JP2863637B2 - 新規なアミノオリゴ糖誘導体およびその製造方法 - Google Patents
新規なアミノオリゴ糖誘導体およびその製造方法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H17/00—Compounds containing heterocyclic radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals
- C07H17/04—Heterocyclic radicals containing only oxygen as ring hetero atoms
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/26—Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
- C12P19/28—N-glycosides
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Description
【発明の詳細な説明】 [技術分野] 本発明は強力な糖質分解酵素抑制能と抗菌活性を有す
る新規なアミノオリゴ糖誘導体および薬学的に許容され
るその非毒性塩に関する。さらに、本発明は前記物質の
製造方法およびそれを有効成分として含む薬学的組成物
に関する。
る新規なアミノオリゴ糖誘導体および薬学的に許容され
るその非毒性塩に関する。さらに、本発明は前記物質の
製造方法およびそれを有効成分として含む薬学的組成物
に関する。
[背景技術] アミラーゼやサッカラーゼなどの糖質分解酵素の阻害
剤は糖尿病、過脂タンパク性貧血(hyperlipoproteinem
ia)、過脂肪浮腫(hyperlipidemia)、肥満またはこれ
から発生される2次的病症の治療剤または予防剤として
用いられる可能性が高いことと知られている。
剤は糖尿病、過脂タンパク性貧血(hyperlipoproteinem
ia)、過脂肪浮腫(hyperlipidemia)、肥満またはこれ
から発生される2次的病症の治療剤または予防剤として
用いられる可能性が高いことと知られている。
かかる糖質分解酵素の強力な阻害剤としてはアミノオ
リゴ糖誘導体が広く知られており、特にストレプトマイ
セス種(Streptomyces sp.)A2396株が生産する物質A
−2396(参照:特開昭54−92909)、ストレプトマイセ
スミクソゲネス(Streptomyces myxogenes)が生産する
オリゴスタチン(Oligostatin)(参照:J.Antibiotics,
34:1424−1433(1981))、アジポシン(Adiposin)
(参照:J.Antibiotics,35:1234−1236(1982))および
ストレプトマイセスフラボクロモゲネス(Streptomyces
flavochromogenes)が生産するNS複合体(NS comple
x)(参照:特開平3−19239)などが報告されている。
リゴ糖誘導体が広く知られており、特にストレプトマイ
セス種(Streptomyces sp.)A2396株が生産する物質A
−2396(参照:特開昭54−92909)、ストレプトマイセ
スミクソゲネス(Streptomyces myxogenes)が生産する
オリゴスタチン(Oligostatin)(参照:J.Antibiotics,
34:1424−1433(1981))、アジポシン(Adiposin)
(参照:J.Antibiotics,35:1234−1236(1982))および
ストレプトマイセスフラボクロモゲネス(Streptomyces
flavochromogenes)が生産するNS複合体(NS comple
x)(参照:特開平3−19239)などが報告されている。
一方、NS複合体の化学構造は本発明のアミノオリゴ糖
誘導体と相当に同様であり、次のように表示される。
誘導体と相当に同様であり、次のように表示される。
本発明に従うと、本発明者等はストレプトマイセス種
に属する土壌微生物から新規のアミノオリゴ糖誘導体を
分離し、その物質が糖質分解酵素の強力な阻害剤と抗菌
剤として用いられることを発見した。
に属する土壌微生物から新規のアミノオリゴ糖誘導体を
分離し、その物質が糖質分解酵素の強力な阻害剤と抗菌
剤として用いられることを発見した。
[発明の概要] 従って、本発明の第一の目的は、下記の一般式(I)
で表示される新規のアミノオリゴ糖誘導体CK−4416およ
びその塩を提供することである。
で表示される新規のアミノオリゴ糖誘導体CK−4416およ
びその塩を提供することである。
上記式において、 mは0または1の整数であり、nは1ないし4の整数
であり、m+nは1ないし5の整数であり、R1は低級ア
ルキルハイドロキシドであり、R2は水素または低級アル
キル基である。
であり、m+nは1ないし5の整数であり、R1は低級ア
ルキルハイドロキシドであり、R2は水素または低級アル
キル基である。
