JP2024518396A - 三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む神経再生促進組成物 - Google Patents
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Abstract
本発明は、新規な製造方法により製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む神経再生促進組成物および神経再生促進方法に関するものである。本発明の新規な方法により製造された細胞外小胞は、神経新生、神経分化または神経回路回復を誘導し、神経可塑性を向上させることができるため、神経再生を必要とする様々な疾患の治療に有用に活用されることができる。
Description
本発明は、新規な製造方法により製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む神経再生促進組成物および神経再生促進方法に関するものである。
多様な疾患において、幹細胞、特に間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ；ＭＳＣ）を用いた治療法と肯定的な臨床結果が報告されてきた。ただし、幹細胞治療剤には、副作用として血管閉塞、腫よう形成、凝固障害などの細胞関連副作用のリスクがあり、臨床試験による効能検証が依然として必要なのが実情である。幹細胞の傍分泌（ｐａｒａｃｒｉｎｅ）効果により、周辺皮膚細胞の再生と血管再生能力の増進が誘導されることが知られており、特に、細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅｓ；ＥＶ）が主な傍分泌効果の有効性因子として知られている。
細胞外小胞とは、大きさによってエクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）と微小小胞体（ｍｉｃｒｏｖｅｓｉｃｌｅ）に分類されるが、エクソソームは直径３０～１５０ｎｍであり、微小小胞体は１００～１，０００ｎｍの大きさを有する。細胞外小胞は、細胞膜の一部が血中に放出されたものであり、タンパク質と核成分の両方を含有しており、細胞間コミュニケーションを媒介することが知られている。幹細胞の代わりに細胞外小胞を使用することは、幹細胞の使用による副作用を最小限に抑え、安全性を高めるだけでなく、生体内分布（ｂｉｏｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ）、生産工程の面でも有利である。
脳神経可塑性（ｂｒａｉｎ ｎｅｕｒｏｐｌａｓｔｉｃｉｔｙ）は、神経経路が構造的機能的に変化し、再組織化する現象である。脳梗塞および頭部外傷などの脳損傷だけでなく、認知症および多くの変性神経疾患において、神経経路の損傷または減少が症状の発生を引き起こす。現在までに脳神経経路を回復させるための可能な治療や方法はなく、脳梗塞や認知症などの脳疾患患者に臨床適用されたことがない。現在、物理治療や行動治療などがこれらの患者に適用されているが、その治療効果は制限的である。したがって、神経新生の増進および神経回路の回復による脳神経可塑性の向上は、ほとんどの脳疾患に治療効果を示すことができると期待される。
しかし、未だ幹細胞に由来する細胞外小胞を使用するための大量生産および取得方法などが確立されておらず、幹細胞－由来の細胞外小胞の特性を維持しながら、細胞外小胞が持っている効能をさらに増進させることができる方法については研究があまり行われていない。また、特に脳神経可塑性を向上させることができる細胞外小胞については広く研究されていない。
したがって、効能がさらに増進された細胞外小胞およびそれを用いた新規な治療剤が求められている。
そこで、本発明者らは、三次元スフェロイド型細胞凝集体またはこれより由来する細胞外小胞を製造するため、大量生産が可能であり、且つ、培養時間を短縮できる方法を研究し、その結果、マイクロウェルを用いた静的培養により三次元スフェロイド型細胞凝集体（３Ｄ－静的－スフェロイド）を製造し、これを用いて細胞外小胞を製造すると、神経再生を促進して神経可塑性を向上させることができる細胞外小胞が製造されることを確認することによって本発明を完成するに至った。
したがって、本発明の目的は、神経再生促進能が向上された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を製造し、これを含む神経系疾患および損傷予防、改善または治療用組成物を提供するものである。
前記目的を達成するために、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を含む、神経系疾患および損傷予防または治療用医薬組成物を提供する。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む、神経系疾患および損傷予防または改善用食品組成物を提供する。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階； を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む、神経再生促進用ｉｎ ｖｉｔｒｏ組成物を提供する。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；を含む、三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む神経再生促進用組成物の製造方法を提供する。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階を通じて三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を製造する段階；および（ｃ）前記（ｂ）段階を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を必要とするオブジェクトに処理する段階；を含む神経系疾患および損傷予防または治療方法を提供する。
本発明の新規な方法によって製造される細胞外小胞は、神経新生、神経分化、または神経回路の回復を誘導し、神経可塑性を向上させることができるので、神経再生を必要とする様々な疾患の治療に有用に活用されることができる。
本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を含む、神経系疾患および損傷予防または治療用医薬組成物を提供する。
本発明における前記細胞は、細胞外小胞を分離可能な細胞であれば、制限なく使用することができ、自然界生物のオブジェクトから分離された細胞であることができる。また、前記細胞は、ヒトおよび非ヒト哺乳類を含む任意の類型の動物、植物に由来するものであってもよく、多様な種類の免疫細胞、腫瘍細胞、幹細胞であってもよく、好ましくは、前記幹細胞は、間葉系幹細胞、万能幹細胞、誘導万能幹細胞または胚幹細胞であってもよい。
本発明における前記三次元培養は、試験管内で立体配置の状態で培養されることを意味し、二次元培養とは異なり、三次元培養時、細胞成長は細胞をして生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）であらゆる方向に成長できるようにし、それは生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）での細胞環境とより類似するものであることができる。
本発明において、前記（ａ）段階の三次元培養は、本発明が属する技術分野に知られた全ての三次元細胞培養技術によって行うことができ、例えば、マイクロウェルアレイ培養、多孔性微粒子培養、ｈａｎｇｉｎｇ ｄｒｏｐ培養、ｌｏｗ ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ ｐｌａｔｅ培養、ｍｅｍｂｒａｎｅベースｃｅｌｌ－ｄｅｔａｃｈｍｅｎｔ培養、ｔｈｅｒｍａｌ ｌｉｆｔｉｎｇ培養、遠心分離培養、ｓｅｍｉｓｏｌｉｄ ｍｅｄｉｕｍ培養などを用いた細胞培養であってもよい。好ましくは、前記三次元培養は、動的（ｄｙｎａｍｉｃ）培養または静的（ｓｔａｔｉｃ）培養であってもよく、より好ましくは、静的（ｓｔａｔｉｃ）培養であってもよい。本発明において、（ａ）段階の三次元培養を静的（ｓｔａｔｉｃ）培養する場合、振とう培養に必要な装置を必要としないため、培養をさらに容易にすることができ、ＧＭＰ（Ｇｏｏｄ ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ ｐｒａｃｔｉｃｅｓ、医薬品および医薬部外品の製造管理および品質管理の基準）製造所で大量培養を可能にする長所がある。
本発明において、前記（ａ）段階における三次元（３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養は、１～１０日間培養するものであってもよく、好ましくは、２～４日間培養するものであってもよい。本発明において、前記（ａ）段階における培養を２～４日間培養する場合、三次元スフェロイド型細胞凝集体内に存在する細胞の生存率が高いレベルで維持され、既存の三次元スフェロイド型細胞凝集体の製造過程に比べて培養時間が相対的に短く、迅速に三次元スフェロイド型細胞凝集体およびこれより由来する細胞外小胞を製造することができる。
本発明において、前記（ａ）段階における三次元培養は、マイクロウェルに間葉系幹細胞を１００～１０００細胞／ウェルの密度に分注し、培養するものであってもよく、好ましくは、１００～６００細胞／ウェルの密度に分注し、培養するものであってもよく、より好ましくは、１００～５００細胞／ウェルの密度に分注し、培養するものであってもよい。
本発明において、前記（ｂ）段階の細胞外小胞を分離する段階は、細胞または細胞凝集体を含む試料の押出し、超音波分解、細胞溶解、均質化、冷凍－解凍、電気穿孔、化学物質処理、機械的分解および外部的に細胞に力を加えた物理的刺激の処理からなる群から選択された方法を用いて製造することができ、好ましくは、タンジェンシャルフローろ過（Ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ Ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ、ＴＦＦ）方法により分離するものであってもよいが、これらに制限されるものではない。
本発明において、ＭｉｃｒｏＲＮＡは、「ｍｉｒ」を前につけて、後ろに「－」と数字を付して命名される。このとき、数字はしばしば命名された順番を表したりすることもあるが、例えば、ｍｉｒ－１２３は、ｍｉｒ－１５６よりも先に命名されたもので、より先に発見されたものと予想される。「ｍｉｒ－」は、ｐｒｅ－ｍｉｃｒｏＲＮＡを示し、大文字が含まれた「ｍｉＲ」は、ｍａｔｕｒｅ ｍｉｃｒｏＲＮＡを意味する。１つまたは２つの配列を除き、ほぼ同一配列のｍｉｃｒｏＲＮＡは、小文字を加えて命名する。例えば、ｍｉＲ－１２１ａとｍｉＲ－１２１ｂは、それぞれのｐｒｅｃｕｒｓｏｒであるｍｉｒ－１２１ａとｍｉｒ－１２１ｂで生成され、配列も非常に類似する。Ｍａｔｕｒｅ ｍｉｃｒｏＲＮＡは同じであるが、ゲノム上の別の部位に位置するｐｒｅ－ｍｉｃｒｏＲＮＡは、さらに「－」と数字を付して命名する。一例として、ｐｒｅ－ｍｉｃｒｏＲＮＡであるｍｉｒ－１２１－１とｍｉｒ－１２１－２は、同じｍａｔｕｒｅ ｍｉｃｒｏＲＮＡ（ｍｉＲ－１２１）になるが、ゲノム上の別の部位に位置する。種によってｍｉｃｒｏＲＮＡの命名は前方に表記する。例えば、ｈｓａ－ｍｉＲ－１２３は、ヒト（Ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）ｍｉｃｒｏＲＮＡ、ｏａｒ－ｍｉＲ－１２３は、羊（Ｏｖｉｓ ａｒｉｅｓ）ｍｉｃｒｏＲＮＡである。「ｖ」は、ｖｉｒａｌ（ｍｉＲＮＡ ｅｎｃｏｄｅｄ ｂｙ ａ ｖｉｒａｌ ｇｅｎｏｍｅ）、「ｄ」は、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｉｃｒｏＲＮＡを意味する。２つのｍａｔｕｒｅ ｍｉｃｒｏＲＮＡが同一のｐｒｅ－ｍｉｃｒｏＲＮＡの互いに異なるａｒｍｓ（３'ａｒｍまたは５'ａｒｍ）に由来する場合、「－３ｐ」または「－５ｐ」を後方に追加して命名する。ｍｉＲ－１４２－３ｐは、３'ａｒｍに由来するものであり、ｍｉＲ－１４２－５ｐは、５'ａｒｍに由来するものである。ＭｉｃｒｏＲＮＡの命名法は一般的に前記のような基準に基づくが、例外の場合もある。
本発明において、前記細胞外小胞は、臨床的に有意な物質を公知の細胞外小胞と比較して高発現するものであることができ、前記臨床的に有意な物質は、神経再生効果を示す物質であることができる。例えば、好ましくは、本発明の細胞外小胞は、間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞および二次元培養した間葉系幹細胞に由来の細胞外小胞に比べて神経再生と関連したｍｉＲ－２７ａ、ｍｉＲ－１３２、ｍｉＲ－１４６ａ、およびｍｉＲ－１４６ｂからなる群から選択された１種以上を高発現するものであってもよく、ＶＥＧＦ（Ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）、ＢＤＮＦ（ｂｒａｉｎ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ ｆａｃｔｏｒ）、ＦＧＦ（ｂｒａｉｎ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ ｆａｃｔｏｒ）およびＮＧＦ（ｂｒａｉｎ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ ｆａｃｔｏｒ）からなる群から選択された１種以上を高発現するものであってもよい。より好ましくは、本発明の細胞外小胞は、間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞および二次元培養した間葉系幹細胞に由来の細胞外小胞に比べて神経再生と関連したｍｉＲ－２７ａ、ｍｉＲ－１３２、ｍｉＲ－１４６ａおよびｍｉＲ－１４６ｂ、ＶＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＦＧＦおよびＮＧＦを高発現するものであってもよい。
また、前記細胞外小胞は、細胞に処理時、細胞内に混入して内在化（ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ）するものであることができ、細胞内に混入して内在化する場合、細胞外小胞で高発現する臨床的に有意な物質を細胞に効果的に送達し、細胞内で高発現するものであることができる。
本発明において、神経再生促進効果を示す三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞は、「３Ｄ－静的－スフェロイド－ＥＶ」と相互交換的に使用されることができる。また、これと比較して三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞は、「３Ｄ－動的－ＰＥＧ－スフェロイド－ＥＶ」と相互交換的に使用されることができる。
本発明における「間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞」は、間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体から分離した細胞外小胞であれば、制限なく含むものであってもよく、好ましくは、韓国登録特許（出願番号１０－２０１６－００５３０２６、幹細胞に由来の細胞外小胞体の生産方法）に開示された細胞外小胞であってもよい。
