JP4122061B2 - 骨粗鬆症の治寮のための副甲状腺ホルモン類似体 - Google Patents
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Description
発明の分野
本発明は、骨粗鬆症の処理において効果的であることが見出されたヒト副甲状腺ホルモン類似体に関する。
発明の背景
骨粗鬆症は、年配の人、特に年配の女性における疾患の主な原因である。ヒト副甲状腺ホルモン（hPTH）及び一定の類似体は、骨粗鬆症の治療において有用である骨成長の刺激物質であることが最近十分に理解されている。骨粗鬆症は、全体的な骨量を低下させ、そして骨ぜい弱性を増加させる進行性疾患である。これは、しばしば、負荷を受けた骨の自然的な破損、及び固定する損傷に特有な物理的及び精神的悪化をもたらす。閉経後骨粗鬆症は、古い骨の吸収と新しい骨の形成との間の不均衡の上昇を伴う骨ターンオーバーの長期間の促進を誘発するエストロゲンの消失により引き起こされる。これは、負荷を受けた骨の細弱化（thinning）、有孔性（porosity）の上昇、及び柱状消耗（trabecular depletion）をもたらす。骨粗鬆症はまた、甲状腺機能亢進症、上皮小体機能亢進症、Cushing’s症候群、及び一定のステロイド薬物の使用にも関連している。治療法は歴史的に、食物カルシウムの増加、エストロゲン治療、及びビタミンＤの高用量使用を包含して来たが、しかし主に、破骨細胞による骨吸収を阻害する抗吸収剤のような剤の使用を包含して来た。
副甲状腺ホルモン（PTH）は、副甲状腺により生成され、そして血液カルシウムレベルの主な調節物質である。PTHは、ポリペプチドであり、そして合成ポリペプチドは、Erickson and Merrifield, The Proteins, Neurathなど., Eds., Academic Press, New York, 1976, p257により開示される方法により調製され、そしてHodgesなど（1988）Peptide Research 1, 19又はAtherton, E. and Sheppard, R.C.Solid Phase Peptido Synthesis, IRL Press, Oxford, 1989の方法により修飾され得る。
血清カルシウムが正常レベル以下に低下する場合、副甲状腺はPTHを放出し、そしてカルシウムレベルは、骨カルシウムの吸収により、腸からのカルシウムの吸収の増加により、及び腎管における発生尿（nascent urine）からのカルシウムの腎再吸収の上昇により高められる。連続して注入された低レベルのPTHは骨からカルシウムを除去するが、その同じ低い用量が、断続的に注入される場合、骨の生長を実際的に促進することができる。
Tregear（アメリカ特許第4,086,196号）は、ヒトPTH類似体を記載し、そして最初の27〜34個のアミノ酸がインビトロ細胞アッセイにおけるアデニルイルシクラーゼの刺激に関して最も効果的であることを特許請求している。Rosenblatt（アメリカ特許第4,771,124号）は、Trp23がアミノ酸フェニルアラニン、ロイシン、ノルロイシン、バリン、チロシン、β−ナフチルアラニン又はα−ナフチルアラニンにより置換されているhPTH類似体のPTHアンタゴニストとしての性質を開示した。それらの修飾されたhPTH類似体はまた、２〜６個の末端アミノ酸が除去され、骨粗鬆症を処理するために使用される場合、ほとんどのアゴニスト活性の損失をもたらす。それらの類似体は、PTH及びPTH−関連ペプチドのインヒビターとして企画される。それらの類似体は、いくつかの腫瘍に関連する高カルシウム血症の処理においてたぶん有用であろうと主張された。
Pangなど.（1993年４月15日に公開されたWO 93／06845）は、多くのアミノ酸、たとえばアラニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン又はバリンによるArg25，Lys26，Lys27の置換を包含するhPTHの類似体を記載した。それらは、血圧及び平滑筋に対する最小の効果を伴って、骨粗鬆症の処理において効果的であることを主張しているが、動物又はヒト試験からの支持データが存在しない。
PTHは、２種の第２メッセンジャー系、すなわちＧS−タンパク質で活性化されるアデニルイルシクラーゼ（AC）及びＧq−タンパク質で活性化されるホスホリパーゼＣβの活性化を通して作動する。後者は、膜結合プロテインキナーゼＣS（PKC）活性の刺激をもたらす。PKC活性は、PTH残基29〜32を必要とすることが示された（Jouishommeなど.（1994）J.Bone Mineral Res. 9. 1179-1189）。骨成長の増強、すなわち骨粗鬆症の治療において有用である効果は、AC活性を高めるペプチド配列の能力に連係する（coupling）ことが確立されている。生来のPTH配列は、それらのすべての活性を有することが示されている。hPTH-（1-34）配列は典型的には、下記（Ａ）として示される：
データが下記表１に含まれる次の線状類似体、すなわちhPTH-（1-34）-NH2は、AC−刺激活性のみを有し、そして卵巣切除されたラットモデルにおける骨損失の回復において十分に活性であることが示された（Rixon, R.H.など（1994）J.Bone Miner.Res. 9, 1179-1189; Whitfieldなど（1996）, Calcified Tissue Int. 58, 81-87; Willickなど、1996年９月17日に発行されたアメリカ特許第5,556,940号）；
上記分子Ｂは、示されるアミド末端の代わりに遊離カルボキシル末端を有することができる。
より高い代謝安定能力、高められた骨再生活性、高められたAC活性、及び最小の臨床的副作用を有する新規PTH類似体を製造することが本発明の目的である。
発明の簡単な要約
本発明の１つの観点によれば、下記アミノ酸配列：
〔配列中、Ｒは水素、又は線状もしくは枝分れ鎖のアルキル、アシル又はアリール基であり、
Ｒ１はSer，Ala又はAibであり、
Ｒ２はMet、又は天然に存在する疎水性アミノ酸であり、
Ｒ３はHis、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ４はLeu、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ５はAsn、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ６はSer、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ７はMet、又は天然に存在する疎水性アミノ酸であり、
Ｒ８はGlu，Lys又はAspであり、
Ｒ９はCys，Glu又はOrnであり、
Ｒ10はArg，Lys，Orn，Gln，Glu又はAspであり、
Ｒ11は天然に存在する疎水性又は極性アミノ酸であり、
Ｒ12はGln，Arg，Glu，Asp，Lys又はOrnであり、
ＸはOH，NH2であり、そして
Ｙは、Ｘ，Val-X，Val-His-X，Val-His-Asn-X，Val-His-Asn-Phe-X，Val-His-Asn-Phe-Val-X，Val-His-Asn-Phe-Val-Ala-X、及びVal-His-Asn-Phe-Val-Ala-Leu-Xであり、Ｒ３及びＲ６がLys，Orn，Glu又はAspである場合、１又は２つのアミノ酸対22と26との、26と30との、27と30との、及び25と29との間で環化され、但しシクロ（Lys26-Asp30）〔Leu27〕-hPTH-（1-34）-NH2、シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-34）-NH2及びシクロ（Lys26-Asp30）-〔Leu27〕-hPTH-（1-34）-OHを除く〕を有するヒト副甲状腺ホルモンhPTH及び医薬的に許容できるその塩が提供される。
塩の例は、無機酸の塩、有機酸、たとえば蟻酸、酢酸、酒石酸及びクエン酸の塩、無機塩基、たとえばナトリウム及びアンモニウムの塩、及び有機塩基、たとえばトリエチルアミン、エチルアミン及びメチルアミンの塩を包含する。
本発明のもう１つの特徴によれば、環化は、選択されたアミノ酸対、たとえば天然の残基22と26との、又は26と30との間での側鎖のカップリングを包含するラクタムの形成によりもたらされる。他のタイプの環化、たとえばCys含有類似体Cys22-Cys26及びCys26-Cys30間でのジスルフィド架橋の形成もまた、予想される。
種々のアミノ酸の置換もまた、効果的であることが見出された。Lys27はLeu又は種々の他の天然に存在する疎水性又は極性残基により置換され得る。他の要因は、残基が受容体に対していかによく適合するかである。AlaはLeuのような疎水性ではない。Lys及びTyrは一般的に極性であると思われるが、しかしそれにもかかわらず、受容体との疎水性相互作用を有する。たとえば、Lysは、疎水性部分が受容体中の他の疎水性残基と相互作用し、そしてNH2が溶媒に対して暴露されるように折りたたむことができる。そのような置換は、オルニチン、シトルリン、α−アミノ酪酸、アラニン、ノルロイシン、イソロイシン及びチロシン、又は側鎖に２〜10個の炭素を有するいづれか線状又は枝分れ鎖のα−アミノ脂肪酸、脂肪族鎖の末端で極性又は荷電された基を有するいづれかのそのような類似体を包含する。極性又は荷電された基の例は、アミノ、カルボキシル、アセトアミド、グアニド及びウレイドを包含する。Leu27は最良の置換であるように思われるが、多くの他の27位置換がほぼ完全な活性を保持し、そしてまた、所望の性質、たとえば高められたタンパク質分解安定能力又は水溶解性を有するように思われ、そしてIle、ノルロイシン、Met及びオルニチンが最も活性であると思われる。
この置換は、ホルモンの受容体−結合領域におけるα−ヘリックスの安定化をもたらす。これは、線状分子〔Leu27〕-hPTH-（1-31）-NH2の円二色性スペクトルに比較して、ラクタム類似体の円二色性スペクトルの試験により確かめられた。円二色性スペクトルはα−ヘリックス二次構造体の存在に対して非常に敏感であり、そしてこの技法は、hPTHフラグメントにおけるα−ヘリックスの存在を示すために使用されて来た（Neugebauerなど（1991）Biochemistry 31, 2056-2063）。さらに、hPTH-（20-34）-NH2における上記ラクタムの形成に基づくα−ヘリックスの安定化が示されている（Neugebauerなど（1994）Int.J.Protein Res. 43, 555-562）。hPTH-（1-31）-NH2の残基21と31との間に実質的な両親媒性α−ヘリックスが存在し、そしてこのヘリックスの疎水性面がPTH受容体と相互作用することを示すデータが存在する（Neugebauer, W.など（1995）Biochemistry 34, 8835-8842; Gardella, T.J.など（1993）Endocrinology 132, 2024-2030）。
最も効果的な環化は、たとえば残基Glu22とLys26との間、又はLys26とAsp30との間でのラクタムの形成を包含する。他の環化はまた、Lys27とAsp30との間でも可能であるが、但し、このラクタムはα−ヘリックスに対するいくらかの不安定化効果を示すことが見出されている。
より具体的には、PTHフラグメントの受容体−結合研究は、残基14−34内の主要な結合領域を示した1。本発明者は、残基17−29のα−ヘリックスがPTH受容体に結合し、そしてこのα−ヘリックスの両親媒性部分が受容体に対してその疎水性面で結合することを示唆した2。このモデルは、受容体結合−領域類似体の研究の結果と一致する3。
NMR研究は、CDにより高いヘリックス性であることが見出されているモデルペプチドでさえ、また多くの非ヘリックスコンホメーションを有することを見出している。従って、受容体−結合ペプチドホルモン、たとえばPTHの構造は、溶液におけるその遊離構造から確実には推論され得ない。ペプチドホルモンの強制的な（constrained）類似体が、ペプチドに利用できるコンホメーション状態の数を制限するために使用されて来た8。hPTHの配列の試験は、α−ヘリックスを安定化できるか又は不安定化であるかいづれかである３つの可能な塩架橋を残基17−29内に示す。それらは、α−ヘリックスを安定化することが予測される、Glu22とLys26との及びLys26とAsp30との間に、及びα−ヘリックスを不安定化することが予測されるLys27とAsp30との間に存在する4。それらの残基対間でのラクタム形成は、そのヘリックス領域におけるhPTHに利用できるコンホメーションを制限するであろう。さらに、２つのそれらのラクタム、すなわちα−ヘリックス構造を安定化することが予測されるGlu22-Lys26及びLys26-Asp30は、α−ヘリックスの両親媒性部分の極性面上に位置する。第３のラクタム、すなわちLys27-Asp30は、α−ヘリックスを少なくとも部分的に不安定化することが予測され、そして両親媒性ヘリックスの疎水性面上に存在する残基Lys27を包含する。Lys又はOrn残基が位置25でArgを置換し、そしてGln29がGlu又はAspにより置換される場合、位置25と29との間での環化がまた生じ得る。
LeuによるLys27の置換は、両親媒性ヘリックスの疎水性面上により疎水性の残基をもたらす。これは、ROS細胞系においてアデニルイルシクラーゼ刺激活性の上昇をもたらした。上記で論ぜられた他のそのような置換が同じか又は高められた活性を有する類似体をたぶんもたらすことが当業者により認識されるであろう。
置換及びいづれかのラクタム形成の組合された効果は、α−ヘリックスを安定化し、そして生物活性を高め、そしてタンパク質分解から分子のこの領域を保護することが予測される。Ｃ−末端でのアミドの存在は、いくつかのペプチダーゼはペプチドを分解することができるが、外部タンパク質分解に対して前記ペプチドを保護することがさらに予測されるので好ましい（Leslie, F.M. and Goldstein, A.（1982）Neuropeptides 2, 185-196）。
他のアミノ酸置換が有用に行なわれ得ることもまた見出された。特に、本発明者は、位置８，18での酸化感受性Met残基を、天然に存在する疎水性残基Nleにより、日本特許公開61-24598に従って置換した。Leu，Ile，Val，Phe及びTrpのような他のそのような疎水性残基はまた、Nakagawaなどのアメリカ特許第5,393,869号によれば、有用であることが予測される。
逆ラクタムもまた企画される。たとえば、本発明者は、Lys22-Glu26スイッチの有効性を示している。従って、類似のスイッチが26−30ラクタムと27−30ラクタムとの間で有用に行なわれ得ることが予測される。
前述のCys-Cysに加えて、好ましい22−26ラクタム部位でのもう１つの置換、すなわちAsp22-Orn26が、異なった環化／環サイズが有用に行なわれ得ることを示すために実施された。
