JP5090910B2 - 光学活性2−(n−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類の製造方法 - Google Patents
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1)R3が水素原子で、R2が置換されていてもよい低級アルキル基、置換されていてもよい低級アルコキシ基、置換されていてもよいアリール基、または置換されていてもよいアラルキルオキシ基を表すか、
2)R3と−COR2が一体となってフタロイル基を表す。)で示される光学活性2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類の製造方法であって、一般式(6):
本発明での還元反応に使用される基質の例示としての2−(N−置換アミノメチル)−3−オキソ酪酸エステル類は、一般式(6):
1)R3が水素原子で、R2が置換されていてもよい低級アルキル基、置換されていてもよい低級アルコキシ基、置換されていてもよいアリール基、または置換されていてもよいアラルキルオキシ基を表すか、
2)R3と−COR2が一体となってフタロイル基を表す。
本発明で使用される酵素源は、2−(N−置換アミノメチル)−3−オキソ酪酸エステル類を光学活性な2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類に変換する能力を有する微生物由来のものを用いることができる。ここでいう「微生物由来のもの」としては、該微生物の菌体そのもの、微生物の培養液、あるいは菌体処理物、または該微生物から得られる酵素であってもよいし、さらには該微生物由来の上記還元活性を有する酵素をコードするDNAが導入された形質転換体も含む。これらを単独で用いても、2種類以上組み合わせてもよい。また、これらの酵素源は周知の方法でくり返し使用できるように固定化してもよい。
2−(N−置換アミノメチル)−3−オキソ酪酸エステル類を光学活性な2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類に変換する能力を有する微生物は、以下に説明する方法によって見いだすことができる。例えば、以下のようにして行なう。グルコース40g、酵母エキス3g、リン酸水素二アンモニウム6.5g、リン酸二水素カリウム1g、硫酸マグネシウム7水和物0.8g、硫酸亜鉛7水和物60mg、硫酸鉄7水和物90mg、硫酸銅5水和物5mg、硫酸マンガン4水和物10mg、塩化ナトリウム100mg(いずれも1L当たり)の組成からなる液体培地(pH7)5mlを試験管に入れて殺菌後、無菌的に微生物を接種し、30℃で2〜3日間振とう培養する。その後、菌体を遠心分離により集め、グルコース2〜10%を含んだリン酸緩衝液0.5〜5mlに懸濁し、あらかじめ2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル等(2−(N−置換アミノメチル)−3−オキソ酪酸エステル類に属する)を0.5〜25mgいれた試験管に加えて、2〜3日間30℃で振とうする。この際、遠心分離により得た菌体をデシケーター中またはアセトンにより乾燥したものを用いることもできる。更に、これら微生物もしくはその処理物と2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸エステル類を反応させる際に、NAD+及び/またはNADP+と、グルコース脱水素酵素及びグルコース、もしくはギ酸脱水素酵素及びギ酸、を添加してもよい。また、反応系に有機溶媒を共存させてもかまわない。変換反応ののち適当な有機溶媒で抽出を行ない、生成する2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシ酪酸エステル類を高速液体クロマトグラフィーなどにより分析する。
本発明に使用しうる微生物としては、2−(N−置換アミノメチル)−3−オキソ酪酸エステル類を(2S,3R)−2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類に変換する能力を有する微生物であればいずれも使用しうるが、例えば、キャンディダ(Candida)属、ゲオトリカム(Geotrichum)属、ガラクトマイセス(Galactomyces)属、サッカロマイコプシス(Saccharomycopsis)属、アクロモバクター(Achromobacter)属、アースロバクター(Arthrobacter)属、バチルス(Bacillus)属、ブレフンディモナス(Brevundimonas)属、キナントモナス(Xanthomonas)属、デボシア(Devosia)属、ラルストニア(Ralstonia)属、ラクトバチルス(Lactobacillus)属、ロイコノストック(Leuconostoc)属、ミクロスポルム(Microsporum)属、モニリエラ(Moniliella)属に属する微生物等が挙げられる。
)、ラルストニア・ユートロファ(Ralstonia eutropha)、ラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)、ラクトバチルス・ヘルベティクス(Lactobacillus helveticus)、ロイコノストック・シュードモセンテロイデス(Leuconostoc pseudomesenteroides)、ミクロスポルム・コーケイ(Microsporum cookei)、モニリエラ・アセトアバテンス(Moniliella acetoabatens)などがあげられる。
還元反応の際には、基質である2−(N−置換アミノメチル)−3−オキソ酪酸エステル類を反応の初期に一括して添加してもよく、反応の進行にあわせて分割して添加してもよい。反応時の温度は通常10〜60℃、好ましくは、20〜40℃であり、反応時のpHは2.5〜9、好ましくは、5〜9の範囲である。反応液中の酵素源の量はこれらの基質を還元する能力に応じ適宜決定すればよい。また、反応液中の基質濃度は0.01〜50%(W/V)が好ましく、より好ましくは、0.1〜30%(W/V)である。反応は通常、振とうまたは通気攪拌しながら行なう。反応時間は基質濃度、酵素源の量及びその他の反応条件により適宜決定される。通常、2〜168時間で反応が終了するように各条件を設定することが好ましい。
