースに対する酵素活性値（「マルトース作用性／グルコース作用性」ともいう）が５％以下、より好ましくは３％以下であり、Ｄ−ガラクトースに対する酵素活性値（「ガラクトース作用性／グルコース作用性」ともいう）が５％以下、より好ましくは３％以下という優れた特長を有するものである。

又、本発明の改変型GLDは、上記のアミノ酸置換に加えて、上記のように野生型GLDに対してキシロース作用性／グルコース作用性が低下している限り、配列番号１で示されるアミノ酸配列において、更に１個〜数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されていても良い。

本発明の改変型GLDの好適例は、実施例に具体的に記載されているように、配列番号１で示される野生型のGLDアミノ酸配列において、N64D+R102H+L250Q、G73D、Y228H+A589T、K374Q+P527L、V356A、D72A+G210S、G73A、P527L、D72A、Y228H、G73C、G73H、R102H、D72A+G73D、G73S、G73Q、G73W、G73Y、G73E、更に、S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I、及び、T530A並びにこれらの任意の組み合わせからなる群から選択されるアミノ酸置換を有する改変型GLDである。

本発明の改変型GLDをコードするポリヌクレオチドの一例として、配列番号１（表１）で示される野生型GLDのアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドとして配列番号２（表２）に示される塩基配列を有するものを挙げることが出来る。その他、同一のアミノ酸をコードする限り別のコドンが使用されていても良い。例えば、ポリヌクレオチドで形質転換させる宿主細胞の種類等に応じて使用コドンを適宜最適化することが出来る。

尚、本発明において、「ポリヌクレオチド」とは、プリン又はピリミジンが糖にβ-Ｎ-グリコシド結合したヌクレオシドのリン酸エステル（ＡＴＰ（アデノシン三リン酸）、ＧＴＰ（グアノシン三リン酸）、ＣＴＰ（シチジン三リン酸）、ＵＴＰ（ウリジン三リン酸）；又はｄＡＴＰ（デオキシアデノシン三リン酸）、ｄＧＴＰ（デオキシグアノシン三リン酸）、ｄＣＴＰ（デオキシシチジン三リン酸）、ｄＴＴＰ（デオキシチミジン三リン酸））が１００個以上結合した分子を言い、具体的には本発明の改変型GLDをコードする染色体ＤＮＡ（イントロンを含むＤＮＡ）、染色体ＤＮＡから転写されたｍＲＮＡ、ｍＲＮＡから合成されたｃＤＮＡ及び、それらを鋳型としてＰＣＲ増幅したポリヌクレオチドを含む。「オリゴヌクレオチド」とはヌクレオチドが２-９９個連結した分子を言う。また「ポリペプチド」とは、アミド結合（ペプチド結合）又は非天然の残基連結によって互いに結合した３０個以上のアミノ酸残基から構成された分子を意味し、さらには、これらに糖鎖が付加したものや、人工的に化学的修飾がなされたもの等も含む。又、本発明のポリヌクレオチドには、改変型GLDのシグナル配列をコードする塩基配列を形質転換細胞の種類等に応じて適宜含むことも出来る。

本発明のポリヌクレオチドは、当業者の公知の任意の方法で容易に調製することが可能である。例えば、本明細書の実施例に具体的に記載されているように、配列番号２に示された塩基配列を有するポリヌクレオチドを含むプラスミドから野生型GLD遺伝子を単離し、これに基づき、適当なオリゴヌクレオチドプライマー（プローブ）のセットを用いた当業者に公知の各種ＰＣＲ法を利用してランダム変異又は部位特異的変異を導入することにより、本発明の改変型GLDをコードするポリヌクレオチドを調製することができる。

更に、文献（例えばCarruthers(1982)Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 47:411-418;Adams(1983)J. Am. Chem. Soc. 105:661; Belousov(1997)Nucleic Acid Res. 25:3440-3444; Frenkel(1995)Free Radic. Biol. Med. 19:373-380;Blommers(1994)Biochemistry 33:7886-7896; Narang(1979)Meth. Enzymol. 68:90; Brown(1979)Meth. Enzymol. 68:109; Beaucage(1981)Tetra. Lett. 22:1859; 米国特許第4,458,066号）に記載されているような周知の化学合成技術により、in vitroにおいて本発明のポリヌクレオチドを合成することができる。

本発明の組換えベクターは、クローニングベクター又は発現ベクターであり、インサートとしてのポリヌクレオチドの種類や、その使用目的等に応じて適宜のものを使用して、当業者に公知の任意の方法で作製することができる。例えば、ｃＤＮＡ又はそのＯＲＦ領域をインサートとして本発明の改変型GLDを生産する場合には、ｉｎｖｉｔｒｏ転写用の発現ベクターや、大腸菌、枯草菌等の原核細胞、酵母、カビなどの糸状菌、昆虫細胞、哺乳動物細胞等の真核細胞のそれぞれに適した発現ベクターを使用することもできる。

