JP2023539943A - 多価ワクチン組成物及びその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
(i)大腸菌(E.coli)O1抗原多糖は、表1に示される式(O1A)の構造を含み、
(ii)大腸菌(E.coli)O2抗原多糖は、表1に示される式(O2)の構造を含み、
(iii)大腸菌(E.coli)O4抗原多糖は、表1に示される式(O4-Glc+)の構造を含み、
(iv)大腸菌(E.coli)O6抗原多糖は、表1に示される式(O6A)の構造を含み、
(v)大腸菌(E.coli)O15抗原多糖は、表1に示される式(O15)の構造を含み、
(vi)大腸菌(E.coli)O16抗原多糖は、表1に示される式(O16)の構造を含み、
(vii)大腸菌(E.coli)O18抗原多糖は、表1に示される式(O18A)の構造を含み、
(viii)大腸菌(E.coli)O25抗原多糖は、表1に示される式(O25B)の構造を含み、及び
(ix)大腸菌(E.coli)O75抗原多糖は、表1に示される式(O75)の構造を含み、
各nは、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である。
驚くべきことに、キャリアタンパク質にコンジュゲートされる大腸菌(E.coli)O75抗原は、多価ワクチン組成物において同じ多糖濃度でキャリアタンパク質にコンジュゲートされる他の大腸菌(E.coli)O抗原(例えば、O1A、O2、O4、O6A、O15、O16及びO18A)より少ない免疫原性になるように見えることが本発明において発見されている。この発見は、大腸菌(E.coli)O75抗原の投与量及び多価ワクチン内の様々な大腸菌(E.coli)O抗原の投与量比へのさらなる調査につながり、したがって、O75血清型及びExPECの他の血清型に対する向上した免疫応答のための大腸菌(E.coli)O抗原に基づく多価ワクチンの開発及び免疫化方法につながった。
本発明の実施形態によれば、各大腸菌(E.coli)O抗原は、キャリアタンパク質に、好ましくはグリコシド結合によって共有結合的に結合される。本開示の観点から、当業者に知られている任意のキャリアタンパク質を使用することができる。好適なキャリアタンパク質としては、緑膿菌(P.aeruginosa)の無毒化外毒素A(EPA)、CRM197、大腸菌(E.coli)フラジェリン(FliC)、マルトース結合タンパク質(MBP)、ジフテリアトキソイド、破傷風トキソイド、黄色ブドウ球菌(S.aureus)の無毒化溶血素A、クランピング因子A、クランピング因子B、大腸菌(E.coli)易熱性毒素、大腸菌(E.coli)易熱性毒素の無毒化バリアント、コレラトキシンBサブユニット(CTB)、コレラトキシン、コレラトキシンの無毒化バリアント、大腸菌(E.coli)Satタンパク質、大腸菌(E.coli)Satタンパク質のパッセンジャードメイン、肺炎球菌(Streptococcus pneumoniae)ニューモリシン、スカシ貝ヘモシアニン(KLH)、緑膿菌(P.aeruginosa)PcrV、髄膜炎菌(Neisseria meningitidis)の外膜タンパク質(OMPC)、及び分類不能型ヘモフィルス・インフルエンザ(Haemophilus influenza)からのタンパク質Dが挙げられるが、これらに限定されない。必要となるコンセンサスグリコシル化配列を含有する様々な異なるキャリアタンパク質とのバイオコンジュゲーションが記載されており、広範なタンパク質がこの技術を使用してグリコシル化され得ることを示している(例えば、バイオコンジュゲーションにおいて首尾よく使用された多種多様のキャリアタンパク質をともに示す国際公開第06/119987号パンフレット、国際公開第2015/124769号パンフレット、国際公開第2015/158403号パンフレット、国際公開第2015/82571号パンフレット、国際公開第2017/216286号パンフレット、及び国際公開第2017/67964号パンフレットを参照のこと)。
用語「バイオコンジュゲート」は、宿主細胞バックグラウンド、好ましくは、細菌宿主細胞、例えば、大腸菌(E.coli)宿主細胞(宿主細胞機構は、抗原をタンパク質に連結する(例えば、N結合))において調製されるタンパク質(例えば、キャリアタンパク質)と糖又は糖類抗原(例えば、オリゴ糖及び多糖)の間のコンジュゲートを指す。好ましくは、用語「バイオコンジュゲート」は、宿主細胞バックグラウンド(宿主細胞機構は、抗原をタンパク質に連結する(例えば、N結合))において調製されるタンパク質(例えば、キャリアタンパク質)とO抗原、好ましくは、大腸菌(E.coli)O抗原(例えば、O1A、O2、O4、O6A、O8、O15、O16、O18A、O25B、O75など)の間のコンジュゲートを指す。バイオコンジュゲートは、宿主細胞機構によって宿主細胞において調製されるため、抗原及びタンパク質は、グリコシド結合又はバイオコンジュゲートにおける結合を介して共有結合的に連結される。バイオコンジュゲートは、O抗原を合成し及び/又はO抗原を標的タンパク質に連結するのに必要な細胞機構を発現するために操作された組換え宿主細胞において調製され得る。本明細書に記載されるとおりのバイオコンジュゲートは、化学的に調製されるグリココンジュゲートを超える有利な特性を有し、グリカンは、バクテリア細胞壁から精製され、続いてキャリアタンパク質に化学的にカップリングされ、例えば、バイオコンジュゲートは、製造においてより少ない化学物質を必要とし、作製される最終生成物に関してより均一であり、より少ない遊離グリカンを含有するか又は遊離グリカンを含有しない(すなわち、キャリアタンパク質に結合されない)。リピドAのないO抗原の精製及びその後のキャリアタンパク質への化学的コンジュゲーションは、冗長で面倒なプロセスである。さらに、精製、リピドA無毒化及び化学的コンジュゲーションプロセスは、エピトープの消失、抗原不均一性及びコンジュゲートされた多糖の免疫原性の低減をもたらし得る。バイオコンジュゲーションによるグリココンジュゲートの合成は、古典的な精製及び化学的コンジュゲーションのこれらの制約を克服することができる。したがって、典型的な実施形態では、バイオコンジュゲートは、化学的に生成されるグリココンジュゲートより好ましい。
(式中、eTECスペーサーを含む原子は、中央の箱に含有される)によって表され得る。
本明細書では、大腸菌(E.coli)O抗原及びそのような大腸菌(E.coli)O抗原を含むバイオコンジュゲートを生成することができる宿主細胞、例えば、原核宿主細胞が記載される。本明細書に記載される宿主細胞は、好ましくは、大腸菌(E.coli)O抗原多糖及び/又はそのバイオコンジュゲートを生成するために使用される宿主細胞機構(例えば、グリコシルトランスフェラーゼ)をコードする核酸の1つ以上を含む(例えば、遺伝子操作を介して)ように改変される。
本明細書では、大腸菌(E.coli)O75及びO6抗原多糖を含む組成物及び組合せ物が提供され、抗原多糖の各々は、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、任意選択により、大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25抗原多糖の1つ以上、好ましくは全てをさらに含み、抗原多糖の各々は、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結されている。O抗原多糖又はコンジュゲート、例えば、バイオコンジュゲートの組合せ物は、複数の組成物を含み得るが、それは、O抗原多糖又はコンジュゲート、例えば、バイオコンジュゲートの組み合わせが同じ組成物中に存在する場合に好ましい。
