JP3480926B2 - アレルギー反応抑制剤 - Google Patents
アレルギー反応抑制剤Info
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- JP3480926B2 JP3480926B2 JP2000369982A JP2000369982A JP3480926B2 JP 3480926 B2 JP3480926 B2 JP 3480926B2 JP 2000369982 A JP2000369982 A JP 2000369982A JP 2000369982 A JP2000369982 A JP 2000369982A JP 3480926 B2 JP3480926 B2 JP 3480926B2
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Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】この発明は、メシマコブ（Ｐ
ｈｅｌｌｉｎｕｓｌｉｎｔｅｕｓ、以下単にＰＬともい
う）の菌糸体由来物質（メシマコブ菌糸体の培養濾液を
含む）を含有するアレルギー反応抑制剤に関するもので
ある。
ｈｅｌｌｉｎｕｓｌｉｎｔｅｕｓ、以下単にＰＬともい
う）の菌糸体由来物質（メシマコブ菌糸体の培養濾液を
含む）を含有するアレルギー反応抑制剤に関するもので
ある。
【０００２】
【従来の技術】メシマコブ子実体の熱水抽出物は、サル
ノコシカケ科のキノコの中でも最も高い抗腫瘍効果が認
められているものである（J.Cancer Res. (Gann). 59 :
155-157) 。
ノコシカケ科のキノコの中でも最も高い抗腫瘍効果が認
められているものである（J.Cancer Res. (Gann). 59 :
155-157) 。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、メシマ
コブの子実体又は菌糸体に関し、アレルギー反応抑制作
用は知られていない。そこで発明者は、メシマコブの薬
理効果として、アレルギー反応抑制作用に着目して鋭意
研究したところ、メシマコブの菌糸体由来物質、又はメ
シマコブ菌糸体の培養濾液には、顕著なアレルギー反応
抑制作用が存在することを知り本発明を完成した。
コブの子実体又は菌糸体に関し、アレルギー反応抑制作
用は知られていない。そこで発明者は、メシマコブの薬
理効果として、アレルギー反応抑制作用に着目して鋭意
研究したところ、メシマコブの菌糸体由来物質、又はメ
シマコブ菌糸体の培養濾液には、顕著なアレルギー反応
抑制作用が存在することを知り本発明を完成した。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本願発明は、下記の請求
項１〜請求項５により構成されている。 請求項１：メシマコブの菌糸体由来物質を含有すること
を特徴とするアレルギー反応抑制剤。 請求項２：メシマコブの菌糸体由来物質が、下記の
（１）〜（３）に記載する工程を順次経て得られるメシ
マコブ菌糸体の熱水抽出物である請求項１に記載するア
レルギー反応抑制剤。 （１） 液体培地でメシマコブの菌糸体を培養する工程
（２） 培養液からメシマコブの菌糸体を分離する工程 （３） メシマコブの菌糸体から熱水抽出物を得る工程 請求項３：メシマコブの菌糸体由来物質が、メシマコブ
菌糸体培養濾液である請求項１に記載するアレルギー反
応抑制剤。 請求項４：メシマコブ菌糸体、又はメシマコブ菌糸体培
養濾液が、下記の（１）〜（４）の条件を採用したメシ
マコブ菌糸体の培養方法により得られるものを用いる請
求項１〜請求項３に記載するアレルギー反応抑制剤。 （１） 液体培地にメシマコブ菌糸体を接種して、２２
℃〜３５℃で培養すること。 （２） 液体培地の炭素源として、グルコース、マンノ
ース、ガラクトース、スクロース、トレハロース、セロ
ビオース、マルトース、ラクトース、ラフィノースから
選択される１以上の糖類を使用すること。 （３） 好気的条件下で培養すること。 （４） 培養開始時の培地のｐＨを４．５〜６．５とす
ること。 請求項５：メシマコブ菌糸体の培養方法として、（イ）
培養期間が１０日以上であり、（ロ）通気培養を行な
い、かつ（ハ）炭素源として３〜５％のグルコース、ス
クロース、又は／及びトレハロースを含有させた培養基
を用いる請求項４記載のアレルギー反応抑制剤。
項１〜請求項５により構成されている。 請求項１：メシマコブの菌糸体由来物質を含有すること
を特徴とするアレルギー反応抑制剤。 請求項２：メシマコブの菌糸体由来物質が、下記の
（１）〜（３）に記載する工程を順次経て得られるメシ
マコブ菌糸体の熱水抽出物である請求項１に記載するア
レルギー反応抑制剤。 （１） 液体培地でメシマコブの菌糸体を培養する工程
（２） 培養液からメシマコブの菌糸体を分離する工程 （３） メシマコブの菌糸体から熱水抽出物を得る工程 請求項３：メシマコブの菌糸体由来物質が、メシマコブ
菌糸体培養濾液である請求項１に記載するアレルギー反
応抑制剤。 請求項４：メシマコブ菌糸体、又はメシマコブ菌糸体培
養濾液が、下記の（１）〜（４）の条件を採用したメシ
マコブ菌糸体の培養方法により得られるものを用いる請
求項１〜請求項３に記載するアレルギー反応抑制剤。 （１） 液体培地にメシマコブ菌糸体を接種して、２２
℃〜３５℃で培養すること。 （２） 液体培地の炭素源として、グルコース、マンノ
ース、ガラクトース、スクロース、トレハロース、セロ
ビオース、マルトース、ラクトース、ラフィノースから
選択される１以上の糖類を使用すること。 （３） 好気的条件下で培養すること。 （４） 培養開始時の培地のｐＨを４．５〜６．５とす
ること。 請求項５：メシマコブ菌糸体の培養方法として、（イ）
培養期間が１０日以上であり、（ロ）通気培養を行な
い、かつ（ハ）炭素源として３〜５％のグルコース、ス
クロース、又は／及びトレハロースを含有させた培養基
