JP4530991B2 - マイクロインジェクション方法および装置 - Google Patents

Description

本発明は、細胞内に生理活性物質を導入する方法及びそれに用いるためのマイクロインジェクション装置に関するものである。

培養細胞などに遺伝子ＤＮＡを導入する技術は、カルシウム沈殿法、Lipid transfer法、ウィルスベクター法、エレクトロポレーション法、遺伝子銃（gene gun）法、マイクロインジェクション法などがある。マイクロインジェクション法以外の方法では、いずれも導入は確率に従い、ある特定の細胞のみを狙って導入することは不可能である。一方、マイクロインジェクション法は、ガラスピペットの先端の直径が１μｍ前後に及び、これを細胞核にまで刺し入れることによって細胞が容易にダメージを受けやすいという問題がある。また、複数の細胞に別々の遺伝子を導入する場合、その数だけピペットを用意する必要があり、準備などが煩雑であった。

また、特開２００３−８８３８３号公報には、生きた細胞からＲＮＡなどの生体分子を採取する手段を提供するために、生体分子と特異的に結合し得る針を微細な位置制御が可能な装置を用いて、生細胞に刺し込み、生細胞から引き抜くことが開示されている。ここで用いる針としては、ＺｎＯウィスカーやカーボンナノチューブを用いている。例えば、金属酸化物ウィスカーの表面はアミノ基が修飾されており、細胞内の生体分子と特異的に結合し、採取できるように施されている。

上記した通り、従来のエレクトロポレーションや遺伝子銃では、一度に大量の細胞に物質を注入できるが、特定の細胞だけに物質を注入することは困難であった。また、従来のマイクロインジェクションでは、特定の細胞に物質を注入することができるが、注入する針としての中空状のガラスキャピラリを用いていたためその外径を小さくすることには限界があった。そのために細胞に針を注入した際に細胞が破裂したり、致命的な傷害（ダメージ）を受けてしまうという問題や、操作が煩雑であるなどの問題があった。

また、特開２００３−８８３８３号公報に示されるように、金属酸化物ウィスカーやカーボンナノチューブに特異的な修飾を施すことにより、生きた細胞から、生体分子を採取することが可能であり、その後の個々の細胞について経時的な変化を連続的に記録することが可能となっている。しかしながら、積極的に遺伝子を導入して経時的な変化を連続的に記録することは開示されておらず、また、上記方法では、生体分子と特異的に結合させる物質を針表面に修飾するための煩雑さなどの問題が存在する。

本発明は上記に示した従来技術の問題点を解消することを解決すべき課題とした。すなわち、本発明は、遺伝子などの生理活性物質を細胞内に導入するための方法であって、細胞に与える侵襲度を極端に減らしつつ、顕微鏡視野内の任意の細胞に任意の遺伝子などの生理活性物質を導入するための方法及び装置を提供することを解決すべき課題とした。

すなわち、本発明によれば、培養液中の細胞に生理活性物質を導入するマイクロインジェクション方法であって、前記培養液中に前記生理活性物質を散在させる工程と、前記生理活性物質が散在された前記培養液中の細胞に針を挿入する工程とを含むことを特徴とする、マイクロインジェクション方法が提供される。

本発明の別の側面によれば、培養液中の細胞に生理活性物質を導入するマイクロインジェクション装置であって、前記細胞内に挿入される針と、前記生理活性物質が散在された前記培養液中の細胞に前記針を挿入させる駆動手段とを有することを特徴とするマイクロインジェクション装置が提供される。

好ましくは、前記生理活性物質は核酸である。
好ましくは、前記針は、前記細胞に挿入される範囲では光学分解能を超える細さの直径を有する。

好ましくは、前記針は、前記細胞に挿入される範囲では５００ｎｍ以下の直径を有する。
好ましくは、前記針は、前記細胞に挿入される範囲では５０〜１００ｎｍの直径を有する。