本発明の第二の目的は、前記アミノオリゴ糖誘導体の
糖質分解酵素阻害剤および抗菌剤としての用途を提供す
ることである。
糖質分解酵素阻害剤および抗菌剤としての用途を提供す
ることである。
本発明の第三の目的は、ストレプトマイセス種CK−44
16からの前記アミノオリゴ糖誘導体の製造方法を提供す
ることである。
16からの前記アミノオリゴ糖誘導体の製造方法を提供す
ることである。
[発明の開示] 本発明者らは各種の土壌微生物を探索して本発明のア
ミノオリゴ糖誘導体を生産する微生物を分離し、それを
ストレプトマイセス属(genus)に属する1種に同定し
た後、ストレプトマイセス種CK−4416(Streptomyces s
p.CK−4416)と命名した。また、前記ストレプトマイセ
ス種CK−4416から生産されたアミノオリゴ糖誘導体は新
規な物質であることが確認され、CK−4416と命名した。
ミノオリゴ糖誘導体を生産する微生物を分離し、それを
ストレプトマイセス属(genus)に属する1種に同定し
た後、ストレプトマイセス種CK−4416(Streptomyces s
p.CK−4416)と命名した。また、前記ストレプトマイセ
ス種CK−4416から生産されたアミノオリゴ糖誘導体は新
規な物質であることが確認され、CK−4416と命名した。
本発明のCK−4416物質は炭素源および窒素源を含む栄
養培地にストレプトマイセス種CK−4416を接種し、振盪
培養や通気撹拌培養の好気条件下で培養する工程により
製造することができる。炭素源としては市販の葡萄糖、
グリセリン、麦芽糖、澱粉、蔗糖、糖蜜またはデキスト
リンなどを用い、窒素源としては市販の大豆粉、コーン
スティープリカー(corn steep liquor)、ビーフエキ
ス(beef extract)、綿実粉(cottonseed flour)、ペ
プトン、小麦胚芽、魚粉(fish meal)、無機アンモニ
ウム塩または窒酸ナトリウムなどを用い、無機塩として
は市販の炭酸カルシウム、塩化ナトリウム、塩化カリウ
ム、硫酸マグネシウムまたは各種のリン酸塩などを用い
ることができる。その他必要によって培養培地に鉄、マ
ンガンまたは亜鉛などの金属塩も微量で添加することが
できる。
養培地にストレプトマイセス種CK−4416を接種し、振盪
培養や通気撹拌培養の好気条件下で培養する工程により
製造することができる。炭素源としては市販の葡萄糖、
グリセリン、麦芽糖、澱粉、蔗糖、糖蜜またはデキスト
リンなどを用い、窒素源としては市販の大豆粉、コーン
スティープリカー(corn steep liquor)、ビーフエキ
ス(beef extract)、綿実粉(cottonseed flour)、ペ
プトン、小麦胚芽、魚粉(fish meal)、無機アンモニ
ウム塩または窒酸ナトリウムなどを用い、無機塩として
は市販の炭酸カルシウム、塩化ナトリウム、塩化カリウ
ム、硫酸マグネシウムまたは各種のリン酸塩などを用い
ることができる。その他必要によって培養培地に鉄、マ
ンガンまたは亜鉛などの金属塩も微量で添加することが
できる。
また、培養過程において泡が激しい場合には、消泡剤
として植物油、オクタデカノール(octadecanol)など
の高級アルコール類、各種のシリコン化合物などを適当
に添加することが好ましい。それ以外にも、ストレプト
マイセス種CK−4416のアミノオリゴ糖誘導体CK−4416の
生産能を増進させることができる物質であるならどの物
質でも用いることができる。
として植物油、オクタデカノール(octadecanol)など
の高級アルコール類、各種のシリコン化合物などを適当
に添加することが好ましい。それ以外にも、ストレプト
マイセス種CK−4416のアミノオリゴ糖誘導体CK−4416の
生産能を増進させることができる物質であるならどの物
質でも用いることができる。
ストレプトマイセス種CK−4416は一般的な代謝産物の
生産方法と同一の方法で培養することができ、固体およ
び液体培養のいずれも可能である。液体培養は静置培
養、撹拌培養、振盪培養および通気培養などが好まし
く、振盪培養または深部通気撹拌培養がより好ましい。
培養温度は20ないし37℃、より好ましくは25ないし30℃
が適切である。培地のpHは6ないし8の範囲が適当であ
り、培養時間24ないし192時間、より好ましくは48ない
し120時間が適切である。
生産方法と同一の方法で培養することができ、固体およ
び液体培養のいずれも可能である。液体培養は静置培
養、撹拌培養、振盪培養および通気培養などが好まし
く、振盪培養または深部通気撹拌培養がより好ましい。
培養温度は20ないし37℃、より好ましくは25ないし30℃
が適切である。培地のpHは6ないし8の範囲が適当であ
り、培養時間24ないし192時間、より好ましくは48ない
し120時間が適切である。
培養物から目的とするCK−4416物質を収得するにおい
ては、微生物が生産する代謝物を培養液から分離、精製
する通常の方法、例えばイオン交換法、吸着および分配
クロマトグラフィ法やゲル濾過法などが適切に用いられ
る。また、高速液体クロマトグラフィ(HPLC)は薄層ク
