JP5092405B2

JP5092405B2 - 選択結合性物質固定化担体

Info

Publication number: JP5092405B2
Application number: JP2007002503A
Authority: JP
Inventors: 邦久薙野; 真紀子市川; 有樹瀧井
Original assignee: Toray Industries Inc
Current assignee: Toray Industries Inc
Priority date: 2006-01-12
Filing date: 2007-01-10
Publication date: 2012-12-05
Anticipated expiration: 2027-01-10
Also published as: JP2007212446A

Description

本発明は、選択結合性物質固定化担体に関し、詳しくは、検体と選択的に結合する物質（本明細書において「選択結合性物質」という。）が固定化され、検体と選択結合性物質の反応による分析を行う際に用いうる選択結合性物質固定化担体、当該選択結合性物質固定化担体を含む分析用チップ、及び前記選択結合性物質固定化担体並びに前記分析用チップを用いた被検物質の分析方法、及び選択結合性物質固定化担体に関する。

各種生物の遺伝情報解析の研究が始められている。ヒト遺伝子をはじめとして、多数の遺伝子とその塩基配列、また遺伝子配列にコードされる蛋白質およびこれら蛋白質から二次的に作られる糖鎖に関する情報が急速に明らかにされつつある。配列の明らかにされた遺伝子、蛋白質、糖鎖などの高分子体の機能は、各種の方法で調べることができる。主なものとして、核酸は、ノーザンブロッティング、あるいはサザンブロッティングのように、各種の核酸／核酸間の相補性を利用した方法により、各種遺伝子とその生体機能発現との関係を調べることができる。一方、蛋白質は、ウエスタンブロッティングに代表される蛋白質／蛋白質間の反応を利用し蛋白質の機能および発現について調べることができる。

近年、多数の遺伝子発現を一度に解析する手法として、ＤＮＡマイクロアレイ法（ＤＮＡチップ法）と呼ばれる新しい分析法が開発され、注目を集めている。これらの方法は、いずれも、核酸／核酸間ハイブリダイゼーション反応に基づく核酸検出・定量法である点で原理的には従来の方法と同じである。これらの方法は、蛋白質／蛋白質間あるいは糖鎖／糖鎖間や糖鎖／蛋白質間の特異的な反応に基づく蛋白質や糖鎖検出・定量に応用が可能である。これらの技術は、マイクロアレイ又はＤＮＡチップと呼ばれるガラスの平面基板片上に、多数のＤＮＡ断片や蛋白質、糖鎖が高密度に整列固定化されたものが用いられている点に大きな特徴がある。ＤＮＡチップの具体的使用法としては、例えば、研究対象細胞の発現遺伝子等を蛍光色素等で標識したサンプルを平面基板片上でハイブリダイゼーションさせ、互いに相補的な核酸（ＤＮＡあるいはＲＮＡ）同士を結合させ、その箇所を高解像度検出装置（スキャナー）で高速に読み取る方法や、電気化学反応にもとづく電流値等の応答を検出する方法が挙げられる。このようして、サンプル中のそれぞれの遺伝子量を迅速に推定できる。また、ＤＮＡチップの応用分野は、発現遺伝子の量を推定する遺伝子発現解析のみならず、遺伝子の一塩基置換（ＳＮＰ）を検出する手段としても大きく期待されている。

ＤＮＡチップによる検出の際は、調製したＤＮＡを含む溶液（ＤＮＡ溶液）を、ＤＮＡチップ上の選択結合性物質と反応させることが必要であるが、このような反応をビーズを用いて促進させる方法も開発されている（例えば、特許文献１、特許文献２など）。しかしながら、いずれの方法もビーズが沈殿や偏りを起こしやすく、また、ビーズがＤＮＡを破損する危険がある、などといった問題点があり、反応を十分に促進させるものではなかった。

特許第３５５７４１９号公報特開２００３−２４８００８号公報

本発明は、前記課題を解決するもので、被検物質を含む溶液を、選択結合性物質固定化担体を密接してスポットした場合にも、被験物質を選択結合性物質に効率よく接触させることができ、被検物質と固定化された選択結合性物質との選択的な反応を簡便に且つ安定して行うことができる選択結合性物質固定化担体を提供することにある。

上記課題を解決するため、本発明者らは鋭意検討を重ねた。その過程で、特開２００４−２６４２８９号公報に記載されている、選択結合性物質が凹凸部の複数の凸部に固定化される基板において、凹部に微粒子を移動可能に格納させ、これを揺動、回転等させることにより、被検物質を含む溶液を撹拌させ、固定化された選択結合性物質との選択的な反応を促進できることに着目した。

しかし、上記特開２００４−２６４２８９号公報の基板において、凸部を等間隔に形成すると、凸部を密接して多数形成させる場合には、凹部のスペースを十分に取ることができず、非常に小さな微粒子しか用いることができず、撹拌を十分に行うことができなかった。

そこで、本発明者らは、凸部の間隔を調整することにより、凸部を多数形成した場合にも凹部のスペースを確保することができ、凹部に比較的大きいサイズの微粒子やマイクロロッド（微細な棒状）を格納することも可能となり、撹拌効率を高めることができることを見出し、本発明に到達した。

本発明によれば、下記のものが提供される：
〔１〕担体上に凹部及び凸部からなる凹凸部を有し、前記凹凸部を構成する複数の凸部の上面に選択結合性物質が固定化される担体であって、
前記凹凸部は、凸部がマトリクス状に形成された複数のサブブロック領域からなることを特徴とする選択結合性物質固定化担体。
〔２〕前記凹凸部において、隣接するサブブロック領域間の凹部の幅が、サブブロック領域内の凹部の幅よりも広いことを特徴とする前記〔１〕に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔３〕サブブロック領域間の凹部の幅が、２００μｍ以上であることを特徴とする前記〔１〕または〔２〕に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔４〕前記凹凸部において、複数の凹部の深さを有することを特徴とする前記〔１〕〜〔３〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔５〕前記凹凸部において、隣接するサブブロック領域間の凹部の深さが、サブブロック領域内の凹部の深さよりもよりも深いことを特徴とする前記〔１〕〜〔４〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔６〕サブブロック領域間の凹部の深さが、凸部上面から凹部底面までの深さで１００μｍ以上であることを特徴とする前記〔１〕〜〔５〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔７〕前記凹凸部において、凹部に微粒子またはマイクロロッドが移動可能に格納されていることを特徴とする前記〔１〕〜〔６〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔８〕前記選択結合性物質固定化担体の凹凸部を有する表面に、平坦部が設けられてなることを特徴とする前記〔１〕〜〔７〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔９〕前記選択結合性物質が、ＤＮＡ、ＲＮＡ、蛋白質、ペプチド、糖、糖鎖または脂質であることを特徴とする前記〔１〕〜〔８〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
〔１０〕前記〔１〕〜〔９〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体の表面を覆い、前記選択結合性物質固定化担体と接着されたカバー部材を更に備え、前記選択結合性物質固定化担体と前記カバー部材との間に空隙を有し、前記カバー部材は前記空隙に連通する１つ以上の貫通孔を有することを特徴とする分析用チップ。
〔１１〕前記〔１〕〜〔９〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体に、被検物質を接触させて選択的に結合させ、前記選択結合性物質固定化担体上に前記選択結合性物質を介して結合した前記被検物質量を測定することを特徴とする被検物質の分析方法。
〔１２〕前記選択結合性物質固定化担体に被検物質を接触させるにあたり、前記選択結合性物質固定化担体と被検物質が含まれる溶液とを撹拌することを特徴とする前記〔１１〕に記載の分析方法。
〔１３〕前記〔１０〕に記載の分析用チップに、前記貫通孔から被検物質をアプライし、前記カバー部材に封止部材を貼付して前記貫通孔を封止し、前記被検物質を前記分析用チップを構成する担体に選択的に結合させ、更に前記選択結合性物質固定化担体上に前記選択結合性物質を介して結合した前記被検物質量を測定することを特徴とする被検物質の分析方法。
〔１４〕前記貫通孔から被検物質をアプライするにあたり、被検物質が含まれる溶液を貫通孔から注入するとともに、前記検体を前記分析用チップを構成する担体に選択的に結合させるにあたり、前記注入された溶液を撹拌することを特徴とする前記〔１３〕に記載の分析方法。
〔１５〕前記〔１〕〜〔９〕のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体と、前記選択結合性物質固定化担体の表面を覆い前記選択結合性物質固定化担体と接着されたカバー部材と、前記カバー部材に貼付し前記貫通孔を封止する封止部材とを含むことを特徴とする分析用キット。
〔１６〕前記〔１０〕に記載の分析用チップと、前記カバー部材に貼付し前記貫通孔を封止する封止部材とを含むことを特徴とする分析用キット。

