JP7156943B2 - 白質脳卒中の治療のための、人工多能性幹細胞由来のグリア濃縮前駆細胞 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１５年１０月２日に出願された米国特許第６２／２３６，６４２号の利益及び優先権を主張し、あらゆる目的のためその全体が本明細書に参照により組み込まれる。
政府援助の記述
該当なし

皮質下白質脳卒中（ＷＭＳ）は、米国で１年に発生する新規の脳卒中７９５，０００件の２５％以下を占める（ｄｅ Ｌｅｅｕｗ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ．Ｎｅｕｒａｌ Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．Ｐｓｙｃｈｉａｔｒｙ，７０：９；Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００４）Ｓｔｒｏｋｅ，３５：１５５２；Ｌａｄｅｃｏｌａ（２０１３）Ｎｅｕｒｏｎ ８０：８４４）。一般的なヒトのエイジングプロセスの間に、脳の白質領域は、顕性虚血、及び臨床的無症候性虚血の両方に関係する進行性障害を被る。この種類の虚血は、大脳動脈の閉塞を伴わずに発生し、かつ脳卒中損傷に典型的な臨床的症状を伴わずに生じる場合があるため、多くの場合「小血管病」と呼ばれる（Ｇｏｒｅｌｉｃｋ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｓｔｒｏｋｅ ４２（９）：２６７２）。ＷＭＳを示す大脳白質損傷は、脳卒中に罹っていない無症候性個体の脳画像診断で検出されており（Ｄｅｂｅｔｔｅ ａｎｄ Ｍａｒｋｕｓ，（２０１０）Ｂｒ．Ｍｅｄ．Ｊ．３４１：ｃ３６６６）、年齢と共に蓄積して、８０歳を超える個体全てにおいて、事実上存在するようになる（ｄｅ Ｌｅｅｕｗ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ．Ｎｅｕｒａｌ Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．Ｐｓｙｃｈｉａｔｒｙ ７０：９）。白質損傷の程度は、認知異常、平衡異常及び歩行異常と密接に相関し、死亡リスクの増加を伴う（Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｓｔｒｏｋｅ，４２：２０８６；Ｄｅｂｅｔｔｅ ａｎｄ Ｍａｒｋｕｓ，（２０１０）Ｂｒ．Ｍｅｄ．Ｊ．３４１：ｃ３６６６）。虚血性白質損傷のこの進行性の蓄積は、痴呆の第２の主要因である脳卒中の亜型であり、アルツハイマー病と相互作用してこの病気を悪化、そして場合により加速させる（Ｇｏｒｅｌｉｃｋ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｓｔｒｏｋｅ ４２（９）：２６７２；ＤｅＣａｒｌｉ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｊ．Ａｌｚｈｅｉｍｅｒｓ Ｄｉｓ．３３（Ｓｕｐｐｌ １）：Ｓ４１７）。

ＷＭＳは、大動脈脳卒中で発生する様々な異なるパターンの細胞損傷、または従来の動物脳卒中モデルで見られる様々な異なるパターンの細胞損傷を有する。ＷＭＳで損傷する神経構成要素としては、オリゴデンドロサイト、オリゴデンドロサイト前駆細胞（ＯＰＣ）、星状細胞及び軸索が挙げられる。白質中の主要な神経細胞型はそれ故、グリア細胞：オリゴデンドロサイト、ＯＰＣ及び星状細胞である。大動脈脳卒中において、虚血となる主な細胞型はニューロンオリゴデンドロサイトであり、ＯＰＣは脳の白質領域を有髄化するリネージに存在する（Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｎｅｕｒｏｎ ７０（４）：６６１）。有髄化は軸索の重要な絶縁形質であり、高速なシグナル伝達を可能にし、細胞死から軸索を守る（Ｆａｎｃｙ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ，２２５：１８）。星状細胞はＯＰＣの生残、及び有髄オリゴデンドロサイトへの分化を促進し（Ｐａｔｅｌ ｅｔ ａｌ．（２０１２）Ａｃｔａ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌ．１２４：８４７；Ｓｔｏｆｆｅｌｓ ｅｔ ａｌ．（２０１５）Ｇｌｉａ ６３：２ ４２）、白質内でのグリア同士のシグナル伝達が、通常の白質機能、及び多発性硬化症などの病気において役割を果たしていることを示している（Ｃｌｅｍｅｎｔｅ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｆｒｏｎｔ Ｃｅｌｌ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．７：２６８）。大脳白質損傷はＷＭＳにおいて集密性及び拡張性である。現在、白質脳卒中に利用可能な治療法は存在しない。

米国特許第６２／２３６，６４２号

ｄｅ Ｌｅｅｕｗ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ．Ｎｅｕｒａｌ Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．Ｐｓｙｃｈｉａｔｒｙ，７０：９ Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００４）Ｓｔｒｏｋｅ，３５：１５５２ Ｌａｄｅｃｏｌａ（２０１３）Ｎｅｕｒｏｎ ８０：８４４ Ｇｏｒｅｌｉｃｋ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｓｔｒｏｋｅ ４２（９）：２６７２ Ｄｅｂｅｔｔｅ ａｎｄ Ｍａｒｋｕｓ，（２０１０）Ｂｒ．Ｍｅｄ．Ｊ．３４１：ｃ３６６６ Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｓｔｒｏｋｅ，４２：２０８６ Ｄｅｂｅｔｔｅ ａｎｄ Ｍａｒｋｕｓ，（２０１０）Ｂｒ．Ｍｅｄ．Ｊ．３４１：ｃ３６６６ ＤｅＣａｒｌｉ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｊ．Ａｌｚｈｅｉｍｅｒｓ Ｄｉｓ．３３（Ｓｕｐｐｌ １）：Ｓ４１７ Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｎｅｕｒｏｎ ７０（４）：６６１ Ｆａｎｃｙ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ，２２５：１８ Ｐａｔｅｌ ｅｔ ａｌ．（２０１２）Ａｃｔａ Ｎｅｕｒｏｐａｔｈｏｌ．１２４：８４７ Ｓｔｏｆｆｅｌｓ ｅｔ ａｌ．（２０１５）Ｇｌｉａ ６３：２ ４２ Ｃｌｅｍｅｎｔｅ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｆｒｏｎｔ Ｃｅｌｌ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．７：２６８

本明細書で記載される様々な実施形態において、とりわけ、大脳虚血損傷後及び／または神経脱髄後の対象の治療方法を提供する。いくつかの実施形態では、大脳虚血損傷は白質皮質下脳卒中である。特定の実施形態では、対象はヒトである。様々な実施形態において、本方法は一般に、治療上有効量のヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞を対象の脳内に投与することを伴う。いくつかの実施形態において、本方法は、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞を梗塞核内に投与することを含む。特定の実施形態において、本方法は、ヒト胚幹細胞由来のオリゴデンドロサイト前駆細胞を梗塞核に直接隣接して投与することを更に、または代替的に含む。

特定の実施形態において、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞は、虚血損傷後の亜急性期間内に投与される。いくつかの実施形態において、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞は、虚血損傷の初期亜急性期間内に投与される。特定の実施形態において、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞は後期亜急性期間内に投与される。

特定の実施形態において、大脳虚血損傷後の、対象の運動及び／または認知機能、及び／または発話を改善するための方法を提供し、本方法は、治療上有効量のヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞を、前記対象の脳内の梗塞核内に、及び／または直接隣接して投与することを含む。いくつかの実施形態では、大脳虚血損傷は白質皮質下脳卒中である。特定の実施形態では、対象はヒトである。いくつかの実施形態において、本方法は、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞を梗塞核内に投与することを含む。別の実施形態において、本方法は、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞を梗塞核に直接隣接して投与することを含む。更に他の実施形態において、本発明は、ヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞を含む、皮質下白質脳卒中の治療のための医薬組成物を提供する。

本明細書で想到される様々な実施形態としては、以下の１つ以上が挙げられるが、これらに限定されない：

実施形態１：大脳虚血損傷後の哺乳類の回復の改善方法であって、前記方法は、治療上有効量の人工多能性グリア濃縮前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＧＥＰ）（例えば、星状細胞マーカーの発現により画定される）を、前記哺乳類の脳内の梗塞核内に、または隣接して投与することを含む、前記方法。

実施形態２：大脳虚血損傷は皮質下白質脳卒中である、実施形態１に記載の方法。

実施形態３：大脳虚血損傷は血管性認知症である、実施形態１に記載の方法。

実施形態４：対象はヒトである、実施形態１～３のいずれか１つに記載の方法。

実施形態５：前記前駆細胞はヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞である、実施形態１～４のいずれか１つに記載の方法。

実施形態６：前記前駆細胞は梗塞核に直接投与される、実施形態１～５のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７：前記前駆細胞は、梗塞核の外の皮質下白質内に投与される、実施形態１～５のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８：前記前駆細胞は虚血損傷後の亜急性期間内に投与される、実施形態１～７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９：前記前駆細胞は注射またはカニューレにより投与される、実施形態１～８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１０：前記前駆細胞は緩衝液内に含有される、実施形態９に記載の方法。

実施形態１１：前記前駆細胞はデポーデリバリーシステムを使用して投与される、実施形態１～８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１２：デポーデリバリーシステムはヒドロゲル（例えば注射可能なヒドロゲル）を含む、実施形態１１に記載の方法。

実施形態１３：前記ヒドロゲルは生体高分子を含む、実施形態１２に記載の方法。

実施形態１４：前記ヒドロゲルは、ヒアルロナン、ゼラチン、チオール変性ヒアルロナン、ヘパリン、チオール変性ヘパリン、チオール変性コンドロイチンサルフェート、チオール変性ゼラチン、ヒアルロナンナトリウム塩、及びアクリレート化ヒアルロン酸からなる群から選択される１つ以上の材料を含む、実施形態１３に記載の方法。

実施形態１５：前記ヒドロゲルはヒアルロナン誘導体及びゼラチン誘導体を含む、実施形態１２～１４のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１６：ヒアルロナン誘導体はチオレート化ヒアルロナンを含む、実施形態１５に記載の方法。

実施形態１７：前記ゼラチン誘導体はチオレート化ゼラチンを含む、実施形態１５～１６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１８：前記チオレート化ヒアルロナン及びチオレート化ゼラチンは、カルボジイミドが媒介するヒドラジド化学反応を用いてチオール変性されている、実施形態１６～１７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１９：前記ヒアルロナン及びゼラチンのチオール変性誘導体は架橋してヒドロゲルを形成する、実施形態１５～１８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態２０：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は二価または多価の求電子試薬により架橋している、実施形態１９に記載の方法。

実施形態２１：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により架橋している、実施形態２０に記載の方法。

実施形態２２：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により架橋している、実施形態１９に記載の方法。

実施形態２３：前記ヒドロゲルはヘパリンまたはヘパリン誘導体を含む、実施形態１２～２２のいずれか１つに記載の方法。

実施形態２４：前記ヘパリン誘導体はチオール変性ヘパリンである、実施形態２３に記載の方法。

実施形態２５：前記ヘパリン誘導体は前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合している、実施形態２４に記載の方法。

実施形態２６：ヘパリン誘導体は二価または多価の求電子試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態２５に記載の方法。

実施形態２７：ヘパリン誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態２６に記載の方法。

実施形態２８：ヘパリン誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態２５に記載の方法。

実施形態２９：前記ヒドロゲルは最大で約１０％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態１２～２８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３０：前記ヒドロゲルは最大で約５％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態１２～２８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３１：前記ヒドロゲルは最大で約３％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態１２～２８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３２：前記前駆細胞は線維芽細胞に由来する、実施形態１～３１のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３３：前記前駆細胞は皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態３２に記載の方法。