好ましくは、前記針は、高速な動作周期で往復運動され、前記細胞の細胞膜に針穴を形成する。
好ましくは、前記針によって形成される前記細胞の細胞膜の針穴は、前記培養液中に散在する前記生理活性物質を前記細胞に導入する導入経路となる。
好ましくは、前記針は、当該針が前記培養液中にあるときに正の電圧が印加され、前記細胞に挿入されたときに負の電圧が印加される。

以下、本発明の実施の形態について、詳細に説明する。
本発明の方法においては、５００ｎｍ以下の直径を有する針の周囲に生理活性物質を付着させ、該針を細胞内に挿入することによって、生理活性物質を細胞内に導入する。

本発明は、遺伝子導入のために非常に細い針（光学的分解能を超えるくらいの針）を使用することを特徴とするが、具体的には、細胞内に挿入される範囲で５００ｎｍ以下の直径を有する針、特に好ましくは５０〜１００ｎｍの直径を有する針を使用することができる。本発明で使用する針は、その帯電性などの電気的性質をコントロールしやすい針であることが望ましい。本発明では、例えば、針の表面の電荷をプラスにしてＤＮＡ分子を付着させ、針を細胞核に刺入してから、針の表面の電荷をマイナスにすることにより、ＤＮＡ分子を針の表面から離脱させることができる。本発明では、細い針を使用するために、細胞のダメージを極力小さくすることができ、さらに、任意の狙った細胞に任意のＤＮＡを導入することができる。

また、細胞内小器官（ゴルジ体、ミトコンドリアなど）を針にて損傷させると、細胞の生存率が低下することが知られており、細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの針を用いることにより、細胞核大きさに対して十分に小さく、細胞核以外の細胞内小器官を傷つけにくい。さらに、針を真上（重力方向）から細胞に進入させることにより、細胞核と細胞膜が最も接近した箇所に針を挿入することになる。ここで、細胞核と細胞膜の微小な空間領域に細胞内小器官が存在する確率が下がっており、この点からも、細胞内小器官を傷つける事が少なく、細胞の生存率を向上できる。
なお、導電性（帯電性）を有する表面の針を用いることだけですみ、特に、生体分子に合わせた修飾を針表面に施すことは必要としない。

例えば、１００種類のＤＮＡ溶液と１００個の細胞を用意し、針をＤＮＡ溶液に浸し、細胞の真上から細胞に針を突き刺す。このように針をＤＮＡ溶液に浸す操作と、針を細胞に突き刺す操作を繰り返すことによって、異なる細胞にそれぞれ所望のＤＮＡを導入して別々に形質転換することができる。従って、本発明の方法によれば、薬剤スクリーニングや生体分子間相互作用の網羅的解析を、従来のように、９６穴プレートや３８４穴プレート等を用いてウエル毎に行うのではなく、１細胞レベルで行うことが可能になる。

本発明で用いる針の材料は、上記した性質を有するものであれば特に限定されないが、例えばカーボンナノチューブなどが挙げられる。カーボンナノチューブはグラファイトの一層（グラフィン）を丸めた円筒形の形状を有し、１００％炭素原子から構成される微小な結晶である。近年、ナノテクノロジーが脚光を浴び、このカーボンナノチューブも多方面から注目されている。カーボンナノチューブを使用する研究例には、液晶、プラズマディスプレイに代わり、ナノチューブを電子銃に使用する画面の開発、燃料電池及び太陽電池への応用、または水素貯蔵材料なとが挙げられる。これらは、カーボンナノチューブ自体が有する微小さ、その立体構造から得られる量子物性、ならびに純水に炭素からのみなるという各種の特徴の組み合わせから、従来とは異なるユニークな性質を有するためである。カーボンナノチューブはまた、純水に炭素のみからなり、カーボンブラック等と異なり不純物をほとんど含有しない。また、成形時および／または使用時に高温下に曝されても、変化しないという特徴も有する。