本発明における「二次元培養した間葉系幹細胞に由来の細胞外小胞」は、幹細胞を通常の二次元培養方法に従って培養し、通常の細胞外小胞の分離方法によって分離された細胞外小胞であれば、制限なく含むことができる。本発明の一実施例では、前記通常の二次元培養方法をセルスタック（Ｃｅｌｌ ｓｔａｃｋ）で３日間培養した幹細胞をＰＢＳ洗浄し、無血清培地に交換し、さらに２日間培養する方法で実施した。
本発明における前記三次元スフェロイド型細胞凝集体は、平均直径が７４．４３±７．７５６μｍであってもよく、好ましくは、大きさ５５～９５．０μｍの範囲を有し、１５５個の前記三次元スフェロイド型細胞凝集体のサイズ分布を測定した結果、平均直径が７４．４３μｍ、変動係数（ＣＶ）が９．５９％であってもよい。本発明における三次元スフェロイド型細胞凝集体は、サイズ分布の尖度が「間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体」に比べて高いものであることができる。したがって、前記三次元スフェロイド型細胞凝集体の大きさは、「間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体」と比較して大きさが小さく、相対的に均一なサイズ分布を有するものであることができる。
本発明において、前記マイクロウェルは、ＴＭＳＰＭＡ（３－（Ｔｒｉｍｅｔｏｘｙｓｉｌｙ）ｐｒｏｐｙｌｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＥＡ（Ｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ ａｃｒｙｌａｔｅ）、ＧＭＡ（Ｇｌｙｃｉｄｙｌ ｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ）、ＥＧＤＭＡ（ｄｉｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ ｄｉｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ）、ＴＨＦＡ（Ｔｅｔｒａｈｙｄｒｏｆｕｒｆｕｒｙｌ ａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＭＡＡ（Ｈｙｄｒｏｘｙｍｅｔｈｕｌ ａｃｒｙｌａｍｉｄｅ）、ＰＥＡ（Ｐｈｅｎｙｌ ｅｐｏｘｙａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＯＦＨＡ（６－Ｈｙｄｒｏｘｙ－２，２，３，３，４，４，５，５－ｏｃｔａｆｌｕｏｒｏ）、ＥＯＰＴ（Ｐｏｌｙｅｔｈｏｘｙｌａｔｅｄ（４）ｐｅｎｔａｅｒｙｔｈｒｉｔｏｌｔｅｔｒａａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＰＡ（Ｈｙｄｒｏｘｙｐｒｏｐｙｌ ａｃｒｙｌａｔｅ）、ＢＭＡ（Ｂｕｔｈｙｌｍｅｔｈａｃｒｌａｔｅ）、ＰＥＴＩＡ（Ｐｅｎｔａｅｒｙｔｈｒｉｔｏｌ ｔｒｉａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＤＤＡ（Ｈｅｘａｎ ｄｉｏｌ ｄｉａｃｒｙｌａｔｅ）、ＥＧＰＥＡ（Ｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ ｐｈｅｎｙｌｅｔｈｅｒａｃｒｙｌａｔｅ）、ＢＭ（Ｂｅｎｚｙｌｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＰＰＡ（Ｈｙｄｒｏｘｙｐｈｅｎｏｘｙｐｒｏｐｙｌ ａｃｒｙｌａｔｅ）、ＢＨＰＥＡ（２－（４－Ｂｅｎｚｏｙｌ－３－ｈｙｄｒｏｘｙｐｈｅｎｏｘｙ）ｅｔｈｙｌａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＥＭＡ（Ｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ ｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ）、ＨＰＭＡ（Ｎ－（２－Ｈｙｄｒｏｘｙｐｒｏｐｙｌ） ｍｅｔｈａｃｒｙｌａｍｉｄｅ）およびＭＰＣ（２－Ｍｅｔｈａｃｒｙｌｏｙｌｏｘｙｅｔｈｙｌ Ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌｃｈｏｌｉｎｅ Ｐｏｌｙｍｅｒ）からなる群から選択されたいずれかでコーティングされたものであってもよく、好ましくは、ＭＰＣ（２－Ｍｅｔｈａｃｒｙｌｏｙｌｏｘｙｅｔｈｙｌ Ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌｃｈｏｌｉｎｅ Ｐｏｌｙｍｅｒ）でコーティングされたものであってもよいが、これらに制限されるものではない。
本発明における前記マイクロウェルは、直径が２００～８００μｍであることができ、好ましくは３００～８００μｍ、より好ましくは４００～８００μｍの直径を有するものであることができる。
また、前記マイクロウェルは、深さのない平坦な構造のマイクロウェルである、または深さを形成するマイクロウェルの場合、１００～１０００μｍ、好ましくは１００～９００μｍ、より好ましくは２００～９００μｍである構造を有するものであることができる。
前記構造により培養される間葉系幹細胞が培養時間経過後にも高い水準で生存率を維持するものであることができる。好ましくは、前記マイクロウェルを１，０００個～１００，０００個含むマイクロアレイを作製し、細胞凝集体の生産収率を増加させることができる。
本発明における前記「三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）の製造方法」により細胞外小胞を製造すれば、静的培養による製造上の利点に加え、臨床適用性、特に神経新生、神経分化および神経回路回復のような神経再生能が向上された細胞外小胞を迅速かつ効率的に大量生産することができる。特に、「間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞」の製造方法または「二次元培養した間葉幹系幹細胞に由来の細胞外小胞」の製造方法のような、従来の細胞外小胞の製造方法がＧＭＰに不適切であるのとは異なり、本発明の細胞外小胞の製造方法は、ＧＭＰ適用に適しているという特徴があるので、神経系損失および損傷または治療用医薬組成物の製造に特に適合し得る。
本発明において、神経可塑性とは、神経経路が構造機能的に変化し、再組織化する現象を意味する。本発明によれば三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞の処理により神経再生、神経新生の誘導、神経分化の誘導が効果的に達成されるため、神経可塑性を向上させることができる。
したがって、本発明の三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞は、多様な神経神経系および神経損傷、神経再生が必要な状態に適用可能であり、本発明の細胞外小胞が適用できる疾患の種類は、これらに制限されるものではないが、脊髄損傷、パーキンソン病、脳卒中、筋萎縮性側索硬化症、運動神経損傷、外傷による末梢神経損傷、虚血性脳損傷による神経損傷、新生児低酸素性脳損傷、脳性麻痺、てんかん、難治性てんかん、アルツハイマー病、先天性代謝性神経疾患および外傷性脳損傷（ｔｒａｕｍａｔｉｃ ｂｒａｉｎ ｉｎｊｕｒｙ）からなる群から選択される１種以上の疾患または損傷であることができる。また、特に本発明の三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞は、神経新生誘導用、神経分化誘導用または神経回路回復誘導用であることができる。
本発明では、三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞が神経回路の回復を誘導できるかどうかを確認するために、動物モデルに三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を投与し、ＭＲＩ ＤＴＩ（ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ－ｔｅｎｓｏｒ ｉｍａｇｅ）分析を行い、その結果、神経回路が再生され、神経線維の増加が促進されることを確認した。
本発明の医薬組成物は、前記有効成分の他に、医薬組成物の製造に通常使用される適切な担体、賦形剤および希釈剤をさらに含み得る。本発明の医薬組成物は、その他に医薬活性成分や活性混合物をさらに含み得る。
本発明の医薬組成物は、それぞれ常法によって、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、懸濁液、エマルジョン、シロップ、エアロゾル等の経口型剤形、外用剤、坐剤及び滅菌注射用溶液の形態に剤形化して使用され得る。組成物に含まれ得る担体、賦形剤および希釈剤としては、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール、マルチトール、デンプン、アカシアゴム、アルジネート、ゼラチン、カルシウムホスフェート、カルシウムシリケート、セルロース、メチルセルロース、微晶質セルロース、ポリビニルピロリドン、水、メチルヒドロキシベンゾエート、プロピルヒドロキシベンゾエート、タルク、マグネシウムステアレート及び鉱物油が挙げられる。製剤化する場合は、通常使用する充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、崩壊剤、界面活性剤等の希釈剤または賦形剤を使用して調剤される。経口投与のための固形製剤には、錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤等が含まれ、このような固形製剤は、前記組成物に少なくとも一つ以上の賦形剤、例えば、デンプン、炭酸カルシウム（Ｃａｌｃｉｕｍ ｃａｒｂｏｎａｔｅ）、スクロース（Ｓｕｃｒｏｓｅ）またはラクトース（Ｌａｃｔｏｓｅ）、ゼラチン等を混ぜて調剤される。また、単純な賦形剤以外にマグネシウムステアレート、タルクのような潤滑剤も使用される。
経口のための液状製剤としては、懸濁剤、内用液剤、乳剤、シロップ剤等が該当するが、よく使用される単純希釈剤である水、リキッドパラフィン以外に様々な賦形剤、例えば、湿潤剤、甘味剤、芳香剤、保存剤等が含まれ得る。非経口投与のための製剤には、滅菌された水溶液、非水性溶剤、懸濁剤、乳剤、凍結乾燥製剤、坐剤が含まれる。非水性溶剤、懸濁剤としては、プロピレングリコール（Ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ）、ポリエチレングリコール、オリーブオイルのような植物性油、エチルオレートのような注射用エステルなどが使用され得る。坐剤の基剤としては、ウィテプソール（Ｗｉｔｅｐｓｏｌ）、マクロゴール、ツイン（Ｔｗｅｅｎ）６１、カカオ脂、ラウリン脂、グリセロゼラチンなどが使用され得る。
本発明の医薬組成物の好ましい投与量は、患者の病態および体重、疾病の程度、薬物形態、投与経路および期間によって異なるが、当業者によって適宜選択され得る。投与は１日に１回投与してもよく、数回に分けて投与してもよい。前記の投与量は、いかなる点でも本発明の範囲を限定するものではない。
本発明の医薬組成物は、ラット、マウス、家畜、ヒトなどの哺乳動物に多様な経路で投与することができる。投与のすべての方式は予想され得るが、例えば、経口、直腸または静脈、筋肉、皮下、子宮内硬膜または脳室内（Ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）注射によって投与され得る。
本発明の前記賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、矯味剤、着香料等の用語の定義は、当業界に公知の文献に記載されたものであって、その機能等が同一ないし類似するものを含む。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を３次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、３次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階を通じて、三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を製造する段階；および（ｃ）前記（ｂ）段階により製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を必要とするオブジェクトに処理する段階；を含む神経系疾患および損傷または治療方法を提供する。
前記オブジェクトは、ヒトを含む哺乳類であることが好ましく、神経系疾患治療を必要とする患者であって神経損傷または神経系疾患治療中の患者、神経損傷または神経系疾患の治療を受けたことのある患者、神経損傷または神経系疾患の治療を受ける必要のある患者を全て含み、神経損傷または神経系疾患治療のために外科的手術を受けた患者もまた含まれることができる。
また、本発明は、この他の既存の神経損傷または神経系疾患の治療のための薬物または治療方法と併用して処理することができる。本発明を併用処理する場合、これは神経損傷または神経系疾患の治療のための薬物または治療方法と同時にまたは順次処理することができる。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を３次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、３次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む、神経系疾患および損傷予防または改善用食品組成物を提供する。
前記食品組成物は、医薬組成物に関する説明をすべて同様に引用することができる。前記食品は、特に健康機能食品を含む。本発明で定義される「健康機能食品」とは、人体に有用な機能性を有する原料や成分を用いて、製造し加工した食品を意味し、「機能性」とは、人体の構造及び機能に対して栄養素を調節又は生理学的作用等のような健康用途に有用な効果を得る目的で摂取することを意味する。前記健康機能食品は、錠剤、カプセル、粉末、顆粒、液状、丸剤のいずれかの形態を有することができる。
また、本発明の食品組成物は、各種食品や飲料等に機能性成分を添加した形態の食品組成物であってもよい。前記食品は、例えば、飲料、粉末飲料、固形物、チューインガム、茶、ビタミン複合体、食品添加剤のいずれかの形態を有することができる。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を３次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、３次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む、神経再生促進用ｉｎ ｖｉｔｒｏ組成物に関するものである。