(i)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O1A抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(ii)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O2抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(iii)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O4抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(iv)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(v)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O15抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(vi)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O16抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(vii)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖のバイオコンジュゲート;
(viii)約28~36、好ましくは、約32μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖のバイオコンジュゲート;及び
(ix)約28~36、好ましくは、約32μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O75抗原多糖のバイオコンジュゲートを含み;
EPA-4キャリアタンパク質は、配列番号3のアミノ酸配列を含み、
O1A、O2、O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75抗原多糖は、表1に示されるとおりの式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造をそれぞれ含み、各nは、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である。
(x)約12~20、好ましくは、約16μg/mLの多糖濃度でEPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O75抗原多糖のバイオコンジュゲートを含み;
O8抗原多糖は、表1に示される式(O8)の構造を含み、nは、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である。
(i)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O1A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O1A抗原多糖は、式(O1A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(ii)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O2抗原多糖(大腸菌(E.coli)O2抗原多糖は、式(O2)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(iii)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖(大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖は、式(O4-Glc+)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(iv)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖は、式(O6A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(v)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O15抗原多糖(大腸菌(E.coli)O15抗原多糖は、式(O15)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(vi)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O16抗原多糖(大腸菌(E.coli)O16抗原多糖は、式(O16)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(vii)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖は、式(O18A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(viii)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖(大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖は、式(O25B)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;及び
(ix)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O75抗原多糖(大腸菌(E.coli)O75抗原多糖は、式(O75)の構造を含む)のバイオコンジュゲートを含む組成物が提供され;
式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造の各々は、表1に示され、各nは、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、
組成物中に存在する大腸菌(E.coli)抗原多糖は、O1A、O2、O4-Glc+、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75からなる。好ましくは、キャリアタンパク質は、緑膿菌(P.aeruginosa)の無毒化外毒素A(EPA-4)であり、より好ましくは、EPA-4は、配列番号3のアミノ酸配列を含む。好ましくは、O75抗原多糖とO1A、O2、及び/又はO6A抗原多糖の濃度の比は、約1.2:1~約8:1、好ましくは、約1.5:1~約4:1、より好ましくは、約2:1である。好ましくは、組成物中に存在する大腸菌(E.coli)抗原多糖は、1:1:1:1:1:1:1:2:2の比でO1A、O2、O4-Glc+、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75からなる。