を用いる請求項４記載のアレルギー反応抑制剤。
【０００５】本願発明を以上のように構成する主な理由
は、メシマコブの子実体を栽培しようとする研究は、現
在活発に行われているものの、未だ大型の子実体を得る
までには数年を要するので、大量培養が比較的容易な菌
糸体及びその培養液に着目したことによる。なお、本願
発明に係るメシマコブ菌糸体の培養濾液とは、液体培地
にメシマコブ菌糸体を接種して培養したものから、遠心
分離機、又は濾過装置により菌糸体を分離した残りの培
養液をいう。本願発明に係るメシマコブ菌糸体の熱水抽
出物、又はメシマコブの菌糸体培養濾液は、その成分の
まま、又は適宜賦形剤（乳糖、デキストリン等）を添加
して乾燥粉末とすることにより、保存性が向上し、又他
の一般食品や健康食品に混入するのに適したものとな
る。
は、メシマコブの子実体を栽培しようとする研究は、現
在活発に行われているものの、未だ大型の子実体を得る
までには数年を要するので、大量培養が比較的容易な菌
糸体及びその培養液に着目したことによる。なお、本願
発明に係るメシマコブ菌糸体の培養濾液とは、液体培地
にメシマコブ菌糸体を接種して培養したものから、遠心
分離機、又は濾過装置により菌糸体を分離した残りの培
養液をいう。本願発明に係るメシマコブ菌糸体の熱水抽
出物、又はメシマコブの菌糸体培養濾液は、その成分の
まま、又は適宜賦形剤（乳糖、デキストリン等）を添加
して乾燥粉末とすることにより、保存性が向上し、又他
の一般食品や健康食品に混入するのに適したものとな
る。
【０００６】
【発明の実施の形態】（Ａ）メシマコブ菌糸体由来物質
（熱水抽出物）の乾燥粉末の製造 （イ）炭素源としてグルコースを４．０％、天然物由来
窒素源イーストエキス、及びポリぺプトンを各０．３
％、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種し、強制的に０．２２μｍフィルター
を通した無菌空気を通気量２ｌ／ｍｉｎで培地内へ通気
し、温度２８℃で１２日間培養した。 （ロ）この培養液を遠心分離機を用いて（３８，８００
×Ｇ）、菌糸体と培養（濾）液に分離した。得られたペ
レット状の菌糸体８０ｋｇ（含水率約９０％）を大型の
ミキサーを用いて破砕した後、約１０倍容の水を加えて
オートクレーブ内で加熱（１２１℃、９０分、２回処
理）した。 （ハ）前記加熱物を、遠心分離機を用いを用いて（３
８，８００Ｇ）、残渣を除き、メシマコブ菌糸体の熱水
抽出物を得た。 （ニ）この熱水抽出物を約７０℃で、約１／１０容まで
減圧濃縮した。 （ホ）濃縮物をスプレードライヤを用いて乾燥し、約
２．５ｋｇの乾燥粉末を得た。この粉末は、そのまま、
又は他の任意の食品（粉末）又は任意の健康食品（粉
末）と混合して摂取することができる。なお、前記乾燥
粉末の製造においては、熱水抽出物又はその濃縮物に、
賦形剤（通常、デキストリン、乳糖等の糖質）を添加し
てスプレードライヤにかけると粉末化が容易となる。
（熱水抽出物）の乾燥粉末の製造 （イ）炭素源としてグルコースを４．０％、天然物由来
窒素源イーストエキス、及びポリぺプトンを各０．３
％、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種し、強制的に０．２２μｍフィルター
を通した無菌空気を通気量２ｌ／ｍｉｎで培地内へ通気
し、温度２８℃で１２日間培養した。 （ロ）この培養液を遠心分離機を用いて（３８，８００
×Ｇ）、菌糸体と培養（濾）液に分離した。得られたペ
レット状の菌糸体８０ｋｇ（含水率約９０％）を大型の
ミキサーを用いて破砕した後、約１０倍容の水を加えて
オートクレーブ内で加熱（１２１℃、９０分、２回処
理）した。 （ハ）前記加熱物を、遠心分離機を用いを用いて（３
８，８００Ｇ）、残渣を除き、メシマコブ菌糸体の熱水
抽出物を得た。 （ニ）この熱水抽出物を約７０℃で、約１／１０容まで
減圧濃縮した。 （ホ）濃縮物をスプレードライヤを用いて乾燥し、約
２．５ｋｇの乾燥粉末を得た。この粉末は、そのまま、
又は他の任意の食品（粉末）又は任意の健康食品（粉
末）と混合して摂取することができる。なお、前記乾燥
粉末の製造においては、熱水抽出物又はその濃縮物に、
賦形剤（通常、デキストリン、乳糖等の糖質）を添加し
てスプレードライヤにかけると粉末化が容易となる。
【０００７】（Ｂ）メシマコブ菌糸体由来物質（培養濾
液）の乾燥粉末の製造 前記（Ａ）（ロ）で得られる培養（濾）液（固形分約
１．３％）を、約７０℃で、約１／２０容まで減圧濃縮
し、これをスプレードライヤを用いて乾燥し、約１１．
５ｋｇの乾燥粉末を得た。この粉末も、前記メシマコブ
菌糸体の熱水抽出物の乾燥粉末と同様にそのまま、又は
他の任意の食品（粉末）、又は任意の健康食品（粉末）
と混合して摂取することができる。なお、この乾燥粉末
の製造においても、培養（濾）液又はその濃縮物に、賦
形剤（通常、デキストリン、乳糖等の糖質）を添加して
スプレードライヤにかけると粉末化が容易となる）。
液）の乾燥粉末の製造 前記（Ａ）（ロ）で得られる培養（濾）液（固形分約
１．３％）を、約７０℃で、約１／２０容まで減圧濃縮
し、これをスプレードライヤを用いて乾燥し、約１１．
５ｋｇの乾燥粉末を得た。この粉末も、前記メシマコブ
菌糸体の熱水抽出物の乾燥粉末と同様にそのまま、又は
他の任意の食品（粉末）、又は任意の健康食品（粉末）
と混合して摂取することができる。なお、この乾燥粉末
の製造においても、培養（濾）液又はその濃縮物に、賦
形剤（通常、デキストリン、乳糖等の糖質）を添加して
スプレードライヤにかけると粉末化が容易となる）。
【０００８】（Ｃ）マウス及びラットを用いた一般毒性
試験結果 下記の３種のメシマコブ（Phellinus linteus;ＰＬ) 菌
糸体由来成分の乾燥粉末を検査体として、ＯＥＣＤの化
学物質毒性試験指針（１９８７）に準拠し、マウス及び
ラットを用いた単回経口投与による急性毒性試験（限度
試験）を行なった。 検査体：ＰＬ菌糸体の乾燥品をミキサーで粉末とした
