JP5164862B2 - Ｅｅ−１イベントを含むトランスジェニックナス（ｓｏｌａｎｕｍｍｅｌｏｎｇｅｎａ） - Google Patents

Ｅｅ−１イベントを含むトランスジェニックナス（ｓｏｌａｎｕｍｍｅｌｏｎｇｅｎａ） Download PDF

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Description

本発明は、エリートイベント（elite event）ＥＥ−１を備える、耐虫性トランスジェニックナス植物に関する。
ナスは、地中海、中東の野菜としばしばみなされるが、過去4,000年間、当該国内で栽培されている。インドは、ナスの原産地と広くみなされている。ナス科の野菜の中で、ナス(Solanum melongena Linn.)は、インドの多くの地域で栽培されている、最も一般的で、よく知られた、主要な野菜作物である。ナスが栽培されている面積は、51万haで、全生産量が8,200,000Mtと概算されている(FAOデータ、2004年、http://faostat.fao.org/)。ナスは小規模農家によって栽培され、重要な収入源となっている。異なる農業気候地域に適応されて、インドで年間を通じて栽培することのできる、用途の広い作物である。多くの栽培品種が当該国内で栽培されており、栽培品種の産出量、果実の色、大きさおよび形は消費者の好みに依存している。非常に生産性の高い作物であり、果実は様々な方法による調理野菜として消費され、また、インドの地方部の人々は乾燥させたシュート（shoot）を燃料として使用している。好ましいミネラル源およびビタミン源であり、内部の水、可溶性の糖、遊離の還元糖、およびアミドプロテインに富んでいる。
しかしながら、近年、インド亜大陸のナスの生産量は、害虫、特に果実やシュートに穴を開ける虫（the fruit and shoot borer, Leucinodes orbonalis (Guen.)）の感染の継続的な増加により、深刻な影響を受けている。fruit and shoot borer の若い幼虫は葉柄や大きな葉の中央脈や柔かいシュートに穴を開け、それによってシュートの先端が枯れてしまう。その後それらは花芽や果実に穴を開ける。感染された果実はその市場価値が失われる上に、収穫が大きく減少する。インドにおいては、fruit and shoot borerは２５．８％から９２．５％の果実にダメージを与え、２０．７％から６０％の収穫高の減少を引き起こす。
農家は、感染していない果実を得るために、大量の化学殺虫剤を単独で、あるいは組み合わせて使用しており、それらは市場で高価格で売られている。殺虫剤の無差別的な使用の習慣は、生産物中の残留農薬、天敵の排除、害虫の復活、環境汚染をもたらす。
殺虫剤の悪影響から環境を守ることとともに、ナス作物の害虫に関連したダメージを減らすために、ナスにおいて高レベルで発現させる適当なプロモーターの制御のもとで鱗翅目に特異的なcry1Ac遺伝子を導入することが、fruit and shoot borerについての構築された制御をもたらすものと考えられる。ナスの栽培への化学的農薬の貢献がかなり大きいため、これによりナスの栽培コストを下げる結果がもたらされるであろう。
多くのグループが、異なる方法を使用してナスの形質転換を実行した。最も成功した方法は、形質転換のためのアグロバクテリウムを媒介とした方法である(Kumar et. al.1998, Nicola et. al.1998, Fariet. al.1995, Rotino et. al.1990)。
cry1Ac遺伝子のソース生物は、胞子形成中に殺虫性のクリスタリン（Cry）含有物を合成するグラム陽性菌である、Bacillus thuringensis (Bt)である。cry1Ac遺伝子は１３０KdaのCry1Acタンパク(d-エンドトキシン)をコードしており、Lepidpoteranの幼虫に高い特異性を示す。Cry1Acタンパクは、殺虫活性を発現するために、昆虫により摂取されなければならない。クリスタリンの形態のタンパクは中性または酸性のｐＨの水溶液には不溶であるが、幼虫の昆虫の腸のｐＨはクリスタルタンパクが可溶であるアルカリである。
続いて、可溶性になったタンパクは、昆虫の腸の中のプロテアーゼによって活性化される。これらのプロテアーゼは、タンパクのアミノ末端からのおよそ28のアミノ酸と同様に、タンパクの残部からカルボキシ末端ドメインを切断する。活性化されたタンパクはおよそ600のアミノ酸から成り、昆虫の囲食膜を介して中腸上皮へ拡散する。ここで、それらは標的昆虫の中腸上皮の表面において特定の高親和性レセプターと結合する。膜において、腸ルーメンへの細胞内成分（例えばＫ＋）の漏出、および上皮腸細胞への水の漏出を誘導する開孔が、膜内に形成される。幼虫の腸上皮細胞は浸透圧により膨張し溶解する。腸は腸内の電解質、およびｐＨの変化の結果として麻痺するようになり、幼虫の昆虫に摂食の中止と死を引き起こす。
植物中の外来の遺伝子の発現は、植物のゲノム中のトランス遺伝子の位置により影響を受けることが知られている。トランス遺伝子発現のバリエーションは、より転写活性のある染色体領域（ユークロマチン）、あるいは活性が少ない染色体領域（ヘテロクロマチン）への挿入により生じる。これらの例は、遺伝子発現が抑えられるメチル化された領域、または遺伝子の発現をそれぞれ促進あるいは抑制する、エンハンサーおよびサプレッサーのような転写調節因子の近接部である。したがって、トランス遺伝子の発現のための多くの独立した形質転換のイベントをスクリーニングするとともに、異種起源の挿入された遺伝子の所望される発現を示すイベントを同定することが必要である。
本発明は、エリートイベントＥＥ−１を備える耐虫性トランスジェニックナス植物に関する。本発明は、エリートイベントＥＥ−１を備える耐虫性トランスジェニックナス植物に関する。トランスジェニック植物はナスゲノムの特定領域におけるＣａＭＶ３５Ｓプロモーターによる制御下にあるcry1Ac遺伝子を有することにより特徴付けられる。さらに、本発明は、ナス植物においてエリートイベントＥＥ−１を検出する方法について開示する。さらに本発明は、エリートイベントＥＥ−１を備えるナス植物を同定するためのキットを提供する。
本発明は、耐虫性を付与するcry1Ac遺伝子を伴う、ナス植物の形質転換に関する。本発明は、アグロバクテリウムを媒介とした方法によって植物発現ベクターpMON10518でナス植物を形質転換することに関する。さらにまた、cry1Ac遺伝子を備える50を越える独立した形質転換イベントの産生に関する。全ての独立したイベントは、Cry1Acタンパクの発現のためにスクリーニングされ、特徴付けられた。Cry1Acタンパクの発現レベルおよび昆虫バイオアッセイに基づいて、2つのイベントが更なる特徴付けのために選択された。本発明はまた、形質転換イベントの同定の処理に関する。EE-1と命名されたあるイベントは、エリートイベントであると同定され、詳細に特徴づけられた。
異種起源の遺伝子の挿入の特定の位置は分子的方法によって分析された。これは、適切なベクターへのT-DNAの右側境界配列（right border）に隣接するゲノム領域のクローニングを含む。本発明は、シークエンスによる、当該隣接領域の特徴付けおよび分析に関する。本発明は、ナスのEE-1イベントのゲノムＤＮＡのPCR増幅のための、DNA塩基配列の当該領域からのプライマー設計に関する。
本発明は、さらに、EE-1のエリートイベントと、他のナス形質転換イベントおよび非遺伝子組み換えのナス植物とを区別する診断ツールを提供する。
本発明のある態様は、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在を検出する方法を提供することであって、前記方法は、
（a）配列番号８の配列のヌクレオチド位置１１からヌクレオチド位置８５の少なくとも５０の連続したヌクレオチドを備えるポリヌクレオチドプローブを試料と接触させることと、
(b)試料および前記ポリヌクレオチドプローブをストリンジェントハイブリダイゼーション条件下におくことと、
（ｃ）前記試料中における核酸への前記ポリヌクレオチドプローブの結合を検出することとを備える。
本発明の他の態様は、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在を検出する方法を提供することであって、前記方法は、
a)配列番号１１の第１のヌクレオチド配列、および配列番号１２、または配列番号１３、または配列番号１４からなる群から選択される第２のヌクレオチド配列と試料とを接触させることと、
b)核酸増幅反応を行い、それによって増幅されたフラグメントを生成することと、
c)前記増幅されたフラグメントを検出することと、を備え、
前記増幅されたフラグメントは６８５ベースペア、または１０３０ベースペア、または１２６６ベースペアである。
さらに、本発明の他の態様は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号８の配列またはその相補的配列を備えるポリヌクレオチドを提供する。
さらにまた、本発明の他の態様は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号９の配列またはその相補的配列を備えるポリヌクレオチドを提供する。
