JP4652050B2 - ダイオキシン類駆除促進剤 - Google Patents
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Description
(1) 体内に蓄積したダイオキシン類により急性毒性又は慢性毒性を受けている生体の体内に蓄積したダイオキシン類の体外への排除を促進させる能力を有する微生物としてバチルス・ズブチリスC-3102(FERM BP-1096)を有効成分として含有し、投与量が一日あたり10 6 cells/kg体重以上であることを特徴とするダイオキシン類排除促進剤。
(2) 「ダイオキシン類」は平成11年7月に公布された法律「ダイオキシン類対策特別措置法」第二条第1項でいうところの「ダイオキシン類」である、(1)記載のダイオキシン類排除促進剤。
本発明のダイオキシン類排除促進剤(以下、「本発明の促進剤」と略記する)は、体内に蓄積したダイオキシン類の排出を促進するので、ダイオキシン類吸収阻害剤のような予防薬にくらべて、曝露後の摂取でも効果が期待できる点で有利である。
麻布大学獣医学部森田助教授らによると、ダイオキシン類を摂取したラットのシトクロムP450タンパク質において、酵素活性に関与する第六配位座にタンパク質分子自身のヒスチジンが配位して酵素活性を妨げている可能性があることが見出された (森田 英利ら、第98回 日本畜産学会大会X30-21、2001)。この変化はEPR測定法により観測することができる。
本発明の促進剤は、ヒトまたは動物に投与したときに、好ましくは5×109cells/kg体重以上の有効菌数となるように微生物を含有する。
本発明の微生物は、その微生物の特性に従い様々な発酵食品として利用することができる。また、ダイオキシン類排除用機能性食品としても利用することができる。
このような微生物は有効菌数量を含む形態であれば液体状の発酵乳以外にも、納豆や米コウジのような固体発酵物でも構わず、そのため無理なく日常的に摂取することができることが期待できる。
本発明の微生物は、生菌であっても死菌であってもよいが、好ましくは生菌である。
本発明の促進剤は単独であるいは他の食品、飲料、飼料等の添加剤として、ヒトおよびヒト以外の動物 (牛、豚、鶏等の家畜、養殖用の魚等) に投与することができる。
このような方法で選択された微生物として以下の乳酸菌を一例としてあげることができる。この乳酸菌はあくまで例示であり、この乳酸菌株に権利が限定されるものではない。
(形態的性質)
1) 細胞の形: 短桿菌、
2) 運動性の有無: 無、
3) 胞子の有無: 無、
4) グラム染色性: 陽性
培養条件:リトマスミルク、30℃
1) 凝固性: なし、
2) 液化: なし、
3) 酸生成: あり、
4) 生育可能pH範囲: 5-7、
5) 生育可能温度: 15-45℃
1) カタラーゼ: 陰性、
2) インドールの生成: 陰性、
3) 硝酸塩の還元: 陰性、
4) 酸素に対する態度: 通性嫌気性、
5) 15℃での生育性: 有、
6) 脱窒反応: 陰性、
7) MRテスト: 陽性、
8) VPテスト: 陰性、
9) 硫化水素の生成: 陰性、
10) デンプンの加水分解: 陰性、
11) クエン酸の利用 (Koser): 陽性、(Christensen): 陰性、
12) 硝酸塩の利用: 陰性、
13) アンモニウム塩の利用: 陰性、
14) 色素の生成: 陰性、
15) ウレアーゼ活性: 陰性、
16) オキシダーゼ活性: 陰性、
17) O-Fテスト: 好気嫌気ともに陽性、
グルコース + キシロース -
ラクトース + トレハロース +
マンノース + イノシトール -
フルクトース + マンニトール +
ガラクトース + ソルビトール -
スクロース + スターチ -
アラビノース + グリセリン -
マルトース +
グルコース - キシロース -
ラクトース - トレハロース -
マンノース - イノシトール -
フルクトース - マンニトール -
ガラクトース - ソルビトール -
スクロース - スターチ -
アラビノース - グリセリン -
マルトース -
(モデル動物構築)
