JP3985035B2 - （ｎ−６）系ドコサペンタエン酸含有油脂ならびに該油脂の製造方法および用途 - Google Patents

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸(ＤＰＡ)を含有する油脂、該油脂および(ｎ-６)系ＤＰＡの製造方法、該油脂を添加した種々の食品、飼料および餌料に関する。
【０００２】
【従来の技術】
動物体内において、ドコサヘキサエン酸(ＤＨＡ)やドコサペンタエン酸(ＤＰＡ)などの高度不飽和脂肪酸は、種々の生理活性を有するものと考えられている。これら高度不飽和脂肪酸は、その不飽和結合の位置の相違により(ｎ-３)系および(ｎ-６)系に分けられることが知られている。動物体内では(ｎ-３)系と(ｎ-６)系の高度不飽和脂肪酸は別の代謝経路に属しており、動物は両者を必須脂肪酸として要求する。
【０００３】
(ｎ-３)系の高度不飽和脂肪酸には、例えばエイコサペンタエン酸[２０：５(ｎ-３)]やドコサヘキサエン酸[２２：６(ｎ-３)]などが含まれ、これらは抗炎症活性、抗血栓活性などの生理活性を有することが知られており、機能性食品や医薬品の素材として注目されている。
一方、(ｎ-６)系の高度不飽和脂肪酸には、例えばγ-リノレン酸[１８：３(ｎ-６)]、ジホモ-γ-リノレン酸[２０：３(ｎ-６)]、アラキドン酸[２０：４(ｎ-６)]などが含まれ、これらは局所ホルモンと呼ばれるプロスタグランジン、ロイコトリエンなどのエイコサノイドの１群あるいは２群への中間代謝物質として注目されている。
【０００４】
動物体内においては、組織により変わるが、(ｎ-３)系はドコサヘキサエン酸が、そして(ｎ-６)系はアラキドン酸が最終代謝産物となっている。例えば、ヒト赤血球のリン脂質の脂肪酸組成は、(ｎ-３)系はエイコサペンタエン酸０.７０％、ドコサペンタエン酸２.０９％、ドコサヘキサエン酸４.３７％であり、一方、(ｎ-６)系はリノール酸１２.６７％、ジホモ-γ-リノレン酸０.６２％、アラキドン酸１６.９３％、ドコサペンタエン酸０.８６％であり[Hardyら，Biochem.J., vol.274，p133 (1991)]、(ｎ-６)系のドコサペンタエン酸は極めて少ない。
【０００５】
(ｎ-３)系の最終代謝産物である(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸(ＤＨＡ)は、動物の脳や網膜に特異的に存在し、これら器官において何らかの機能を果たしていると考えられている。この(ｎ-３)系ＤＨＡは、青魚に属する魚油に含まれ、特にイワシやマグロ由来の油には２０％前後含まれている。近年、マグロの眼窩脂肪などのＤＨＡを高濃度に含有する原料が発見され、また脂肪酸の高度精製技術が発達したことなどから、ＤＨＡの生理活性機能の解明や実用化の研究が活発に進められている。ＤＨＡの生理活性機能としてコレステロール低下作用、抗血液凝固作用、制癌作用、さらには脳代謝系に関連して記憶学習能力の向上、老人性痴呆症の予防、アルツハイマー疾病の治療薬、稚魚の成長必須脂肪酸などが明らかとなり、また健康食品やベビーミルク等の素材として使用されている。
【０００６】
一方、動物体内で(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸(ＤＰＡ)の組成が大きくなる場合は、(ｎ-３)系必須脂肪酸の欠乏に対する代償と考えられる。例えば、(ｎ-６)系が極めて多いサフラワー油を含む食餌を与え続けた３世代目のラットの視神経脈絡膜叢の脂肪酸組成は、(ｎ-３)系ＤＨＡが１／３に減少するが、その一方で、(ｎ-６)系ＤＰＡが４倍になった[Homayounら，J.Neurochem., vol.51, p.45 (1988)]。さらに、ビタミンＡ欠乏症ラットの肝臓ミクロソームにおいて(ｎ-６)系ＤＰＡ組成が正常値の０.９％から１０.５％へ急増すること[Ｈammら，Ｂiochem.J., vol.245, p907 (1987)]、および、(ｎ-３)系の少ないパーム油を与えたラットにおいて(ｎ-３)系ＤＨＡが減少し、(ｎ-６)系ＤＰＡが増加すること[Rebhungら，Biosci.Biotech.Biochem., vol.58, p314 (1994)]などが報告されている。
【０００７】
このように、動物の脳や網膜において何らかの機能を果たしていると考えられる(ｎ-３)系ＤＨＡの代償として(ｎ-６)系ＤＰＡが生体内で作られることは、(ｎ-６)系ＤＰＡが何らかの生理的役割を有していることを示唆し、また、アラキドン酸のアンタゴニストとしても期待できる。
【０００８】
さらに、現在知られている(ｎ-６)系ＤＰＡの利用法としては、精神安定剤を脳へ運びやすくする基剤として使用すること(特開昭６１−２０４１３６号)、ならびに、(ｎ-６)系の炭素数２２の不飽和脂肪酸が正常値よりも減少している疾患、例えば、ウイルス、特にワート(wart)ウイルスによる感染；白血病、乳癌および他の種の癌；月経前症候群および良性胸部疾患；高血圧、高脂血症および肥満症、ドライ・アイ(dry eye)症候群；強皮症、リューマチ性関節炎、クローン病、潰瘍性大腸炎および他の形の自己免疫および炎症性疾患；不妊症；糖尿病；および精神分裂病およびアルコール中毒(過度および禁酒の両方の影響を含む)を含む精神病的疾患などの治療に(ｎ-６)系ＤＰＡを(ｎ-６)系ドコサテトラエン酸と組み合せて使用すること(特開昭６０−３８３２４号)が挙げられる。
【０００９】
この(ｎ-６)系ＤＰＡは、一般的に供給される油脂の中には全く存在せず、魚油の中に(ｎ-３)系ＤＰＡとともにわずかに含まれているにすぎない。魚油から(ｎ-６)系ＤＰＡを分離濃縮する方法が特許出願されているが[特開平１-１８０８４９]、魚油中の(ｎ-６)系ＤＰＡの含量が１％程度と微量であり、アラキドン酸、エイコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸などの構造の類似した高度不飽和脂肪酸を多く含み、さらに(ｎ-３)系ＤＰＡが(ｎ-６)系ＤＰＡより数倍高い含量で含まれるため、多段のクロマト処理が必要であるなど効率の良い分離・濃縮が困難である。
【００１０】
以上のように、魚油には注目すべき生理機能を有する(ｎ-３)系ＤＨＡおよび(ｎ-６)系ＤＰＡが存在するが、(ｎ-３)系ＤＨＡおよび特に(ｎ-６)系ＤＰＡを多量に含んでいる油脂は未だ知られていない。さらに、魚油の場合、魚類の回遊性等から安定な供給源となりにくいことや、魚油特有の異臭があるなどの欠点がある。また、魚油にはアラキドン酸(ＡＡ)やエイコサペンタエン酸(ＥＰＡ)などの高度不飽和脂肪酸も含まれるため、酸化され易く、安定した品質の油脂を得ることが困難である。さらに、高純度の(ｎ-３)系ＤＨＡまたは(ｎ-６)系ＤＰＡを得ようとする場合、その分離精製が困難である。特に、乳児用ミルクに添加する場合、ＥＰＡの含有割合が低いものが望ましいが、供給源が魚油の場合にはＥＰＡのみを効率的に除去することは極めて困難である。
【００１１】
魚油以外の(ｎ-３)系ＤＨＡまたは(ｎ-６)系ＤＰＡの供給源として、種々の微生物が候補に挙げられる。例えば、(ｎ-３)系ＤＨＡ生産能を有する微生物として、深海から分離された細菌ビブリオ・マリナス(Vibrio marinus)(ＡＴＣＣ １５３８１)や深海魚の腸内から分離されたビブリオ属細菌、微細藻類であるシクロテラ・クリプティカ(Cyclotella cryptica)やクリプテコディニウム・コーニー(Crypthecodinium cohnii)(特表平５−５０３４２５)、鞭毛菌類であるスラウストキトリウム・アウレウム(Thraustochytrium aureum)(ＡＴＣＣ ３４３０４)[Kendrick，Lipids，vol.27，p15 (1992)]やジャポノキトリウム・エスピー(Japonochytrium sp.)(ＡＴＣＣ ２８２０７)(特開平１-１９９５８８)などが知られている。
【００１２】
これら微生物のうち、微細藻類の一部、ならびに鞭毛菌類であるスラウストキトリウム・アウレウム(ＡＴＣＣ ３４３０４)やジャポノキトリウム・エスピー(ＡＴＣＣ ２８２０７)などにドコサペンタエン酸が含まれることが知られているが、上記文献においてこれらは(ｎ-３)系であると報告されている。即ち、これら微生物によって生産された油脂中に(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸が十分量で存在することは知られていない。
【００１３】
【発明が解決しようとする課題】
本発明者らは、上記のような(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸(ＤＰＡ)の含有量の高い油脂を高生産する微生物を広く海洋性微生物に求めた。
【００１４】
【課題を解決するための手段】
この結果、本発明者らは、ある種の海洋性微生物(シゾキトリウム属に属する新種)が(ｎ−６)系ＤＰＡの含有量の高い油脂を高生産することを見い出した。
また、この微生物が、(ｎ−６)系ＤＰＡの含有量だけでなく、(ｎ-３)系ＤＨＡの含有量も高く、かつＥＰＡの含有量の低い油脂、即ち、種々の食品、飼料あるいは餌料への添加用に有用な脂肪酸組成を有する油脂を高生産することを見い出した。
【００１５】
即ち、本発明は、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を生産する能力を有するシゾキトリウム属ＳＲ２１株および該ＳＲ２１株と同一の種に属するかもしくは実質的に同一の菌学的性質を有する微生物を培地中で培養し、その培養物から油脂を採取することを特徴とする、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸含有油脂の製造方法を提供する。
また、本発明は、上記油脂から(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を単離する工程をさらに包含することを特徴とする、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸の製造方法を提供する。
さらに本発明は、油脂中の全脂肪酸あたり、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を５重量％以上、(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を２０重量％以上、およびエイコサペンタエン酸を２重量％以下の量で含有することを特徴とする(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸含有油脂を提供する。
また本発明は、該油脂を添加した種々の食品、飼料および餌料、ならびに、該油脂を種々の食品、飼料および餌料のための添加物として利用する方法を提供する。
【００１６】
【発明の実施の形態】
以下において、本発明を詳しく説明する。尚、本明細書中に記載した「油脂」、「脂質」、および「オイル」なる用語は同じ意味で使用した。
本発明において用いる海洋性微生物であるＳＲ２１株は、ミクロネシア連邦のヤップ島沿岸の海水から分離したものである。
【００１７】
当初、このＳＲ２１株は、スラウストキトリウム(Thraustochytrium)属の微生物であると考えられた。しかし、その菌学的性質を詳しく調べた結果、この菌株はシゾキトリウム(Schizochytrium)属の新種と認められる微生物であることがわかった。このシゾキトリウム属ＳＲ２１株の菌学的性質は下記の通りである。
【００１８】
ＳＲ２１株の菌学的性質は、栄養培地および海水中で培養することによって調べた。