さらにまた、本発明の他の態様は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号１０の配列またはその相補的配列を備えるポリヌクレオチドを提供することである。
さらにまた、本発明の他の態様は、ハイブリダイゼーション法を使用する、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在の検出キットを提供することである。前記キットは、配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるポリヌクレオチド配列と、ハイブリダイゼーション用バッファとを含む。
さらにまた、本発明の他の態様は、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在の検出キットを提供することである。前記キットは、配列番号１１の配列を有する第１のヌクレオチド、および配列番号１２、または配列番号１３、または配列番号１４からなる群から選択される配列を有する第２のヌクレオチド配列を備える。
本発明は、また、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの存在の検出のための合成オリゴヌクレオチドを提供する。前記オリゴヌクレオチドの配列は、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４、および配列番号１５からなる群から選択される。
本発明はさらにナス植物ＥＥ−１エリートイベントを有するトランスジェニック植物体または種子を提供する。前記ＥＥ−１エリートイベントのゲノムは配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備える。
本発明はさらにナス植物ＥＥ−１エリートイベントを有するトランスジェニック植物細胞を提供する。前記ＥＥ−１エリートイベントのゲノムは配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備える。
本発明はさらにナス植物ＥＥ−１エリートイベントを有する子孫（progeny）を提供する。前記ＥＥ−１エリートイベントのゲノムは配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備える。
“アンプリコン”、または“増幅されたＤＮＡ”“増幅されたフラグメント”とは、核酸テンプレートの一部である標的核酸配列の核酸増幅産物をいう。
“異種起源の遺伝子/DNA”とは、植物ゲノムに挿入された外来起源のDNA配列をいう。
“イベント”とは、オリジナルの形質転換体（transformant）、およびオリジナルの形質転換体または異種起源の遺伝子を有するその子孫（descendant）と、別のナス種との有性異系交配によって産生された任意の子孫（progeny）をいう。
“プローブ”とは、ハイブリダイゼーション実験またはアッセイに使用可能であるＤＮＡ配列をいう。
“ストリンジェントな条件”下でハイブリダイゼーションすることによる、とは、Sambrookら（１９８９）により示された有利なハイブリダイゼーション条件をいう(Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbour Laboratory Press, NY)。
ここで用いている“エリートイベント”とは、同一のDNA変換を伴う形質転換により、あるいはそのような形質転換により得られた植物の戻し交雑により得られた一群のイベントから、形質発現、トランス遺伝子の安定性、およびそれを備える植物の農業的特性についての否定的影響の欠如に基づいて選択されたイベントをいう（すなわち、選択された形質転換イベントをいう）。
本発明は、エリートイベントＥＥ−１を備える耐虫性トランスジェニックナス植物に関する。本発明は、エリートイベントＥＥ−１を備える耐虫性トランスジェニックナス植物に関する。トランスジェニック植物はナスゲノムの特定領域におけるＣａＭＶ３５Ｓプロモーターによる制御下にあるcry1Ac遺伝子を有することにより特徴付けられる。さらに、本発明は、ナス植物においてエリートイベントＥＥ−１を検出する方法について開示する。さらに本発明は、エリートイベントＥＥ−１を備えるナス植物を同定するためのキットを提供する。
本発明のある実施形態は、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在を検出する方法を提供することであって、前記方法は、
（d）配列番号８の配列のヌクレオチド位置２２からヌクレオチド位置７１の少なくとも５０の連続したヌクレオチドを備えるポリヌクレオチドプローブを試料と接触させることと、
(e)試料および前記ポリヌクレオチドプローブをストリンジェントハイブリダイゼーション条件下におくことと、
（f）前記試料中における核酸への前記ポリヌクレオチドプローブの結合を検出することと、を備える。
本発明の他の実施形態は、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在を検出する方法を提供することであって、前記方法は、
a)配列番号１１の第１のヌクレオチド配列、および配列番号１２、または配列番号１３、または配列番号１４からなる群から選択される第２のヌクレオチド配列と試料とを接触させることと、
b)核酸増幅反応を行い、それによって増幅されたフラグメントを生成することと、
c)前記増幅されたフラグメントを検出することとを備える。
前記増幅されたフラグメントは６８５ベースペア、または１０３０ベースペア、または１２６６ベースペアである。
さらに、本発明の他の実施形態は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドを提供することであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号８の配列またはその相補的配列を備える。
さらにまた、本発明の他の実施形態は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドを提供することであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号９の配列またはその相補的配列を備える。
さらにまた、本発明の他の実施形態は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドを提供することであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号１０の配列またはその相補的配列を備える。
さらに、本発明の実施形態は、ハイブリダイゼーション法を使用する、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在の検出キットを提供することである。前記キットは、配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるポリヌクレオチド配列と、ハイブリダイゼーション用バッファとを備える。
さらに、本発明の実施形態は、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在の検出キットを提供することである。前記キットは、配列番号１１の配列を有する第１のヌクレオチド、および配列番号１２、または配列番号１３、または配列番号１４からなる群から選択される第２のヌクレオチド配列を備える。
また、本発明は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの存在の検出のための合成オリゴヌクレオチドを提供する。前記オリゴヌクレオチドの配列は、配列番号１１、配列番号１２、配列番号１３、配列番号１４、および配列番号１５からなる群から選択される。
本発明はさらにナス植物ＥＥ−１エリートイベントを有するトランスジェニック植物体または種子に関する。前記ＥＥ−１エリートイベントのゲノムは配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備える。
また、本発明はナス植物ＥＥ−１エリートイベントを有するトランスジェニック植物細胞に関する。前記ＥＥ−１エリートイベントのゲノムは配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備える。
本発明はさらにナス植物ＥＥ−１エリートイベントを有する子孫（progeny）に関する。前記ＥＥ−１エリートイベントのゲノムは配列番号８、配列番号９、配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備える。
本発明は、害虫に対する抵抗性を付与するためのアグロバクテリウムを媒介とした形質転換方法を使用する、ナス（Solanum melongena）の植物体、植物細胞および組織を形質転換する効率的な方法を提供する。