もの 検査体：ＰＬ菌糸体熱水抽出物の乾燥粉末（前記
（Ａ）−（ホ）の乾燥粉末） 検査体：ＰＬ菌糸体培養濾液の乾燥粉末：（前記
（Ｂ）の乾燥粉末） 投与量は、厚生省ＧＬＰガイドラインに準じ、上記３種
のＰＬ菌糸体由来成分を検査試料として用い、限界量と
しての２，０００ｍｇ／Ｋｇとその半量である１，００
０ｍｇ／Ｋｇ投与群を設定し行なった。又、対照として
は媒体の０．５％carboxymethyl cellulose sodium sal
t(CMC-Na) 溶液投与群を用い実施した。
試験結果 下記の３種のメシマコブ（Phellinus linteus;ＰＬ) 菌
糸体由来成分の乾燥粉末を検査体として、ＯＥＣＤの化
学物質毒性試験指針（１９８７）に準拠し、マウス及び
ラットを用いた単回経口投与による急性毒性試験（限度
試験）を行なった。 検査体：ＰＬ菌糸体の乾燥品をミキサーで粉末とした
もの 検査体：ＰＬ菌糸体熱水抽出物の乾燥粉末（前記
（Ａ）−（ホ）の乾燥粉末） 検査体：ＰＬ菌糸体培養濾液の乾燥粉末：（前記
（Ｂ）の乾燥粉末） 投与量は、厚生省ＧＬＰガイドラインに準じ、上記３種
のＰＬ菌糸体由来成分を検査試料として用い、限界量と
しての２，０００ｍｇ／Ｋｇとその半量である１，００
０ｍｇ／Ｋｇ投与群を設定し行なった。又、対照として
は媒体の０．５％carboxymethyl cellulose sodium sal
t(CMC-Na) 溶液投与群を用い実施した。
【０００９】その結果次の成績が得られた。
（イ）死亡率及びＬＤ５０値
雌雄マウス、ならびに雌雄ラットに、上記菌糸体由来成
分を１，０００ｍｇ／Ｋｇ、及び２，０００ｍｇ／Ｋｇ
の割合で強制経口投与した結果、いずれの投与群におい
ても、１４日間の観察期間中に死亡例は認められなかっ
た。したがって、ＬＤ５０値は算出されず、検査体のマ
ウス及びラットにおける致死量は共に、２，０００ｍｇ
／Ｋｇ以上であると認められた。 （ロ）一般状態（中毒症状を含む）及び病理解剖検査 いずれの投与群においても、投与直後より特記すべき一
過性の中毒症状並びに一般状態の変化は認められなかっ
た。又、投与後１４日目に実施した病理解剖学的検査に
おいても主要臓器に肉眼的著変、異状は認められなかっ
た。
分を１，０００ｍｇ／Ｋｇ、及び２，０００ｍｇ／Ｋｇ
の割合で強制経口投与した結果、いずれの投与群におい
ても、１４日間の観察期間中に死亡例は認められなかっ
た。したがって、ＬＤ５０値は算出されず、検査体のマ
ウス及びラットにおける致死量は共に、２，０００ｍｇ
／Ｋｇ以上であると認められた。 （ロ）一般状態（中毒症状を含む）及び病理解剖検査 いずれの投与群においても、投与直後より特記すべき一
過性の中毒症状並びに一般状態の変化は認められなかっ
た。又、投与後１４日目に実施した病理解剖学的検査に
おいても主要臓器に肉眼的著変、異状は認められなかっ
た。
【００１０】（Ｄ）皮膚炎症モデルマウス（アトピー性
皮膚炎自然発生マウス、NC/ Nga,mouse ）を用いた動物
実験（肉眼病理所見ならびに血中ＩｇＥ総量の経時的測
定） （イ）検査体 検査体：ＰＬ菌糸体熱水抽出物の乾燥粉末（前記一般
毒性試験と同一） 検査体：ＰＬ菌糸体培養濾液の乾燥粉末（前記一般毒
性試験と同一） （ロ）マウスへの投与方法 飼料内への各検査体を下記の割合で混合したものを用い
た。 餌：検査体＝１０ｋｇ：５ｇ 皮膚炎症モデルマウスの検査体摂取量は、１．５ｍｇ／
ｄａｙ（人換算３ｇ／ｄａｙ）とした。
皮膚炎自然発生マウス、NC/ Nga,mouse ）を用いた動物
実験（肉眼病理所見ならびに血中ＩｇＥ総量の経時的測
定） （イ）検査体 検査体：ＰＬ菌糸体熱水抽出物の乾燥粉末（前記一般
毒性試験と同一） 検査体：ＰＬ菌糸体培養濾液の乾燥粉末（前記一般毒
性試験と同一） （ロ）マウスへの投与方法 飼料内への各検査体を下記の割合で混合したものを用い
た。 餌：検査体＝１０ｋｇ：５ｇ 皮膚炎症モデルマウスの検査体摂取量は、１．５ｍｇ／
ｄａｙ（人換算３ｇ／ｄａｙ）とした。
【００１１】（ハ）Ｎｃ／Ｎｇａ，ｍｏｕｓｅ，ｃｌｅ
ａｎ，ＣＶ（雄、４週齢を日本ＳＬＣより入手）を用い
て、１群１０匹の系で検査体投与群及びコントーロール
としての通常滅菌粉末飼料のみの投与群で実施した。上
記実験動物は入荷後１週間の予備飼育の後、第５週齢よ
り第１６週齢に到るまでの間を観察期間とした。検査体
については、人（体重６０ｋｇ）の経口摂取量（１日３
ｇ）より換算し、マウス平均体重（３０ｇ）より約１．
５ｍｇを１日摂取量とし、又１日の餌摂取量（５ｇ）を
目安として投与量を決定した。なお、コントロール群
は、通常の滅菌粉末飼料のみの摂取とし行なった。 血
中ＩｇＥ量の測定については、飼料摂取の１週間後（６
週齢）、４週間後（９週齢）、７週間後（１２週齢）、
１１週間後（１６週齢）の４回にわたり、マウス眼底静
脈層より採血を行ない、血清中のＩｇＥ総量の経時的変
化をマウスＩｇＥに対する特異抗体を用いたサンドイッ
チライサ法により算出した。又、投与１１週間後（１６
週齢）における肉眼的皮膚所見について、観察比較し
た。
ａｎ，ＣＶ（雄、４週齢を日本ＳＬＣより入手）を用い
て、１群１０匹の系で検査体投与群及びコントーロール
としての通常滅菌粉末飼料のみの投与群で実施した。上
記実験動物は入荷後１週間の予備飼育の後、第５週齢よ
り第１６週齢に到るまでの間を観察期間とした。検査体
については、人（体重６０ｋｇ）の経口摂取量（１日３
ｇ）より換算し、マウス平均体重（３０ｇ）より約１．
５ｍｇを１日摂取量とし、又１日の餌摂取量（５ｇ）を
目安として投与量を決定した。なお、コントロール群
は、通常の滅菌粉末飼料のみの摂取とし行なった。 血
中ＩｇＥ量の測定については、飼料摂取の１週間後（６
週齢）、４週間後（９週齢）、７週間後（１２週齢）、
１１週間後（１６週齢）の４回にわたり、マウス眼底静
脈層より採血を行ない、血清中のＩｇＥ総量の経時的変
化をマウスＩｇＥに対する特異抗体を用いたサンドイッ