好ましくは、O1抗原はO1Aであり、O4はグルコシル化されており、O6抗原はO6Aであり、O18抗原はO18Aであり、及びO25抗原はO25Bである。
大腸菌(E.coli)O1抗原多糖は、表1に示される式(O1A)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O2抗原多糖は、表1に示される式(O2)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O4抗原多糖は、表1に示される式(O4-Glc+)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O6抗原多糖は、表1に示される式(O6A)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O15抗原多糖は、表1に示される式(O15)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O16抗原多糖は、表1に示される式(O16)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O18抗原多糖は、表1に示される式(O18A)の構造を含み、
大腸菌(E.coli)O25抗原多糖は、表1に示される式(O25B)の構造を含み、及び
大腸菌(E.coli)O75抗原多糖は、表1に示される式(O75)の構造を含み、
各nは、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である。
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O2抗原多糖(大腸菌(E.coli)O2抗原多糖は、式(O2)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖(大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖は、式(O4-Glc+)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖は、式(O6A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O15抗原多糖(大腸菌(E.coli)O15抗原多糖は、式(O15)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O16抗原多糖(大腸菌(E.coli)O16抗原多糖は、式(O16)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖は、式(O18A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖(大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖は、式(O25B)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;及び
EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O75抗原多糖(大腸菌(E.coli)O75抗原多糖は、式(O75)の構造を含む)のバイオコンジュゲートを含む組成物が提供され;
EPA-4は、配列番号3のアミノ酸配列を含み、
式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造の各々は、表1に示され、各nは、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、
O75抗原多糖とO6A抗原多糖の比は、約1.2:1~約8:1、好ましくは、約1.5:1~約4:1、より好ましくは、約2:1である。
(i)大腸菌(E.coli)O4抗原多糖についてのrfb遺伝子クラスターのヌクレオチド配列;
(ii)配列番号4と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するグルコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(グルコシルトランスフェラーゼは、大腸菌(E.coli)O4抗原多糖を修飾して、大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖を生成することができる);
(iii)それぞれ配列番号7及び8と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するトランスロカーゼ及びグリコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(トランスロカーゼは、バクトプレノール連結型グルコースを移行させることができ、グリコシルトランスフェラーゼは、バクトプレノールをグルコシル化することができる);
(iv)キャリアタンパク質をコードするヌクレオチド配列;及び
(v)大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖をキャリアタンパク質に共有結合的に連結することができるオリゴサッカリルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(好ましくは、オリゴサッカリルトランスフェラーゼは、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)由来のPglBである)を含む大腸菌(E.coli)細胞において生成されている。
本明細書で提供されるバイオコンジュゲート及び組成物を使用して、対象において大腸菌(E.coli)O抗原に対する抗体を誘導することができるか、又は大腸菌(E.coli)に対して対象をワクチン接種することができる。本明細書に記載される対象において免疫応答を誘導する方法は、O抗原が組成物中に存在するExPEC株による感染に対する対象のワクチン接種をもたらす。O抗原亜型が使用されるとき、本発明の方法はまた、同様の抗原性を有する別のO抗原亜型に対する免疫応答を誘導することができる。例は、亜血清型間の交差反応性であり、例えば、O25B抗原による免疫化は、O25B及びO25A血清型の両方のO-LPSを認識する抗体を誘導し、グルコシル化O4による免疫化は、グルコシル化O4及び非グルコシル化O4血清型の両方のO-LPSを認識する抗体を誘導し、他の例では、異なるO抗原を有するが、抗原性構造において依然として多少の類似性を共有する他の血清型に対する交差免疫化もあり得る(例えば、いくつかの血清は、血清型判定試験において交差反応するように見える)。
好ましくは、O1抗原はO1Aであり、O4はグルコシル化されており、O6抗原はO6Aであり、O18抗原はO18Aであり、及びO25抗原はO25Bであり、
より好ましくは、O1A、O2、グルコシル化O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75抗原多糖の各々は、表1に示されるとおりの式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造をそれぞれ含み、各nは、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、