まず、人工海水(トロピックマリン)１Ｌにグルコース２g、酵母エキス０.２gおよびグルタミン酸ナトリウム０.５gを加えた栄養培地を小シャーレに入れ、同じ培地によるＳＲ２１株のフラスコ前培養液を１滴接種し、倒立顕微鏡により細胞形態を追跡した。この場合、アメーバ状の不定形細胞の放出が見られた。
次に、同様の追跡をフィルター滅菌した天然海水中で行った。この場合にはアメーバ状の不定形細胞の放出が認められず、２分裂を繰り返した後の栄養細胞塊のいくつかの細胞から、遊走子の放出が観察された。また、２分裂をせずに１個の栄養細胞から直接遊走子へと分化したものも観察された。
【００１９】
遊走子放出が多く認められたサンプルにグルタルアルデヒドを１０容量％加え、光学顕微鏡により遊走子の観察を行った。
図１は、ＳＲ２１株の遊走子の形態を示す光学顕微鏡写真であり、２本の長さの異なる鞭毛を示している。
さらに酢酸ウランを用いたネガティブ染色法により、鞭毛の電子顕微鏡観察を行った。図２は、ＳＲ２１株の遊走子の鞭毛の構造を示す透過型電子顕微鏡写真であり、鞭毛のマスチゴネマの基部、軸、および頂毛からなる三部構造を示している。
また、上記２通りの倒立顕微鏡による細胞形態観察において、栄養細胞が２分裂を繰り返し、細胞塊および原形質のネットワークを形成するものが見られた。図３は、ＳＲ２１株の栄養細胞塊と原形質とのネットワークを示す光学顕微鏡写真である。
【００２０】
ＳＲ２１株が寒天平板培地上で形成するコロニーは、酵母のコロニーと同様の滑らかな黄土色を呈する。また、このＳＲ２１株を液体培地で増殖させると、その初期に２本の長さの異なる鞭毛を持つ遊走子が観察され(図１)、２本の鞭毛のうちの長鞭毛にある毛状構造(マスチゴネマ)が基部、軸、頂毛の三部構造をとる(図２)。これらのことから、ＳＲ２１株は、クロミスタ界(Kingdom Chromista)、不等毛門(Phylum Heterokonta)に属する。さらに原形質のネットワーク形成性、ゴルジ体由来の鱗片から、ＳＲ２１株は、ラビリンチュラ綱(Class Labyrinthulea)ラビリンチュラ目(Order Labyrinthulida)に属する。そして、栄養細胞が球形または楕円形であること、および原形質のネットワーク中の滑走運動がないことから、ＳＲ２１株がスラウストキトリウム科(Family Thraustochytriidae)に属することは明らかである。
【００２１】
さらに、ＳＲ２１株の栄養細胞は２分裂を繰り返し、８〜３２個の栄養細胞塊を形成する。その後、いくつかの細胞からアメーバ状の不定形細胞が放出され、細胞塊から徐々に離れ、１〜２時間後に球形細胞になる。この球形細胞はその後遊走子嚢として８ないし１６個の遊走子へ分化する。その際、遊走子嚢の膜は観察されない。さらに、２分裂をせずに１個の栄養細胞から直接遊走子嚢へ分化したり、２分裂をして栄養細胞塊となった後に不定形細胞を経ないで遊走子へ分化する細胞もあり、複雑な生活環を有する。
【００２２】
スラウストキトリウム科は、ポーター[D.Porter, “Handbook of Protoctista", Jones and Bartlett Publishers (1990)]によれば７属３０種よりなる。その後、コラロキトリウム(Corallochytrium)属[Raghukumar,S., Botanica Marina, 30：83 (1987)]が加えられ、モス[Moss,S.T., “The Biology of Free-living Heterotrophic Iagellates", Oxford University Press (1991)]によれば８属３３種とされる。
【００２３】
これらスラウストキトリウム科８属の特徴は次の通りである。ラビリンチュロイデス(Labyrinthuloides)属の栄養細胞は球状であるが、原形質ネットワーク上を不規則に滑走する。アプラノキトリウム(Aplanochytrium)属は不動胞子、即ち鞭毛を持たない胞子によって増殖する。アルソーニア(Althornia)属は原形質ネットワークを形成せず、浮遊性である。ジャポノキトリウム(Japonochytrium)属は細胞外に胞嚢(apophysis)を生じる。ウルケニア(Ulkenia)属は遊走子嚢からアメーバ状の不定形細胞が放出された後にそれが遊走子へ分化する。スラウストキトリウム(Thraustochytrium)属は１個の遊走子から１個の栄養細胞となり、それが１個の遊走子嚢を形成する。シゾキトリウム(Schizochytrium)属は１個の遊走子が着生した後に２分裂を行い、複数個の栄養細胞塊を形成し、それぞれが遊走子嚢となる。コラロキトリウム(Corallochytrium)属はコウラナメクジ状の胞子を形成し、鞭毛を持った遊走子を形成しない。
【００２４】
尚、上記８属のうちウルケニア属については、ゲルトナー[Gaertner,A., Veroff.Inst.Meeresforsch.Bremerh., 16：139 (1977)]は、遊走子嚢から裸の原形質塊(アメーバ状の不定形細胞)が放出された後に遊走子へ分化する形質を属の分類基準に用い、それまでスラウストキトリウム属に分類されていたスラウストキトリウム・ヴィサージェンス(Thraustochytrium visurgense)[Ulken,A., Veroff.Inst.Meeresforsch.Bremerh., 9：289 (1965)]およびスラウストキトリウム・アモエボイダム(Thraustochytrium amoeboidum)[Bahnweg,O.およびSparrow,F.K., Jr.Am.J.Bot., 61：754 (1974)]の２種をウルケニア属に移し、それらにラグクーマーによる新種ウルケニア・ミヌータ(Ulkenia minuta)[Raghukumar,S., Veroff.Inst.Meeresforsch.Bremerh., 16：158 (1977)]とさらに３種の新種を併せてウルケニア属６種として新属ウルケニア属を提唱した。
【００２５】
しかし、それ以後にウルケニア属の新しい種について記載した論文はみられない。カーリング[Karring,J.S., “Predominantly Holocarpic and Eucarpic Simple Biflagellate Phycomycetes", J.Cramer (1981)]は、ウルケニア属が独立した属として成立するかどうかについては疑問としており、暫定的なものとして掲げた。ただし、ポーターおよびモスの文献には前述の記載がされている。
【００２６】
ＳＲ２１株はアメーバ状の不定形細胞を形成するので、その形質を重視するとウルケニア属に属するとも考えられる。しかし、ラグクーマーはスラウストキトリウム属のスラウストキトリウム・ストリアタム(Thraustochytrium striatum)が、栄養培地ではバクテリアを捕食するアメーバ状の不定形細胞を形成することを報告している[Raghukumar,S., Marine Biology, 113：165 (1992)]。さらに、ラグクーマーは、シゾキトリウム属の新種としたシゾキトリウム・マングローヴァイ(Schizochytrium mangrovei)は栄養培地ではアメーバ状不定形細胞を形成するが、海水に松花粉のみを添加した栄養の希薄な培地で培養した場合はアメーバ状不定形細胞を形成しないことを示した[Raghukumar,S., Trans.Br.Mycol.Soc.,
80：627 (1988)]。
【００２７】
そこでラグクーマーは、アメーバ状の不定形細胞を形成するという形質が培地組成や培養条件によって影響を受けることから、基準となる培地を使ってこの形質を調査する必要があるとした。その基準培地としては、従来から伝統的によく用いられており、また、これまでの属や種の原記載の中で形態形質を観察する際に用いられることの多かった前述の海水／松花粉培地を挙げている。ウルケニア属に分類されている６種は全て、この海水／松花粉培地中でアメーバ状不定形細胞を形成することが知られている。一方、スラウストキトリウム・ストリアタムとシゾキトリウム・マングローヴァイは、栄養培地では前述のようにアメーバ状不定形細胞を形成するが、海水／松花粉培地ではアメーバ状不定形細胞を形成しないことから、ウルケニア属に分類されていない。以上に基づくと、ＳＲ２１株は栄養培地ではアメーバ状不定形細胞を形成するが、海水のみの培地ではこれが観察されなかったので、ウルケニア属に分類するのは適当ではないと思われる。
【００２８】
一方、１個の遊走子が着生した後の栄養細胞が２分裂を繰り返し、複数個の栄養細胞塊を形成し、それぞれが遊走子嚢となる形質は、培地組成によらず安定であり、ＳＲ２１株の生活環の中で常に観察される形質である。この形質およびその他のＳＲ２１株で観察される性質は、ゴールドシュタインら[Goldstein,S.およびBelsky,M., Am.J.Bot., 51：72 (1964)]およびブーツら[Booth,T.およびMiller,C.E., Can.J.Bot., 47：2051 (1969)]により報告されているシゾキトリウム属の記載に矛盾することがない。よって、ＳＲ２１株はシゾキトリウム属に分類するのが妥当であると判断される。
【００２９】
現在、シゾキトリウム属微生物としては、次の４種が文献に記載されている。シゾキトリウム・アグレガタム(Schizochytrium aggregatum)は、その栄養細胞が、連続する分裂によって多数の細胞が互いに接着した塊を形成する。その細胞塊のうち、３〜４個またはそれ以上の細胞が遊走子嚢へ分化する。また、１個の遊走子嚢は１６〜６４個の遊走子を形成する。さらに、２個の細胞からは遊走子放出は見られないと記載されている[Goldstein,S.およびBelsky,M., Am.J.Bot., 51：72 (1964)、Booth,T.およびMiller,C.B., Can.J.Bot., 47：2051 (1969)]。
【００３０】
シゾキトリウム・ミヌータム(Schizochytrium minutum)は、シゾキトリウム・アグレガタムと同様に栄養細胞の分裂の結果、４〜８個または数百の細胞塊を形成し、各遊走子嚢から２個の遊走子を放出する。遊走子は豆型であり、２本の鞭毛の長さは８.５μmと３.０μm程度である[Gaertner,A., Veroff.Inst.Meerestorsch.Bremer., 19：61 (1981)]。
【００３１】
また、シゾキトリウム・オクトスポラム(Schizochytrium octosporum)は、１個の遊走子嚢から８個の遊走子が放出される点でシゾキトリウム・ミヌータムと異なっている[Raghukumar,S., Trans.Br.Mycol.Soc., 90：273 (1988)]。
【００３２】
さらに、1987年にラグクーマーがゴア(インド)のマングローブの腐朽葉より分離したスラウストキトリウム科の微生物は、栄養細胞が連続する分裂によって細胞塊を形成することからシゾキトリウム属に分類された。しかし、それまでに記載されていた上記３種の遊走子はいずれも遊走子嚢という袋の中で形成されるのに対して、この微生物では栄養細胞の連続的な２分裂により、４、６、８または１２個の細胞となり、それぞれの細胞が直接遊走子となる過程をとり、遊走子嚢の形態をとらなかった。ラグクーマーはこの特徴に注目し、新種シゾキトリウム・マングローヴァイ(Schizochytrium mangrovei)を設けた[Raghukumar,S., Trans.Br.Mycol.Soc., 90：627 (1988)]。
【００３３】
ラグクーマーは同じ文献において、それまで知られていたシゾキトリウム属の検索表を提案した(表１)。
【表１】