実施形態３４：前記前駆細胞は新生児の皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態３３に記載の方法。

実施形態３５：前記前駆細胞は上皮細胞に由来する、実施形態１～３１のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３６：前記前駆細胞は腎臓上皮細胞に由来する、実施形態３５に記載の方法。

実施形態３７：前記大脳虚血損傷は脳卒中によるものである、実施形態１～３６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３８：前記大脳虚血損傷は頭部損傷によるものである、実施形態１～３６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態３９：前記大脳虚血損傷は呼吸不全によるものである、実施形態１～３６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態４０：前記大脳虚血損傷は心停止によるものである、実施形態１～３６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態４１：大脳虚血損傷後の対象の、運動または認知機能を改善するための方法であって、前記方法は、治療上有効量の人工多能性グリア濃縮前駆細胞を前記哺乳類の脳の梗塞核内に、または梗塞核に隣接して投与することを含む、前記方法。

実施形態４２：大脳虚血損傷は皮質下白質脳卒中である、実施形態４１に記載の方法。

実施形態４３：大脳虚血損傷は動脈性脳卒中である、実施形態４１に記載の方法。

実施形態４４：大脳虚血損傷は血管性認知症である、実施形態４１に記載の方法。

実施形態４５：対象はヒトである、実施形態４１～４４のいずれか１つに記載の方法。

実施形態４６：前記前駆細胞はヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞である、実施形態４１～４５のいずれか１つに記載の方法。

実施形態４７：前記前駆細胞は梗塞核に直接投与される、実施形態４１～４６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態４８：前記前駆細胞は梗塞核内に投与される、実施形態４１～４６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態４９：前記前駆細胞は虚血損傷後の亜急性期間内に投与される、実施形態４１～４８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態５０：前記前駆細胞はデポーデリバリーシステムを使用して投与される、実施形態４１～４９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態５１：前記前駆細胞は注射またはカニューレにより投与される、実施形態４１～４９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態５２：前記前駆細胞は緩衝液内に含有される、実施形態５１に記載の方法。

実施形態５３：デポーデリバリーシステムはヒドロゲルを含む、実施例５０に記載の方法。

実施形態５４：前記ヒドロゲルは生体高分子を含む、実施形態５３に記載の方法。

実施形態５５：前記ヒドロゲルは、ヒアルロナン、ゼラチン、チオール変性ヒアルロナン、ヘパリン、チオール変性ヘパリン、チオール変性コンドロイチンサルフェート、チオール変性ゼラチン、ヒアルロナンナトリウム塩、及びアクリレート化ヒアルロン酸からなる群から選択される１つ以上の材料を含む、実施形態５４に記載の方法。

実施形態５６：前記ヒドロゲルはヒアルロナン誘導体及びゼラチン誘導体を含む、実施形態５３～５５のいずれか１つに記載の方法。

実施形態５７：ヒアルロナン誘導体はチオレート化ヒアルロナンを含む、実施形態５６に記載の方法。

実施形態５８：前記ゼラチン誘導体はチオレート化ゼラチンを含む、実施形態５６～５７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態５９：前記チオレート化ヒアルロナン及びチオレート化ゼラチンは、カルボジイミドが媒介するヒドラジド化学反応を用いてチオール変性されている、実施形態５７～５８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態６０：前記ヒアルロナン及びゼラチンのチオール変性誘導体は架橋してヒドロゲルを形成する、実施形態５６～５９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態６１：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は二価または多価の求電子試薬により架橋している、実施形態６０に記載の方法。

実施形態６２：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により架橋している、実施形態６１に記載の方法。

実施形態６３：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により架橋している、実施形態６０に記載の方法。

実施形態６４：前記ヒドロゲルはヘパリンまたはヘパリン誘導体を含む、実施形態５３～６３のいずれか１つに記載の方法。

実施形態６５：前記ヘパリン誘導体はチオール変性ヘパリンである、実施形態６４に記載の方法。

実施形態６６：前記ヘパリン誘導体は前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合している、実施形態６５に記載の方法。

実施形態６７：ヘパリン誘導体は二価または多価の求電子試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態６６に記載の方法。

実施形態６８：ヘパリン誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態６７に記載の方法。

実施形態６９：ヘパリン誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態６６に記載の方法。

実施形態７０：前記ヒドロゲルは最大で約１０％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態５３～６９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７１：前記ヒドロゲルは最大で約５％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態５３～６９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７２：前記ヒドロゲルは最大で約３％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態５３～６９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７３：前記前駆細胞は線維芽細胞に由来する、実施形態４１～７２のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７４：前記前駆細胞は皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態７３に記載の方法。

実施形態７５：前記前駆細胞は新生児の皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態７４に記載の方法。

実施形態７６：前記前駆細胞は上皮細胞に由来する、実施形態４１～７２のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７７：前記前駆細胞は腎臓上皮細胞に由来する、実施形態７６に記載の方法。

実施形態７８：前記大脳虚血損傷は脳卒中によるものである、実施形態４１～７７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態７９：前記大脳虚血損傷は外傷性損傷によるものである、実施形態４１～７７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８０：前記外傷性損傷は頭部及び／または脊髄損傷を含む、実施形態７９に記載の方法。

実施形態８１：前記大脳虚血損傷は、多発性硬化症、白質ジストロフィー、ギラン・バレー症候群、シャルコー・マリー・トゥースニューロパシー、テイ・サックス病、ニーマン・ピック病、ゴーシェ病、及びハーラー症候群からなる群から選択される状態によるものである、実施形態４１～７７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８２：前記大脳虚血損傷は心停止によるものである、実施形態４１～７７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８３：前記大脳虚血損傷は呼吸不全によるものである、実施形態４１～７７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８４：中枢神経系に影響を及ぼす脱髄性病状を有する哺乳類における、ミエリン喪失の遅延、及び／またはミエリン修復の促進、及び／または再ミエリン化の促進方法であって、前記方法は、治療上有効量の人工多能性グリア濃縮前駆細胞を前記哺乳類の脳の梗塞核内に、または梗塞核に隣接して投与することを含む、前記方法。

実施形態８５：前記病状は、多発性硬化症、炎症性脱髄疾患（多発性硬化症など）、白質ジストロフィー疾患、ＣＮＳニューロパシー、橋中心髄鞘崩壊症、脊髄症、白質脳症、及び白質ジストロフィーからなる群から選択される、実施形態８４に記載の方法。

実施形態８６：対象はヒトである、実施形態８４～８５のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８７：前記前駆細胞はヒト人工多能性グリア濃縮前駆細胞である、実施形態８４～８６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８８：前記前駆細胞は梗塞核に直接投与される、実施形態８４～８７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態８９：前記前駆細胞は、梗塞核の外の皮質下白質内に投与される、実施形態８４～８７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９０：前記前駆細胞は虚血損傷後の亜急性期間内に投与される、実施形態８４～８９のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９１：前記前駆細胞はデポーデリバリーシステムを使用して投与される、実施形態８４～９０のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９２：デポーデリバリーシステムはヒドロゲルを含む、実施例９１に記載の方法。

実施形態９３：前記ヒドロゲルは生体高分子を含む、実施形態９２に記載の方法。

実施形態９４：前記ヒドロゲルは、ヒアルロナン、ゼラチン、チオール変性ヒアルロナン、ヘパリン、チオール変性ヘパリン、チオール変性コンドロイチンサルフェート、チオール変性ゼラチン、ヒアルロナンナトリウム塩、及びアクリレート化ヒアルロン酸からなる群から選択される１つ以上の材料を含む、実施形態９３に記載の方法。

実施形態９５：前記ヒドロゲルはヒアルロナン誘導体及びゼラチン誘導体を含む、実施形態９２～９４のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９６：ヒアルロナン誘導体はチオレート化ヒアルロナンを含む、実施形態９５に記載の方法。

実施形態９７：前記ゼラチン誘導体はチオレート化ゼラチンを含む、実施形態９５～９６のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９８：前記チオレート化ヒアルロナン及びチオレート化ゼラチンは、カルボジイミドが媒介するヒドラジド化学反応を用いてチオール変性されている、実施形態９６～９７のいずれか１つに記載の方法。

実施形態９９：前記ヒアルロナン及びゼラチンのチオール変性誘導体は架橋してヒドロゲルを形成する、実施形態９５～９８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１００：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は二価または多価の求電子試薬により架橋している、実施形態９９に記載の方法。

実施形態１０１：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により架橋している、実施形態１００に記載の方法。

実施形態１０２：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により架橋している、実施形態９９に記載の方法。

実施形態１０３：前記ヒドロゲルはヘパリンまたはヘパリン誘導体を含む、実施形態９２～１０２のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１０４：前記ヘパリン誘導体はチオール変性ヘパリンである、実施形態１０３に記載の方法。

実施形態１０５：前記ヘパリン誘導体は前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合している、実施形態１０４に記載の方法。

実施形態１０６：ヘパリン誘導体は二価または多価の求電子試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態１０５に記載の方法。

実施形態１０７：ヘパリン誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態１０６に記載の方法。

実施形態１０８：ヘパリン誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態１０５に記載の方法。

実施形態１０９：前記ヒドロゲルは最大で約１０％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態９２～１０８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１１０：前記ヒドロゲルは最大で約５％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態９２～１０８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１１１：前記ヒドロゲルは最大で約３％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態９２～１０８のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１１２：前記前駆細胞は線維芽細胞に由来する、実施形態８４～１１１のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１１３：前記前駆細胞は皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態１１２に記載の方法。

実施形態１１４：前記前駆細胞は新生児の皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態１１３に記載の方法。

実施形態１１５：前記前駆細胞は上皮細胞に由来する、実施形態８４～１１１のいずれか１つに記載の方法。

実施形態１１６：前記前駆細胞は腎臓上皮細胞に由来する、実施形態１１５に記載の方法。

実施形態１１７：人工多能性グリア濃縮前駆細胞を含む、皮質下白質脳卒中を治療するための医薬組成物。

実施形態１１８：前記前駆細胞は注射可能な緩衝液に懸濁している、実施形態１１７に記載の医薬組成物。

実施形態１１９：前記組成物はデポーデリバリーシステムを含む、実施形態１１７に記載の医薬組成物。

実施形態１２０：デポーデリバリーシステムはヒドロゲル（例えば注射可能なヒドロゲル）を含む、実施形態１１９に記載の医薬組成物。

実施形態１２１：前記ヒドロゲルは生体高分子を含む、実施形態１２０に記載の医薬組成物。

実施形態１２２：前記ヒドロゲルは、ヒアルロナン、ゼラチン、チオール変性ヒアルロナン、ヘパリン、チオール変性ヘパリン、チオール変性コンドロイチンサルフェート、チオール変性ゼラチン、ヒアルロナンナトリウム塩、及びアクリレート化ヒアルロン酸からなる群から選択される１つ以上の材料を含む、実施形態１２１に記載の医薬組成物。

実施形態１２３：前記ヒドロゲルはヒアルロナン誘導体及びゼラチン誘導体を含む、実施形態１２０～１２２のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１２４：ヒアルロナン誘導体はチオレート化ヒアルロナンを含む、実施形態１２３に記載の医薬組成物。