Nakagawaなどのアメリカ特許第5,393,869号及びFukudaなどのアメリカ特許第5,434,246号においては、次のようないくつかの置換されたhPTH類似体が、実質的なAC活性を有することが報告されており、そしてタンパク質分解攻撃に対して増強された安定性を有する：特に、
１．Aib（α−アミノイソ酪酸）へのSer-1の置換。
２．GlnへのLys-27の置換（2.5×AC活性を有することが報告されている）。
３．８倍まで活性を高めることが報告されている、Lysへの残基14，15，16，17の完全な又は部分的な置換。これは、水溶解の上昇のためであり得る。インビボにおいて、それらは、チロシン様酵素に対してより不安定であることが予測される。彼らは、少なくとも１つの水溶性アミノ酸が存在するようなこのテトラペプチド（残基14−17）を特許請求している。たとえば、His-14又はLys-14; Leu-15, Lys-15又はArg-15; Asn-16, Orn-16, Hci（ホモシトルリン）-16, Asp-16, Arg-16, Lys-16, DLys-16, Ser-16又はGly-16;及び17-Ser, 17-Lys, 17-Asp又は17-ArgはまたGluを含むことができる。
４．プロテアーゼ攻撃を最少にするためのHisへのArg25の置換。位置−27でLeu又は他の疎水性アミノ酸を特に有するラクタムはいくぶん不溶性になることができ、そしてまた、溶解するのに困難であるので、いくつかの置換がそのラクタムにおいて有用であることが予測される。
1-31h-PTH環状物が好ましいことが当業者によりまた、理解されるであろう。１−30〜１−37の範囲の環状フラグメントがまた有効であろうことが本明細書に提供されるデータから予測される。特に、本明細書に含まれる確証的な１−34データが与えられるので、37までの追加のアミノ酸の存在が、ホルモンの生物学的性質に影響を及ぼす証拠は、文献には存在しない。
本発明のラクタムは、下記の既知方法により調製され得、そして骨成長を刺激するために、骨を再生するために、及び種々の環境において、たとえば骨粗鬆症及び通常の骨折の治療において骨の治癒を促進するために使用され得る。
【図面の簡単な説明】
図１は、天然のヒトPTH残基１−31（配列番号１）の構造を示し；
図２は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号３）の構造を示し；
図３は、〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号４）の構造を示し；
図４は、ROS 17／２細胞のアデニリルシクラーゼ刺激における本発明の類似体の活性を示し；
図５は、骨の損失を妨げ、そして卵巣切除された（OVX）Sprague-Dawleyラットにおける骨成長を刺激する、hPTH-（1-31）NH2及びそのラクタム誘導体の種々の能力を示す、OVX後８週の最後で調製された骨の代表的な組織学的断面を示す。
図６は、骨を始めに重度に消耗されたラットに関して、hPTH類似体により処理された動物及び対照動物の柱状骨体積（trabeculor bone volume）を示す。動物の処理は、OVXの後９週で開始した。〔Leu27〕シクロ〔Glu22-Lys26〕hPTH-（1-31）-NH2は、正常な対照ラットにおいて骨を目標まで再生する最も効果的なフラグメントであり；
図７は、正常、卵巣切除された（OVX）、シャム（sham）並びにhPTH-（1-31）-NH2、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2及び〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2により処理された動物についてのラット大腿骨の柱状骨の厚さを示し；
図８は、hPTH-（1-31）-NH2、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）hPTH-（1-31）-NH2又は〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2の0.8ｎモル／100ｇの用量の添加に対しての血圧の最大降下及び血圧の最大降下までの時間を示す。ペプチドは、皮下（空白の棒グラフ）又は静脈内（斜線の棒グラフ）に投与された。
図９は、〔Leu27〕-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号５）の構造を示す。
図10は、シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号６）の構造を示す。
図11は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2の構造を示す。
図12は、本発明の種々の類似体のアデニルシクラーゼ刺激活性を示す。
図13は、hPTH（1-31）NH2及びhPTH（1-30）NH2、並びにそれらの環状類似体の血圧降下作用を示す。
図14は、異なる用量の線状hPTH（1-31）-NH2の骨成長に対する効果を示すグラフである。
図15は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-OH（配列番号８）の構造を示す。
図16は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-34）-NH2（配列番号９）の構造を示す。
図17は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-34）-OH（配列番号10）の構造を示す。
図18は、〔Ala27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号11）の構造を示す。
図19は、〔Nle27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号12）の構造を示す。
図20は、〔Nle8,18；Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号13）の構造を示す。
図21は、シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号14）の構造を示す。
図22は、〔Ile27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号15）の構造を示す。
図23は、〔Tyr27〕シクロ（Glu23-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号16）の構造を示す。
図24は、α−アセチル−〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号17）の構造を示す。
図25は、〔Leu27〕シクロ（Lys22-Glu26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号18）の構造を示す。
図26は、〔Leu27〕シクロ（Asp22-Orn26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号19）の構造を示す。
図27は、〔Cys22；Cys26；Leu27〕シクロ（Cys22-Cys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号20）の構造を示す。
図28は、〔Cys26；Cys30；Leu27〕シクロ（Cys26-Cys30）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号21）の構造を示す。
ホルモン類似体の調製
引用により本明細書に組込まれる、R.B.Merrifield（“Solid-Phase Peptide Synthesis”, Advances in Enzymology 32, 221-296, 1969）により開示された固相ペプチド合成の技法は、ポリペプチド、たとえば副甲状腺ホルモンの合成のために広く且つ好結果をもって使用される。その方法は、固体支持体に結合されるペプチドのカルボキシル−末端アミノ酸を有することに基づいている。次に、連続的なアミノ酸が高収率で付加される。そのＮ−末端α−アミノ基は、この保護基が固体支持体からのペプチドの除去を伴わないで除去され得るような手段で保護される。ここで使用される化学は、Fmocアプローチとして言及される元のMerrifield法の変法を包含する。Fmoc（フルオレニルメトキシカルボニル）基が、温和なアルカリ条件により除去され、アルカリ安定性側鎖保護基及び環が未結合のままにされる。この技法は、E.Atherton and R.C.Sheppard, “Solid Phase Peptide Synthesis: a Practical Approach”, IRL Press, New York, N.Y.,（引用により本明細書に組込まれる）により記載される。
例 １
線状hPTH-（1-31）-アミド類似体の合成及び精製
アミノ酸のα−アミノ基を、結合の間、９−フルオレニルメトキシカルボニル（Fmoc）により保護した。結合を、ヒドロキシベンゾトリアゾール（HOBt）、２−（１Ｈ−ベンゾトリアゾール−１−イル）−１，１，３，３−テトラメチルウロニウムテトラフルオロボレート（TBTU）及びジイソプロピルエチルアミン（DIPEA）の混合物により行なった。４倍過剰の活性化されたアミノ酸を、Asn，Gln，His，Val、及びIle残基の付加に基づく二重結合に使用した。Arg及びGly付加のための結合時間を、30分から60分に高めた。支持体（Tentagel* R, Rapp Polymere, Tubingen, Germany）への最初の残基（Val31）の結合を手動的に実施した。すべての他の段階は、PerSeptive Biosystems* Model 9050 Plus自動ペプチド合成機上で実施された。側鎖保護は次の通りであった：Arg（２，２，５，７，８−ペンタメチルクロマン−６−スルホニル）；Glu，Asp、及びSer（ｔ−ブチル）；His，Gln、及びAsn（トリチル）；Trp（ｔ−ブチルオキシカルボニル）。
Ｎ−末端SerからのFmoc除去の後、ペプチド樹脂をDCMにより洗浄し、次に7.5mlの試薬Ｋ（6.19mlのTFA、それぞれ0.38mlの水、90％フェノール／水及びチオアニゾール、及び0.19mlの１，２−エタンジチオール）と共に20℃で４時間、振盪することによって、樹脂から分解した。分解されたペプチド混合物を、濾過により除去し、そしてｔ−ブチル−メチルエーテルへの添加により沈殿せしめた。その沈殿物を遠心分離により集め、ｔ−ブチル−メチルエーテルにより２度、洗浄し、次に、真空遠心分離により乾燥せしめた。
粗生成物を、15％アセトニトリル／水、0.1％ TFAの溶液14mlに溶解し、そしてVydac* C18-カラム（10μ、１×25cm）上でクロマトグラフィー処理した。生成物を、アセトニトリル（14−40％）／0.1％ TFA／水のグラジエント上で１％／分で溶出した。最終生成物の純度を、Vydac* C18カラム（10μ、0.4×25cm）上での分析HPLCにより、及びエレクトロスプレー質量分光計（VG Quattro）上での分子質量アッセイにより評価した。そのようにして形成されたhPTH-（1-31）-NH2についてのデータは、下記表１に与えられる。
例 ２
環状類似体の合成及び精製
〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2
このペプチドは、それぞれ位置26及び22でLys-Alloc及びGlu-OAllにより置換して、例１に記載のようにして合成した。Fmoc-Ser17の付加の後、ペプチド−樹脂を、カラムから、反応バイアル（Minivial*, Applied Science）に移し、アルゴン下で、ジクロロメタン（DCM）中、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（O）（0.24ｍモル）、５％酢酸及び2.5％ Ｎ−メチルモルホリン（NMM）の溶液1.7mlに懸濁し、次に、20℃で６時間、振盪し、Allyl及びAlloc保護基を除去した（Sole, N.A.など（1993）In Peptides: Chemistry, Structure, and Biology, Smith.J. and Hodges, R.（Eds）, ESCOM pp.93-94;引用により本明細書に組込まれる）。次に、ペプチド樹脂を、0.5％ジエチルジチオカルバメート（DEDT）、DMF中、0.5％ NMM（50ml）、続いてDMF（50ml）及びDCM（50ml）により洗浄した。ペプチド（0.06ｍモル）を、DMF 2ml中、0.06ｍモルの１−ヒドロキシ−７−アゾベンゾトリアゾール（HOAt）／0.12ｍモルのNMMと共に20℃で14時間、振盪することによって環化した（Carpino, L.A.（1993）J.Am.Chem.Soc. 115, 4397-4398）。ペプチド−樹脂を濾過し、次にDMFにより１度洗浄し、カラム中に再充填し、そして泡が懸濁液から除去されるまで、DMFにより洗浄した。残る合成を、例１通りに実施したが、但し、Ｎ−末端Fmoc基は除去されなかった。Fmoc−ペプチドを、上記のようにして試薬Ｋにより樹脂から分解した。HPLCを例１におけるようにして実施し、そしてFmoc基を、最終HPLCの前に除去した。類似体〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2を、類似する態様で調製した。
例 ３
アデニルイルシクラーゼアッセイ
受容体に結合し、そしてアデニルイルシクラーゼ結合シグナリング機構を活性化するhPTH類似体の能力を、分化−能力のある骨芽細胞様ROS 17／2ラット骨肉腫（ROS）細胞系に対して決定した。この活性は、卵巣切除されたラットにおいて骨量を再生する類似体の能力に密接して連結されることが知られている。アデニルイルシクラーゼ−刺激活性を、細胞ATPプールを〔3Ｈ〕−アデニンによりプレラベルし、そして次に、特定の類似体への最初の10分間の暴露の間、〔3Ｈ〕-ATPから生成される〔3Ｈ〕−環状AMPの量を測定することによって、評価した。これは、引用により本明細書に組込まれる、Whitfieldなど、J.Cellular Physiology 150, 299-303, 1992により記載される方法に基づく。
アデニルイルシクラーゼの結果は、AC活性において最大値の半分までの上昇を表わすために必要な濃度として、下記表２に示される。このデータはまた、図４にも示される。図４においては、黒丸は、hPTH-（1-31）-NH2のアデニルイルシクラーゼ−刺激活性を示し、そして〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2及び〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2の活性はそれぞれ空白及び黒の三角により示される。