本発明の形質転換細胞としては、例えば、大腸菌、枯草菌等の原核細胞や、酵母、カビ、昆虫細胞、哺乳動物細胞等の真核細胞等を使用することができる。これら細胞は、改変型GLDの糖鎖の要、不要、その他のペプチド修飾の必要性に応じて、適宜宿主は選択することができる。これらの形質転換細胞は、電気穿孔法、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法など当業者に公知の任意の方法によって組換えベクターを細胞に導入することによって調製することができる。組換えベクター及び形質転換細胞の具体例として、下記実施例に示した組換えベクターと、このベクターによる形質転換大腸菌及び形質転換カビが挙げられる。

本発明の改変型GLDを大腸菌などの微生物でＤＮＡを発現させて生産させる場合には、微生物中で複製可能なオリジン、プロモーター、リボソーム結合部位、ＤＮＡクローニング部位、ターミネーター配列等を有する発現ベクターに前記のポリヌクレオチドを組換えた発現ベクターを作成し、この発現ベクターで宿主細胞を形質転換したのち、得られた形質転換体を培養すれば、改変型GLDを微生物で大量生産することができる。この際、任意の翻訳領域の前後に開始コドンと停止コドンを付加して発現させれば、任意の領域を含む改変型GLD断片を得ることもできる。あるいは、他の蛋白質との融合蛋白質として発現させることもできる。この融合蛋白質を適当なプロテアーゼで切断することによっても目的とする改変型GLDを取得することができる。大腸菌用発現ベクターとしては、ｐＵＣ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ、ｐＥＴ発現システム、ｐＧＥＸ発現システム、ｐＣｏｌｄ発現システムなどが例示できる。

或いは、本発明の改変型GLDを真核細胞で発現させて製造する場合には、前記ポリヌクレオチドを、プロモーター、スプライシング領域、ポリ（Ａ）付加部位等を有する真核細胞用発現ベクターに挿入して組換えベクターを作成し、真核細胞内に導入すれば、改変型GLDを真核細胞で生産することができる。プラスミドのような状態で細胞内に維持することもできるし、染色体中に組みこませて維持することもできる。発現ベクターとしては、ｐＫＡ１、ｐＣＤＭ８、ｐＳＶＫ３、ｐＳＶＬ、ｐＢＫ-ＣＭＶ、ｐＢＫ-ＲＳＶ、ＥＢＶベクター、ｐＲＳ、ｐＹＥ８２などが例示できる。また、ｐＩＮＤ／Ｖ５-Ｈｉｓ、ｐＦＬＡＧ-ＣＭＶ-２、ｐＥＧＦＰ-Ｎ１、ｐＥＧＦＰ-Ｃ１などを発現ベクターとして用いれば、Ｈｉｓタグ、ＦＬＡＧタグ、ＧＦＰなど各種タグを付加した融合蛋白質としてFAD結合型グルコース脱水素酵素ポリペプチドを発現させることもできる。真核細胞としては、サル腎臓細胞ＣＯＳ-７、チャイニーズハムスター卵巣細胞ＣＨＯなどの哺乳動物培養細胞、出芽酵母、分裂酵母、カビ、カイコ細胞、アフリカツメガエル卵細胞などが一般に用いられるが、本発明の改変型GLDを発現できるものであれば、いかなる真核細胞でもよい。発現ベクターを真核細胞に導入するには、電気穿孔法、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法など公知の方法を用いることができる。

特に、本発明の改変型GLDをコードするポリヌクレオチドを保有するアスペルギルス・オリゼ（Aspergillus oryzae）由来の組換えベクターで、適当なアスペルギルス・オリゼ株を形質転換するクローニングが好適である。

本発明の改変型GLDを原核細胞や真核細胞で発現させた後、培養物（菌体、もしくは菌体外に分泌された酵素を含む培養液、培地組成物等）から目的蛋白質を採取、即ち、単離精製するためには、公知の分離操作を組み合わせて行うことができる。例えば、尿素などの変性剤や界面活性剤による処理、熱処理、ｐＨ処理、超音波処理、酵素消化、塩析や溶媒沈殿法、透析、遠心分離、限外濾過、ゲル濾過、ＳＤＳ-ＰＡＧＥ、等電点電気泳動、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー（タグ配列を利用した方法及び改変型GLDに特異的なポリクローナル抗体、モノクローナル抗体を用いる方法も含む）、などが挙げられる。このような方法で、本発明の改変型GLDを大量に製造することができる。

また、本発明の改変型GLDは、本発明のポリヌクレオチド（ｃＤＮＡ又はその翻訳領域）を有するベクターからｉｎｖｉｔｒｏ転写によってＲＮＡを調製し、これを鋳型としてｉｎｖｉｔｒｏ翻訳を行うことによりｉｎｖｉｔｒｏで製造することができる。