【００３４】
表１に示した検索表および既知の４種を記載した原報と、ＳＲ２１株の菌学的性質を比較してみる。まず、シゾキトリウム属ＳＲ２１株は、分裂した栄養細胞が遊走子嚢の形態をとらずに、ひとつひとつの遊走子になるシゾキトリウム・マングローヴァイとは異なる。また、遊走子嚢の径が１４μm以下であって、各遊走子嚢から２個の遊走子が形成される場合は、シゾキトリウム・ミヌータムに、同じく８個の遊走子が形成される場合は、シゾキトリウム・オクトスポラムにそれぞれ帰属されるが、ＳＲ２１株は８ないし１６個の遊走子へ分化することからこれらのどちらとも異なる。さらに、遊走子嚢の径が１５〜２５μmであって遊走子嚢から１６ないし６４個の遊走子(ただし、記載のある原報には多くのという表現のみ)が形成される場合は、シゾキトリウム・アグレガタムとされるが、この種においてはアメーバ状の不定形細胞は観察されていないため、ＳＲ２１株はこれとも異なる。さらにＳＲ２１株では、２分裂をしない栄養細胞または不定形細胞を経ないで遊走子へ分化する細胞も見られる。以上のことから、ＳＲ２１株はシゾキトリウム属の既存の４種には該当せず、シゾキトリウム属の新種であると認められた。
【００３５】
尚、このシゾキトリウム属ＳＲ２１株は、工業技術院生命工学工業技術研究所に「海生菌ＳＲ２１菌株」の名称で平成７年３月６日付けで寄託され、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５０３４を取得している。さらに、財団法人発酵研究所に平成７年３月１７日付けで寄託され、受入番号ＩＦＯ ３２６９３を取得している。
【００３６】
本発明のＤＰＡ含有油脂の製造方法に用いる微生物は、前記ＦＥＲＭ ＢＰ−５０３４またはＩＦＯ ３２６９３に限らず、上述したシゾキトリウム属ＳＲ２１株の菌学的性質に照らして該ＳＲ２１株と同一の種に属するか、もしくは実質的に同一の菌学的性質を有する菌株、例えば亜種に属すると認められる菌株であればいずれの菌株も使用することができる。シゾキトリウム属ＳＲ２１株または該ＳＲ２１株と同一の種に属すると認められる菌株を用いるのが好ましい。
【００３７】
本発明において用いる微生物は、上述のように、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を高水準で産生し、さらに(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸をも高水準で産生し、そしてエイコサペンタエン酸を低水準で産生する。本発明において用いる微生物は、このような高度不飽和脂肪酸産生能を有するものであるならば、上述したシゾキトリウム属ＳＲ２１株または該ＳＲ２１株と同一の種に属するかもしくは実質的に同一の菌学的性質を有する微生物(野性株)の変異株または組換え株であってもよい。即ち、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および／または(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸をさらに高水準で産生するように設計された変異株および組換え株の使用は全て本発明の範囲内にある。このような変異株または組換え株には、同じ基質を用いて培養したときに、元の野性株が産生する量と比べて、油脂中の(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および／または(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸の量が多くなるように、または総油脂量が多くなるように、あるいはその両方を意図して設計されたものが含まれる。さらに、費用効果の優れた基質を効率よく用いて、対応する野性型と同量の(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および／または(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を含有する油脂を産生するように設計された微生物も含まれる。
【００３８】
本発明において用いる(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を含有する油脂を生産することができる微生物は、例えば、次のようなスクリーニング法に従って選択することができる。即ち、採取した海水を０.４μmの滅菌フィルターを用いて濾過および集菌し、このフィルターを９０％天然海水、グルコース、酵母エキス、ペプトンよりなる寒天培地上に張り付け、２０〜３０℃で培養する。この寒天平板培地のフィルター上に形成したコロニーを、上記と同じ組成の寒天培地上で培養し、得られた菌体をスパーテルで採取し、常法に従って菌体から脂肪酸を直接メチルエステル化し、その組成をガスクロマトグラフィーで分析し、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を産生している菌株を選択する。さらに、菌体内に油脂を乾燥菌体あたり１０重量％以上、好ましくは２０重量％以上の量で蓄積し、そして／または全脂肪酸中にエイコサペンタエン酸が２重量％以下、好ましくは１重量％以下、より好ましくは０.５重量％以下である菌株を選択することができる。
【００３９】
シゾキトリウム属ＳＲ２１株は、乾燥菌体あたり油脂を２０重量％以上蓄積することができる。また、油脂中の全脂肪酸あたり、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を６〜１１重量％、および(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を２５〜４５重量％含有し、エイコサペンタエン酸の含有割合は１重量％以下である。また、油脂中の全(ｎ-３)系脂肪酸あたり、(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を９８重量％以上含有している。
【００４０】
従って、本発明において用いるシゾキトリウム属ＳＲ２１株と同一の種に属するかもしくは実質的に同一の菌学的性質を有する菌株は、乾燥菌体あたり油脂を１０重量％以上蓄積するのが好ましく、さらに好ましくは２０重量％以上、最も好ましくは３０重量％以上蓄積する。
また、油脂中の全脂肪酸あたりの(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸の含有量は、５重量％以上、好ましくは６重量％以上、より好ましくは６〜１１重量％である。
また、油脂中の全脂肪酸あたりの(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸の含有量は、２０重量％以上、好ましくは２５重量％以上、より好ましくは２５〜４５重量％である。
また、油脂中のエイコサペンタエン酸の含有割合は、２重量％以下、好ましくは１重量％以下、より好ましくは０.５重量％以下である。
さらに、本発明の油脂は、(ｎ-３)系脂肪酸中に(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を９０重量％以上、好ましくは９５重量％以上含有している。
【００４１】
本発明の油脂は、前述の微生物を、天然海水または人工海水を用いて調製した適当な培地に接種し、常法に従って培養を行うことにより得ることができる。
培地に添加する炭素源としては、グルコース、フルクトース、キシロース、サッカロース、マルトース、可溶性デンプンなどの炭水化物の他、オレイン酸、大豆油などの油脂類や、糖密、グリセロール、マンニトール、酢酸ナトリウムなどが例示できるが、これらに限られるものではない。これらの炭素源を、例えば、培地１リットル当たり２０〜１２０gの濃度で使用することができる。
【００４２】
窒素源としてはペプトン、酵母エキス、麦芽エキス、肉エキス、カザミノ酸、コーンスチープリカーなどの天然窒素源の他に、グルタミン酸ナトリウム、尿素などの有機窒素源、または酢酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの無機窒素源などが例示できるが、これらに限られるものではない。
【００４３】
この他、必要に応じてリン酸カリウム、リン酸二水素カリウムなどのリン酸塩、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、硫酸鉄、硫酸銅、塩化マグネシウム、塩化カルシウムなどの無機塩およびビタミン類も微量栄養源として使用できる。これらの培地成分は微生物の成育を害しない濃度であれば特に制限はない。
【００４４】
培地を調製した後、適当な酸または塩基を用いてpＨを４.０〜６.５の範囲に調整し、オートクレーブにより殺菌する。菌の培養は、１０〜３５℃、好ましくは１７〜３０℃にて通常３〜７日間、通気撹拌培養、振蘯培養あるいは静置培養などによって行う。
【００４５】
また、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および／または(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸の産生を促進するため、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および／または(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸の前駆体を培地に添加することができる。前駆体としては、テトラデカン、ヘキサデカン、オクタデカンなどの炭化水素、テトラデカン酸、ヘキサデカン酸、オクタデカン酸、オレイン酸などの脂肪酸、またはその塩(例えば、ナトリウム塩またはカリウム塩)、脂肪酸エステル、または脂肪酸を構成成分として含む油脂(例えば、オリーブ油、大豆油、綿実油、ヤシ油)などを挙げることができるが、これらに限られるものではない。
【００４６】
本発明の油脂を商品化が可能な収率で産生するための条件として、次のような条件が挙げられる。シゾキトリウム属ＳＲ２１株の培養条件の検討により、該ＳＲ２１株およびこれと同一の種に属するかもしくは実質的に同一の菌学的性質を有する菌株は、天然海水もしくは人工海水または２分の１濃度の天然海水もしくは人工海水を含む培地において、pＨ３.５〜６.０、望ましくはpＨ４.０〜４.５で良好に生育することがわかった。