本発明の還元反応を触媒する酵素(還元酵素)のかわりに、該酵素をコードするDNAを含む形質転換体を使用しても、同様に光学活性な2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類を製造することができる。
還元反応により生成した光学活性2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類の採取は、特に限定されないが、反応液から直接、あるいは菌体等を分離後、酢酸エチル、トルエン、t−ブチルメチルエーテル、ヘキサン等の溶剤で抽出し、脱水後、蒸留あるいはシリカゲルカラムクロマトグラフィー等により精製すれば高純度の光学活性2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類を容易に得ることができる。
グルコース40g、酵母エキス3g、リン酸水素二アンモニウム6.5g、リン酸二水素カリウム1g、硫酸マグネシウム7水和物0.8g、硫酸亜鉛7水和物60mg、硫酸鉄7水和物90mg、硫酸銅5水和物5mg、硫酸マンガン4水和物10mg、塩化ナトリウム100mg(いずれも1L当たり)の組成からなる液体培地(pH7)5mlを大型試験管に分注し、120℃で20分間蒸気殺菌を行った。これらの液体培地に以下の表1に示す微生物を無菌的に一白金耳接種して、30℃で72時間振とう培養した。培養後、各培養液を遠心分離にかけて菌体を集め、菌体をグルコース1%を含んだ100mMリン酸緩衝液0.5ml(pH6.5)に懸濁した。
肉エキス10g、ペプトン10g、酵母エキス5g、塩化ナトリウム3g(いずれも1L当たり)の組成からなる液体培地(pH7)7mlを大型試験管に分注し、120℃で20分間蒸気殺菌を行った。これらの液体培地に以下の表2に示す微生物を無菌的に一白金耳接種して、30℃で72時間振とう培養した。培養後、各培養液を遠心分離にかけて菌体を集め、菌体をグルコース1%を含んだ100mMリン酸緩衝液0.5ml(pH6.5)に懸濁した。
グルコース10g、ペプトン10g、肉エキス10g、酵母エキス5g、塩化ナトリウム1g、硫酸マグネシウム7水和物0.5g(いずれも1L当たり)の組成からなる液体培地(pH7)5mlを大型試験管に分注し、120℃で20分間蒸気殺菌を行った。これらの液体培地に以下の表3に示す微生物を無菌的に一白金耳接種して、28℃で72時間振とう培養した。培養後、各培養液を遠心分離にかけて菌体を集め、菌体をグルコース1%を含んだ100mMリン酸緩衝液1ml(pH6.5)に懸濁した。
MSR培地(Difco社製)55g(1L当たり)よりなる液体培地(pH6.5)15mlを大型試験管に分注し、120℃で20分間蒸気殺菌を行った。これらの液体培地に以下の表4に示す微生物を無菌的に一白金耳接種して、30℃で72時間静置培養した。培養後、各培養液を遠心分離にかけて菌体を集め、菌体をグルコース1%を含んだ100mMリン酸緩衝液1ml(pH6.5)に懸濁した。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、キャンディダ・ケフィア(Candida kefyr)NBRC 0706のアセトン乾燥菌体10mg、グルコース10mg、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、NADP0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル2.5mgを加えて、30℃で24時間反応させた。反応後、各反応液に2mlの酢酸エチルを加えて良く混合し、有機層の一部を実施例1に記載する分析条件で分析したところ、収率は40%であった。その有機層の一部の光学純度は46.8%、ジアステレオ選択性は31.8%であった。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、ラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)由来のアルコール脱水素酵素(Julich Fine Chemicals製)10kU、NADPH2当量、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル1mgを加えて、30℃で24時間反応させた。反応後、各反応液に2mlの酢酸エチルにより抽出し、91%の収率で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は99.9%ee以上、ジアステレオ選択性は92%deであった。
30mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース3g、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)由来のカルボニル還元酵素RDR(国際公開第WO2004/027055号公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)500mg、NAD50mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル4.5gを加えて、30℃で攪拌した。その間、反応液のpHは6N−NaOHによって6.5に維持した。24時間の反応ののち、反応液を45mlの酢酸エチルで3回抽出し、得られた有機層をあわせて、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。ろ過によって硫酸ナトリウムを除去し、減圧下有機溶媒を留去したのち、シリカゲルカラムクロマトグラフィーによって、4.4gの(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は99%ee以上、ジアステレオ選択性は89.8%deであった。
[α]25 D +22.88°(C=0.9,酢酸エチル)
1H−NMR(400MHz,CDCl3,δppm):7.8−7.7(m,2H)、7.6−7.5(m、1H),7.5−7.4(m、2H),6.9(br,s,1H),4.2−4.0(m,1H),4.0−3.9(m,1H)、3.7(s,3H),3.6−3.5(m,1H),2.8(m,1H),1.2(d,3H)