チライサ法により算出した。又、投与１１週間後（１６
週齢）における肉眼的皮膚所見について、観察比較し
た。
【００１２】（ニ）実験結果
上記の各飼料の混合飼料摂取群においては、下表及び図
１に示すように、コントロール群と比較し有意に血中Ｉ
ｇＥ産生の抑制が認められる結果が得られた。
１に示すように、コントロール群と比較し有意に血中Ｉ
ｇＥ産生の抑制が認められる結果が得られた。
【００１３】血中ＩｇＥ値（ｎｇ／ｍｌ）
この傾向は、ＰＬ菌糸体熱水抽出物の乾燥粉末投与群
において、特に顕著な結果であった。肉眼皮膚的所見に
おいては、コントロール群を除く各検査体の混合飼料摂
取群において明らかに皮膚アレルギー症状の抑制作用が
認められた。
において、特に顕著な結果であった。肉眼皮膚的所見に
おいては、コントロール群を除く各検査体の混合飼料摂
取群において明らかに皮膚アレルギー症状の抑制作用が
認められた。
【００１４】（Ｅ）次に請求項４、及び請求項５に係る
メシマコブの菌糸体の培養方法について記載する。本願
発明に用いたメシマコブは、１９９８年１０月に宮崎県
西諸県郡須木村で、子実体を採取し、株式会社アイビー
アイ（ＩＢＩ）応用きのこ研究所で菌糸体化した上でＰ
Ｌ−０８株として保存していたものを使用した。この菌
株は、子実体を農林水産省林野庁総合研究所 森林生物
部森林微生物科 腐朽病害研究室の阿部恭久博士の鑑定
により、メシマコブ子実体に特有の黄褐色の剛毛体を
持つこと、及び担子胞子の形態、からメシマコブと同
定されたものを用いた。供試菌株の前培養は、５℃で低
温保存してあった菌糸体を、内径９０ｍｍのペトリ皿内
のPotato Dextrose Agar培地（Difco 社製）へ接種し
て、２５℃暗黒下で１５日間表面培養した。この培養菌
糸体を内径５ｍｍのコルクボーラーで切り取り（乾燥菌
糸体重量 ０．３５ｍｇに相当）、試験に供した。
メシマコブの菌糸体の培養方法について記載する。本願
発明に用いたメシマコブは、１９９８年１０月に宮崎県
西諸県郡須木村で、子実体を採取し、株式会社アイビー
アイ（ＩＢＩ）応用きのこ研究所で菌糸体化した上でＰ
Ｌ−０８株として保存していたものを使用した。この菌
株は、子実体を農林水産省林野庁総合研究所 森林生物
部森林微生物科 腐朽病害研究室の阿部恭久博士の鑑定
により、メシマコブ子実体に特有の黄褐色の剛毛体を
持つこと、及び担子胞子の形態、からメシマコブと同
定されたものを用いた。供試菌株の前培養は、５℃で低
温保存してあった菌糸体を、内径９０ｍｍのペトリ皿内
のPotato Dextrose Agar培地（Difco 社製）へ接種し
て、２５℃暗黒下で１５日間表面培養した。この培養菌
糸体を内径５ｍｍのコルクボーラーで切り取り（乾燥菌
糸体重量 ０．３５ｍｇに相当）、試験に供した。
【００１５】まず、下記の１〜８の項目に対する試験を
行なった。 （１）菌糸体成長の温度特性 （２）菌糸体成長の初発ｐＨ特性 （３）菌糸体成長に及ぼす炭素源の種類の効果 （４）菌糸体成長に及ぼす窒素源の種類の効果 （５）菌糸体成長に及ぼす至適炭素源濃度 （６）３種のキノコ菌糸体成長に対する通気液体培養効
果 （７）３種の炭素源を用いた通気液体培養 （８）炭素源として用いたグルコースの通気液体培養に
よる消費率 次に、これらの試験について更に詳しく記載する。
行なった。 （１）菌糸体成長の温度特性 （２）菌糸体成長の初発ｐＨ特性 （３）菌糸体成長に及ぼす炭素源の種類の効果 （４）菌糸体成長に及ぼす窒素源の種類の効果 （５）菌糸体成長に及ぼす至適炭素源濃度 （６）３種のキノコ菌糸体成長に対する通気液体培養効
果 （７）３種の炭素源を用いた通気液体培養 （８）炭素源として用いたグルコースの通気液体培養に
よる消費率 次に、これらの試験について更に詳しく記載する。
【００１６】（１）菌糸体成長の温度特性
（イ）培地（基本培地）
（ａ）３ｇ／ｌポリペプトン（極東製薬工業株式会社製
のペプトンＡ） （ｂ）１０ｇ／ｌスクロース （ｃ）３ｇ／ｌイーストエキス（アサヒビール食品株式
会社製のミーストＰ２Ｇ） （ｄ）０．５ｇ／ｌＫＨ2 ＰＯ4 （ｅ）０．５ｇ／Ｎａ2 ＨＰＯ4 （ｆ）以上を蒸留水に溶解して用いた。 （ロ）培養方法 前記培地を１００ｍｌ容三角フラスコに５０ｍｌずつ分
注し、オートクレーブ滅菌後（１２１℃，１０分間）
に、培地が室温に降下してから、前記直径５ｍｍの接種
源を接種した。１０〜３５℃の範囲を２．５℃の間隔に
調製したインキュベーターを用いて、菌糸体を１５日間
静置培養し、経時的に菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 培養液を、高速冷却遠心機（日立製 ＣＲ２０Ｇ）で遠
心分離（３８，８００×Ｇ）して、菌糸体と培養液に分
けた。菌糸体画分に再度蒸留水を加えて遠心する洗浄を
３回行なった後、１０５℃で２４時間乾燥させて菌糸体
乾燥重量を測定した。全ての試験を通して、培養は１試
験区分あたり６個のフラスコを用いて行なった。各試験
区で得られた６つの菌糸体乾燥重量から平均値と標準偏
差（ＳＤ）を計算した。なお、得られた菌糸体収量は培
地１ｌあたりの菌糸体乾燥重量に換算して示した。
のペプトンＡ） （ｂ）１０ｇ／ｌスクロース （ｃ）３ｇ／ｌイーストエキス（アサヒビール食品株式
会社製のミーストＰ２Ｇ） （ｄ）０．５ｇ／ｌＫＨ2 ＰＯ4 （ｅ）０．５ｇ／Ｎａ2 ＨＰＯ4 （ｆ）以上を蒸留水に溶解して用いた。 （ロ）培養方法 前記培地を１００ｍｌ容三角フラスコに５０ｍｌずつ分
注し、オートクレーブ滅菌後（１２１℃，１０分間）
に、培地が室温に降下してから、前記直径５ｍｍの接種
源を接種した。１０〜３５℃の範囲を２．５℃の間隔に
調製したインキュベーターを用いて、菌糸体を１５日間
静置培養し、経時的に菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 培養液を、高速冷却遠心機（日立製 ＣＲ２０Ｇ）で遠
心分離（３８，８００×Ｇ）して、菌糸体と培養液に分