O75抗原多糖とO6抗原多糖の比は、約1.2:1~約8:1、好ましくは、約1.5:1~約4:1、より好ましくは、約2:1である。
キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖のバイオコンジュゲートは、
(i)大腸菌(E.coli)O4抗原多糖についてのrfb遺伝子クラスターのヌクレオチド配列;
(ii)配列番号4と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するグルコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(グルコシルトランスフェラーゼは、大腸菌(E.coli)O4抗原多糖を修飾して、大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖を生成することができる);
(iii)それぞれ配列番号7及び8と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するトランスロカーゼ及びグリコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(トランスロカーゼは、バクトプレノール連結型グルコースを移行させることができ、グリコシルトランスフェラーゼは、バクトプレノールをグルコシル化することができる);
(iv)キャリアタンパク質をコードするヌクレオチド配列;及び
(v)大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖をキャリアタンパク質に共有結合的に連結することができるオリゴサッカリルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(好ましくは、オリゴサッカリルトランスフェラーゼは、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)由来のPglBである)を含む大腸菌(E.coli)細胞において生成されている。
実施形態1は、大腸菌(E.coli)O75抗原多糖並びにO1、O2、O4、O6、O15、O16、及びO18からなる群から選択される少なくとも1つの追加の大腸菌(E.coli)O抗原多糖を含む組成物であって、抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75抗原多糖の濃度と追加のO抗原多糖の濃度との比が、約1.2:1~約8:1、好ましくは、約1.5:1~約4:1、好ましくは約1.5~1~2.5:1、より好ましくは約2:1である組成物である。
(i)大腸菌(E.coli)O1抗原多糖が、式(O1A)の構造:
を含み、
(ii)大腸菌(E.coli)O2抗原多糖が、式(O2)の構造:
を含み、
(iii)大腸菌(E.coli)O4抗原多糖が、式(O4-Glc+)の構造:
を含み、
(iv)大腸菌(E.coli)O6抗原多糖が、式(O6A)の構造:
を含み、
(v)大腸菌(E.coli)O15抗原多糖が、式(O15)の構造:
[→2)-β-D-Galp-(1→3)-α-L-FucpNAc-(1→3)-β-D-GlcpNAc-(1→]n
を含み、
(vi)大腸菌(E.coli)O16抗原多糖が、式(O16)の構造:
を含み、
(vii)大腸菌(E.coli)O18抗原多糖が、式(O18A)の構造:
を含み、
(viii)大腸菌(E.coli)O25抗原多糖が、式(O25B)の構造:
を含み、及び
(ix)大腸菌(E.coli)O75抗原多糖が、式(O75)の構造:
を含み、
各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である、実施形態2の組成物である。
α-D-Manp3Me-(1→[3)-β-D-Manp-(1→2)-α-D-Manp-(1→2)-α-D-Manp-(1→]n
を有するO8抗原多糖を含み、
nが、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である、実施形態6の組成物である。
(i)緑膿菌(P.aeruginosa)の無毒化外毒素A(EPA-4)キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O1A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O1A抗原多糖は、式(O1A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(ii)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O2抗原多糖(大腸菌(E.coli)O2抗原多糖は、式(O2)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(iii)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖(大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖は、式(O4-Glc+)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(iv)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O6A抗原多糖は、式(O6A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(v)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O15抗原多糖(大腸菌(E.coli)O15抗原多糖は、式(O15)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(vi)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O16抗原多糖(大腸菌(E.coli)O16抗原多糖は、式(O16)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(vii)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖(大腸菌(E.coli)O18A抗原多糖は、式(O18A)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;
(viii)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖(大腸菌(E.coli)O25B抗原多糖は、式(O25B)の構造を含む)のバイオコンジュゲート;及び
(ix)EPA-4キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)O75抗原多糖(大腸菌(E.coli)O75抗原多糖は、式(O75)の構造を含む)のバイオコンジュゲートを含み;
EPA-4が、配列番号3のアミノ酸配列を含み、