【００４７】
培地に添加する炭素源および窒素源は、上記のような通常用いられるものであってよい。窒素源は有機窒素または無機窒素のいずれであってもよく、窒素濃度として一定になるようにすれば、菌体の生育量、脂質含量、ＤＨＡ、ＤＰＡの蓄積量に影響を与えずに有機窒素と無機窒素の比率を変えることができる。これらを通常の微生物培養に用いる濃度で添加して良好な生育が得られる。リン酸塩を、通常の微生物培養に用いられる濃度で用いて良好な生育を達成することができる。
【００４８】
培地中の炭素源濃度とともに窒素源濃度も同じ割合で増加させることにより、高濃度培養が可能である。炭素源、窒素源の増加割合に応じて乾燥菌体量、脂質量も増加し、ＤＨＡ、ＤＰＡの生産量も増加する。
【００４９】
高濃度培養の際には、培養開始時に、炭素源、例えばグルコースの濃度のみを増加させておき、窒素源、例えばコーンスチープリカー／硫酸アンモニウムについては通常の量を添加し、グルコース消費量に応じて後から不足する量を添加する方法を用いることもできる。また、高濃度培養の際には、培養開始時に、炭素源、窒素源を低い濃度にしておき、グルコースの消費に応じて、後から、炭素源、窒素源を増加することもできる。
【００５０】
上記条件での培養は通常の撹拌式発酵槽を用いて実施できる。また、気泡塔型培養装置も用いることもできる。通気撹拌培養の条件としては通常の微生物の培養条件を用いることができる。通気撹拌培養においては、回転数を上昇させ、溶存酸素量を増加させるとフラスコ培養に比べて、顕著な生育速度および菌体収量の増加が観察される。
培養初期においては、特に溶存酸素量を高く維持することが生育速度の増加に重要である。
【００５１】
このようにして、培養物中に(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸含有油脂を蓄積した菌体を、培地１Ｌあたり１０g以上、好ましくは２０g以上、更に好ましくは４０g以上の高い濃度で生産させることができる。また、この油脂は、培養中期以降、良好に菌体内に蓄積され、乾燥菌体あたり３０重量％以上、好ましくは５０重量％以上、より好ましくは６０重量％以上とすることができる。
【００５２】
培養物から菌体を集める方法は、従来から用いられている遠心分離法や濾過などの方法が使用できる。
集められた菌体は、例えば、ダイノミルや超音波などにより破砕した後、クロロホルム、ヘキサン、メタノール、エタノールなどによる溶媒抽出を行うことにより、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸含有油脂を得ることができる。乾燥菌体１gあたり(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸および(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸含有油脂は約０.３g以上が好ましく、０.６g以上がさらに好ましい。
【００５３】
本発明の油脂は、このようにしてシゾキトリウム属ＳＲ２１菌株またはこれと同一の種に属するかもしくは実質的に同一の菌学的性質を有する菌株から得られる油脂であってもよい。本発明の油脂は、油脂中の脂肪酸あたり、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を５重量％以上、好ましくは６重量％以上含有し、(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸を２０重量％以上、好ましくは２５重量％以上含有し、エイコサペンタエン酸を２重量％以下、好ましくは１重量％以下、より好ましくは０.５重量％以下の量で含有する。
さらに本発明の油脂の脂質特性は、通常は次の通りである。中性脂質の割合が極めて高く、全脂質中の９０重量％以上を占める。中性脂質中の脂肪酸組成は、パルミチン酸４５〜５５重量％、(ｎ-３)系ドコサヘキサエン酸３３〜４３重量％、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸７〜１０重量％、(ｎ-３)系エイコサペンタエン酸０〜１重量％、アラキドン酸０〜０.６重量％、その他の脂肪酸１０〜２０重量％程度である。
【００５４】
また得られる中性脂質は、約８５重量％以上、好ましくは９０重量％以上がトリグリセリドであり、ジグリセリド、モノグリセリドはほとんど含まれていない。また、遊離ステロール、ステロールエステルが２〜３％含まれている。また、上記脂肪酸組成を有する油脂中のトリグリセリドの分子種は、主に１４:０−１６:０−１６:０、１６:０−１６:０−１６:０、１４:０−１６:０−２２:６、１６:０−１６:０−２２:５、１６:０−１６:０−２２:６、１６:０−２２:５−２２:６、１６:０−２２:６−２２:６である(脂肪酸残基の結合位置は限定されない)。上記の「１４:０」なる記載は、１４が脂肪酸の炭素数を、０が脂肪酸の持つ二重結合の数を表すものであり、例えば、「１６:０」は炭素数１６で二重結合を持たない脂肪酸を表す。
【００５５】
また、該トリグリセリドには、(ｎ-３)系ＤＨＡがグリセリンの２位のみに結合しているもの、または、(ｎ-３)系ＤＨＡがグリセリンの１および２位、または１および３位に結合しているものが含まれている。
【００５６】
極性脂質としては、フォスファチジルコリンが６０〜８０重量％で大部分を占め、他にフォスファチジルエタノールアミン５〜２０重量％、フォスファチジルイノシトール２〜８重量％などを含む。
また、上記フォスファチジルコリンの分子種は、１６：０−２２：６、１６：０−２２：５、２２：５−２２：６、２２：６−２２：６など特徴的である。
【００５７】
(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸含有油脂から(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を分離するには、混合脂肪酸あるいは脂肪酸エステルの状態で、常法により、例えば、尿素付加法、冷却分離法、カラムクロマトグラフィー法などにより濃縮採取することにより行う。また、培養菌体などから採取した油脂からの(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸含有トリグリセリドの分離は、常法により、例えば冷却分離法、カラムクロマトグラフィー法などにより行う。本発明のシゾキトリウム属ＳＲ２１株を用いた場合、不飽和脂肪酸としてアラキドン酸、ＥＰＡがほとんど含まれていないため、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸の濃縮採取が容易に行え、高濃度生産には好都合である。
【００５８】
本発明の油脂は、種々の飼料、餌料または食品などの製品において、(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡの供給源として利用することができる。本発明の油脂を製品に利用するにあたっては、培養菌体から採取した油脂またはそれを精製して得られる油脂を使用することもできるが、例えば、該油脂を菌体培養によって製造する途中の培養液もしくはその殺菌した培養液、または培養終了時の培養液もしくはその殺菌した培養液、またはそれぞれから集菌した培養菌体もしくはその乾燥物、または培養液もしくは菌体から該油脂を採取した後の該油脂を含有する残渣も使用することができる。
【００５９】
本発明は、本発明の油脂を配合した動物用飼料に関する。本発明の動物用飼料としては、ドッグフードやキャットフードなどのペットフード、鶏などの家禽のための飼料、豚や牛などの家畜のための飼料、養魚用飼料などが挙げられる。(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを含有する油脂を産生、蓄積した微生物の菌体または培養細胞は、油脂が菌体内に保護されていることによって酸化が防止され、また加熱殺菌にも安定であるため好ましい。また、微生物の培養菌体から(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを含有する油脂を抽出した後の抽出残渣も本発明の動物飼料に使用することができる。この抽出残渣は、(ｎ-６)系ＤＰＡや(ｎ-３)系ＤＨＡの他に、蛋白質、灰分、炭水化物なども含んでいるため好ましい。
さらに本発明には、本発明の油脂を配合した動物用飼料添加物も含まれる。
【００６０】
さらに本発明は、本発明の油脂を産生、蓄積した培養菌体または培養液を含んでなる微小餌料生物用餌料に関する。従来、魚貝類や甲殻類の養殖において、種苗(稚仔魚)生産には、微小餌料生物(シオミズツボワムシ、ブラインシュリンプなどの動物プランクトン)が用いられており、稚仔魚の養殖には先ずこれらの微小生物を養殖する必要がある。これらの微小生物を培養する場合には、後にそれを餌料として摂取する稚仔魚の栄養要求性を考えて微小餌料生物に与える餌料が決められる。本発明の油脂を含有する培養菌体または培養液を微小餌料生物に与えることにより、(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを含有し、稚仔魚の栄養要求性を満足できる微小餌料生物が得られる。
さらに本発明には、上記の微小餌料生物を含有する魚貝類用餌料も含まれる。
【００６１】
さらに本発明は、本発明の油脂を、(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを強化した家禽卵の生産に利用すること、ならびに(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを強化した卵黄油の製造に利用することに関する。本発明の(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを強化した家禽卵は、上述の動物用飼料を採卵用家禽、特に鶏に与えて飼育することによって生産される。また、このような家禽卵、特に卵黄から常法に従って油脂を抽出することによって、本発明の(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを強化した卵黄油が得られる。また、この卵黄油を乳児用調製乳、未熟児用調製乳、幼児用食品、妊産婦用食品に添加することも本発明に含まれる。