ロマトグラフィ(TLC)なども分離、精製に利用可能で
ある。
ては、微生物が生産する代謝物を培養液から分離、精製
する通常の方法、例えばイオン交換法、吸着および分配
クロマトグラフィ法やゲル濾過法などが適切に用いられ
る。また、高速液体クロマトグラフィ(HPLC)は薄層ク
ロマトグラフィ(TLC)なども分離、精製に利用可能で
ある。
本発明のCK−4416物質はインシュリン非依存性糖尿
病、過脂タンパク性貧血、過脂肪浮腫による肥満の予防
や治療に用いることができ、また免疫低下の活性剤およ
び抗菌剤としても有用である。
病、過脂タンパク性貧血、過脂肪浮腫による肥満の予防
や治療に用いることができ、また免疫低下の活性剤およ
び抗菌剤としても有用である。
[図面の簡単な説明] 本発明の前述した目的および特徴は添付図面および次
のような図面の説明から明らかになるだろう。
のような図面の説明から明らかになるだろう。
図1は本発明のCK−4416物質の赤外線分光スペクトル
を示す。
を示す。
図2は本発明のCK−4416物質の1H−NMRスペクトルを
示す。
示す。
図3は本発明のCK−4416物質の13C−NMRスペクトルを
示す。
示す。
図4は本発明のCK−4416物質のFAB−MS/MSスペクトル
を示す。
を示す。
[発明を実施するための最良の形態] 本発明は下記の実施例においてより詳細に説明する
が、これらの実施例により本発明の範囲が限定されるも
のではない。
が、これらの実施例により本発明の範囲が限定されるも
のではない。
実施例1:ストレプトマイセス種CK−4416の分離および同
定 ストレプトマイセス種CK−4416を分離するため、各種
の土壌微生物を探索した結果、韓国の済州島一帯の山林
で採取した土壌から前記菌株を分離することができた。
分離した菌株の特性を調査した結果を以下に示す。
定 ストレプトマイセス種CK−4416を分離するため、各種
の土壌微生物を探索した結果、韓国の済州島一帯の山林
で採取した土壌から前記菌株を分離することができた。
分離した菌株の特性を調査した結果を以下に示す。
1.生長特性 分離した菌株の各種の培地における生長特性を下記の
表1に示す。
表1に示す。
表1:各種の寒天培地におけるストレプトマイセス種CK−
4416の生長特性(28℃において14日間培養) 2.形態学的性質 ストレプトマイセス種CK−4416は顕微鏡下においてよ
く発達した気中菌糸の先端から20個以上の胞子連鎖を着
生し、1回ないし3回の螺旋形をなしている。輪生の菌
糸(verticilated mycelium)および菌糸の片断(fragm
entation)は観察されなかった。胞子の大きさは(0.6
ないし0.7)×(0.5ないし1.0)μm程度の円筒形で、
菌核および胞子嚢などの特殊な器官は観察されず、胞子
の表面は平滑であった。
4416の生長特性(28℃において14日間培養) 2.形態学的性質 ストレプトマイセス種CK−4416は顕微鏡下においてよ
く発達した気中菌糸の先端から20個以上の胞子連鎖を着
生し、1回ないし3回の螺旋形をなしている。輪生の菌
糸(verticilated mycelium)および菌糸の片断(fragm
entation)は観察されなかった。胞子の大きさは(0.6
ないし0.7)×(0.5ないし1.0)μm程度の円筒形で、
菌核および胞子嚢などの特殊な器官は観察されず、胞子
の表面は平滑であった。
3.生育温度(オートミール寒天培地において14日間培
養) 4℃:生育なし 15℃:生育低調、気中菌糸形成しない 20℃:生育低調、気中菌糸形成低調 28℃:生育普通、気中菌糸形成良好 37℃:生育普通、気中菌糸形成良好 45℃:生育普通、気中菌糸形成普通 55℃:生育なし 4.生理学的性質 (1)澱粉の加水分解(澱粉−無機塩寒天培地):陽性 (2)メラニン(melanin)色素の生成:陰性 5.炭素源滋化能(carbon source assimilability)プリ
ドハムゴトリブ(Pridham−Gottlieb)寒天培地(ISP.N
o.9)を基礎培地にして、下記の表2に示す各種の糖を
添加し、28℃において14日間ストレプトマイセス種CK−
4416を培養した。その後、糖の滋化能を測定した。
養) 4℃:生育なし 15℃:生育低調、気中菌糸形成しない 20℃:生育低調、気中菌糸形成低調 28℃:生育普通、気中菌糸形成良好 37℃:生育普通、気中菌糸形成良好 45℃:生育普通、気中菌糸形成普通 55℃:生育なし 4.生理学的性質 (1)澱粉の加水分解(澱粉−無機塩寒天培地):陽性 (2)メラニン(melanin)色素の生成:陰性 5.炭素源滋化能(carbon source assimilability)プリ
ドハムゴトリブ(Pridham−Gottlieb)寒天培地(ISP.N
o.9)を基礎培地にして、下記の表2に示す各種の糖を
添加し、28℃において14日間ストレプトマイセス種CK−
4416を培養した。その後、糖の滋化能を測定した。
表2:ストレプトマイセス種CK−4416の炭素源滋化能 6.細胞壁の組成 ストレプトマイセス種CK−4416の細胞壁分画において