改変型GLDをｉｎｖｉｔｒｏ発現させて製造する場合には、前記のポリヌクレオチドを、ＲＮＡポリメラーゼが結合できるプロモーターを有するベクターに挿入して組換えベクターを作成し、このベクターを、プロモーターに対応するＲＮＡポリメラーゼを含むウサギ網状赤血球溶解物や小麦胚芽抽出物などのｉｎｖｉｔｒｏ翻訳系に添加すれば、改変型GLDをｉｎｖｉｔｒｏで生産することができる。ＲＮＡポリメラーゼが結合できるプロモーターとしては、Ｔ３、Ｔ７、ＳＰ６などが例示できる。これらのプロモーターを含むベクターとしては、ｐＫＡ１、ｐＣＤＭ８、ｐＴ３／Ｔ７１８、ｐＴ７／３１９、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩなどが例示できる。

以上に記載された方法で製造することができる本発明の改変型GLDは、電子受容体存在下でグルコースを脱水素する反応を触媒する酵素であるから、この反応による変化が利用できる用途であれば、特に制限されない。例えば、生体物質を含む試料中のグルコースの測定及び測定用試薬、消去用試薬へ使用するなどの医療分野、臨床分野への使用が可能であり、補酵素結合型グルコース脱水素酵素を使用した物質生産においても使用可能である。

本発明のグルコース測定試薬組成物は、全てを混合して単一の試薬としてもよく、相互に干渉する成分が存在する場合には、各成分を適宜な組み合せとなる様に分割してもよい。また、これらは、溶液状、もしくは粉末状試薬として調製してもよく、さらにこれらを濾紙もしくはフィルムなどの適当な支持体に含有させ試験紙もしくは分析用フィルムとして調製してもよい。なお、過塩素酸などの除タンパク剤やグルコース定量を含有する標準試薬を添付してもよい。本組成物中の酵素の量は、１試料当り０．１から５０単位程度が好ましい。グルコースを定量するための検体は、例えば血漿、血清、髄液、唾液、尿などが挙げられる。

本発明のバイオセンサは、酵素として本発明の改変型GLDを含む反応層に使用し、試料液中のグルコース濃度を測定するグルコースセンサである。例えば、絶縁性基板上にスクリーン印刷などの方法を利用して作用極、その対極及び参照極からなる電極系を形成し、この電極系上に接して親水性高分子と酸化還元酵素と電子受容体とを含む酵素反応層を形成することによって作製される。このバイオセンサの酵素反応層上に基質を含む試料液を滴下すると、酵素反応層が溶解して酵素と基質が反応し、これにともなって電子受容体が還元される。酵素反応終了後、還元された電子受容体を電気化学的に酸化させ、このとき、このバイオセンサは得られる酸化電流値から試料液中の基質濃度を測定することが可能である。また、この他に、発色強度あるいはｐＨ変化などを検知する方式のバイオセンサも構築可能である。

バイオセンサの電子受容体としては、電子の授受能に優れた化学物質を用いることができる。電子の授受能に優れた化学物質とは、一般的に「電子伝達体」、「メディエータ」あるいは「酸化還元媒介剤」と呼ばれる化学物質であり、これらに該当する化学物質として、例えば、特表２００２-５２６７５９に挙げられた電子伝達体や酸化還元媒介剤などを利用してもよい。具体的には、オスミウム化合物、キノン化合物、フェリシアン化合物等が挙げられる。

GLDの活性測定においては、該酵素を、好ましくは終濃度０．１〜１．０ｕｎｉｔ／ｍＬになるように適宜希釈して用いる。なお、該酵素の酵素活性単位（ｕｎｉｔ）は１分間に１μｍｏｌのグルコースを酸化する酵素活性である。GLDの酵素活性は、次の方法で測定できる。

［酵素活性測定法］
０．１Ｍリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）１．０ｍＬ、１．０ＭＤ−グルコース１．０ｍＬ、３ｍＭ２，６−ジクロロフェノールインドフェノール（以下ＤＣＩＰという）０．１４ｍＬ、３ｍＭ１−メトキシ−５−メチルフェナジウムメチルサルフェイト０．２ｍＬ、水０．６１ｍＬを３ｍＬ石英セル（光路長１ｃｍ）に添加し、恒温セルホルダー付き分光光度計にセットして３７℃で１０分間インキュベート後、酵素溶液０．０５ｍＬを添加後、ＤＣＩＰの６００ｎｍにおける吸光度変化（ΔＡＢＳ／ｍｉｎ）を測定する。ＤＣＩＰのｐＨ７．０におけるモル吸光係数を１６．３×１０³ｃｍ^-1Ｍ^-1とし、１分間に１μｍｏｌのＤＣＩＰが還元される酵素活性が実質的に該酵素活性１ｕｎｉｔと等価であることから、吸光度変化より該酵素活性を次式に従って求めた。