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、キャンディダ・マリス(Candida maris)由来のカルボニル還元酵素FPDH(国際公開第WO01/05996公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、24時間、30℃で振とうした。反応終了後、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率99%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は94%ee、ジアステレオ選択性は89.3%deであった。
1H−NMR(400MHz,CDCl3,δppm):7.8−7.7(m,2H),7.6−7.5(m、1H)、7.5−7.4(m、2H)、6.9(br,s,1H),4.2−4.0(m,1H),4.0−3.9(m,1H),3.7(s,3H),3.6−3.5(m,1H),2.8(m,1H),1.2(d,3H)
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、ラルストニア・ユートロファ(Ralstonia eutropha)由来のアセトアセチルCoA還元酵素RRE(国際公開第WO2005/044973公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率54%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は84.8%ee、ジアステレオ選択性は60%deであった。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、アクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)由来のアセトアセチルCoA還元酵素RAX(国際公開第WO2005/044973公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率57%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は59.7%ee、ジアステレオ選択性は49.5%deであった。
肉エキス10g、ペプトン10g、酵母エキス5g、塩化ナトリウム3g(いずれも1L当たり)の組成からなる液体培地(pH7)7mlを大型試験管に分注し、120℃で20分間蒸気殺菌を行った。これらの液体培地に以下の表5に示す微生物を無菌的に一白金耳接種して、30℃で72時間振とう培養した。培養後、各培養液を遠心分離にかけて菌体を集め、菌体をグルコース1%を含んだ100mMリン酸緩衝液0.5ml(pH6.5)に懸濁した。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)由来のカルボニル還元酵素RDR(国際公開第WO2004/027055公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸エチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率100%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸エチルを得た。このものの光学純度は96%ee、ジアステレオ選択性は91%deであった。
1H−NMR(400MHz,CDCl3,δppm):7.8−7.3(m,5H),6.9(br,s,1H)、4.2−4.0(m,3H),4.0−3.9(m,2H,2.4(s,3H),1.2(t,3H)
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、キャンディダ・マリス(Candida maris)由来のカルボニル還元酵素FPDH(国際公開第WO01/05996公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸エチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率61%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸エチルを得た。このものの光学純度は71.8%ee、ジアステレオ選択性は71.4%deであった。
肉エキス10g、ペプトン10g、酵母エキス5g、塩化ナトリウム3g(いずれも1L当たり)の組成からなる液体培地(pH7)7mlを大型試験管に分注し、120℃で20分間蒸気殺菌を行った。これらの液体培地に以下の表6に示す微生物を無菌的に一白金耳接種して、30℃で72時間振とう培養した。培養後、各培養液を遠心分離にかけて菌体を集め、菌体をグルコース1%を含んだ100mMリン酸緩衝液0.5ml(pH6.5)に懸濁した。この菌体懸濁液を、あらかじめ2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸tert−ブチル0.5mgいれた試験管に加えて、30℃で24時間反応させた。反応後、各反応液に1mlの酢酸エチルを加えて良く混合し、有機層の一部をダイセル化学工業株式会社製Chiralpak AD−H(250mm×4.6mm)を装着したHPLCによって分析し、反応の収率と生成物の光学純度を求めた。表6に結果をまとめた。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)由来のカルボニル還元酵素RDR(国際公開第WO2004/027055公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸tert−ブチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率88%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸tert−ブチルを得た。このものの光学純度は、99.9%ee以上、ジアステレオ選択性は95.3%deであった。
1H−NMR(400MHz,CDCl3,δppm):7.8−7.3(m,5H)、6.9(br,s,1H),4.0−3.9(m,4H),2.4(s,3H),1.2(s,9H)