LL−ジアミノピメリン酸(LL−diaminopimellic acid)
およびグリシン(glycine)が検出された。
LL−ジアミノピメリン酸(LL−diaminopimellic acid)
およびグリシン(glycine)が検出された。
以上の菌学的な性状から、分離された菌株はストレプ
トマイセス属に属する新規な放線菌であることが判明し
た。本発明者らは前記菌株をストレプトマイセス種CK−
4416(Streptomyces sp.CK−4416)と命名し、国際寄託
機関である生命工学研究所遺伝子銀行(韓国大田広域市
儒城区POBox115所在)に寄託番号KCTC 0131BPで寄託し
た。
トマイセス属に属する新規な放線菌であることが判明し
た。本発明者らは前記菌株をストレプトマイセス種CK−
4416(Streptomyces sp.CK−4416)と命名し、国際寄託
機関である生命工学研究所遺伝子銀行(韓国大田広域市
儒城区POBox115所在)に寄託番号KCTC 0131BPで寄託し
た。
実施例2:ストレプトマイセス種CK−4416の培養 500ml容量の三角フラスコ4個に、葡萄糖1(w/v)
%、デキストリンl(w/v)%、NZ−アミン(type A)
0.5(w/v)%、酵母エキス0.5(w/v)%および炭酸カル
シウム0.1(w/v)%を含む種培養培地(pH6.5)を100ml
ずつ分注し120℃において15分間滅菌した。それぞれの
培地に継代培養した新鮮なストレプトマイセスCK−4416
菌株の斜面培養物を一白金耳ずつ接種し、27℃において
3日間振盪培養した。その後、可溶性澱粉3(w/v)
%、大豆粉1.5(w/v)%、コーンスティープリカー1.5
(w/v)%、ポリペプトン0.2(w/v)%、Na2S2O30.1(w
/v)%、炭酸カルシウム0.5(w/v)%および塩化コバル
ト0.0001(w/v)%を含む本培養培地(pH6.5)を500ml
容量の三角フラスコ200個に100mlずつそれぞれ注入し、
120℃において30分間滅菌し、前記種培養物を2(v/v)
%ずつ接種して240rpmで撹拌しながら、27℃において3
日間培養した。培養中のCK−4416を定量的にコマモナス
テリゲナ(Comamonas terrigena)ATCC−8461を検定菌
とするペーパーディスク(paper disc)法による抗菌活
性で定量した。3日間培養の後の培養液pHは7.2、歩留
りは0.06mg/mlであった。
%、デキストリンl(w/v)%、NZ−アミン(type A)
0.5(w/v)%、酵母エキス0.5(w/v)%および炭酸カル
シウム0.1(w/v)%を含む種培養培地(pH6.5)を100ml
ずつ分注し120℃において15分間滅菌した。それぞれの
培地に継代培養した新鮮なストレプトマイセスCK−4416
菌株の斜面培養物を一白金耳ずつ接種し、27℃において
3日間振盪培養した。その後、可溶性澱粉3(w/v)
%、大豆粉1.5(w/v)%、コーンスティープリカー1.5
(w/v)%、ポリペプトン0.2(w/v)%、Na2S2O30.1(w
/v)%、炭酸カルシウム0.5(w/v)%および塩化コバル
ト0.0001(w/v)%を含む本培養培地(pH6.5)を500ml
容量の三角フラスコ200個に100mlずつそれぞれ注入し、
120℃において30分間滅菌し、前記種培養物を2(v/v)
%ずつ接種して240rpmで撹拌しながら、27℃において3
日間培養した。培養中のCK−4416を定量的にコマモナス
テリゲナ(Comamonas terrigena)ATCC−8461を検定菌
とするペーパーディスク(paper disc)法による抗菌活
性で定量した。3日間培養の後の培養液pHは7.2、歩留
りは0.06mg/mlであった。
実施例3:CK−4416物質の分離(I) 実施例2から収得した培養物18Lを遠心分離により菌
体を除去して上澄液14Lを収得した。この上澄液の酸度
をpH3.1に調整し、吸着樹脂である活性炭(和光純薬、
日本国)で充填されたカラム(6cm×30cm)に50ml/min
の流速で吸着させた後、蒸留水5Lで洗浄し50(v/v)%
メタノールで溶出させた。溶出液を400mlずつ分画した
結果、分画No.3〜6においてCK−4416物質が溶出され、
これらの分画を集めて減圧濃縮して黄色油状物14gを収
得した。この油状物を50mlの蒸留水に溶解させて酸度を
pH3.1に調整し、Sp−セファデックス(H+)(Sigma C
hemical Co.,USA)で充填されたカラム(6cm×30cm)に
20ml/minの流速で吸着させ、蒸留水5Lで洗浄した後、1N
アンモニア水に溶出させた。溶出液を400mlずつ分画し
た結果、分画No.3〜4においてCK−4416物質が溶出さ
れ、これらの分画を集めて減圧濃縮して乾燥し黄色粉末
1gを収得した。その後、この黄色粉末を蒸留水30mlに溶
解させて酸度をpH3.1に調整し、Dowex50W−8X(ピリジ
ン塩,Sigma Chemical Co.,USA)で充填されたカラム(3