例 ４
卵巣切除されたラットモデルによるhPTH類似体の同化活性の決定
投 薬：
用量は、hPTH-（1-31）-NH2に対する用量応答データに基づかれた。hPTH-（1-31）-NH2の骨−構築能力を、いくつかの用量（0.8，0.6，0.4、及び0.2ｎモル／100ｇ体重）、及び保護モデルよりもむしろ再生又は処理−評価モデルを用いて試験した。11 卵巣切除された生後３カ月のラットを９週間放置し、６週間の毎日の注射を開始する前、ほとんどの非層板状大腿骨柱状骨の重度の消耗を引き起こした。９週の最後までに、それらは、それらの大腿骨柱状骨質量の約75％を失なった。図14は、前記フラグメントの４種の異なった用量の36回の注射により生成された層板状付着物により引き起こされる平均の柱状骨の厚さの用量−依存性上昇を示す。フラグメントはまた、より年をとったラットにおいて、柱状骨生長を刺激することができた。従って、中間範囲の用量である0.6ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（1-31）-NH2の36回の注射は、予備消耗された（OVX後９週）生後１年のラットの大腿骨柱状骨において、正常な開始値以上に平均柱状骨の厚さを有意に高めることができ、そしてそれらはhPTH-（1-84）と同じほど効果的に高めた。従って、0.6ｎモル／100ｇ体重の用量を、さらなる試験に用いた。
プロトコールの十分な記載は、引用により本明細書に組込まれるRixonなど、J.Bone & Mineral Research 9, 1179-1189, 1994及びWhitfieldなど. Calcif.Tissue Int. 58, 81-87, 1996に与えられる。正常、擬似−OVX（卵巣切除された）、及びOVX Sprague-Dawleyラット（生後３カ月；255〜260ｇ）を、Charles River Laboratories（St.Constant, QC）から購入した。ラットを、Purinaラット食事及び水及び無制限な食事及び水を受けた、８匹のグループにランダム化した。予定外の死は存在しなかった。動物は、週当たり６回の、１日１回の皮下注射を受け、これはOVXの後、第２週の最後で開始し、そしてOVXの後、８週目の最後で終了した（すなわち、36回の注射）。８匹の擬似−OVX及び８匹のOVX対照ラットは、ビークル（0.001ＮのHClを含む0.15ＭのNaCl溶液）の36回の注射を受け、そして８匹のOVXラットは、100ｇ体重当たり、ビークル中、0.6ｎモルのフラグメントを受けた。OVXの後、８週目の最後で、大腿骨を除去し、清浄し、そして中間骨幹で半分に切断し、そして近位の半分を捨てた。骨端を除去した後、個々の半分の大腿骨を２つの部分に縦に分け、そして骨髄を流した。
フラグメントの骨構築能力を、種々に処理された動物からの遠位半分の大腿骨における柱状骨の平均厚さ（面積／周囲）の変化から評価した。平均柱状骨の厚さを測定するために、個々のラットからの２つの鉱物質除去された半分の大腿骨を脱水し、そしてパラフィンに包埋した。個々の骨の中間面からの縦方向の10μｍの断片を切断し、そして次に、Sanderson’s急速骨染色法（Surgipath Medical Industries, Inc., Winnipeg, MB, Canada）により染色した。平均の柱状骨の厚さを、Imaging Research Inc.,（St.Catherines, ON, Canada）からのＭ４イメージングシステム及び骨体型測定ソフトウェアを用いて測定した。
OVXの後、８週目の最後で調製された骨の代表的な組織学的断面が図５に示される。その結果は、図７において棒グラフの形でさらに示される。棒は、正常、卵巣切除された（OVX）、シャム（sham）動物、並びにhPTH-（1-31）-NH2、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2及び〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2処理された動物の柱状骨の厚さの値を示す。〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2は、線状類似体、すなわちhPTH-（1-31）-NH2に比較して、特に卓越した活性を示す。この線状類似体は、骨再生において十分に活性であることが示されているが、しかしわずか１つの細胞シグナリング（AC−活性化された）路を用いる。従って、その線状類似体のように、それらの環状類似体は、それらのより長い相対物、たとえば細胞シグナリング機構を活性化するhPTH-（1-34）又はhPTH-（1-84）よりも、より少ない所望しない臨床的副作用を有することが予測される。
例 ５
重度に消耗された柱状骨を有するラットのhPTH類似体による骨再生
骨再生のこの第２の例においては、重度に消耗された柱状骨を再生するラクタムフラグメントの能力が比較される。この実験においては、若い性的に成熟したラットの体重100ｇ当たり0.6ｎモルのペプチドの毎日１回の注射の６週間のプログラムが、OVXの後、９週目の最後まで延長された。この時点で、それらの柱状骨の75％が失なわれていた。図６に見られるように、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2が最とも効果的なフラグメントであっ。それは柱状骨体積を正常な対照ラットにおける値まで再生した。
例 ６
hPTH類似体の血圧降下性効果
雌のSprague-Dawleyラット（290ｇ以上の体重）を、ナトリウムペントバルビタール（65mg／kg体重）の腹腔内注射により麻酔をかけた。直腸温度を、YS1402サーミスタ（Yellow Springs Instrument Co., Inc. Yellow Springs, OH）によりモニターし、そして実験を通して36.0〜38.5℃に維持した。耳介温度をまた、YS１バンジョーサーミスタを用いてモニターした。尾の動脈を暴露し、そしてJelco 25-glVカテーテル（Johnson and Johnson Medical Inc., Arlington, TX）によりカニューレ挿入し、そしてStatham圧力変換器に連結され、これからのシグナルが、Biopac Systems MP100 Monitor（Harvard Instruments, Saint Laurent, QC, Canada）によりデジタル的に記録された。PTH又はそのフラグメントの１つの静脈内注射のために、大腿静脈をまた暴露した。手術の後、ラットを８分間、安定化し、その後、PTH又はそのフラグメントの１つ（0.001ＮのHClを含む酸性化された塩溶液に溶解されている）を、大腿静脈中に又は腹の皮下中に注射した。データを、静脈内注射の後12分間、又は皮下注射の後22分間、収集した。図８は、皮下（空白の棒）又は皮下（斜線の棒）経路のいづれかによる投与による0.8ｎモル／100ｇの用量の〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）hPTH-（1-31）-NH2又は〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）hPTH-（1-31）-NH2の添加に基づいての血圧の最大降下及び最大降下までの時間を示す。〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）hPTH-（1-31）-NH2類似体は、〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）hPTH-（1-31）-NH2に比較して、高められた生物利用性を示す。これは、皮下注射の後、最小bpまで降下するのに必要とされるより短い時間により示される。両環状類似体は、hPTH-（1-31）-NH2に比較して、皮下注射される場合、高められた血圧降下性効果を示す。従って、個々の環状ラクタム類似体は、皮下注射される場合、その線状相対物よりもより所望する性質を有することが予測される。それらは、プロテアーゼに対する増強された耐性に起因するより高い生物利用性、及び／又は脂質環境から輸送される高められた能力を包含する。後者は、ホルモンのＣ−末端近くの両親媒性ヘリックスの安定化のためであり得る。
さらなる結果：
それらの結果のためには、ペプチドは次の通りに同定される：
hPTH-（1-31）-NH2（1）；〔Leu27〕-hPTH-（1-31）-NH2（2）（図９）；〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（3）（図２）；〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（4）；シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（5）（図10）；hPTH-（1-30）-NH2（6）；〔Leu27〕hPTH-（1-30）-NH2（7）；〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2（8）。
アデニルイルシクラーゼ活性：本発明者は、〔Leu27〕-hPTH-（1-34）-NH2が、hPTH-（1-34）-NH2よりもROS細胞系においてAC活性を刺激することにおいてより活性的であることを前に報告している5。本発明者はまた、ペプチド２（EC50、11.5±5.2nM）が生来の配列１（EC50、19.9±3.9nM）よりもより活性的であることも見出した（図12）。ペプチド１（●）；２（□）；３（△）；４（▲）；５（○）が示される。Glu22とLys26（3）との間のラクタム形成は、さらに高いAC−刺激活性を誘発し、そして3.3±0.3nMのEC50値を有する（図12）。従って、この環化及びLeuによるLys27の置換の正味効果は、活性において約６倍の上昇である。対照的に、Lys26とAsp30（4）又はLys27とAsp30（5）との間のラクタム形成は、それらの親線状配列に対して、アデニルイルシクラーゼ刺激の上昇をもらたした。従って、26−30ラクタム（4）は、その線状形よりもわずかに低い活性を有し、そして17.0±3.3nM対11.5±5.2nM（2）のEC50を有した。27−30ラクタム（5）は、親線状ペプチドの活性をより著しく減じ、そして19±3.9nM（1）に比較して、40.3±4.4nMのEC50を有した。
本発明者は、hPTH-（1-30）-NH2（6）が類似体１の活性に近いAC−刺激活性（EC50、20nM）を有することをこれまでに報告している。本発明者は現在、〔Leu27〕-hPTH-（1-30）-NH2（7）及びシクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2（8）（図11）がペプチド６に類似するAC−刺激活性を有することを見出した。
血圧降下性効果：
図13は、線状（６及び７）及び環状ラクタム類似体（３及び８）の血圧降下作用を示す。0.8ｎモル／100ｇ体重の類似体によるラットの注射に基づいて得られた血圧の最大降下（上方）、及び血圧の最大降下までの時間（下方）が示される。類似体（左から右側の方に、ペプチド８，７，６，３）を、静脈内（斜線の棒）又は皮下（空白の棒）注射した。Val31の除去は、血管系への皮下注射されたペプチドの輸送の有意（ｐ＜0.05）に減じられた速度を有する類似体６，７及び８のすべてをもたらした（図13）。それにもかかわらず、ペプチド６及び８の実際の合計血圧降下は、皮下投与されても又は静脈内投与されても、他の類似体（ペプチド５を除く）の血圧降下と有意（ｐ＞0.05）に異ならなかった。
骨形成活性と血圧降下効果とを関連づけるアッセイ：
例６に記載され、そして図８に示されるように、hPTH類似体の皮下注射に続いて観察される早い血圧降下効果は、骨形成活性と相互関係している。結果的に、アッセイは、実験用試験動物を殺す必要なしに、骨形成効果のための候補体hPTH類似体をスクリーニングするために及び非血圧降下性構造体を排除するために有用である。
予備知識により、本発明者は、ユニーク組の骨形成性及び非骨形成性、AC−，AC／PLC−、又はPLC−活性化PTHフラグメントを使用し、それが血圧を減じる唯一のAC刺激であることを決定的に証明し、そしてそれらのフラグメントが雌のラット中に皮下又は静脈内注射される場合のそれらのフラグメントの血圧降下作用を比較した。本発明者は、血圧降下応答がAC−又はAC／PLC−刺激フラグメントによってのみ誘発され、そしてそれが皮下注射に対して比較的小さな血圧降下応答であり、そして静脈内注射に対してより大きな応答ではなく、このことは、OVX−ラットにおいてhPTH-（1-31）-NH2，hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-84）の骨形成活性と相互関係するが、しかしACを刺激し、そして血圧を降下せしめるが、しかし骨形成を刺激しないhPTH-（1-30）-NH2に対しては相互関係しないことを示した。
特にhPTH-（1-84）、及びそのhPTH-（1-34），hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-30）-NH2フラグメントは、大腿静脈中への注射の後、約１分以内に、麻酔された雌のSprague-Dawleyラットの毛の動脈圧を42.4〜67.1％減じたが、皮下注射の後、２〜19分では、わずか8.5〜36.2％動脈圧を減じた。hPTH-（1-84）及びhPTH-（1-34）はそれらの標的細胞においてアデニルイルシクラーゼ及びホスホリパーゼ−Ｃの両者を刺激するが、しかし血圧降下作用はアデニルイルシクラーゼ活性化により特に刺激されるべきであった。なぜならば、アデニルイルシクラーゼを単に刺激することができるhPTH-（1-30）-NH2及びhPTH-（1-31）-NH2は、静脈内注射される場合、強い血圧降下作用性であるが、ところがホスホリパーゼ−Ｃを単に刺激することができるhPTH-（7-84）は、静脈内注射される場合、実質的に血圧降下作用性ではなかったからであった。PTHの骨形成作用はまた、アデニルイルシクラーゼ刺激により介入されるので、血圧降下応答は、可能な骨形成のための新しいPTH構造体をスクリーンするために使用され得る。実際、皮下注射されたhPTH-（1-31）-NH2，hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-84）の骨形成活性は、それらの低血圧活性に密接に関連し、そしてhPTH-（1-34）が他の２つの分子よりもより血圧降下性である。hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-84）は同等の骨形成及び血圧降下活性を有する。しかしながら、hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-34）とほとんど同じくらい強くACを刺激し、そしてhPTH-（1-31）-NH2ほど高く血圧を減じるが、しかし骨形成を刺激しないhPTH-（1-30）-NH2とのこの関係はこわれた。それにもかかわらず、動脈圧を有意に減じる能力は、骨形成性PTH及びPTHフラグメントの共通する性質であり、そして従って、PTHフラグメントのインビボ生物活性の急速に決定できる予備インジケーターである。