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、キャンディダ・マリス(Candida maris)由来のカルボニル還元酵素FPDH(国際公開第WO01/05996公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸tert−ブチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率15%で(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸tert−ブチルを得た。このものの光学純度は、91.4%ee、ジアステレオ選択性は77.7%deであった。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)由来のカルボニル還元酵素RDR(国際公開第WO2004/027055公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−アセトアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率59%で(2S,3R)−2−アセトアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度を、ダイセル化学工業株式会社製Chiralpak AD−H(250mm×4.6mm)を装着したHPLCによって分析したところ、97%eeであり、ジアステレオ選択性は82.3%deであった。
1H−NMR(400MHz,CDCl3,δppm): 6.2(br,s,1H),4.0−3.7(m,2H),3.6(s,1H),3.4−3.3(m,1H),2.7−2.5(m,1H),2.2(s,3H)、1.2(d,3H)
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、キャンディダ・マリス(Candida maris)由来のカルボニル還元酵素FPDH(国際公開第WO01/05996公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−アセトアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率8%で(2S,3R)−2−アセトアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は、96.2%ee、ジアステレオ選択性は80.3%deであった。
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)由来のカルボニル還元酵素RDR(国際公開第WO2004/027055公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−フタロイルアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率98%で(2S,3R)−2−フタロイルアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度をダイセル化学工業株式会社製Chiralpak AD−H(250mm×4.6mm)を装着したHPLCによって分析したことろ、99.9%ee以上であり、ジアステレオ選択性は62.2%deであった。
1H−NMR(400MHz,CDCl3,δppm):7.9−7.7(m,4H),4.2−3.9(m,3H),3.7(s,3H)、2.7−2.6(m,1H),1.2(d,3H)
1mlの100mMリン酸緩衝液(pH6.5)に、グルコース50mg、キャンディダ・マリス(Candida maris)由来のカルボニル還元酵素FPDH(国際公開第WO01/05996公報参照)10kU、グルコース脱水素酵素「GLUCDH“Amano2”」(天野エンザイム株式会社製)1mg、NAD0.25mg、2−フタロイルアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル5mgを加えて、30℃で振とうした。24時間の反応ののち、反応液を2mlの酢酸エチルで抽出し、収率21%で(2S,3R)−2−フタロイルアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は99.9%ee以上、ジアステレオ選択性は72.4%deであった。
E. coli HB101(pNTDRG1)(FERM BP−08458:国際公開第WO2004/027055号公報参照)を120μg/mlアンピシリンを含む2×YT培地で培養し、得られた培養液30mlに、グルコース2g、NAD50mg、2−ベンズアミドメチル−3−オキソ酪酸メチル3gを加えて、30℃で攪拌した。その間、反応液のpHは6NNaOHによって6.5に維持した。24時間の反応ののち、反応液を30mlの酢酸エチルで3回抽出し、得られた有機層をあわせて、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。ろ過によって硫酸ナトリウムを除去し、減圧下有機溶媒を留去したのち、シリカゲルカラムクロマトグラフィーによって、2.8gの(2S,3R)−2−ベンズアミドメチル−3−ヒドロキシブタン酸メチルを得た。このものの光学純度は99%ee以上、ジアステレオ選択性は89.8%deであった。
Claims (11)
- 一般式(1):
R2は置換されていてもよい低級アルキル基、置換されていてもよい低級アルコキシ基、置換されていてもよいアリール基、または置換されていてもよいアラルキルオキシ基を表し、前記置換基がハロゲン原子、水酸基、アミノ基、ニトロ基、又はシアノ基である。)で示される光学活性2−(N−置換アミノメチル)−3−ヒドロキシ酪酸エステル類の製造方法であって、一般式(2):
- 一般式(3):