cm×40cm)に5ml/minの流速で吸着させた後、蒸留水2L
で洗浄し、ピリジン−ギ酸緩衝溶液(ph3.1)の0ない
し0.2M濃度勾配(gradient,3L)で溶出させた。溶出液
を15mlずつ分画した結果、分画No.79〜120においてA物
質が、分画No.129〜159においてB物質が溶出され、そ
れぞれを減圧下において濃縮し、黄色粉末のA物質500m
gおよびB物質90mgを収得した。
体を除去して上澄液14Lを収得した。この上澄液の酸度
をpH3.1に調整し、吸着樹脂である活性炭(和光純薬、
日本国)で充填されたカラム(6cm×30cm)に50ml/min
の流速で吸着させた後、蒸留水5Lで洗浄し50(v/v)%
メタノールで溶出させた。溶出液を400mlずつ分画した
結果、分画No.3〜6においてCK−4416物質が溶出され、
これらの分画を集めて減圧濃縮して黄色油状物14gを収
得した。この油状物を50mlの蒸留水に溶解させて酸度を
pH3.1に調整し、Sp−セファデックス(H+)(Sigma C
hemical Co.,USA)で充填されたカラム(6cm×30cm)に
20ml/minの流速で吸着させ、蒸留水5Lで洗浄した後、1N
アンモニア水に溶出させた。溶出液を400mlずつ分画し
た結果、分画No.3〜4においてCK−4416物質が溶出さ
れ、これらの分画を集めて減圧濃縮して乾燥し黄色粉末
1gを収得した。その後、この黄色粉末を蒸留水30mlに溶
解させて酸度をpH3.1に調整し、Dowex50W−8X(ピリジ
ン塩,Sigma Chemical Co.,USA)で充填されたカラム(3
cm×40cm)に5ml/minの流速で吸着させた後、蒸留水2L
で洗浄し、ピリジン−ギ酸緩衝溶液(ph3.1)の0ない
し0.2M濃度勾配(gradient,3L)で溶出させた。溶出液
を15mlずつ分画した結果、分画No.79〜120においてA物
質が、分画No.129〜159においてB物質が溶出され、そ
れぞれを減圧下において濃縮し、黄色粉末のA物質500m
gおよびB物質90mgを収得した。
実施例4:CK−4416物質の分離(II) 実施例3から収得したA物質を蒸留水4mlに溶解さ
せ、セファデックスG−10(Sigma Chemical Co.,USA)
で充填されたカラム(3cm×50cm)に吸着させた後、水
で溶出させた。溶出液を5mlずつ分画した結果、分画No.
39〜45において活性物質が溶出され、これを濃縮乾燥し
て390mgの白色粉末を収得した。実施例3において収得
したB物質も同様の方法により白色粉末状で50mgを得
た。
せ、セファデックスG−10(Sigma Chemical Co.,USA)
で充填されたカラム(3cm×50cm)に吸着させた後、水
で溶出させた。溶出液を5mlずつ分画した結果、分画No.
39〜45において活性物質が溶出され、これを濃縮乾燥し
て390mgの白色粉末を収得した。実施例3において収得
したB物質も同様の方法により白色粉末状で50mgを得
た。
実施例5:CK−4416物質の分離(III) 実施例4から収得したA物質のうち、60mgを取り精製
用高速液体クロマトグラフィ(シマズ,日本国;カラ
ム:東ソー Amide−80,溶媒:60(v/v)%アセトニトリ
ル)に通過させた。このとき、一般式(I)で表示され
た物質のうち、m=1,n=2,R1=メチルハイドロキシド
およびR2=水素である物質;m=0,n=4,R1=メチルハイ
ドロキシドおよびR2=水素である物質;およびm=1,n
=3,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=水素である物
質が順次溶出されている。これらの三つの溶出液を減圧
濃縮させて凍結乾燥しそれぞれ5mg,45mgおよび3mgの白
色粉末を収得した。
用高速液体クロマトグラフィ(シマズ,日本国;カラ
ム:東ソー Amide−80,溶媒:60(v/v)%アセトニトリ
ル)に通過させた。このとき、一般式(I)で表示され
た物質のうち、m=1,n=2,R1=メチルハイドロキシド
およびR2=水素である物質;m=0,n=4,R1=メチルハイ
ドロキシドおよびR2=水素である物質;およびm=1,n
=3,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=水素である物
質が順次溶出されている。これらの三つの溶出液を減圧
濃縮させて凍結乾燥しそれぞれ5mg,45mgおよび3mgの白
色粉末を収得した。
実施例4から得られたB物質のうち、30mgを取り前述
したような同一の条件下において同様の方法で高速液体
クロマトグラフィにかけた。その結果、一般式(I)で
表示された物質のうち、m=0,n=2,R1=メチルハイド
ロキシドおよびR2=水素である物質を10mg収得し;m=1,
n=1,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=水素である
物質を7mg収得し;m=0,n=3,R1=メチルハイドロキシド