式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造の各々が、表1に示され、各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、及び
O75抗原多糖とO6A抗原多糖の比が、約1.2:1~約8:1、好ましくは、約1.5:1~約4:1、より好ましくは、約2:1である、組成物である。
キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖のバイオコンジュゲートが、
(i)大腸菌(E.coli)O4抗原多糖についてのrfb遺伝子クラスターのヌクレオチド配列;
(ii)配列番号4と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するグルコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(グルコシルトランスフェラーゼは、大腸菌(E.coli)O4抗原多糖を修飾して、大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖を生成することができる);
(iii)それぞれ配列番号7及び8と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するトランスロカーゼ及びグリコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(トランスロカーゼは、バクトプレノール連結型グルコースを移行させることができ、グリコシルトランスフェラーゼは、バクトプレノールをグルコシル化することができる);
(iv)キャリアタンパク質をコードするヌクレオチド配列;及び
(v)大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖をキャリアタンパク質に共有結合的に連結することができるオリゴサッカリルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(好ましくは、オリゴサッカリルトランスフェラーゼは、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)由来のPglBである)を含む大腸菌(E.coli)細胞において生成されている、実施形態2~15のいずれか1つの組成物である。
好ましくは、O1抗原がO1Aであり、O4がグルコシル化されており、O6抗原がO6Aであり、O18抗原がO18Aであり、及びO25抗原がO25Bであり、
より好ましくは、O1A、O2、グルコシル化O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75抗原多糖の各々が、表1に示されるとおりの式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造をそれぞれ含み、各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、O75抗原多糖とO6抗原多糖の重量比が、約1.2:1~約8:1、好ましくは約1.5:1~約4:1、より好ましくは約2:1である、実施形態18~20のいずれか1つの方法である。
キャリアタンパク質に共有結合的に連結された大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖のバイオコンジュゲートが、
(i)大腸菌(E.coli)O4抗原多糖についてのrfb遺伝子クラスターのヌクレオチド配列;
(ii)配列番号4と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するグルコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(グルコシルトランスフェラーゼは、大腸菌(E.coli)O4抗原多糖を修飾して、大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖を生成することができる);
(iii)それぞれ配列番号7及び8と少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%の配列同一性を有するトランスロカーゼ及びグリコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(トランスロカーゼは、バクトプレノール連結型グルコースを移行させることができ、グリコシルトランスフェラーゼは、バクトプレノールをグルコシル化することができる);
(iv)キャリアタンパク質をコードするヌクレオチド配列;及び
(v)大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原多糖をキャリアタンパク質に共有結合的に連結することができるオリゴサッカリルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列(好ましくは、オリゴサッカリルトランスフェラーゼは、カンピロバクター・ジェジュニ(Campylobacter jejuni)由来のPglBである)を含む大腸菌(E.coli)細胞において生成されている、実施形態21~26のいずれか1つの方法である。
菌血症を引き起こす大腸菌(E.coli)のO血清型分布を決定するために、国際調査研究が実施された。2011年と2017年の間に、3200種を超える大腸菌(E.coli)血流分離株が、北米、欧州、アジア太平洋領域、及び南米内の国々において入院した60歳以上の患者から回収された。各株は、古典的な凝集手法及び配列に基づくO遺伝子型判定を使用してO抗原血清型について解析された。下の表2を参照されたい。
大腸菌(E.coli)O1A-EPAバイオコンジュゲート、O2-EPAバイオコンジュゲート、O4-Glc+-EPAバイオコンジュゲート(本明細書の下でO4-EPAとも称される、すなわち、下の例において、O4抗原多糖のバイオコンジュゲートは、O4がグルコシル化されており、表1に示されるグリカン構造(O4-Glc+)を有するバリアントである;大腸菌(E.coli)グルコシル化O4抗原を生成するためのグルコースの付加により大腸菌(E.coli)O4抗原多糖を特異的に修飾することができる新規の今までに報告されていない未知のグルコシルトランスフェラーゼGtrSを使用してこのバリアントを作製する記述は、参照により本明細書に組み込まれる2020年3月18日に出願されたPCT/US20/23404において詳細が提供される)、O6A-EPAバイオコンジュゲート、O8-EPAバイオコンジュゲート、O15-EPAバイオコンジュゲート、O16-EPAバイオコンジュゲート、O18A-EPAバイオコンジュゲート、O25B-EPAバイオコンジュゲート、及びO75-EPAバイオコンジュゲートを含む10種のバイオコンジュゲートが生成された。これらのコンジュゲートのグリカンの構造は、表1のそれぞれの式において見ることができる。10種のバイオコンジュゲートを含む組成物は、本明細書で「ExPEC10V」と称される。O1A-EPA、O2-EPA、O6A-EPA及びO25B-EPAバイオコンジュゲートを含む組成物は、「ExPEC4V」と称される(例えば、国際公開第2015/124769号パンフレット及び国際公開第2017/035181号パンフレットにおいて以前に記載された)。これらの10種のバイオコンジュゲート、及びこれらのバイオコンジュゲートのための例示的な産生株の生成は、参照により本明細書に組み込まれる2020年3月18日に出願されたPCT/US20/23404において詳細が記載された。