より特定には、hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-31）-NH2の両者は、0.8ｎモル／100ｇ体重で最大的に血圧降下性であった。
この血圧降下応答は、有用な可視定性マーカーとして見なされ得る、ラットの耳及び足の一時的（20〜30分）な赤色化により付随された。
AC−又はAC／PLC−刺激性フラグメントは、静脈内注射される場合、強い血圧降下性であるが、PLCを単に刺激することができる、0.8ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（7-84）の静脈内注射は、AC／PLC−刺激性hPTH-（1-84）により引き起こされる迅速な（0.9±0.08分）43.2±5.8mmHgの低下又はAC刺激性hPTH-（1-31）-NH2により引き起こされる同時に迅速な51.6±3.3mmHgの低下に比較して、尾の動脈圧を3.28±1.0mmHg、非常にゆっくり（9.8±2.0分）且つ非常にわずかだけ減じた。
AC−又はAC／PLC刺激性フラグメントの１回の皮下注射は、同じ用量の静脈内注射よりも尾の動脈圧においてより遅く且つ低い降下を引き起こした。たとえば、0.8ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（1-34）は、静脈注射される場合、50.9±5.6mmHg、血圧を低めるのと比較して、皮下注射される場合、わずか27.9±3.6mmHg、血圧を低めた。同じ用量のhPTH-（1-31）-NH2は、静脈内注射される場合、51.6±3.3mmHg、血圧を低めるのと比較して、皮下注射される場合、わずか11.1±1.6mmHg、血圧を低めた。
静脈注射されるhPTH-（1-84），hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-31）-NH2により引き起こされる尾の動脈圧において急速な低下と大きな低下との間に有意な差異は存在しないが、しかしhPTH-（1-34）は、皮下注射される場合、他の２種の分子の少なくとも２倍、効果的であった（Ｐ＜0.01）。
皮下注射されるPTH又はPTHフラグメントの血圧降下作用及び骨形成性に影響を及ぼす要因の１つは、注射部位からまず、血管系におけるその標的物に、そして次に、骨中に、不活性化されないで、移動するその能力である。この能力は、注射の後、尾の動脈圧をその最小値に降下するために必要とされる時間で表わされる。84個から31個の残基にPTH分子のＣ−末端の短縮は、ACを刺激する能力を低めないで、PLCを刺激する能力を排除し、そしてそれは、尾の動脈圧がその最小値に達するために必要とされる時間の長さを９倍、短くした。hPTH-（1-30）-NH2を製造するためにさらに１つの残基の除去は、hPTH-（1-31）-NH2の場合、2.0±0.31分から13.8±2.3分に血圧がその最小値に降下するために必要とされる時間の長さを劇的に長くした。しかしながら、hPTH-（1-31）-NH2はhPTH-（1-84）よりも血圧をもはや降下せしめなかったことを注目することは重要である。
hPTH-（1-31）-NH2、すなわちPLCの活性化及び膜関連PKC活性の刺激を伴わないで、hPTH-（1-34）と同じほど強くACを刺激できる第１のPTH構造体の本発明の研究への使用は、PTH血圧降下作用が完全にAC活性化のためである最とも直接的な証明を現在提供した。従って、PLC／PKCを単に刺激することができる、0.8ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（7-84）の静脈内注射は尾の動脈圧に対して実質的に影響を及ぼさないが、同じ用量のhPTH-（1-31）-NH2の静脈内注射は、hPTH-（1-34）と同じほど高く血圧を降下せしめた。
ACはまた、OVXラットにおける皮質及び柱状骨形成のPTH−誘発された刺激を仲介するので、損なわれていない雌のラットにおける血圧降下応答の誘発は、PTH構造体の可能な骨形成の単純で迅速な測定可能インジケーターであるように思える。他方、動脈圧を降下せしめることの失敗は、さらなる評価からのフラグメントを排除し、従って、OVXラットにおける不必要で高価な、長期の骨形成試験を回避するであろう。PTHの静脈内注射に対する血圧降下応答は、骨形成に関係しなかった。しかしながら、皮下注射されたhPTH-（1-31）-NH2，hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-84）に対するより小さな血圧降下応答がそれらの分子の骨形成に関係し、そしてhPTH-（1-34）が最強の血圧降下及び骨形成作用を有し、そして他の２つの分子は、血圧の降下及び骨形成の刺激において、お互い同じほど効果的であるが、しかしhPTH-（1-34）よりも効果的ではなかった。しかし、この相互関係は、hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-34）とほとんど同じほど強くACを刺激し、そしてhPTH-（1-31）-NH2ほど高く血圧を降下せしめるが、しかし骨形成を刺激しないhPTH-（1-30）-NH2とは存在しなかった11。骨形成のこの欠失についての理由は未知である。それは、皮下注射されたhPTH-（1-30）-NH2が血圧を下げるためにより時間を必要とすることのみにはよらない。なぜならば、皮下注射されたhPTH-（1-84）は血圧を下げるために同じ長さの時間を必要とするが、まだ強い骨形成性であるからである。明確には、骨形成応答は、標的PTH受容体−発現の成熟骨芽細胞で十分な活性ホルモン又はホルモンフラグメントの注射部位からの到着を可能にするために結合する多くの異なった要因に依存する。骨形成を刺激するためのAC−刺激性、血圧−降下性hPTH-（1-30）-NH2の失敗は、高い不安定性、AC刺激のためのわずかに高いEC50、すなわちhPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-34）についての16nMの代わりの20nM、及び注射部位から循環中に入るための長い時間の組合せの結果であり得る。
hPTH-（1-30）-NH2の骨形成の失敗にもかかわらず、動脈圧を有意に降下せしめる能力は、まだ骨形成性PTHの共通する性質であり、そして従って、PTHフラグメントの可能なインビボ生物活性の迅速な決定可能インジケーターである。血圧降下応答はまた、経口又は他の非注射性経路による投与の後、その標的物に達する骨形成PTH構造体の能力の効果的なインジケーターとしても作用することになる。
個々の注射に対する血圧降下反応の不快且つ他の可能な後遺症は、PTH又はPTHフラグメントによる長期処理を受容する骨粗鬆症患者の意志力を制限する。幸いなことには、PTHの断続的な皮下注射が骨形成を刺激するために現在、使用されており、そしてそれらの分子は、静脈注射される場合よりも、皮下注射される場合、はるかに低い血圧降下性である。本発明者がこれまでに主張したように6,7、hPTH-（1-31）-NH2は、PLC、及びそれが誘発するいづれか可能なCa2+−及びPKC−仲介の副作用を刺激しないで、AC刺激の付加された利点を有する。
例 ７
シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（5）
この合成を、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2の合成に類似する態様で実施した。生成物は、95％以上の推定純度、及び3700.64（±0.38）（予測されるＭ＋１＝3700.14）の分子質量を有した。そのペプチドを配列決定し、ラクタム位置を確認した。
〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2（8）
このペプチドを、支持体へのValの手動的な付加を伴わないで、ペプチド３に関してのように合成した。生成物は、97％以上の推定純度、及び3586.14（±0.19）（予測されるＭ＋１＝3685.99）の分子質量を有した。
本発明の類似体は、その必要により、温血動物、特にヒトに、非経口、局部、又は直腸投与により、又は吸入又は経口投与により投与され得る。前記類似体は、許容される医薬用途のために必要とされるような従来のビークル、賦形剤、結合剤、保存剤、安定剤、着色剤又は同様のものと共に、単位投与形当たり約１〜約300mgに対応する非経口投与形で従来通りに配合され得る。
非経口投与に関しては、超微細30−ゲージ注射針を通しての１〜２mlの痛みのない皮下注射を、疾病の重症度に依存して、１〜２年間、１日１回よりも多くなく与えられる必要がある。注射される材料は、水性、等張性、滅菌溶液又は懸濁液に本発明の１つの類似体を含む（任意には、保存剤、たとえばフェノール又は安定剤、たとえばエチレンジアミン四酢酸（EDTA）も含む）。使用され得る、許容できるビークル及び溶媒の中には、水、軽く酸性化された水、リンガー溶液及び等張塩化ナトリウム溶液がある。さらに、滅菌され、固定されたオイルが、溶媒又は懸濁媒体として通常使用される。合成モノグリセリド、ジグリセリド、脂肪酸（たとえばオレイン酸）が、注射用製剤において固定された油として使用される。
直腸投与に関しては、本発明の類似体が、適切な非刺激性賦形剤、たとえばココア緩衝液又はポリエチレングリコールと共に混合することによって坐剤の形で調製され得る。
局部使用に関しては、本発明の類似体は、軟膏、ジェリー、溶液、懸濁液又は経皮用接着パッチの形で調製され得る。
吸入に関しては、これは、PCT公開された出願番号WO 94／07514に記載される手段により達成され得る。
毎日の用量は、処理される対象の年齢、体重、性別、及び状態、特定の化合物の活性に依存して、0.05mg／kg体重を越えるべきではなく、又は約3.5mg／70kg体重（ヒト）である。良く知られているように、単一投与形を生成するためにキャリヤー材料と共に組合され得る活性成分の量は、処理される宿主、及び投与の特定の態様に依存して変化するであろう。
次に類似体の表は、上記方法に従って、すべて生成された。
参照文献
次の文献の開示は、引用により本明細書に組込まれる。
（１）Caulfield, M.P.; McKee, R.L.; Goldman, M.E.; Duong, L.T.; Fisher, J.E.; Gay, C.T.; DeHaven, P.A.; Levy, J.J.; Roubini, E.; Nutt, R.F.; Chorev, M.; Rosenblatt, M. The Bovine Renal Parathyroid Hormone（PTH）Receptor Has Equal Affinity for 2 Different Amino Acid Sequences-The Receptor Binding Domains of PTH and PTH-Related Protein Are Located Within the 14-34 Region. Endocrinology 1990, 127, 83-87.
（２）Neugebauer, W.; Barbier, J.-R.; Sung, W.L.; Whitfield, J.F.; Willick, G.E. Solution Structure and Adenylyl Cyclase Stimulating Activities of C-Terminal Truncated Human Parathyroid Hormone Analogues Biochemistry 1995, 34, 8835-8842.
（３）Gardella, T.J.; Wilson, A.K.; Keutmann, H.T.; Oberstein, R.; Potts, J.T.; Kronenberg, H.M., and Nussbaum, S.R. Analysis of Parathyroid Hormone’s Principal Receptor-Binding Region by Site-Directed Mutagenesis and Analog Design. Endocrinology 1993, 132, 2024-2030.
（４）Marqusee, S.; Baldwin, R.L.Helix Stabilization by Glu... Lys+ Salt Bridges in Short Peptides of De Novo Design.Proc.Natl.Acad.Sci. U.S.A. 1987, 84, 8898-8902.
（５）Surewicz, W.K.; Neugebauer, W.; Gagnon, L.; MacLean, S.; Whitfield, J.F.; Willick, G.E. Structure-Function Relationships in Human Parathyroid Hormone: The Essential Role of Amphiphilic-Helix. In Peptides: Chemistry, Structure, and Biology 1993; Smith, J.; Hodges, R., Eds.; ESCOM Leiden, The Netherlands, 1993, pp.556-558
（６）Whitfield, J.F.; Morley, P.; Willick, G.E.; Ross, V.; Barbier, J.R.; Isaacs, R.J.; Ohannessianbarry, L.Stimulation of the Growth of Femoral Trabecular Bone in Ovariectomized Rats by the Novel Parathyroid Hormone Fragment, hPTH-（1-31）NH2（Ostabolin）Calcif. Tissue Int. 1996, 58, 81-87.
（７）Whitfield, J.F.; Morley, P.Small Bone-Building Fragments of Parathyroid Hormone: New Therapeutic Agents for Osteoporosis Trends Pharmacol.Sci. 1995 16, 382-386.