およびR2=水素である物質を8mg収得した。
したような同一の条件下において同様の方法で高速液体
クロマトグラフィにかけた。その結果、一般式(I)で
表示された物質のうち、m=0,n=2,R1=メチルハイド
ロキシドおよびR2=水素である物質を10mg収得し;m=1,
n=1,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=水素である
物質を7mg収得し;m=0,n=3,R1=メチルハイドロキシド
およびR2=水素である物質を8mg収得した。
実施例6:CK−4416物質の同定 上記一般式(I)で表示されたオリゴ糖誘導体のう
ち、m=0,n=4,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=
水素である物質を中心に、物理的、化学的方法を通じて
理化学的性状を確認しCK−4416物質を同定した。
ち、m=0,n=4,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=
水素である物質を中心に、物理的、化学的方法を通じて
理化学的性状を確認しCK−4416物質を同定した。
1.物質の色相 白色粉末 2.元素分析(%) 炭素 水素 窒素 (実測値) 44.31 6.32 1.36 (理論値) 44.35 6.33 1.39 3.分子式 C37H63NO30 4.分子量 1001.9 FAB−MS/MS(M+H)+1002(参照:図4) 5.融点 162℃ 6.比旋光度 [α]D=+146゜(c0.1,H2O) 7.UV吸収スペクトル(溶媒:水、濃度0.1mg/ml) 末端吸収を示す。
8.IR分光スペクトル KBr法で測定した赤外線分光スペクトル(参照:図
1) 主波長(cm-1)は3400、2900、1630、1410、1390、10
50である。
1) 主波長(cm-1)は3400、2900、1630、1410、1390、10
50である。
9.1H−NMRスペクトル 重水(D2O)を用いて測定した1H−NMRスペクトル(参
照:図2) 10.13C−NMRスペクトル 重水(D2O)を用いて測定した13C−NMRスペクトル
(参照:図3) 11.溶解性 水、メタノールに可溶 ベンゼン、ノルマル−ヘキサンに不溶 12.呈色反応 硝酸銀−水酸化ナトリウム、ソモギネルスン(Somogi
nelson)、過マンガン酸反応に陽性 ニンヒドリン、坂口(Sakaguchi)反応に陰性 13.酸性、中性、塩基性の区別 弱塩基性物質 14.TLC Rf値:0.14 (東京化成(株)、シリカゲルf(S201),日本国) 展開溶媒:エチルアセテート−メタノール−水(5:3:
2、v/v/v) さらに、m=0,n=2,R1=メチルハイドロキシドおよ
びR2=水素である式(I)の物質はC25H43NO20の分子式
と677.6111の分子量を有し、m=1,n=1,R1=メチルハ
イドロキシドおよびR2=水素である式(I)の物質はC
25H43NO20の分子式と677.6111の分子量を有し、m=0,n
=3,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=水素である式
(I)の物質はC31H53NO25の分子式と839.7514の分子量
を有し、m=1,n=2,R1=メチルハイドロキシドおよびR
2=水素である式(I)の物質はC31H53NO25の分子式と8
39.7514の分子量を有し、m=1,n=3,R1=メチルハイド
ロキシドおよびR2=水素である(I)の物質はC37H63NO
30の分子式と1001.8934の分子量を有することがそれぞ
れ確認された。
照:図2) 10.13C−NMRスペクトル 重水(D2O)を用いて測定した13C−NMRスペクトル
(参照:図3) 11.溶解性 水、メタノールに可溶 ベンゼン、ノルマル−ヘキサンに不溶 12.呈色反応 硝酸銀−水酸化ナトリウム、ソモギネルスン(Somogi
nelson)、過マンガン酸反応に陽性 ニンヒドリン、坂口(Sakaguchi)反応に陰性 13.酸性、中性、塩基性の区別 弱塩基性物質 14.TLC Rf値:0.14 (東京化成(株)、シリカゲルf(S201),日本国) 展開溶媒:エチルアセテート−メタノール−水(5:3:
2、v/v/v) さらに、m=0,n=2,R1=メチルハイドロキシドおよ
びR2=水素である式(I)の物質はC25H43NO20の分子式
と677.6111の分子量を有し、m=1,n=1,R1=メチルハ
イドロキシドおよびR2=水素である式(I)の物質はC
25H43NO20の分子式と677.6111の分子量を有し、m=0,n
=3,R1=メチルハイドロキシドおよびR2=水素である式
(I)の物質はC31H53NO25の分子式と839.7514の分子量
を有し、m=1,n=2,R1=メチルハイドロキシドおよびR
2=水素である式(I)の物質はC31H53NO25の分子式と8
39.7514の分子量を有し、m=1,n=3,R1=メチルハイド
ロキシドおよびR2=水素である(I)の物質はC37H63NO