上記手順と同様にして、１分間に１μｍｏｌのキシロース、マルトース及びガラクトースを酸化する酵素活性は、D-グルコースの代わりに、夫々、同じ濃度のD-キシロース（SIGMA社製）、マルトース一水和物（ナカライテスク社製）及び、D-ガラクトース（和光純薬工業社製）を用いることで測定できる。
また、グルコースを酸化する酵素活性（U）を100％とした場合のキシロースを酸化する酵素活性（相対活性）を「キシロース作用性/グルコース作用性」（％）と定義する。
同じく、グルコースを酸化する酵素活性（U）を100％とした場合のマルトース又はガラクトースを酸化する酵素活性（相対活性）を「マルトース作用性/グルコース作用性」（％）及び「ガラクトース作用性/グルコース作用性」（％）と定義する。
なお、活性測定はプレートリーダーを用いて行うこともできる。その場合には、上記と同一組成の反応試薬と適宜希釈した酵素を用いて600nmにおける吸光度変化を測定し、上記石英セルを用いた活性測定手順により酵素活性が既知となっている酵素溶液の吸光度変化との間で比例換算を行うことにより、酵素溶液の酵素活性を算出することができる。

本酵素のタンパク濃度の測定においては、該酵素を、好ましくは終濃度０．２〜０．９ｍｇ／ｍＬになるように適宜希釈して用いる。本発明におけるタンパク濃度は、日本バイオ・ラッド（株）から購入できるタンパク濃度測定キットであるＢｉｏ−ＲａｄＰｒｏｔｅｉｎＡｓｓａｙを用い、取扱説明書に従って、牛血清アルブミン（ＢＳＡ，和光純薬工業（株）製，生化学用）を標準物質として作成した検量線から換算して求めることができる。

尚、本発明を実施するために使用する様々な技術は、特にその出典を明示した技術を除いては、公知の文献等に基づいて当業者であれば容易かつ確実に実施可能である。例えば、遺伝子工学及び分子生物学的技術はSambrook and Maniatis, in Molecular Cloning-A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, 1989; Ausubel, F. M. et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York, N.Y, 1995などに記載の方法あるいはそこで引用された文献記載の方法又はそれらと実質的に同様な方法や改変法に基づき実施可能である。さらに、この発明における用語は基本的にはIUPAC-IUB Commission on Biochemical Nomenclatureによるものであり、あるいは当該分野において慣用的に使用される用語の意味に基づくものである。

以下、実施例に則して本発明を更に詳しく説明する。尚、本発明の技術的範囲はこれらの記載によって何等制限されるものではない。又、本明細書中に引用される文献に記載された内容は、本明細書の一部として本明細書の開示内容を構成するものである。

（野生型GLD遺伝子の取得）
特許文献２に全塩基配列が公開されている野生型GLD遺伝子（配列番号２）を含むプラスミドpCGLDをEschelichia coli JM109/pCGLD（FERM BP-10243）から単離した。これは、特許文献１に公開されているアスペルギルス・テレウス（Aspergillus terreus）FERM BP-08578株由来のGLD遺伝子を通常の方法により単離し、シグナル配列（配列番号１における１〜１９番目のアミノ酸配列）をコードする部位を除いた形で、タカラバイオより市販されているプラスミドベクターpColdIIIのマルチクローニングサイトにあるKpnI-PstI部位に挿入することでも取得できる。

（ランダム変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体の取得）
GLD遺伝子にランダム変異を導入するために、下記のようなオリゴヌクレオチドをデザインし、合成した。なお、プライマーDNA（F）は制限酵素KpnI切断部位を有し、プライマーDNA（R）は制限酵素PstI切断部位を有する。
プライマーDNA（F）：5’ cgtcatggtacctccaactccacgtccgccaa 3’ （配列番号３）
プライマーDNA（R）：5’ agtgtactgcagctaacgacgaccagcatcgg 3’ （配列番号４）

実施例１で取得した野生型GLD遺伝子（配列番号２）を含むプラスミドpCGLDと、実施例２で合成した配列番号３記載のプライマーDNA（F）、及び配列番号４記載のプライマーDNA（R）を用い、GeneMorph II Random Mutagenesis Kit（STRATAGENE社製）を用いて、キットに添付されている実験手順に従ってランダム変異を導入したプラスミドを取得した。宿主としてE. coli JM109 Competent Cells（タカラバイオ社製）を形質転換した後、選択マーカーであるアンピシリンナトリウム（和光純薬社製）を50μg/ｍL濃度含有するLB寒天プレートにまき、37℃で一晩培養して、形質転換体を取得した。