本発明のある実施形態は、葉柄を有する子葉、胚軸、胚、未熟胚、葉身、子葉腋、茎頂、葯、根、およびカルス、または他の適した外植体からなる群から選択される形質転換のための外植体を提供する。
本発明の他の実施形態は、PCR増幅あるいは当該技術分野で公知の方法によりナス植物エリートイベントEE-1のトランスジェニック挿入部位の周辺のフランキング配列の同定方法を提供することである。 核酸増幅は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を含む、当該技術分野の中で既知の様々な核酸増幅方法のうちのどれによっても実行することができる。ナス植物エリートイベントEE-1の同定の方法は、プライマーウォーキング法によって実行された。これについても、当該技術分野においてよく知られた方法によって実行することができる。
トランスジェニック挿入ＤＮＡおよび隣接するフランキングナスDNAはアガロースゲル電気泳動によって精製され、当該技術分野において既知の適当なベクターにクローニングされた。クローニングされたフラグメントは、当該技術分野で既知の方法によって配列が決定された。
本発明の他の実施形態は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの同定のための診断方法またはアッセイを提供することである。
本発明の他の実施形態は、ナスの他のバックグラウンドまたは栽培品種におけるＥＥ−１エリートイベントの導入方法を提供することである。
本発明の他の実施形態は、ＥＥ−１エリートイベントを有するトランスジェニックナスを使用した、ナス交雑種の生産方法を提供することである。
また、本発明の他の実施形態は、配列番号８から１０のポリヌクレオチド配列、またはそれらと相補的な配列を有する新規ＤＮＡ分子を提供する。
さらに、本発明の実施形態は、配列番号８、配列番号９、および配列番号１０からなる群から選択されたポリヌクレオチド配列を備えるトランスジェニックナス植物体、植物細胞、種子、および子孫（progeny）を提供する。
本発明は、ＤＮＡコンストラクトpMON10518を用いてナス細胞を形質転換することを備える、害虫に耐性を有するトランスジェニックナス植物体を生産する方法をさらに提供する。前記ナス細胞から得られた稔性ナス植物体は、耐虫性のナス植物を生産するために、自家受精またはナス種と好適な交雑を行うことができる。
Bacillus thruingiensis由来の殺虫性のcry1Ac遺伝子は、メヒコ社（ＭＡＨＹＣＯ）により育成されたナス系統６０２０８に導入された。本発明は、耐虫性の付与についてのアグロバクテリウムを媒介とした形質転換方法を使用する、ナス((Solanummelongena)の植物体、植物細胞および組織の効果的な形質転換方法を提供する。
ナス植物のアグロバクテリウムを媒介とする形質転換のための外植体は、葉柄を有する子葉、胚軸、胚、未熟胚、葉身、子葉腋、茎頂、葯、根、およびカルス、または他の適した外植体からなる群から選択される。
CaMV e35SプロモーターおよびGm7Sターミネーターの制御下にあるcry1Ac遺伝子と、植物選択的マーカーとして、CaMV35Sプロモーターの制御下にあるnptII遺伝子とを含むベクターpMON10518（図１）がAgrobacterium tumefaciens中で変換された。A. tumefaciensは、アグロバクテリウムの培養のための適当な培地中にイノキュレートされた。アグロバクテリウム細胞は、フラスコ中の２５ｍｌの無菌２ＹＴ培地（ｐＨ ７）中でインキュベートされた。2YT培地は1%の酵母抽出物、1.6%のトリプトンおよび0.5%のNaClを含む。
適当な抗生物質が、プラスミドpMON10518を有するアグロバクテリウムの選択的培養のためのバクテリアのイノキュレート前に、当該培地に添加された。バクテリアはフラスコ中の２ＹＴ培地にイノキュレートされて、0.01〜2の範囲、好ましくは1.8の光学密度(600nm)を得るためにシェーカー上で維持された。
外植体が組換えアグロバクテリウム懸濁液中にイノキュレートされ（好ましくは１５分）、無菌濾紙上でブロット乾燥され、その後、共培養のために適した培養培地を含むペトリ皿に移された。
共培養の後（共培養は２から５日、好ましくは２日）、これらの外植体は、アグロバクテリウムの生育を阻害するために、500mg/lのセホタキシムを含有する液体のＭＳ０倍地中で洗浄され、選択培地に移された。
選択培地上で再生（regenerate）された形質転換体は、発根培地に移され、発根した植物体は、温室でハードニングされ、定着された。
ｐＭＯＮ１０５１８コンストラクトを用いたナス植物の形質転換の詳細な手順については、実施例１において記載する。
本発明において、Bacillus thruingiensis由来のcry1Ac遺伝子は、以下の特徴を有する、メヒコ社により育成されたナス系統６０２０８に導入された。
果実の色：紫色、白色の斑入り
果実の形状：長円形
草性：ブッシュ状
果実形成：塊状
がく：とげ状
５０以上の独立した形質転換イベントが、エリートナス植物ＥＥ−１イベントを同定するためにスクリーニングされた。すべてのイベントは、商業化のために最適であるイベントを決定するために、トランス遺伝子分割分析およびタンパク発現評価を受けた。詳細は実施例２において記載する。
ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの分子的特徴付けが行われた。詳細は実施例３に記載する。さらに、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの同定のための診断方法が行われ、詳細は実施例４に記載する。実施例５は、ナス植物ＥＥ−１エリートイベントについて行われた接合アッセイ（zygotic assay）について説明する。
本発明は、さらに、Sambrookら(1989)によって示されたサザンハイブリダイゼーション法（Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring HarbourLaboratory Press, NY）を使用した、試料中のナス植物ＥＥ−１エリートイベント核酸配列の存在の検出方法を提供する。当該方法は、１）フィルタ上でゲノムＤＮＡフラグメントを固定することと、２）フィルタを、５０％ホルムアミド、５ＸＳＳＰＥ、２Ｘ Denhardt’s試薬、および0.1％ SDS中で１時間から２時間、４２℃で、または６Ｘ SSC、２Ｘ Denhardt’s試薬、および0.1％ SDS中で１時間から２時間、６８℃でプレハイブリダイズすることと、３）ラベル化されたハイブリダイゼーションプローブを添加することと、４）16時間から２４時間インキュベートすることと、５）フィルタを室温で１Ｘ.ＳＳＣ、０．１％ SDS中で２０分間洗浄することと、６）フィルタを６８℃で０．２Ｘ.ＳＳＣ、０．１％ SDS中でそれぞれ２０分間、3回洗浄することと、７）)増感フィルムを用いて、フィルタを２４時間から４８時間、−７０℃でＸ線フィルムにさらすこととを含む。ハイブリダイゼーションは当該技術分野における既知の方法によって実行されるようにしてもよい。
ナス植物ＥＥ−１エリートイベントは多くの基準に基づいて選ばれた。3世代の分離分析は、当該系統においてcry1Ac遺伝子が挿入される単一の位置が存在することを示した。これはDNAブロット解析によって確認された。量的ELISAを使用するタンパク質量化研究は、多くのナス単一挿入のイベントにおいて行なわれた。これらの研究は、EE-1系統がCry1Acタンパクを最も強く発現する系統であること、および挿入された遺伝子の発現が複数の世代を通して、多くの異なる遺伝的バックグラウンドにおいて安定していたことを示した。EE-1のエリートイベントを有する系統の表現型の解析は、由来する親系統とは形態学的には判別不能であることを示し、そのため、さらなる戻し交雑繁殖に最もふさわしい。当該エリート植物は他のナス栽培品種にEE 1エリート・イベントを導入するために使用された。
核酸増幅は、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を含む、当該技術分野において既知の様々な核酸増幅方法のうちのどれによっても実行することができる。当該技術分野において様々な増幅方法が知られており、PCR protocols: a guide to methods and applications (ed. Innisら, Academic Press, San Diego, 1990)において説明されている。トランスジェニック挿入および隣接するフランキングナスＤＮＡはアガロースゲル電気泳動により分析され、クローニングされる。クローニングされたフラグメントは、当該分野において既知の方法により配列が決定される。
本発明は以上のように広義に定義されるが、それらに限定されるものではなく、以下の記載が実施例を与える実施形態を含んでいることは、当業者により理解されるであろう。
提示される実施例は、当該発明において請求される用途、プロセスおよび産物を単に例示するものである。また、当該発明自体の実施は記載される実施例に限定されるものではなく、また、当該実施例によって限定されるものでもない。
（実施例１）
ナスの形質転換