実験モデルとして、PCB126 (3,3',4,4',5-pentachlorobiphenyl) を投与したラットを用意した。このラットは六週齢のSprangue-Dawley (日本チャ−ルス・リバ−株式会社より購入) を用い、およそ一週間の慣熟飼育をおこなった後、市販コーン油 (Hayashi Chemicals社製) にPCB126 (Wellington Laboratories社製, 純度99.99%以上) を適切な濃度に溶解したものを用いて、コーン油量が同じでcPCBが0 (コントロール), 0.3, 3, 30, 100μg/kg体重 (bw) となるようにゾンデにより強制投与した。投与から24時間後、PCB投与ラットをエーテルにより安楽死させ、肝臓を摘出し、1.15%KCl緩衝液で充分に還流してから、組織片をEPR測定法により分析した。
EPR測定装置はJES-TE300 (日本電子(株)) を用い、取扱説明書に準じて次のような条件で測定した。
Temperature 77 K
Frequency 9.11 GHz
Power 10 mW
Sweep Time 4 min
Modulation Width 0.32 mT
Time Constant 0.3 sec
Field: width 300±100 mT
第1図にcPCBを投与したラットの肝臓組織片のEPRスペクトルパターンを示す。このスペクトルの中で、g=2.40シグナルが正常なチトクロムP450のヘム鉄原子に由来するピークである。その前にg=2.49シグナルに示される特異的なピークが現われている。その強度は投与量に依存していることが分かる。
このg=2.40およびg=2.49シグナルの強度を数値化するため、標準化をおこなった。典型的なシグナルチャートを示した模式図、第2図にCで示されるマンガン原子に由来するシグナルの強度を基準とした。肝臓に含まれるマンガン原子の量は食餌中のマンガン量に影響を受け難いことが知られている [Sakurai et al, Biochem. Biophys. Acta, 841, 208-214 (1985)]。このためピークCの最大値と最小値の差をHcとし、そのHcの中点Hcenを決めた。このHcenと図中にEで示されるAシグナルより低磁場側の 「30サンプリング点の平均値」 のそれぞれを結ぶ点同士を線分で結び、その線分に対してg=2.49およびg=2.40のピークからおろした垂線の長さを、それぞれHA、HBとした。測定に用いた試料の重量を勘案するため、HA、HBをHCで除したもの、すなわちg=2.49シグナルの強度をHA/HC、またg=2.40シグナルの強度をHB/HCとした。
使用する菌株は、乳酸菌としてラクトバチルス sp CP3012 (FERM BP-8052) を、また枯草菌としてバチルス・ズブチリス (Bacillus subtilis) c-3102 (FERM BP-1096) を使用した。尚、バチルス・ズブチリス c-3102は、昭和61年6月28日付で通商産業省工業技術院微生物工業技術研究所 (日本国茨城県筑波郡谷田部町東1丁目1番地3 (郵便番号305) [現・独立行政法人産業技術総合技術研究所 特許生物寄託センター (日本国茨城県つくば市東1丁目1番地1 中央第6 (郵便番号305-5866)) に受託番号FERM BP-1096として国際寄託されている。
微生物を純粋培養するにあたっては、使用する微生物ごとに適した培地を用いて、一般的な方法を用いることができる。微生物がラクトバチルス属乳酸菌であれば培地はMRS培地 (difco社製) を添付の指示書に従って調製したものを用いた。バチルス属枯草菌であればトリプケースソイ培地 (BBL社製) を用いた。ラクトバチルス属乳酸菌は37℃嫌気条件下で静置培養し、バチルス属枯草菌の培養は37℃で振とう培養した。
すべての培養において、菌数の測定は血球計算盤 (トーマ盤、萱垣医理科工業 (株) 社製) を添付取扱説明書に従っておこなった。
1. 疑似発酵乳試料
牛乳、脱脂乳、還元脱脂乳などを98℃達温にて殺菌し、37℃まで冷却した後、プロペラなどで攪拌しながら食品添加物グレードの乳酸 (和光純薬122-01936など) をゆっくりと添加してゆき、pH4.5に調整した。前述のホモジナイザを用いて同様に均質化を行い、疑似発酵乳試料とした。
前述の疑似発酵乳試料に対して、別に培養した上記微生物をそれぞれ懸濁し、1×109cells/mlの菌体濃度にしたものを菌体添加疑似発酵乳試料とした。