（ランダム変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体のGLD酵素活性評価）
トリプトン（BD社製）1.2%(w/v)、Yeast extract（BD社製）2.4%(w/v)、グリセリン（ナカライテスク社製）5%(w/v)及び水からなる溶液Aを121℃、15分オートクレーブ処理して調製し、リン酸二水素カリウム（ナカライテスク社製）2.3%、リン酸水素二カリウム（ナカライテスク社製）12.5%及び水からなる溶液Bを0.45μmフィルター（アドバンテック社製）を用いてろ過調製した。上記の溶液Aと溶液BをA：B＝9：1となるように無菌環境下混合し、TB培地を調製した。
96マイクロウェルプレート（Nunc社製）の各ウェルに150μLのTB培地を分注し、実施例２で取得した形質転換体を１コロニーずつ植菌した。
37℃、1,000rpmで5時間振とう培養後、培養温度を15℃とし、1,000rpmで30分振とう後、終濃度が0.1mMとなるようにイソプロピル−β−Ｄ−１−チオガラクトピラノシド（シグマアルドリッチジャパン社製）水溶液を25μL加えて、再度、15℃、1,000rpmで13時間振とう培養した。
培養後の形質転換体を遠心により集菌し、蒸留水で洗浄した後、再度遠心分離を行って得た菌体に1ウェルあたり50μLのCelLytic B Cellysis Reagent(SIGMA社製)を加えてから、25℃で30分間静置した後、遠心して上清を回収し、無細胞抽出液とした。
前述の酵素活性測定法に従い、無細胞抽出液のGLD酵素活性を確認した。D-グルコースを基質とした場合の培養液1mLあたりのGLD酵素活性（U/mL-b）が野生株と比べて10分の1以下に低下しておらず、かつキシロース作用性/グルコース作用性（Xyl/Glc）が野生株と比べて優位に低下していた変異株を選別し、遺伝子解析を実施した結果、表３の通りだった。

（部位特異的な置換変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体の取得：その１）
GLD遺伝子に部位特異的な置換変異を導入するために、下記のようなオリゴヌクレオチドをデザインし、合成した。
プライマーDNA（G73A）：5’ gtcacaaacgtggatgcctacgggcttgctttt 3’ （配列番号５）
プライマーDNA（P527L）：5’ gttctaacttccatctcgtcggcacggctgc 3’ （配列番号６）
プライマーDNA（D72A）：5’ atgtcacaaacgtggctggctacgggcttgc 3’ （配列番号７）
プライマーDNA（Y228H）：5’ cgtgaatcttgaggagcatgtgcgcgaagacgc 3’ （配列番号８）
プライマーDNA（G73C）：5’ tcccaatgtcacaaacgtggattgctacgggcttg 3’ （配列番号９）
プライマーDNA（G73H）：5’ caatgtcacaaacgtggatcactacgggcttgcttttggg 3’ （配列番号１０）
プライマーDNA（R102H）：5’ tagtcaagtgcttcatgccggcaaggccc 3’ （配列番号１１）
プライマーDNA（D72A+G73D）：5’ ccaatgtcacaaacgtggctgactacgggcttgcttttgg 3’ （配列番号１２）
プライマーDNA（G73S）：5’ tcccaatgtcacaaacgtggatagctacgggcttg 3’ （配列番号１３）
プライマーDNA（G73Q）：5’ aacaatcccaatgtcacaaacgtggatcagtacgggcttgctttt 3’ （配列番号１４）
プライマーDNA（G73W）：5’cccaatgtcacaaacgtggattggtacgggcttgct 3’ （配列番号１５）
プライマーDNA（G73Y）：5’ ggaacaatcccaatgtcacaaacgtggattattacgggcttgcttttg 3’ （配列番号１６）
プライマーDNA（G73E）：5’ atgtcacaaacgtggatgagtacgggcttgcttttggg 3’ （配列番号１７）

実施例１で取得した野生型GLD遺伝子を含むプラスミドpCGLDと、実施例４で合成した配列番号５記載のプライマーDNA（G73A）、及びプライマーDNAと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用い、QuikChangeII Site-Directed Mutagenesis Kit（STRATAGENE社製）を用いて、キットに添付されている実験手順に従って置換変異を導入したプラスミドを取得した。宿主としてE. coli JM109 Competent Cells（タカラバイオ社製）を形質転換した後、選択マーカーであるアンピシリンナトリウム（和光純薬社製）を50μg/mL含有するLB寒天（BD社製）プレートにまき、37℃で一晩培養して、野生型GLDのアミノ酸配列の73位のグリシンがアラニンに置換された改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体を取得した。
上記方法と同様にして、野生型GLD遺伝子を含むプラスミドpCGLDと、実施例４で合成した配列番号６ないし１７に記載の各プライマーDNA、及び各プライマーDNAと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、各々の置換変異を導入したプラスミドを取得した。形質転換も上記同様に行い、野生型GLDのアミノ酸配列の一部が置換された各々の改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体を取得した。