実施形態１２５：前記ゼラチン誘導体はチオレート化ゼラチンを含む、実施形態１２３～１２４のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１２６：前記チオレート化ヒアルロナン及びチオレート化ゼラチンは、カルボジイミドが媒介するヒドラジド化学反応を用いてチオール変性されている、実施形態１２４～１２５のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１２７：前記ヒアルロナン及びゼラチンのチオール変性誘導体は架橋してヒドロゲルを形成する、実施形態１２３～１２６のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１２８：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は二価または多価の求電子試薬により架橋している、実施形態１２７に記載の医薬組成物。

実施形態１２９：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により架橋している、実施形態１２８に記載の医薬組成物。

実施形態１３０：前記ヒアルロナン及びゼラチンの誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により架橋している、実施形態１２７に記載の医薬組成物。

実施形態１３１：前記ヒドロゲルはヘパリンまたはヘパリン誘導体を含む、実施形態１２０～１３０のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１３２：前記ヘパリン誘導体はチオール変性ヘパリンである、実施形態１３１に記載の医薬組成物。

実施形態１３３：前記ヘパリン誘導体は前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合している、実施形態１３２に記載の医薬組成物。

実施形態１３４：ヘパリン誘導体は二価または多価の求電子試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態１３３に記載の医薬組成物。

実施形態１３５：ヘパリン誘導体は、ポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）、ポリエチレングリコールジビニルスルホン、ポリエチレングリコールビスマレイミド、ポリエチレングリコールジメチルアクリレート、ポリエチレングリコール（メチル）アクリルアミド、及びポリエチレングリコールジ（ハロ）アセテートからなる群から選択される試薬により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態１３４に記載の医薬組成物。

実施形態１３６：ヘパリン誘導体はポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）により、前記ヒアルロナン誘導体及び／または前記ゼラチン誘導体に結合する、実施形態１３３に記載の医薬組成物。

実施形態１３７：前記ヒドロゲルは最大で約１０％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態１２０～１３６のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１３８：前記ヒドロゲルは最大で約５％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態１２０～１３６のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１３９：前記ヒドロゲルは最大で約３％の固体（ｗ／ｖ）を含む、実施形態１２０～１３６のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１４０：前記前駆細胞は線維芽細胞に由来する、実施形態１１７～１３９のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１４１：前記前駆細胞は皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態１４０に記載の医薬組成物。

実施形態１４２：前記前駆細胞は新生児の皮膚線維芽細胞に由来する、実施形態１４１に記載の医薬組成物。

実施形態１４３：前記前駆細胞は上皮細胞に由来する、実施形態１１７～１３９のいずれか１つに記載の医薬組成物。

実施形態１４４：前記前駆細胞は腎臓上皮細胞に由来する、実施形態１４３に記載の医薬組成物。

白質脳卒中のマウスモデルでｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの移植を試験する試験１の実験タイムラインを示す。実験設計において鍵となる時点が示され、脳卒中後７日目の、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの移植、及び細胞移植後１５日目の組織処理を含む。ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝１回の１μL注射として、１００，０００ｃｅｌｌ／マウス。略称：Ｌ－ＮＩＯ＝Ｎ５－（１－イミノエチル）－Ｌ－オルニチン、ジヒドロクロリド；ｉＰＳＣ－ＮＰＣ＝人工多能性幹細胞のニューロン前駆細胞；ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝人工多能性幹細胞のグリア濃縮前駆細胞。 Ｌ－ＮＩＯの注射部位を示す、マウスの脳の冠状断面図である。青線は、巣状虚血損傷を引き起こすために３６°の角度で各マウスの脳の脳梁内に直接送達される、Ｌ－ＮＩＯの３つの注射部位を示す。略称：Ｃｘ＝皮質；Ｓｔｒ＝線条体；ＷＭ＝白質。 パネルＡ－Ｂは、脳卒中で障害を起こしたマウス脳内の、星状細胞活性化及び軸索喪失の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。画像パネルは、障害を持たない対側半球（Ａ、対照）及び脳卒中障害を持つ半球（Ｂ、白質脳卒中）における、脳卒中障害の３週間後における、星状細胞（ＧＦＡＰ）及び軸索（ＮＦ２００）の蛍光免疫染色を示す。（Ａ）では、左の縦列はＧＦＡＰ（緑）及びＮＦ２００（赤）をマージした蛍光画像を示し、中央の縦列はＧＦＡＰのみを示し、右の縦列はＮＦ２００のみを示す。（Ｂ）では、左の縦列はＮＦ２００のみを示し、中央の縦列はＧＦＡＰのみを示し、右の縦列はＧＦＡＰ（緑）及びＮＦ２００（赤）をマージした蛍光画像を示す。（Ａ）及び（Ｂ）について、横列は、損傷領域（Ｂ）と対側（Ａ）の倍率の増加具合を示す。上の横列＝４０×、中央の横列＝２００倍、下。（Ａ）の白枠は、下パネルで拡大された領域を示す。（Ａ）の白い点線は、脳梁のおおよその境界を示す。（Ａ）及び（Ｂ）のアスタリスクは側脳室を示す。略称：Ｃｘ＝皮質；ＧＦＡＰ＝グリア線維性酸性タンパク質；ＮＦ２００＝神経フィラメント２００；Ｓｔｒ＝線条体；ＷＭ＝白質。 パネルＡ～Ｆは、脳卒中障害のマウス脳における、ミエリン喪失とオリゴデンドロサイト応答の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。損傷していない対側脳梁（Ａ）～（Ｂ）、及び損傷した同側脳梁（Ｃ）～（Ｄ）における、脳卒中障害の３週間後の、相対的なミエリン喪失（ＭＢＰ、緑）及びオリゴデンドロサイトの存在（ＯＬＩＧ２、赤）。（Ａ）及び（Ｂ）について、左パネルは、ＭＢＰ及びＯＬＩＧ２をマージした画像を示し、中央のパネルはＭＢＰのみを示し、右パネルはＯＬＩＧ２のみを示す。パネル（Ｃ）及び（Ｄ）は、（Ａ）及び（Ｃ）をマージした画像の、更なる拡大画像を示す。（Ｅ）（Ａ）～（Ｄ）に記載する領域を示す、マウス脳の冠状断面図。倍率：（Ａ）及び（Ｂ）＝６００倍；（Ｃ）及び（Ｄ）＝１０００倍。略称：ＭＢＰ＝ミエリン塩基性タンパク質。パネルＦは、脳卒中損傷及びｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後の、脳梁損傷内でのミエリン塩基性タンパク質の免疫反応性及びオリゴデンドロサイト応答の定量化を示す。パネルＦ（上））脳卒中（または見せかけの手術）後３週間における平均のミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ）免疫反応性を、各治療群に関して示す。パネルＦ（下））脳卒中（または見せかけの手術）後３週間におけるＯＬＩＧ２陽性細胞の平均数を、各治療群に関して示す。エラーバーは平均値の標準誤差を表す。 パネルＡ～Ｆは、脳卒中障害のマウス脳における、ミエリン喪失とオリゴデンドロサイト応答の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。損傷していない対側脳梁（Ａ）～（Ｂ）、及び損傷した同側脳梁（Ｃ）～（Ｄ）における、脳卒中障害の３週間後の、相対的なミエリン喪失（ＭＢＰ、緑）及びオリゴデンドロサイトの存在（ＯＬＩＧ２、赤）。（Ａ）及び（Ｂ）について、左パネルは、ＭＢＰ及びＯＬＩＧ２をマージした画像を示し、中央のパネルはＭＢＰのみを示し、右パネルはＯＬＩＧ２のみを示す。パネル（Ｃ）及び（Ｄ）は、（Ａ）及び（Ｃ）をマージした画像の、更なる拡大画像を示す。（Ｅ）（Ａ）～（Ｄ）に記載する領域を示す、マウス脳の冠状断面図。倍率：（Ａ）及び（Ｂ）＝６００倍；（Ｃ）及び（Ｄ）＝１０００倍。略称：ＭＢＰ＝ミエリン塩基性タンパク質。パネルＦは、脳卒中損傷及びｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後の、脳梁損傷内でのミエリン塩基性タンパク質の免疫反応性及びオリゴデンドロサイト応答の定量化を示す。パネルＦ（上））脳卒中（または見せかけの手術）後３週間における平均のミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ）免疫反応性を、各治療群に関して示す。パネルＦ（下））脳卒中（または見せかけの手術）後３週間におけるＯＬＩＧ２陽性細胞の平均数を、各治療群に関して示す。エラーバーは平均値の標準誤差を表す。 パネルＡ～Ｅは、脳卒中障害のマウス脳における、活性化されたマイクログリア／免疫細胞の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。（Ａ）（Ｂ）～（Ｄ）に示す領域を示す、マウス脳の冠状断面図。（Ｂ）～（Ｄ）損傷していない対側脳梁（Ｂ）、及び損傷した同側脳梁（Ｃ）～（Ｅ）において、Ｉｂａ１標識（紫）により測定される、脳卒中損傷の３週間後の、相対的なマイクログリア／免疫細胞活性化。パネル（Ｄ）及び（Ｅ）は、（Ｃ）に示す領域の更なる拡大画像を示す。（Ｂ）の白い点線は、梗塞核と梗塞周囲組織とのおおよその境界を示す。倍率：（Ｂ）及び（Ｃ）＝６００倍；（Ｄ）及び（Ｅ）＝１０００倍。略称：Ｉｂａ１＝イオン化カルシウム結合アダプター分子１。 損傷していない脳梁への細胞注射部位を示す、マウス脳の冠状断面図である。矢印は、損傷していない脳梁内でのおおよその細胞注射部位を示す。略称；Ｃｘ＝皮質；Ｓｔｒ＝線条体；ＷＭ＝白質。 パネルＡ～Ｄは、マウスの皮質下白質脳卒中及び細胞移植を示す。（Ａ）Ｌ－ＮＩＯ注射の１ヶ月後に撮影したマウスのＭＲＩ。矢印は、脳卒中により引き起こされた高強度域を示す。（Ｂ）Ｌ－ＮＩＯ注射及びｉＰＳＣ－ＮＰＣ移植の１ヶ月後に撮影したＭＲＩ。（Ｃ）Ｌ－ＮＩＯ注射及びｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植の１ヶ月後に撮影したＭＲＩ。Ｂ及びＣにおける矢印は、ｉＰＳＣ移植による、損傷を受けた白質の明らかな修復を示す。パネルＤは、画素あたりの平均濃淡値を示す：これは、画素数により除した、選択した画素全ての濃淡値の合計である。較正単位で報告し、異なる治療群のマウス脳の対側（未損傷）及び同側（損傷）側面で測定。エラーバーは平均値の標準誤差を表す。アスタリスクは、テューキ－のＨＤＣ事後分析による二元配置分散分析を用いた、脳の未損傷側に対する有意差を示す（ｐ＜０．０５）。 パネルＡ～Ｃは、梗塞エリア領域、ＩＰＳ－ＮＰＣの位置、及びｉＰＳ－ＧＥＰの位置を示すマウスの冠状断面を表す。点は、１つのヒト細胞の位置を表す。（Ａ）梗塞エリア領域を示すマウスの冠状断面を表す。（Ｂ）移植２ヶ月後の、ｉＰＳ－ＮＰＣの位置を示すマウスの冠状断面を表す。（Ｃ）移植２ヶ月後の、ｉＰＳ－ＧＥＰの位置を示すマウスの冠状断面を表す。略称：ＷＭＳ＝白質脳卒中；ｉＰＳＣ－ＮＰＣ＝人工多能性幹細胞のニューロン前駆細胞；ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝人工多能性幹細胞のグリア濃縮前駆細胞。 パネルＡ～Ｄは、脳卒中損傷後のマウス脳における、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの位置、活性化されたマイクログリア／免疫細胞、及びＭＢＰ応答の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。画像パネルは、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後の脳卒中損傷の２及び８週間後における、ＧＦＰ＋細胞（緑）、活性化されたマイクログリア／免疫細胞（ＩＢＡ－１、青）及びＭＢＰ（赤）の蛍光免疫染色を示す。Ａにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＮＰＣ移植の２週間後におけるＧＦＰ＋、ＭＢＰ及びＩＢＡ１をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＩＢＡ－１のみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＭＢＰのみを示す。Ｂにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＮＰＣ移植の８週間後におけるＧＦＰ＋、ＭＢＰ及びＩＢＡ１をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＩＢＡ－１のみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＭＢＰのみを示す。Ｃにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＧＥＰ移植の２週間後におけるＧＦＰ＋、ＭＢＰ及びＩＢＡ１をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＩＢＡ－１のみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＭＢＰのみを示す。Ｄにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＧＥＰ移植の８週間後におけるＧＦＰ＋、ＭＢＰ及びＩＢＡ１をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＩＢＡ－１のみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＭＢＰのみを示す。倍率＝６００倍。略称：ＭＢＰ＝ミエリン塩基性タンパク質；ＩＢＡ－１＝イオン化カルシウム結合アダプター分子；ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝人工多能性幹細胞のグリア濃縮前駆細胞。 パネルＡ、Ｂ、及びＣは、脳卒中損傷及びｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後のマウス脳におけるミエリン修復、炎症反応及び細胞生残の定量化を示す。（Ａ）細胞移植の２及び８週間後における、各治療群についてのミエリン修復を示す。（Ｂ）細胞移植の２及び８週間後における、各治療群についての炎症反応を示す。（Ｃ）細胞移植の２及び８週間後における、各治療群についての細胞生残を示す。略称：ＭＢＰ＝ミエリン塩基性タンパク質；ＩＢＡ－１＝イオン化カルシウム結合アダプター分子；ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝人工多能性幹細胞グリア濃縮前駆細胞。 パネルＡ～Ｃは、脳卒中損傷後のマウス脳における、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの位置、活性化されたマイクログリア／免疫細胞及び軸索修復の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。画像パネルは、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後の脳卒中損傷の２及び８週間後における、ＧＦＰ＋細胞（緑）、活性化されたマイクログリア／免疫細胞（ＩＢＡ－１、青）及びＮＦ２００（紫）の蛍光免疫染色を示す。Ａにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＮＰＣ移植の２週間後におけるＧＦＰ＋、ＮＦ２００及びＩＢＡ１をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＩＢＡ－１のみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＮＦ２００のみを示す。Ｂにおいて、パネル１（左上）は、IＰＳ－ＧＥＰ移植の２週間後におけるＧＦＰ＋、ＮＦ２００及びＩＢＡ１をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＩＢＡ－１のみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＮＦ２００のみを示す。パネルＣは、細胞移植の２週間後における、各治療群についての脳卒中損傷及びｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後のマウス脳における、軸索修復の定量化を示す。倍率＝６００倍。略称：ＮＦ２００＝神経フィラメント２００；ＭＢＰ＝ミエリン塩基性タンパク質；ＩＢＡ－１＝イオン化カルシウム結合アダプター分子；ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝人工多能性幹細胞のグリア濃縮前駆細胞。 パネルＡ～Ｃは、脳卒中損傷後のマウス脳における、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの位置、及び細胞分化の例示的な蛍光顕微鏡写真を示す。画像パネルは、ｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後の脳卒中損傷の８週間後における、ＧＦＰ＋細胞（緑）、未熟ニューロン（ＤＣｘ、青）及びオリゴデンドロサイト（ＯＬＩＧ２、赤）の蛍光免疫染色を示す。パネルＡにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＮＰＣ移植の８週間後におけるＧＦＰ＋、ＤＣｘ及びＯＬＩＧ２をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＤＣｘのみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＯＬＩＧ２のみを示す。パネルＢにおいて、パネル１（左上）は、ＩＰＳ－ＧＥＰ移植の８週間後におけるＧＦＰ＋、ＤＣｘ及びＯＬＩＧ２をマージした蛍光画像を示し、パネル２（右上）はＤＣｘのみを示し、パネル３（左下）はＧＦＰ＋のみを示し、パネル４（右下）はＯＬＩＧ２のみを示す。パネルＣは、細胞移植の８週間後における、各治療群についての脳卒中損傷及びｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植後のマウス脳における、細胞分化の定量化を示す。倍率＝６００倍。略称：ＤＣｘ＝ダブルコルチン；ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝人工多能性幹細胞のグリア濃縮前駆細胞。 パネルＡは、白質脳卒中のマウスモデルにおける、機能回復及び白質回避についてのｉＰＳＣ－ＮＰＣ及びｉＰＳＣ－ＧＥＰの効果を試験する調査２の実験タイムラインを示す。実験設計において鍵となる時点が示され、脳卒中の７日後における細胞移植、及び毎月の行動試験を含む。パネルＢは、損傷部位へのｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの移植は、グリッド歩行試験において脳卒中損傷したマウスの動作を改善したことを示す。各治療群に関しての、グリッド歩行試験における平均動作（フットフォールトの割合として示す）を、時間の関数として示す（脳卒中後）。脳卒中後１週間は、細胞移植前の日に対応する。アスタリスク及びハッシュタグは、テューキ－のＨＤＣ事後分析による二元配置分散分析を用いた、脳卒中群に対する有意差を示す（ｐ＜０．０５）。脳卒中の４ヶ月後に、細胞を移植した（ｉＰＳＣ－ＮＰＣ、ｉＰＳＣ－ＧＥＰ、ｉＰＳＣ－線維芽細胞及び組み合わせ治療）全ての脳卒中障害を持つ群は、脳卒中障害を持つ動物とは著しく異なり、運動回復を維持したことを示す。同じ時点において、脳卒中＋ｉＰＳＣ線維芽細胞のみが他の治療群とは著しく異なり、移植後に運動回復がさほどしなかったことを示す。治療群の標識：対照＝未損傷、非移植；脳卒中＝脳卒中のみ；脳卒中＋ｉＰＳＣ－ＮＰＣ＝脳卒中損傷＋１００，０００個のｉＰＳＣ－ＮＰＣ細胞移植；脳卒中＋ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝脳卒中損傷＋１００，０００個のｉＰＳＣ－ＧＥＰ；脳卒中＋ｉＰＳＣ線維芽細胞＝脳卒中損傷＋１００，０００個のｉＰＳＣ線維芽細胞；脳卒中＋組み合わせ治療＝脳卒中損傷＋５０，０００個のｉＰＳＣ－ＮＰＣ及び５０，０００個のｉＰＳＣ－ＧＥＰ。 損傷部位へのｉＰＳＣ－ＮＰＣまたはｉＰＳＣ－ＧＥＰの移植は、シリンダー試験において脳卒中障害を持つマウスの動作を改善することを示す。各治療群に関しての、シリンダー試験における平均動作（損傷前のベースラインに対する運動欠陥として示す）を、時間の関数として示す（脳卒中後）。脳卒中後１週間は、ＡＳＴ－ＯＰＣ１移植の前の日に対応する。アスタリスクは、テューキ－のＨＤＣ事後分析による二元配置分散分析を使用した、脳卒中のみの群に対する有意差を示す（ｐ＜０．０５）。脳卒中後１週間は、細胞移植前の日に対応する。アスタリスク及びハッシュタグは、テューキ－のＨＤＣ事後分析による二元配置分散分析を用いた、脳卒中群に対する有意差を示す（ｐ＜０．０５）。脳卒中の４ヶ月後に、脳卒中＋ｉＰＳＣ－ＧＥＰの群のみが脳卒中のみの群と著しく異なり、異なる治療間での最良の運動回復を示す。治療群の標識：対照＝未損傷、非移植；脳卒中＝脳卒中のみ；脳卒中＋ｉＰＳＣ－ＮＰＣ＝脳卒中損傷＋１００，０００個のｉＰＳＣ－ＮＰＣ細胞移植；脳卒中＋ｉＰＳＣ－ＧＥＰ＝脳卒中損傷＋１００，０００個のｉＰＳＣ－ＧＥＰ；脳卒中＋ｉＰＳＣ線維芽細胞＝脳卒中損傷＋１００，０００個のｉＰＳＣ線維芽細胞；脳卒中＋組み合わせ治療＝脳卒中損傷＋５０，０００個のｉＰＳＣ－ＮＰＣ及び５０，０００個のｉＰＳＣ－ＧＥＰ。