前述のPCB126投与ラットに対して、微生物含有試料を60日間にわたって投与した。投与量は5ml/kg体重とし、少なくとも平日 (月曜〜金曜の5日間) は連続して投与した。投与期間終了後、ラットを安楽死させ、その肝臓を摘出した。1.15%KCl緩衝液による充分な還流の後、組織をEPR測定法による解析とcPCB濃度の測定に供試した。
前述のシグナル強度の標準化をおこなったEPR測定の結果を第3図に示す。統計学的処理により有意な差と認められたものに、危険率に応じて "#" (P<0.10)、"*" (P<0.05) が付けられている。乳酸菌ラクトバチルスsp CP3012 (FERM BP-8052) と枯草菌バチルス・ズブチリス c-3102 (FERM BP-1096) でコントロール処理に対して、有効性が示された。
肝臓組織は2gを乳鉢にとり、無水硫酸ナトリウム (関東化学社製PCB分析用) と共に均質化を行ったのち、円筒ろ紙へ入れてジエチルエーテルとヘキサン (共に関東化学社製残留農薬試験用) を3:1に混合した溶液200mlを用いて7時間のソックスレー抽出をおこなった。抽出液をKD濃縮器で10ml以下に濃縮し、エタノール (関東化学社製残留農薬試験用) を溶媒とした1N水酸化カリウム (和光純薬社製特級) 50mlとC13マスラベル化標準混合液 (WELLINGTON社製3,3’,4,4’-T4CB,3,3’,4,4’,5-P5CB,3,3’,4,4’,5,5’-H6CBを特級ノナンで希釈し、60pg/μlに調製したもの) 100μlを加えて、100℃で1時間還流して鹸化処理をおこなった。内容液を分液漏斗に移してヘキサン (同上) 50mlとヘキサン洗浄した蒸留水50mlを加えて、15分間振とうすることで抽出をおこなった。有機溶媒層を回収し無水硫酸ナトリウム (同上) で脱水した後、KD濃縮機を用いて高純度 (99.99%) 窒素気流下で5mlに濃縮した。この濃縮物は活性化シリカゲルカラムで展開した。活性化シリカゲルカラムは、まずシリカゲル (和光純薬社製ワコーゲルS-1) を130℃で3時間加熱し、その1.5gをn-へキサン (同上) へ懸濁し、内径10mmのガラスカラムに湿式充填することで準備した。展開はn-ヘキサンを用いて1滴/1秒の流速でおこなった。総量150mlまでを分取し、全量を濃硫酸 (和光純薬社製特級) 10mlと共に分液漏斗にて振とうし、硫酸の着色がなくなるまで繰り返した。ついでヘキサン洗浄した蒸留水で水層が中性になるまで洗浄し、無水硫酸ナトリウム (同上) で脱水した後、再びKD濃縮器で100μl以下になるまで濃縮し、トルエン (関東化学社製ダイオキシン分析用) にて100μlとした。この試料をガスクロマトグラフ−質量分析計 (GC-MS) にて分析した。GC-MSは日本電子社製MStationにSUPELCO社製SPB-Octyle (50cm×0.2mm×0.25μm) を取り付け、分解能8000以上のHR-SIM法で測定した。
肝臓組織のGC-MS測定の結果から求められたPCB126濃度の比較を第4図に示す。統計学的処理により有意な差と認められたものに、危険率に応じて "***" (P<0.001) が付けられている。EPR測定の結果と同様に、乳酸菌ラクトバチルスsp CP3012 (FERM BP-8052) と枯草菌バチルス・ズブチリス C-3102 (FERM BP-1096) でコントロール処理に対する、有効性が示された。
本発明を詳細にまた特定の実施態様を参照して説明したが、本発明の精神と範囲を逸脱すること無く様々な変更や修正を加えることができることは当業者にとって明らかである。ここに引用されるすべての参照は全体として取り込まれる。
Claims (2)
- 体内に蓄積したダイオキシン類により急性毒性又は慢性毒性を受けている生体の体内に蓄積したダイオキシン類の体外への排除を促進させる能力を有する微生物としてバチルス・ズブチリスC-3102(FERM BP-1096)を有効成分として含有し、投与量が一日あたり10 6 cells/kg体重以上であることを特徴とするダイオキシン類排除促進剤。
- 「ダイオキシン類」は平成11年7月に公布された法律「ダイオキシン類対策特別措置法」第二条第1項でいうところの「ダイオキシン類」である、請求項1記載のダイオキシン類排除促進剤。
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