現在、Multi wallカーボンナノチューブとしては、直径が５０〜１００ｎｍ程度で、長さが３μｍ以上のものが入手可能であり、本発明ではこのようなカーボンナノチューブを使用することが好ましい。針の直径が細すぎると保持できる生理活性物質の量が少なくなり、反対に針の直径が太すぎると細胞への侵襲が大きくなり、いずれも好ましくない。従って、本発明では、細胞内に挿入される範囲で５００ｎｍ以下の直径を有する針を使用し、さらに好ましくは５０〜１００ｎｍの直径を有する針を使用する。また、針の長さについては、通常の培養細胞の高さが５μｍ程度であるので、５μｍ以下の長さの針を使用すれば十分であり、例えば、３μｍ程度の針も使用することができる。

このほかに使用できる針としては、以下のものがある。
従来例に示されているような金属酸化物ウィスカーに金（Ａｕ）又は白金（ｐｔ）等を蒸着・スパッタなどの装置を用いて表面が導電性を有するようにした針。また、原子間力顕微鏡のカンチレバーとして多用されているシリコン製カンチレバーに金（Ａｕ）又は白金（ｐｔ）等を蒸着・スパッタなどの装置を用いて表面が導電性を有するようにした針なども使用できる。なお、シリコン製カンチレバーは針先部をＩＰＣやＦＩＢなどの装置を用いてエッチングし、先鋭化した後に、導電膜を形成することにより、生細胞への侵襲度はさらに、低減することができる。また、シリコン製のカンチレバーの場合、エッチングにより針先にテーパー形状を有することにより、針強度を向上することができる。なお、前記の針は、細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの直径を有する針であることが、細胞へのダメージを低減する上で必要であり、前述のテーパー形状を有する場合の針の場合も、細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの直径を有する形状となっている。

本発明の方法で細胞に導入することができる生理活性物質の種類は特に限定されないが、一般にＤＮＡまたはＲＮＡなどの核酸、およびタンパク質などが挙げられ、好ましくは核酸である。核酸はＤＮＡでもＲＮＡでもよく、また、ＤＮＡは、ゲノムＤＮＡまたはその断片、ｃＤＮＡ、または合成オリゴヌクレオチド等の合成ＤＮＡのいずれでもよい。

本発明では、上記したような細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの直径を有する針（カーボンナノプローブや導電表面を有する金属酸化物などのウィスカー）を、原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）のカンチレバーの先に装着し、電気的接続を行うことができる。ここで言う電気的接続とは、針の電荷を正または負に制御するための電気的接続のことを言う。このカンチレバーは顕微鏡の画像処理と連動させて、目的の生理活性物質を入れてある容器と、目的の細胞（細胞核など）との間で移動させることにより、目的の生理活性物質を目的の細胞のみに導入することができる。本発明の好ましい態様では、針は常に垂直方向を向き、高い精度で針先位置をコントロールすることができる。

上記した針の移動は、針の移動を制御するための駆動手段により行うことができる。すなわち、細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの直径を有する針、および該針の移動を制御するための駆動手段を有するマイクロインジェクション装置が提供される。さらに、具体的には、本発明のマイクロインジェクション装置は、（ａ）細胞を所定の場所に保持するための細胞保持手段；（ｂ）細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの直径を有する針、および該針に連結された該針の移動を制御するための駆動手段；および（ｃ）細胞保持手段内に保持された細胞を観察するための顕微鏡から構成することができる。

本発明では、生理活性物質の有する電荷と反対の電荷で帯電させた針を使用し、該針に生理活性物質を静電的（電気的）に付着させた後に、該針を細胞内に挿入することができる。ＤＮＡなどの負の電荷を有する生理活性物質を細胞に導入する場合には、正に帯電させた針に上記生理活性物質を静電的（電気的）に付着させた後に、該針を細胞内に挿入すればよい。