本発明によれば、核酸等のハイブリダイゼーションに代表される、被検物質と固定化された選択結合性物質との選択的な反応において、選択結合性物質を密接してスポットした場合にも、被験物質を選択結合性物質固定化担体上の選択結合性物質と効率よく接触させることができ、被検物質と固定化された選択結合性物質との選択的な反応を簡便に且つ安定して行うことができる。

本発明の選択結合性物質固定化担体は、担体上に凹部及び凸部からなる凹凸部を有し、前記凹凸部を構成する複数の凸部の上面に選択結合性物質が固定化される担体であって、前記凹凸部は、凸部がマトリクス状に形成された複数のサブブロック領域からなることを特徴とする。

本発明の選択結合性物質固定化担体は、その表面に、凹部及び凸部からなる凹凸部を有することが必要である。このような構造をとることにより、検出の際、非特異的に吸着した被検物質を検出することがないので、ノイズが小さく、結果的によりＳ／Ｎが良好な結果を得ることができる。ノイズが小さくなる具体的な理由は、以下の通りである。すなわち、凸部上端面に選択結合性物質を固定化した担体をスキャナーと呼ばれる装置を用いてスキャンすると、凹凸部の凸部上端面にレーザー光の焦点が合っていることから、凹部では、レーザー光がぼやけ、凹部に非特異的に吸着した検体の望まざる蛍光（ノイズ）を検出しがたいという効果があるためである。

上記凹凸部において、凸部は、マトリクス状に、すなわち、行方向及び列方向に配置される。このように凸部がマトリクス状に配置されることにより、凸部の間隙を構成する凹部がＸＹ方向に通路状に形成される。このような構成により、凹部に微粒子やマイクロロッドを格納した場合に、微粒子やマイクロロッドを移動可能な状態でかつ選択的結合性物質に接触させずに保持することができる。例えば、図１や図４に示す具体例で説明すると、凸部の列に挟まれた部分、或いは凹凸部と後述の平坦部との境界部分に凹部の列が形成され、凹部の列に格納された微粒子やマイクロロッドが前後左右方向に移動可能となる。なお、凸部の形状は、担体表面に凹凸部が形成される程度であれば良いが、特に円柱、角柱等の柱状であることが好ましく、特に円柱状であることが好ましい。

本発明において、このような凹凸部は、上述のようにマトリクス状に形成された凸部が、複数のサブブロック領域からなることが必要である。すなわち、凹凸部においては、マトリックス状に形成されてなる凸部がエリア別に分割され、それぞれがサブブロック領域を構成している。
例えば、図１の例では、複数の凸部１１と、凸部間の凹部１０からなる凹凸部１２が複数のサブブロック領域Ｓ１、Ｓ２、Ｓ３・・・・・・Ｓ３２に分割されており、各サブブロック領域内において凸部１１はマトリックス状にＸＹ方向に形成されている。サブブロック領域のサイズは、凹凸部に設ける凸部の数、微粒子、マイクロロッドのサイズ等に応じて定めることができる。サブブロックの領域のサイズとしては、そのピッチが３８４マイクロタイタープレートのウェルの間隔に相当する４．５ｍｍを好ましく用いることができるが、これに制限されるものではない。

凹凸部における凹部の幅は、担体上に設ける凸部の数、および、凸部の大きさによってほぼ決まるが、通常１０〜８００μｍ、好ましくは、５０〜２００μｍとすることができる。また、凸部を円柱状とする場合には、隣接する凸部の中心軸間の距離で５０〜１０００μｍ、好ましくは、１００〜５００μｍの範囲で適宜定めることができる。特に、サブブロック領域内外で凹部の幅を変更することが好ましく、中でも、隣接するサブブロック領域間の凹部の幅が、サブブロック領域内の凹部の幅よりも広くなるようにすると、微粒子の大きさやマイクロロッドの直径が制限されず、効率の良い撹拌が可能となるので好ましい。例えば、微粒子やマイクロロッドを移動させて溶液を撹拌する場合については、撹拌効率は、微粒子・マイクロロッドの直径が１００μｍ以上の場合が好ましい。よって、サブブロック領域間の凹部の幅は、１００μｍの微粒子・マイクロロッドが詰まらない程度の幅を持つことが好ましく、具体的にはその幅を、２００μｍ以上、好ましくは２００〜８００μｍ、特に２５０μｍ〜６００μｍとすることが好ましい。一方、サブブロック領域内の凹部の幅は、基板上に設ける凸部の数によって決まるが、５０〜４００μｍ、好ましくは５０〜１８０μｍとすることができる。

一方、凹凸部における凹部の深さ、すなわち、凸部の上面から凹部の底面までの距離（高さの差）は、微粒子、マイクロロッドが円滑に移動可能な状態となるサイズを適宜設定することができるが、通常は、１０μｍ以上、５００μｍ以下が好ましく、５０μｍ以上、３００μｍ以下が特に好ましい。凸部の高さが１０μｍより低いと、スポット以外の部分の非特異的に吸着した検体試料を検出してしまうことがあり、結果的にＳ／Ｎが悪くなることがあるため好ましくない。また、凸部の高さが５００μｍより高いと、凸部が折れて破損しやすいなどの問題が生じる場合があり好ましくない。

本発明においては、凹部の幅を特に、サブブロック領域内外で変更することが好ましい。特に、凹凸部内で複数の深さの凹部を設けること、すなわち、凹部の深さを一定とせずに、凹部ごとに異なる深さとすることもでき、この場合、隣接するサブブロック領域間の凹部の深さを、サブブロック領域内の凹部の深さよりも深くすることにより、微粒子の大きさ、マイクロロッドの直径が制限されず、効率の良い撹拌が可能となるので好ましい。またこの場合は、凸部上面に選択結合性物質を固定化した効果を失わない範囲で、サブブロック領域内の凹部の深さを浅くすることが可能となるので、必要な被検物資が含まれる溶液（以下、検体溶液という。）の量を減らすことが可能となることからも好ましい。検体溶液の量を減らすことが可能となると、後述する検体自体の量を減らすこと、または、検体溶液中の検体の濃度を濃くすることが可能となる。特に、検体溶液中の検体濃度を濃くすれば、担体に固定化された選択性結合物質と検体との反応効率を上げることができ、結果的にシグナル強度が強くなる。具体的には例えば、サブブロック領域間の凹部の深さを、凸部上面から凹部底面までの深さで１００μｍ以上、好ましくは１００〜５００μｍ、特に１００〜３００μｍとすることができ、一方、サブブロック領域内の凹部の深さを２０〜２００μｍ、好ましくは３０〜１５０μｍ、特に３０〜１００μｍとすることができる。

凹凸部の凸部の上面の高さに関しては、それぞれの凸部の上端面の高さが略同一であるであることが好ましい。ここで、高さが略同一とは、多少高さの違う凸部の上端面に選択結合性物質を固定化し、これと蛍光標識した検体とを反応させ、そして、スキャナーでスキャンした際、その信号レベルの強度差が問題とならない高さをいう。具体的に高さが略同一とは、高さの差が５０μｍ以下であることをいう。高さの差は３０μｍ以下であることがより好ましく、高さが同一であればなお好ましい。なお、本願でいう同一の高さとは、生産等で発生するばらつきによる誤差も含むものとする。最も高い凸部上端面の高さと、最も低い凸部上端面の高さの差が５０μｍより大きいと、高さのずれた凸部上端面でのレーザー光がぼやけてしまい、この凸部上端面に固定化された選択結合性物質と反応した検体からのシグナル強度が弱くなる場合があるため好ましくない。
また、凸部分の上端面は、実質的に平坦であることが好ましい。ここで凸部上端面が実質的に平坦とは、２０μｍ以上の凹凸がないことを意味する。

本発明においては、上述した凹凸部のうち凸部の上面（上端面）に選択結合性物質（プローブ）が固定化される。選択結合性物質の固定化は、予めなされるものであっても良く、また、選択結合性物質を固定化しないで担体のみを用意しておき、検体の分析の際に所望の検体に応じた選択結合性物質を適宜選択し固定することもできる。
凸部の上面に固定化できる選択結合性物質（例えば核酸）は、データとして必要なものを適宜選択することができるが、単なるダミーの選択結合性物質であっても良い。また、すべての凸部表面に選択結合性物質を結合する必要は無く、何も固定化していない凸部を有していても良い。