様々な実施形態において、本明細書に記載する方法及び組成物は、大脳虚血損傷後のｉＰＳ－ＧＥＰ移植は、ＷＭＳのマウスモデルにおける回復を高めるという発見に関する。亜急性の時点（例えば脳卒中後７日目）においてｉＰＳ－ＧＥＰを白質脳卒中の領域に移植することにより、皮質下白質全体にわたるｉＰＳ－ＧＥＰの広範な移動が生み出され、損傷した白質内での有髄化の増加がもたらされ、反応性の星状細胞増加及び炎症の大きさが低下した。ｉＰＳ－ＧＥＰの移植後における白質のＭＲＩ画像診断では、マウスモデル及びヒトＷＭＳの両方において、白質損傷の特徴である高強度域の減少が示された。行動評価では、運動機能の２つの試験において改善が示された。これらの結果は、ｉＰＳ－ＧＥＰ移植は白質修復、及び白質脳卒中の回復を促進することを示している。

したがって、様々な実施形態において、白質脳卒中などの大脳虚血損傷の治療におけるｉＰＳ－ＧＥＰの使用方法が提供される。また、白質脳卒中の細胞ベースの臨床的治療法での使用に好適な医薬組成物及び配合物も、本明細書中で提供されている。

人工多能性グリア濃縮前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＧＥＰ）の使用
例えば本明細書に記載するように、人工多能性幹細胞からのグリア濃縮前駆細胞（ＧＥＰ）の誘導は、大脳虚血性損傷の治療を含むがこれらに限定されない、多数の重要な治療、研究、開発、及び商用目的のための、再生可能かつ拡張性のあるＧＥＰ源を提供する。

用語「人工多能性グリア濃縮前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＧＥＰ）」とは、星状細胞と、明細書に記載する特定の分化プロトコールに従って未分化の人工多能性幹細胞から得られる、他の特性決定された細胞型との混合物を含有する、特性決定された特定の、ｉｎ ｖｉｔｒｏで分化した細胞集団の細胞を意味する。

免疫細胞化学（ＩＣＣ）、マイクロアレイ分析、及び定量ポリメラーゼ連鎖反応（ｑＰＣＲ）によるｉＰＳ－ＧＥＰの組成分析は、細胞集団が星状細胞及びニューロン表現型の神経リネージ細胞を主に含んでいることを示す。ｉＰＳ－ＧＥＰの産生方法故に、培養液中の実質的に全ての細胞が神経細胞である。これが確立されているのは、方法の一部として、神経ロゼット構築物が手動で単離され、神経誘導体のみを拡大するために使用されるためである。更に、本方法は、様々な神経マーカーを免疫染色して同一性を測定することにより有効と認められている。最終的に、単一細胞ＲＴ－ＰＣＲは、全ての細胞が少なくとも神経マーカーのサブセットを発現することを示した。非神経細胞がこれらの培養液に存在するという証拠は存在しない。