けた。菌糸体画分に再度蒸留水を加えて遠心する洗浄を
３回行なった後、１０５℃で２４時間乾燥させて菌糸体
乾燥重量を測定した。全ての試験を通して、培養は１試
験区分あたり６個のフラスコを用いて行なった。各試験
区で得られた６つの菌糸体乾燥重量から平均値と標準偏
差（ＳＤ）を計算した。なお、得られた菌糸体収量は培
地１ｌあたりの菌糸体乾燥重量に換算して示した。
【００１７】本試験の各培養温度におけるメシマコブ菌
糸体乾燥重量を図１に示す。図１の結果によれば、メシ
マコブの菌糸体は、２２℃〜３５℃（特に２５℃〜３
２．５℃）で培養すると収量が上がることがわかる。
糸体乾燥重量を図１に示す。図１の結果によれば、メシ
マコブの菌糸体は、２２℃〜３５℃（特に２５℃〜３
２．５℃）で培養すると収量が上がることがわかる。
【００１８】（２）菌糸体成長の初発ｐＨ特性
（イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地と同じもの
を、初発ｐＨを、３．０，３．５，４．０，
４．５，５．０，５．５，６．０，６．５，
７．０の各値に、１Ｎ・ＨＣｌ，及び１Ｎ・ＫＯＨを用
いて調製して用いた。 （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、培養は、２５℃のインキュベーター内
で１５日間静置培養し、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
を、初発ｐＨを、３．０，３．５，４．０，
４．５，５．０，５．５，６．０，６．５，
７．０の各値に、１Ｎ・ＨＣｌ，及び１Ｎ・ＫＯＨを用
いて調製して用いた。 （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、培養は、２５℃のインキュベーター内
で１５日間静置培養し、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
【００１９】前記各初発ｐＨの培地で培養して得られた
メシマコブ菌糸体乾燥重量を図２に示す。又、菌糸体の
増殖の間に培地ｐＨが変化した巾を図３に示す。図２の
結果によれば、メシマコブの菌糸体は、培地の初発ｐＨ
を（４．５〜６．５）とすることにより収量が上がるこ
とがわかる。
メシマコブ菌糸体乾燥重量を図２に示す。又、菌糸体の
増殖の間に培地ｐＨが変化した巾を図３に示す。図２の
結果によれば、メシマコブの菌糸体は、培地の初発ｐＨ
を（４．５〜６．５）とすることにより収量が上がるこ
とがわかる。
【００２０】（３）菌糸体成長に及ぼす炭素源の種類の
効果 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地からスクロー
スを除き（これをＡとする）、次の１２種類の炭素源を
１％添加したものを調製して用いた。 Ａ：炭素源無添加 Ｂ：キシロース（１％、以下同じ） Ｃ：リボース Ｄ：グルコース Ｅ：ガラクトース Ｆ：アラビノース Ｇ：マンノース Ｈ：スクロース Ｉ：マルトース Ｊ：セロビオース Ｋ：トレハロース Ｌ：ラクトース Ｍ：ラフィノース （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、培養は、２５℃のインキュベーター内
で１５日間静置培養し、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
効果 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地からスクロー
スを除き（これをＡとする）、次の１２種類の炭素源を
１％添加したものを調製して用いた。 Ａ：炭素源無添加 Ｂ：キシロース（１％、以下同じ） Ｃ：リボース Ｄ：グルコース Ｅ：ガラクトース Ｆ：アラビノース Ｇ：マンノース Ｈ：スクロース Ｉ：マルトース Ｊ：セロビオース Ｋ：トレハロース Ｌ：ラクトース Ｍ：ラフィノース （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、培養は、２５℃のインキュベーター内
で１５日間静置培養し、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
【００２１】各炭素源により得られたメシマコブ菌糸体
乾燥重量を図４に示す。図４の結果によれば、炭素源と
して、グルコース、マンノース、ガラクトース、スクロ
ース、トレハロース、セロビオース、マルトース、ラク
トース、ラフィノースが適しており、その中でも特に、
グルコース、スクロース、トレハロースが優れているこ
とがわかる。
乾燥重量を図４に示す。図４の結果によれば、炭素源と
して、グルコース、マンノース、ガラクトース、スクロ
ース、トレハロース、セロビオース、マルトース、ラク
トース、ラフィノースが適しており、その中でも特に、
グルコース、スクロース、トレハロースが優れているこ
とがわかる。
【００２２】（４）菌糸体成長に及ぼす窒素源の種類の
効果 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地からポリペプ
トン、及びイーストエキスを除き（これをＡとする）、
次の８種類の窒素源を、そのＮ含有量が０．０５％にな
るように添加したものを調製して用いた。 Ａ：窒素源無添加 Ｂ：ポリペプトン Ｃ：イーストエキス Ｄ：カザミノ酸 Ｅ：酒石酸アンモニウム Ｆ：硝酸カリウム Ｇ：硝酸アンモニウム Ｈ：塩化アンモニウム Ｉ：イーストエキストラクト＋ポリぺプトン （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、培養は、２５℃のインキュベーター内
で１５日間静置培養し、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
効果 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地からポリペプ