非病原性大腸菌(E.coli)K12株W3110が、10種全ての産生株の構築のための親株として使用された。大腸菌(E.coli)K12株W3110は、Coli Genetic Stock Center(Yale University、New Haven(CT)、USA、製品番号CGSC#4474)から得られた。その関連する遺伝子型は、以前に記載された(大腸菌(E.coli)W3110、F-、ラムダ-、IN(rrnD-rrnE)1、rph-1)、そのゲノム配列は、以前に公表された(Hayashi K,et al.,2006,Mol.Syst.Biol.2006.0007(doi:10.1038/msb4100049)。大腸菌(E.coli)W3110株を遺伝子改変して、大腸菌(E.coli)O抗原バイオコンジュゲートの各々の生成を可能にした(表3)。
「ExPEC4V」及び「ExPEC10V」組成物は両方ともに、同じ産生株に由来するO2-EPA及びO25B-EPAバイオコンジュゲートを含む。「ExPEC4V」組成物は、stGVXN4411又はstLMTB10217産生株からのO1A-EPAバイオコンジュゲートを含む一方で、「ExPEC10V」組成物は、stLMTB10217産生株からのO1A-EPAバイオコンジュゲートを含む。「ExPEC4V」組成物は、stGVXN4112産生株からのO6A-EPAバイオコンジュゲートを含む一方で、「ExPEC10V」組成物は、stLMTB10923産生株からのO6A-EPAバイオコンジュゲートを含む。さらに、「ExPEC10V」組成物は、「ExPEC4V」のために使用されない産生株からのO4-EPA(すなわち、(O4-Glc+)-EPA)、O8-EPA、O15-EPA、O16-EPA、O18A-EPA、及びO75-EPAバイオコンジュゲートを含む。異なる産生株は、以下に示されるとおり、EPAキャリアタンパク質及び/又はオリゴサッカリルトランスフェラーゼPglBの発現のためのプラスミドが異なる可能性がある。いくつかの例示的な産生株の概要は、下の表3において与えられる。
全ての大腸菌(E.coli)O抗原産生株において、天然に存在する大腸菌(E.coli)W3110ゲノムO16::IS5-抗原生合成(rfb)遺伝子クラスターは、血清型特異的O抗原構造(これらのO抗原構造については表1を参照のこと)のためにコードする選択された血清型の大腸菌(E.coli)株に由来する選択されたO抗原特異的生合成クラスターによって置き換えられた。10種のドナーrfbクラスターは、大腸菌(E.coli)血液分離株の全ゲノム解析後に選択されたか又は確認された。O抗原生合成において欠陥のあるW3110 O16::IS5 rfb遺伝子クラスターの置き換えは、1回の相同組換え事象において達成された。O16及びO18A rfb遺伝子クラスターの場合、ドナーDNAは、隣接gnd及びrmlCA遺伝子を介して組み換えた一方で、他の株のためのrfb遺伝子クラスターは、隣接gnd及びgalF遺伝子を介して組み換えた。産生株におけるrfbクラスターの配列は、配列番号9及び11~19において提供される。
全ての大腸菌(E.coli)O抗原産生株は、waaL遺伝子によってコードされる大腸菌(E.coli)W3110ゲノムO抗原リガーゼの人工的に導入された欠失を保有する。waaL株において、O抗原のリピドAの移行は妨害され、代わりに生成物収量を増加させるためにO抗原のキャリアタンパク質への移行を指示する。
大腸菌(E.coli)O8、O15、O16、O18A、O25B、及びO75産生株において、O16O抗原グルコシル化に関与する大腸菌(E.coli)W3110ゲノムgtrABS遺伝子は、欠失されている。異なる血清型におけるgtrA及びgtrB遺伝子は、高度に相同であり及び互換的であるが、gtrS遺伝子は、血清型特異的O抗原グリコシルトランスフェラーゼをコードする。大腸菌(E.coli)W3110において、GtrSは、大腸菌(E.coli)O16O抗原のα-l-Rha-(1→3)-d-GlcNAcモチーフにおいてグルコース(Glc)残基をGlcNAc糖に移行させることができる。大腸菌(E.coli)O1A、O2及びO6A産生株において、gtrABS遺伝子の欠失又は置き換えは発生しなかった。これらのO抗原は、大腸菌(E.coli)O16 gtrSのための天然の基質であるα-l-Rha-(1→3)-d-GlcNAcモチーフを欠損している。大腸菌(E.coli)O4産生株において、W3110 gtrS遺伝子は、大腸菌(E.coli)O4 O抗原の適切なグルコシル化に適応させるために大腸菌(E.coli)O4 gtrS遺伝子と置き換えられている(大腸菌(E.coli)O4 gtrS遺伝子のコード配列は、配列番号5として本明細書で提供され、大腸菌(E.coli)O4 GtrSタンパク質のアミノ酸配列は、配列番号4として本明細書で提供される;例えば、2020年3月18日に出願されたPCT/US20/23404も参照されたい)。
全ての大腸菌(E.coli)O抗原産生株は、N-グリコシル化によってキャリアタンパク質のアミノ酸コンセンサス配列上にO抗原を移行させることができるC.ジェジュニ(C.jejuni)グリコシルトランスフェラーゼPglBのバリアントを発現した。PglBは、広範な基質認識を有するが、生成物収量が低いため、改変された基質特異性を有するPglBバリアントを発現するいくつかの産生株が作製され、生成物収量の向上をもたらした(例えば、国際公開第2016/107818号パンフレット、国際公開第2016/107819号パンフレットを参照のこと)。pglB遺伝子は、プラスミド上のイソプロピルβ-d-1-チオガルクトピラノシド(IPTG)誘導性プロモーターの後に配置された。下の表4は、上記のExPEC4V及びExPEC10V組成物のためのバイオコンジュゲート用の大腸菌(E.coli)O抗原産生株の生成のために使用されるプラスミドによってコードされるPglBバリアントを列挙する。ベクター骨格、抗生物質耐性マーカー、及び/又は代替的なPglBバリアントにおけるバリエーションを有するさらなるプラスミドもまた、バイオコンジュゲート生成について首尾よく試験されている。
全ての大腸菌(E.coli)O抗原産生株は、O抗原のためのキャリアタンパク質として遺伝的に無毒化された緑膿菌(P.aeruginosa)ADP-リボシルトランスフェラーゼトキソイド(EPA)を発現した。EPAトキソイドは、2つの残基における野生型EPA毒素とは異なる:Leu552はValに変更され、Glu553(触媒ドメインにおける)は欠失された。Glu553欠失は、毒性を著しく低減することが報告された。無毒化変異に加えて、4つ(EPA-4)のコンセンサスN-グリコシル化部位モチーフが導入された。epa遺伝子は、プラスミド上のl-アラビノース(Ara)誘導性プロモーターの後に配置された(表4)。表4は、上記の「ExPEC4V」及び「ExPEC10V」組成物において使用されるバイオコンジュゲートのための産生株において使用されるプラスミドに限定される。ベクター骨格、抗生物質耐性マーカー、及び/又はEPAバリアントにおけるバリエーション、例えば、コンセンサスN-グリコシル化部位モチーフ(例えば、2つのそのようなモチーフを有する、EPA-2)の数の変動を有するプラスミドもまた、バイオコンジュゲート生成について首尾よく試験されている。