30の分子式と1001.8934の分子量を有することがそれぞ
れ確認された。
以上の分析結果から、本発明のアミノオリゴ糖誘導体
は新規物質であることが確認された。
は新規物質であることが確認された。
実施例7:CK−4416物質の生物学的活性 CK−4416物質の生物学的活性はm=0,n=4,R1=メチ
ルハイドロキシドおよびR2=水素である一般式(I)の
アミノオリゴ糖化合物を試料として調査した。
ルハイドロキシドおよびR2=水素である一般式(I)の
アミノオリゴ糖化合物を試料として調査した。
実施例7−1:抗菌活性の測定 1mg/mlのCK−4416試料溶液を製造してペーパーディス
ク法によりグラム陽性菌およびグラム陰性菌に対する抗
菌活性を測定した結果、グラム陽性菌に対しては抗菌活
性を現さなかったが、グラム陰性菌のうち、コマモナス
テリゲナ(Comamonas terrigena)ATCC−8461に対して
は24.8mmの阻止円(inhibitory zone)を現した。
ク法によりグラム陽性菌およびグラム陰性菌に対する抗
菌活性を測定した結果、グラム陽性菌に対しては抗菌活
性を現さなかったが、グラム陰性菌のうち、コマモナス
テリゲナ(Comamonas terrigena)ATCC−8461に対して
は24.8mmの阻止円(inhibitory zone)を現した。
実施例7−2:アミラーゼ阻害活性の測定 0.25Mリン酸緩衝溶液(pH7.0)に溶解されたアミラー
ゼ酵素液(以下、‘A液’という)、0.25Mリン酸緩衝
溶液(pH7.0)(以下、‘B液’という)および0.04(w
/v)%澱粉水溶液(以下、‘C液’という)をそれぞれ
製造した。その後、B液にCK−4416物質を一定の濃度で
溶解させた溶液0.05ml,B液0.1mlおよびA液0.05mlを試
験管に取り37℃の恒温水槽において5分間反応させ、C
液0.5mlを添加して30分間反応させた。反応が済んだ後
にカラウェイ(Caraway)法で還元力を比色定量し、660
nmの吸光度を測定した(‘T'という)。一方、対照区と
して試料を添加せず同一の実験を行なった後、660nmの
吸光度を測定した(‘C'という)。以上から、試料の酵
素阻害活性を次の式から求めた。
ゼ酵素液(以下、‘A液’という)、0.25Mリン酸緩衝
溶液(pH7.0)(以下、‘B液’という)および0.04(w
/v)%澱粉水溶液(以下、‘C液’という)をそれぞれ
製造した。その後、B液にCK−4416物質を一定の濃度で
溶解させた溶液0.05ml,B液0.1mlおよびA液0.05mlを試
験管に取り37℃の恒温水槽において5分間反応させ、C
液0.5mlを添加して30分間反応させた。反応が済んだ後
にカラウェイ(Caraway)法で還元力を比色定量し、660
nmの吸光度を測定した(‘T'という)。一方、対照区と
して試料を添加せず同一の実験を行なった後、660nmの
吸光度を測定した(‘C'という)。以上から、試料の酵
素阻害活性を次の式から求めた。
その結果、50%阻害活性(IC50)の濃度は1.6×10-6M
であった。
であった。
実施例7−3:血糖上昇抑制活性の測定 12時間絶食させたSD雄性ラットを1群5匹ずつ用い、
澱粉1.5g/kgを経口投与し、同時にCK−4416を40mg/kg、
80mg/kg経口投与した後60分経過後に採血して血液中の
グルコース量をグルコースオキシダーゼ(glucose oxid
ase)法で測定し、その結果をCK−4416を投与しない対
照群と比較した。結果を表3に示す。
澱粉1.5g/kgを経口投与し、同時にCK−4416を40mg/kg、
80mg/kg経口投与した後60分経過後に採血して血液中の
グルコース量をグルコースオキシダーゼ(glucose oxid
ase)法で測定し、その結果をCK−4416を投与しない対
照群と比較した。結果を表3に示す。
表3から明らかなように、本発明のCK−4416物質は今
まで報告されたその他のアミノオリゴ糖化合物、例えば
NS−複合体よりも血糖濃度をさらに低下させることがわ
かった。
まで報告されたその他のアミノオリゴ糖化合物、例えば
NS−複合体よりも血糖濃度をさらに低下させることがわ
かった。
実施例7−4:毒性 ICRマウス5匹にCK−4416 1g/kgを経口投与し、CK−
4416の急性毒性を調査した結果、投与後14日間全てのマ
ウスが生存した。
4416の急性毒性を調査した結果、投与後14日間全てのマ
ウスが生存した。
精製された一般式(I)のCK−4416は遊離された形態
に用いるか、または通常の方法に従い次のような塩基で
処理して得られる薬学的に許容可能な塩の形態に用いら
れるが、塩基として適合した例としては、アルカリ金属
塩基(例えば、ナトリウム、カリウムなど)またはアル
カリ土金属塩基(例えば、カルシウム、バリウム、亜
鉛、マンガンなど)であり、水酸化ナトリウムと炭酸カ
リウムなどのアルカリ金属塩基がより好ましい。また、
薬学的に許容される塩はトリエチルアミン、ジベンジル
アミン、トリエタノールアミン、エタノールアミン、N,