トン、及びイーストエキスを除き（これをＡとする）、
次の８種類の窒素源を、そのＮ含有量が０．０５％にな
るように添加したものを調製して用いた。 Ａ：窒素源無添加 Ｂ：ポリペプトン Ｃ：イーストエキス Ｄ：カザミノ酸 Ｅ：酒石酸アンモニウム Ｆ：硝酸カリウム Ｇ：硝酸アンモニウム Ｈ：塩化アンモニウム Ｉ：イーストエキストラクト＋ポリぺプトン （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、培養は、２５℃のインキュベーター内
で１５日間静置培養し、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
【００２３】各窒素源により得られたメシマコブ菌糸体
乾燥重量を図５に示す。図５の結果によれば、窒素源と
しては、天然物由来窒素源イーストエキス、及びポリぺ
プトンが優れていることがわかる。
乾燥重量を図５に示す。図５の結果によれば、窒素源と
しては、天然物由来窒素源イーストエキス、及びポリぺ
プトンが優れていることがわかる。
【００２４】（５）菌糸体成長に及ぼす至適炭素源濃度
図３より、菌糸体成長が優れた４種類の炭素源、グルコ
ース、スクロース、セロビオース、及びトレハロースの
各々について、至適濃度検索試験を行なった。（イ）培
地は、前記（１）の（イ）の培地からスクロースを除い
たものに、各炭素源を，０％，１％，２％，３％，４
％，５％添加して調製したものを用いた。 （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、２５℃のインキュベーター内で１５日
間静置培養し、糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
ース、スクロース、セロビオース、及びトレハロースの
各々について、至適濃度検索試験を行なった。（イ）培
地は、前記（１）の（イ）の培地からスクロースを除い
たものに、各炭素源を，０％，１％，２％，３％，４
％，５％添加して調製したものを用いた。 （ロ）培養方法 前記（１）の（ロ）の培養方法に準じて、メシマコブの
菌糸体を接種し、２５℃のインキュベーター内で１５日
間静置培養し、糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
【００２５】各炭素源の濃度により得られたメシマコブ
菌糸体乾燥重量を図６に示す。図６の結果によれば、グ
ルコース、スクロース、及びトレハロースの培地濃度を
３〜５％とすることにより、特にメシマコブの菌糸体の
収量が上がることがわかる。
菌糸体乾燥重量を図６に示す。図６の結果によれば、グ
ルコース、スクロース、及びトレハロースの培地濃度を
３〜５％とすることにより、特にメシマコブの菌糸体の
収量が上がることがわかる。
【００２６】（６）３種のキノコ（メシマコブ、シイタ
ケ、ヒメマツタケ）菌糸体成長に対する通気液体培養効
果 本願発明に係るメシマコブと、シイタケ（Lentinus edo
des)及びヒメマツタケ(Agaricus blazei) を同一の条件
で通気培養して菌糸体の成長を比較した。シイタケは、
株式会社ウインドヒル応用きのこ研究所に保有するLe01
株を、又ヒメマツタケは、同研究所のAB7002株を用い
た。 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地を用いた。 （ロ）培養方法 通気培養は、１０ｌ用のカルスターを用い、これに前記
培地を１０ｌずつ分注し、滅菌した後、２５℃まで培地
温度が低下したのを確かめてから，前記３種の接種源を
接種した。その後、強制的に０．２２μｍフィルターを
通した無菌空気を通気量２ｌ／ｍｉｎで培地内へ通気
し、温度２５℃で１８日間培養した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
ケ、ヒメマツタケ）菌糸体成長に対する通気液体培養効
果 本願発明に係るメシマコブと、シイタケ（Lentinus edo
des)及びヒメマツタケ(Agaricus blazei) を同一の条件
で通気培養して菌糸体の成長を比較した。シイタケは、
株式会社ウインドヒル応用きのこ研究所に保有するLe01
株を、又ヒメマツタケは、同研究所のAB7002株を用い
た。 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地を用いた。 （ロ）培養方法 通気培養は、１０ｌ用のカルスターを用い、これに前記
培地を１０ｌずつ分注し、滅菌した後、２５℃まで培地
温度が低下したのを確かめてから，前記３種の接種源を
接種した。その後、強制的に０．２２μｍフィルターを
通した無菌空気を通気量２ｌ／ｍｉｎで培地内へ通気
し、温度２５℃で１８日間培養した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
【００２７】通気培養して得られる３種のキノコ（メシ
マコブ、シイタケ、ヒメマツタケ）の菌糸体乾燥重量
（経時変化）を図７に示す。図７の結果によれば、菌糸
体を得るには、好気的条件下で、シイタケやヒメマツタ
ケと異なり、１０日以上培養する必要があることがわか
る。
マコブ、シイタケ、ヒメマツタケ）の菌糸体乾燥重量
（経時変化）を図７に示す。図７の結果によれば、菌糸
体を得るには、好気的条件下で、シイタケやヒメマツタ
ケと異なり、１０日以上培養する必要があることがわか
る。
【００２８】（７）３種の炭素源（グルコース、スクロ
ース、トレハロース）を用いた通気液体培養 ３種の炭素源（グルコース、スクロース、トレハロー
ス）を用いて、通気培養における至適炭素源を検索し
た。 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地からスクロー
スを除いたものに、検討すべき炭素源（グルコース、ス
クロース、トレハロース）を、各４％添加して調製した