本発明の神経再生促進用ｉｎ ｖｉｔｒｏ組成物は、実験目的で用いられることができ、神経損傷により神経再生を必要とする単離された細胞、組織に処理するための目的の組成物であることができる。本発明の神経再生促進用ｉｎ ｖｉｔｒｏ組成物は、三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む培地組成物であることができ、前記培地は当分野における通常の技術者に公知の培地を制限なく含むことができ、例えば、血清（例えば、ウシ胎児血清、ウマ血清およびヒト血清）が含有された培地である。本発明で用いられ得る培地は、例えば、ＲＰＭＩシリーズ、ＥＭＥＭ、ＭＥＭ、Ｉｓｃｏｖｅ'ｓ ＭＥＭ、１９９培地、ＣＭＲＬ １０６６、ＲＰＭＩ １６４０、Ｆ１２、Ｆ１０、ＤＭＥＭ、ＤＭＥＭとＦ１２の混合物、Ｗａｙ－ｍｏ、ＭｃＣｏｙ'ｓ ５Ａ、または神経再生を必要とする細胞を培養するのに適した当技術分野に公知の培地を含み得る。前記神経再生は、神経新生誘導用、神経分化誘導用、または神経回路回復誘導用を全部含むという意味で使用することができる。
また、本発明は、（ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を３次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、３次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；を含む、三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む神経再生促進用組成物の製造方法を提供する。
前記製造方法によれば、神経再生促進効果に優れた３次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞をＧＭＰ基準に合わせて、迅速に大量生産することができる。
重複する内容は、本明細書の複雑性を考慮して省略するものとし、本明細書において特に断りのない用語は、本発明が属する技術分野で通常使用される意味を有するものである。
以下、本発明を実施例により詳しく説明する。ただし、以下の実施例は、本発明を例示するものに過ぎず、本発明の内容が以下の実施例により限定されるものではない。
ウェスタンブロット
細胞および細胞外小胞を放射線免疫沈降アッセイ（ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ、ＲＩＰＡ）緩衝剤（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．６、１５０ｍＭのＮａＣｌ、０．５％のｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００、１％のＮａ－ｄｅｏｘｙｃｈｏｌａｔｅ、０．１％のｓｏｄｉｕｍ ｄｏｄｅｃｙｌ ｓｕｌｆａｔｅ（ＳＤＳ）およびタンパク質分解酵素阻害剤）に溶解させた。計２０μｇのタンパク質をＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離し、ニトロセルロース膜（Ｂｉｏ－Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ、ＵＳＡ）に移した。その次に、ニトロセルロース膜をヒストンＨ２Ａ．Ｚ、ヒストンＨ３、ラミンＡ／Ｃ、フロチリン－１（１：１，０００、Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、ビバリー、ＭＡ、ＵＳＡ）またはカルレティキュリン（１：１，０００、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｉｎｃ．、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ、ＵＳＡ）に対する一次抗体と共に４℃で一晩培養した。Ｔｒｉｓ－緩衝生理食塩水－Ｔｗｅｅｎ ２０（Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ－Ｔｗｅｅｎ ２０）で洗浄した後、ニトロセルロース膜を西洋わさびペルオキシダーゼ（ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ、ＨＲＰ）－結合二次抗体（１：１，０００、抗－ウサギ、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、ビバリー、ＭＡ、ＵＳＡ）と共に２時間培養した。タンパク質をＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｉｎｃ．（Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ、ＵＳＡ）の化学発光基質を用いて検出した。標識タンパク質をＸ－線フィルム（Ａｇｆａ、Ｍｏｒｔｓｅｌ、Ｂｅｌｇｉｕｍ）を通じて視覚化した。
細胞および細胞外小胞を放射線免疫沈降アッセイ（ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ、ＲＩＰＡ）緩衝剤（２５ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．６、１５０ｍＭのＮａＣｌ、０．５％のｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００、１％のＮａ－ｄｅｏｘｙｃｈｏｌａｔｅ、０．１％のｓｏｄｉｕｍ ｄｏｄｅｃｙｌ ｓｕｌｆａｔｅ（ＳＤＳ）およびタンパク質分解酵素阻害剤）に溶解させた。計２０μｇのタンパク質をＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離し、ニトロセルロース膜（Ｂｉｏ－Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ、ＵＳＡ）に移した。その次に、ニトロセルロース膜をヒストンＨ２Ａ．Ｚ、ヒストンＨ３、ラミンＡ／Ｃ、フロチリン－１（１：１，０００、Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、ビバリー、ＭＡ、ＵＳＡ）またはカルレティキュリン（１：１，０００、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｉｎｃ．、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ、ＵＳＡ）に対する一次抗体と共に４℃で一晩培養した。Ｔｒｉｓ－緩衝生理食塩水－Ｔｗｅｅｎ ２０（Ｔｒｉｓ－ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ－Ｔｗｅｅｎ ２０）で洗浄した後、ニトロセルロース膜を西洋わさびペルオキシダーゼ（ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ、ＨＲＰ）－結合二次抗体（１：１，０００、抗－ウサギ、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、ビバリー、ＭＡ、ＵＳＡ）と共に２時間培養した。タンパク質をＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｉｎｃ．（Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ、ＵＳＡ）の化学発光基質を用いて検出した。標識タンパク質をＸ－線フィルム（Ａｇｆａ、Ｍｏｒｔｓｅｌ、Ｂｅｌｇｉｕｍ）を通じて視覚化した。
ＥＬＩＳＡ
ＥＬＩＳＡは、個々のメーカーのマニュアルに従って商用キットで行った。次のようなＥＬＩＳＡキットを使用した：ゲンタマイシン（５１１１ＧＥＮ、ＥｕｒｏＰｒｏｘｉｍａ、Ａｒｎｈｅｍ、Ｎｅｄｅｒｌａｎｄ）、ウシアルブミン（８１００、Ａｌｐｈａ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ、Ｓａｎ Ａｎｔｏｎｉｏ、ＴＸ、ＵＳＡ）、Ｈｓｐ７０（Ａｂｃａｍ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＵＫ）、ＣＤ６３、ＣＤ９およびＣＤ８１（Ｓｙｓｔｅｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）、ヒストンＨ２Ａ．Ｚ．（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）、カルレティキュリン（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ）およびシトクロムＣ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｉｎｃ．）。全てのキットには、標準タンパク質が含まれている；したがって、タンパク質および細胞外小胞の量は、各キットの標準曲線に基づいて決定される。
ＥＬＩＳＡは、個々のメーカーのマニュアルに従って商用キットで行った。次のようなＥＬＩＳＡキットを使用した：ゲンタマイシン（５１１１ＧＥＮ、ＥｕｒｏＰｒｏｘｉｍａ、Ａｒｎｈｅｍ、Ｎｅｄｅｒｌａｎｄ）、ウシアルブミン（８１００、Ａｌｐｈａ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ、Ｓａｎ Ａｎｔｏｎｉｏ、ＴＸ、ＵＳＡ）、Ｈｓｐ７０（Ａｂｃａｍ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＵＫ）、ＣＤ６３、ＣＤ９およびＣＤ８１（Ｓｙｓｔｅｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）、ヒストンＨ２Ａ．Ｚ．（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ、ＵＳＡ）、カルレティキュリン（Ｍｙｂｉｏｓｏｕｒｃｅ）およびシトクロムＣ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｉｎｃ．）。全てのキットには、標準タンパク質が含まれている；したがって、タンパク質および細胞外小胞の量は、各キットの標準曲線に基づいて決定される。
ｑＰＣＲ
ＥＶでＴｒｉｚｏｌＴＭを用いてメーカーの指針に従ってＲＮＡを抽出し、ナノドロップ（ｎａｎｏｄｒｏｐ）でＲＮＡを定量した。ＲＮＡは、逆転写反応 （ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ；ＲＴ）過程を経て、ｃＤＮＡで作り、それぞれのｍｉＲＮＡおよびｍＲＮＡに適したＴａｑｍａｎ ｐｒｏｂｅを用いてメーカーのマニュアルに従ってＲｅａｌ Ｔｉｍｅ ＰＣＲを進めた。
ＥＶでＴｒｉｚｏｌＴＭを用いてメーカーの指針に従ってＲＮＡを抽出し、ナノドロップ（ｎａｎｏｄｒｏｐ）でＲＮＡを定量した。ＲＮＡは、逆転写反応 （ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ；ＲＴ）過程を経て、ｃＤＮＡで作り、それぞれのｍｉＲＮＡおよびｍＲＮＡに適したＴａｑｍａｎ ｐｒｏｂｅを用いてメーカーのマニュアルに従ってＲｅａｌ Ｔｉｍｅ ＰＣＲを進めた。
ＥＶラベリングおよび細胞による吸収
精製されたＥＶをメーカーの指針に従って、ＣＦＳＥ（５－（ａｎｄ－６）－Ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ Ｄｉａｃｅｔａｔｅ、Ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ Ｅｓｔｅｒ）ラベリング染料（ｃ－１１５７、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で染色した。１時間１００．０００ｇの条件で超遠心分離し、過剰な染料を除去した。標識されたＥＶ（０．４μｇ／ｍｌ）をヒトＮＳＣ細胞株（ＲｅＮｃｅｌｌｓ）に処理し、２４時間培養した。処理後、細胞をＰＢＳで２回洗浄し、通常の免疫細胞化学プロトコルを用いて染色した。細胞をマウス抗－ＳＭＡ（１：１００、Ｓｉｇｍａ ａｌｄｒｉｃｈ）抗体と共に４℃で一晩培養した。その後、細胞をＰＢＳで洗浄し、２次抗体であるＤｙＬｉｇｈｔ標識された抗マウスＩｇＧ（１：２００、５９４ｎｍ、Ａｂｃａｍ）抗体と共に培養した。１．５μｇ／ｍＬ４'－６'ｄｉａｍｉｄｉｎｏ－２－ｐｈｅｎｙｌｉｎｄｏｌｅ（ＤＡＰＩ）（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と共にＶｅｃｔａｓｈｉｅｌｄＴＭを用いて核染色した後、共焦点顕微鏡（ＬＳＭ ７００、Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて細胞をイメージ化した。
精製されたＥＶをメーカーの指針に従って、ＣＦＳＥ（５－（ａｎｄ－６）－Ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ Ｄｉａｃｅｔａｔｅ、Ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ Ｅｓｔｅｒ）ラベリング染料（ｃ－１１５７、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で染色した。１時間１００．０００ｇの条件で超遠心分離し、過剰な染料を除去した。標識されたＥＶ（０．４μｇ／ｍｌ）をヒトＮＳＣ細胞株（ＲｅＮｃｅｌｌｓ）に処理し、２４時間培養した。処理後、細胞をＰＢＳで２回洗浄し、通常の免疫細胞化学プロトコルを用いて染色した。細胞をマウス抗－ＳＭＡ（１：１００、Ｓｉｇｍａ ａｌｄｒｉｃｈ）抗体と共に４℃で一晩培養した。その後、細胞をＰＢＳで洗浄し、２次抗体であるＤｙＬｉｇｈｔ標識された抗マウスＩｇＧ（１：２００、５９４ｎｍ、Ａｂｃａｍ）抗体と共に培養した。１．５μｇ／ｍＬ４'－６'ｄｉａｍｉｄｉｎｏ－２－ｐｈｅｎｙｌｉｎｄｏｌｅ（ＤＡＰＩ）（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と共にＶｅｃｔａｓｈｉｅｌｄＴＭを用いて核染色した後、共焦点顕微鏡（ＬＳＭ ７００、Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて細胞をイメージ化した。
実施例１．間葉系幹細胞の三次元培養を通じた細胞外小胞の分離
１．１ 間葉系幹細胞の準備
５継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ５）段階のヒト臍帯由来の間葉系幹細胞（以下、ＷＪ－ＭＳＣ、Ｓａｍｓｕｎｇ ｍｅｄｉｃａｌ ｃｅｎｔｅｒ、ソウル、韓国）を分譲を受け、３７℃、５％のＣＯ２培養器で培養した。成長培地は、１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）（ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）および５０μｇ／ｍＬゲンタマイシン（ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）を含有するα－ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｅａｇｌｅ'ｓ ｍｅｄｉｕｍ（α－ＭＥＭ、ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）を使用した。６継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ６）段階のＷＪ－ＭＳＣを３Ｄスフェロイド型細胞凝集体の作製に使用した。