N′−ジベンジルエチレンジアミン、プロカインおよび
これと機能的に同等なアミンなどのアミン類と反応させ
る従来の方法で製造することができる。
に用いるか、または通常の方法に従い次のような塩基で
処理して得られる薬学的に許容可能な塩の形態に用いら
れるが、塩基として適合した例としては、アルカリ金属
塩基(例えば、ナトリウム、カリウムなど)またはアル
カリ土金属塩基(例えば、カルシウム、バリウム、亜
鉛、マンガンなど)であり、水酸化ナトリウムと炭酸カ
リウムなどのアルカリ金属塩基がより好ましい。また、
薬学的に許容される塩はトリエチルアミン、ジベンジル
アミン、トリエタノールアミン、エタノールアミン、N,
N′−ジベンジルエチレンジアミン、プロカインおよび
これと機能的に同等なアミンなどのアミン類と反応させ
る従来の方法で製造することができる。
本発明における薬剤組成物はCK−4416物質およびその
塩を有効成分にして、ここに常用の無機または有機の担
体を加えて固体、半固体または液体の形態で、経口投与
剤および外用剤などの非経口投与剤と製剤化した。経口
投与用の固体形製剤としては、錠剤、丸剤、顆粒剤、粉
剤、カプセル剤などがあり、経口投与用の液体形製剤と
しては、溶剤、懸濁剤、乳化剤などがある。非経口投与
のための製剤としては、注射剤および点滴剤などを挙げ
られる。
塩を有効成分にして、ここに常用の無機または有機の担
体を加えて固体、半固体または液体の形態で、経口投与
剤および外用剤などの非経口投与剤と製剤化した。経口
投与用の固体形製剤としては、錠剤、丸剤、顆粒剤、粉
剤、カプセル剤などがあり、経口投与用の液体形製剤と
しては、溶剤、懸濁剤、乳化剤などがある。非経口投与
のための製剤としては、注射剤および点滴剤などを挙げ
られる。
注射剤は化合物を、好ましくは蒸留水に溶解させるか
塩化ナトリウムなどの塩水溶液に溶解させて製造する。
塩化ナトリウムなどの塩水溶液に溶解させて製造する。
点滴剤は化合物を生理食塩水、葡萄糖−塩化ナトリウ
ム溶液などの適当な溶液に溶解させて製造する。
ム溶液などの適当な溶液に溶解させて製造する。
本発明において、一般式(I)で表示される化合物が
薬学的組成物およびその剤型に含まれる量は、特定用
途、化合物の活性程度、所望する濃度に従って異なる
が、一般的に0.5ないし90重量%である。
薬学的組成物およびその剤型に含まれる量は、特定用
途、化合物の活性程度、所望する濃度に従って異なる
が、一般的に0.5ないし90重量%である。
本発明の化合物の有効量は患者の状態に従い異なる
が、一般的に体表面積1m2当り50ないし1000mgの活性化
合物を投与することにより所望する結果を達成すること
ができる。
が、一般的に体表面積1m2当り50ないし1000mgの活性化
合物を投与することにより所望する結果を達成すること
ができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 チュン,ヒャン,シク 大韓民国 121−040 ソウル,マポ− ク,ドーワ−ドン,マポサムサン アパ ートメント 102−1702 (72)発明者 キム,ジョン,グワン 大韓民国 152−050 ソウル,グロー ク,グロ−ドン,ハンシン アパートメ ント,1−808 (72)発明者 チャン ハン,ベ 大韓民国 425−020 キョンギ−ド,ア ーンサン,キョジャン−ドン,ジュゴン アパートメント,904−1304 (72)発明者 キム,サン,ホ 大韓民国 150−010 ソウル,ヨンダン ポ−ク,ヨイド−ドン,クワンジャン アパートメント,8−306 (72)発明者 ミン,キョン,ボク 大韓民国 151−057 ソウル,クワナグ ーク,ボンチュン 7−ドン,1626−23 (72)発明者 ムーン,キャン シク 大韓民国 110−500 ソウル,ジョング ロ−ク,エーワ−ドン,9−57 (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C07H 17/04 A61K 31/71 C12P 19/26 CA(STN) REGISTRY(STN)
Claims (4)
- 【請求項1】下記の一般式(I)で表示されるアミノオ
リゴ糖CK−4416物質および薬学的に許容されるその塩: 上記式において、 mは0または1の整数であり、nは1ないし4の整数で
あり、m+nは1ないし5の整数であり、R1は低級アル
キルハイドロキシドであり、R2は水素または低級アルキ
ル基である。 - 【請求項2】請求項1に記載のCK−4416物質および薬学
的に許容されるその塩を有効成分として含む糖質分解酵
素阻害剤。 - 【請求項3】請求項1に記載のCK−4416物質および薬学
的に許容されるその塩を有効成分として含む抗菌剤。 - 【請求項4】ストレプトマイセス種CK−4416(KCTC 01
31BP)を培養し、CK−4416物質を分離する工程を含む請
求項1に記載のCK−4416物質および薬学的に許容される
その塩を製造する方法。
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