上で説明したように、ＩＰＳＧＥＰがとりわけ白質脳卒中の治療で用いることが可能であることが発見された。本明細書で使用する場合、用語「治療」「治療する」「治療した」または「治療すること」は、治療的処理、または予防もしくは防止用手段をともに意味し、ここでは、目的は望ましくない生理学的状態、症状、疾患または病気を予防もしくは遅延（軽減）する、または有益もしくは所望の臨床的結果を得ることである。いくつかの実施形態において、この用語は治療及び予防の両方を意味してよい。本開示の目的に関して、有益または所望の臨床的結果としては、以下の１つ以上が挙げられるが、これらに限定されない：有害な症状の緩和；状態、疾患、または病気の程度の低下；状態、疾患、または病気の状態の安定化（即ち悪化させないこと）；状態、疾患、または病気の開始を遅らせること、または進行をゆっくりにすること；状態、疾患、または病気の回復；及び、状態、疾患、または病気の、検出可能か検出不可能かにかかわらない寛解（部分的または全体的かにかかわらない）、または向上もしくは改善。治療には、臨床的に著しい反応を誘発することを含む。治療には、治療を受けていない場合に予想される生残と比較した、生残の延長もまた含む。特定の実施形態において、特に脳虚血の場合において、治療は、運動制御の改善または回復、発話の改善または回復、平衡の改善または回復、（例えば、様々な認知機能アッセイのいずれかにより測定される）認知の改善などを含んでもよい。

用語「対象」及び「患者」は本明細書では同じ意味で用いられ、哺乳類、例えばヒト、非ヒト霊長類、他の哺乳類（例えば非ヒト霊長類、イヌ、ウマ、ネコ、ブタ、ウシ、ウサギなど）が挙げられるが、これらに限定されない。特定の実施形態において、対象は、例えば本明細書に記載したように脱髄を特徴とする病状を有すると決定された対象である。特定の実施形態において、対象は、中枢神経系での神経組織の脱髄を特徴とする病状のリスクがあると測定された対象である。このような特徴は、家族歴、対象の以前の病状例、脱髄性病状のリスクにあると対象を決定する遺伝試験を含むがこれらに限定されない試験結果などに基づくことができる。いくつかの実施形態において、用語「対象」とは、オスを意味する。いくつかの実施形態において、用語「対象」とは、メスを意味する。

様々な実施形態において、本明細書に記載するｉＰＳ－ＧＥＰはミエリン修復及び／もしくは再ミエリン化を促進する、及び／または治療を必要とするヒト患者もしくは他の対象において脱髄を遅らせる。ミエリン修復または再ミエリン化を必要とする状態、病気及び病状の非限定例は、以下のとおりである：脳虚血性障害（白質脳卒中、多発性硬化症、白質ジストロフィー、ギラン・バレー症候群、シャルコー・マリー・トゥースニューロパシー、テイ・サックス病、ニーマン・ピック病、ゴーシェ病、ハーラー症候群など）、及び有髄化の喪失がもたらされる外傷性障害（急性脊髄損傷など）。

特定の実施形態において、ミエリン修復または再ミエリン化に加えて、ｉＰＳ－ＧＥＰは、損傷した組織（例えば虚血組織）に直接回復作用をもたらし得る神経栄養因子（例えばＢＮＤＦ）、例えばＧＤＦ１５、ＧＤＮＦ、ＶＥＧＦａ、ＴＧＦβなどを産生することができる。

様々な実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは目的の組織部位に、ｉＰＳ－ＧＥＰが存在し、及び／または目的の組織部位にグラフトし、及び／または移動し、機能が欠損した領域を再構築または再生する、及び／または神経組織の更なる退化を安定化及び／または予防する方法で投与される。対象への細胞の投与は、当該技術分野において公知の任意の方法で達成することができる。例えば、細胞は、細胞移植が必要な臓器または組織に、手術により直接投与することができる。あるいは、非侵襲性手順を用いて細胞を対象に投与することができる。非侵襲性送達法の例としては、シリンジ及び／またはカテーテル及び／またはカニューレを使用して、細胞治療が必要な臓器または組織に細胞を送達することが挙げられる。

特定の実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは梗塞核内に投与される。特定の実施形態において、ＯＰＣが梗塞核に隣接して、追加で、または代替的に投与される。本明細書で使用する場合、「隣接した」とは、場合によっては部分的な虚血性（例えば脳卒中）損傷を示す、梗塞核の外側領域を意味する。特定の実施形態において、「隣接した」とは、梗塞領域の外側の健康な組織を意味する。いくつかの実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは梗塞核の約０．０５ｍｍ～約３ｍｍから投与される。いくつかの実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは梗塞核の約０．１ｍｍ～約２ｍｍから投与される。いくつかの実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは梗塞核の約０．５ｍｍ～約１ｍｍから投与される。いくつかの実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは梗塞核の約０．３ｍｍ～約０．６ｍｍから投与される。

特定の実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰは亜急性期間内に対象に投与される。本明細書で使用する場合、「亜急性」とは、虚血性（例えば脳卒中）障害による初期障害及び細胞死が終了する、急性期と慢性期の間の期間を意味する。本明細書で使用する場合、ヒト対象における「初期亜急性」とは、脳卒中後の最大１ヶ月を意味し、「後期亜急性」とは、脳卒中後の１～３ヶ月の期間を意味する。

特定の実施形態において、本明細書に記載したｉＰＳ－ＧＥＰを受け入れる対象を治療して、移植した細胞の免疫拒絶を低下させることができる。細胞及び／または組織の免疫拒絶の低下方法は、当業者には周知である。このような方法としては、このような方法としては、従来の免疫抑制剤（例えばタクロリムス、シクロスポリンＡなど）の投与（例えばＤｕｎｎ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｄｒｕｇｓ ６１：１９５７を参照）、または、多能性幹誘導細胞の一致する母集団を用いた免疫寛容の誘発（例えばＷＯ０２／４４３４３号；米国特許第６，２８０，７１８号；ＷＯ０３／０５０２５１号を参照）が挙げられるが、これらに限定されない。特定の実施形態において、抗炎症薬（プレドニゾンまたは他のステロイド系抗炎症薬など）と免疫抑制剤の組み合わせを使用してよい。特定の実施形態において、ｉＰＳ－ＧＥＰを、ヒトへの投与のために十分滅菌した条件下にて調製した等張性賦形剤を含む医薬組成物の形態で供給することができる。

医薬品処方の一般原則に関しては、読者はＡｌｌｏｇｅｎｅｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，Ｌａｚａｒｕｓ ａｎｄ Ｌａｕｇｈｌｉｎ Ｅｄｓ．Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ＋ Ｂｕｓｉｎｅｓｓ Ｍｅｄｉａ ＬＬＣ ２０１０；及びＨｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙ，Ｅ．Ｄ．Ｂａｌｌ，Ｊ．Ｌｉｓｔｅｒ ＆ Ｐ．Ｌａｗ，Ｃｈｕｒｃｈｉｌｌ Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅ，２０００を参照する。細胞賦形剤と任意の付随する組成物の構成成分の選択は、投与に使用される経路及びデバイスに従い適合される。組成物は、濃縮した標的細胞のグラフトまたは機能的可動化を容易にする１種以上の他の成分もまた含んでよい、またはこれを伴ってよい。好適な成分としては、標的細胞表現型の付着を支持もしくは促進する、または移植した組織の脈管化を促進するマトリックスタンパク質を挙げてもよい。
人工多能性グリア濃縮前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＧＥＰ）の産生

人工多能性幹細胞（ＩＰＳＣ）の産生方法は当業者に周知である。Ｔａｋａｈａｓｈｉ ａｎｄ Ｙａｍａｎａｋａ（２００６）Ｃｅｌｌ １２６：６６３－６７６による、マウス線維芽細胞をリプログラミングする元の方法では、Ｏｃｔ４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、及びｃ－ｍｙｃを、Ｆｂｘ１５遺伝子座にてβ－ガラクトシダーゼ－ネオマイシン融合タンパク質を発現するマウスに由来するマウス胚線維芽細胞（ＭＥＦ）または尾部－チップ線維芽細胞（ＴＴＦ）にレトロウイルスを用いて形質導入することを用い、これは特異的に多分化能幹細胞内で発現し、多能性に対する優れたマーカーとして機能する。４つの因子を形質導入した後にＧ４１８を用いて薬剤選択をすることで、形質導入後１４～２１日にて、ＭＥＦまたはＴＴＦの０．０２％においてリプログラミングがもたらされた。成人のヒト皮膚線維芽細胞（ＨＤＦ）のリプログラミングは最初、４つのリプログラミング因子の形質導入後約３０日にて、約０．０２％の効率で生じることが報告された（Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｃｅｌｌ．１３１：８６１－８７２）。

様々な実施形態において、レンチウイルス発現系を用いてＯｃｔ４、Ｓｏｘ２、Ｎａｎｏｇ、及びＬｉｎ２８を線維芽細胞に送達することができ（Ｙｕ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｓｃｉｅｎｃｅ，３１８：１９１７－１９２０）、１つのカセットリプログラミングベクターが、例えばＣｒｅ－Ｌｏｘが媒介する導入遺伝子除去を用いて開発されている（例えばＰａｐａｐｅｔｒｏｕ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１０６：１２７５９－１２７６４；Ｃａｒｅｙ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１０６：１５７－１６２；Ｃｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ ２７：１０４２－１０４９；Ｓｏｍｍｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ，２７：５４３－５４９；Ｓｏｌｄｎｅｒ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｃｅｌｌ１３６：９６４－９７７を参照のこと）。他のウイルス系もまた、リプログラミングに使用することができる。このような系としては、アデノウイルス系（例えばＳｔａｄｔｆｅｌｄ ｅｔ ａｌ．（２００８）Ｓｃｉｅｎｃｅ，３２２：９４５－９４９；Ｚｈｏｕ ａｎｄ Ｆｒｅｅｄ（２００９）Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ２７：２６６７－２６７４などを参照）、及びセンダイウイルス系（例えばＦｕｓａｋｉ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｐｒｏｃ．Ｊｐｎ．Ａｃａｄ．Ｓｅｒ．Ｂ Ｐｈｙｓ．Ｂｉｏｌ．Ｓｃｉ．８５：３４８－３６２；Ｓｅｋｉ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ．７：１１－１４；Ｂａｎ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１０８：１４２３４－１４２３９を参照）が挙げられるが、これらに限定されない。リプログラミングは、ｍＲＮＡトランスフェクション（例えば１９を参照）、ｍｉＲＮＡ感染／トランスフェクション（例えばＳｕｂｒａｍａｎｙａｍ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２９：４４３－４４８；Ａｎｏｋｙｅ－Ｄａｎｓｏ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ ８：３７６－３８８を参照）、ＰｉｇｇｙＢａｃ－トランスポーゼースの存在下において染色体ＴＴＡＡ部位に組み込み可能で、その後トランスポーゼースの再発現の際にゲノムフットプリントフリーから除去可能な可動性遺伝因子（トランスポゾン）（例えばＫａｊｉ ｅｔ ａｌ．（２００９） Ｎａｔｕｒｅ ４５８：７７１－７７５；Ｗｏｌｔｊｅｎ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｎａｔｕｒｅ ４５８：７６６－７７０を参照）、ミニサークルベクター（例えばＮａｒｓｉｎｈ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｎａｔｕｒｅ Ｐｒｏｔｏｃ．６：７８－８８を参照）、エピソームプラスミド（Ｏｋｉｔａ ｅｔ ａｌ．（２００８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ３２２：９４９－９５３； Ｙｕ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｓｃｉｅｎｃｅ ３１８：１９１７－１９２０；Ｈｕｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｂｌｏｏｄ １１７：ｅ１０９－ｅ１１９）、ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡベクター（３１、３２）などを用いてもまた達成されている。