なお、本発明においては、生理活性物質の電気的な極性を利用して、任意の時間に針表面に生理活性物質を保持したり、離脱させたりできるものである。つまり、静電的に保持できること以外にも、針への電圧印加を維持した状態でも生理活性物質が針表面に付着することは言うまでも無く、印加電圧の極性を逆転（反転）させることにより離脱させることが可能である。

以上から、必ずしも静電的な作用に限定されるものではなく、生理活性物質の電気的特性に応じて、又は、使用目的に応じて、針への印加電圧方法を選択することにより、様々な用途に適用することができる。
本発明の方法の一例としては、以下の工程を行うことができる。
（１）針を正に帯電させる工程；
（２）負に帯電した生理活性物質を含む溶液中に針を浸し、針の周囲に生理活性物質を付着させる工程；
（３）細胞内の標的部位に針を挿入して細胞内に生理活性物質を導入する工程；
（４）針を細胞から抜き、針を負に帯電させて針の周囲に残存した生理活性物質を除去する工程；および
（５）上記（１）〜（４）を繰り返すことにより、複数の細胞に、細胞毎に所望の同一または異なる少なくとも１種類以上の生理活性物質を導入する工程：

以下に、本発明の実施の態様の一例を図を参照して説明する。
図１に本発明の方法の概要を示す。図１は駆動手段９に接続されたカンチレバー１に装着された針２が、細胞３の真上の位置と、生理活性物質を含む溶液８を含む容器７の真上の位置との間を移動することを両方向の矢印を用いて示す。細胞３はシャーレ５の内部で培養されており、シャーレ５は細胞保持手段６の上に設置されている。

先ず初めに、針２を、生理活性物質を含む溶液８を含む容器７の中に挿入して、針２の表面に生理活性物質を含む溶液を付着させる。この溶液の針への付着は、針２に電気的に接続されている電位制御手段１０によって針の電荷を制御することにより行うことができる。すなわち、生理活性物質が核酸などの負の電荷を有する物質である場合は、電位制御手段１０によって針２を正に帯電させておくことにより、生理活性物質を効率的に針２に付着させることができる。

続いて、生理活性物質を付着させた針２を上昇させて、生理活性物質を含む溶液８を含む容器７から引き出し、横方向に移動して目的の細胞３の真上の位置に移動する。細胞３の真上の位置にある針２は、下に移動して目的の細胞３の細胞核４の中へと挿入される。細胞核４の中に挿入された針は、その状態で表面に付着している生理活性物質を細胞核４の内部に放出する。生理活性物質の放出は針２に電気的に接続されている電位制御手段１０によって針の電荷を制御することにより行うことができる。すなわち、生理活性物質が核酸などの負の電荷を有する物質である場合は、電位制御手段１０によって針２を負に帯電させることにより、生理活性物質を効率的に針２から放出させることができる。生理活性物質を細胞核４の内部に放出した後、針は細胞から引き上げられる。以後、上記の操作を繰り返すことにより、所望の生理活性物質を所望の細胞核に導入することができる。上記に示した針２の移動は全て駆動手段９により制御されている。

本発明はさらに、細胞内に挿入される範囲で５０〜５００ｎｍの直径を有する針と、細胞内に該針を挿入離脱するために、該針の移動を制御するための駆動手段と、生理活性物質を該針表面から保持離脱するために電圧を印加する電圧印加手段とを有し、該針を細胞内に挿入し、生理活性物質を細胞内に導入することを特徴とするマイクロインジェクション装置に関する。

以下に、マイクロインジェクション装置について、詳細を説明する。
図２に示されるようにマイクロインジェクション装置は倒立型顕微鏡のステージ上に構成されており、遺伝子導入開始からその後の経過を観察・計測できるものである。顕微鏡ステージ上には温度環境を３７℃に維持するための保温箱１２が構成され、その内部に、マイクロインジェクション装置が設置される。