【００６２】
さらに本発明は、本発明の油脂を含有する乳児用調製乳、未熟児用調製乳、幼児用食品、妊産婦用食品に関する。特に育児用粉乳に関しては、その成分をできるだけ人乳に近似させようとする試みが古くから行われており、人乳中の主要成分である蛋白質、脂肪、糖質などのそれぞれに関して人乳に類似化することが重要課題となっている。特に脂肪に関しては本来母乳に含まれている高度不飽和脂肪酸が、従来の育児用粉乳に欠乏していることが問題となっている。なお、母乳中の不飽和脂肪酸の組成については、種々の報告があり、例えば、「INFORM」[Vol.6，No.8, pp.940-946 (1995年8月)]にはアメリカ人、ヨーロッパ人およびアフリカ人の母乳中の高度不飽和脂肪酸組成が、「JJPEN」[Vol.13，No.9，pp.765-772 (1991)]には日本人の母乳の高度不飽和脂肪酸組成が記載されている。
【００６３】
最近ではアラキドン酸およびＤＨＡは同じく人乳中に含まれており、乳児の発育に役立つとの報告がある[「Advances in Polyunsaturated Fatty Acid Research」, Elsevier Science Publishers，pp.261-264,(1993)]。さらに、胎児の身長や脳の発育における重要性が報告されている[Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 90, 1073-1077 (1993)、 Lancet, 344, 1319-1322 (1994)]。
【００６４】
そこで、人乳と調製粉乳の脂肪酸組成の大きな違いであるアラキドン酸およびＤＨＡを調製粉乳に添加しようとする動きがある。このようにＤＨＡを添加する目的で、魚油添加の調製粉乳が上市されてきているが、本来、母乳中には魚油に含まれるＥＰＡはほとんど含まれていない。最近の研究によりＥＰＡは未熟児の成育には不都合であることが明らかとなり[「Advances in Polyunsaturated Fatty Acid Research」，Elsevier Science Publishers, pp.261-264,(1993)]、米国特許第５３７４６５７号には、ＥＰＡが少ないＤＨＡ含有細胞食用油とアラキドン酸含有細胞食用油を組み合わせた幼児用調製乳添加用の油脂が開示されている。しかし、従来知られている調製乳や調製乳添加用油脂において、本来母乳に含まれている(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを含有する油脂を使用することは全く知られていなかった。
【００６５】
本発明の油脂、例えばシゾキトリウム属ＳＲ２１株またはこれと同一の種に属するかもしくは実質的に同一の菌学的性質を有する菌株由来の油脂は、(ｎ-６)系ＤＰＡ１重量部に対して(ｎ-３)系ＤＨＡを３〜６重量部含有しており、ＥＰＡをほとんど含有していないため、さらに８５％以上がトリグリセリドであるため、母乳に類似した育児用調製乳を製造するのに適している。
【００６６】
さらに本発明は、本発明の油脂を配合した栄養補助食品、老人用食品、健康食品などの食品に関する。本発明の食品は、(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡを補うことを目的とし、健康維持などに用いられる。その形態は、固形または液状の食品または嗜好品のいずれであってもよい。油脂を含む食品として、例えば、肉、魚、ナッツ等の天然食品、中華料理、ラーメン、スープ等の調理時に油脂を加える食品、天ぷら、フライ、油揚げ、チャーハン、ドーナッツ、かりん糖等の熱媒体として油脂を用いた食品、バター、マーガリン、マヨネーズ、ドレッシング、チョコレート、即席ラーメン、キャラメル、ビスケット、クッキー、ケーキ、アイスクリーム等の油脂食品または加工時に油脂を加えた加工食品、おかき、ハードビスケット、あんパン等の加工仕上げ時に油脂を噴霧または塗布した食品等を挙げることができる。しかし、本発明の食品は油脂を含む食品に限定されるわけではなく、例えば、パン、めん類、ごはん、菓子類(キャンデー、チューインガム、グミ、錠菓、和菓子)、豆腐およびその加工品などの農産食品、清酒、薬用酒、みりん、食酢、醤油、味噌などの発酵食品、ヨーグルト、ハム、ベーコン、ソーセージなどの畜産食品、かまぼこ、揚げ天、はんぺんなどの水産食品、果汁飲料、清涼飲料、スポーツ飲料、アルコール飲料、茶などの飲料等も挙げることができる。
【００６７】
本発明の食品は、所定量の本発明の油脂を、食品原料とともに配合し、一般の製造法により加工製造することができる。その配合量は剤形、食品の形態性状により異なり、特に限定されるものではないが、一般には食品全量に対して０.００１〜５０重量％が好ましい。
【００６８】
さらに本発明は、本発明の油脂を配合した機能性食品(特定保健用食品を含む)に関する。本発明の機能性食品は、(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡの有する生理活性機能を発揮することを目的とし、機能低下した状態を健康な状態に戻し、維持するための、または機能低下を予防するための食品である。形態としては医薬製剤の形態であってもよいし、また、例えば蛋白質(蛋白質源としてはアミノ酸バランスのとれた栄養価の高い乳蛋白質、大豆蛋白質、卵アルブミン等の蛋白質が最も広く使用されるが、これらの分解物、卵白のオリゴペプチド、大豆加水分解物等の他、アミノ酸単体の混合物も使用される)、糖類、脂肪、微量元素、ビタミン類、乳化剤、香料等に本発明の油脂が配合された自然流動食、半消化態栄養食および成分栄養食や、ドリンク剤、経腸栄養剤等の加工形態を挙げることができるが、前記の飲食品の形態であってもよい。
【００６９】
本発明の機能性食品、栄養補助食品は、本発明の油脂を用いて、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、トローチ、内用液剤、懸濁剤、乳剤、シロップ剤、ドリンク剤、自然流動食、半消化態栄養食、成分栄養食、経腸栄養剤等の形態を有する飲食品として製造することができる。この際、本発明の油脂とともにいずれの栄養成分あるいは機能性成分を配合してもよい。また、医師の指示に基づく栄養士の管理下に、病院給食の調理の際に任意の食品に本発明の油脂を加え、その場で調整した食事を、(ｎ-６)系ＤＰＡおよび(ｎ-３)系ＤＨＡが低下している患者に与えることもできる。
【００７０】
さらに本発明は、本発明の油脂を、医薬品単体の製造に利用することに関する。即ち、本発明の油脂を出発原料として、(ｎ-６)系ＤＰＡもしくは(ｎ-３)系ＤＨＡまたはこれらの誘導体を製造することに関する。(ｎ-６)系ＤＰＡもしくは(ｎ-３)系ＤＨＡまたはそれらの混合物は、遊離の形であっても、また薬剤として許容されうる塩、例えばナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩、または他のアルカリ金属塩、亜鉛塩、カルシウム塩、マグネシウム塩のような他の金属の塩の形態や、モノグリセリド、ジグリセリド、トリグリセリド、低級アルコールのエステル、リン脂質、糖脂質、アミド等の種々の形態であってもよい。ここで低級アルコールとは炭素数６以下の一価アルコールを指し、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノール、ペンタノール、ヘキサノールなどを例示することができる。
【００７１】
さらに本発明は、本発明の油脂を含有する化粧品に関する。本発明の化粧品は、常法に従い本発明の油脂を、通常の化粧料として知られる種々の形態の基剤に配合して調製することができる。化粧料の形態の例としては、特に限定されないが、例えば、乳液、クリーム、化粧水、パック、分散液、洗浄料等の化粧品とすることができる。化粧料の基剤としては、化粧料の形態に応じた基剤、例えば、精製水、低級アルコール類、多価アルコール類、油脂類、界面活性剤、各種美容成分、紫外線吸収剤、増粘剤、色素、防腐剤、香料等を用いることができる。
【００７２】
さらに本発明は、本発明の油脂を含有する洗浄剤に関する。本発明の洗浄剤としては、薬用あるいは非薬用にかかわらず、身体を清浄に保つために一般に用いられる石鹸、シャンプー、フェイシアルクリーム、リンスなどが含まれ、さらに入浴剤なども含まれる。また、食器などの日常の家庭で用いる器具などの洗剤であってもよい。
【００７３】
【実施例】
以下に実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
実施例１ シゾキトリウム属ＳＲ２１株による油脂の生産(１)
グルコース６０g、ポリペプトン２０g、酵母エキス１０gおよび５０％濃度の人工海水１Ｌからなる培地(Ａ)、またはグルコース９０g、ポリペプトン１０g、コーンスチープリカー１０gおよび５０％濃度の人工海水１Ｌからなる培地(Ｂ)を用いて、ジャーファーメンター(培養槽容量５Ｌ、培地量３Ｌ)での培養を行った。培養は、培養温度２５℃、通気量０.５vvM、および撹拌速度２００rpmで行った。
培養後、遠心分離法により菌体を集めて凍結乾燥し、重量法により培地１Ｌ当たりの菌体量を求めた。次いで、この乾燥菌体にクロロホルム／メタノール(２:１、v／v)混合液を加え、ガラスビーズの存在下でホモジナイズすることにより、菌体の破砕と油脂の抽出を行った。抽出液をＦolch法により洗浄した後、溶媒を留去して精製油脂を得、その重量を求めた。
得られた精製油脂の脂肪酸組成を評価するため、油脂の一部について、油脂を１０％ＨＣlを含むメタノール溶液とジクロロメタンの等量混合液に溶解し、６０℃で２時間熱処理することにより脂肪酸メチルエステルを調製し、油脂の脂肪酸組成をガスクロマトグラフ法により分析した。ガスクロマトグラフィーの分離条件は次のようである。