種子の滅菌とイノキュレーション
系統６０２０８由来のナス種子は、１．５％NaOClを含有する50mlのプラスチック遠心チューブ中で激しく振とうしながら１０分間、表面滅菌された（５００種子につきNaOCl ２０ ml）。５分後、上澄みである溶液が除去され、滅菌された蒸留水で５回洗浄された。種子は滅菌濾紙で１時間、ブロット乾燥され、１０種子／ボトルの割合でボトル中のＭＳ０倍地（表１）にイノキュレートされた。種子は、発芽のために、１６時間光条件下、８時間暗黒条件下の光周期型で、１２−１５時間２５℃で維持された。
アグロバクテリウムの培養
共培養を実行する前日、形質転換ベクターpMON10518を含むアグロバクテリウム株が、抗生物質を含む２５ｍｌの液体ＬＢ培地中で、１７５ｒｐｍで振とうしながら、２８℃で一晩培養された。当該オーバーナイトの培養は、同じ抗生物質を含んでいる、フレッシュストリークされた固形培地プレートから得られた１白金耳のバクテリア細胞で開始された。
外植体の調製
共培養の当日、２−１５日齢の実生から子葉を取り、中央脈を介して縦方向に半分に切断し、外植体として使用した。外植体は、乾燥するのを防ぐために、液体ＭＳ培地（表１）に浸したペトリ皿中の滅菌濾紙上に置かれた。
共培養
共培養の朝に、一晩培養したバクテリア培養物を、1000rpmで１０分間遠心分離した。上澄みを除去し、沈殿物を液体ＭＳ培地（２５ ml）中で再懸濁し、十分に混合した（表１）。100ｍＭのアセトシリンゴンをバクテリア培養物に25μl添加し、インキュベーター中に振とうしながらさらに２時間置いた。バクテリア培養物の吸光度（ＯＤ）は、６００nmにおけるＯＤが1.5から1.8に達するまで測定された。外植体は、ペトリ皿またはガラスビーカー中のバクテリア培養物中で、ゆっくり攪拌しながら１０分間インキュベートされた。次に、外植体は余剰分のバクテリアを除去するために滅菌濾紙上にブロットされ、共培養のために、３日間共培養培地Ｂ１ＡｓＰ（表の培地組成を参照）上に置かれた（１５ 外植体／プレート）。プレートは、２５℃、１６時間光条件下、８時間暗黒条件下の光周期型の光照射下で３日間インキュベートされた。
ポジティブコントロールおよびネガティブコントロールは、それぞれの実験で維持された。ポジティブコントロールは、組織培養再生をチェックするために抗生物質のない培地上で再生された外植体である。一方、ネガティブコントロールは、抗生物質の生育に対する抑制を確認ために抗生物質を含んでいる培地上で維持された外植体である。
選択（Ｂ1ＫＣ 培地）
3日後、外植体を、2週間の期間で、50mg/lのカナマイシンおよび250mg/lのセファトキシンを含む選択培地B1KC(表1)に移した。形質転換された外植体は、外植体の切除端部にカルスを形成する。一方、形質転換されていない外植体は白化する。形質転換したものと推定された外植体は、2週間、新たな選択培地B1KC上で再び維持された。これは、合計の期間が６週間に達するまで選択培地上で繰り返された。６週間経過後、緑色の分裂組織／カルスが発達する。
再生（ＣＦ２ＫＣ 培地）
緑色の分裂組織は、２週間の期間、５０mg/lのカナマイシン、２５０ｍｇ／ｌのセホタキシムを含有するＣＦ２ ＫＣ（表１）に移された。当該カルスは新たな培地上で2週間ごとに３回継代培養され（３selections）、その結果カルスが小さな緑色のシュートの芽となった。
伸長（Ｂ root ＫＣ培地）
シュートの芽は、2週間の期間、50mg/litのカナマイシン、250 mg／lのセホタキシムを含有するBrootKC 培地（表１）に移された。当該シュートの芽は新たな培地上で２週間ごとに2回継代培養された（２ selections）。４週間経過後、シュートの芽は伸長し、発根できる状態となった。伸長培地上で発根が開始されることもあった。伸長培地上で発根を開始した場合、小植物体（plantlet）は、根にダメージを与えないようにするためにそのまま維持された。
発根（ＴＭＧＲＧＫＣ 培地）
シュートは、２週間の期間、50mg/litのカナマイシン、250 mg／lのセホタキシムを含有する発根培地TMRGKC（表１）に移された。シュートは、根が生じるまで２週間ごとに継代培養された。
ハードニング
発根した植物体はゲル化剤（寒天またはphytagel）を除くために十分に滅菌された蒸留水で洗浄された。植物体は、Promix（６０％）と土（４０％）のミクスチャを含むカップに移す少なくとも一時間前に、０．１％のバビスチンで処理された。植物体は７日間、ポリエチレン製の袋で覆われた。７日後、ポリエチレン製の袋は、ハードニング処理を開始するために端部が切除され、約２週間後に完了した。
Figure 0005164862
（実施例２）
ナス植物ＥＥ−１エリートイベントの同定
商用のトランスジェニックナス系統を作り出すためのトランス遺伝子を強く発現し、遺伝的に安定であるイベントの可能性を最大化するために、多量（＞５０）の独立形質転換イベントが作られた。形質転換実験により得られた全てのナス植物体は、ＰＣＲによりcry1Ac遺伝子の存在について分析され、ポジティブである植物体は、トランス遺伝子の発現度を決定するためにＥＬＩＳＡに供された。最初の形質転換体（ＴＯ）は自家受精により次の世代に進み、Ｔ１子孫植物体はトランスジーンの分離（segregation）を決定するためにＰＣＲによりチェックされた。単一のcry1Ac遺伝子が挿入された系統内のトランスジーンの予想されたT1分離比は、メンデル遺伝学に基づき、3:1であった。さらに、cry1Acがトランス遺伝子として導入されたときに優性遺伝子として機能するため、Ｔ１世代において遺伝子の発現がモニターされた。また、単一の挿入イベントについて、Ｃｒｙ１Ａｃ発現植物体と非発現植物体との予想された比率は３：１である。昆虫のバイオアッセイは、どの系統が果実やシュートに穴を開ける害虫に対しより高い効果を有するか決定するために、選択された系統由来の組織について実行された。選択された形質転換イベントのサザンブロット分析は、トランスジーンがナスゲノムに組み込まれた位置の数（挿入コピー数）を確認するために行われた。
上記の基準に基づいて、単一の位置挿入のイベントの分離特性を示し、fruit and shoot borerに対し有効な耐性を示した形質転換系統が選択された。一方、異常な分離比および／または害虫に対する低い効果しかないことが明らかとなった系統は選択されなかった。進展のために選択された系統は温室内で栽培され、量的ＥＬＩＳＡにより、農作物の世代を通じて評価された。それにより、最もタンパクを発現する系統の決定が可能となる。分析された組織は葉、シュート、茎（stem）、花、および根であった。上記のパラメーターの詳細な解析の後、イベントEE-1は、Cry1Ac発現、および害虫に対する効果および3世代以上の植物体の世代の遺伝子安定性の点から、最良の利用可能なイベントであることが明らかとなった。 EE-1エリートイベントは、fruit and shoot borerに耐性を有するナスの開発のためのさらなる育種に用いられた。
（実施例３）
ＥＥ−１エリートイベントの分子的特性
トランスジェニックＥＥ−１エリートイベントナスは、cry1Ac遺伝子発現カセットのフランキングナスゲノムＤＮＡ配列を同定するために、Cottageらの方法（２００１）を使用して分析された。植物体のゲノムDNAは、ＥＥ−１エリートイベントを有する植物体のフレッシュな幼葉から、当該技術分野において公知の方法により抽出された。
ゲノムDNA(2μg)は、標準バッファを使用し、反応体積20μl中でXmnI酵素により切断された。切断反応は３７℃で一晩インキュベートされた。切断産物は酵素の不活性化のために６５℃でインキュベートされ、3Mの酢酸ナトリウムおよびエタノールで沈殿された。ＤＮＡは空気乾燥され、12μlの滅菌された蒸留水に溶解された。
切断されたDNAは、メーカーによって供給されたリガーゼ・バッファ中でアニールアダプタにライゲーションされた。当該アダプタの配列は以下のとおりである。
ADAP 1: 5’-CTA ATACGACTCACTATAGGGCGGCCGCCCGGGCAGGT- 3’（配列番号１）
ADAP 2: 5’- P-ACC TGC CC-H2N -3’ （配列番号２）
両方のアダプタはまず、互いにアニーリングされ、その後、ＥＥ−１エリートイベントの切断されたゲノムＤＮＡにライゲーションされた。
ライゲーションミクスチャは、切断されたＤＮＡのアニールアダプタへのライゲーションのために、１５−１６℃で一晩インキュベーションされた。ライゲーションミクスチャはアダプタライブラリを得るために１００μｌに希釈され、以下のプライマー組み合わせを使用して第１回目の増幅が行われた。配列番号３のフォワードプライマーは挿入された異種ＤＮＡと相補性を有する。また、配列番号４のリバースプライマーはアダプタＤＮＡ配列と相補性を有する。
MHIP-10 - 5’- TTG GGT CTT TCA GAC TGA CAA G -3’ （配列番号３）
AP - 5’- GGA TCC TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGC-3’ （配列番号４）
制限酵素による切断（Restriction digestion）:

ゲノムDNA 12.0 μl (2 μg)
10X 反応バッファ 2.0 μl (最終濃度 1x)
XmnIenzyme 1.0 μl (10units/ μl)
蒸留水 20.0 μlとなる量
ライゲーション：

切断されたゲノムDNA (熱不活性化) 12.0 μl (2 μg)
アニールアダプタ 2.0 μl (100 ng/μl)
10X 反応バッファ 3.0 μl (最終濃度 1x)
T4-ligase enzyme 1.0 μl (5units/ μl)
蒸留水 30.0 μlとなる量
第１回目のＰＣＲ：

試薬 Volume
Nuclease-free water 25 μlとなる量
10X 反応バッファ (MgCl2含有) 2.5 μl
10mM dNTPs 0.5 μl
プライマー MHIP-10(100ng/μl) 1.0 μl
プライマー AP (100 ng/μl) 1.0 μl
Taq DNA polymerase (5 units/μl) 0.5 μl
DNAテンプレート 3.0 μl
サーマルサイクラープログラム：

Temperature Time Cycles
９５℃ 5 分 1
９４℃ ３０秒
５８℃ ３０秒 ４０
６８℃ ４分
６８℃ １０分 １
４℃ Hold
第２回目のＰＣＲは、挿入された異種遺伝子に隣接する特定のフランキング領域を得るために必要であった。ＰＣＲはフォワードプライマー（配列番号５）とリバースプライマー（配列番号６）を用いて行われた。詳細を以下に示す。
MHIP-11- 5'- CTG ACA AGA TCG ATC TGA AGT C -3' （配列番号５）
NAP - 5'- TAT AGG GCT CGA GCG GC-3’ （配列番号６）
２回目のＰＣＲ：

試薬 Volume
Nuclease-free water 25μlとなる量
10X 反応バッファ (MgCl2含有) 2.5 μl
10mM dNTPs 0.5 μl
プライマー MHIP-11(100ng/μl) 1.0 μl
プライマー NAP (100 ng/μl) 1.0 μl
Taq DNA polymerase (5 units/μl) 0.5 μl
DNA テンプレート 2.0 μl
サーマルサイクラープログラム：

Temperature Time Cycles
95℃ 5分 1
94℃ ３０秒
５８℃ ３０秒 ４０
６８℃ ４分
６８℃ １０分 １
４℃ Hold
少量のPCR産物が1%のアガロースゲル上で分析され、増幅されたフラグメントが当該技術分野で公知の方法の使用によりゲルから溶出された。309 bpのDNAフラグメント(アンプリコン)が、2回目のPCR(配列番号５のMHIP-11および配列番号６のNAPプライマーを使用)の後に、T-DNAの右側末端領域から増幅された。増幅されたフラグメント(アンプリコン)は、組み換えベクターを得るために、pGEM-T Easy vectorにクローニングされた。当該技術分野で公知の方法を用いて、当該ベクターによりE.coli株が形質転換された。当該株は、ＤＨ５α、Top １０などとすることができる。配列を分析するために選択された組換えベクターを含むクローンは、ＥＥ−１−ＸｍｎＩ−４として設計された。クローンＥＥ−１−ＸｍｎＩ−４由来のプラスミドＤＮＡは、当該技術分野において公知の標準的な方法により単離された。クローンフラグメント（アンプリコン）は、Ｔ７プライマーを用いて配列が決定された。得られたポリヌクレオチド配列を配列番号７に示す。当該配列は、Ｇｍ７Ｓターミネータの一部および右側末端からなるＴ−ＤＮＡベクター配列と、アダプタ配列と、ＥＥ−１Ｔ−ＤＮＡフランキングナスゲノムＤＮＡ配列とを含む。
配列番号７は、フランキングＥＥ−１エリートイベント（１４８−２７８塩基対）に隣接する右側末端配列（９７−１４２塩基対）が続く、プライマーＭＨＩＰ−１１（１−２２塩基対）から開始するＴ−ＤＮＡ配列の一部からなる。フランキングゲノム配列には、アダプタ配列が続く（２７９−３０９塩基対）。
配列番号７

CTGACAAGATCGATCTGAAGTCTAAACAATTCTAAGAGGTATCATGTAGCAGTGTCCTGCCACAATATTGAATTGACCTGCAGGCATGCAAGCTGGGATCAGATAGTCGTTTCCCGCCTTCAGTTTAAACTATCAGTGTTTGTTACCAAAAGTGCTGTCAATAAACACTTAGAAAGGTGTTATCCAAATTTTAAAAAGAAAAAAATAAATGTAAGATTTAAATTTCTAACTTCAAGAGATGCATTCAATTATCACCGCATTATATGATATTCCAAGAATACCTGCCCGGGCGGCCGCTCGAGCCCTATA
配列番号８は、ＥＥ−１エリートイベントのフランキングナスゲノムＤＮＡ配列（４７−１８２）が続く右側末端配列（１−４６）からなる。完全なポリヌクレオチド配列は、配列番号８において示される。
配列番号８