図３は顕微鏡ステージを上面から見た図（保温箱内部図）である。保温箱は内部に熱伝導性に優れた金属（アルミニウム合金など）で構成され、内部の側面にヒーター１３や内部空気攪拌用のファン１４が設置されている。保温箱外表面は断熱材にて覆われ、外部環境に熱が逃げないようになっている。また、倒立型顕微鏡にて内部を観察するために、保温箱の上下には、一部の領域がガラス面となり、対物レンズ１５にて標本１６（シャーレ内の細胞など）を観察できる。さらに、透過照明用の光源からの光が標本に照射でき、位相差観察や微分干渉観察が実施できるようになっている。

そして、細胞の培養液のペーハー（ＰＨ）を培養環境に最適化するために、保温箱外部より配管を通して５％ＣＯ₂が供給され、ファンにより、保温箱内部は均一に５％濃度のＣＯ₂雰囲気となっている。
保温箱の内部に形成された顕微鏡ステージ上には、標本となるシャーレ（ディッシュやマイクロプレート等）や、遺伝子DNAを含む溶液の入ったサンプルカップなどの容器１８や、針を洗浄する洗浄槽１９などがモータなどで動作するＸＹステージ２０上に構成されている。
よつて、遺伝子導入用の針の下には、標本１６、容器１８、洗浄槽１９が移動してくることができ、同様に、標本内の全エリアを観察することができる。

遺伝子導入用の針２１はＺ方向（重力方向）にのみ移動し、針下に位置される対象に向かって、上下動される。図４に示されるように、遺伝子導入用の針２１は薄板の圧電素子（チタン酸ジルコン酸鉛）を積層した積層型圧電アクチュエータ２２の端面に針先を下に向けて設置されている。もう一方の積層型圧電アクチュエータ２２の端面は固定ブロック２３に設置され、積層型圧電アクチュエータ２２に電圧を印加すると下方向に針２１が微小移動するようになっている。市販されている積層型圧電アクチュエータにもよるが、１００Ｖ程度で１０μｍの移動量が実現でき、印加電圧値により、その変位量を制御することができる。

さらに、固定ブロック２３はＺ軸ステージ２４に搭載され、針２１のＺ方向位置は、Ｚ軸ステージ２４により粗動作、積層型圧電アクチュエータ２２により微動作の２段駆動機構により、細胞２６へ針２１を進入させる。例えば、標本１６となるシャーレの上方に位置し、シャーレ内の細胞２６付近までは粗動作し、その後、針２１を細胞２６に進入させる際には、微動作させる。針２１は非常に折れやすいため、針先が標本１６のシャーレなどの底に接触する直前（例えば、底から１μｍの高さ）で動作を停止する。

つまり、針２１は細胞核２７を貫通してもよく、常に、底から１μｍの高さに針先を下降することだけを装置に認識させることにより、容易に自動化できる。特に、細胞膜表面を検出し、その位置から数μｍ下降するなどの制御動作は無用であり、高額な検出部品などを削減できる。
一方、遺伝子DNA溶液が入った容器１８や洗浄槽１９に下降する場合は、厳密な高さ制御は不要であるためＺ軸ステージ２４による粗動作だけでよい。