本発明の担体の凸部の上面の面積は、略同一であることが好ましい。凸部の上面の面積が略同一であることにより、多種の選択結合性物質が固定化される部分の面積を同一にできるので、後の解析に有利である。ここで、凸部の上部の面積が略同一とは、凸部の中で最も大きい上端面積を、最も小さい上端面積で割った値が１．２以下であることを言う。

選択結合性物質が固定化された凸部の上面の面積は、特に限定されるものではないが、選択結合性物質の量を少なくすることができる点とハンドリングの容易さの点から、１ｍｍ²以下、１０μｍ²以上が好ましい。また、凸部の数は、凸部の形状やサイズ、凹凸部の面積、凹部の幅、サブブロック領域、微粒子やマイクロロッドのサイズ等により適宜定めることができる。凸部の数の好ましい範囲は、本発明の効果を発揮できる点から鑑みると、１０００個から５００００個である。より好ましい範囲は、３０００個から５００００個であり、特に好ましくは、５０００個から５００００個である。凸部の密度としては、５個／ｍｍ²から５０個／ｍｍ²の間が好ましい範囲である。

本発明の担体において、さらに好ましくは、その担体における凹凸部を有する面に、さらに平坦部が設けられていることが好ましい。このような構造とすることにより、凹凸部に検体溶液をアプライすることが容易となる。
凹凸部の凸部の上端面の高さと平坦部の高さは、略同一であることが好ましい。すなわち、平坦部の高さと凸部上端面の高さの差は、５０μｍ以下であることが好ましい。凸部上端面の高さと平坦部の高さの差が５０μｍを超えると、検出できる蛍光強度が弱くなる場合があるため好ましくない。平坦部の高さと凸部上端面の高さの差は、より好ましくは３０μｍ以下であり、さらに好ましくは、１０μｍ以下である。最も好ましくは、平坦部の高さと凸部の高さは同一である。

本発明の選択結合性物質固定化担体の具体例を図１、図２及び図３を基に説明する。図１は、本発明の選択結合性物質固定化担体の表面上方からみた模式図であり、図２及び図３は、いずれも図１に示す選択結合性物質固定化担体をＣ１面で切断した断面図である。
図１に示す例において、選択結合性物質固定化担体１の表面には、複数の凸部１１を含む凹凸部１２により構成されており、その周りに平坦部１３が設けられている。凸部１１の上面には、選択結合性物質（例えば核酸）が固定化される。

図２の例では、サブブロック領域Ｓｋと隣接するサブブロック領域Ｓｋ＋１間の凹部１０Ａの幅ＷＡが、サブブロック領域内の凹部１０Ｂの幅ＷＢよりも広くなっている。また、平坦部１３とサブブロック領域Ｓｋとの間に凹部１０Ｃが設けられ、その凹部１０Ｃの幅ＷＣは凹部１０Ａの幅ＷＡよりも広くなっている。よって、サブブロック領域内の凹部のみにビーズを入れる場合に比較し、サブブロック領域と隣接するサブブロック領域の間の凹部により大きなビーズを入れることが可能となる。よって、これを移動させることにより効率的に溶液の撹拌が可能となる。
また、図３の例では、図２と同様サブブロック領域Ｓｋと隣接するサブブロック領域Ｓｋ＋１間の凹部１０Ａの幅ＷＡが、サブブロック領域内の凹部１０Ｂの幅ＷＢよりも広くなっており、また平坦部１３とサブブロック領域Ｓｋとの間に凹部１０Ｃが設けられ、その凹部１０Ｃの幅ＷＣは凹部１０Ａの幅ＷＡよりも広くなっている。そして、サブブロック領域Ｓｋと隣接するサブブロック領域Ｓｋ＋１間の凹部１０Ａの深さおよび平坦部１３とサブブロック領域Ｓｋと間の凹部１０Ｃの深さＤＡが、サブブロック領域内の凹部１０Ｂの深さＤＢよりも深くなっている。この場合は、図２の場合と比較し、さらに大きなビーズをサブブロック領域と隣接するサブブロック領域との間の凹部に入れることが可能となるのでより好ましい。

また、図１、図２及び図３の例では、平坦部１３を使って、容易にスキャナーの励起光等の測定用の光線の焦点を凸部１１の上端面に合わせることが可能となる。より具体的に説明すると、担体の表面に測定用のレーザー等の照射光を照射するにあたり焦点を合わせる際には、図４に示すように、バネ４０で付勢して治具４１に選択結合性物質固定化担体１を突き当て、この治具の突き当て面４２の高さにレーザー光４４が合焦するようレンズ４３等により予め焦点を調整しておくことが多い。本発明の選択結合性物質固定化担体の平坦部を治具の面４２に突き当てることにより、容易に担体の凸部上端面にスキャナーのレーザー光の焦点を合わせることが可能となる。なお、図４の例においては、選択結合性物質固定化担体１は、選択結合性物質が固定化された面が下側になるよう固定されている。

本発明の担体、上記凹凸部の凹部に移動可能に格納された微粒子またはマイクロロッドを更に含むことが好ましい。当該微粒子を含むことにより、被検物質が含まれる溶液をアプライした後に分析チップを揺動、回転等させることで、空隙内で微粒子またはマイクロロッドを運動させ、検体溶液と本発明の選択結合性物質固定化担体との十分な撹拌を達成し、より精密な分析を行うことができる。

前記微粒子やマイクロロッドの形状は、特に限定されず、微粒子の場合、球状の形状以外に、多角形でも良く、マイクロロッドの場合、円筒形、角柱形など任意の形状とすることができる。また、微粒子のサイズも特に限定されないが、例えば球状の微粒子の場合、０．１〜３００μｍの範囲とすることができ、更に、マイクロロッドの場合、長さ５０〜５０００μｍ、底面直径１０〜３００μｍの範囲とすることができる。前記微粒子やマイクロロッドの材質も、特に限定されないが、ガラス、セラミック（例えばイットリウム部分安定化ジルコニア）、金属（例えば金、白金、ステンレス）、プラスチック（例えばナイロンやポリスチレン）等を用いることができる。上述の微粒子等は、本発明の選択結合性物質固定化担体に予め格納した態様とすることができるが、被検物質が含まれる溶液に微粒子を混入させて該溶液のアプライと同時に微粒子を格納してもよく、または被検物質が含まれる溶液のアプライの前又は後に、微粒子を別途格納してもよい。マイクロロッドの材料としては、特に限定されるものではないが、加工の容易さの点から、金属（例えば、ステンレス、白金、金）が好ましく用いられる。微粒子やマイクロロッドは、撹拌効率などの面から、１種類を選択して用いることもできる他、２種類以上を組み合わせて用いることができる。

本発明の担体の材質は、特に限定されないが、ガラス、セラミック、シリコンなどの無機材料、ポリエチレンテレフタレート、酢酸セルロース、ポリカーボネート、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、シリコーンゴム等のポリマーなどを挙げることができる。この中でも、ポリメチルメタクリレート、ポリスチレン、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）エラストマー、ガラス及びシリコンを特に好ましく用いることができる。

本発明の選択結合性物質固定化担体は、少なくとも一部が黒色であることが好ましい。このようにすることにより、担体からの自家蛍光を低減することができる。担体の黒色にする部分としては、凹凸部が設けられた担体の本体でも良いし、凸部の側面、凹部に設けられた疎水的な材料や絶縁層でも良いし、これらの全部でも良い。

ここで、担体が黒色であるとは、可視光（波長４００ｎｍ〜８００ｎｍ）において、担体の黒色部分の分光反射率が特定のスペクトルパターン（特定のピークなど）を持たず、一様に低い値であり、かつ、担体の黒色部分の分光透過率も、特定のスペクトルパターンを持たず、一様に低い値であることを意味する。
この分光反射率、分光透過率の値としては、可視光（波長４００ｎｍ〜８００ｎｍ）の範囲の分光反射率が７％以下であり、同波長範囲での分光透過率が２％以下であることが好ましい。尚、ここで言う分光反射率は、ＪＩＳＺ８７２２の条件Ｃに適合した、照明・受光光学系で、担体からの正反射光を取り込んだ場合の分光反射率を言う。

黒色にする手段としては、本発明の選択結合性物質固定化担体に黒色物質を含有させることにより達成しうる。この黒色物質は、光を反射したり透過し難いものであれば、特に制限はないが、好ましいものを挙げると、カーボンブラック、グラファイト、チタンブラック、アニリンブラック、Ｒｕ、Ｍｎ、Ｎｉ、Ｃｒ、Ｆｅ、Ｃｏ、およびＣｕの酸化物、Ｓｉ、Ｔｉ、Ｔａ、ＺｒおよびＣｒの炭化物などの黒色物質が使用できる。