ヒトｉＰＳ細胞からグリア濃縮前駆細胞を迅速かつ効率的に誘導する１つの好適な方法が、Ｘｉｅ ｅｔ ａｌ．（２０１４）Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｒｅｐｏｒｔｓ ３：７４３－７５７）により最近記載されている。この技術では、細胞培養培地での酸素張力の変化、またはその下流での酸素シグナル伝達分子－低酸素誘導因子（Ｈｉｆ）系を利用する。Ｈｉｆの誘導因子であるデフェロキサミンを用いた治療では、ｉＰＳ－ＮＰＣの分化能を星状細胞運命（Ｉｄ．）を超えて長く制限することがもたらされる。この手法は、ＷＭＳ用の治療法として、移植用のグリア濃縮前駆細胞の効率的な誘導を生み出すように機能することができるプロトコールを確立する。

好適なｉＰＳ－ＧＥＰの産生について、材料及び方法を以下に記載する。これらの方法は例示を意図するものであり、非限定的である。本明細書において提供する教示を用いながら、好適なＩＳＰ－ＧＥＰを産生する他の方法が当業者には利用可能である。

医薬組成物
特定の実施形態において、人工多能性グリア濃縮前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＧＥＰ）を、治療それ自体を必要とする対象に投与してよい。あるいは細胞を、好適な担体と混合した医薬組成物中で、及び／またはデポーデリバリーシステムを使用して、治療を必要とする対象に投与してよい。

本発明で使用する場合、用語「医薬組成物」とは、他の構成成分、例えば生理学的に好適な担体及び賦形剤と組み合わされた１つの治療薬または複数の治療薬を含む配合物を意味する。

本明細書で使用する時、用語「治療薬」とは、対象における生物学的効果を果たす、本明細書に記載する細胞（例えば人工多能性グリア濃縮前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＧＥＰ）またはＩＰＣ－ＮＰＣ）を意味する。実施形態によっては、「治療薬」とは、本明細書に記載するＩＰＳＣ－ＧＥＰ及び／またはＩＰＣ－ＮＰＣを意味する場合がある。更に、または代替的に、「治療薬」とは、神経修復を補助する、ＩＰＳＣ－ＧＥＰにより分泌される１つ以上の因子を意味し得る。

本明細書で使用する場合、用語「治療上有効量」とは、所望の結果を生み出すのに十分な用量、投薬レジメン、または量を意味する。

本明細書で使用する場合、用語「担体」「生理学上許容できる担体」及び「生物学上許容できる担体」は同じ意味で用いることができ、対象において著しい悪影響または刺激を引き起こさず、治療薬の生物活性または効果を実質的に妨げない希釈剤または担体物質を意味する。用語「賦形剤」とは、治療薬の投与を更に促進するために医薬組成物に添加される物質を意味する。

特定の実施形態において、本明細書で想到する組成物（例えばＩＰＳＣ－ＧＥＰを含有する製剤）を、注射、例えばボーラス注射または連続点滴による非経口的投与のために製剤化することができる。特定の実施形態において、組成物を、約１５分～約２４時間の期間にわたって皮下連続点滴により投与することができる。特定の実施形態において、注射用製剤は単位剤形、例えばアンプルまたは複数回投与用容器中に存在することができ、所望により追加の防腐剤を含む。組成物は油性ビヒクルまたは水性ビヒクル内で懸濁液、溶液、またはエマルションの形態をとることができ、懸濁化剤、安定化剤、及び／または分散剤などの配合剤を含有することができる。

特定の実施形態において、本明細書に記載する前駆細胞（例えば、ＩＰＳＣ－ＧＥＰ）を、緩衝液中に懸濁させて投与（例えば注射、灌流）することができる。好適な緩衝液が当業者に周知である。１つの例示的で非限定的な緩衝液はＩＳＯＬＹＴＥ（登録商標）Ｓ＋２５％ヒト血清アルブミン（ＨＡＳ）である。ＩＳＯＬＹＴＥ（登録商標）Ｓ（多電解質注射溶液）は、１００ｍＬの中に塩化ナトリウムＵＳＰ ０．５３ｇ；グルコン酸ナトリウムＵＳＰ ０．５ｇ、酢酸ナトリウム三水和物ＵＳＰ ０．３７ｇ；塩化カリウムＵＳＰ ０．０３７ｇ、塩化マグネシウム６水和物ＵＳＰ ０．０３ｇ、注射水ＵＳＰ 適量を含有し、約２９５ｍＯｓｍｏｌ／リットルの計算浸透圧モル濃度を有する氷酢酸ＵＳＰ ｐＨ：６．７（６．３～７．３）で、ｐＨを調整する。この緩衝液は例示的であり、非限定的である。多数の他の好適な注射緩衝液が当業者に周知である。

特定の実施形態において、本明細書に記載する前駆細胞（例えばｉＰＳＣ－ＧＥＰ）を、埋込型持続性デリバリーシステム内に提供することができる。埋込型持続性デリバリーシステムは当業者に周知である。このようなシステムとしては、機械デバイス及び／または電子デバイス、例えば埋込型ドラッグポンプまたはマイクロチップシステム、及び埋込型徐放性ポリマーマトリックスが挙げられるが、これらに限定されない。

埋込型マイクロチップシステムとしては、ＭＩＣＲＯＣＨＩＰＳ（登録商標）デバイス（ＭｉｃｒｏＣｈｉｐｓ，Ｉｎｃ．Ｂｅｄｆｏｒｄ ＭＡ）などが挙げられる。ＭｉｃｒｏＣＨＩＰＳの埋込型ドラッグデリバリーシステム（ＩＤＤＳ）は、複数の薬剤が充填された貯蔵容器を含有する微細加工シリコンチップをベースにしている。チップは、電池、制御回路、及び遠隔測定器を含有するチタンケースに取り付けられる。薬剤チップ及びチタンケースは気密密閉され、金属相互接続を用いてセラミック基板により電気的に接続されている。ＩＤＤＳは、ワイヤレス伝達により外部のハンドヘルドコントローラーと通信する。薬剤レジメンを、この接続を通して埋め込まれたデバイスに伝達することが可能であり、貯蔵容器が、更なる通信を何も必要とせずに所定の時間に開口させることが可能となる。あるいは、貯蔵容器は所望により、コントローラーから操作することにより開口することができる。

徐放性ポリマーデバイスを、埋め込み後長時間にわたる放出のために製造することができる。例示的な制御ポリマー放出デバイスは、埋込型ロッド、シリンダー、フィルム、ディスクなど、または注射可能なポリマー製剤（例えば微小粒子製剤）を含む。様々な実施形態において、埋込型マトリックスは微粒子などの微小粒子の形態であることができ、ここでは、ＩＰＳＣ－ＧＥＰは固体ポリマーマトリックスまたはマイクロカプセル内に分散されている。典型的には、このような系において、核はポリマーシェルとは異なる材料であり、活性剤（例えばＩＰＳＣ－ＧＥＰ）は核内に分散または懸濁されており、活性剤は本来液体または固体であることができる。あるいは、ポリマーは薄型スラブまたは薄膜として、あるいはヒドロゲルなどのゲルとしてキャストされてよい。

特定の実施形態において、非生分解性または生分解性マトリックスのいずれかを、本明細書に記載した前駆細胞の送達のために使用することができるが、特定の実施形態において、生分解性マトリックスが通常好まれる。これらは天然ポリマーまたは合成ポリマーを含むことができる。多くの場合、合成ポリマーがより良い分解特性及び放出プロファイルをもたらす。ポリマーは通常、放出が所望される期間に基づいて選択される。場合によっては、線形放出が最も有用であり得るが、別の場合には、パルス放出、即ち「バルク放出」がより効果的な結果をもたらし得る。以下で論じるように、特定の実施形態において、ポリマーはヒドロゲルの形態であり、所望により多価イオンまたはポリマーと架橋することができる。

様々な実施形態において、マトリックスは、溶媒蒸発、スプレードライ、溶媒抽出、及び当業者に周知の他の方法により形成することができる。生体内分解性微粒子は、例えばＭａｔｈｉｏｗｉｔｚ ａｎｄ Ｌａｎｇｅｒ（１９８７）Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ ５：１３－２２；Ｍａｔｈｉｏｗｉｔｚ，ｅｔ ａｌ．（１９８７）Ｒｅａｃｔｉｖｅ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ ６：２７５－２８３，Ｍａｔｈｉｏｗｉｔｚ，ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｊ．Ａｐｐｌ．Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｓｃｉ．３５：７５５－７７４などに記載されている、ドラッグデリバリー用微粒子を作製するために開発された方法のいずれかを使用して調製することができる。

様々な実施形態において、局所放出して埋込領域（例えば梗塞空洞）を治療するためのデバイスを考案することができる。様々な実施形態において、これらを所望の領域に埋め込む、または注射することができる。

特定の実施形態において、埋込型デポーデリバリーシステムは、ヒドロゲル内にパターニングされた微小粒子を含む。例示的な一実施形態において、前駆細胞は、ヒドロゲル（例えばＰＥＧヒドロゲル）基剤内に閉じ込められた微小粒子（例えばＰＬＧＡ微小粒子）内に提供される、または微小粒子と混合される。このようなシステムは、２つの異なる送達プロファイルを有する作用物質を送達するために構築されている（例えば、Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｒｅｓ．，２８（６）：１４０６－１４１４を参照のこと）。

特定の実施形態において、本明細書に記載する前駆細胞を、２０１４年５月１２日に出願された米国特許出願第１４／２７５，７９５号、及び米国特許第８，３２４，１８４号及び同第７，９２８，０６９号に記載されているものなどのヒドロゲルの構成成分として、投与することができる。ポリ（ヒドロキシエチルメタクリレート）（ＰＨＥＭＡ）、ポリ－（エチレングリコール）（ＰＥＧ）及びポリ（ビニルアルコール）（ＰＶＡ）などの合成ポリマーを含む、及び／またはコラーゲン、ヒアルロン酸（ＨＡ）、フィブリン、アルギネート、アガロース及びキトサンなどの天然源の材料を含むヒドロゲルが、当技術分野において周知である（例えばＰｅｐｐａｓ ｅｔ ａｌ．（２００６）Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ １８：１３４５；Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｃｈｅｍ．Ｒｅｖ．１０１：１８６９を参照のこと）。様々な化学修飾により形成された、共有架橋ヒドロゲルもまた、以前に記述されている（例えばＶｅｒｃｒｕｙｓｓｅ ｅｔ ａｌ．（１９９７）Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．８：６８６；Ｐｒｅｓｔｗｉｃｈ ｅｔ ａｌ．（１９９８）Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ ５３：９３；Ｂｕｒｄｉｃｋ ｅｔ ａｌ．（２００５）Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ６：３８６；Ｇａｍｉｎｉ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ２３：１１６１；米国特許第７，９２８，０６９号；同第７，９８１，８７１号を参照のこと）。