ものを用いた。 （ロ）培養方法 前記（６）の（ロ）の培養方法に準じて、温度２５℃で
１８日間通気培養して、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
ース、トレハロース）を用いた通気液体培養 ３種の炭素源（グルコース、スクロース、トレハロー
ス）を用いて、通気培養における至適炭素源を検索し
た。 （イ）培地は、前記（１）の（イ）の培地からスクロー
スを除いたものに、検討すべき炭素源（グルコース、ス
クロース、トレハロース）を、各４％添加して調製した
ものを用いた。 （ロ）培養方法 前記（６）の（ロ）の培養方法に準じて、温度２５℃で
１８日間通気培養して、菌糸体乾燥重量を測定した。 （ハ）菌糸体乾燥重量の測定 前記（１）の（ハ）に記載した方法で測定した。
【００２９】各炭素源を添加して通気培養により、経時
的に得られたメシマコブ菌糸体乾燥重量を図８に示す。
的に得られたメシマコブ菌糸体乾燥重量を図８に示す。
【００３０】又、前記（７）の試験において、炭素源と
して用いたグルコースの通気液体培養による消費率を調
べた。培地中の炭素源量（グルコース）の測定は、高速
液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により行なった。
すなわち、培養濾液を一定量採取し、イオン交換水で希
釈後、口径０．４５μｍメンブランフィルターで微粒物
質を除去して試験溶液とした。島津製作所製の高速液体
クロマトグラフ（LC-10ADvp)でカラム（Wakosil 5NH2
4.6×15cm) を用い、糖標準溶液と試験溶液を、移動層
アセトニトリル：水（７５：２５）、カラム温度を室
温、移動層流量を１ｍｌ／ｍｉｎ、レンジは５×１０5
RIUFS 、及び注入量を２０μｌの条件で注入し、炭素源
濃度を示差屈折計(RID-10A) で測定した。
して用いたグルコースの通気液体培養による消費率を調
べた。培地中の炭素源量（グルコース）の測定は、高速
液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により行なった。
すなわち、培養濾液を一定量採取し、イオン交換水で希
釈後、口径０．４５μｍメンブランフィルターで微粒物
質を除去して試験溶液とした。島津製作所製の高速液体
クロマトグラフ（LC-10ADvp)でカラム（Wakosil 5NH2
4.6×15cm) を用い、糖標準溶液と試験溶液を、移動層
アセトニトリル：水（７５：２５）、カラム温度を室
温、移動層流量を１ｍｌ／ｍｉｎ、レンジは５×１０5
RIUFS 、及び注入量を２０μｌの条件で注入し、炭素源
濃度を示差屈折計(RID-10A) で測定した。
【００３１】測定結果を図９に示す。
【００３２】▲乾燥菌糸体の製造例１
炭素源としてグルコースを４．０％、天然物由来窒素源
イーストエキス、及びポリぺプトンを各０．３％を含
み、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じ
て、１２日間、２８℃で通気培養を行い、メシマコブの
乾燥菌糸体９．７５ｋｇを得た。 ▲乾燥菌糸体の製造例２ 炭素源としてトレハロースを４．０％、天然物由来窒素
源イーストエキス、及びポリぺぷトンを各０．３％を含
み、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じ
て、１０日間、２５℃で通気培養を行い、メシマコブの
乾燥菌糸体３．９ｋｇを得た。 ▲乾燥菌糸体の製造例３ 炭素源としてスクロースを４．０％、天然物由来窒素源
イーストエキス、及びポリぺぷトンを各０．３％を含
み、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じ
て、１２日間、２８℃で通気培養を行い、メシマコブの
乾燥菌糸体５．２ｋｇを得た。
イーストエキス、及びポリぺプトンを各０．３％を含
み、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じ
て、１２日間、２８℃で通気培養を行い、メシマコブの
乾燥菌糸体９．７５ｋｇを得た。 ▲乾燥菌糸体の製造例２ 炭素源としてトレハロースを４．０％、天然物由来窒素
源イーストエキス、及びポリぺぷトンを各０．３％を含
み、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じ
て、１０日間、２５℃で通気培養を行い、メシマコブの
乾燥菌糸体３．９ｋｇを得た。 ▲乾燥菌糸体の製造例３ 炭素源としてスクロースを４．０％、天然物由来窒素源
イーストエキス、及びポリぺぷトンを各０．３％を含
み、初発培地ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコ
ブの菌糸体を接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じ
て、１２日間、２８℃で通気培養を行い、メシマコブの
乾燥菌糸体５．２ｋｇを得た。
【００３３】（Ｂ）メシマコブ菌糸体由来物質（熱水抽
出物）、及びメシマコブ菌糸体の培養濾液の炭素源とし
てグルコースを４．０％、天然物由来窒素源イーストエ
キス、及びポリぺプトンを各０．３％を含み、初発培地
ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコブの菌糸体を
接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じて、１２日
間、２８℃で通気培養を行い、メシマコブの乾燥菌糸体
９．７５ｋｇを得た。
出物）、及びメシマコブ菌糸体の培養濾液の炭素源とし
てグルコースを４．０％、天然物由来窒素源イーストエ
キス、及びポリぺプトンを各０．３％を含み、初発培地
ｐＨ５．５の培養液１０００ｌにメシマコブの菌糸体を
接種して、前期試験（６）の（ロ）に準じて、１２日
間、２８℃で通気培養を行い、メシマコブの乾燥菌糸体