GATCAGATAGTCGTTTCCCGCCTTCAGTTTAAACTATCAGTGTTTGTTACCAAAAGTGCTGTCAATAAACACTTAGAAAGGTGTTATCCAAATTTTAAAAAGAAAAAAATAAATGTAAGATTTAAATTTCTAACTTCAAGAGATGCATTCAATTATCACCGCATTATATGATATTCCAAGAA
配列番号９は、ＥＥ−１エリートイベントのフランキングナスゲノムＤＮＡ配列（４１−１２５）が続く右側末端配列（１−４１）からなる。完全なポリヌクレオチド配列は、配列番号８において示される。
配列番号９

GATCAGATAGTCGTTTCCCGCCTTCAGTTTAAACTATCAGTGTTTGTTACCAAAAGTGCTGTCAATAAACACTTAGAAAGGTGTTATCCAAATTTTAAAAAGAAAAAAATAAATGTAAGATTTAA
配列番号１０は、ＥＥ−１エリートイベントのフランキングナスゲノムＤＮＡ配列（１６−７５）が続く右側末端配列（１−１５）からなる。完全なポリヌクレオチド配列は、配列番号１０において示される。
配列番号１０

GTTTAAACTATCAGTGTTTGTTACCAAAAGTGCTGTCAATAAACACTTAGAAAGGTGTTATCCAAATTTTAAAAA
（実施例４）
ＥＥ−１エリートイベント同定の診断方法
ＰＣＲ方法
ナスＥＥ−１エリートイベントが存在するか否か決定するために、分子的診断方法が開発された。配列番号８に示すフラグメントの配列分析が行われ、診断ツールとして使用するために、トランスジェニック挿入部位を増幅するためのプライマーが設計された。設計された二つのプライマーは、ＥＥ−１ゲノムＤＮＡ由来のトランスジェニック挿入部位を増幅するためのフォワードプライマー ＭＨＴＢＪ−２（配列番号１１）および第２のプライマーＭＨＩＰ−２（配列番号１２）である。

MHTBJ-2: 5’- TGC GGT GAT AAT TGA ATG CAT C -3’ （配列番号１１）
MHIP-2: 5’- GGA GCT TCT CTT GAT GGA GG -3’ （配列番号１２）
これらのプライマー対は、限定されるものではないが、配列番号１１と配列番号１２を含む。３’領域の増幅のために、ＥＥ−１エリートイベントのＤＮＡアンプリコン診断を生成するＤＮＡ増幅反応において使用される配列番号８由来の任意のプライマー対は、本発明の1つの態様である。ポリヌクレオチドは、Cry1Ac遺伝子から右側末端(配列番号１６で提供される1から4091のヌクレオチド位置)の配列を決定する。ＧＭ７Ｓターミネ−タが隣接し、ナスゲノムＤＮＡとアダプタ配列がさらに続く右側末端が続くcry1Ac遺伝子からなる、完全なポリヌクレオチド配列は、配列番号１６において提供される。
しかしながら、ＥＥ−１のアンプリコンＤＮＡ分子診断を生成するためのＤＮＡ分子またはその相補的な分子を使用するこれらの方法の修正は、当該分野の通常の技術の範囲内にある。例えば、プライマー１（配列番号１３）と組み合わせて使用された場合の配列番号１１のプライマーは、１０３０塩基対のアンプリコンを生成する。また、プライマー２（配列番号１４）と組み合わせれば、ＥＥ−１エリートイベントから１２６６塩基対を増幅する。プライマー１およびプライマー２の配列は以下のとおりである。
Primer 1:- 5’- CGAGCTTAAGTTCTCCAACTGC-3’ （配列番号１３）
Primer 2:- 5’- GGAATGTGAAAGGTCATGTGG- 3’ （配列番号１４）
分析については、ポジティブコントロールとネガティブコントロールを有することが重要である。ＰＣＲ方法は、ＥＥ−１エリートイベントと、他のナストランスジェニックイベントおよび非トランスジェニック系統とを区別するために設計された。ナスＥＥ−１エリートイベント由来のゲノムＤＮＡは、当該技術分野において公知の方法により葉から単離された。ゲノムＤＮＡはまた、ＰＣＲ検出方法のためのコントロールとして、他のナストランスジェニックイベントおよび非トランスジェニックナス系統から単離された。反応ミクスチャ中にＤＮＡを含んでいないコントロール反応もまた、含まれていた。
異なる植物体由来のゲノムＤＮＡが、配列番号１１および配列番号１２の２つのプライマーを使用する増幅に供された。詳細を以下に示す。
試薬 添加量
Nuclease-free water 25 μlとなる量
10X 反応バッファ (MgCl2含有) 2.5 μl
10mM dNTPs 0.5 μl
プライマー MHIP-2 (100 ng/μl) 1.0 μl
プライマー MHTBJ-2 (100 ng/μl) 1.0 μl
Taq DNA polymerase (5 units/μl) 0.5 μl
DNA テンプレート 2.0 μl
Temperature Time Cycles
９５℃ 5分 1
９４℃ ３０秒
５８℃ ３０秒 ３５
７２℃ １分
７２℃ ５分 １
４℃ Hold ---
増幅産物は、アガロースゲル電気泳動で分析された。得られた結果は、図２の中で示される。レーン１はHind IIIマーカーで切断されたファージ・ラムダＤＮＡを含んでいる。レーン２のサンプルは、ＥＥ−１のエリートイベント由来のＤＮＡを含んでいる。その一方でレーン３および４のサンプルは、ＥＥ−１のエリートイベントを含んでいない他のトランスジェニックナス由来のＤＮＡを含んでいる。レーン５は非トランスジェニックナスであるコントロールを表し、また、レーン６はＤＮＡを含んでいないコントロール試料である。図から、他のトランスジェニックイベントおよび非トランスジェニックであるナスからではなく、ナスＥＥ−１エリートイベントから６８５ｂｐのフラングメントが増幅されることが明らかである。
（実施例５）
ナスEE-1エリートイベントの接合アッセイ
挿入部分の周辺のゲノム領域が特定された。挿入部分の一方の端部はその配列が分析され、当該配列は配列番号８に記載された。Ｔ−ＤＮＡの他方のフランキング側部由来のナスゲノムＤＮＡ配列が分析され、配列番号１５に示されるようなヌクレオチド配列を有するプライマーが設計された。配列番号１１および配列番号１２のヌクレオチド配列を有するプライマーと組み合わせて使用されたとき、当該プライマーにより、対立遺伝子特異的なトランス遺伝子の増幅により、ＥＥ−１エリートイベントを含むトランスジェニックナス植物体から６８５塩基対のフラグメントが得られた。また、配列番号１１および配列番号１５からの非トランスジェニック対立遺伝子バンドの増幅により、非トランスジェニックナス植物体から３３０塩基対のフラグメントが得られた。
MHTBJ-6: 5’-CCA TCT ACT AAC GGT GAT GGT -3’ （配列番号１５）
EE-1エリートイベントを含むホモ接合およびヘテロ接合のトランスジェニックナス植物体を同定するために、配列番号１１、１２、および１５で示されるようなヌクレオチド配列を有する３つのプライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応が行われた。
ＥＥ−１エリートイベントを含むトランスジェニックナス由来ゲノムDNA、および非トランスジェニックナス植物体由来ゲノムＤＮＡは、当該技術分野で公知の方法を用いて単離された。当該ＤＮＡがＤＮＡ ＰＣＲ分析テンプレートとして用いられた。ＥＥ−１エリートイベントの接合性ＰＣＲを行うためのＰＣＲ条件を以下に示す。
試薬 添加量
Nuclease-free water 25 μlとなる量
10X 反応バッファ (MgCl2含有) 2.5 μl
10mM dNTPs 0.5 μl
プライマー MHTBJ-6 (100 ng/μl) 1.0 μl
プライマー MHIP-2 (100 ng/μl) 1.0 μl
プライマー MHTBJ-2 (100 ng/μl) 1.0 μl
Taq DNA polymerase (5 units/μl) 0.5 μl
DNA テンプレート 2.0 μl
サーマルサイクラープログラム：
Temperature Time Cycles
９５℃ 5分 1
９４℃ ４０秒
５８℃ ４０秒 ３５
７２℃ １：４０分
７２℃ ５分 １
４℃ Hold ---
ポリメラーゼ連鎖反応は、EE-1エリートイベントを有するホモ接合型のナス植物体由来の６８５塩基対のフラグメントを増幅し、EE-1エリートイベントを有するヘテロ接合型のナス植物体から大きさが６８５塩基対と３３０塩基対である２つのフラグメントが得られた。また、非トランスジェニックナス植物体から大きさが３３０塩基対のフラグメントが得られた。
配列番号１６