ヒアルロン酸（ＨＡ）のチオール変性誘導体、及びポリエチレングリコールジアクリレート（ＰＥＧＤＡ）と架橋したゼラチン（商標名ＨＹＳＴＥＭ（登録商標））をベースにするヒドロゲルは独自の化学的、生物学的及び物理的属性を有し、細胞培養、ドラッグデリバリーなどを含む多くの用途にそのヒドロゲルを好適なものにしている（例えばＳｈｕ ｅｔ ａｌ．（２００４）Ｊ ｏｆ Ｂｉｏｍｅｄ Ｍａｔ Ｒｅｓ Ｐａｒｔ Ａ ６８：３６５；Ｓｈｕ ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ３：１３０４；Ｖａｎｄｅｒｈｏｏｆｔ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｓｃｉ ９：２０を参照のこと）。ＨＹＳＴＥＭ（登録商標）を含む架橋ＨＡヒドロゲルは、角膜上皮創傷治癒の動物モデルで成功して使用されている（例えばＹａｎｇ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ Ｏｐｔｈａｌ １３：１４４，ｃｏｒｎｅａｌ ｔｉｓｓｕｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ（Ｅｓｐａｎｄａｒ ｅｔ ａｌ．（２０１２）Ａｒｃｈｉｖｅｓ ｏｆ Ｏｐｔｈａｍｏｌ １３０：２０２，及びｒｅｔｉｎａｌ ｒｅｐａｉｒ Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｔｉｓｓｕｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ Ｐａｒｔ Ａ １９：１３５を参照のこと）。

ヒドロゲルを前臨床に使用して生物活性を維持し、生物学的製剤の放出を遅らせることが説明されている（Ｃａｉ ｅｔ ａｌ．（２００５）Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ２６：６０５４；Ｚｈａｎｇ（２０１１）Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ３２：９４１５；Ｏｖｅｒｍａｎ ｅｔ ａｌ．（２０１２）Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ １０９：Ｅ２２３０；Ｇａｒｂｅｒｎ ｅｔ ａｌ．（２０１１）Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ３２：２４０７；Ｋｏｕｔｓｏｐｏｕｌｏｓ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ １０６：４６２３）。更に、これらを細胞送達で使用すると、埋め込み後の細胞生存能及び局在化を改善することが示されている（Ｌａｆｌａｍｍｅ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２５：１０１５；Ｚｈｏｎｇ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｎｅｕｒｏｒｅｈａｂｉｌｉｔａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｎｅｕｒａｌ Ｒｅｐａｉｒ ２４：６３６；Ｃｏｍｐｔｅ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ ２７：７５３）。ＦＤＡが認可した眼の小分子治療薬において、眼球表面における滞留時間を増加させるために、いくつかの異なるヒドロゲルを賦形剤として使用している（例えばＫｏｍｐｅｌｌａ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ １：４３５を参照のこと）。

更に、治療用細胞の送達について将来性を示す、２種類の新規のヒドロゲル製剤が報告されている（Ｂａｌｌｉｏｓ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ３１：２５５５；Ｃａｉｃｃｏ ｅｔ ａｌ．（２０１２）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｐａｒｔ Ａ １０１：１４７２；Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ １３：１４４；Ｍａｚｕｍｄｅｒ ｅｔ ａｌ．（２０１２）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｐａｒｔ Ａ １００：１８７７を参照）。

これらの製剤及びプロトコールは例示的であり非限定であることを目的としている。本明細書において提供する教示を使用して、他の好適なヒドロゲル製剤が当業者に利用可能である。

例示的方法及び材料
動物対象
用いた全ての手順はＵＣＬＡ Ｃｈａｎｃｅｌｌｏｒの動物調査委員会により認可され、国立研究所の、実験動物のケア及び使用のための健康ガイドに従って実施した。ＮＳＧマウス（Ｓｈｕｌｔｚ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．７（２０）：１１８；ｊａｘｍｉｃｅ．ｊａｘ．ｏｒｇ／ｎｏｄ－ｓｃｉｄ－ｇａｍｍａ）はＪａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｂａｒ Ｈａｒｂｏｒ，ＭＥ）から入手した。全ての動物対象は、１２時間の明暗サイクルの標準条件で飼育し、食料及び水を制約なく提供した。

Ｌ－Ｎｉｏを使用した、巣状虚血性損傷の誘発
中等度から高度ヒト白質虚血または血管性認知症で見られる大型の白質損傷を模した、以前に確立した皮質下白質脳卒中のマウスモデル（Ｓｏｚｍｅｎ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ Ｍｅｔｈ．１８０（２）：２６１；Ｈｉｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｓｔｒｏｋｅ ４４（１）：１８２）を使用した。手短かに言えば、巣状虚血性損傷を誘発するために、図２に示すように、各マウス脳の脳梁内に直接、Ｎ５－（１－イミノエチル）－Ｌ－オルニチン、ジヒドロクロリド（Ｌ－Ｎｉｏ、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）を３つの定位座標にて注射した。

ｉＰＳ－ＧＥＰの産生
ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、Ｃ－ＭＹＣ、ＮＡＮＯＧ、ＫＬＦ４、及びＧＦＰ用のｃＤＮＡをレトロウイルス型ｐＭＸベクターにクローニングし、Ｆｕｇｅｎｅ（Ｒｏｃｈｅ）を使用して、Ｐｈｏｅｎｉｘ Ａｍｐｈｏ Ｃｅｌｌｓ（Ｏｒｂｉｇｅｎ）に個別にトランスフェクションした。３日後にウイルス上清を回収して組み合わせ、使用して１０％ＦＢＳ、不可欠アミノ酸、Ｌ－グルタミン及びペニシリン－ストレプトマイシンを含むＤＭＥＭ中のヒト新生児の皮膚線維芽細胞（ＮＨＤＦ１；Ｌｏｎｚａ）に感染させた。３日目に第２ラウンドの感染を実施し、ウイルス混合物中のＧＦＰの感染から推定した、各ウイルスのトランスフェクション効率は１５～２０％であった。このことは、ほぼ１００％の細胞が少なくとも１つのウイルスを受け取ったことを示唆している。

４日後、照射したマウス胚線維芽細胞（ＭＥＦ）上に細胞を継代させた。ＵＣＬＡ胚幹細胞研究管理委員会に従い、ヒト人工ＰＳＣ（ｈｉＰＳＣ）を以前に説明されたとおりに培養した（Ｐａｔｔｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，２０１２）。フィーダー非含有ＰＳＣをｍＴｅＳＲＩ（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて保持し、ＳｔｅｍＰｒｏ ＥＺＰａｓｓａｇｅ Ｔｏｏｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用して機械的に継代させた。神経ロゼット誘導、ＮＰＣ精製、ならびにニューロン及びグリアへの更なる分化を記載のとおりに実施した（Ｐａｔｔｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，２０１２）。手短かに言えば、Ｎ２及びＢ２７サプリメント（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、２０ｎｇ／ｍＬの塩基性線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、１μＭのレチノイン酸（ＲＡ）（Ｓｉｇｍａ）、及び１ｐＭのソニックヘッジホッグアゴニスト（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）を含む、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）／Ｆ１２中で少なくとも７日間ＰＳＣを増殖させることによりロゼットを産生した。ロゼットを取り、ＤＭＥＭ／Ｆ１２、Ｎ２及びＢ２７、２０ｎｇ／ｍＬの塩基性ＦＧＦ、ならびに５００ｎｇ／ｍＬの上皮増殖因子（ＥＧＦ）（ＧＩＢＣＯ）を含有するＮＰＣ培地内で培養した。ＤＦＸ（Ｓｉｇｍａ）（１００～２００μＭ）をＮＰＣ段階で４～６日間加え、各細胞株に関してそれぞれ、濃度を調整した。ＮＰＣを１００μＭのＤＦＸで、またはこれなしで３～５日間処理し、注射用にトリプシン化するまで、標準状態に戻した。

ＮＳＧマウスでのｉＰＳ－ＧＥＰ移植
脳卒中の７日後に細胞を定位的に移植した。直腸プローブ及び加熱パッドを使用して、マウスの温度を監視して３６．５～３７．５℃に維持した。定位アームに固定したＨａｍｉｌｔｏｎシリンジをｉＰＳ－ＧＥＰで満たし、圧力ポンプに接続した。第２の切り込みをＡＰ＋０．１４、ＭＬ＋３、ＤＶ－１．３２に作製した。３６°の角度で、ｉＰｓ－ＧＥＰの２つの０．４５ｐｉ注射を行った（１００，０００ｃｅｌｌ／μＬ）。最初の注射後に２分間、針をその場に残し、２回目の注射後は４分間残した。

免疫蛍光法用の脳組織プロセシング、及びＭＲＩ
免疫蛍光法
手術後生残期間（１５日及び２ヶ月）の後、各マウスに過剰用量のイソフルランを与え、０．１Ｍのリン酸緩衝生理食塩水、続いて４％パラホルムアルデヒドを経心的に灌流させた。脳を取り出し、４％パラホルムアルデヒドで一晩後固定し、３０％スクロース中で２日間凍結保護した。続いて脳を取り出し、凍結させた。クリオスタット（Ｌｅｉｃａ ＣＭ ０５３０）を使用して、脳組織を４０ｐｍの断片を２００ｐｍ間隔で断片化した。

１時間室温で５％の通常のロバ血清でブロッキングし、４℃で一晩一次抗体でインキュベーションし、１時間室温で二次抗体でインキュベーションし、切片をサブベッドスライドに固定して自然乾燥することにより、マイクログリア／マクロファージマーカーＩＢＡ－１、ニューロン細胞マーカーＮＦ２００、星状細胞マーカーＧＦＡＰ、パンオリゴデンドロサイトマーカーＯｌｉｇ２、成熟オリゴデンドロサイトマーカーＭＢＰ、及び未成熟ニューロン細胞マーカーＤＣｘに対して免疫染色を行った。アルコール及びキシレンの濃度が上昇する中で、固定した切片を無水化し、ＤＰＸによりカバーガラスをかけた。

一次抗体は、ウサギ抗－ｌｂａ－１（１：５００，Ｗａｋｏ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、ウサギ抗－ＮＦ２００（１：５００，Ｓｉｇｍａ）、ラット抗ミエリン塩基性タンパク質（ＭＢＰ，Ｔ．５００，Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）、ウサギ抗Ｏｌｉｇ２（１：５００，Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）、ラット抗ＧＦＡＰ（１：５００，Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）、ヤギ抗ダブルコルチン（１：５００，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）であった。全ての二次抗体は、Ｃｙ２（シアン）またはＣｙ３（黄）（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ）染料にコンジュゲートしたロバＦ（ａｂ’）２断片であり、１：１０００に希釈して使用した。

共焦点画像
Ｚスタックの高解像度共焦点画像を得た（Ｎｉｋｏｎ Ｃ２共焦点システム）。梗塞核、ＩＢＡ－１、ＧＦＡＰ、ＤＣＸ、Ｏｌｉｇ２及びＧＦＰ陽性細胞の面積測定を、光学分別プローブ及び神経解剖定量化ソフトウェア（Ｓｔｅｒｅｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｏｒ，ＭＢＦ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を使用して、立体解析学的に定量化した。ＮＦ２００及びＭＢＰで染色した白質軸索の突起を強度プロファイル（ＩｍａｇｅＪ，ＮＩＨ）で定量化した。