【００７４】
これらの結果を表２および表３に示す。
【表２】

【表３】

【００７５】
以上の結果から、シゾキトリウム属ＳＲ２１株は、実用的な培養法である通気撹拌培養でも良好な増殖を示すとともに、油脂を効率よく蓄積することが示された。また、高度不飽和脂肪酸としては、ドコサヘキサエン酸(ＤＨＡ)が極めて高い濃度で含有され、さらにドコサペンタエン酸(ＤＰＡ)も含有されているが、アラキドン酸(ＡＡ)およびエイコサペンタエン酸(ＥＰＡ)をほとんど含まないことが示された。この結果は、それら脂肪酸を１０重量％前後含んでいる魚油とは大きく異なっている。
【００７６】
実施例２
実施例１により得られた油脂に含まれるドコサヘキサエン酸(ＤＨＡ)、エイコサペンタエン酸(ＥＰＡ)などの(ｎ-３)系脂肪酸それぞれの含有割合と、全(ｎ-３)系脂肪酸に対するＤＨＡの割合を表４に示す。
【表４】

【００７７】
表からわかるように、シゾキトリウム属ＳＲ２１株より得られる油脂は魚油に多く含まれるＥＰＡの含有割合が１.０重量％以下であり、また、全(ｎ-３)系脂肪酸に対するＤＨＡ含有割合が９８重量％以上である。これらのことは、魚油がＥＰＡを１０重量％前後含んでいることに比べると、該菌株がＤＨＡの濃縮、分離および精製の操作を容易にする利点を持っていることを示すものである。
【００７８】
参考例 既知微生物との比較
既知の微生物とシゾキトリウム属ＳＲ２１株とのＤＨＡおよびＥＰＡ生産能の比較を行った。
表５に、微生物としてスラウストキトリウム・アウレウム(ＡＴＣＣ３４３０４)を用いて培養を行ってＤＨＡの生産を行った場合[P.Bajapai, P.K.BajapaiおよびO.P.Ward, Appl.Microbiol.Biotechnol. 35：706 (1991)、A.KendricおよびC.Ratledge, Lipids 27：15 (1992)、およびP.K.Bajapai,P.BajapaiおよびO.P.Ward, J.Am.Oil Chem.Soc., 68：509 (1991)を引用]、微生物としてジャポノキトリウム sp.(ＡＴＣＣ２８２０７)を用いて培養を行ってＤＨＡの生産を行った場合(特開平１−１９９５８８号公報を引用)、および微生物としてシゾキトリウム・アグレガタム(ＡＴＣＣ２８２０９)を用いて培養を行ってＤＨＡの生産を行った場合[A.KendricおよびC.Ratledge, Lipids 27：15 (1992)を引用]、ならびに、シゾキトリウム属ＳＲ２１株を用いて培養を行ってＤＨＡの生産を行った上記の実験Ｎo.３０１および３０２の、培地１Ｌ当たりの菌体量、乾燥菌体当たりの油脂または脂肪酸含有割合、全脂肪酸中のＤＨＡ含有割合、ＥＰＡ含有割合および培地１Ｌ当たりのＤＨＡ量を示す。
【００７９】
【表５】

【００８０】
表５に示したように、シゾキトリウムＳＲ２１株を用いて培養を行うと既知の微生物と比較して培地当たりの菌体量が非常に多く、ＳＲ２１株は増殖性が優れるということがわかる。また、シゾキトリウムＳＲ２１株は既知の微生物と比較して油脂の含有割合も非常に高い。また、全脂肪酸中のＤＨＡ含有割合も３０重量％と高いことから、培地１Ｌ当たりのＤＨＡ量は、従来公知の微生物を用いた場合と比較して１０〜１００倍程度と高い値となり、ＳＲ２１株はきわめて高いＤＨＡ生産能を有することが明らかである。さらに、既知の微生物によれば、ＥＰＡ含有割合が数重量％の油脂が得られるのに対し、シゾキトリウム属ＳＲ２１株によれば、ＥＰＡ含有割合が０.５重量％以下と極めて低い油脂が得られることがわかる。
【００８１】
実施例３ シゾキトリウム属ＳＲ２１株による油脂の生産(２)
グルコース６０g／Ｌ、コーンスチープリカー０.５g／Ｌ、リン酸カリウム３g／Ｌ、硫酸アンモニウム２g／Ｌおよび５０％人工海水からなる培地を用いて、ジャーファーメンター(５Ｌ容量、培地量３Ｌ)により約６０時間培養を行った。培養条件は、培養温度２８℃、通気量１.０v.v.m.、撹拌速度３００rpm、１０％水酸化ナトリウムによりpＨ４にコントロールして行った。
培養終了後、遠心分離により集菌し、凍結乾燥後に秤量することにより、培地１Ｌあたり約２０gの乾燥菌体を得た。
油脂の抽出は、常法に従い、乾燥菌体にクロロホルム／メタノール(２:１、v／v)を混合し、ガラスビーズの存在下でホモジナイズすることにより行った。６０gの乾燥菌体より得られた粗抽出油脂は３６gであった。
この粗抽出油脂を、常法に従い、メチルエステル化し、ガスクロマトグラフィーにより脂肪酸組成を調べたところ表６に示す組成であった。
【００８２】
【表６】