これらの黒色物質は単独で含有させる他、２種類以上を混合して含有させることもできる。例えば、ポリエチレンテレフタレート、シリコーン樹脂などのポリマーの場合は、この中の黒色物質の中でも、カーボンブラック、グラファイト、チタンブラック、アニリンブラックを好ましく含有させることができ、特にカーボンブラックを好ましく用いることができる。ガラス、セラミックの無機材料の場合は、Ｒｕ、Ｍｎ、Ｎｉ、Ｃｒ、Ｆｅ、Ｃｏ、およびＣｕの酸化物、Ｓｉ、Ｔｉ、Ｔａ、ＺｒおよびＣｒの炭化物を好ましく含有させることができる。

本発明の選択結合性物質固定化担体の形状については、担体表面に、上述したような凹部および凸部からなる凹凸部を有するものであれば、特に限定されるものではない。
また、本発明の選択結合性物質固定化担体は、各種製法にて製造することができる。例えば、材質がポリマー等の場合、射出成形法、ホットエンボス法、鋳型内で重合させる方法等により成型することができる。また、材質がガラスやセラミック等の無機物の場合、サンドブラスト法、シリコンの場合は公知の半導体プロセスなどで成型することができる。
成型した担体は、選択結合性物質をその表面に固定化するのに先立ち、必要に応じて各種の表面処理を施すことができる。かかる表面処理としては、具体的には例えば特開２００４−２６４２８９号公報に記載されるものなどを挙げることができる。

本発明の選択結合性物質固定化担体は、検体の分析用チップとして用いることができる。
本発明において、分析用チップとは、被検物質が含まれる溶液（検体溶液）を当該チップにアプライし、検体の存在の有無や、検体の量や、検体の性状等を測定するために用いるチップをいう。具体的には、担体表面に固定化された選択結合性物質と検体との反応により、検体の量や、検体の有無を測定するバイオチップが挙げられる。より具体的には、核酸を担体表面に固定化したＤＮＡチップ、抗体に代表されるタンパク質を担体表面に固定化したタンパク質チップ、糖鎖を担体表面に固定化した糖鎖チップ、及び細胞を担体表面に固定化した細胞チップ等が挙げられる。

本発明において、選択結合性物質とは、検体と直接的又は間接的に、選択的に結合し得る各種の物質を意味する。担体の表面に結合しうる選択結合性物質の代表的な例としては、核酸、蛋白質、ペプチド、糖類、脂質を挙げることができる。
核酸としては、ＤＮＡやＲＮＡでも良く、またＰＮＡでも良い。特定の塩基配列を有する一本鎖核酸は、該塩基配列又はその一部と相補的な塩基配列を有する一本鎖核酸と選択的にハイブリダイズして結合するので、本発明でいう「選択結合性物質」に該当する。
核酸は、生細胞等天然物由来のものであっても良いし、核酸合成装置により合成されたものであっても良い。生細胞からのＤＮＡ又はＲＮＡの調製は、公知の方法、例えばＤＮＡの抽出については、Ｂｌｉｎらの方法（Blin et al., Nucleic Acids Res. 3: 2303 (1976)）等により、また、ＲＮＡの抽出については、Ｆａｖａｌｏｒｏらの方法（Favaloro et al., Methods Enzymol.65: 718 (1980)）等により行うことができる。固定化する核酸としては、更に、鎖状若しくは環状のプラスミドＤＮＡや染色体ＤＮＡ、これらを制限酵素により若しくは化学的に切断したＤＮＡ断片、試験管内で酵素等により合成されたＤＮＡ、又は化学合成したオリゴヌクレオチド等を用いることもできる。

また、蛋白質としては、抗体及びＦａｂフラグメントやＦ（ａｂ´）₂フラグメントのような、抗体の抗原結合性断片、並びに種々の抗原を挙げることができる。抗体やその抗原結合性断片は、対応する抗原と選択的に結合し、抗原は対応する抗体と選択的に結合するので、「選択結合性物質」に該当する。
糖類としては、各種単糖のほか、オリゴ糖や多糖などの糖鎖を挙げることができる。
脂質としては、単純脂質の他、複合脂質であっても良い。
更に、上記核酸、蛋白質、糖類、脂質以外の抗原性を有する物質を固定化することもできる。また、選択結合性物質として、担体の表面に細胞を固定化してもよい。
これらの選択結合性物質のうち特に好ましいものとして、ＤＮＡ、ＲＮＡ、蛋白質、ペプチド、糖、糖鎖または脂質を挙げることができる。

本発明の選択結合性物質固定化担体を分析用チップとして用いる場合には、該選択結合性物質固定化担体の表面を覆い前記選択結合性物質固定化担体と接着されたカバー部材を更に備えるものであっても良い。カバー部材を備えることにより、検体溶液を簡便に密閉保持することができ、その結果、検体と、担体の領域（図１、図２及び図３中の１２）に固定化された選択結合性物質との反応を、安定して行うことができる。また、特に選択結合性物質固定化担体とカバー部材とが接着され一体となっていることにより、微粒子やマイクロロッドを予め封入しておくことができ、検体溶液をアプライする作業を容易に行うことが可能である。そして、検体溶液をアプライした後の貫通孔を塞ぐ作業においてもテープやシール剤が検体溶液と接触することがないので、バックグラウンドノイズが上昇しないという利点もある。

図５は、前記選択結合性物質固定化担体に加え、更にカバー部材、接着層、貫通孔及び液面駐止用チャンバーを有する本発明の分析用チップの概略的な態様の例を示す斜視図であり、図６は図５の分析用チップを矢印Ａ１に沿った面で切断した断面図である。図５及び図６に示す例においては、選択結合性物質固定化担体１が、接着層３０を介してカバー部材３で覆われ、選択結合性物質が固定化された領域１２を含む空隙３１を形成している。空隙３１は、複数の貫通孔３２を介して外部と連通する他は、外部と連通しない閉じた空間である。

前記カバー部材は、前記選択結合性物質固定化担体の表面の少なくとも一面の一部を覆い、担体と、カバー部材との間に空隙を有するよう接着されることができる。そして、担体は、好ましくはその表面であって前記空隙内に位置する領域上に固定化された選択結合性物質を有する。即ち、好ましくは、前記選択結合性物質が固定化された領域が、当該空隙内に存在するように、前記カバー部材は前記選択結合性物質固定化担体に接着される。前記カバー部材は、前記空隙が形成される限りにおいて、どのような態様で接着されてもよいが、好ましくは、両面テープ、樹脂組成物等の接着層を介して接着される。

前記カバー部材は、前記空隙に連通する１つ以上の貫通孔を有するものとすることができ、複数の貫通孔を有することが好ましい。より具体的には、貫通孔は、一つの空隙に対して複数あることが好ましく、中でも３個から６個とすることにより、検体溶液の充填が容易となるので特に好ましい。なお、後述するように、空隙が、互いに連通しない複数の空間に分かれている場合は、各空間あたりに複数個、より好ましくは３〜６個の貫通孔を有することが好ましい。カバー部材が複数の貫通孔を有する場合、それらの孔径は、同一でも異なっていてもよいが、複数の貫通孔のうちの一つをアプライ口とし、他の貫通孔を空気の抜け口として機能させる場合、検体溶液のアプライの容易さ及び検体溶液の密閉保持性の点から、アプライ口のみをアプライに必要な広い孔径としその他の貫通孔をより狭い孔径とすることが、好ましい。具体的には、アプライ口の貫通孔サイズは直径０．０１から２．０ｍｍの範囲内とし、その他の貫通孔の直径を０．０１〜１．０ｍｍとすることが好ましい。

貫通孔３２は、その少なくとも１つが、その径を変化させて、上端に径の広い部分、いわゆる液面駐止用チャンバー３３を備えるものとしても良い。液面駐止用チャンバーを備えることにより、貫通孔３２からアプライされ空隙３１に充填された検体溶液の液面の上昇を抑え、貫通孔を封止部材３４で封止する際の封止を容易かつ確実に行うことが可能となるとともに、検体溶液の中に多数の気泡が入ったり、検体溶液の流出を防ぐことができるので好ましい。液面駐止用チャンバーの形状は特に限定されるものではなく、円柱形、角柱形、円錐形、角錐形、半球形、又はこれに近似した形状とすることができる。これらのうち、製造の容易さ及び検体溶液の上昇を抑制する効果の高さ等の観点から、円柱形が特に好ましい。