動作については、前述した通りであるが、以下の工程による。
（１）針の洗浄：遺伝子導入用の針２１の下に洗浄槽１９が位置し、洗浄槽１９内に針２１が下降する。洗浄槽１９内には、洗浄水（滅菌水）などが貯留されており、針２１が確実に浸漬された状態で、針２１に交番電圧が印加される。針先に付着したゴミや前回付着させた遺伝子DNAを除去する。例えば、図５のように、印加電圧としては±５Ｖの１００ＨＺの交番電圧を印加する。これにより、針表面の不純物が除去される。好ましくは、洗浄槽１９を超音波洗浄化したり、酸又はアルカリなどの薬品洗浄槽と滅菌水洗浄槽を２つ設けてもよい。
（２）その後、洗浄槽１９から針２１は上昇し、その過程で、針先をエアーブローなどにより、乾燥させてもよい。
（３）次に、針下に遺伝子DNA溶液が入った容器１８が移動され、その中に針２１が下降する。溶液に浸漬された状態で、針表面に正の電圧を印加する。例えば、印加電圧を１Ｖ、印加時間を３秒間以上とする。これにより、遺伝子DNAが負の極性を有しているため、針表面に付着する。その後、針先は上昇し、標本１６が針下に位置される。この間、針先に電圧を印加していても、しなくてもよい。
（４）針先が標本１６のシャーレ内に下降する際には、針２１への印加電圧を停止し、細胞表面付近まで粗動作で下降し、その後、微動作で細胞核２７に針２１を下降させる。
（５）針２１の移動が停止した後、針先へ負の電圧を印加し、針表面の遺伝子DNAを離脱させ、細胞内（細胞核内）に放出する。例えば、印加電圧は−０．５Ｖ、印加時間は１秒程度である（針の遺伝子DNAが離脱するために十分な時間の電圧を印加することが望ましい）。遺伝子DNAを保持してから放出するまでの電圧波形を示すと、図６のようになる。
（６）電圧印加終了後、針２１を上方に移動させ、洗浄槽１９にて針２１を洗浄し、異なる遺伝子DNAが入った容器にて別の遺伝子DNAを針表面に保持し、別の細胞に放出する。

このように、針表面に保持された遺伝子DNAを細胞内で放出する場合、細胞内に針２１が滞在している間だけ、負の電圧を印加し、電気的な反発により、遺伝子DNAを離脱できるようにした。培養液中で電圧を印加する場合には、電気化学反応により、泡の形成が懸念されるために、必要な時間のみ、培養液中では電圧を印加するとこが望ましい。よって、細胞内に針が滞在している間のみ電圧を印加し、細胞に刺すまでの移動時間および、細胞から針が退避するまでの移動時間中は電圧の印加を停止することがよい。

これらの動作を繰り返すことにより、図７に示されるように隣り合う細胞２６に異なる遺伝子DNAを導入することが可能となり、細胞間の相互作用の解析などに利用することができる。また、既存のガラス管を用いたマイクロインジェクション装置では、遺伝子DNAの溶液を油圧機構により吸引・排出したり、針先を細胞に位置合わせすることを手動動作で利用者が実施しており、熟練度が必要とされていた。しかしながら、本発明の構成では、細胞の画像処理を利用して細胞核２７を認識し、その細胞核２７の中心に針先を位置指定し、その後は、自動化することが容易であり、熟練度は皆無となる。

なお、上記の実施の態様では、異なる遺伝子DNAをそれぞれの細胞に導入する工程を述べたが、針２１が非常に細く細胞へのダメージが少ないため、異なる遺伝子ＤＮＡを一つの細胞に複数導入することも可能である。
なお、針先への印加電圧は上述に限られるものではなく、例えば、図８や図９に示される電圧パターンでもよい。図８においては、遺伝子DNAを保持する時間を短縮し、針先への遺伝子DNAの付着量を少なくすることができる。つまり、導入される遺伝子DNAの量は、このときに付着される量に左右されるため、電圧値を小さく、印加時間を短くすると、付着量は少なくなり、逆を行えば、付着量を多くすることができ、導入量も増加する。細胞への遺伝子導入量に変化（差）を設ける場合の手段として、有効である。また、図９は細胞核内に遺伝子ＤＮＡを放出する際に、針先への印加電圧を短い間隔でパルス電圧化（時間的に変化する電圧化）することにより、針先に付着した遺伝子ＤＮＡの剥離作用現象を助長し、ぼぼ全量の離脱を行うことができる。細胞内での電圧印加は全く影響がないとは言えず、刺激となりうる。このため、印加時間は少ないほど好ましく、例えば、印加電圧を−１Ｖ、１０ＨＺにて１０パルスの電圧を印加する。