【００８３】
実施例４ ドコサペンタエン酸の単離および同定
粗抽出脂肪酸の高度不飽和脂肪酸の濃度を上昇させるため、常法に従い、尿素付加を行って飽和脂肪酸を除去した。即ち、実施例３に示した方法で調製した粗抽出脂肪酸約９gに尿素２０g、メタノール２００mlを加え、６０℃で３時間加熱した後、１０℃まで徐冷した。析出した尿素結晶を濾過後、非結晶溶液分を濃縮し、尿素非付加物約４gを得た。この尿素非付加物の脂肪酸組成は、ドコサペンタエン酸１７.７％、ドコサヘキサエン酸７７.９％であり、その他の脂肪酸の混入率は５％以下であった。
上記処理によって得た尿素非付加物につき、液体クロマトグラフィー(ＯＤＳカラム、移動相 アセトニトリル：水＝９７.５：２.５、検出 ＵＶ)を行ってドコサペンタエン酸を分取した。これにより、純度９９％以上のドコサペンタエン酸を約３.２g得た。
【００８４】
また、ドコサペンタエン酸の二重結合位置を決定するため、常法に従い、脂肪酸をピコニルエステル誘導体にした後、ＧＣ／ＭＳで解析した。即ち、上記で得られた尿素非付加脂肪酸２０μgにチオニルクロライド１００μlを加え、１分間室温に放置した後、窒素気流下で乾燥させた。これに１０％３-ピリジルカルボニル１０μlを加え、１分間室温に放置した後、ＧＣ／ＭＳで分析を行った。この結果、図４に示したように、ＳＲ２１株が生産するドコサペンタエン酸(２２：５)は、不飽和結合を△４,７,１０,１３,１６の位置に持つ(ｎ-６)系不飽和脂肪酸であると同定された。
【００８５】
実施例５ シゾキトリウム属ＳＲ２１株の脂肪酸分析
粗抽出油脂は、実施例３により得られたものを用いた。この粗抽出油脂を、常法に従い、ヘキサンと９０％メタノールによる液／液分配により、中性脂質と極性脂質を分離した。得られた脂質量はそれぞれ極性脂質１.８g、中性脂質３２.９gであった。この脂質を加水分解後、メチルエステル化し、ガスクロマトグラフィーにより脂肪酸組成を分析した。
【００８６】
分析結果は下記の通りである。
【表７】

【００８７】
実施例６ フォスファチジルコリンの脂肪酸残基の分析
実施例５で得られた極性脂質中のフォスファチジルコリンを、液体クロマトグラフィーにより分離および分取した。
分離条件は次のようであった。

【００８８】
分取したフォスファチジルコリンを液体クロマトグラフィーにより分子種に分離し、それらを分取した後、加水分解メチルエステル化してガスクロマトグラフィー法で脂肪酸残基を決定した。
液体クロマトグラフィーの分離条件は次のようであった。

また、ガスクロマトグラフィーの分離条件は次のようであった。

この結果、ＳＲ２１株のフォスファチジルコリンの分子種は、主に１６：０−２２：６、１６：０−２２：５、２２：５−２２：６、２２：６−２２：６であることがわかった。
【００８９】
実施例７ シゾキトリウム属ＳＲ２１株の脂質分析
実施例５で得られた中性脂質と極性脂質を、常法に従い、薄層クロマトグラフィーにより分析を行った。発色は硫酸を用いて行い、得られるスポットの同定は各標準脂質とのＲf値により決定した。中性脂質は９０％以上がトリグリセリドであった。また、極性脂質は、大部分がフォスファチジルコリン(６０〜８０重量％)であり、次いでフォスファチジルエタノールアミン(５〜２０重量％)、フォスファチジルイノシトール(２〜８重量％)であった。
また中性脂質中のトリグリセリドを、常法に従い、液体クロマトグラフィー(ＯＤＳカラム、移動相アセトン:アセトニトリル＝３:２、示差屈折検出計)により分子種を分離し(図５)、分取後、加水分解メチルエステル化し、ガスクロマトグラフィーにより脂肪酸残基を決定した。
【００９０】
結果は下記の通りである。
【表８】

この７種類のトリグリセリドが、全トリグリセリド中の７０重量％以上を占めた。このトリグリセリドの最大分子種は、１６:０−１６:０−２２:６であり、全トリグリセリドの約２７重量％を占めていた。
【００９１】
実施例８ トリグリセリドの脂肪酸残基結合位置決定
実施例７で分画したトリグリセリド(分子種１６:０−１６:０−２２:６)を、乾燥後、１,３位に特異的なリパーゼで処理し、得られる２−モノグリセリドをトリメチルシリル化した後にＧＣ／ＭＳにより脂肪酸残基を決定した。リパーゼ処理は、５０mＭ酢酸緩衝液(pＨ５.５)２ml、リパーゼ１０００単位、３５℃、３０分間行った。反応終了後、エーテルにより抽出し、市販のトリメチルシリル化剤を用いて、２−モノグリセリドをトリメチルシリル化した。結果は図６に示したように、２２:６が結合したモノグリセリドの分子量に相当するフラグメントピークが得られ、本トリグリセリドは２２:６の脂肪酸残基がグリセロール骨格の２位に結合している、１６:０−２２:６−１６:０であった。
【００９２】
実施例９ 窒素濃度の影響
培地１Ｌ当たり、６０gのグルコース、３gのリン酸二水素カリウム、０.５gのコーンスチープリカーを加えた２分の１濃度の人工海水培地に表９に示す濃度で硫酸アンモニウムを添加し、この培地３Ｌを５Ｌ容積のジャーファーメンターに入れた。この培地に、実施例３と同様に調製した前培養液６０mlを添加し、培養を行った。培養は２８℃、１v.v.m.、３００rpm、pＨ４.０の条件で行った。
グルコースの消費後に、培養液１００mlを採取して遠心分離法で菌体を集めた。この菌体を洗浄し、凍結乾燥装置によって乾燥菌体を得た。この乾燥菌体の重量を測定して、培地１Ｌ当たりの菌体量を求めた。
次いで、実施例３と同様の方法で培地１Ｌ当たりの菌体量、培地１Ｌ当たり全脂肪酸含有割合、および培地１Ｌ当たりのＤＨＡ量、ＤＰＡ量を求めた。その結果を表９に示す。
【００９３】
【表９】

硫酸アンモニウム濃度を２.０〜３.０g／Ｌとした場合に良好な生育を示した。また、硫酸アンモニウム濃度を０.５〜１.０g／Ｌとすると脂肪酸含有割合が７０％以上に増加していた。
【００９４】
実施例１０ 有機窒素源と無機窒素源の影響
培地１Ｌ当たり、６０gのグルコース、３gのリン酸二水素カリウム、０.５gのコーンスチープリカーを加えた２分の１濃度の人工海水培地に、表１０に示す濃度で窒素源の濃度を一定にして、有機窒素源としてコーンスチープリカー(ＣＳＬ)と無機窒素源として硫酸アンモニウムの２つの割合を変えて添加した。この培地３Ｌを５Ｌ容積のジャーファーメンターに入れ、実施例３と同様に調製した前培養液６０mlを添加し、実施例３と同一の条件で培養を行った。
グルコースの消費後に、培養液１００mlを採取して遠心分離法で菌体を集めた。この菌体を洗浄し、凍結乾燥装置によって乾燥菌体を得た。この乾燥菌体の重量を測定して、培地１Ｌ当たりの菌体量を求めた結果を表１０に示す。
次いで、実施例３と同様の方法で培地１Ｌ当たりの菌体量、培地１Ｌ当たりの全脂肪酸含有割合、および培地１Ｌ当たりのＤＨＡ量、ＤＰＡ量を求めた。その結果を表１０に示す。
【００９５】
【表１０】

いずれの組成比においても良好な生育を示し、本菌は有機窒素、無機窒素の区別なく消費して生育する。また、ＤＨＡ、ＤＰＡの生産性にもあまり変化は見られない。
【００９６】
実施例１１ 高濃度培養
培地１Ｌ当たり、３gのリン酸二水素カリウムを加えた２分の１濃度の人工海水培地に、表１１に示す濃度でグルコース、コーンスチープリカー、硫酸アンモニウムを添加した。この培地３Ｌを５Ｌ容ジャーファーメンターに入れ、実施例３に示す培養条件で培養を行った。
グルコースの消費後に、培養液１００mlを採取して遠心分離法で菌体を集めた。この菌体を洗浄し、凍結乾燥装置によって乾燥菌体を得た。この乾燥菌体の重量を測定して、培地１Ｌ当たりの菌体量を求め、次いで、実施例３と同様の方法で培地１Ｌ当たりの菌体量、培地１Ｌ当たりの全脂肪酸量、乾燥菌体当たりの脂肪酸含有割合、全脂肪酸中のＤＨＡ、ＤＰＡ含有割合、および培地１Ｌ当たりのＤＨＡ、ＤＰＡ量を求めた。その結果を表１１に示す。
【００９７】
【表１１】