貫通孔の孔径サイズについては特に限定されるわけではないが、図７に示す縦断面形状の円筒形の貫通孔３２及び液面駐止用チャンバー３３との組み合わせの場合を例に挙げると、貫通孔３２の孔径サイズ（直径）は、０．０１から２．０ｍｍが好ましく、０．３から１．０ｍｍがより好ましい。孔径を０．０１ｍｍ以上とすることにより、検体溶液のアプライを容易に行うことができる。一方、貫通孔３２の直径を１．５ｍｍ以下とすることにより、アプライ後封止前の検体溶液の蒸発などをより効果的に抑制することができる。液面駐止用チャンバー３３の孔径サイズ（直径）については、１．０ｍｍ以上が好ましい。１．０ｍｍ以上とすることにより、貫通孔３２とのサイズの差を十分に得ることができ、十分な液面駐止効果が得られ好ましい。液面駐止用チャンバー３３の直径の上限は、特に限定されないが、１０ｍｍ以下とすることができる。また、液面駐止用チャンバー３３の深さは、特に限定されないが、０．１〜５ｍｍの範囲内とすることができる。

このようなカバー部材は、前述の選択結合性物質固定化担体に、脱離可能に接着されていることが好ましい。本発明の分析用チップをＤＮＡチップとして用いる場合、通常、ＤＮＡチップを専用スキャナーで読み取ることが必要であるが、カバー部材が接着された状態では、専用スキャナーにセットすることが難しく、セットされたとしてもスキャン操作を実施するとカバー部材とスキャナーの光学系部品が接触し、故障の原因となることがある。また、カバー部材を介しての読み取りが可能であっても、読み取り値が不正確となりうる。そのため、読み取りの工程においてカバー部材を取り外せるよう、カバー部材が脱離可能であることが好ましい。

カバー部材を選択結合性物質固定化担体に脱離可能に接着する態様は、特に限定されないが、カバー部材と担体が損傷されることなく脱離することが可能である態様が好ましい。例えば、両面テープ、樹脂組成物等の接着層を介して接着することができる。

接着層として両面テープを用いる場合、両面で接着力の異なる両面テープを用いることが好ましく、具体的には、該両面テープの接着力の弱い面を担体側に接着し、接着力の強い面をカバー部材側に接着することが好ましい。このような態様とすることにより、カバー部材を剥離する際に、両面テープがカバー部材に接着した状態で同時に担体より脱離し易く、それにより、担体上への接着層の残存による読み取りの工程における不都合を回避することができる。このような両面テープとしては、日東電工株式会社製の製品番号Ｎｏ．５３５Ａ、住友スリーエム株式会社製の製品番号９４１５ＰＣ及び４５９１ＨＬ、並びに株式会社寺岡製作所製の製品番号Ｎｏ．７６９１等が挙げられる。

接着層として樹脂組成物を用いる場合、当該樹脂組成物としては、アクリル系ポリマー、シリコーン系ポリマー、及びこれらの混合物からなる群より選択されるポリマーを含む樹脂組成物等を用いることができる。これらの樹脂組成物を利用することにより、両面テープに比べて密閉性を高めることが可能となるとともに、両面テープに比べて、長期間のインキュベーションに対しても安定であるため、そのような長期間のインキュベーションが必要な分析系においては特に好ましい。特に、接着層としてシリコーン系のエラストマーを用いると、密閉性が良好であり、しかも、容易に脱離が可能な状態でカバーを接着することができる。このようなエラストマーとしては、具体的には、シルガード（シルガードはダウコーニング社の登録商標）や、信越化学工業社製の二液型ＲＴＶゴム（型取り用）を挙げることができる。

上記カバー部材の形状は、前記選択結合性物質固定化担体の表面の少なくとも一面の一部を覆い、担体と、カバー部材との間に空隙を有するよう接着されうるものであれば特に限定されないが、その外周部分において、担体に近い部分より担体に遠い部分において突出した部分を有する構造、すなわちオーバーハング構造が設けられたものとすることができる。オーバーハング構造を設けることにより、担体を損傷せずにカバー部材を脱離することが容易となるので、好ましい。

また、本発明の分析用チップは、カバー部材及び任意に接着層を含む構造により規定される空隙を有するが、当該空隙は、１つの空間でもよく、複数の仕切られた空間であってもよい。複数の仕切られた空間は、例えば図８に示すような仕切り構造により設けることができる。図８に示す例においては、カバー部材の凸部３Ａ及び選択結合性物質固定化担体１が接着層３０Ａを介して接着することにより、複数の仕切られた空間３１を設けている。複数の仕切られた空間を設ける別の例として、例えば図９に示すような仕切り構造を設けることもできる。図９に示す例においては、担体の凸部１４及びカバー部材３が接着層３０Ｂを介して接着することにより、複数の仕切られた空間３１を設けている。また、さらに別の例として、図１０に示すように、担体及びカバー部材に特に仕切り構造を設けるための凸部を設けず、接着層３０Ａのみで空隙を仕切り、複数の仕切られた空間を設けることもできる。これらの例においては、空間３１は、互いに連通せず、それぞれが別々に、１以上の貫通孔３２及び液面駐止用チャンバー３３を有することになる。このように、複数の仕切られた空間を設けることによって、１枚の分析用チップに複数種の検体溶液をアプライすることが可能となり、従って複数種の検体を同時に１枚の分析用チップで測定することができる。

本発明の分析用チップは、一枚の担体あたり一枚のカバー部材を有していてもよく、二枚以上のカバー部材を有していてもよい。具体的には、図１１及び図１２に示す通り、一枚の選択結合性物質固定化担体１上に、複数のカバー部材３Ｂを有することができる。複数のカバー部材３Ｂのそれぞれは、それぞれ別の接着層３０Ｃを介して選択結合性物質固定化担体１上に設けることができる。好ましくは、複数のカバー部材３Ｂのそれぞれが、選択結合性物質固定化担体１との間に空隙３１を有し、且つ各空隙に連通する１つ以上の貫通孔を有することができ、そして、各カバー部材３Ｂがそれぞれ別の、選択結合性物質が固定化された領域１２を有することができる。このような態様をとることによって、上記複数の仕切られた空間を有する態様と同様に、複数種の検体を同時に１枚の分析用チップで測定する等の効果を得ることができる。さらに、このような態様をとることにより、それぞれの領域１２についてカバー部材を独立して脱離させることができるので、例えば一つの領域１２について分析を行った後に他の領域１２を用いて分析を行うといった、独立した使用を行いうる。

本発明の分析用チップを構成するカバーの材料としては、特に限定されるものではないが、検体溶液をアプライした際に、溶液の様子を観察可能とするために、透明な材料が好ましい。そのような材質としては、ガラス又はプラスチックが挙げられる。特に、貫通孔や液面駐止チャンバー等の構造を容易に作製可能という点から、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、ポリカーボネート等の透明樹脂を好ましく用いることができる。カバーの作製方法も特に限定されるものではなく、切削加工や射出成型法による加工が可能である。大量生産が可能という観点から、射出成型法を好ましく用いることができる。

本発明の分析用チップにおける、凹凸部、カバー部材及び微粒子もしくは微粒子（マイクロロッド）の関係の好ましい例を、図１３を参照して説明する。図１３に示した例では、ＤＮＡ等の選択結合性物質４５は、選択結合性物質固定化担体１の凸部上面１１上に固定化されている。そして、微粒子（マイクロロッド）２は、選択結合性物質固定化担体１の凹部１０Ａ、１０Ｂおよび１０Ｃの空隙内に載置されている。特に、微粒子（マイクロロッド）は、サブブロック領域間の凹部１０Ａおよび１０Ｃに格納されるので、微粒子の大きさやマイクロロッドの直径に関わらず効率よく撹拌することが可能となる。選択結合性物質４５及び微粒子（マイクロロッド）２は、ＤＮＡが含まれる検体溶液（図示せず）に触れることになる。検体溶液は、選択結合性物質固定化担体１、接着層３０及びカバー部材３により規定される空隙内で保持されることになる。図１３の例においては、選択結合性物質固定化担体の凸部上面１１とカバー部材３との間隔の最短距離が、微粒子（マイクロロッド）２の直径（マイクロロッドの場合底面直径）未満となっている。それにより、微粒子等が凸部上端面１１に接触できなくなり、凸部上面１１上の選択結合性物質４５を傷つけることを防ぐことができる。微粒子の形状やマイクロロッドの底面が、例えば楕円形、多角形等の非球状の形状である場合は、凸部上面とカバー部材３との間隔の最短距離が底面最小径未満であれば、同様に凸部上面１１と微粒子（マイクロロッド）２との接触を防ぎ、選択結合性物質４５の損傷を防ぐことが可能となる。