さらに、針を微動作させる積層型圧電アクチュエータ２２はほぼ、電圧の印加に応じて高速に変位することが可能である。例えば、断面積５ｍｍ角長さ２０ｍｍの積層型圧電アクチュエータ２２の屈曲方向固有振動数は数ｋＨｚに存在し、その周波数以下（共振領域以下）では電圧パターンに呼応して、針先が追従して動作する。このことから、細胞２６への針２１進入を数HZの高速で進入させ、その周期で針２１を上昇する。そして、その僅かな挿入から退避までの時間中に、前述の複数のパルス電圧を印加すれば、細胞２６に留まる針２１の時間も短縮でき、より細胞２６への侵襲度を低減することができる。

また、図１０に示されるように、培養液中に細胞内に導入しようとする遺伝子DNAを散在させた場合について説明する。遺伝子導入用の針２１を積層型圧電アクチュエータ２２により高速（数kHzの１サイクル動作周期）に上下往復動作させて、細胞膜（細胞核２７）に針穴２９を形成する。前述のように針２１は微小径であり、その挿入による細胞２６への影響は小さく、また、針２１を高速に抜き差しするために、さらに、細胞２６へのダメージを低減することができる。これにより、細胞２６内（細胞核２７内に）に溶液中の遺伝子ＤＮＡの導入経路が確保され、この状態で培養することにより、溶液中の遺伝子DNAを導入することができる。よって、個々の細胞２６に１箇所以上の針穴を自動動作で形成することにより、複数の細胞に容易に遺伝子ＤＮＡを簡便に導入できる。

好ましくは、遺伝子DNA２８が散在している培養液中で針に正の電圧を印加し、針表面に遺伝子DNAを保持し、細胞内に挿入された時間帯に、負のパルス電圧を複数印加し、細胞内に遺伝子DNAを放出する。これらの動作を培養液内で針がＸＹ面内を動作し、次々と別の細胞に遺伝子DNAを導入していく。遺伝子DNAを針表面に保持するために容器に浸漬する動作や、洗浄動作等が省略できるために、短時間に多数の細胞に対して導入でき、その導入効率も高かめられる。

このように遺伝子導入された細胞はその後、顕微鏡に搭載された保温箱内で培養を継続し、遺伝子が発現するまでの過程や、細胞間の相互作用を経時的に観察・計測することが可能となる。
以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。

実施例１
培養シャーレ内で培養している神経細胞に対して、図１に記載の装置を用いてＤＮＡを導入した。
神経細胞としてはＰＣ１２細胞（ラット副賢髄質クロム親和性細胞種より単離された神経系クローン細胞）を用いた。培地は、１０％胎児ウシ血清（ＦＢＳ）を含むＤＭＥＭ（Dulbecco's Modified Eagle Medium）を用いた。培養は37℃、5%Co2の条件下で行った。DNAとしは、NGF受容体遺伝子を含む組み換え発現ベクターを使用し、１μｇ／ｍｌのＤＮＡ溶液を使用した。
図１に記載の装置で使用した針は、図１１に示される直径５０ｎｍおよび長さ３μｍを有するカーボンナノチューブから成る針である。

先ず、針をＤＮＡ溶液に浸し、その表面にＤＮＡを付着させた後、神経細胞の核の内部に針を挿入して、ＤＮＡを放出させた。ＤＮＡを導入後、神経細胞を引き続き培養したが、３日経過後においても神経細胞は生存していた。
なお、図１２に示される針はシリコン製のカンチレバーをエッチングにより細径化し、表面に白金層が形成されている。こちらの針を用いて、Ｈｅｌａ細胞への導入を実施した結果、同様に、ＤＮＡを導入後、３日経過後においてもＨｅｌａ細胞は生存していた。
一方、比較例として、直径５０ｎｍおよび長さ３μｍを有するカーボンナノチューブから成る針を使用する代わりに、上記と同じＤＮＡ溶液を充填したガラスピペット（内径３００μｍ）を用いて、マイクロインジェクションを行った。マイクロインジェクション後、神経細胞を培養したが、３日後までに神経細胞死んでしまい、生存している細胞は皆無であった。