配 列 表
（１）一般情報：
（ｉ）出願人：
（Ａ）名称：National Research Council of Canada
（Ｂ）通り：Intellectual Property Services Montreal Road, Bldg. M-58, Room EG-12
（Ｃ）市 ：Ottawa
（Ｄ）州 ：Ontario
（Ｅ）国 ：Canada
（Ｆ）郵便番号：K1A OR6
（ii）発明の名称：骨粗鬆症の治療のための副甲状腺ホルモン類似体
（iii）配列の数：33
（２）配列番号１についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号１：
（２）配列番号２についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号２：
（２）配列番号３についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号３：
（２）配列番号４についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号４：
（２）配列番号５についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号５：
（２）配列番号６についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号６：
（２）配列番号７についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：30個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号７：
（２）配列番号８についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号８：
（２）配列番号９についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：34個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号９：
（２）配列番号10についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：34個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii)配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号10：
（２）配列番号11についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号11：
（２）配列番号12についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号12：
（２）配列番号13についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号13：
（２）配列番号14についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号14：
（２）配列番号15についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号15：
（２）配列番号16についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号16：
（２）配列番号17についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号17：
（２）配列番号18についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号18：
（２）配列番号19についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号19：
（２）配列番号20についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号20：
（２）配列番号21についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号21：
（２）配列番号22についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：34個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号22：
（２）配列番号23についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号23：
（２）配列番号24についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号24：
（２）配列番号25についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：５個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号25：
（２）配列番号26についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：６個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号26：
（２）配列番号27についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：７個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号27：
（２）配列番号28についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：８個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号28：
（２）配列番号29についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号29：
（２）配列番号30についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号30：
（２）配列番号31についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号31：
（２）配列番号32についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号32：
（２）配列番号33についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：５個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号33：
本発明は、骨粗鬆症の処理において効果的であることが見出されたヒト副甲状腺ホルモン類似体に関する。
発明の背景
骨粗鬆症は、年配の人、特に年配の女性における疾患の主な原因である。ヒト副甲状腺ホルモン（hPTH）及び一定の類似体は、骨粗鬆症の治療において有用である骨成長の刺激物質であることが最近十分に理解されている。骨粗鬆症は、全体的な骨量を低下させ、そして骨ぜい弱性を増加させる進行性疾患である。これは、しばしば、負荷を受けた骨の自然的な破損、及び固定する損傷に特有な物理的及び精神的悪化をもたらす。閉経後骨粗鬆症は、古い骨の吸収と新しい骨の形成との間の不均衡の上昇を伴う骨ターンオーバーの長期間の促進を誘発するエストロゲンの消失により引き起こされる。これは、負荷を受けた骨の細弱化（thinning）、有孔性（porosity）の上昇、及び柱状消耗（trabecular depletion）をもたらす。骨粗鬆症はまた、甲状腺機能亢進症、上皮小体機能亢進症、Cushing’s症候群、及び一定のステロイド薬物の使用にも関連している。治療法は歴史的に、食物カルシウムの増加、エストロゲン治療、及びビタミンＤの高用量使用を包含して来たが、しかし主に、破骨細胞による骨吸収を阻害する抗吸収剤のような剤の使用を包含して来た。
副甲状腺ホルモン（PTH）は、副甲状腺により生成され、そして血液カルシウムレベルの主な調節物質である。PTHは、ポリペプチドであり、そして合成ポリペプチドは、Erickson and Merrifield, The Proteins, Neurathなど., Eds., Academic Press, New York, 1976, p257により開示される方法により調製され、そしてHodgesなど（1988）Peptide Research 1, 19又はAtherton, E. and Sheppard, R.C.Solid Phase Peptido Synthesis, IRL Press, Oxford, 1989の方法により修飾され得る。
血清カルシウムが正常レベル以下に低下する場合、副甲状腺はPTHを放出し、そしてカルシウムレベルは、骨カルシウムの吸収により、腸からのカルシウムの吸収の増加により、及び腎管における発生尿（nascent urine）からのカルシウムの腎再吸収の上昇により高められる。連続して注入された低レベルのPTHは骨からカルシウムを除去するが、その同じ低い用量が、断続的に注入される場合、骨の生長を実際的に促進することができる。
Tregear（アメリカ特許第4,086,196号）は、ヒトPTH類似体を記載し、そして最初の27〜34個のアミノ酸がインビトロ細胞アッセイにおけるアデニルイルシクラーゼの刺激に関して最も効果的であることを特許請求している。Rosenblatt（アメリカ特許第4,771,124号）は、Trp23がアミノ酸フェニルアラニン、ロイシン、ノルロイシン、バリン、チロシン、β−ナフチルアラニン又はα−ナフチルアラニンにより置換されているhPTH類似体のPTHアンタゴニストとしての性質を開示した。それらの修飾されたhPTH類似体はまた、２〜６個の末端アミノ酸が除去され、骨粗鬆症を処理するために使用される場合、ほとんどのアゴニスト活性の損失をもたらす。それらの類似体は、PTH及びPTH−関連ペプチドのインヒビターとして企画される。それらの類似体は、いくつかの腫瘍に関連する高カルシウム血症の処理においてたぶん有用であろうと主張された。
Pangなど.（1993年４月15日に公開されたWO 93／06845）は、多くのアミノ酸、たとえばアラニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン又はバリンによるArg25，Lys26，Lys27の置換を包含するhPTHの類似体を記載した。それらは、血圧及び平滑筋に対する最小の効果を伴って、骨粗鬆症の処理において効果的であることを主張しているが、動物又はヒト試験からの支持データが存在しない。
PTHは、２種の第２メッセンジャー系、すなわちＧS−タンパク質で活性化されるアデニルイルシクラーゼ（AC）及びＧq−タンパク質で活性化されるホスホリパーゼＣβの活性化を通して作動する。後者は、膜結合プロテインキナーゼＣS（PKC）活性の刺激をもたらす。PKC活性は、PTH残基29〜32を必要とすることが示された（Jouishommeなど.（1994）J.Bone Mineral Res. 9. 1179-1189）。骨成長の増強、すなわち骨粗鬆症の治療において有用である効果は、AC活性を高めるペプチド配列の能力に連係する（coupling）ことが確立されている。生来のPTH配列は、それらのすべての活性を有することが示されている。hPTH-（1-34）配列は典型的には、下記（Ａ）として示される：
より高い代謝安定能力、高められた骨再生活性、高められたAC活性、及び最小の臨床的副作用を有する新規PTH類似体を製造することが本発明の目的である。
発明の簡単な要約
本発明の１つの観点によれば、下記アミノ酸配列：
Ｒ１はSer，Ala又はAibであり、
Ｒ２はMet、又は天然に存在する疎水性アミノ酸であり、
Ｒ３はHis、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ４はLeu、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ５はAsn、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ６はSer、又は水溶性アミノ酸であり、
Ｒ７はMet、又は天然に存在する疎水性アミノ酸であり、
Ｒ８はGlu，Lys又はAspであり、
Ｒ９はCys，Glu又はOrnであり、
Ｒ10はArg，Lys，Orn，Gln，Glu又はAspであり、
Ｒ11は天然に存在する疎水性又は極性アミノ酸であり、
Ｒ12はGln，Arg，Glu，Asp，Lys又はOrnであり、
ＸはOH，NH2であり、そして
Ｙは、Ｘ，Val-X，Val-His-X，Val-His-Asn-X，Val-His-Asn-Phe-X，Val-His-Asn-Phe-Val-X，Val-His-Asn-Phe-Val-Ala-X、及びVal-His-Asn-Phe-Val-Ala-Leu-Xであり、Ｒ３及びＲ６がLys，Orn，Glu又はAspである場合、１又は２つのアミノ酸対22と26との、26と30との、27と30との、及び25と29との間で環化され、但しシクロ（Lys26-Asp30）〔Leu27〕-hPTH-（1-34）-NH2、シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-34）-NH2及びシクロ（Lys26-Asp30）-〔Leu27〕-hPTH-（1-34）-OHを除く〕を有するヒト副甲状腺ホルモンhPTH及び医薬的に許容できるその塩が提供される。
塩の例は、無機酸の塩、有機酸、たとえば蟻酸、酢酸、酒石酸及びクエン酸の塩、無機塩基、たとえばナトリウム及びアンモニウムの塩、及び有機塩基、たとえばトリエチルアミン、エチルアミン及びメチルアミンの塩を包含する。
本発明のもう１つの特徴によれば、環化は、選択されたアミノ酸対、たとえば天然の残基22と26との、又は26と30との間での側鎖のカップリングを包含するラクタムの形成によりもたらされる。他のタイプの環化、たとえばCys含有類似体Cys22-Cys26及びCys26-Cys30間でのジスルフィド架橋の形成もまた、予想される。
種々のアミノ酸の置換もまた、効果的であることが見出された。Lys27はLeu又は種々の他の天然に存在する疎水性又は極性残基により置換され得る。他の要因は、残基が受容体に対していかによく適合するかである。AlaはLeuのような疎水性ではない。Lys及びTyrは一般的に極性であると思われるが、しかしそれにもかかわらず、受容体との疎水性相互作用を有する。たとえば、Lysは、疎水性部分が受容体中の他の疎水性残基と相互作用し、そしてNH2が溶媒に対して暴露されるように折りたたむことができる。そのような置換は、オルニチン、シトルリン、α−アミノ酪酸、アラニン、ノルロイシン、イソロイシン及びチロシン、又は側鎖に２〜10個の炭素を有するいづれか線状又は枝分れ鎖のα−アミノ脂肪酸、脂肪族鎖の末端で極性又は荷電された基を有するいづれかのそのような類似体を包含する。極性又は荷電された基の例は、アミノ、カルボキシル、アセトアミド、グアニド及びウレイドを包含する。Leu27は最良の置換であるように思われるが、多くの他の27位置換がほぼ完全な活性を保持し、そしてまた、所望の性質、たとえば高められたタンパク質分解安定能力又は水溶解性を有するように思われ、そしてIle、ノルロイシン、Met及びオルニチンが最も活性であると思われる。
この置換は、ホルモンの受容体−結合領域におけるα−ヘリックスの安定化をもたらす。これは、線状分子〔Leu27〕-hPTH-（1-31）-NH2の円二色性スペクトルに比較して、ラクタム類似体の円二色性スペクトルの試験により確かめられた。円二色性スペクトルはα−ヘリックス二次構造体の存在に対して非常に敏感であり、そしてこの技法は、hPTHフラグメントにおけるα−ヘリックスの存在を示すために使用されて来た（Neugebauerなど（1991）Biochemistry 31, 2056-2063）。さらに、hPTH-（20-34）-NH2における上記ラクタムの形成に基づくα−ヘリックスの安定化が示されている（Neugebauerなど（1994）Int.J.Protein Res. 43, 555-562）。hPTH-（1-31）-NH2の残基21と31との間に実質的な両親媒性α−ヘリックスが存在し、そしてこのヘリックスの疎水性面がPTH受容体と相互作用することを示すデータが存在する（Neugebauer, W.など（1995）Biochemistry 34, 8835-8842; Gardella, T.J.など（1993）Endocrinology 132, 2024-2030）。
最も効果的な環化は、たとえば残基Glu22とLys26との間、又はLys26とAsp30との間でのラクタムの形成を包含する。他の環化はまた、Lys27とAsp30との間でも可能であるが、但し、このラクタムはα−ヘリックスに対するいくらかの不安定化効果を示すことが見出されている。
より具体的には、PTHフラグメントの受容体−結合研究は、残基14−34内の主要な結合領域を示した1。本発明者は、残基17−29のα−ヘリックスがPTH受容体に結合し、そしてこのα−ヘリックスの両親媒性部分が受容体に対してその疎水性面で結合することを示唆した2。このモデルは、受容体結合−領域類似体の研究の結果と一致する3。