（部位特異的な置換変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体のGLD酵素活性評価：その１）
実施例５により取得した形質転換体について、実施例３に記載の手順と同様にして培養し、無細胞抽出液のGLD酵素活性を測定評価した。D-グルコースを基質とした場合の培養液1mLあたりのGLD酵素活性（U/mL-b）が野生株GLDのそれと比べて10分の1以上保持されており、かつキシロース作用性/グルコース作用性（Xyl/Glc）が野生株と比べて優位に低下していた変異株を選別し、遺伝子解析を実施した結果を表４に示す。

（部位特異的な置換変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体のGLD酵素活性評価：その２）
実施例５により取得した形質転換体について、TB培地に代えて、トリプトン（BD社製）4%(w/v)、Yeast extract（BD社製）2%(w/v)、グリセリン（ナカライテスク社製）4%(w/v)及び水からなる培地（pHをNaOHで7.0に調整）を121℃、15分オートクレーブ処理して調製した培地を用いて、実施例３に記載の手順と同様に培養し、無細胞抽出液のGLD酵素活性を測定評価した。D-グルコースを基質とした場合の培養液1mLあたりのGLD酵素活性（U/mL-b）が野生株GLDのそれと比べて10分の1以上保持されており、かつキシロース作用性/グルコース作用性（Xyl/Glc）が野生株と比べて優位に低下していた変異株を選別し、遺伝子解析を実施した結果を表５に示す。

（改変型GLD遺伝子の形質転換体のアスペルギルス・オリゼへのクローニング）
実施例２において取得した形質転換体のうち、野生型GLDのアミノ酸配列の374位のリジンがグルタミンに置換され、かつ527位のプロリンがロイシンに置換された改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体（R30株）を用いて、改変型GLD遺伝子を含むプラスミドを常法により単離した。
同様に、実施例２において取得した形質転換体のうち、野生型GLDのアミノ酸配列の73位のグリシンがアスパラギン酸に置換された改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体（R25株）を用いて、改変型GLD遺伝子を含むプラスミドを常法により単離した。
同様にして、実施例５において取得した形質転換体のうち、野生型GLDのアミノ酸配列の102位のアルギニンがヒスチジンに置換された改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体（S32株）を用いて、改変型GLD遺伝子を含むプラスミドを常法により単離した。
また同様にして、実施例５において取得した形質転換体のうち、野生型GLDのアミノ酸配列の73位のグリシンがセリンに置換された改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体（S16株）を用いて、改変型GLD遺伝子を含むプラスミドを常法により単離した。

実施例８で取得した各々の改変型GLD遺伝子を含むプラスミドを鋳型とし、特許文献１に公開されているアスペルギルス・テレウス（Aspergillus terreus）FERM BP-08578株由来のGLD遺伝子の塩基配列を元に合成した以下のプライマー（まず、プライマー１、３を用い、その後２、３）を用いて改変型GLD遺伝子をPCR増幅させた。

1. gene1F-1:
5'-atgttgggaaagctctccttcctcagtgccctgtccctggcagtggcggcacctttgtccaactccacgtccgcc-3'（配列番号１８）
2. gene1F-2:
5'-(acgcgtcgac)tgaccaattccgcagctcgtcaaaatgttgggaaagctctcc-3'（配列番号１９）
3. gene1R:
5'-(gtg)ctaacgacgaccagcatcggccttgatgagatcc-3'（配列番号２0）
（Fは５’側、Rは3’側、括弧内：制限酵素切断部位、下線部：enoA 5’-UTR、その他：ORF）

使用する宿主としては、アスペルギルス・オリゼ NS4株（RIB40株由来）を使用した。本菌株は、公知文献１（Biosci. Biotech. Biochem.,61(8),1367-1369,1997）にあるように、1997年（平成9年）に醸造試験所（現酒類総合研究所）で育種され、転写因子の解析、各種酵素の高生産株の育種などに利用され、分譲されているものが入手可能である。
本菌株に対し、公知文献２（Aspergillus属の異種遺伝子発現系、峰時俊貴、化学と生物、38、12、P831-838、2000）に記載してあるアスペルギルス・オリゼ由来のアミラーゼ系の改良プロモーターを使用し、その下流に上記の改変型GLD遺伝子を結合させることで、本遺伝子が発現可能なベクターを調製した。
形質転換は、基本的には公知文献２及び公知文献３（清酒用麹菌の遺伝子操作技術、五味勝也、醸協、P494-502，2000）に記載の方法に準じて実施することで形質転換体を取得した。

比較例

（野生型GLD遺伝子（配列番号１）のアスペルギルス・オリゼへのクローニング）
実施例１で取得したプラスミドpCGLDを用い、実施例８に記載の方法と同様の手順により、野生型GLD遺伝子（配列番号１）を持つベクターを調製し、アスペルギルス・オリゼ NS4株を形質転換することで、形質転換体を取得した。