このような本発明の選択結合性物質固定化担体は、各種検体の分析に利用することができる。
すなわち、本発明の選択結合性物質固定化担体に、被検物質を接触させて選択的に結合させ、前記選択結合性物質固定化担体上に前記選択結合性物質を介して結合した前記被検物質量を測定することにより、検体を分析することができる。

本発明の選択結合性物質固定化担体や分析用チップを用いた測定方法に供せられる被検物質としては、測定すべき核酸、例えば、病原菌やウイルス等の遺伝子や、遺伝病の原因遺伝子等並びにその一部分、抗原性を有する各種生体成分、病原菌やウイルス等に対する抗体等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。また、これらの被検物質を含む検体としては、血液、血清、血漿、尿、便、髄液、唾液、各種組織液等の体液や、各種飲食物並びにそれらの希釈物等を挙げることができるがこれらに限定されるものではない。また、検体となる核酸は、血液や細胞から常法により抽出した核酸を標識してもよいし、該核酸を鋳型として、ＰＣＲ等の核酸増幅法によって増幅したものであってもよい。後者の場合には、測定感度を大幅に向上させることが可能である。核酸増幅産物を検体とする場合には、蛍光物質等で標識したヌクレオシド三リン酸の存在下で増幅を行うことにより、増幅核酸を標識することが可能である。また、検体が抗原又は抗体の場合には、検体である抗原や抗体を常法により直接標識してもよいし、検体である抗原又は抗体を選択結合性物質と結合させた後、担体を洗浄し、該抗原又は抗体と抗原抗体反応する標識した抗体又は抗原を反応させ、担体に結合した標識を測定することもできる。

本発明の被検物質の分析方法においては、まず、前記本発明の選択結合性物質固定化担体に被検物質を接触させて選択的に結合させる。すなわち、本発明の選択結合性物質固定化担体に上述のような標識、増幅等を施した検体を水溶液や適当な緩衝液等に溶解させた検体溶液とし、担体に接触させれば良い。
担体への接触は、マイクロロッドが上記選択結合性物質固定化担体の凹凸部に検体を水溶液や適当な緩衝液等の溶液とし、ピペット等の通常の器具で注入することにより行うことができる。

また、本発明の分析用チップを利用する場合には、前記カバー部材の貫通孔から被検物質をアプライし、前記カバー部材に封止部材を貼付して前記貫通孔を封止し、前記被検物質を前記分析用チップを構成する担体に選択的に結合させることができる。
貫通孔からの検体のアプライは、例えば、前記貫通孔からピペット等の通常の器具で注入して行うことができる。

カバー部材への封止部材の貼付は、貫通孔の一部又は全て、好ましくは全てを封止する態様にて行うことができる。前記封止部材としては、例えばカプトン（商標、ポリイミドフィルム、東レ・デュポン社製）、ポリエステル、セロハン、又は塩化ビニル製の粘着テープ等の可とう性のテープを好ましく挙げることができるが、これに限らず、非可とう性の板状の接着可能な任意の部材を用いることもでき、非定型のシーリング剤を用いることもできるが、液面駐止用チャンバーによる本発明の効果をより良好に得るという観点からは、可とう性のテープ及び板状の部材が好ましく、操作の簡便性などの観点から、可とう性のテープがさらに好ましい。封止部材としてテープ又は板状の部材を用いる場合、その使用枚数は任意である。具体的には、カバー部材上の全ての貫通孔を一枚の封止部材で封止してもよく、複数の封止部材を用いてそれぞれで複数の貫通孔の一部を封止してもよい。また、前記の通り一枚の担体上に複数のカバー部材が設けられている場合、カバー部材のそれぞれに別々の封止部材を用いてもよく、複数のカバー部材上の貫通孔をまとめて一枚の封止部材で封止してもよい。通常は、一枚のカバー部材あたり一枚の封止部材を用いることが、簡便且つ確実な封止を達成しうることから好ましい。

封止の具体例を、再び図１３を参照して説明する。図１３の例では、検体溶液（図示せず）を貫通孔３２よりアプライした後、可とう性の粘着テープ３４を、液面駐止用チャンバー３３の全面を覆うように貼付し、貫通孔を封止している。このような態様により、簡便で且つ検体溶液の漏出や測定誤差を招かない封止を達成できる。

本発明の分析方法において、選択的な結合とは、選択結合性物質と被検物質とを相互作用させ、前記被検物質を前記選択結合性物質を介して前記選択結合性物質固定化担体に結合させることを意味する。本発明の選択結合性物質固定化担体や分析用チップの場合には、選択結合性物質固定化担体又はチップを揺動、回転させることにより、重量、振動、遠心力によってマイクロロッドが検体溶液中を移動するので、選択的結合を効率よく進めることができる。
選択的結合の際の反応温度及び時間は、ハイブリダイズさせる検体の核酸の鎖長や、免疫反応に関与する抗原及び／又は抗体の種類等に応じて適宜選択されるが、核酸のハイブリダイゼーションの場合、通常、４０℃〜７０℃程度で１分間〜十数時間、免疫反応の場合には、通常、室温〜４０℃程度で１分間〜数時間程度である。また、必要に応じて選択結合性物質固定化担体を揺動、回転等させ、選択的結合を促進することができる。
選択的結合が終了した後、通常はカバー部材を脱離させた後、次の工程に供することができる。

本発明の分析方法においては、上述の選択的結合の後、前記選択結合性物質固定化担体上に前記選択結合性物質を介して結合した前記被検物質量を測定する。この測定も、従来の分析用チップにおける操作と全く同様に行うことができる。例えば、適宜蛍光標識され、選択結合性物質と結合した被検物質の質量について、公知のスキャナ等により、その蛍光量を読み取ることにより測定することができる。

本発明の分析方法において、選択結合性物質として核酸を固定化した場合には、この核酸又はその一部と相補的な配列を有する核酸を測定することができる。また、選択結合性物質として抗体又は抗原等の蛋白質を固定化した場合には、この抗体又は抗原と免疫的に反応する抗原又は抗体を測定することができる。なお、本明細書でいう「測定」には、検出と定量の両者の意味が含まれる。

本発明の選択結合性物質固定化担体、及び分析用チップは、分析用キットとして提供されることも可能である。
すなわち、本発明の分析用キットは、上記選択結合性物質固定化担体と、前記選択結合性物質固定化担体の表面を覆い前記選択結合性物質固定化担体と接着されたカバー部材と、前記カバー部材に貼付し前記貫通孔を封止する封止部材とを含むか、或いは、上記分析用チップと、前記カバー部材に貼付し前記貫通孔を封止する封止部材とを含むことを特徴とする。

本発明の分析用キットにおいて含まれうる前記カバー部材に関しては、本発明の分析用チップにおいて述べたとおりである。また、前記封止部材に関しては、前記本発明の分析方法において説明したものと同様のものを含むことができる。
このような本発明の分析用キットは、前記本発明の分析方法に従って使用することができる。

本発明を以下の実施例によって更に詳細に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。

参考例１（基板の作製）
公知の技術であるＬＩＧＡ（Lithographie Galvanoformung Abformung）法により、カーボンブラックを含有したポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）製の成形板を３種類作製した。

（基板１）
図１４に示す基板を作製した。すなわち、基板１の外形は７５×２５×１ｍｍであり、基板表面には、４０×２０ｍｍの凹凸部が設けられている。その中心部には凸部の集団からなる３２個のサブブロックが存在する。そのサブブロック中には、上面直径０．１ｍｍの凸部１１がピッチ０．２４５ｍｍで、１７×１７の格子状に配置されている。基板全体には１７×１７×３２＝９２４８個の凸部が設けられている。また、サブブロック間１０Ａは０．４８ｍｍのスペースが設けられている。１つのサブブロックのサイズ、および隣接するサブブロック間の距離は、それぞれ、凸部中心軸間の距離で３．９２×３．９２ｍｍ、０．５８ｍｍであり、サブブロック３２個全体のサイズは、同様に凸部中心軸間の距離で３５．４２×１７．４２ｍｍである。更に、サブブロック内における凸部上面と底面との距離（深さ）は０．１ｍｍであり、一方それ以外の基板の堀込まれている部分（サブブロック間、および、平坦部１３とサブブロックの間）の深さは０．１５ｍｍとなっている。尚、図１４中の各部位のサイズ及び距離を示す数値は、いずれも単位ｍｍによる表示である。