ATGGACAACAACCCAAACATCAACGAATGCATTCCATACAACTGCTTGAGTAACCCAGAAGTTGAAGTACTTGGTGGAGAACGCATTGAAACCGGTTACACTCCCATCGACATCTCCTTGTCCTTGACACAGTTTCTGCTCAGCGAGTTCGTGCCAGGTGCTGGGTTCGTTCTCGGACTAGTTGACATCATCTGGGGTATCTTTGGTCCATCTCAATGGGATGCATTCCTGGTGCAAATTGAGCAGTTGATCAACCAGAGGATCGAAGAGTTCGCCAGGAACCAGGCCATCTCTAGGTTGGAAGGATTGAGCAATCTCTACCAAATCTATGCAGAGAGCTTCAGAGAGTGGGAAGCCGATCCTACTAACCCAGCTCTCCGCGAGGAAATGCGTATTCAATTCAACGACATGAACAGCGCCTTGACCACAGCTATCCCATTGTTCGCAGTCCAGAACTACCAAGTTCCTCTCTTGTCCGTGTACGTTCAAGCAGCTAATCTTCACCTCAGCGTGCTTCGAGACGTTAGCGTGTTTGGGCAAAGGTGGGGATTCGATGCTGCAACCATCAATAGCCGTTACAACGACCTTACTAGGCTGATTGGAAACTACACCGACCACGCTGTTCGTTGGTACAACACTGGCTTGGAGCGTGTCTGGGGTCCTGATTCTAGAGATTGGATTAGATACAACCAGTTCAGGAGAGAATTGACCCTCACAGTTTTGGACATTGTGTCTCTCTTCCCGAACTATGACTCCAGAACCTACCCTATCCGTACAGTGTCCCAACTTACCAGAGAAATCTATACTAACCCAGTTCTTGAGAACTTCGACGGTAGCTTCCGTGGTTCTGCCCAAGGTATCGAAGGCTCCATCAGGAGCCCACACTTGATGGACATCTTGAACAGCATAACTATCTACACCGATGCTCACAGAGGAGAGTATTACTGGTCTGGACACCAGATCATGGCCTCTCCAGTTGGATTCAGCGGGCCCGAGTTTACCTTTCCTCTCTATGGAACTATGGGAAACGCCGCTCCACAACAACGTATCGTTGCTCAACTAGGTCAGGGTGTCTACAGAACCTTGTCTTCCACCTTGTACAGAAGACCCTTCAATATCGGTATCAACAACCAGCAACTTTCCGTTCTTGACGGAACAGAGTTCGCCTATGGAACCTCTTCTAACTTGCCATCCGCTGTTTACAGAAAGAGCGGAACCGTTGATTCCTTGGACGAAATCCCACCACAGAACAACAATGTGCCACCCAGGCAAGGATTCTCCCACAGGTTGAGCCACGTGTCCATGTTCCGTTCCGGATTCAGCAACAGTTCCGTGAGCATCATCAGAGCTCCTATGTTCTCTTGGATACACCGTAGTGCTGAGTTCAACAACATCATCGCATCCGATAGTATTACTCAAATCCCTGCAGTGAAGGGAAACTTTCTCTTCAACGGTTCTGTCATTTCAGGACCAGGATTCACTGGTGGAGACCTCGTTAGACTCAACAGCAGTGGAAATAACATTCAGAATAGAGGGTATATTGAAGTTCCAATTCACTTCCCATCCACATCTACCAGATATAGAGTTCGTGTGAGGTATGCTTCTGTGACCCCTATTCACCTCAACGTTAATTGGGGTAATTCATCCATCTTCTCCAATACAGTTCCAGCTACAGCTACCTCCTTGGATAATCTCCAATCCAGCGATTTCGGTTACTTTGAAAGTGCCAATGCTTTTACATCTTCACTCGGTAACATCGTGGGTGTTAGAAACTTTAGTGGGACTGCAGGAGTGATTATCGACAGATTCGAGTTCATTCCAGTTACTGCAACACTCGAGGCTGAGTACAACCTTGAGAGAGCCCAGAAGGCTGTGAACGCCCTCTTTACCTCCACCAATCAGCTTGGCTTGAAAACTAACGTTACTGACTATCACATTGACCAAGTGTCCAACTTGGTCACCTACCTTAGCGATGAGTTCTGCCTCGACGAGAAGCGTGAACTCTCCGAGAAAGTTAAACACGCCAAGCGTCTCAGCGACGAGAGGAATCTCTTGCAAGACTCCAACTTCAAAGACATCAACAGGCAGCCAGAACGTGGTTGGGGTGGAAGCACCGGGATCACCATCCAAGGAGGCGACGATGTGTTCAAGGAGAACTACGTCACCCTCTCCGGAACTTTCGACGAGTGCTACCCTACCTACTTGTACCAGAAGATCGATGAGTCCAAACTCAAAGCCTTCACCAGGTATCAACTTAGAGGCTACATCGAAGACAGCCAAGACCTTGAAATCTACTCGATCAGGTACAATGCCAAGCACGAGACCGTGAATGTCCCAGGTACTGGTTCCCTCTGGCCACTTTCTGCCCAATCTCCCATTGGGAAGTGTGGAGAGCCTAACAGATGCGCTCCACACCTTGAGTGGAATCCTGACTTGGACTGCTCCTGCAGGGATGGCGAGAAGTGTGCCCACCATTCTCATCACTTCTCCTTGGACATCGATGTGGGATGTACTGACCTGAATGAGGACCTCGGAGTCTGGGTCATCTTCAAGATCAAGACCCAAGACGGACACGCAAGACTTGGCAACCTTGAGTTTCTCGAAGAGAAACCATTGGTCCGGTGAAGCTCTCGCTCGTGTGAAGAGAGCAGAGAAGAAGTGGAGGGACAAACGTGAGAAACTCGAATGGGAAACTAACATCGTTTACAAGGAGGCCAAAGAGTCCGTGGATGCTTTGTTCGTGAACTCCCAATATGATCAGTTGCAAGCCGACACCAACATCGCCATGATCCACGCCGCAGACAAACGTGTGCACAGCATTCGTGAGGCTTACTTGCCTGAGTTGTCCGTGATCCCTGGTGTGAACGCTGCCATCTTCGAGGAACTTGAGGGACGTATCTTTACCGCATTCTCCTTGTACGATGCCAGAAACGTCATCAAGAACGGTGACTTCAACAATGGCCTCAGCTGCTGGAATGTGAAAGGTCATGTGGACGTGGAGGAACAGAACAATCAGCGTTCCGTCCTGGTTGTGCCTGAGTGGGAAGCTGAAGTGTCCCAAGAGGTTAGAGTCTGTCCAGGTAGAGGCTACATTCTCCGTGTGACCGCTTACAAGGAGGGATACGGTGAGGGTTGCGTGACCATCCACGAGATCGAGAACAACACCGACGAGCTTAAGTTCTCCAACTGCGTCGAGGAAGAAATCTATCCCAACAACACCGTTACTTGCAACGACTACACTGTGAATCAGGAAGAGTACGGAGGTGCCTACACTAGCCGTAACAGAGGTTACAACGAAGCTCCTTCCGTTCCTGCTGACTATGCCTCCGTGTACGAGGAGAAATCCTACACAGATGGCAGACGTGAGAACCCTTGCGAGTTCAACAGAGGTTACAGGGACTACACACCACTTCCAGTTGGCTATGTTACCAAGGAGCTTGAGTACTTTCCTGAGACCGACAAAGTGTGGATCGAGATCGGTGAAACCGAGGGAACCTTCATCGTGGACAGCGTGGAGCTTCTCTTGATGGAGGAAagatctagaggcctgaattcgagctcggtacccggggatcccgtcctttgtcttcaattttgagggctttttactgaataagtatgtagtactaaaatgtatgctgtaatagctcatagtgagcgaggaaagtatcgggctatttaactatgacttgagctccatctatgaataaataaatcagcatatgatgcttttgttttgtgtacttcaactgtctgcttagctaatttgatatggttggcacttggcacgtataaatatgctgaagtaatttactctgaagctaaataactagattagatgagtgtattatatacaaaaggcattaaatcagatacatcttagacaaattgtcacggtctaccagaaaagaaattgcatttgtttttgggtctttcagactgacaagatcgatctgaagtctaaacaattctaagaggtatcatgtagcaatgtcctgccacaatATTGAATTGACCTGCAGGCATGCAAGCTGGGATCAGATAGTCGTTTCCCGCCTTCAGTTTAAACTATCAGTGTTTGTTACCAAAAGTGCTGTCAATAAACACTTAGAAAGGTGTTATCCAAATTTTAAAAAGAAAAAAATAAATGTAAGATTTAAATTTCTAACTTCAAGAGATGCATTCAATTATCACCGCATTATATGATATTCCAAGAATACCTGCCCGGGCGGCCGCTCGAGCCCTATA
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図１はコンストラクトpMON10518のマップを示す。 図２はイベント特有のプライマーを用いたナス植物体からの増幅産物のゲルの画像を示す。レーン１：lambda/HindIII markerフェーズ。レーン２：ＥＥ−１エリートイベントを含む植物体由来のＤＮＡであって、６８５ｂｐの増幅されたフラグメントを示す。レーン３および４：ＥＥ−１イベントを含まないトランスジェニックナス植物体由来のＤＮＡ。レーン５：非トランスジェニックナス植物体由来のＤＮＡテンプレート。レーン６：ＤＮＡを含まない（水）−ネガティブコントロール。