（形質転換されたアスペルギルス・オリゼからの酵素溶液の調製）
実施例９及び比較例において取得した形質転換体について、グルコース（和光純薬工業社製）１％（ｗ／ｖ）、脱脂大豆（日本食販社製）２％（ｗ／ｖ）、コーンスティープリカー（サンエイ糖化社製）０．５％（ｗ／ｖ）、硫酸マグネシウム（ナカライテスク社製）０．１％（ｗ／ｖ）、及び水を含むｐＨ６．０の培養液２０ｍＬを用いて、３０℃、３日間振盪培養し、培養終了後、遠心して培養上清を回収した。
これを10μmメンブレンフィルター（アドバンテック社製）を用いてろ過し、SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動において約81kDaのバンドを示す酵素溶液を得た。

（形質転換されたアスペルギルス・オリゼから取得した酵素溶液の酵素活性評価）
前述の酵素活性測定法に従い、実施例１０で取得した酵素溶液のGLD酵素活性（U/mL-b）及び「キシロース作用性/グルコース作用性」（Xyl/Glc）を確認したところ、下記の表６の通りとなった。この結果から、野生型GLDに比べてキシロース作用性が低下した改変型GLDを生産する形質転換体が得られたことが分かる。
以上の結果から、野生型GLDに比べてキシロース作用性が低下した改変型GLDを生産する形質転換体を培養することにより、改変型GLDが得られたことが分かる。

更に、上記の野生型GLDのアミノ酸配列の73位のグリシンがアスパラギン酸に置換された改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体の培養上清を用いて、特許文献２に記載の方法に準じて酵素精製を実施し、SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動において約81kDaの単一バンドを示す精製酵素を得た。
前述の酵素活性測定法に従い、この精製された改変型GLD酵素の「キシロース作用性/グルコース作用性」を確認したところ、野生型GLDは8.6％であるのに対して、73位のグリシンがアスパラギン酸に置換した改変型GLDは4.8％だった。

尚、上記精製された改変型GLDの「マルトース作用性/グルコース作用性」は0.91％、「ガラクトース作用性/グルコース作用性」は0.57％であり、作用性が極めて低いことが明らかとなった。
以上の結果から、野生型GLDに比べて、マルトース作用性及びガラクトース作用性に加えて、更にキシロース作用性が低下した改変型GLDを生産する形質転換体を培養することにより、マルトース及びガラクトースに作用せず、更にキシロース作用性の低い改変型GLDを得ることができることが確認された。

（改変型GLDを用いたD-グルコースの測定）
実施例１２で得られた、73位のグリシンがアスパラギン酸に置換した改変型GLDを生産する形質転換体の精製酵素溶液（比活性631U/mg）の酵素溶液を使用し、吸光度変化を測定することによるD-グルコースの測定を行った。プレートリーダーを用いた反応測定系において、終濃度が0.3、1.0、5.0、10、33ｍＭになるようD-グルコースを添加し、600nmにおけるDCIPの吸光度変化（ΔAbs/min）を測定した。この吸光度変化を既知のグルコース濃度（0.3、1.0、5.0、10、33ｍＭ）に対してプロットしたところ、表７に示す結果が得られ、それに基づき検量線が作成できた（図１）。これより本発明の改変型GLDを用いてグルコースの定量が可能であることが示された。

（部位特異的な置換変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体の取得：その２）
実施例４に加えて、GLD遺伝子に部位特異的な置換変異を導入するために、下記のようなオリゴヌクレオチドをデザインし、合成した。
プライマーDNA（S37V）：5’ attggaggcggtactgtgggtttggccgtcgca 3’ （配列番号21）
プライマーDNA（S37G）：5’ attggaggcggtactggcggtttggccgtcgca 3’ （配列番号22）
プライマーDNA（T69I）：5’ aacaatcccaatgtcatcaacgtggatggctac 3’ （配列番号23）
プライマーDNA（L76F）：5’ tggatggctacgggttcgcttttgggtctga 3’ （配列番号24）
プライマーDNA（F78L）：5’ gctacgggcttgctttggggtctgacattga 3’ （配列番号25）
プライマーDNA（R102V）：5’ cttagtcaagtgcttgtcgccggcaaggccctt 3’ （配列番号26）
プライマーDNA（N217S）：5’ aagatgcgcggcttttccttatacccctccacc 3’ （配列番号27）
プライマーDNA（P240I）：5’ cgtgcatactactggatctacaagtcccgtccc 3’ （配列番号28）プライマーDNA（P240L）：5’ cgtgcatactactggttgtacaagtcccgtccc 3’ （配列番号29）
プライマーDNA（Q407L）：5’ cgtctcttcgaggtcctgtatgaccttattttc 3’ （配列番号30）
プライマーDNA（Q407S）：5’ cgtctcttcgaggtctgctatgaccttattttc 3’ （配列番号31）
プライマーDNA（Y424S）：5’ cgctgaagtcctgaactcgccgggcagcgcgacgt 3’ （配列番号32）
プライマーDNA（A437I）：5’ tttgcagaattctggatcctccttcccttcgct 3’ （配列番号33）
プライマーDNA（T530A）：5’ ttccatcccgtcggcgcggctgccatgatgcct 3’ （配列番号34）