１．１ 間葉系幹細胞の準備
５継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ５）段階のヒト臍帯由来の間葉系幹細胞（以下、ＷＪ－ＭＳＣ、Ｓａｍｓｕｎｇ ｍｅｄｉｃａｌ ｃｅｎｔｅｒ、ソウル、韓国）を分譲を受け、３７℃、５％のＣＯ２培養器で培養した。成長培地は、１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）（ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）および５０μｇ／ｍＬゲンタマイシン（ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）を含有するα－ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｅａｇｌｅ'ｓ ｍｅｄｉｕｍ（α－ＭＥＭ、ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）を使用した。６継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ６）段階のＷＪ－ＭＳＣを３Ｄスフェロイド型細胞凝集体の作製に使用した。
１．２ ３Ｄスフェロイド型細胞凝集体培養液の作製
前記実施例１．１にて作製した６継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ６）段階のＷＪ－ＭＳＣをＰＢＳに洗浄し、トリプシン（ＴｒｙｐＬＥＴＭ Ｅｘｐｒｅｓｓ、ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）処理し、ＣＯ２培養器で５分間反応させた。その後、新たな無血清培地を入れ、トリプシンを中和させ、細胞を回収し、遠心分離機を用いて細胞ペレットを取得した。その次に、新しい無血清培地を入れ、細胞懸濁液を製造し、細胞を計数した。細胞計数後、ＭＰＣ（２－Ｍｅｔｈａｃｒｙｌｏｙｌｏｘｙｅｔｈｙｌ Ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌｃｈｏｌｉｎｅ Ｐｏｌｙｍｅｒ）でコーティングされた直径と深さがそれぞれ５００μｍ×２００μｍのマイクロウェルを約６９，０００個余り含むマイクロアレイに６０ｍｌの細胞懸濁液を４００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌの密度になるように、均一に分注し、静的な状態を維持し、自発的スフェロイド型細胞凝集体の形成を誘導し、計４日間３７℃のＣＯ２培養器で培養し、３Ｄスフェロイド型細胞凝集体培養液（以下、３Ｄ－静的－スフェロイド培養液）を製造した。
前記実施例１．１にて作製した６継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ６）段階のＷＪ－ＭＳＣをＰＢＳに洗浄し、トリプシン（ＴｒｙｐＬＥＴＭ Ｅｘｐｒｅｓｓ、ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）処理し、ＣＯ２培養器で５分間反応させた。その後、新たな無血清培地を入れ、トリプシンを中和させ、細胞を回収し、遠心分離機を用いて細胞ペレットを取得した。その次に、新しい無血清培地を入れ、細胞懸濁液を製造し、細胞を計数した。細胞計数後、ＭＰＣ（２－Ｍｅｔｈａｃｒｙｌｏｙｌｏｘｙｅｔｈｙｌ Ｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌｃｈｏｌｉｎｅ Ｐｏｌｙｍｅｒ）でコーティングされた直径と深さがそれぞれ５００μｍ×２００μｍのマイクロウェルを約６９，０００個余り含むマイクロアレイに６０ｍｌの細胞懸濁液を４００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌの密度になるように、均一に分注し、静的な状態を維持し、自発的スフェロイド型細胞凝集体の形成を誘導し、計４日間３７℃のＣＯ２培養器で培養し、３Ｄスフェロイド型細胞凝集体培養液（以下、３Ｄ－静的－スフェロイド培養液）を製造した。
１．３ ３Ｄスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞の分離
実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイド培養液を回収し、細胞 残屑を除去するため、２，５００ｇで１０分間遠心分離し、０．２２μｍシリンジフィルターで濾過した。その後、３Ｄ－静的－スフェロイド培養液をタンジェンシャルフローろ過（Ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ Ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ、ＴＦＦ）システムを用いて３００ｋＤａのｈｏｌｌｏｗ ｆｉｂｅｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ（Ｐａｌｌ、ＮＹ、ＵＳＡ）を経て、タンパク質を除去し、細胞外小胞を１次分離し、生理食塩水でもう一度精製し、純度の高い本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドに由来の細胞外小胞（以下、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ）が得られた。
実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイド培養液を回収し、細胞 残屑を除去するため、２，５００ｇで１０分間遠心分離し、０．２２μｍシリンジフィルターで濾過した。その後、３Ｄ－静的－スフェロイド培養液をタンジェンシャルフローろ過（Ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ Ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ、ＴＦＦ）システムを用いて３００ｋＤａのｈｏｌｌｏｗ ｆｉｂｅｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ（Ｐａｌｌ、ＮＹ、ＵＳＡ）を経て、タンパク質を除去し、細胞外小胞を１次分離し、生理食塩水でもう一度精製し、純度の高い本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドに由来の細胞外小胞（以下、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ）が得られた。
前記実施例１．１～１．３の過程を図式化して図１に示した。
実施例２．３Ｄスフェロイド型細胞凝集体の特性の分析
前記実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイド培養液内に存在する３Ｄスフェロイド型細胞凝集体（以下、３Ｄ－静的－スフェロイド）の特性を分析した。実験群として、実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイド培養液を用いており、比較群として、韓国登録特許（出願番号１０－２０１６－００５３０２６、幹細胞由来の細胞外小胞体の生産方法）に開示された動的３Ｄ細胞培養方法に従って、５日間間葉系幹細胞を培養し、製造した３Ｄ間葉系幹細胞スフェロイド型細胞凝集体（以下、３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイド）培養液を使用した。光学顕微鏡で、それぞれの培養液が入ったマイクロウェルを観察し、これを図２Ａ、２Ｂに示し、培養初期と比較して培養後、スフェロイド型細胞凝集体の面積変化を図２Ｃに示した。
前記実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイド培養液内に存在する３Ｄスフェロイド型細胞凝集体（以下、３Ｄ－静的－スフェロイド）の特性を分析した。実験群として、実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイド培養液を用いており、比較群として、韓国登録特許（出願番号１０－２０１６－００５３０２６、幹細胞由来の細胞外小胞体の生産方法）に開示された動的３Ｄ細胞培養方法に従って、５日間間葉系幹細胞を培養し、製造した３Ｄ間葉系幹細胞スフェロイド型細胞凝集体（以下、３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイド）培養液を使用した。光学顕微鏡で、それぞれの培養液が入ったマイクロウェルを観察し、これを図２Ａ、２Ｂに示し、培養初期と比較して培養後、スフェロイド型細胞凝集体の面積変化を図２Ｃに示した。
図２に示すように、実験群である３Ｄ－静的－スフェロイドと比較群である３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドの面積を比較した結果、細胞が緻密に凝縮され、スフェロイドを形成する特性に応じて３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドと比較した３Ｄ－静的－スフェロイドは、培養初期のスフェロイド対面積が統計的に有意に減少する結果が示された（ｐ＝０．００１１）。
実施例３．３Ｄスフェロイド型細胞凝集体の大きさの分析
実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイドと実施例２にて製造した３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドのサイズ分布（ｓｉｚｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ）を測定し、測定されたサイズ分布のデータを土台に、変動係数、歪度（ｓｋｅｗｎｅｓｓ）、尖度（ｋｕｒｔｏｓｉｓ）を分析した。
実施例１．２にて製造した３Ｄ－静的－スフェロイドと実施例２にて製造した３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドのサイズ分布（ｓｉｚｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ）を測定し、測定されたサイズ分布のデータを土台に、変動係数、歪度（ｓｋｅｗｎｅｓｓ）、尖度（ｋｕｒｔｏｓｉｓ）を分析した。
歪度は、中央値の推移から分布が傾いた方向と程度を知ることができるパラメータであり、１に近いほど右側に長く裾をひく分布を示し、－１に近いほど左側に長く裾を引いた分布を示す。正規分布の場合の歪度は、０である。
尖度は、資料分布の尖り具合を示すパラメータであって、値が正の数の場合、中央部分に相対的に多数のデータポイントが集積していることを意味し、負の数の場合、中央部分に相対的に少数のデータポイントが集積していることを意味する。正規分布の場合、尖度は０である。
測定したサイズ分布データを図３に示し、これを分析した結果を表１に示した。
図３および表１に示すように、３Ｄ－静的－スフェロイドの平均の大きさが７４．４３ｕｍ、変動係数（ＣＶ）が９．５９％であることが確認された。これとは対照的に、３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドは、平均サイズが１４８．６６ｕｍ、変動係数（ＣＶ）が１４．１％であることが確認された。
測定した変動係数を比較検定するため、Ｆｅｌｔｚ ａｎｄ Ｍｉｌｌｅｒ'ｓ（１９９６）ａｓｙｍｐｔｏｔｉｃ ｔｅｓｔを実施した結果、ｐ ｖａｌｕｅ値が０．０１７６５６０４として算出され、Ｋｒｉｓｈｎａｍｏｏｒｔｈｙ ａｎｄ Ｌｅｅ'ｓ（２０１４）ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｓｉｇｎｅｄ－ｌｉｋｅｌｉｈｏｏｄ ｒａｔｉｏ ｔｅｓｔを実施した結果、ｐ ｖａｌｕｅ値が０．０１８５３９６９として算出された。したがって、二つのテスト全部において３Ｄ－静的－スフェロイドと３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドのサイズ分布が統計的に有意な程度に相異する様相を示すことが確認された。
３Ｄ－静的－スフェロイドと３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドのサイズ分布を比較した結果、３Ｄ－静的－スフェロイドのサイズ分布の尖度値が相対的に大きいことが確認され、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドのサイズ分布は、中央値に多く集中した様相を示すことが確認された。このような結果から、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドの製造方法により３Ｄスフェロイドを製造すると、大きさが相対的に一定した３Ｄスフェロイドの製造が可能であることが確認された。
実施例４．３Ｄスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞形態の分析
実施例１．３にて分離した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの形態を観察するため、電子顕微鏡（ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎ ｅｌｅｃｔｒｏｎ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ、ＴＥＭ）を用いて撮影した。具体的に、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを０．１Ｍホスフェート緩衝液（ＰＢ）に溶解された１％のＯｓＯ４で２時間固定させた。ＥＭグリッドを細胞外小胞の液滴上にフォルムバール（ｆｏｒｍｖａｒ）側面を下に向けて１分間吸着させた。その後、濾紙でブロッティングし、１５秒間２％のウラニルアセテートと反応させた。過量のウラニルアセテートを除去し、ＥＭグリッドをＴＥＭ（ＪＥＭ－１０１１、ＪＥＯＬ、Ｊａｐａｎ）を用いて観察し、観察画像を図４に示した。
実施例１．３にて分離した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの形態を観察するため、電子顕微鏡（ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎ ｅｌｅｃｔｒｏｎ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ、ＴＥＭ）を用いて撮影した。具体的に、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを０．１Ｍホスフェート緩衝液（ＰＢ）に溶解された１％のＯｓＯ４で２時間固定させた。ＥＭグリッドを細胞外小胞の液滴上にフォルムバール（ｆｏｒｍｖａｒ）側面を下に向けて１分間吸着させた。その後、濾紙でブロッティングし、１５秒間２％のウラニルアセテートと反応させた。過量のウラニルアセテートを除去し、ＥＭグリッドをＴＥＭ（ＪＥＭ－１０１１、ＪＥＯＬ、Ｊａｐａｎ）を用いて観察し、観察画像を図４に示した。
図４に示すように、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは、典型的な細胞外小胞の形態である丸い形状であることが確認された。