NMR研究は、CDにより高いヘリックス性であることが見出されているモデルペプチドでさえ、また多くの非ヘリックスコンホメーションを有することを見出している。従って、受容体−結合ペプチドホルモン、たとえばPTHの構造は、溶液におけるその遊離構造から確実には推論され得ない。ペプチドホルモンの強制的な（constrained）類似体が、ペプチドに利用できるコンホメーション状態の数を制限するために使用されて来た8。hPTHの配列の試験は、α−ヘリックスを安定化できるか又は不安定化であるかいづれかである３つの可能な塩架橋を残基17−29内に示す。それらは、α−ヘリックスを安定化することが予測される、Glu22とLys26との及びLys26とAsp30との間に、及びα−ヘリックスを不安定化することが予測されるLys27とAsp30との間に存在する4。それらの残基対間でのラクタム形成は、そのヘリックス領域におけるhPTHに利用できるコンホメーションを制限するであろう。さらに、２つのそれらのラクタム、すなわちα−ヘリックス構造を安定化することが予測されるGlu22-Lys26及びLys26-Asp30は、α−ヘリックスの両親媒性部分の極性面上に位置する。第３のラクタム、すなわちLys27-Asp30は、α−ヘリックスを少なくとも部分的に不安定化することが予測され、そして両親媒性ヘリックスの疎水性面上に存在する残基Lys27を包含する。Lys又はOrn残基が位置25でArgを置換し、そしてGln29がGlu又はAspにより置換される場合、位置25と29との間での環化がまた生じ得る。
LeuによるLys27の置換は、両親媒性ヘリックスの疎水性面上により疎水性の残基をもたらす。これは、ROS細胞系においてアデニルイルシクラーゼ刺激活性の上昇をもたらした。上記で論ぜられた他のそのような置換が同じか又は高められた活性を有する類似体をたぶんもたらすことが当業者により認識されるであろう。
置換及びいづれかのラクタム形成の組合された効果は、α−ヘリックスを安定化し、そして生物活性を高め、そしてタンパク質分解から分子のこの領域を保護することが予測される。Ｃ−末端でのアミドの存在は、いくつかのペプチダーゼはペプチドを分解することができるが、外部タンパク質分解に対して前記ペプチドを保護することがさらに予測されるので好ましい（Leslie, F.M. and Goldstein, A.（1982）Neuropeptides 2, 185-196）。
他のアミノ酸置換が有用に行なわれ得ることもまた見出された。特に、本発明者は、位置８，18での酸化感受性Met残基を、天然に存在する疎水性残基Nleにより、日本特許公開61-24598に従って置換した。Leu，Ile，Val，Phe及びTrpのような他のそのような疎水性残基はまた、Nakagawaなどのアメリカ特許第5,393,869号によれば、有用であることが予測される。
逆ラクタムもまた企画される。たとえば、本発明者は、Lys22-Glu26スイッチの有効性を示している。従って、類似のスイッチが26−30ラクタムと27−30ラクタムとの間で有用に行なわれ得ることが予測される。
前述のCys-Cysに加えて、好ましい22−26ラクタム部位でのもう１つの置換、すなわちAsp22-Orn26が、異なった環化／環サイズが有用に行なわれ得ることを示すために実施された。
Nakagawaなどのアメリカ特許第5,393,869号及びFukudaなどのアメリカ特許第5,434,246号においては、次のようないくつかの置換されたhPTH類似体が、実質的なAC活性を有することが報告されており、そしてタンパク質分解攻撃に対して増強された安定性を有する：特に、
１．Aib（α−アミノイソ酪酸）へのSer-1の置換。
２．GlnへのLys-27の置換（2.5×AC活性を有することが報告されている）。
３．８倍まで活性を高めることが報告されている、Lysへの残基14，15，16，17の完全な又は部分的な置換。これは、水溶解の上昇のためであり得る。インビボにおいて、それらは、チロシン様酵素に対してより不安定であることが予測される。彼らは、少なくとも１つの水溶性アミノ酸が存在するようなこのテトラペプチド（残基14−17）を特許請求している。たとえば、His-14又はLys-14; Leu-15, Lys-15又はArg-15; Asn-16, Orn-16, Hci（ホモシトルリン）-16, Asp-16, Arg-16, Lys-16, DLys-16, Ser-16又はGly-16;及び17-Ser, 17-Lys, 17-Asp又は17-ArgはまたGluを含むことができる。
４．プロテアーゼ攻撃を最少にするためのHisへのArg25の置換。位置−27でLeu又は他の疎水性アミノ酸を特に有するラクタムはいくぶん不溶性になることができ、そしてまた、溶解するのに困難であるので、いくつかの置換がそのラクタムにおいて有用であることが予測される。
1-31h-PTH環状物が好ましいことが当業者によりまた、理解されるであろう。１−30〜１−37の範囲の環状フラグメントがまた有効であろうことが本明細書に提供されるデータから予測される。特に、本明細書に含まれる確証的な１−34データが与えられるので、37までの追加のアミノ酸の存在が、ホルモンの生物学的性質に影響を及ぼす証拠は、文献には存在しない。
本発明のラクタムは、下記の既知方法により調製され得、そして骨成長を刺激するために、骨を再生するために、及び種々の環境において、たとえば骨粗鬆症及び通常の骨折の治療において骨の治癒を促進するために使用され得る。
【図面の簡単な説明】
図１は、天然のヒトPTH残基１−31（配列番号１）の構造を示し；
図２は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号３）の構造を示し；
図３は、〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号４）の構造を示し；
図４は、ROS 17／２細胞のアデニリルシクラーゼ刺激における本発明の類似体の活性を示し；
図５は、骨の損失を妨げ、そして卵巣切除された（OVX）Sprague-Dawleyラットにおける骨成長を刺激する、hPTH-（1-31）NH2及びそのラクタム誘導体の種々の能力を示す、OVX後８週の最後で調製された骨の代表的な組織学的断面を示す。
図６は、骨を始めに重度に消耗されたラットに関して、hPTH類似体により処理された動物及び対照動物の柱状骨体積（trabeculor bone volume）を示す。動物の処理は、OVXの後９週で開始した。〔Leu27〕シクロ〔Glu22-Lys26〕hPTH-（1-31）-NH2は、正常な対照ラットにおいて骨を目標まで再生する最も効果的なフラグメントであり；
図７は、正常、卵巣切除された（OVX）、シャム（sham）並びにhPTH-（1-31）-NH2、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2及び〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2により処理された動物についてのラット大腿骨の柱状骨の厚さを示し；
図８は、hPTH-（1-31）-NH2、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）hPTH-（1-31）-NH2又は〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2の0.8ｎモル／100ｇの用量の添加に対しての血圧の最大降下及び血圧の最大降下までの時間を示す。ペプチドは、皮下（空白の棒グラフ）又は静脈内（斜線の棒グラフ）に投与された。
図９は、〔Leu27〕-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号５）の構造を示す。
図10は、シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号６）の構造を示す。
図11は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2の構造を示す。
図12は、本発明の種々の類似体のアデニルシクラーゼ刺激活性を示す。
図13は、hPTH（1-31）NH2及びhPTH（1-30）NH2、並びにそれらの環状類似体の血圧降下作用を示す。
図14は、異なる用量の線状hPTH（1-31）-NH2の骨成長に対する効果を示すグラフである。
図15は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-OH（配列番号８）の構造を示す。
図16は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-34）-NH2（配列番号９）の構造を示す。
図17は、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-34）-OH（配列番号10）の構造を示す。
図18は、〔Ala27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号11）の構造を示す。
図19は、〔Nle27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号12）の構造を示す。
図20は、〔Nle8,18；Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号13）の構造を示す。
図21は、シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号14）の構造を示す。
図22は、〔Ile27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号15）の構造を示す。
図23は、〔Tyr27〕シクロ（Glu23-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号16）の構造を示す。
図24は、α−アセチル−〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号17）の構造を示す。
図25は、〔Leu27〕シクロ（Lys22-Glu26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号18）の構造を示す。
図26は、〔Leu27〕シクロ（Asp22-Orn26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号19）の構造を示す。
図27は、〔Cys22；Cys26；Leu27〕シクロ（Cys22-Cys26）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号20）の構造を示す。
図28は、〔Cys26；Cys30；Leu27〕シクロ（Cys26-Cys30）-hPTH-（1-31）-NH2（配列番号21）の構造を示す。
ホルモン類似体の調製
引用により本明細書に組込まれる、R.B.Merrifield（“Solid-Phase Peptide Synthesis”, Advances in Enzymology 32, 221-296, 1969）により開示された固相ペプチド合成の技法は、ポリペプチド、たとえば副甲状腺ホルモンの合成のために広く且つ好結果をもって使用される。その方法は、固体支持体に結合されるペプチドのカルボキシル−末端アミノ酸を有することに基づいている。次に、連続的なアミノ酸が高収率で付加される。そのＮ−末端α−アミノ基は、この保護基が固体支持体からのペプチドの除去を伴わないで除去され得るような手段で保護される。ここで使用される化学は、Fmocアプローチとして言及される元のMerrifield法の変法を包含する。Fmoc（フルオレニルメトキシカルボニル）基が、温和なアルカリ条件により除去され、アルカリ安定性側鎖保護基及び環が未結合のままにされる。この技法は、E.Atherton and R.C.Sheppard, “Solid Phase Peptide Synthesis: a Practical Approach”, IRL Press, New York, N.Y.,（引用により本明細書に組込まれる）により記載される。
例 １
線状hPTH-（1-31）-アミド類似体の合成及び精製
アミノ酸のα−アミノ基を、結合の間、９−フルオレニルメトキシカルボニル（Fmoc）により保護した。結合を、ヒドロキシベンゾトリアゾール（HOBt）、２−（１Ｈ−ベンゾトリアゾール−１−イル）−１，１，３，３−テトラメチルウロニウムテトラフルオロボレート（TBTU）及びジイソプロピルエチルアミン（DIPEA）の混合物により行なった。４倍過剰の活性化されたアミノ酸を、Asn，Gln，His，Val、及びIle残基の付加に基づく二重結合に使用した。Arg及びGly付加のための結合時間を、30分から60分に高めた。支持体（Tentagel* R, Rapp Polymere, Tubingen, Germany）への最初の残基（Val31）の結合を手動的に実施した。すべての他の段階は、PerSeptive Biosystems* Model 9050 Plus自動ペプチド合成機上で実施された。側鎖保護は次の通りであった：Arg（２，２，５，７，８−ペンタメチルクロマン−６−スルホニル）；Glu，Asp、及びSer（ｔ−ブチル）；His，Gln、及びAsn（トリチル）；Trp（ｔ−ブチルオキシカルボニル）。
Ｎ−末端SerからのFmoc除去の後、ペプチド樹脂をDCMにより洗浄し、次に7.5mlの試薬Ｋ（6.19mlのTFA、それぞれ0.38mlの水、90％フェノール／水及びチオアニゾール、及び0.19mlの１，２−エタンジチオール）と共に20℃で４時間、振盪することによって、樹脂から分解した。分解されたペプチド混合物を、濾過により除去し、そしてｔ−ブチル−メチルエーテルへの添加により沈殿せしめた。その沈殿物を遠心分離により集め、ｔ−ブチル−メチルエーテルにより２度、洗浄し、次に、真空遠心分離により乾燥せしめた。
粗生成物を、15％アセトニトリル／水、0.1％ TFAの溶液14mlに溶解し、そしてVydac* C18-カラム（10μ、１×25cm）上でクロマトグラフィー処理した。生成物を、アセトニトリル（14−40％）／0.1％ TFA／水のグラジエント上で１％／分で溶出した。最終生成物の純度を、Vydac* C18カラム（10μ、0.4×25cm）上での分析HPLCにより、及びエレクトロスプレー質量分光計（VG Quattro）上での分子質量アッセイにより評価した。そのようにして形成されたhPTH-（1-31）-NH2についてのデータは、下記表１に与えられる。
例 ２
環状類似体の合成及び精製
〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2
このペプチドは、それぞれ位置26及び22でLys-Alloc及びGlu-OAllにより置換して、例１に記載のようにして合成した。Fmoc-Ser17の付加の後、ペプチド−樹脂を、カラムから、反応バイアル（Minivial*, Applied Science）に移し、アルゴン下で、ジクロロメタン（DCM）中、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（O）（0.24ｍモル）、５％酢酸及び2.5％ Ｎ−メチルモルホリン（NMM）の溶液1.7mlに懸濁し、次に、20℃で６時間、振盪し、Allyl及びAlloc保護基を除去した（Sole, N.A.など（1993）In Peptides: Chemistry, Structure, and Biology, Smith.J. and Hodges, R.（Eds）, ESCOM pp.93-94;引用により本明細書に組込まれる）。次に、ペプチド樹脂を、0.5％ジエチルジチオカルバメート（DEDT）、DMF中、0.5％ NMM（50ml）、続いてDMF（50ml）及びDCM（50ml）により洗浄した。ペプチド（0.06ｍモル）を、DMF 2ml中、0.06ｍモルの１−ヒドロキシ−７−アゾベンゾトリアゾール（HOAt）／0.12ｍモルのNMMと共に20℃で14時間、振盪することによって環化した（Carpino, L.A.（1993）J.Am.Chem.Soc. 115, 4397-4398）。ペプチド−樹脂を濾過し、次にDMFにより１度洗浄し、カラム中に再充填し、そして泡が懸濁液から除去されるまで、DMFにより洗浄した。残る合成を、例１通りに実施したが、但し、Ｎ−末端Fmoc基は除去されなかった。Fmoc−ペプチドを、上記のようにして試薬Ｋにより樹脂から分解した。HPLCを例１におけるようにして実施し、そしてFmoc基を、最終HPLCの前に除去した。類似体〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2を、類似する態様で調製した。
例 ３
アデニルイルシクラーゼアッセイ
受容体に結合し、そしてアデニルイルシクラーゼ結合シグナリング機構を活性化するhPTH類似体の能力を、分化−能力のある骨芽細胞様ROS 17／2ラット骨肉腫（ROS）細胞系に対して決定した。この活性は、卵巣切除されたラットにおいて骨量を再生する類似体の能力に密接して連結されることが知られている。アデニルイルシクラーゼ−刺激活性を、細胞ATPプールを〔3Ｈ〕−アデニンによりプレラベルし、そして次に、特定の類似体への最初の10分間の暴露の間、〔3Ｈ〕-ATPから生成される〔3Ｈ〕−環状AMPの量を測定することによって、評価した。これは、引用により本明細書に組込まれる、Whitfieldなど、J.Cellular Physiology 150, 299-303, 1992により記載される方法に基づく。
アデニルイルシクラーゼの結果は、AC活性において最大値の半分までの上昇を表わすために必要な濃度として、下記表２に示される。このデータはまた、図４にも示される。図４においては、黒丸は、hPTH-（1-31）-NH2のアデニルイルシクラーゼ−刺激活性を示し、そして〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2及び〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2の活性はそれぞれ空白及び黒の三角により示される。
例 ４
卵巣切除されたラットモデルによるhPTH類似体の同化活性の決定
投 薬：