実施例５に記載の方法と同様にして、野生型GLD遺伝子を含むプラスミドpCGLDと、実施例２で合成した配列番号２１ないし３４に記載の各プライマーDNA、及び各プライマーDNAと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、各々の置換変異を導入したプラスミドを取得した。形質転換も上記同様に行い、野生型GLDのアミノ酸配列の一部が置換された各々の改変型GLDをコードする改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体を取得した。

（部位特異的な置換変異を導入した改変型GLD遺伝子を持つ形質転換体のGLD酵素活性評価：その３）
実施例１５により取得した形質転換体について、TB培地に代えて、トリプトン（BD社製）4%(w/v)、Yeast extract（BD社製）2%(w/v)、グリセリン（ナカライテスク社製）4%(w/v)及び水からなる培地（pHをNaOHで7.0に調整）を121℃、15分オートクレーブ処理して調製した培地を用いて、実施例３に記載の手順と同様に培養し、無細胞抽出液のGLD酵素活性を測定評価した。D-グルコースを基質とした場合の培養液1mLあたりのGLD酵素活性（U/mL-b）が野生株GLDのそれと比べて10分の1以上保持されており、かつキシロース作用性/グルコース作用性（Xyl/Glc）が野生株と比べて優位に低下していた変異株を選別し、遺伝子解析を実施した結果を表８に示す。

本発明のポリヌクレオチドにコードされる改変型GLDは、血糖の測定において実質的にマルトース及びガラクトースに作用せず、キシロース作用性が野生型GLDに比べて低減されていることから、より高精度な自己血糖測定（SMBG）装置にも利用することができ、糖尿病患者の自己管理・治療に大きく資する。

Claims

配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列において、D72A、G73D、G73A、G73S、G73C、G73Q、G73W、G73Y、G73E、G73H、R102H、Y228H、V356A、P527L、S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I及びT530Aからなる群から選択される、少なくとも１つのアミノ酸残基における置換を含み、且つ、野生型GLDと比較してキシロース作用性／グルコース作用性が低下した改変型GLD。
更に、配列番号１で示されるアミノ酸配列において、１個〜数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されている、請求項１記載の改変型GLD。
野生型GLDと比較してキシロース作用性／グルコース作用性が０．８５倍以下に低下した、請求項１又は２記載の改変型GLD。
配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列において、N64D+R102H+L250Q、G73D、Y228H+A589T、K374Q+P527L、V356A、D72A+G210S、G73A、P527L、D72A、Y228H、G73C、G73H、R102H、D72A+G73D、G73S、G73Q、G73W、G73Y、G73E、S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I及びT530Aからなる群から選択されるアミノ酸置換を有する改変型GLD。
配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列において、N64D+R102H+L250Q、G73D、Y228H+A589T、K374Q+P527L、V356A、D72A+G210S、G73A、P527L、D72A、Y228H、G73C、G73H、R102H、D72A+G73D、G73S、G73Q、G73W、G73Y、G73E、S37V、S37G、T69I、L76F、F78L、R102V、N217S、P240I、P240L、Q407A、Q407S、Y424S、A437I及びT530Aからなる群から選択されるアミノ酸置換を有し、更に、１個〜数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されており、且つ、野生型GLDと比較してキシロース作用性／グルコース作用性が低下した改変型GLDする改変型GLD。
請求項１ないし５のいずれか一項に記載の改変型GLDをコードするポリヌクレオチド。
配列番号１で示される野生型のFAD結合型グルコース脱水素酵素（GLD）アミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドが配列番号２に示される塩基配列を有する、請求項６記載のポリヌクレオチド。
請求項６又は７記載のポリヌクレオチドを保有する組換えベクター。
請求項８記載の組換えベクターを用いることによって作製された形質転換細胞。
大腸菌又はアスペルギルス・オリゼである、請求項９記載の形質転換細胞。
請求項９又は１０の形質転換細胞を培養し、得られた培養物から改変型GLDを採取することを特徴とする、改変型GLDの製造方法。
請求項１ないし５のいずれか一項に記載の改変型GLD又は請求項１１記載の製造方法で得られた改変型GLDを使用することを特徴とする、グルコースの測定方法。
請求項１ないし５のいずれか一項に記載の改変型GLD又は請求項１１記載の製造方法で得られた改変型GLDを含有することを特徴とする、グルコース測定試薬組成物。
請求項１ないし５のいずれか一項に記載の改変型GLD又は請求項１１記載の製造方法で得られた改変型GLDを使用することを特徴とする、グルコース測定用のバイオセンサ。