バイオコンジュゲート生成のための収量の最適化は、C.ジェジュニ(C.jejuni)オリゴサッカリルトランスフェラーゼPglBの改変によって達成することができ、これは、より効率的な又はより高度のEPAキャリアタンパク質に対する目的のO抗原のN-グリコシル化をもたらすことができる。グルコシル化O4(O4-Glc+)O抗原多糖によるバイオコンジュゲートの生成のための大腸菌(E.coli)株において、そのような最適化戦略が適用され、バイオコンジュゲート生成物収量を向上させる(O4-Glc+)に特異的な最適化されたPglBバリアントをもたらした。
標的O抗原のO-グリカン残基は、構造的に多様であり、可変的な繰り返し単位を有する。グリコシルトランスフェラーゼPglBの特異性及び親和性は、グリカン構造に関連している。したがって、所望の品質特性、例えば、純度、グリカン/タンパク質比などを有するバイオコンジュゲートを作製することは、困難な単純明快ではない課題である。PglB及びEPAキャリアタンパク質の正しい組み合わせが収量を決定し、グリコシル化効率に影響を及ぼし得る。PglB及びキャリアタンパク質を最適化することによって、所望の品質特性を有するバイオコンジュゲートが生成された。非常に多い量のキャリアタンパク質は、免疫学的干渉を引き起こす可能性があるため、特に1つ以上のO抗原バイオコンジュゲートがともに合わせられ、単一の組成物又はワクチンにおいて投与されるとき、全体的なキャリアタンパク質のより低い閾値を維持することも重要であり得る。そのような現象を回避するために、より高いグリカン/タンパク質比を有するコンジュゲートが好ましい。したがって、ExPEC10Vワクチンに関して、少なくとも同等の(臨床試験に対する対象となった以前に記載されたExPEC4Vワクチンに対して)グリコシル化比が開発された。
ExPEC10Vによる単一用量の試験的毒性及び局所耐性試験(非GLP)が、雌NZWウサギにおいて実行された。ある群(n=2)は、対照(生理食塩水)の筋肉内(IM)注射を受け(0日目)、第2の群(n=4)は、0.6mL(176μg PS/mL)の投与体積を使用して、105.6μgの合計の多糖(PS)/用量のExPEC10VのIM注射を受けた(それぞれO血清型O1A、O2、O4、O6A、O8、O15、O16、O18A、O25B及びO75に関して用量当たり9.6:9.6:9.6:9.6:9.6:9.6:9.6:9.6:19.2:9.6μgのPS)。剖検は、2日目に実施された。
ExPEC4Vワクチン(大腸菌(E.coli)O1A、O2、O6A、及びO25B血清型のバイオコンジュゲートを含む)は、ラット、ウサギ、及びヒトにおいてこれらの4種の血清型について免疫原性であることが以前に示されている(例えば、国際公開第2015/124769号パンフレット;国際公開第2017/035181号パンフレット;Huttner et al,2017,Lancet Infect Dis,http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(17)30108-1;RW Frenck Jr,et al,2019,Lancet Infect Dis 19(6):631-640,http://dx.doi.org/10.1016/S1473-3099(18)30803-X)。大腸菌(E.coli)血清型O4-Glu+、O8、O15、O16、O18A、及びO75(全てがキャリアタンパク質としてEPA-2を有する)のバイオコンジュゲートの免疫原性は、ラットに別々に投与されるとき(一価)、これらのバイオコンジュゲートの各々もまた、免疫原性であることが確認されたが、それは、ELISAデータが、これらのバイオコンジュゲートの各々が、高レベルの大腸菌(E.coli)O抗原に特異的な抗体を誘発できたことを示したためである(示されない)。
現在、IEDを予防するのに利用可能なワクチンは存在しない。ExPEC10Vワクチンを含む血清型(O1A、O2、O4、O6A、O8、O15、O16、O18A、O25B及びO75)は、ST131を含む抗菌剤耐性IEDを引き起こすExPEC分離株の大部分も表す臨床的に意味のあるExPEC株の大部分によって引き起こされる侵襲性疾患に対処するために選択された。選択される血清型は、高齢集団における血流感染を引き起こす10種の流行しているExPEC O血清型を代表するものであり、ExPECによって引き起こされる血流感染のおよそ70%に関与する。
コホート1-非盲検の長期追跡調査期間を伴う第1/2a相観察者盲検期間(N=404):
これは、2つのコホートを含む無作為化多施設介入試験である。
コホート1の第1相において、合計で84名の参加者が、安全性評価の後に次の工程に進む段階的な用量漸増手順に従って段階的な手法で登録された。この試験のために社内のデータ審査委員会(DRC)に委託し、これらの84名の第1相参加者の身体検査データ(ベースライン及び標的化)、ベースライン人口統計データ及びワクチン接種後14日間の安全性データ(非自発的局所及び全身性AE、自発的AE、SAE、臨床検査データ及び生命徴候を含む)を審査した。試験のこの相において、参加者が登録され、6つの工程において無作為化された:
工程1:4名の歩哨の参加者が登録され、無作為化された;ExPEC10V低用量群において2名の参加者(表11)、並びにExPEC4V及びプレブナー13群においてそれぞれ1名の参加者。
工程2:24名の参加者が登録され、無作為化された;ExPEC10V低用量群において18名の参加者(表11)、及びExPEC4V及びプレブナー13群においてそれぞれ3名の参加者。
工程3:4名の歩哨の参加者が登録され、無作為化された;ExPEC10V中用量群において2名の参加者(表11)、並びにExPEC4V及びプレブナー13群においてそれぞれ1名の参加者。
工程4:24名の参加者が登録され、無作為化された;ExPEC10V中用量群において18名の参加者(表11)、並びにExPEC4V及びプレブナー13群においてそれぞれ3名の参加者。
工程5:4名の歩哨の参加者が登録され、無作為化された;ExPEC10V高用量群において2名の参加者(表11)、並びにExPEC4V及びプレブナー13群においてそれぞれ1名の参加者。
工程6:24名の参加者が登録され、無作為化された;ExPEC10V高用量群において18名の参加者(表11)、並びにExPEC4V及びプレブナー13群においてそれぞれ3名の参加者。
初期の84名の参加者に関するワクチン接種後の14日の安全性データの審査の後にDRCによって決定されるとおりの許容される安全性及び反応源性(いずれかの安全性の懸念又は特定の試験休止規則を満たすいずれかの事象が存在しない場合)に基づいて、コホート1からの残りの320名の参加者が無作為化され、試験の第2a相において投与された。これらの追加の320名の参加者が登録され、1日目のExPEC10V(3つの用量のうちの1つ)、ExPEC4V又はプレブナー13のいずれかの単回のIM注射を受けるように5つの試験ワクチン接種群のうちの1つに2:2:2:1:1の比で並行して無作為化された(表11)。初期の84名の参加者に関する14日の安全性審査を実施することに加えて、DRCはまた、試験の期間にわたるコホート1の安全性データを評価し、特定の試験ワクチン接種休止規則又は生じる可能性のあるいずれかの他の安全性の問題を満たすいずれかの事象を審査する。