実施例５．３Ｄスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞の濃度および大きさの分析
実施例１．３にて分離した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの濃度およびサイズ分布を確認するため、ＮａｎｏＳｉｇｈｔ ＮＳ３００（Ｍａｌｖｅｒｎ、Ｗｏｒｃｅｓｔｅｒｓｈｉｒｅ、ＵＫ）を用いたＮＴＡ（ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｔｒａｃｋｉｎｇ ａｎａｌｙｓｉｓ）を実施した。最適な分析のため、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを小胞（ｖｅｓｉｃｌｅ）のないホスフェート緩衝液（ＰＢＳ）に予め希釈した。平均サイズおよび濃度（ｐａｒｔｉｃｌｅ／ｍＬ）は、３個の記録を統合して計算し、結果を図５に示した。
実施例１．３にて分離した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの濃度およびサイズ分布を確認するため、ＮａｎｏＳｉｇｈｔ ＮＳ３００（Ｍａｌｖｅｒｎ、Ｗｏｒｃｅｓｔｅｒｓｈｉｒｅ、ＵＫ）を用いたＮＴＡ（ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｔｒａｃｋｉｎｇ ａｎａｌｙｓｉｓ）を実施した。最適な分析のため、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを小胞（ｖｅｓｉｃｌｅ）のないホスフェート緩衝液（ＰＢＳ）に予め希釈した。平均サイズおよび濃度（ｐａｒｔｉｃｌｅ／ｍＬ）は、３個の記録を統合して計算し、結果を図５に示した。
図５に示すように、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの平均粒子径は、１８２．５ｎｍであり、モード径は、１０６．１ｎｍであることが確認された。
実施例６．３Ｄスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞の発現マーカーの分析
実施例１．３にて分離した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの発現マーカーを確認するための実験を行った。対照群として細胞ライセート（ｃｅｌｌ ｌｙｓａｔｅ）と分泌物（ｓｅｃｒｅｔｏｍｅ）を使用した。細胞ライセートは、３Ｄ－静的－スフェロイドをＰＢＳ洗浄し、トリプシンを処理した後、細胞を回収し、回収された細胞を遠心分離機を用いて細胞ペレットが得られる方法により準備した。分泌物は、前記細胞ペレットを得た後、上澄み液である培養培地で実施例１．３の工程を通じてＥＶを分離し、残った培養分泌物を得る方式により用意した。マーカー分析は、ＥＬＩＳＡを用いて細胞外小胞特異的な陽性マーカーＣＤ９、ＣＤ６３、ＣＤ８１およびＨＳＰ７０を定量し、特定汚染タンパク質マーカーであるカルレティキュリン、ヒストンＨ２Ａ．Ｚ、シトクロムＣ、アルブミン、抗生剤を定量した。また、ウェスタンブロットを用いて細胞外小胞の特定汚染タンパク質マーカーであるヒストンＨ２Ａ．Ｚ、ヒストンＨ３、ラミンＡ／Ｃ、カルレティキュリンを定量し、細胞外小胞陽性マーカーであるフロチリン－１を定量した。ＥＬＩＳＡ分析の結果およびウェスタンブロットの結果を図６に示した。
実施例１．３にて分離した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの発現マーカーを確認するための実験を行った。対照群として細胞ライセート（ｃｅｌｌ ｌｙｓａｔｅ）と分泌物（ｓｅｃｒｅｔｏｍｅ）を使用した。細胞ライセートは、３Ｄ－静的－スフェロイドをＰＢＳ洗浄し、トリプシンを処理した後、細胞を回収し、回収された細胞を遠心分離機を用いて細胞ペレットが得られる方法により準備した。分泌物は、前記細胞ペレットを得た後、上澄み液である培養培地で実施例１．３の工程を通じてＥＶを分離し、残った培養分泌物を得る方式により用意した。マーカー分析は、ＥＬＩＳＡを用いて細胞外小胞特異的な陽性マーカーＣＤ９、ＣＤ６３、ＣＤ８１およびＨＳＰ７０を定量し、特定汚染タンパク質マーカーであるカルレティキュリン、ヒストンＨ２Ａ．Ｚ、シトクロムＣ、アルブミン、抗生剤を定量した。また、ウェスタンブロットを用いて細胞外小胞の特定汚染タンパク質マーカーであるヒストンＨ２Ａ．Ｚ、ヒストンＨ３、ラミンＡ／Ｃ、カルレティキュリンを定量し、細胞外小胞陽性マーカーであるフロチリン－１を定量した。ＥＬＩＳＡ分析の結果およびウェスタンブロットの結果を図６に示した。
図６に示すように、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは、細胞外小胞特異的陽性マーカーであるＣＤ９、ＣＤ６３、ＣＤ８１およびＨＳＰ７０が全部発現され、細胞ライセートおよび分泌物（ｓｅｃｒｅｔｏｍｅ）から高く発現される汚染タンパク質マーカーであるカルレティキュリン、ヒストンＨ２Ａ．Ｚ、ヒストンＨ３、シトクロムＣ、アルブミン（ＢＳＡ、ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ）、ラミンＡ／Ｃおよび抗生剤がほぼ発現されないことが確認された。特に、細胞ライセートから非常に低く発現される細胞外小胞陽性マーカーフロチリン－１（Ｆｌｏｔｉｌｉｎ－１）が３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶで相対的に高く発現されることが確認された。
実施例７．３Ｄスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞の生産量の分析
実施例１の製造方法により製造した細胞外小胞である３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ、実施例２の３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドから分離した細胞外小胞（３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドＥＶ）および通常の２Ｄ培養方法で培養した幹細胞から分離した細胞外小胞（２Ｄ－ＥＶ）の生産量を比較するための実験を実施した。２Ｄ－ＥＶは、次のような工程により用意した。セルスタック（Ｃｅｌｌ ｓｔａｃｋ）において３日間培養した幹細胞をＰＢＳ洗浄し、無血清培地に交換し、さらに２日間培養する。培養培地を回収し、遠心分離および０．２μｍフィルターを用いて細胞残屑を連続して除去する。その後、培養培地をＴＦＦシステムを用いてｈｏｌｌｏｗ ｆｉｂｅｒ ｍｅｍｂｒａｎｅを経て、タンパク質を除去し、ＥＶを１次分離し、生理食塩水でもう一度精製し、純度の高い２Ｄ－ＥＶを得た。用意した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ、３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドＥＶおよび２Ｄ－ＥＶに由来の細胞当たりの生産量を比較し、これを表２および図７に示した。
実施例１の製造方法により製造した細胞外小胞である３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ、実施例２の３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドから分離した細胞外小胞（３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドＥＶ）および通常の２Ｄ培養方法で培養した幹細胞から分離した細胞外小胞（２Ｄ－ＥＶ）の生産量を比較するための実験を実施した。２Ｄ－ＥＶは、次のような工程により用意した。セルスタック（Ｃｅｌｌ ｓｔａｃｋ）において３日間培養した幹細胞をＰＢＳ洗浄し、無血清培地に交換し、さらに２日間培養する。培養培地を回収し、遠心分離および０．２μｍフィルターを用いて細胞残屑を連続して除去する。その後、培養培地をＴＦＦシステムを用いてｈｏｌｌｏｗ ｆｉｂｅｒ ｍｅｍｂｒａｎｅを経て、タンパク質を除去し、ＥＶを１次分離し、生理食塩水でもう一度精製し、純度の高い２Ｄ－ＥＶを得た。用意した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ、３Ｄ－動的－ＰＥＧスフェロイドＥＶおよび２Ｄ－ＥＶに由来の細胞当たりの生産量を比較し、これを表２および図７に示した。
実施例８．３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ発現ｍｉＲＮＡ分析および神経新生効果の確認
８．１ ３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内におけるｍｉＲＮＡ発現の分析
実施例１の製造方法により製造した細胞外小胞である３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内に含有されているｍｉＲＮＡ成分を分析するための、シーケンシング分析を行い、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内に含有されたｍｉＲＮＡ成分分析の結果を図８に示す。
８．１ ３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内におけるｍｉＲＮＡ発現の分析
実施例１の製造方法により製造した細胞外小胞である３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内に含有されているｍｉＲＮＡ成分を分析するための、シーケンシング分析を行い、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内に含有されたｍｉＲＮＡ成分分析の結果を図８に示す。
図８に示すように、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内には脳卒中病態の生理および幹細胞／ＥＶの治療効果に関連するｍｉＲＮＡを含む３５８個のｍｉＲＮＡが、ｎｏｒｍａｌｉｚｅｄ ＲＣ ４以上の値で検出された。このうち、検出された上位５０個の発現ｍｉＲＮＡについて、ＧＯとＫＥＧＧ分析を行った。ＧＯ分析は、発現されたｍｉＲＮＡと細胞内タンパク質の輸送およびリン酸化、軸索誘導、脳の発達、グルタミン酸シナプスおよびニューロンの突出、およびＤＮＡ結合転写活性化活性と相当の関連性を示した。３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ内に豊富なｍｉＲＮＡに関連するＫＥＧＧ経路としては、癌、軸索誘導、シグナル伝達経路、および細胞内移入を含む生物学的機能に関連する経路が確認された。特に、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶには２Ｄ－ＥＶに比べてｍｉＲＮＡ－１３２が多く含まれており、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶが神経幹細胞でＭｅＣＰ２の発現を阻害することにより、新生神経新生を促進できることが確認された。
ｍｉＲＮＡ発現の変化をｓｍａｌｌ ＲＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ法でプロファイリングした。プロファイリング研究結果をもとに、既存培養法で培養した２Ｄ－ＥＶと比較して、３次元培養法で培養した幹細胞から分泌されたＥＶ内の有意な変化を有するｍｉＲＮＡを検証し、その結果を図９に示した。
図９に示すように、５個ドナーのセルライセート（ｃｅｌｌ ｌｙｓａｔｅ）でＴａｑＭａｎプローブでｍｉＲＮＡ発現変化を確認したところ、有意に発現が増加したｍｉＲＮＡが確認された。その中で、発現変化レベルの高いｍｉＲＮＡｓについて神経幹細胞（ＲｅＮｃｅｌｌ）にてｉｎ ｖｉｔｒｏ機能を確認した。ｍｉＲ－１３２は、神経幹細胞に形質転換時、神経幹細胞数の増殖を誘導し、ｍｉＲ－１３２－３ｐは、ＰＳＤ９５の発現を阻害し、神経幹細胞の細胞数の増殖に関与することが確認された。ｍｉＲＮＡ－２７ａ、ｍｉＲ－１４６ａおよびｍｉＲ－１４６ｂも同様に神経および血管新生に関与することが知られている。本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは、このように神経再生に関与するｍｉＲ－１３２、ｍｉＲ－２７ａ、ｍｉＲ－１４６ａ及びｍｉＲ－１４６ｂの発現が顕著に高く示されたため、神経再生関連分野に臨床的に有用に使用できる細胞外小胞であることを確認した。
８．２．ドナーによるｍｉＲＮＡ発現の分析
幹細胞治療剤は、ドナーによって成分が異に示されるドナーバリエーション（ｄｏｎｏｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎ）の問題があることが知られている。本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶが、ドナーバリエーション（ｄｏｎｏｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎ）の問題なくより一貫性のあるｍｉＲＮＡプロファイルを示すかを確認するための実験を行った。各ドナーの試料は、Ｓａｍｓｕｎｇ ｍｅｄｉｃａｌ ｃｅｎｔｅｒ（ソウル、韓国）から分譲を受けて使用した。実施例１．１の２Ｄ培養されたＷＪ－ＭＳＣと３Ｄ培養されたＷＪ－ＭＳＣ、実施例１の製造方法により製造した細胞外小胞である３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶのドナー別に生産されるＥＶの数、ＥＶタンパク質の量とｍｉＲＮＡプロファイルを比較した。ｍｉＲＮＡは、Ｓｍａｌｌ ＲＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ法でｍｉＲＮＡプロファイリングし、その結果を図１０ａ～図１０ｂに示した。
幹細胞治療剤は、ドナーによって成分が異に示されるドナーバリエーション（ｄｏｎｏｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎ）の問題があることが知られている。本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶが、ドナーバリエーション（ｄｏｎｏｒ ｖａｒｉａｔｉｏｎ）の問題なくより一貫性のあるｍｉＲＮＡプロファイルを示すかを確認するための実験を行った。各ドナーの試料は、Ｓａｍｓｕｎｇ ｍｅｄｉｃａｌ ｃｅｎｔｅｒ（ソウル、韓国）から分譲を受けて使用した。実施例１．１の２Ｄ培養されたＷＪ－ＭＳＣと３Ｄ培養されたＷＪ－ＭＳＣ、実施例１の製造方法により製造した細胞外小胞である３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶのドナー別に生産されるＥＶの数、ＥＶタンパク質の量とｍｉＲＮＡプロファイルを比較した。ｍｉＲＮＡは、Ｓｍａｌｌ ＲＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ法でｍｉＲＮＡプロファイリングし、その結果を図１０ａ～図１０ｂに示した。