Claims (12)

  1. 試料中のcry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物EE-1イベントの核酸配列の存在の検出方法であって、
    （a）配列番号８のヌクレオチド配列のヌクレオチド位置１１からヌクレオチド位置８５の少なくとも５０の連続したヌクレオチドを備えるポリヌクレオチドプローブを試料と接触させることと、
    （b)試料および前記ポリヌクレオチドプローブをストリンジェントハイブリダイゼーション条件下におくことと、
    (c) 前記試料中における配列番号１０のヌクレオチド配列を含む前記核酸配列への前記ポリヌクレオチドプローブの結合を検出することと、を備えることを特徴とする検出方法。
  2. 試料中の前記cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベント核酸配列の存在の検出方法であって、
    a)配列番号１１に記載された第１のヌクレオチド配列、および配列番号１２、配列番号１３、および配列番号１４からなる群から選択される第２のヌクレオチド配列と試料とを接触させることと、
    b)核酸増幅反応を行い、それによって増幅されたフラグメントを生成することと、
    c)前記増幅されたフラグメントを検出することとを備え、前記増幅されたフラグメントは配列番号１０のヌクレオチド配列を含むことを特徴とする検出方法。
  3. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号８のポリヌクレオチド配列またはその相補的配列を備えることを特徴とするポリヌクレオチド。
  4. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号９のポリヌクレオチド配列またはその相補的配列を備えることを特徴とするポリヌクレオチド。
  5. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントの検出に使用可能である単離されたポリヌクレオチドであって、前記ポリヌクレオチドが配列番号１０のポリヌクレオチド配列またはその相補的配列を備えることを特徴とするポリヌクレオチド。
  6. 試料中のcry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントの核酸配列の存在の検出キットであって、
    前記キットは、
    配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるポリヌクレオチド配列と、
    バッファとを備えることを特徴とする検出キット。
  7. 試料中のcry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントの核酸配列の存在の検出キットであって、
    前記キットは、
    配列番号１１の配列を有する第１のヌクレオチドと、
    配列番号１２、配列番号１３、および配列番号１４からなる群から選択される第２のヌクレオチド配列を備えることを特徴とする検出キット。
  8. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントの存在の検出のための、２つのオリゴヌクレオチドを備える合成オリゴヌクレオチドセットであって、
    第１のオリゴヌクレオチドは配列番号１１のヌクレオチド配列を備え、
    第２のオリゴヌクレオチドは配列番号１２、配列番号１３、および配列番号１４からなる群から選択されるヌクレオチド配列を備えることを特徴とする合成オリゴヌクレオチドセット。
  9. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントを有する子孫（progeny）の接合性を決定するための、２つのオリゴヌクレオチドを備える合成オリゴヌクレオチドセットであって、
    第１のオリゴヌクレオチドは配列番号１１のヌクレオチド配列を備え、
    第２のオリゴヌクレオチドは配列番号１２および配列番号１５からなる群から選択されるヌクレオチド配列を備えることを特徴とする合成オリゴヌクレオチドセット。
  10. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントを有するトランスジェニック植物体または種子であって、
    前記EE-1イベントのゲノムが配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備えることを特徴とするトランスジェニック植物体または種子。
  11. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントを有するトランスジェニック植物細胞であって、前記ＥＥ−１イベントのゲノムが配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備えることを特徴とするトランスジェニック植物細胞。
  12. cry1Ac遺伝子を含む耐虫性ナス植物ＥＥ−１イベントを有する子孫（progency）であって、前記ＥＥ−１イベントのゲノムが配列番号８、または配列番号９、または配列番号１０、またはそれらの相補的配列であるヌクレオチド配列を備えることを特徴とする子孫。
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