- 前記酵素源が、キャンディダ・ケフリ(Candida kefyr)、キャンディダ・オェオフィラ(Candida oleophila)、キャンディダ・マリス(Candida maris)、ゲオトリカム・エリエンス(Geotrichum eriense)、ガラクトマイセス・リエッシ(Galactomyces reessii)、サッカロマイコプシス・マランガ(Saccharomycopsis malanga)、アクロモバクター・キシロソキシダンス(Achromobacter xylosoxidans)、アクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)、アースロバクター・パラフィネウス(Arthrobacter paraffineus)、アースロバクター・ニコチアナエ(Arthrobacter nicotianae)、バチルス・アミロリティカス(Bacillus amylolyticus)、バチルス・サーキュランス(Bacillus circulans)、バチルス・セレウス(Bacillus cereus)、バチルス・バディウス(Bacillus badius)、バチルス・スファエリカス(Bacillus sphaericus)、ブレフンディモナス・ディミヌータ(Brevundimonas diminuta)、キサントモナス・エスピー(Xanthomonas sp.)、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)、ラルストニア・ユートロファ(Ralstonia eutropha)、ラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)、ラクトバチルス・ヘルベティクス(Lactobacillus helveticus)、ロイコノストック・シュードモセンテロイデス(Leuconostoc pseudomesenteroides)、ミクロスポルム・コーケイ(Microsporum cookei)、モニリエラ・アセトアバテンス(Moniliella acetoabatens)からなる群より選ばれた微生物由来の酵素である、請求項1に記載の製造方法。
- 前記酵素源が、ゲオトリカム・エリエンス(Geotrichum eriense)、ガラクトマイセス・リエッシ(Galactomyces reessii)、サッカロマイコプシス・マランガ(Saccharomycopsis malanga)、アクロモバクター・キシロソキシダンス(Achromobacter xylosoxidans)、アクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)、アースロバクター・パラフィネウス(Arthrobacter paraffineus)、アースロバクター・ニコチアナエ(Arthrobacter nicotianae)、バチルス・アミロリティカス(Bacillus amylolyticus)、バチルス・サーキュランス(Bacillus circulans)、バチルス・セレウス(Bacillus cereus)、バチルス・バディウス(Bacillus badius)、バチルス・スファエリカス(Bacillus sphaericus)、ブレフンディモナス・ディミヌータ(Brevundimonas diminuta)、キサントモナス・エスピー(Xanthomonas sp.)、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)、ラルストニア・ユートロファ(Ralstonia eutropha)、ラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)、ラクトバチルス・ヘルベティクス(Lactobacillus helveticus)、ロイコノストック・シュードモセンテロイデス(Leuconostoc pseudomesenteroides)、ミクロスポルム・コーケイ(Microsporum cookei)、モニリエラ・アセトアバテンス(Moniliella acetoabatens)からなる群より選ばれた微生物由来の酵素である、請求項2に記載の製造方法。
- 前記酵素源が、ガラクトマイセス・リエッシ(Galactomyces reessii)、サッカロマイコプシス・マランガ(Saccharomycopsis malanga)、アクロモバクター・キシロソキシダンス(Achromobacter xylosoxidans)、アクロモバクター・デニトリフィカンス(Achromobacter denitrificans)、アースロバクター・パラフィネウス(Arthrobacter paraffineus)、アースロバクター・ニコチアナエ(Arthrobacter nicotianae)、バチルス・アミロリティカス(Bacillus amylolyticus)、バチルス・サーキュランス(Bacillus circulans)、バチルス・セレウス(Bacillus cereus)、バチルス・バディウス(Bacillus badius)、バチルス・スファエリカス(Bacillus sphaericus)、ブレフンディモナス・ディミヌータ(Brevundimonas diminuta)、キサントモナス・エスピー(Xanthomonas sp.)、デボシア・リボフラビナ(Devosia riboflavina)、ラルストニア・ユートロファ(Ralstonia eutropha)、ラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)、ラクトバチルス・ヘルベティクス(Lactobacillus helveticus)、ロイコノストック・シュードモセンテロイデス(Leuconostoc pseudomesenteroides)、ミクロスポルム・コーケイ(Microsporum cookei)、モニリエラ・アセトアバテンス(Moniliella acetoabatens)からなる群より選ばれた微生物由来の酵素である、請求項1または2に記載の製造方法。
- 前記R1がメチル基、エチル基、プロピル基、またはn−ブチル基である請求項1〜5のいずれかに記載の製造方法。
- 前記R1がメチル基である請求項6に記載の製造方法。
- R2がフェニル基、p−ニトロフェニル基、またはp−クロロフェニル基である請求項1、3または5に記載の製造方法。
- R2がフェニル基である請求項8に記載の製造方法。
- R1がメチル基、R2がフェニル基である請求項1、3または5に記載の製造方法。
- 酸化型ニコチンアミド・アデニンジヌクレオチド(NAD+)、酸化型ニコチンアミド・アデニンジヌクレオチドリン酸(NADP+)のいずれかまたは両方を、それぞれの還元型へ還元する酵素と、還元するための基質とを、共存させることを特徴とする請求項1〜10のいずれかに記載の製造方法。
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