図１０ａに示すように、２Ｄ培養されたＷＪ－ＭＳＣに由来の２Ｄ－ＥＶは、生産されるＥＶの量、大きさ、ＥＶ生産タンパク質の量が各ドナーによってばらつきがみられたが、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは、ドナーによる大きなばらつきなく、一貫性のある結果を示した。
また、図１０ｂに示すように、２Ｄ培養ＷＪ－ＭＳＣ、２Ｄ－ＥＶはドナーによって産生されるｍｉＲＮＡ組成の差が大きいのに対し、３Ｄ培養ＷＪ－ＭＳＣ、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶはドナーによる差が減少することが確認された。特に３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは、ドナーによる差がなく、一貫性のあるｍｉＲＮＡプロファイルを示すとともに、特に２Ｄ－ＥＶと比較して神経再生効果を示すことができるｍｉＲＮＡであるｍｉＲ－２７ａ－３ｐ（１．５倍）、ｍｉＲＮＡ－１４６ａ（２．３倍）およびｍｉＲＮＡ－１３２ （２．６倍）がより多く均一に含まれていることが確認された。また、その他の神経再生関連ｍｉＲＮＡであるｍｉＲ－１８１ｂも、各ドナー間で均一な程度の発現を示すことが確認された。
このような結果は、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶがドナーによる治療有効成分の差を減らし、より優れた治療効果を示すことができることを示す結果である。
実施例８．３ 神経幹細胞への処理後、神経再生関連タンパク質発現変化の比較
３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経再生促進に対する有用性をさらに確認するために、これを標的細胞である神経幹細胞ｐＮＳＣｓに６時間処理した後、神経幹細胞における神経再生に関連するｍＲＮＡ発現レベルをｑＰＣＲにより確認した。
３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経再生促進に対する有用性をさらに確認するために、これを標的細胞である神経幹細胞ｐＮＳＣｓに６時間処理した後、神経幹細胞における神経再生に関連するｍＲＮＡ発現レベルをｑＰＣＲにより確認した。
図１１に示すように、２Ｄ－ＥＶを処理した神経幹細胞より３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを処理した神経幹細胞において、ＶＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＦＧＦ、ＮＧＦの遺伝子発現が増加したことが確認され、２Ｄ－ＥＶに比べて３Ｄ－静的－スフェロイド－ＥＶ内にＶＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＦＧＦ、ＮＧＦ ｍＲＮＡがより多く含有されていることが確認された。
上記結果を全て総合した結果、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは、ＷＪ－２Ｄ－ＥＶや、３Ｄ－動的－スフェロイドＥＶと比較し、神経再生に関連するｍｉＲＮＡであるｍｉＲ－２７ａ、ｍｉＲ－１３２、ｍｉＲ－１４６ａおよびｍｉＲ－１４６ｂが有意に増加しており、ＶＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＦＧＦ、ＮＧＦ ｍＲＮＡをより多く含有されているため、既存の報告されたＥＶに対して神経再生により優れた効果を示すことが期待できることを確認した。
実施例９．３Ｄ-静的-スフェロイドＥＶの細胞取り込み能の評価
３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの細胞取り込み能を評価するために、ＣＦＳＥ標識した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶをヒトＮＳＣ細胞株（ＲｅＮｃｅｌｌｓ）に処理した。２４時間培養し、共焦点顕微鏡（ＬＳＭ ７００、Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）で確認をし、これと共に１２時間目にＲｅＮｃｅｌｌｓ内ｍｉＲ－２７ａ－３ｐの発現をｑＰＣＲにより確認し、その結果を図１２に示した。
３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの細胞取り込み能を評価するために、ＣＦＳＥ標識した３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶをヒトＮＳＣ細胞株（ＲｅＮｃｅｌｌｓ）に処理した。２４時間培養し、共焦点顕微鏡（ＬＳＭ ７００、Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）で確認をし、これと共に１２時間目にＲｅＮｃｅｌｌｓ内ｍｉＲ－２７ａ－３ｐの発現をｑＰＣＲにより確認し、その結果を図１２に示した。
図１２のＡに示すように、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを細胞に処理すると、細胞に取り込まれて内在化（ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ）することが確認された。また、図１２のＢに示すように、対照群に対して３Ｄ-静的-スフェロイドＥＶを処理した細胞において有意にｍｉＲ-２７ａ-３ｐの発現が増加したことが確認された。
これにより、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶをターゲット神経細胞に処理すると、ｍｉＲ－２７ａ－３ｐのような３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶで高発現する神経新生促進物質が細胞に効果的に伝達されることが確認された。これは、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶが神経再生のための治療薬として使用されることができることを示す結果である。
実施例１０．３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経分化促進能の確認
二次元培養された幹細胞に由来の細胞外小胞（２Ｄ－ＥＶ）および３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経分化能を調べるために、１４．５日目のＳＤラット（ｒａｔ）胚から単離した大脳皮質から一次培養された神経幹細胞（ＮＳＣ）に２Ｄ－ＥＶおよび３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを５×１０８／ｍｌずつ処理した後、ベース培地のみを添加した対照群（ｃｏｎｔｒｏｌ）または神経成長因子（ｎｅｒｖｅ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ；ＮＧＦ）処理群と共に神経分化能を比較した。２Ｄ－ＥＶ、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ、ＮＧＦ、ベース培地処理による神経分化能を処理培養４日目に顕微鏡で神経突起の長さを測定して確認し、その結果を図１３に示した。
二次元培養された幹細胞に由来の細胞外小胞（２Ｄ－ＥＶ）および３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経分化能を調べるために、１４．５日目のＳＤラット（ｒａｔ）胚から単離した大脳皮質から一次培養された神経幹細胞（ＮＳＣ）に２Ｄ－ＥＶおよび３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを５×１０８／ｍｌずつ処理した後、ベース培地のみを添加した対照群（ｃｏｎｔｒｏｌ）または神経成長因子（ｎｅｒｖｅ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ；ＮＧＦ）処理群と共に神経分化能を比較した。２Ｄ－ＥＶ、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ、ＮＧＦ、ベース培地処理による神経分化能を処理培養４日目に顕微鏡で神経突起の長さを測定して確認し、その結果を図１３に示した。
図１３に示すように、対照群と比べてＮＧＦ、２Ｄ－ＥＶ及び３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群において神経突起の長さが増加し、神経分化がなされたことが確認され、特に３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群は、ＮＧＦまたは２Ｄ－ＥＶを処理した群よりも有意なレベルで神経分化を誘導することができることが確認された。
実施例１１．脳卒中動物モデルに対する３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの効果
１１．１ 脳卒中モデルの作製
脳卒中動物モデルを作製するために、光血栓性（Ｐｈｏｔｏｔｈｒｏｍｂｏｔｉｃ、ＰＴ）脳梗塞モデルを作製した。２０～２５ｇ（８～１２週齢）の成人雄Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（Ｏｒｉｅｎｔ Ｂｉｏ Ｉｎｃ．，大韓民国の城南）を用いて、ＰＴ脳卒中をマウス右手の感覚運動皮質から誘導した。要するに、ケタミン（１００ｍｇ／ｋｇ、有限洋行、大韓民国ソウル）とキシラジン（１０ｍｇ／ｋｇ、Ｒｏｍｐｏｎ ｉｎｊ．，ドイツベルリンバイエル）の混合物を腹腔内投与し、マウスを麻酔し、定位固定装置（ＫＯＰＦ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｔｕｊｕｎｇａ，ＣＡ，ＵＳＡ）に配置させた。メスを用いて目から首まで頭皮に沿って中線切開を行い、骨膜を除去した後、頭蓋骨を露出させた。ローズベンガル溶液（３０ｍｇ／ｋｇ、生理食塩水１０ｍｇ／ｍＬ、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ、ＵＳＡ）を頸静脈を通じて静脈内投与し、５分後、直径３ｍｍの照明を提供する１００ｍＷ、５３２ｎｍ ｄｉｏｄｅ－ｐｕｍｐｅｄ ｓｏｌｉｄ－ｓｔａｔｅ ｇｒｅｅｎ ｌａｓｅｒ（Ｄｏｎｇｗｏｏ Ｏｐｔｒｏｎ（株）、光州）をｂｒｅｇｍａより側面２．５ｍｍに位置させた。レーザーは関心領域（ＲＯＩ）で１５分間活性化され、切開部位を６-０モノフィラメント縫合糸を用いて縫合した。手術中のラットは、３７．０～３７．５℃の体温を維持するようにした。
１１．１ 脳卒中モデルの作製
脳卒中動物モデルを作製するために、光血栓性（Ｐｈｏｔｏｔｈｒｏｍｂｏｔｉｃ、ＰＴ）脳梗塞モデルを作製した。２０～２５ｇ（８～１２週齢）の成人雄Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス（Ｏｒｉｅｎｔ Ｂｉｏ Ｉｎｃ．，大韓民国の城南）を用いて、ＰＴ脳卒中をマウス右手の感覚運動皮質から誘導した。要するに、ケタミン（１００ｍｇ／ｋｇ、有限洋行、大韓民国ソウル）とキシラジン（１０ｍｇ／ｋｇ、Ｒｏｍｐｏｎ ｉｎｊ．，ドイツベルリンバイエル）の混合物を腹腔内投与し、マウスを麻酔し、定位固定装置（ＫＯＰＦ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｔｕｊｕｎｇａ，ＣＡ，ＵＳＡ）に配置させた。メスを用いて目から首まで頭皮に沿って中線切開を行い、骨膜を除去した後、頭蓋骨を露出させた。ローズベンガル溶液（３０ｍｇ／ｋｇ、生理食塩水１０ｍｇ／ｍＬ、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ、ＵＳＡ）を頸静脈を通じて静脈内投与し、５分後、直径３ｍｍの照明を提供する１００ｍＷ、５３２ｎｍ ｄｉｏｄｅ－ｐｕｍｐｅｄ ｓｏｌｉｄ－ｓｔａｔｅ ｇｒｅｅｎ ｌａｓｅｒ（Ｄｏｎｇｗｏｏ Ｏｐｔｒｏｎ（株）、光州）をｂｒｅｇｍａより側面２．５ｍｍに位置させた。レーザーは関心領域（ＲＯＩ）で１５分間活性化され、切開部位を６-０モノフィラメント縫合糸を用いて縫合した。手術中のラットは、３７．０～３７．５℃の体温を維持するようにした。
１１．２ ａｎｉｍａｌ ＭＲＩ ｓｔｕｄｙを用いた形態学的分析
実施例１１．１にて製造した光血栓性脳梗塞モデルラットに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを投与した後、ＭＲＩによる形態学的変化を調べるために、梗塞病変体積と脳室体積をＴ２－ｗｅｉｇｈｔｅｄ ｉｍａｇｅ（Ｔ２ＷＩ）画像で測定した。具体的には、光血栓性脳梗塞モデルに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ ６ｘ１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅをラットの血管に注入し、３日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２０；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２３）、１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８； ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝１０）、２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝６）後、ＭＲＩのＴ２－ｗｅｉｇｈｔｅｄ ｉｍａｇｅ（Ｔ２ＷＩ）画像を撮影し、実験群と対照群の脳梗塞病変および脳室の体積変化の程度を比較した。その結果を表３および図１４に示す。
実施例１１．１にて製造した光血栓性脳梗塞モデルラットに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを投与した後、ＭＲＩによる形態学的変化を調べるために、梗塞病変体積と脳室体積をＴ２－ｗｅｉｇｈｔｅｄ ｉｍａｇｅ（Ｔ２ＷＩ）画像で測定した。具体的には、光血栓性脳梗塞モデルに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ ６ｘ１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅをラットの血管に注入し、３日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２０；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２３）、１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８； ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝１０）、２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝６）後、ＭＲＩのＴ２－ｗｅｉｇｈｔｅｄ ｉｍａｇｅ（Ｔ２ＷＩ）画像を撮影し、実験群と対照群の脳梗塞病変および脳室の体積変化の程度を比較した。その結果を表３および図１４に示す。