用量は、hPTH-（1-31）-NH2に対する用量応答データに基づかれた。hPTH-（1-31）-NH2の骨−構築能力を、いくつかの用量（0.8，0.6，0.4、及び0.2ｎモル／100ｇ体重）、及び保護モデルよりもむしろ再生又は処理−評価モデルを用いて試験した。11 卵巣切除された生後３カ月のラットを９週間放置し、６週間の毎日の注射を開始する前、ほとんどの非層板状大腿骨柱状骨の重度の消耗を引き起こした。９週の最後までに、それらは、それらの大腿骨柱状骨質量の約75％を失なった。図14は、前記フラグメントの４種の異なった用量の36回の注射により生成された層板状付着物により引き起こされる平均の柱状骨の厚さの用量−依存性上昇を示す。フラグメントはまた、より年をとったラットにおいて、柱状骨生長を刺激することができた。従って、中間範囲の用量である0.6ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（1-31）-NH2の36回の注射は、予備消耗された（OVX後９週）生後１年のラットの大腿骨柱状骨において、正常な開始値以上に平均柱状骨の厚さを有意に高めることができ、そしてそれらはhPTH-（1-84）と同じほど効果的に高めた。従って、0.6ｎモル／100ｇ体重の用量を、さらなる試験に用いた。
プロトコールの十分な記載は、引用により本明細書に組込まれるRixonなど、J.Bone & Mineral Research 9, 1179-1189, 1994及びWhitfieldなど. Calcif.Tissue Int. 58, 81-87, 1996に与えられる。正常、擬似−OVX（卵巣切除された）、及びOVX Sprague-Dawleyラット（生後３カ月；255〜260ｇ）を、Charles River Laboratories（St.Constant, QC）から購入した。ラットを、Purinaラット食事及び水及び無制限な食事及び水を受けた、８匹のグループにランダム化した。予定外の死は存在しなかった。動物は、週当たり６回の、１日１回の皮下注射を受け、これはOVXの後、第２週の最後で開始し、そしてOVXの後、８週目の最後で終了した（すなわち、36回の注射）。８匹の擬似−OVX及び８匹のOVX対照ラットは、ビークル（0.001ＮのHClを含む0.15ＭのNaCl溶液）の36回の注射を受け、そして８匹のOVXラットは、100ｇ体重当たり、ビークル中、0.6ｎモルのフラグメントを受けた。OVXの後、８週目の最後で、大腿骨を除去し、清浄し、そして中間骨幹で半分に切断し、そして近位の半分を捨てた。骨端を除去した後、個々の半分の大腿骨を２つの部分に縦に分け、そして骨髄を流した。
フラグメントの骨構築能力を、種々に処理された動物からの遠位半分の大腿骨における柱状骨の平均厚さ（面積／周囲）の変化から評価した。平均柱状骨の厚さを測定するために、個々のラットからの２つの鉱物質除去された半分の大腿骨を脱水し、そしてパラフィンに包埋した。個々の骨の中間面からの縦方向の10μｍの断片を切断し、そして次に、Sanderson’s急速骨染色法（Surgipath Medical Industries, Inc., Winnipeg, MB, Canada）により染色した。平均の柱状骨の厚さを、Imaging Research Inc.,（St.Catherines, ON, Canada）からのＭ４イメージングシステム及び骨体型測定ソフトウェアを用いて測定した。
OVXの後、８週目の最後で調製された骨の代表的な組織学的断面が図５に示される。その結果は、図７において棒グラフの形でさらに示される。棒は、正常、卵巣切除された（OVX）、シャム（sham）動物、並びにhPTH-（1-31）-NH2、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2及び〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2処理された動物の柱状骨の厚さの値を示す。〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2は、線状類似体、すなわちhPTH-（1-31）-NH2に比較して、特に卓越した活性を示す。この線状類似体は、骨再生において十分に活性であることが示されているが、しかしわずか１つの細胞シグナリング（AC−活性化された）路を用いる。従って、その線状類似体のように、それらの環状類似体は、それらのより長い相対物、たとえば細胞シグナリング機構を活性化するhPTH-（1-34）又はhPTH-（1-84）よりも、より少ない所望しない臨床的副作用を有することが予測される。
例 ５
重度に消耗された柱状骨を有するラットのhPTH類似体による骨再生
骨再生のこの第２の例においては、重度に消耗された柱状骨を再生するラクタムフラグメントの能力が比較される。この実験においては、若い性的に成熟したラットの体重100ｇ当たり0.6ｎモルのペプチドの毎日１回の注射の６週間のプログラムが、OVXの後、９週目の最後まで延長された。この時点で、それらの柱状骨の75％が失なわれていた。図６に見られるように、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2が最とも効果的なフラグメントであっ。それは柱状骨体積を正常な対照ラットにおける値まで再生した。
例 ６
hPTH類似体の血圧降下性効果
雌のSprague-Dawleyラット（290ｇ以上の体重）を、ナトリウムペントバルビタール（65mg／kg体重）の腹腔内注射により麻酔をかけた。直腸温度を、YS1402サーミスタ（Yellow Springs Instrument Co., Inc. Yellow Springs, OH）によりモニターし、そして実験を通して36.0〜38.5℃に維持した。耳介温度をまた、YS１バンジョーサーミスタを用いてモニターした。尾の動脈を暴露し、そしてJelco 25-glVカテーテル（Johnson and Johnson Medical Inc., Arlington, TX）によりカニューレ挿入し、そしてStatham圧力変換器に連結され、これからのシグナルが、Biopac Systems MP100 Monitor（Harvard Instruments, Saint Laurent, QC, Canada）によりデジタル的に記録された。PTH又はそのフラグメントの１つの静脈内注射のために、大腿静脈をまた暴露した。手術の後、ラットを８分間、安定化し、その後、PTH又はそのフラグメントの１つ（0.001ＮのHClを含む酸性化された塩溶液に溶解されている）を、大腿静脈中に又は腹の皮下中に注射した。データを、静脈内注射の後12分間、又は皮下注射の後22分間、収集した。図８は、皮下（空白の棒）又は皮下（斜線の棒）経路のいづれかによる投与による0.8ｎモル／100ｇの用量の〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）hPTH-（1-31）-NH2又は〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）hPTH-（1-31）-NH2の添加に基づいての血圧の最大降下及び最大降下までの時間を示す。〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）hPTH-（1-31）-NH2類似体は、〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）hPTH-（1-31）-NH2に比較して、高められた生物利用性を示す。これは、皮下注射の後、最小bpまで降下するのに必要とされるより短い時間により示される。両環状類似体は、hPTH-（1-31）-NH2に比較して、皮下注射される場合、高められた血圧降下性効果を示す。従って、個々の環状ラクタム類似体は、皮下注射される場合、その線状相対物よりもより所望する性質を有することが予測される。それらは、プロテアーゼに対する増強された耐性に起因するより高い生物利用性、及び／又は脂質環境から輸送される高められた能力を包含する。後者は、ホルモンのＣ−末端近くの両親媒性ヘリックスの安定化のためであり得る。
さらなる結果：
それらの結果のためには、ペプチドは次の通りに同定される：
hPTH-（1-31）-NH2（1）；〔Leu27〕-hPTH-（1-31）-NH2（2）（図９）；〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2（3）（図２）；〔Leu27〕シクロ（Lys26-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（4）；シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（5）（図10）；hPTH-（1-30）-NH2（6）；〔Leu27〕hPTH-（1-30）-NH2（7）；〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2（8）。
アデニルイルシクラーゼ活性：本発明者は、〔Leu27〕-hPTH-（1-34）-NH2が、hPTH-（1-34）-NH2よりもROS細胞系においてAC活性を刺激することにおいてより活性的であることを前に報告している5。本発明者はまた、ペプチド２（EC50、11.5±5.2nM）が生来の配列１（EC50、19.9±3.9nM）よりもより活性的であることも見出した（図12）。ペプチド１（●）；２（□）；３（△）；４（▲）；５（○）が示される。Glu22とLys26（3）との間のラクタム形成は、さらに高いAC−刺激活性を誘発し、そして3.3±0.3nMのEC50値を有する（図12）。従って、この環化及びLeuによるLys27の置換の正味効果は、活性において約６倍の上昇である。対照的に、Lys26とAsp30（4）又はLys27とAsp30（5）との間のラクタム形成は、それらの親線状配列に対して、アデニルイルシクラーゼ刺激の上昇をもらたした。従って、26−30ラクタム（4）は、その線状形よりもわずかに低い活性を有し、そして17.0±3.3nM対11.5±5.2nM（2）のEC50を有した。27−30ラクタム（5）は、親線状ペプチドの活性をより著しく減じ、そして19±3.9nM（1）に比較して、40.3±4.4nMのEC50を有した。
本発明者は、hPTH-（1-30）-NH2（6）が類似体１の活性に近いAC−刺激活性（EC50、20nM）を有することをこれまでに報告している。本発明者は現在、〔Leu27〕-hPTH-（1-30）-NH2（7）及びシクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2（8）（図11）がペプチド６に類似するAC−刺激活性を有することを見出した。
血圧降下性効果：
図13は、線状（６及び７）及び環状ラクタム類似体（３及び８）の血圧降下作用を示す。0.8ｎモル／100ｇ体重の類似体によるラットの注射に基づいて得られた血圧の最大降下（上方）、及び血圧の最大降下までの時間（下方）が示される。類似体（左から右側の方に、ペプチド８，７，６，３）を、静脈内（斜線の棒）又は皮下（空白の棒）注射した。Val31の除去は、血管系への皮下注射されたペプチドの輸送の有意（ｐ＜0.05）に減じられた速度を有する類似体６，７及び８のすべてをもたらした（図13）。それにもかかわらず、ペプチド６及び８の実際の合計血圧降下は、皮下投与されても又は静脈内投与されても、他の類似体（ペプチド５を除く）の血圧降下と有意（ｐ＞0.05）に異ならなかった。
骨形成活性と血圧降下効果とを関連づけるアッセイ：
例６に記載され、そして図８に示されるように、hPTH類似体の皮下注射に続いて観察される早い血圧降下効果は、骨形成活性と相互関係している。結果的に、アッセイは、実験用試験動物を殺す必要なしに、骨形成効果のための候補体hPTH類似体をスクリーニングするために及び非血圧降下性構造体を排除するために有用である。
予備知識により、本発明者は、ユニーク組の骨形成性及び非骨形成性、AC−，AC／PLC−、又はPLC−活性化PTHフラグメントを使用し、それが血圧を減じる唯一のAC刺激であることを決定的に証明し、そしてそれらのフラグメントが雌のラット中に皮下又は静脈内注射される場合のそれらのフラグメントの血圧降下作用を比較した。本発明者は、血圧降下応答がAC−又はAC／PLC−刺激フラグメントによってのみ誘発され、そしてそれが皮下注射に対して比較的小さな血圧降下応答であり、そして静脈内注射に対してより大きな応答ではなく、このことは、OVX−ラットにおいてhPTH-（1-31）-NH2，hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-84）の骨形成活性と相互関係するが、しかしACを刺激し、そして血圧を降下せしめるが、しかし骨形成を刺激しないhPTH-（1-30）-NH2に対しては相互関係しないことを示した。
特にhPTH-（1-84）、及びそのhPTH-（1-34），hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-30）-NH2フラグメントは、大腿静脈中への注射の後、約１分以内に、麻酔された雌のSprague-Dawleyラットの毛の動脈圧を42.4〜67.1％減じたが、皮下注射の後、２〜19分では、わずか8.5〜36.2％動脈圧を減じた。hPTH-（1-84）及びhPTH-（1-34）はそれらの標的細胞においてアデニルイルシクラーゼ及びホスホリパーゼ−Ｃの両者を刺激するが、しかし血圧降下作用はアデニルイルシクラーゼ活性化により特に刺激されるべきであった。なぜならば、アデニルイルシクラーゼを単に刺激することができるhPTH-（1-30）-NH2及びhPTH-（1-31）-NH2は、静脈内注射される場合、強い血圧降下作用性であるが、ところがホスホリパーゼ−Ｃを単に刺激することができるhPTH-（7-84）は、静脈内注射される場合、実質的に血圧降下作用性ではなかったからであった。PTHの骨形成作用はまた、アデニルイルシクラーゼ刺激により介入されるので、血圧降下応答は、可能な骨形成のための新しいPTH構造体をスクリーンするために使用され得る。実際、皮下注射されたhPTH-（1-31）-NH2，hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-84）の骨形成活性は、それらの低血圧活性に密接に関連し、そしてhPTH-（1-34）が他の２つの分子よりもより血圧降下性である。hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-84）は同等の骨形成及び血圧降下活性を有する。しかしながら、hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-34）とほとんど同じくらい強くACを刺激し、そしてhPTH-（1-31）-NH2ほど高く血圧を減じるが、しかし骨形成を刺激しないhPTH-（1-30）-NH2とのこの関係はこわれた。それにもかかわらず、動脈圧を有意に減じる能力は、骨形成性PTH及びPTHフラグメントの共通する性質であり、そして従って、PTHフラグメントのインビボ生物活性の急速に決定できる予備インジケーターである。
より特定には、hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-31）-NH2の両者は、0.8ｎモル／100ｇ体重で最大的に血圧降下性であった。
この血圧降下応答は、有用な可視定性マーカーとして見なされ得る、ラットの耳及び足の一時的（20〜30分）な赤色化により付随された。
AC−又はAC／PLC−刺激性フラグメントは、静脈内注射される場合、強い血圧降下性であるが、PLCを単に刺激することができる、0.8ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（7-84）の静脈内注射は、AC／PLC−刺激性hPTH-（1-84）により引き起こされる迅速な（0.9±0.08分）43.2±5.8mmHgの低下又はAC刺激性hPTH-（1-31）-NH2により引き起こされる同時に迅速な51.6±3.3mmHgの低下に比較して、尾の動脈圧を3.28±1.0mmHg、非常にゆっくり（9.8±2.0分）且つ非常にわずかだけ減じた。
AC−又はAC／PLC刺激性フラグメントの１回の皮下注射は、同じ用量の静脈内注射よりも尾の動脈圧においてより遅く且つ低い降下を引き起こした。たとえば、0.8ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（1-34）は、静脈注射される場合、50.9±5.6mmHg、血圧を低めるのと比較して、皮下注射される場合、わずか27.9±3.6mmHg、血圧を低めた。同じ用量のhPTH-（1-31）-NH2は、静脈内注射される場合、51.6±3.3mmHg、血圧を低めるのと比較して、皮下注射される場合、わずか11.1±1.6mmHg、血圧を低めた。
静脈注射されるhPTH-（1-84），hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-31）-NH2により引き起こされる尾の動脈圧において急速な低下と大きな低下との間に有意な差異は存在しないが、しかしhPTH-（1-34）は、皮下注射される場合、他の２種の分子の少なくとも２倍、効果的であった（Ｐ＜0.01）。
皮下注射されるPTH又はPTHフラグメントの血圧降下作用及び骨形成性に影響を及ぼす要因の１つは、注射部位からまず、血管系におけるその標的物に、そして次に、骨中に、不活性化されないで、移動するその能力である。この能力は、注射の後、尾の動脈圧をその最小値に降下するために必要とされる時間で表わされる。84個から31個の残基にPTH分子のＣ−末端の短縮は、ACを刺激する能力を低めないで、PLCを刺激する能力を排除し、そしてそれは、尾の動脈圧がその最小値に達するために必要とされる時間の長さを９倍、短くした。hPTH-（1-30）-NH2を製造するためにさらに１つの残基の除去は、hPTH-（1-31）-NH2の場合、2.0±0.31分から13.8±2.3分に血圧がその最小値に降下するために必要とされる時間の長さを劇的に長くした。しかしながら、hPTH-（1-31）-NH2はhPTH-（1-84）よりも血圧をもはや降下せしめなかったことを注目することは重要である。
hPTH-（1-31）-NH2、すなわちPLCの活性化及び膜関連PKC活性の刺激を伴わないで、hPTH-（1-34）と同じほど強くACを刺激できる第１のPTH構造体の本発明の研究への使用は、PTH血圧降下作用が完全にAC活性化のためである最とも直接的な証明を現在提供した。従って、PLC／PKCを単に刺激することができる、0.8ｎモル／100ｇ体重のhPTH-（7-84）の静脈内注射は尾の動脈圧に対して実質的に影響を及ぼさないが、同じ用量のhPTH-（1-31）-NH2の静脈内注射は、hPTH-（1-34）と同じほど高く血圧を降下せしめた。