ＭＲＩ
マウスに麻酔をかけ、Ｂｒｕｋｅｒ ７Ｔ小動物用ＭＲＩ（Ｂｒｕｋｅｒ Ｂｉｏｓｐｉｎ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）に配置した。ＭＲＩ画像診断を脳卒中後０日目、７日目、及び６ヶ月目に実施した。手順全体を通して呼吸速度を監視し、体温を３７±０．５℃に維持した。Ｔ２強調画像のセットを入手した：ｒａｐｉｄ ａｃｑｕｉｓｉｔｉｏｎ ｒｅｌａｘａｔｉｏｎ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｆａｃｔｏｒ８、反復時間５３００ｍｓ、１３回の連続スライスによる、０．０１５６＿０．０１５６＿０．５０ｍｍの面内解像度を有するエコー時間１５．００ｍｓ。

以下のパラメーター：ＴＲ／ＴＥ：５０００／３５ｍｓ；シグナル平均１０、ｂ＝１０００ｓ／ｍｍ２及びｂ＝０ｓ／ｍｍ２の拡散加重を用いる、３０の非同一直線上拡散勾配スキーム、及び視界３．５×３．５ｃｍを使用した、スピンエコーシングルショットエコープラナイメージング（ＥＰＩ）パルス配列を用いて、処理の後０日目、７日目、及び６ヶ月目にて、トラクトグラフィー、拡散テンソルデータ（ＤＴＩ）を得た。９６×９６のマトリックス上でのシングルショットＥＰＩ配列、及びゼロフィリングしたｋ空間で３０方向を使用してデータを得、１２８×１２８の画像マトリックスを構築した。画像は、複数プラットフォームの医学イメージ処理及び可視化ソフトウェアのｍｅｄＩｎｒｉａを用いて得られた。群あたりｎ＝６の動物を使用して、損傷領域内でＤＴＩトラクトグラフィーデータを実施した。ＰａｒａＶｉｅｗ ４．１．０ソフトウェアを使用して、ＤＴＩトラクトグラフィー画像の、拡大した損傷部位の３Ｄの眺めを示す。

以下の実施例を例示のために提供するが、特許請求された発明を限定するものではない。

実施例１
ｉＰＳ－ＧＥＰの誘導及び特性決定
ｉＰＳ－ＧＥＰをＸｉｅ ｅｔ ａｌ．（２０１４）Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｒｅｐｏｒｔｓ ３：７４３－７５７にて包括的に特性決定した。ｉＰＳ－ＧＥＰはヒトＮＰＣの典型的なマーカー全て、即ちＳＯＸ２、ＰＡＸ６、ＳＯＸ１、ＮＥＳＴＩＮなどを引き続き発現することを示したが、神経発達の異なるパターンのマーカー（Ｄｌｘ、Ｆｏｘ、Ｎｇｎファミリーの転写因子）もまた示した。

増殖因子を取り出して、継続した最終分化を行わせた際に、ＧＦＡＰ及びＳ１００Ｂ染色により測定すると、ｉＰＳ－ＧＥＰは星状細胞リネージの細胞を産生する劇的に高い能力を示した。ｉＰＳ－ＧＥＰはＤＦＸ処理の３～５日以内に標準ＮＰＣのみから分化するという事実にもかかわらず、ｉＰＳ－ＧＥＰは移植後ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏの両方において、分化については恒久的に一層星状細胞的である。ＤＦＸ処理したｉＰＳ－ＧＥＰの遺伝子発現パターンはｉＰＳ－ＮＰＣとは著しく異なり、神経修復において役割を果たし得るいくつかの増殖因子の分化発現を含む（図１）。

実施例２調査１－白質脳卒中のＮＳＧマウスモデルにおけるｉＰＳ－ＧＥＰ移植
ｉＰＳ－ＧＥＰ異種移植片移植の完全な調査を可能にするために、中等度から高度のヒト白質虚血または血管性認知症において見られる大型の白質損傷を模した、以前に確立した皮質下白質脳卒中のマウスモデル（Ｓｏｚｍｅｎ ｅｔ ａｌ．（２００９）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ Ｍｅｔｈ．１８０（２）：２６１；Ｈｉｎｍａｎ ｅｔ ａｌ．（２０１３）Ｓｔｒｏｋｅ ４４（１）：１８２）を免疫不全ＮＳＧマウスに適合させた（Ｓｈｕｌｔｚ ｅｔ ａｌ．（２００７）Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．７（２０）：１１８；ｊａｘｍｉｃｅ．ｊａｘ．ｏｒｇ／ｎｏｄ－ｓｃｉｄ－ｇａｍｍａ）。手短かに言えば、巣状虚血性損傷を誘発するために、図２に示すように、各マウス脳の脳梁内に直接、Ｎ５－（１－イミノエチル）－Ｌ－オルニチン、ジヒドロクロリド（Ｌ－Ｎｉｏ、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）を３つの定位座標にて注射した。実験のタイムラインを図１に示す。調査の目的及びパラメーターを表２に詳述する。脳組織を、脳卒中誘発の１５日後（即ち、ｉＰＳＣ－ＧＥＰまたは偽注射の２週間後）に処理し、蛍光免疫染色を実施して有髄化、軸索喪失、星状細胞の活性化、マイクログリア／マクロファージ応答、及びオリゴデンドロサイト応答の程度を測定した。例示的な結果を図１～１４に示す。

実施例３調査２－行動回復に関するｉＰＳ－ＧＥＰの有効性調査
実施例２に記載したＷＭＳのＮＳＧマウスモデルを使用して、ＭＲＩ及びｅｘ ｖｉｖｏ組織化学染色に基づき、行動回復におけるｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植の効果、及びｉＰＳＣ－ＧＥＰ移植が白質保存を改善するか否かを評価する。実験のタイムラインを図１に示す。行動試験（シリンダー試験及びグリッド歩行）を以下に詳述する。例示的な結果を図に記載する。

行動：
歩行における、障害を持つ前肢及び後肢機能の近位及び遠位運動制御を測定する。これらは、マウスの自然な動きを試験する。

試験時間点：脳卒中前（ベースライン）、脳卒中の７日後（細胞移植前）、２ヶ月及び４ヶ月。

ＭＲＩ：脳卒中前、脳卒中の１ヶ月後。

組織学：行動試験の完了時に、梗塞サイズ、内因性の脳回復及び炎症、ならびに移植した細胞の生残／表現型を組織学的に評価するために脳を処理する。

シリンダー試験。マウスの探索行動は、空間及び運動行動の神経基盤を調査する可能性をもたらし、脳機能のアッセイとして使用することができる。シリンダー試験は、齧歯類の自然な前肢の使用の評価方法を提供し、脳卒中の多数の運動系損傷モデルで使用されてきた。前肢の欠陥を評価するために、動物を透明なプレキシグラスシリンダーに配置して観察する。後肢を上げ、前肢と感覚毛で表面を探索することにより、マウスは垂直面を積極的に探索する。シリンダー内での行動を評価する際に、右前肢、左前肢、及び両方の前肢において観察されたそれぞれの壁への配置数について同時に記録する。片側に脳損傷を有する動物は、垂直探索時の前肢使用に非対称性を示す。

シリンダータスクは、客観的であり、使用及びスコアリングが簡単であり、他では検出できない慢性的な欠陥に対して感度が高く、高い評価者間信頼性を有することが発見されている。

グリッド歩行試験。多くの場合フットフォールトタスクとも呼ばれるグリッド歩行試験は、齧歯類の運動中における四肢機能（最も一般的には後肢、しかし前肢も同様に評価されている）の運動機能障害、及び配置欠陥を評価するための、比較的単純な方法である。このタスクは、客観的に脳卒中後の運動協調欠陥及びリハビリテーション効果を示すことが発見されている。動物を、開口部を備える、高くて水平なグリッド上に配置する。脳損傷を有しない動物は通常、足をワイヤーフレームに正確に配置して自身を支えながら、グリッドに沿って移動する。開いたグリッド（「フットフォールト」）を通って足が滑ったときを毎回記録する。各肢に関して、対側及び同側のフォールトの両方の回数を、記録した歩みの総数と比較し、フットフォールト指数を使用してスコアリングする。無傷の動物は通常、数回～０回のフットフォールトを示し、フォールトが生じる場合、対称的にフォールトする。虚血性の動物は通常、無傷の動物よりも対側のフットフォールトを著しく多く記録する。フットフォールト試験は、齧歯類の虚血後における、感覚運動機能の障害を検出するための感度の高いインジケーターであることが示されている。

本明細書に記載される実施例及び実施形態は、単に例証の目的のためであり、それらの観点から、種々の改変または変更が当業者には提案され、本出願の精神及び範囲ならびに添付の特許請求の範囲内に含まれるべきであると理解されている。本明細書で引用された全ての出版物、特許、及び特許出願は、あらゆる目的のためにそれら全体が、参照として本明細書に組み込まれる。

Claims (17)

1. デフェロキサミンを用いた処理により人工多能性幹細胞由来のニューロン前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＮＰＣ）から産生された、主に星状細胞に分化する細胞であるヒト人工多能性グリア前駆細胞を含む、大脳虚血損傷後の哺乳類の治療における使用のための医薬組成物であって、前記大脳虚血損傷は皮質下白質脳卒中を含む、医薬組成物。
2. 前記使用は、前記細胞を梗塞核に投与することを含む、請求項１に記載の医薬組成物。
3. 前記使用は、前記細胞を皮質下白質内に投与することを含む、請求項１に記載の医薬組成物。
4. 前記使用は、前記前駆細胞を前記虚血損傷後の亜急性期間内に投与することを含む、請求項１～３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
5. 前記使用は注射またはカニューレによる投与を含む、請求項１～４のいずれか一項に記載の医薬組成物。
6. 前記前駆細胞はデポーデリバリーシステムにおいて提供される、請求項１～５のいずれか一項に記載の医薬組成物。
7. 前記デポーデリバリーシステムはヒドロゲルを含む、請求項６に記載の医薬組成物。
8. 前記大脳虚血損傷は、脳卒中によるもの、頭部損傷によるもの、呼吸不全によるもの、または、心停止によるものである、請求項１～７のいずれか一項に記載の医薬組成物。
9. 前記哺乳類はヒトである、請求項１～８のいずれか一項に記載の医薬組成物。
10. 大脳虚血損傷後の哺乳類の治療のための医薬の製造における、デフェロキサミン処理により人工多能性幹細胞由来のニューロン前駆細胞（ｉＰＳＣ－ＮＰＣ）から産生された、主に星状細胞に分化する細胞であるヒト人工多能性グリア前駆細胞の使用であって、前記大脳虚血損傷は皮質下白質脳卒中を含む、使用。
11. 前記治療は、前記細胞の梗塞核への投与を含む、請求項１０に記載の使用。
12. 前記治療は、前記細胞を皮質下白質内への投与を含む、請求項１０に記載の使用。
13. 前記医薬は、注射またはカニューレによる投与のために処方される、請求項１０～１２のいずれか一項に記載の使用。
14. 前記医薬は、デポーデリバリーシステムを備える、請求項１０～１３のいずれか一項に記載の使用。
15. 前記デポーデリバリーシステムはヒドロゲルを含む、請求項１４に記載の使用。
16. 前記大脳虚血損傷は、脳卒中によるもの、頭部損傷によるもの、呼吸不全によるもの、または、心停止によるものである、請求項１０～１５のいずれか一項に記載の使用。
17. 前記哺乳類はヒトである、請求項１０～１６のいずれか一項に記載の使用。

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