９．７５ｋｇを得た。
【００３４】
【発明の効果】本願発明の健康食品及びその製造方法に
よれば、メシマコブの菌糸体由来物質を含有し、アレル
ギー反応抑制作用を有する健康食品が容易に得られると
いう効果を有する。
よれば、メシマコブの菌糸体由来物質を含有し、アレル
ギー反応抑制作用を有する健康食品が容易に得られると
いう効果を有する。
【図１】メシマコブ菌糸体由来成分のＩｇＥ産生抑制効
果を示す図である。
果を示す図である。
【図２】メシマコブの菌糸体成長の温度特性を示す図で
ある。
ある。
【図３】メシマコブの菌糸体成長における培地の初発ｐ
Ｈ特性を示す図である。
Ｈ特性を示す図である。
【図４】メシマコブの菌糸体成長において、菌糸体の増
殖の間に示す培地ｐＨの変化の巾を示す図である。
殖の間に示す培地ｐＨの変化の巾を示す図である。
【図５】メシマコブの菌糸体成長に及ぼす炭素源の種類
の効果を示す図である。
の効果を示す図である。
【図６】メシマコブの菌糸体成長に及ぼす窒素源の種類
の効果効果を示す図である。
の効果効果を示す図である。
【図７】メシマコブの菌糸体成長に及ぼす至適炭素源濃
度を示す図である。
度を示す図である。
【図８】３種のキノコ菌糸体成長に対する通気液体培養
効果を示す図である。
効果を示す図である。
【図９】メシマコブの菌糸体成長における３種の炭素源
を用いた通気液体培養の効果を示す図である。
を用いた通気液体培養の効果を示す図である。
【図１０】メシマコブの通気液体培養において、炭素源
として用いたグルコースの消費率を示す図である。
として用いたグルコースの消費率を示す図である。
─────────────────────────────────────────────────────
フロントページの続き
(56)参考文献 特開 昭50−88249（ＪＰ，Ａ)
特開 昭47−23233（ＪＰ，Ａ)
特開 平11−155518（ＪＰ，Ａ)
特開 昭48−40997（ＪＰ，Ａ)
(58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名)
A23L 1/28 - 1/308
A61K 35/84
ＪＳＴＰｌｕｓ（ＪＯＩＳ)
Claims (5)
- 【請求項１】メシマコブの菌糸体由来物質を含有するこ
とを特徴とするアレルギー反応抑制剤。 - 【請求項２】メシマコブの菌糸体由来物質が、下記の
（１）〜（３）に記載する工程を順次経て得られるメシ
マコブ菌糸体の熱水抽出物である請求項１に記載するア
レルギー反応抑制剤。 （１）液体培地でメシマコブの菌糸体を培養する工程 （２）培養液からメシマコブの菌糸体を分離する工程 （３）メシマコブの菌糸体から熱水抽出物を得る工程 - 【請求項３】メシマコブの菌糸体由来物質が、メシマコ
ブ菌糸体培養濾液である請求項１に記載するアレルギー
反応抑制剤。 - 【請求項４】メシマコブ菌糸体、又はメシマコブ菌糸体
培養濾液が、下記の（１）〜（４）の条件を採用したメ
シマコブ菌糸体の培養方法により得られるものを用いる
請求項１〜請求項３に記載するアレルギー反応抑制剤。 （１）液体培地にメシマコブ菌糸体を接種して、２２℃
〜３５℃で培養すること。 （２）液体培地の炭素源として、グルコース、マンノー
ス、ガラクトース、スクロース、トレハロース、セロビ
オース、マルトース、ラクトース、ラフィノースから選
択される１以上の糖類を使用すること。 （３）好気的条件下で培養すること。 （４）培養開始時の培地のｐＨを４．５〜６．５とする
こと。 - 【請求項５】メシマコブ菌糸体の培養方法として、
（イ）培養期間が１０日以上であり、（ロ）通気培養を
行ない、かつ（ハ）炭素源として３〜５％のグルコー
ス、スクロース、又は／及びトレハロースを含有させた
培養基を用いる請求項４記載のアレルギー反応抑制剤。
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| JP2000369982A JP3480926B2 (ja) | 2000-12-05 | 2000-12-05 | アレルギー反応抑制剤 |
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|---|---|---|---|
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Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
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| JP3480926B2 true JP3480926B2 (ja) | 2003-12-22 |
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| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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| KR20040096000A (ko) * | 2003-05-07 | 2004-11-16 | 김관호 | 초음파에 의한 세포벽 파쇄 및 효소발효법을 이용한상황버섯 베타글루칸 추출방법 |
| JP2007537750A (ja) * | 2004-05-17 | 2007-12-27 | ユン−ジョン オ | メシマコブ飲料とその製造方法及びメシマコブ飲料食品 |
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| CN114984066B (zh) * | 2021-03-01 | 2024-06-14 | 葡萄王生技股份有限公司 | 桑黄用于制备改善肌少症的组合物的用途 |
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