（基板２）
サブブロック間、および、平坦部とサブブロックの間の深さを０．１ｍｍとした以外は、基板１と同様なデザインで作製した。すなわち、基板の深さを全て０．１ｍｍとした以外は基板１と同じである。

（基板３）
凸部のピッチを０．２６ｍｍとして等間隔に凸部を配置した基板を作製した。図１５に示す。すなわち、この基板においてはサブブロックに相当するものはない。なお、凸部とその底面までの深さ、および、平坦部と凸部の間の深さを０．１ｍｍとした。すなわち、基板の凹部の深さを全て０．１ｍｍとした。尚、図１５中の各部位のサイズ及び距離を示す数値は、いずれも単位ｍｍによる表示である。

参考例２（プローブＤＮＡの固定化）
上記３種類の基板を１０Ｎの水酸化ナトリウム水溶液に６５℃で１２時間浸漬した。次いで、純水、０．１ＮＨＣｌ水溶液、純水の順で洗浄した。このようにして、板表面のＰＭＭＡの側鎖を加水分解して、カルボキシル基を生成した。
配列番号１（６０塩基、５’末端アミノ化）で表される塩基配列を有するＤＮＡ（以下、配列番号１のＤＮＡと記載することがある）を合成した。配列番号１のＤＮＡは５’末端がアミノ化されている。

これらのＤＮＡを、純水に０．２７ｎｍｏｌ／μｌの濃度で溶かして、ストックソリューションとした。基板に点着する際は、ＰＢＳ（ＮａＣｌを８ｇ、Ｎａ₂ＨＰＯ₄・１２Ｈ₂Ｏを２．９ｇ、ＫＣｌを０．２ｇ、ＫＨ₂ＰＯ₄を０．２ｇ純水に溶かし１ｌにメスアップしたものにｐＨ調整用の塩酸を加えたもの、ｐＨ５．５）でプローブの終濃度を０．０２７ｎｍｏｌ／μｌとし、かつ、担体表面のカルボン酸とプローブＤＮＡの末端のアミノ基とを縮合させるため、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（ＥＤＣ）を加え、この終濃度を５０ｍｇ／ｍｌとした。そして、これらの混合溶液をおよそ４０μｌ取り出して、スポッティング用ロボット（日本レーザー電子（株）、ＧＴＭＡＳＳｔａｍｐ−２）を用い、上記３種類の基板について、図１で示すＳ１２、Ｓ１３、Ｓ２０、Ｓ２１サブブロックに相当する全ての凸部上面にＤＮＡのスポットを行った。すなわち、プローブＤＮＡをスポットした凸部の数は、基板一枚あたり１７×１７×４＝１１５６個となる。なお、基板３については上記４つのサブブロックの位置に相当する同じ数の凸部上面にスポットを行った。次いで、基板を密閉したプラスチック容器に入れて、３７℃、湿度１００％の条件で２０時間程度インキュベートして、純水で洗浄した。

参考例３（検体ＤＮＡの調製）
検体ＤＮＡとして、上記ＤＮＡ固定化基板とハイブリダイズ可能な塩基配列を持つ配列番号２で表される塩基配列を有するＤＮＡ（９６８塩基、以下、配列番号２のＤＮＡと記載することがある）を用いた。調製方法を以下に示す。配列番号３で表される塩基配列を有するＤＮＡ（以下、配列番号３のＤＮＡと記載することがある）と配列番号４で表される塩基配列を有するＤＮＡ（以下、配列番号４のＤＮＡと記載することがある）を合成した。これを純水にとかして濃度を１００μＭとした。次いで、ｐＫＦ３プラスミドＤＮＡ（タカラバイオ（株）製品番号；３１００）（配列番号５で表される塩基配列を有するＤＮＡ：２２６４塩基）を用意して、これをテンプレートとし、配列番号３および配列番号４のＤＮＡをプライマーとして、ＰＣＲ反応（ＰｏｌｙｍｅｒａｓｅＣｈａｉｎＲｅａｃｔｉｏｎ）により増幅を行った。

ＰＣＲの条件は以下の通りである。すなわち、ＥｘＴａｑ２μｌ、１０×ＥｘＢｕｆｆｅｒ４０μｌ、ｄＮＴＰＭｉｘ３２μｌ（以上はタカラバイオ（株）製製品番号ＲＲ００１Ａに付属）、配列番号３で表される塩基配列を有するＤＮＡの溶液を２μｌ、配列番号４のＤＮＡの溶液を２μｌ、テンプレート（配列番号５で表される塩基配列を有するＤＮＡ）を０．２μｌを加え、純水によりトータル４００μｌにメスアップした。これらの混合液を、４つのマイクロチューブに分け、サーマルサイクラーを用いてＰＣＲ反応を行った。これを、エタノール沈殿により精製し、４０μｌの純水に溶解した。ＰＣＲ反応後の溶液の一部をとり電気泳動で確認したところ、増幅したＤＮＡの塩基長は、およそ９６０塩基であり配列番号２のＤＮＡ（９６８塩基）が増幅されていることを確認した。

次いで、９塩基のランダムプライマー（タカラバイオ（株）製；製品番号３８０２）を６ｍｇ／ｍｌの濃度に溶かし、上記のＰＣＲ反応後精製したＤＮＡ溶液に２μｌ加えた。この溶液を１００℃に加熱した後、氷上で急冷した。これらにＫｌｅｎｏｗＦｒａｇｍｅｎｔ（タカラバイオ（株）製；製品番号２１４０ＡＫ）付属のバッファーを５μｌ、ｄＮＴＰ混合物（ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰの濃度はそれぞれ２．５ｍＭ、ｄＣＴＰの濃度は４００μＭ）を２．５μｌ加えた。さらに、Ｃｙ３−ｄＣＴＰ（アマシャムファルマシアバイオテク製；製品番号ＰＡ５３０２１）を２μｌ加えた。この溶液に１０ＵのＫｌｅｎｏｗＦｒａｇｍｅｎｔを加え、３７℃で２０時間インキュベートし、Ｃｙ３で標識された検体ＤＮＡを得た。なお、標識の際ランダムプライマーを用いたので検体ＤＮＡの長さには、ばらつきがある。最も長い検体ＤＮＡは配列番号２のＤＮＡ（９６８塩基）となる。なお、検体ＤＮＡの溶液を取り出して、電気泳動で確認したところ、９６０塩基に相当する付近にもっとも強いバンドが現れ、それより短い塩基長に対応する領域に薄くスメアがかかった状態であった。そして、これをエタノール沈殿により精製し、乾燥した。

この標識化された検体ＤＮＡを、１重量％ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）、５×ＳＳＣ（５×ＳＳＣとはＮａＣｌを４３．８ｇ、クエン酸３ナトリウム水和物を２２．１ｇの純水にとかし、２００ｍｌにメスアップしたものを意味する。またＮａＣｌを４３．８ｇ、クエン酸３ナトリウム水和物を２２．１ｇ純水にとかし、１ｌにメスアップしたものを１×ＳＳＣと表記し、これの１０倍濃縮液を１０×ＳＳＣ、５倍希釈液を０．２×ＳＳＣと表記する。）、０．１重量％ＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）、０．０１重量％サケ精子ＤＮＡの溶液（各濃度はいずれも終濃度）、８００μｌに溶解し、ハイブリダイゼーション用の検体溶液とした。

実施例１
基板１に図５及び図６で示す、ＰＭＭＡのカバーを両面テープ（日東電工製、Ｎｏ．５３５Ａ）で貼り付けた。その結果、凸部上面とカバー下面との間のスペースは１００μｍ程度となった。
次いで、直径１８０μｍのジルコニア製ビーズ（東レ製）をカバーの穴から入れたところ特に問題なく入れることが可能であり、このビーズはブロック領域の間に充填することが可能であった。次いで、検体溶液１２０μＬをカバーの穴から、マイクロピペットを用いて注意深く注入した。さらに検体溶液の蒸発などを防ぐため、粘着テープによりカバーの穴を塞いだ。カバーに液面駐止チャンバーがあるために、毛細管現象などによる不具合が起きることなく、検体溶液のシーリングが可能であった。

次いで、この基板をハイブリダイゼーション用のチャンバー（（株）カケンジェネティック製）に入れ、このチャンバーを振とう機（タイテック製、ＮＲ−８０）に貼り付け、２５０ｒｐｍで回転振とうをしつつ、４２℃で１６時間インキュベートした。インキュベート後カバーを取り除き、洗浄を行った後、ＤＮＡチップ用のスキャナー（ＡｘｏｎＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社のＧｅｎｅＰｉｘ４０００Ｂ）に上記処理後の担体をセットし、レーザー出力３３％、フォトマルチプライヤーの電圧設定を５００にした状態で測定を行った。スポットのシグナル強度の平均値とそのＣＶ値とを表１に示す。ここで、シグナル強度の平均とは各スポット（凸部）１１５６個の蛍光強度の平均値である。