産業上の利用の可能性

本発明により、細胞に与える侵襲度を極端に減らしつつ、顕微鏡視野内の任意の細胞に任意の遺伝子などの生理活性物質を導入するための方法及び装置を提供することが可能になった。

図１は、本発明の方法の概要を示す。 図２は、倒立型顕微鏡のステージ上に構成されたマイクロインジェクション装置を示す。 図３は、顕微鏡ステージを上面から見た図（保温箱内部図）を示す。 図４は、マイクロインジェクション装置と、遺伝子導入用の針の位置を示す。 図５は、印加電圧として使用する±５Ｖの１００ＨＺの交番電圧を示す。 図６は、遺伝子DNAを保持してから放出するまでの電圧波形を示す。 図７は、隣り合う細胞の様子を示す。 図８は、印加電圧の電圧パターンの一例を示す。 図９は、印加電圧の電圧パターンの別の例を示す。 図１０は、培養液中に細胞内に導入しようとする遺伝子DNAを散在させた場合の模式図を示す。 図１１は、直径５０ｎｍおよび長さ３μｍを有するカーボンナノチューブから成る針を示す。 図１２は、シリコン製のカンチレバーをエッチングにより細径化し、表面に白金層が形成されている針を示す。

符号の説明

上記図中において、１はカンチレバー、２は針、３は細胞、４は細胞核、５はシャーレ、６は細胞保持手段、７は容器、８は生理活性物質を含む溶液、９は駆動手段、１０は電位制御手段、１１はマイクロインジェクション装置、１２は保温箱、１３はヒーター、１４はファン、１５は対物レンズ、１６は標本、１７は透過照明用光源、１８は容器、１９は洗浄槽、２０はＸＹステージ、２１は針、２２は積層型圧電アクチュエータ、２３は固定ブロック、２４はＺ軸ステージ、２５はシャーレの底、２６は細胞、２７は細胞核、２８は遺伝子DNA、そして２９は針穴を示す。

Claims (7)

1. 培養液中の細胞に生理活性物質を導入するマイクロインジェクション方法であって、前記培養液中に前記生理活性物質を散在させる工程と、前記生理活性物質が散在された前記培養液中の細胞に対し、光学的分解能を超えるくらいの細さである５００ｎｍ以下の直径を有する針の移動を制御する工程とを含むことを特徴とする、マイクロインジェクション方法。
2. 培養液中の細胞に生理活性物質を導入するマイクロインジェクション装置であって、前記細胞内に挿入される光学的分解能を超えるくらいの細さである５００ｎｍ以下の直径を有する針と、前記生理活性物質が散在された前記培養液中の細胞に対する前記針の移動を制御する駆動手段とを有することを特徴とするマイクロインジェクション装置。
3. 前記生理活性物質が核酸であることを特徴とする請求項２に記載のマイクロインジェクション装置。
4. 前記針が、前記細胞に挿入される範囲では５０〜１００ｎｍの直径を有することを特徴とする、請求項２に記載のマイクロインジェクション装置。
5. 前記針が、高速な動作周期で往復運動され、前記細胞の細胞膜に針穴を形成することを特徴とする、請求項２に記載のマイクロインジェクション装置。
6. 前記針によって形成される前記細胞の細胞膜の針穴が、前記培養液中に散在する前記生理活性物質を前記細胞に導入する導入経路となることを特徴とする、請求項２に記載のマイクロインジェクション装置。
7. 負の電荷を有する生理活性物質が前記培養液中に散在するときに前記針に正の電圧が印加され、前記細胞に挿入されたときに前記針に負の電圧が印加されることを特徴とする、請求項２に記載のマイクロインジェクション装置。

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