ACはまた、OVXラットにおける皮質及び柱状骨形成のPTH−誘発された刺激を仲介するので、損なわれていない雌のラットにおける血圧降下応答の誘発は、PTH構造体の可能な骨形成の単純で迅速な測定可能インジケーターであるように思える。他方、動脈圧を降下せしめることの失敗は、さらなる評価からのフラグメントを排除し、従って、OVXラットにおける不必要で高価な、長期の骨形成試験を回避するであろう。PTHの静脈内注射に対する血圧降下応答は、骨形成に関係しなかった。しかしながら、皮下注射されたhPTH-（1-31）-NH2，hPTH-（1-34）及びhPTH-（1-84）に対するより小さな血圧降下応答がそれらの分子の骨形成に関係し、そしてhPTH-（1-34）が最強の血圧降下及び骨形成作用を有し、そして他の２つの分子は、血圧の降下及び骨形成の刺激において、お互い同じほど効果的であるが、しかしhPTH-（1-34）よりも効果的ではなかった。しかし、この相互関係は、hPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-34）とほとんど同じほど強くACを刺激し、そしてhPTH-（1-31）-NH2ほど高く血圧を降下せしめるが、しかし骨形成を刺激しないhPTH-（1-30）-NH2とは存在しなかった11。骨形成のこの欠失についての理由は未知である。それは、皮下注射されたhPTH-（1-30）-NH2が血圧を下げるためにより時間を必要とすることのみにはよらない。なぜならば、皮下注射されたhPTH-（1-84）は血圧を下げるために同じ長さの時間を必要とするが、まだ強い骨形成性であるからである。明確には、骨形成応答は、標的PTH受容体−発現の成熟骨芽細胞で十分な活性ホルモン又はホルモンフラグメントの注射部位からの到着を可能にするために結合する多くの異なった要因に依存する。骨形成を刺激するためのAC−刺激性、血圧−降下性hPTH-（1-30）-NH2の失敗は、高い不安定性、AC刺激のためのわずかに高いEC50、すなわちhPTH-（1-31）-NH2及びhPTH-（1-34）についての16nMの代わりの20nM、及び注射部位から循環中に入るための長い時間の組合せの結果であり得る。
hPTH-（1-30）-NH2の骨形成の失敗にもかかわらず、動脈圧を有意に降下せしめる能力は、まだ骨形成性PTHの共通する性質であり、そして従って、PTHフラグメントの可能なインビボ生物活性の迅速な決定可能インジケーターである。血圧降下応答はまた、経口又は他の非注射性経路による投与の後、その標的物に達する骨形成PTH構造体の能力の効果的なインジケーターとしても作用することになる。
個々の注射に対する血圧降下反応の不快且つ他の可能な後遺症は、PTH又はPTHフラグメントによる長期処理を受容する骨粗鬆症患者の意志力を制限する。幸いなことには、PTHの断続的な皮下注射が骨形成を刺激するために現在、使用されており、そしてそれらの分子は、静脈注射される場合よりも、皮下注射される場合、はるかに低い血圧降下性である。本発明者がこれまでに主張したように6,7、hPTH-（1-31）-NH2は、PLC、及びそれが誘発するいづれか可能なCa2+−及びPKC−仲介の副作用を刺激しないで、AC刺激の付加された利点を有する。
例 ７
シクロ（Lys27-Asp30）-hPTH-（1-31）-NH2（5）
この合成を、〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-31）-NH2の合成に類似する態様で実施した。生成物は、95％以上の推定純度、及び3700.64（±0.38）（予測されるＭ＋１＝3700.14）の分子質量を有した。そのペプチドを配列決定し、ラクタム位置を確認した。
〔Leu27〕シクロ（Glu22-Lys26）-hPTH-（1-30）-NH2（8）
このペプチドを、支持体へのValの手動的な付加を伴わないで、ペプチド３に関してのように合成した。生成物は、97％以上の推定純度、及び3586.14（±0.19）（予測されるＭ＋１＝3685.99）の分子質量を有した。
本発明の類似体は、その必要により、温血動物、特にヒトに、非経口、局部、又は直腸投与により、又は吸入又は経口投与により投与され得る。前記類似体は、許容される医薬用途のために必要とされるような従来のビークル、賦形剤、結合剤、保存剤、安定剤、着色剤又は同様のものと共に、単位投与形当たり約１〜約300mgに対応する非経口投与形で従来通りに配合され得る。
非経口投与に関しては、超微細30−ゲージ注射針を通しての１〜２mlの痛みのない皮下注射を、疾病の重症度に依存して、１〜２年間、１日１回よりも多くなく与えられる必要がある。注射される材料は、水性、等張性、滅菌溶液又は懸濁液に本発明の１つの類似体を含む（任意には、保存剤、たとえばフェノール又は安定剤、たとえばエチレンジアミン四酢酸（EDTA）も含む）。使用され得る、許容できるビークル及び溶媒の中には、水、軽く酸性化された水、リンガー溶液及び等張塩化ナトリウム溶液がある。さらに、滅菌され、固定されたオイルが、溶媒又は懸濁媒体として通常使用される。合成モノグリセリド、ジグリセリド、脂肪酸（たとえばオレイン酸）が、注射用製剤において固定された油として使用される。
直腸投与に関しては、本発明の類似体が、適切な非刺激性賦形剤、たとえばココア緩衝液又はポリエチレングリコールと共に混合することによって坐剤の形で調製され得る。
局部使用に関しては、本発明の類似体は、軟膏、ジェリー、溶液、懸濁液又は経皮用接着パッチの形で調製され得る。
吸入に関しては、これは、PCT公開された出願番号WO 94／07514に記載される手段により達成され得る。
毎日の用量は、処理される対象の年齢、体重、性別、及び状態、特定の化合物の活性に依存して、0.05mg／kg体重を越えるべきではなく、又は約3.5mg／70kg体重（ヒト）である。良く知られているように、単一投与形を生成するためにキャリヤー材料と共に組合され得る活性成分の量は、処理される宿主、及び投与の特定の態様に依存して変化するであろう。
次に類似体の表は、上記方法に従って、すべて生成された。
次の文献の開示は、引用により本明細書に組込まれる。
（１）Caulfield, M.P.; McKee, R.L.; Goldman, M.E.; Duong, L.T.; Fisher, J.E.; Gay, C.T.; DeHaven, P.A.; Levy, J.J.; Roubini, E.; Nutt, R.F.; Chorev, M.; Rosenblatt, M. The Bovine Renal Parathyroid Hormone（PTH）Receptor Has Equal Affinity for 2 Different Amino Acid Sequences-The Receptor Binding Domains of PTH and PTH-Related Protein Are Located Within the 14-34 Region. Endocrinology 1990, 127, 83-87.
（２）Neugebauer, W.; Barbier, J.-R.; Sung, W.L.; Whitfield, J.F.; Willick, G.E. Solution Structure and Adenylyl Cyclase Stimulating Activities of C-Terminal Truncated Human Parathyroid Hormone Analogues Biochemistry 1995, 34, 8835-8842.
（３）Gardella, T.J.; Wilson, A.K.; Keutmann, H.T.; Oberstein, R.; Potts, J.T.; Kronenberg, H.M., and Nussbaum, S.R. Analysis of Parathyroid Hormone’s Principal Receptor-Binding Region by Site-Directed Mutagenesis and Analog Design. Endocrinology 1993, 132, 2024-2030.
（４）Marqusee, S.; Baldwin, R.L.Helix Stabilization by Glu... Lys+ Salt Bridges in Short Peptides of De Novo Design.Proc.Natl.Acad.Sci. U.S.A. 1987, 84, 8898-8902.
（５）Surewicz, W.K.; Neugebauer, W.; Gagnon, L.; MacLean, S.; Whitfield, J.F.; Willick, G.E. Structure-Function Relationships in Human Parathyroid Hormone: The Essential Role of Amphiphilic-Helix. In Peptides: Chemistry, Structure, and Biology 1993; Smith, J.; Hodges, R., Eds.; ESCOM Leiden, The Netherlands, 1993, pp.556-558
（６）Whitfield, J.F.; Morley, P.; Willick, G.E.; Ross, V.; Barbier, J.R.; Isaacs, R.J.; Ohannessianbarry, L.Stimulation of the Growth of Femoral Trabecular Bone in Ovariectomized Rats by the Novel Parathyroid Hormone Fragment, hPTH-（1-31）NH2（Ostabolin）Calcif. Tissue Int. 1996, 58, 81-87.
（７）Whitfield, J.F.; Morley, P.Small Bone-Building Fragments of Parathyroid Hormone: New Therapeutic Agents for Osteoporosis Trends Pharmacol.Sci. 1995 16, 382-386.
配 列 表
（１）一般情報：
（ｉ）出願人：
（Ａ）名称：National Research Council of Canada
（Ｂ）通り：Intellectual Property Services Montreal Road, Bldg. M-58, Room EG-12
（Ｃ）市 ：Ottawa
（Ｄ）州 ：Ontario
（Ｅ）国 ：Canada
（Ｆ）郵便番号：K1A OR6
（ii）発明の名称：骨粗鬆症の治療のための副甲状腺ホルモン類似体
（iii）配列の数：33
（２）配列番号１についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号１：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号２：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号３：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号４：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号５：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号６：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：30個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号７：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号８：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：34個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号９：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：34個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii)配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号10：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号11：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号12：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号13：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号14：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号15：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号16：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号17：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号18：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号19：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号20：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：環状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号21：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：34個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号22：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：31個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号23：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号24：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：５個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号25：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：６個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号26：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：７個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号27：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：８個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号28：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号29：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号30：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号31：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：４個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号32：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ ：５個のアミノ酸
（Ｂ）型 ：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（xi）配列：配列番号33：
Claims (8)
- 位置27がLeu、Ile、Nle又はMetであり、そしてラクタムを形成するためにGlu22とLys26との間で環化されているヒト副甲状腺ホルモンhPTH-(1-31)類似体。
- アミドＣ−末端又は遊離カルボキシルＣ−末端のいづれかを有する請求項１に記載の類似体。
- 配列番号３のアミノ酸配列からなる請求項１に記載の類似体。
- 請求項１に記載のヒト副甲状腺ホルモン(hPTH)-(1-31)類似体を含んで成る、骨粗鬆症治療用組成物。
- 骨粗鬆症治療用医薬組成物の製造のための、請求項１に記載のヒト副甲状腺ホルモン(hPTH)-(1-31)類似体の使用。
- 位置27がLeuであり、そしてラクタムを形成するためにGlu22とLys26との間で環化されているヒト副甲状腺ホルモンhPTH-(1-31)類似体。
- 請求項６に記載のヒト副甲状腺ホルモン(hPTH)-(1-31)類似体を含んで成る、骨粗鬆症治療用組成物。
- 骨粗鬆症治療用医薬組成物の製造のための、請求項６に記載のヒト副甲状腺ホルモン(hPTH)-(1-31)類似体の使用。
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