前記表３および図１４から確認できるように、脳梗塞後、３日目に対照群と３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群との間に、虚血性病変体積において統計的に有意な差があった（ｐ＝０．０３０）。脳卒中後、１４日時点で、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処置群の病変体積は、対照群と比較して有意に減少した（ｐ＝０．０３４）。ｖｅｎｔｒｉｃｌｅ容積は、側面および背側の第三脳室にて測定した。脳卒中後１４日、２８日時点で、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ群において、対照群と比較して、脳室容積が有意に低かった。
１１．３ 虚血性脳卒中動物モデルの作製
管腔閉塞法を用いて、一時的中脳動脈閉塞（ｔｒａｎｓｉｅｎｔ ｍｉｄｄｌｅ ｃｅｒｅｂｒａｌ ａｒｔｅｒｙ ｏｃｃｌｕｓｉｏｎ，ｔＭＣＡｏ）を誘導した。８週齢の雄Ｓｐｒａｇｕｅ－Ｄａｗｌｅｙラット（２７０～３００ｇ）を１．５％イソプロランで手術中、麻酔させ、加熱パッドを用いて手術および閉塞期間中、ラットの体温を３７～３７．５℃に維持させた。丸い末端の４－０手術用モノフィラメントナイロン縫合糸を、中大脳動脈の起源を遮断するまで、左総頸動脈から内頸動脈の内腔まで移動させた。ｔＭＣＡｏ９０分後に再灌流を行った。
管腔閉塞法を用いて、一時的中脳動脈閉塞（ｔｒａｎｓｉｅｎｔ ｍｉｄｄｌｅ ｃｅｒｅｂｒａｌ ａｒｔｅｒｙ ｏｃｃｌｕｓｉｏｎ，ｔＭＣＡｏ）を誘導した。８週齢の雄Ｓｐｒａｇｕｅ－Ｄａｗｌｅｙラット（２７０～３００ｇ）を１．５％イソプロランで手術中、麻酔させ、加熱パッドを用いて手術および閉塞期間中、ラットの体温を３７～３７．５℃に維持させた。丸い末端の４－０手術用モノフィラメントナイロン縫合糸を、中大脳動脈の起源を遮断するまで、左総頸動脈から内頸動脈の内腔まで移動させた。ｔＭＣＡｏ９０分後に再灌流を行った。
１１．４ 免疫蛍光染色を通じた神経新生促進効果の確認
神経新生の効果を確認するために、実施例１１．３にて作製した虚血性脳卒中動物に３個のｄｏｓｅ（０．３×１０１０／ｒａｔ、１．５×１０１０／ｒａｔ、３．０×１０１０／ｒａｔ）の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを静脈注射した後、脳卒中から２週間後、脳組織における神経発生観察指標として、神経細胞陽性マーカーであるＤＣＸと細胞増殖マーカーであるＫｉ６７を用いて免疫蛍光染色を行った。各投与量実験群の免疫蛍光染色の結果および定量化されたＫｉ６７／ＤＣＸ結果を図１５に示す。
神経新生の効果を確認するために、実施例１１．３にて作製した虚血性脳卒中動物に３個のｄｏｓｅ（０．３×１０１０／ｒａｔ、１．５×１０１０／ｒａｔ、３．０×１０１０／ｒａｔ）の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを静脈注射した後、脳卒中から２週間後、脳組織における神経発生観察指標として、神経細胞陽性マーカーであるＤＣＸと細胞増殖マーカーであるＫｉ６７を用いて免疫蛍光染色を行った。各投与量実験群の免疫蛍光染色の結果および定量化されたＫｉ６７／ＤＣＸ結果を図１５に示す。
図１５に示すように、対照群であるＰＢＳ投与群と比較して、３Ｄ-静的-スフェロイドＥＶを投与された実験群全部において、神経形成が有意に増加することが確認された。
実施例１２．３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経回路生成効果の確認
実施例１１．１にて作製した光血栓性脳梗塞モデルに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６×１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）をラットの血管に注入し、脳微細構造／連結性変化をＤＴＩ（ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ－ｔｅｎｓｏｒ ｉｍａｇｉｎｇ）を用いて調べた。光血栓性脳梗塞モデルにおいて、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６ｘ１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）をラットの血管に注入し、３日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２０；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２３）、１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝１０）、２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝６）後、ＭＲＩのＤｉｆｆｕｓｉｏｎ ｔｅｎｓｏｒ ｉｍａｇｉｎｇ（ＤＴＩ）とｆｉｂｅｒ ｔｒａｃｔｏｇｒａｐｈｙ画像を撮影し、ＥＣ（Ｅｘｔｅｒｎａｌ Ｃａｐｓｕｌｅ）およびＩＣ（Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｃａｐｓｕｌｅ）ＲＯＩ（ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ ｉｎｔｅｒｅｓｔ）からのＦＡ（Ｆｒａｃｔｉｏｎａｌ ａｎｉｓｏｔｒｏｐｙ）およびＦＤ（Ｆｉｂｒｅ ｄｅｎｓｉｔｙ）値の相対的な変化を用いて、脳卒中から１４日および２８日に治療効果を実証した。ＤＴＩおよびｆｉｂｅｒ ｔｒａｃｔｏｇｒａｐｈｙの結果を図１６に示し、Ｇｒｏｕｐ-ａｖｅｒａｇｅｄ ｒＦＡ（ｒｅｌａｔｉｖｅ ｆｒａｃｔｉｏｎａｌ ａｎｉｏｔｒｏｐｈｙ）およびｒＦＤ（ｒｅｌａｔｉｖｅ ｆｉｂｅｒ ｄｅｎｓｉｔｙ）ｖａｌｕｅｓの結果を表４に示す。
実施例１１．１にて作製した光血栓性脳梗塞モデルに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６×１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）をラットの血管に注入し、脳微細構造／連結性変化をＤＴＩ（ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ－ｔｅｎｓｏｒ ｉｍａｇｉｎｇ）を用いて調べた。光血栓性脳梗塞モデルにおいて、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６ｘ１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）をラットの血管に注入し、３日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２０；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝２３）、１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝１０）、２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝６）後、ＭＲＩのＤｉｆｆｕｓｉｏｎ ｔｅｎｓｏｒ ｉｍａｇｉｎｇ（ＤＴＩ）とｆｉｂｅｒ ｔｒａｃｔｏｇｒａｐｈｙ画像を撮影し、ＥＣ（Ｅｘｔｅｒｎａｌ Ｃａｐｓｕｌｅ）およびＩＣ（Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｃａｐｓｕｌｅ）ＲＯＩ（ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ ｉｎｔｅｒｅｓｔ）からのＦＡ（Ｆｒａｃｔｉｏｎａｌ ａｎｉｓｏｔｒｏｐｙ）およびＦＤ（Ｆｉｂｒｅ ｄｅｎｓｉｔｙ）値の相対的な変化を用いて、脳卒中から１４日および２８日に治療効果を実証した。ＤＴＩおよびｆｉｂｅｒ ｔｒａｃｔｏｇｒａｐｈｙの結果を図１６に示し、Ｇｒｏｕｐ-ａｖｅｒａｇｅｄ ｒＦＡ（ｒｅｌａｔｉｖｅ ｆｒａｃｔｉｏｎａｌ ａｎｉｏｔｒｏｐｈｙ）およびｒＦＤ（ｒｅｌａｔｉｖｅ ｆｉｂｅｒ ｄｅｎｓｉｔｙ）ｖａｌｕｅｓの結果を表４に示す。
表４および図１６に示すように、脳卒中から１４日時点で、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ群は、対照群と比較したとき、ＩＣおよびＥＣの両方においてｒＦＡ値で統計的に有意な増加を示した（それぞれｐ＝０．００３及びｐ＝０．０４５）。２８日時点で、ＩＣおよびＥＣ ＲＯＩの両方において、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ群のｒＦＡ値が対照群と比較して顕著に高い（それぞれｐ＝０．０２７およびｐ＜０．００１）ことが確認され、神経回路回復の程度が高くなったことが確認された。
３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６×１０８ ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）を、ラットの血管に注入した後の神経回路の変化を、ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ ｔｅｎｓｏｒ ｔｒａｃｔｏｇｒａｐｈｙ（ＤＴＴ）画像を用いて調べた。１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝１０）および２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；ＥＶ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝６）後、ＭＲＩのＤｉｆｆｕｓｉｏｎ ｔｅｎｓｏｒ ｔｒａｃｔｏｇｒａｐｈｙ（ＤＴＴ）画像を撮影し、治療群と対照群の神経回路の変化程度を比較した結果を図１７に示す。
図１７ａおよび図１７ｂに示すように、それぞれ１４日および２８日の両方において、３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ投与により、白色の矢印で表された増加した神経線維が確定された。
実施例１３ ３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経回路生成効果の確認：Ｆｕｎｃｔｉｏａｌ ＭＲＩ
細胞外小胞による神経回路の増進を確認するために、実施例１１．１にて作製した脳梗塞動物モデルにおいて、脳卒中を誘導してから２８日後にｒｅｓｔｉｎｇ ｓｔａｔｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ＭＲＩを確認した。対照群と３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ群との間のｒｅｓｔｉｎｇ ｓｔａｔｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｏｎｎｅｃｔｉｖｉｔｙ差分分析は、１６個の関心領域について行った。ｉｐｓｉｌｅｓｉｏｎａｌおよびｃｏｎｔｒａｌｅｓｉｏｎａｌの側面から、６つの皮質および２つの皮質領域が、分析のために選択された。分析の結果を図１８に示す。
細胞外小胞による神経回路の増進を確認するために、実施例１１．１にて作製した脳梗塞動物モデルにおいて、脳卒中を誘導してから２８日後にｒｅｓｔｉｎｇ ｓｔａｔｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ＭＲＩを確認した。対照群と３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ群との間のｒｅｓｔｉｎｇ ｓｔａｔｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｏｎｎｅｃｔｉｖｉｔｙ差分分析は、１６個の関心領域について行った。ｉｐｓｉｌｅｓｉｏｎａｌおよびｃｏｎｔｒａｌｅｓｉｏｎａｌの側面から、６つの皮質および２つの皮質領域が、分析のために選択された。分析の結果を図１８に示す。
図１８に示すように、ｉｎｔｅｒ－ｈｅｍｉｓｐｈｅｒｉｃ ｓｔｒｉａｔａｌ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｏｎｎｅｃｔｉｖｉｔｙが対照群に比べて３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ投与群において、有意に増加したことが確認された（ｐ＝０，００８）。このことは３Ｄ-静的-スフェロイドＥＶが脳梗塞モデルにおいて、神経回路のが増強が誘導されたことを示す結果である。
１４．３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの神経回路生成による機能回復の確認
実施例１１．１にて作製した脳梗塞動物モデルに本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを注入すると、神経回路生成が効果的に誘導されることを前の実施例によって確認した。このような神経新生により、脳梗塞動物モデルから誘発される運動機能喪失が回復するかどうかを確認するための前肢非対称試験（シリンダー試験）と肢欠損試験（グリッド歩行試験）を行った。より具体的には、作製された光血栓性脳梗塞モデルに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６ｘ１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）をラットの血管に注入し、１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群、ｎ＝１０）、２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群、ｎ＝６）差分分析を行い、その結果を図１９に示した。
実施例１１．１にて作製した脳梗塞動物モデルに本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを注入すると、神経回路生成が効果的に誘導されることを前の実施例によって確認した。このような神経新生により、脳梗塞動物モデルから誘発される運動機能喪失が回復するかどうかを確認するための前肢非対称試験（シリンダー試験）と肢欠損試験（グリッド歩行試験）を行った。より具体的には、作製された光血栓性脳梗塞モデルに３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ（６ｘ１０８ＥＶ／ｍｏｕｓｅ）をラットの血管に注入し、１４日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群、ｎ＝１０）、２８日（ＰＢＳ ｇｒｏｕｐ、ｎ＝８；３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理群、ｎ＝６）差分分析を行い、その結果を図１９に示した。
図１９に示すように、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶを注入すると、シリンダー試験指標およびグリッド歩行試験指標がいずれも改善されたことが確認された。こうした結果は、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ処理が脳梗塞動物モデルにおいて神経回路の再生を誘導し、その結果、損傷した運動機能障害が改善されることができることを示す結果である。