これらの結果から、本菌は炭素源と窒素源濃度を増加させることにより、グルコース濃度の増加に応じて、ＤＨＡ、ＤＰＡの生産量も増加することが明らかとなった。
【００９８】
実施例１２ 撹拌数の影響
実施例３と同一の培地組成および培養条件で、培養槽の撹拌数を１００rpmおよび３００rpmにして培養を行った。グルコース消費時間が、１００rpmでは１００時間程度かかっていたのが、３００rpmでは約半分の５０〜６０時間となった。一方、培地１Ｌ当たりの脂肪酸量、ＤＨＡ量、ＤＰＡ量については３００rpmの方がわずかに多かった(表１２)。
【表１２】

【００９９】
実施例１３
実施例１１に従って製造した培養液を集め、フィルタープレスにて液を除去し乾燥させ、水分１０％含有の菌体１０kgを得た。この菌体を常法に従いヘキサン抽出し、ヘキサンを除去した後、５.９kgの油脂を得た。またヘキサン抽出後の菌体を乾燥させヘキサンを除去した後、３.９kgの油抽出残菌体を得た。この油脂は、３５％のＤＨＡと８％のＤＰＡを含有していた。また油抽出残菌体には、１.２％のＤＨＡと０.３％のＤＰＡを含有していた。
【０１００】
実施例１４
イザブラウン種２００食日の採卵鶏１群５羽として２群にわけた。１群は対照群として通常の飼料で２５日間飼育した。残りの群は実験群として、実施例１３により得られた油脂を毎日５gの量で通常の飼料に加え２５日間飼育した。
２５日目の卵３個分の卵の重量、卵黄重量、ＤＨＡ濃度、ＤＰＡ濃度、卵黄の照り、卵黄の味を測定した。結果を表１３に示す。油脂を加えて飼育することにより、明らかに卵黄中のＤＨＡ、ＤＰＡ含有率は増加した。また、照りがよく、とろける感じの卵黄を得ることができた。
【表１３】

【０１０１】
実施例１５
イザブラウン種２００食日の採卵鶏を２群にわけた。１群は対照群として５羽を通常の飼料で２５日間飼育した。残りの群は実験群として３羽を、通常の飼料を対照群より５０g減じ、その分を補うために実施例１３により得られた油抽出残菌体５０gを加え２５日間飼育した。
２５日目の卵３個分の卵の重量、卵黄重量、ＤＨＡ濃度、ＤＰＡ濃度、卵黄の照り、卵黄の味を測定した。結果を表１４に示す。油抽出残菌体を加えて飼育することにより、明らかに卵黄中のＤＨＡ、ＤＰＡ含有率は増加した。また、照りがよく、とろける感じの卵黄を得ることができた。
【表１４】

【０１０２】
実施例１６ (n-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有ミルクの調製
粉末ミルク用原料１００gに、実施例１４で得られた卵黄から常法に従って抽出した(n-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有卵黄油[(n-６)系ドコサペンタエン酸０.８、ＤＨＡ３.５％含有]６gを混合することにより(n-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有ミルクを調製した。このミルクの全脂肪酸に対する(n-６)系ドコサペンタエン酸の割合は０.１９％、ＤＨＡの割合は０.８４％となり、従来の調製乳に不足していた(n-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡを母乳に近づけることができた。
【０１０３】
実施例１７ (ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有ミルクの調製
実施例５で得られた粗抽出油脂を、常法に従い、ヘキサンと９０％メタノールによる液／液分配により、中性脂質と極性脂質とに分離し、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡを含有する中性脂質[(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸７.９、ＤＨＡ３３.７％含有]を得た。この油０.６gを、粉末ミルク用原料１００gに混合することにより(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有ミルクを調製した。このミルクの全脂肪酸に対する(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸の割合は０.１９％、ＤＨＡの割合は０.８０％となり、従来の調製乳に不足していた(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡを母乳に近づけることができた。
【０１０４】
実施例１８ (ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有セプセルの調製
【表１５】

上記成分からなるソフトカプセル剤皮の中に、実施例１１で得られた(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有微生物オイル３００mgを常法により充填し、ソフトカプセル剤を得た。
【０１０５】
実施例１９ (ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有飲料の調製
容器中に市販のプレーンヨーグルト５０gと実施例１１で得られた(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸およびＤＨＡ含有微生物オイル５０％とβ−シクロデキストリン１gを入れ、これを約３分間撹拌して乳化させ、Ｗ／Ｏ／Ｗ、Ｏ／Ｗ／Ｏ型などが混在するエマルジョンを得た。
【０１０６】
実施例２０ ＤＨＡとＤＰＡを含有する微小餌料生物用餌料の製造
実施例３に従って製造した培養液を集め、フィルタープレスにて液を除去し菌体を得た。得られた菌体を１０５℃で３時間、加熱乾燥し、コーヒーミルにより、パウダー化した。得られたパウダーまたはコントロールとしてパン酵母を用いて、ワムシ、およびブラインシュリンプの培養を行った。
培養方法は、海水２００Ｌを３００Ｌの水槽に入れ、通気条件下、２３℃で、ワムシは１mlあたり１００個体、ブラインシュリンプは１mlあたり２０個体放養し、餌料として、それぞれ１g／１０⁶個ワムシ１日、１g／１０⁵個ブラインシュリンプ１日になるように上記の菌体パウダーまたはパン酵母を与えた。ワムシまたはブラインシュリンプにこれらを摂取して生育し、３日目にサンプリングして構成脂肪酸組成を調べた結果、表１６および表１７のようになった。
【０１０７】
結果が示す通り、ワムシにおいてもブラインシュリンプにおいても、ＤＨＡ、ＤＰＡの蓄積がパン酵母より好成績であった。
【表１６】

【表１７】

【０１０８】
【発明の効果】
本発明において用いる海洋性微生物は、増殖性および油脂蓄積性に優れ、(ｎ-３)系ＤＨＡおよび(ｎ-６)系ＤＰＡの生産能が高く、かつＥＰＡの生産が極めて少ない。従って、この微生物を用いて、(ｎ-３)系ＤＨＡおよび(ｎ-６)系ＤＰＡの含有量が高く、かつＥＰＡの含有量が低い油脂を高収率で製造することができる。また、この油脂から純度の高い(ｎ-３)系ＤＨＡまたは(ｎ-６)系ＤＰＡを分離することもできる。
また、本発明の油脂は、種々の生理活性を有する(ｎ-３)系ＤＨＡとともに(ｎ-６)系ＤＰＡを高濃度で含有するため、該油脂を種々の食品、飼料および餌料に添加して、(ｎ-３)系ＤＨＡおよび(ｎ-６)系ＤＰＡを必要とする対象にこれら高度不飽和脂肪酸を安定的かつ効率的に供給することができる。特に、動物用飼料または動物用飼料添加物、微小餌料生物用餌料では、ＤＨＡおよびＤＰＡを含有する培養菌体の抽出残渣なども使用できるため、非常に経済的である。また、上記の動物用飼料を家禽に与えることによって、今までになかったＤＨＡおよびＤＰＡを強化した家禽卵または卵黄油を得ることができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】 シゾキトリウム属ＳＲ２１株の遊走子の形態を示す光学顕微鏡写真である。
【図２】 シゾキトリウム属ＳＲ２１株の遊走子の鞭毛の形態を示す透過型電子顕微鏡写真である。
【図３】 シゾキトリウム属ＳＲ２１株の栄養細胞塊と原形質のネットワークの形態を示す光学顕微鏡写真である。
【図４】 シゾキトリウム属ＳＲ２１株由来の(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸のＧＣ／ＭＳスペクトルを測定した結果を示すチャートである。
【図５】 シゾキトリウム属ＳＲ２１株由来の中性油脂中のトリグリセリドを液体クロマトグラフィーにより分離した結果を示すチャートである。
【図６】 シゾキトリウム属ＳＲ２１株由来のトリグリセリド(分子種１６：０−１６：０−２２：６)をリパーゼ処理し、次いでトリメチルシリル化した後にＧＣ／ＭＳで測定した結果を示すチャートである。

Claims (1)

1. ( ｎ - ６ ) 系ドコサペンタエン酸の生産能を有するシゾキトリウム属ＳＲ２１株 ( ＦＥＲＭ ＢＰ−５０３４ ) を培地中で培養し、培養物から(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸含有油脂を採取し、該油脂から(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸を単離することを特徴とする、(ｎ-６)系ドコサペンタエン酸の製造方法。

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