実施例２
基板２を使用した以外は実施例１と同様な操作を行った。ただし、この場合は、カバーと基板との間に直径１８０μｍのビーズが引っかかることがあり、実施例１に比較しビーズの動きが悪かったが、ブロック領域の間にビーズを充填することは可能であった。
実施例１と同様にハイブリダイゼーションを行い、シグナル強度とＣＶ値とを測定した結果を表１に示す。

比較例１
基板３を使用した以外は、実施例１と同様な操作を行った。この場合、基板にサブブロック構造がないため、直径１８０μｍのビーズを入れても、凸部の周りの領域（図１５−２に示す１０Ｃの領域）にしか充填できなかった。
実施例１と同様にシグナル強度とＣＶ値とを測定した結果を表１に示す。

比較例２
基板３に直径９０μｍのビーズを入れた以外は、比較例１と同様な操作を行った。ビーズ直径を小さくしたためにビーズは柱の間に充填された。
実施例１と同様にシグナル強度とＣＶ値とを測定した結果を表１に示す。

実施例３
検体溶液中に充填するビーズを１８０μｍのものと９０μｍのものを重量比で１：１で混合したものを使用した以外は実施例１と同様の実験を行った。この時、ブロック領域の間には直径１８０μｍのビーズと９０μｍのビーズが充填され、ブロック領域内の柱の間に直径９０μｍのビーズが充填された。
実施例１と同様にシグナル強度とＣＶ値を測定した結果を表１に示す。

何れの実施例でも、シグナル強度、ＣＶ値とも比較例より優れていた。実施例では、サブブロック領域の間により大きなビーズを添加することが可能であったために、このビーズが移動することにより、より効率的に溶液の撹拌が行われたためであると推定される。その中でも、実施例３がシグナル強度、ＣＶ値とも最も優れていた。これは、２種類の大きさのビーズを組み合わせることにより、溶液の撹拌が最も効率的に行われたためであると推定される。一方、比較例については、大きいビーズを入れた場合、充填可能な領域が限られ、実施例のようにサブブロック領域間に大きいビーズを充填することが不可能なため、また、ビーズを小さくして柱の間にビーズを充填しても、ビーズの大きさが小さいため、十分な攪拌が行われず、結果的にシグナル強度、ＣＶ値とも実施例に比べて劣ったものと考えられる。

図１は、本発明の選択結合性物質固定化担体の一例を表面上方より見た概略図である。図２は、図１に例示される選択結合性物質固定化担体の縦断面図である。図３は、図１に例示される選択結合性物質固定化担体の縦断面図である。図４は、本発明の選択結合性物質固定化担体を用いた反応の結果を読み取る治具及びスキャナーの一例を概略的に示す縦断面図である。図５は、本発明の分析用チップの一例を概略的に示す斜視図である。図６は、図５に示される本発明の分析用チップを矢印Ａ１に沿った面で切断した部分断面図である。図７は、本発明の分析用チップにおける貫通孔及び液面駐止チャンバーの一例を示す部分断面図である。図８は、仕切り構造を有する本発明の分析用チップの一例を概略的に示す縦断面図である。図９は、仕切り構造を有する本発明の分析用チップの別の一例を概略的に示す縦断面図である。図１０は、本発明の分析用チップの別の一例を概略的に示す縦断面図である。図１１は、本発明の分析用チップの別の一例を概略的に示す斜視図である。図１２は、図１１に示される本発明の分析用チップを矢印Ａ２に沿った面で切断した部分断面図である。図１３は、本発明の分析用チップの別の一例を概略的に示す縦断面図である。図１４−１は、実施例１で用いた基板を表面上方より見た概略図である。図１４−２は、実施例１で用いた基板の縦断面図である。図１５−１は、比較例１及び比較例２で用いた基板を表面上方より見た概略図である。図１５−２は、比較例１及び比較例２で用いた基板の縦断面図である。

符号の説明

１担体
１０凹部
１０Ａサブブロック領域間の凹部
１０Ｂサブブロック領域内の凹部
１０Ｃサブブロック（または凸部領域）と平坦部領域間の凹部
１１凸部
１２選択結合性物質が固定化された領域（凹凸部）
１３平坦部
１４担体凸部
２微粒子またはマイクロロッド
３、３Ｂカバー部材
３Ａカバー部材凸部
３０、３０Ｃ接着層
３０Ａ、３０Ｂ仕切り構造の接着層
３１空隙（空間）
３２、３２Ａ、３２Ｂ貫通孔
３３液面駐止用チャンバー
３４封止部材（テープ）
３５担体とカバー部材との隙間
４０マイクロアレイを治具に突き当てるためのバネ
４１治具
４２治具突き当て面
４３対物レンズ
４４レーザー励起光
４５担体に固定化された選択結合性物質（ＤＮＡ）
Ｌ１凸部ピッチ
Ｓ１〜３２、Ｓｋ、Ｓｋ＋１サブブロック領域

Claims

担体上に凹部及び凸部からなる凹凸部を有し、前記凹凸部を構成する複数の凸部の上面に選択結合性物質が固定化される担体であって、
前記凹凸部は、凸部がマトリクス状に形成された複数のサブブロック領域からなり、
前記凹凸部において、凹部に微粒子またはマイクロロッドが移動可能に格納されており、
前記凹凸部において、複数の凹部の深さを有する
ことを特徴とする選択結合性物質固定化担体。
前記凹凸部において、隣接するサブブロック領域間の凹部の幅が、サブブロック領域内の凹部の幅よりも広いことを特徴とする請求項１に記載の選択結合性物質固定化担体。
サブブロック領域間の凹部の幅が、２００μｍ以上であることを特徴とする請求項１または２に記載の選択結合性物質固定化担体。
前記凹凸部において、隣接するサブブロック領域間の凹部の深さが、サブブロック領域内の凹部の深さよりもよりも深いことを特徴とする請求項１〜３のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
サブブロック領域間の凹部の深さが、凸部上面から凹部底面までの深さで１００μｍ以上であることを特徴とする請求項１〜４のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
前記選択結合性物質固定化担体の凹凸部を有する表面に、平坦部が設けられてなることを特徴とする請求項１〜５のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
前記選択結合性物質が、ＤＮＡ、ＲＮＡ、蛋白質、ペプチド、糖、糖鎖または脂質であることを特徴とする請求項１〜６のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体。
請求項１〜７のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体の表面を覆い、前記選択結合性物質固定化担体と接着されたカバー部材を更に備え、前記選択結合性物質固定化担体と前記カバー部材との間に空隙を有し、前記カバー部材は前記空隙に連通する１つ以上の貫通孔を有することを特徴とする分析用チップ。
請求項１〜７のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体に、被検物質を接触させて選択的に結合させ、前記選択結合性物質固定化担体上に前記選択結合性物質を介して結合した前記被検物質量を測定することを特徴とする被検物質の分析方法。
前記選択結合性物質固定化担体に被検物質を接触させるにあたり、前記選択結合性物質固定化担体と被検物質が含まれる溶液とを撹拌することを特徴とする請求項９に記載の分析方法。
請求項８に記載の分析用チップに、前記貫通孔から被検物質をアプライし、前記カバー部材に封止部材を貼付して前記貫通孔を封止し、前記被検物質を前記分析用チップを構成する担体に選択的に結合させ、更に前記選択結合性物質固定化担体上に前記選択結合性物質を介して結合した前記被検物質量を測定することを特徴とする被検物質の分析方法。
前記貫通孔から被検物質をアプライするにあたり、被検物質が含まれる溶液を貫通孔から注入するとともに、前記検体を前記分析用チップを構成する担体に選択的に結合させるにあたり、前記注入された溶液を撹拌することを特徴とする請求項１１に記載の分析方法。
請求項１〜７のいずれか一項に記載の選択結合性物質固定化担体と、前記選択結合性物質固定化担体の表面を覆い前記選択結合性物質固定化担体と接着されたカバー部材と、前記カバー部材に貼付し前記貫通孔を封止する封止部材とを含むことを特徴とする分析用キット。
請求項８に記載の分析用チップと、前記カバー部材に貼付し前記貫通孔を封止する封止部材とを含むことを特徴とする分析用キット。