また、機能的回復とＭＲＩとの間の関連性を確認するために、２つの行動テスト（シリンダー試験およびグリッド歩行テスト）とｒｓ－ｆＭＲＩ結果間の相関分析を行い、その結果を図２０に示す。
図２０に示すように、脳卒中を誘導してから１４日後、行動試験とＭＲＩパラメータとの間に統計的に有意な相関はなかった（ｐ＞０．０５）。脳卒中を誘導してから２８日後，シリンダー試験の結果とＩＣ ＲＯＩのｒＦＤとの間に有意な相関があった（ｒ＝－０．５５３、ｐ＝０．０４０）。また、シリンダー試験の結果とｓｔｒｉａｔｕｍのｉｎｔｅｒｈｅｍｉｓｐｈｅｒｉｃとの間の傾向が見出された（ｒ＝－０．４６０、ｐ＝０．０９８）。グリッド歩行試験の肢損傷スコアとＩＣ ＲＯＩのｒＦＤ（ｒ＝－０．６８４、ｐ＝０．００７）とｓｔｒｉａｔｕｍの ｉｎｔｅｒｈｅｍｉｓｐｈｅｒｉｃ ＲＳＦＣ ＲＳＦＣ（ｒ＝－０．６９１、ｐ＝００６）との間に統計的に有意な相関関係が観察された。ｓｔｒｉａｔｕｍのｉｎｔｅｒｈｅｍｉｓｐｈｅｒｉｃ ＲＳＦＣはさらに内部カプセルのｒＦＤと有意な相関を示した（ｒ＝０．７７６、ｐ＝０．００１）。
実施例１５．製造条件による３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶ効果の検証
１５．１ 実験方法および条件
上記の実施例により、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの優れた効果を確認した。実施例１の製造方法を同様に行い、マイクロウェル規格及び細胞数の条件を異にして製造されたＥＶにおいても同様の効果が見られるかどうかを確認するために、マイクロウェル当たりの細胞数の規格を４００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌから２００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌに変更させたり、マイクロウェルの規格を直径と深さをそれぞれ５００μｍ×２００μｍの条件から５００μｍ×６００μｍまたは直径８００μｍの深さのない平坦なウェルに変化させ、細胞を培養した。
１５．１ 実験方法および条件
上記の実施例により、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶの優れた効果を確認した。実施例１の製造方法を同様に行い、マイクロウェル規格及び細胞数の条件を異にして製造されたＥＶにおいても同様の効果が見られるかどうかを確認するために、マイクロウェル当たりの細胞数の規格を４００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌから２００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌに変更させたり、マイクロウェルの規格を直径と深さをそれぞれ５００μｍ×２００μｍの条件から５００μｍ×６００μｍまたは直径８００μｍの深さのない平坦なウェルに変化させ、細胞を培養した。
実施例１の製造方法にて変更された実験条件を下記表５に示す。
実施例１．１にて作製した６継代培養（ｐａｓｓａｇｅ ６）段階のＷＪ－ＭＳＣをＰＢＳで洗浄し、トリプシン（ＴｒｙｐＬＥＴＭ Ｅｘｐｒｅｓｓ、ＧＩＢＣＯ、ＮＹ、ＵＳＡ）処理し、ＣＯ２培養器で５分間反応させた。その後、新しい無血清培地を入れ、トリプシンを中和させて細胞を回収し、遠心分離機を用いて細胞ペレットを得た。次いで、新しい無血清培地を入れ、細胞懸濁液を製造し、細胞を計数した。細胞計数後、前記表５と同様の条件でマイクロウェルに均一に分注し、静的な状態を維持し、自発的スフェロイド型細胞凝集体形成を誘導し、計４日間３７℃のＣＯ２培養器で培養し、３Ｄスフェロイド型細胞凝集体培養液を製造した。
１５．２ ３Ｄスフェロイド型細胞凝集体形態の確認
前記実験例１～３の条件で実施例１と同様にスフェロイドが均一に形成されることが確認され、３Ｄスフェロイド型細胞凝集体培養液を回収し、実施例１．３の方法でスフェロイドに由来の細胞外小胞を得た。得られた細胞外小胞のサイズ分布（ｓｉｚｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ）を測定し、さらにスフェロイドのＲｏｕｎｄｎｅｓｓおよびＳｏｌｉｄｉｔｙを確認し、その結果を図２１に示した。
前記実験例１～３の条件で実施例１と同様にスフェロイドが均一に形成されることが確認され、３Ｄスフェロイド型細胞凝集体培養液を回収し、実施例１．３の方法でスフェロイドに由来の細胞外小胞を得た。得られた細胞外小胞のサイズ分布（ｓｉｚｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ）を測定し、さらにスフェロイドのＲｏｕｎｄｎｅｓｓおよびＳｏｌｉｄｉｔｙを確認し、その結果を図２１に示した。
図２１に示すように、実験例１～３全部において、製造された３Ｄスフェロイド型細胞凝集体の大きさが、実施例１にて製造された細胞凝集体の大きさの範囲である５５～１３１μｍ範囲内の大きさで形成されることが確認され、サイズ分布の平均値が７０．３４～９９．５１μｍで示されることが確認された。また、ＲｏｕｎｄｎｅｓｓおよびＳｏｌｉｄｉｔｙを確認した結果、実施例１における３Ｄスフェロイド型細胞凝集体のＲｏｕｎｄｎｅｓｓ平均値である０．８６９７（ＣＶ２．６４％）と同様に実験例１～３におけるスフェロイド型細胞凝集体もまたそれぞれ平均０．８７５１、０．８６６９、０．８６０１のＲｏｕｎｄｎｅｓｓ値を示し、実施例１における３Ｄスフェロイド型細胞凝集体のＳｏｌｉｄｉｔｙの平均値である０．９４８８（ＣＶ２．６４％）と同様に実験例１～３におけるスフェロイド型細胞凝集体もまたそれぞれ平均０．９７４４、１、０．９７５２値を示すことが確認された。
このような結果は、マイクロウェル当たりの細胞数が２００、４００に変化し、マイクロウェルの直径が４００～８００に変化しても、実施例１の方法により同様の形態を有する３Ｄスフェロイド型細胞凝集体が効果的に形成されることができるを示す結果である。
１５．３ ３Ｄスフェロイド型に由来のＥＶのｍｉＲＮＡ発現パターンの比較
実験例１～３の条件でも実施例１と同様の形態を有するスフェロイド型細胞凝集体が製造され得ることが確認されたので、さらにこれらから実施例１．３の方法で細胞外小胞を分離取得し、分離取得されたＥＶも同様のｍｉＲＮＡ発現パターンを示すかどうかを確認した。ｍｉＲＮＡ発現パターンの比較は、マイクロウェル条件を異にした実験例１及び２の方法により製造されたスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を用いて確認した。発現ｍｉＲＮＡ分析は、実施例８と同様のｑＰＣＲ法により確認した。その結果を図２２に示す。実施例７にて製造した２Ｄ-ＥＶとｍｉＲＮＡ発現パターンを比較した。
実験例１～３の条件でも実施例１と同様の形態を有するスフェロイド型細胞凝集体が製造され得ることが確認されたので、さらにこれらから実施例１．３の方法で細胞外小胞を分離取得し、分離取得されたＥＶも同様のｍｉＲＮＡ発現パターンを示すかどうかを確認した。ｍｉＲＮＡ発現パターンの比較は、マイクロウェル条件を異にした実験例１及び２の方法により製造されたスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を用いて確認した。発現ｍｉＲＮＡ分析は、実施例８と同様のｑＰＣＲ法により確認した。その結果を図２２に示す。実施例７にて製造した２Ｄ-ＥＶとｍｉＲＮＡ発現パターンを比較した。
図２２に示すように、マイクロウェルの条件を直径５００、８００μｍに変化させても、実施例１にて製造したＥＶと同様に血管新生／神経新生（ａｎｇｉｏ／ｎｅｕｒｏｇｅｎｅｓｉｓ）及び免疫調節に効能を示すｍｉＲＮＡであるｍｉＲ－１３２、ｍｉＲ－２１０が既存の２Ｄ－ＥＶと比較して顕著な発現増加を示すことが確認された。これらの結果は、直径２００～８００μｍのマイクロウェルを用いて本発明の方法によって得られる三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来のＥＶがｍｉＲＮＡマーカー発現特性を共通して示し得ることを示す結果である。したがって、これらはいずれも３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶと称する場合がある。
上記のような内容を総合すると、本発明の３Ｄ－静的－スフェロイドＥＶは神経新生に関連するｍｉＲＮＡ、神経新生因子が高く発現され、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏに優れた神経新生能、神経回路生成およびそれに伴う脳卒中の改善効果が確認されたところ、神経の損傷および神経再生を必要とする各種疾患の予防または治療において優れた効果を示すことが予想される。
以上、本発明内容の特定の部分を詳細に記述したところ、当業界における通常の知識を有する者にとって、このような具体的な記述はただ単に好ましい実施形態に過ぎず、これにより本発明の範囲が制限されるものではないことは自明である 。したがって、本発明の実質的な範囲は、添付の特許請求の範囲とそれらの等価物によって定義されるといえる。
Claims (13)
- （ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および
（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；
を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を含む、神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。 - 前記幹細胞は、間葉系幹細胞、万能幹細胞、誘導万能幹細胞および胚幹細胞からなる群から選択されたいずれか一つ以上である、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記（ａ）段階の三次元培養は、静的（ｓｔａｔｉｃ）培養するものである、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記（ａ）段階の三次元培養は、マイクロウェルに間葉系幹細胞を２００～６００細胞／ウェルの密度に分注し、培養するものである、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記細胞外小胞は、間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞および二次元培養した間葉系幹細胞に由来の細胞外小胞に比べてｍｉＲ－２７ａ、ｍｉＲ－１３２、ｍｉＲ－１４６ａ、およびｍｉＲ－１４６ｂからなる群から選択された１種以上を高発現するものである、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記細胞外小胞は、間葉系幹細胞を三次元動的培養したスフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞および二次元培養した間葉系幹細胞に由来の細胞外小胞に比べてＶＥＧＦ（Ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）、ＢＤＮＦ（ｂｒａｉｎ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ ｆａｃｔｏｒ）、ＦＧＦ（ｂｒａｉｎ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ ｆａｃｔｏｒ）およびＮＧＦ（ｂｒａｉｎ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ ｆａｃｔｏｒ）からなる群から選択された１種以上を高発現するものである、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記神経系疾患および損傷は、脊髄損傷、パーキンソン病、脳卒中、筋萎縮性側索硬化症、運動神経損傷、外傷による末梢神経損傷、虚血性脳損傷による神経損傷、新生児低酸素性脳損傷、脳性麻痺、てんかん、難治性てんかん、アルツハイマー病、先天性代謝性神経疾患および外傷性脳損傷（ｔｒａｕｍａｔｉｃ ｂｒａｉｎ ｉｎｊｕｒｙ）からなる群から選択される１種以上の疾患および損傷である、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記組成物は、神経新生誘導用、神経分化誘導用または神経回路回復誘導用である、請求項１に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- 前記神経回路回復の誘導は、ＭＲＩ ＤＴＩ(ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ－ｔｅｎｓｏｒ ｉｍａｇｅ)から確認されるものである、請求項８に記載の神経系疾患および損傷の予防または治療用の医薬組成物。
- （ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および
（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；
を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む、神経系疾患および損傷の予防または改善用の食品組成物。 - （ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および
（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；
を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む、神経再生促進用ｉｎ ｖｉｔｒｏ組成物。 - （ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；および
（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞外小胞を分離する段階；
を含む、三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞を含む神経再生促進用組成物の、製造方法。 - （ａ）直径が２００～８００μｍであり、深さが１００～１０００μｍのマイクロウェルに幹細胞を三次元（３Ｄ、３ ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ）培養し、三次元スフェロイド型細胞凝集体を製造する段階；
（ｂ）前記三次元スフェロイド型細胞凝集体から細胞と外胞を分離する段階を通じて三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を製造する段階；および
（ｃ）前記（ｂ）段階を通じて製造された三次元スフェロイド型細胞凝集体に由来の細胞外小胞（ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を必要とするオブジェクトに処理する段階；
を含む神経系疾患および損傷の予防または治療方法。
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