コホート2において、ExPEC10Vの選択された用量の安全性、反応源性、及び免疫原性(高用量が選択されたコホート1の主要解析結果に基づく)は、過去5年にUTIの病歴を有する安定した健康状態の60歳以上の参加者において評価される。コホート2に関して、試験は、二重盲検プラセボ対照デザインであり、合計でおよそ420名の参加者が登録され、2:1比で並行して無作為化された(ExPEC10V群においておよそ280名の参加者及びプラセボ群においておよそ140名)。
合計でおよそ824名の参加者が試験に登録された;コホート1における404名の参加者及びコホート2におけるおよそ420名の参加者。
ExPEC10V:EPAキャリアタンパク質に別々にバイオコンジュゲートされたExPEC血清型O1A、O2、O4、O6A、O8、O15、O16、O18A、O25B及びO75のO抗原PSを含有するリン酸緩衝溶液中の大腸菌(E.coli)バイオコンジュゲートワクチン。1日目のExPEC10Vの3つの用量のうちの1つの単回の0.5mL IM(三角筋)注射。
重要な安全性評価は、非自発的局所及び全身性AE、自発的AE、SAE、身体検査、生命徴候測定、及び臨床検査を含む。
回収された血清の重要な免疫原性評価は、マルチプレックスECL系イムノアッセイによって測定されるとおりのワクチンにより誘発されるExPEC10V及びExPEC4V血清型特異的な総IgG抗体レベル、並びにマルチプレックス形式(MOPA)におけるオプソニン作用死滅アッセイ(OPKA)によって測定されるとおりのExPEC10V及びExPEC4V血清型特異的な機能性抗体の評価を含む。プレブナー13によって誘発される肺炎球菌抗体力価の免疫原性評価は実施されない。
- 1日目(ワクチン接種前)の血清抗体力価における2倍以上及び4倍以上の増加を有する参加者の割合
- 幾何平均力価(GMT)
- GMR:ベースライン後/ベースライン値から計算されるベースラインからの倍率変化。
LTFU期間に関して、免疫原性の記述的な概要が、各血清型について提供される。
上記の試験のコホート1の登録及びワクチン接種が完了された。大幅な安全性の問題は同定されず、ExPEC10Vワクチンは、許容される安全性プロファイルを有する。
本明細書で示されるこれらの結果は、BAC1001臨床試験(コホート1)を指す。最大の解析対象集団には416名の参加者が存在した。各参加者は、ExPEC10Vの3つの単回の筋肉内投与される用量のうちの1つ又はExPEC4V若しくはプレブナーの2つの実薬対照用量のうちの1つのいずれかに無作為化された;104名は、ExPEC10V低用量でワクチン接種され、102名はExPEC10V中用量でワクチン接種され、104名は、ExPEC10V高用量でワクチン接種され、52名はExPEC4V(4:4:4:8μg O1A、O2、O6A及びO25B多糖/用量)でワクチン接種され、54名はプレブナーでワクチン接種された。合計で413名の参加者が30日目の来院を完了した。15日目の治験実施計画書に適合した免疫原性解析に含まれる392名(94.2%)の参加者が存在した。
全体的に見て、全てのExPEC10V用量は忍容性が良好であった。高用量で反応源性が増大する傾向があり、ExPEC10Vの高用量の反応源性は、紅斑、膨化及び嘔気を除いてプレブナーより低いか又は同等であった。プレブナーとは対照的に、より遅発性の局所反応源性が、ExPEC10V群において観察され、注射部位紅斑及び膨化は、これらの局所事象を経験している参加者の>90%の遅発性事象として報告された。しかしながら、ExPEC10Vの反応源性プロファイルは、より高齢の成人集団において使用される他のライセンス化されたワクチンと比較して許容される。
ワクチンに誘導される免疫応答は、血清型特異的血清抗体(総免疫グロブリンG[IgG])のレベルを測定するマルチプレックス電気化学発光(ECL)系イムノアッセイ及び抗体に媒介される細菌オプソニン作用死滅を測定するマルチプレックスオプソニン作用死滅アッセイ(MOPA)を使用してベースライン(1日目のワクチン接種前)及びワクチン接種後の15日目で評価された。
O抗原特異的血清抗体(総IgG)のレベルは、試験される全てのExPEC10V用量及び全てのワクチン関連血清型に関してワクチン接種後の15日目に著しく増大した。高用量のExPEC10Vワクチンを受容した対象の少なくとも80%は、O25B、O6A、O2、O1A、O4、O15、O16及びO18Aを含む10種の血清型のうちの8種に関してワクチン接種後の15日目までにO抗原特異的抗体力価の2倍以上の増加を示したことが観察された。ExPEC10V中用量群に関して、対象の少なくとも80%は、O25B、O2、O1A、O4及びO15を含む10種の血清型のうちの5種に関して;及びExPEC10V低用量群については、O25B、O2、O15及びO16を含む10種の血清型のうちの4種に関して、ワクチン接種後の15日目までにO抗原特異的抗体力価の2倍以上の増加を示す(図4、表13)。1日目から15日目までのGMTの最小限の変化が、プレブナー又はExPEC4V(非ExPEC4V血清型用)を受容した対象の群において観察された(図4、表13)。
部分的なデータは、コホート1のMOPA解析において含まれた。表14は、15日目のMOPA GMT解析において含まれる参加者の数を示す。部分的なデータが、ExPEC10Vによって誘導される抗体応答の機能性の評価のために使用されたが、解析の結論は、完全なデータセットが利用可能であったときに変化しなかった。
各用量群のベースラインから15日目へのlog10倍率増加の平均に基づく免疫原性用量選択アルゴリズムは、2つの解析セット(PPI及びFAS)及び2つのアッセイ(ECL及びMOPA)を考慮するこの臨床試験のコホート2に関するExPEC10V高用量を同定した。
ExPEC10Vワクチンは、ロバストな抗体応答を誘導し、O抗原特異的血清抗体の増加は、ベースライン(1日目)力価と比較してワクチン接種後の15日目の全てのワクチン関連血清型に関して観察された。大腸菌(E.coli)のオプソニン作用性の死滅を媒介したExPEC10Vに誘導される機能性抗体は、血清型O8を除いて、全てのワクチン関連血清型について認定されたMOPAにおいて検出された。血清型O8に関して、改変されたMOPAによるその後の試験は、機能性抗体応答を測定した。注目すべきことに、O75応答は、同じ用量での他の血清型に関するものより4μg及び8μgの用量でより弱く、これは、この試験からの驚くべきであり及び予測不可能な知見であった。多価グリココンジュゲート組成物によって生成される大腸菌(E.coli)O75血清型に対する免疫応答を向上させるために、一態様において、本発明は、血清型O75抗原多糖の用量を、例えば、他の血清型のいくつかの用量の約1.2~8倍、例えば、O6又はO1などの他の血清型のいくつかの用量の約1.5~4倍、例えば、約1.5~2.5倍、例えば、約2倍、例えば、約16μgまで増加させ、これは、例えば、最も関連し及び流行している血清型O1A、O2、及びO6Aの3つより高く、血清型O25B抗原多糖と同様である。先行する実験において(例えば、この実施例の上記並びに実施例5及び6、すなわち、本明細書で開示されるExPEC10Vワクチンによる臨床データが利用可能になる前)、O75抗原多糖の用量は、せいぜいO1A、O2及びO6A抗原多糖の用量と同程度に高いか、又は実際には、ある特定の試験群において、O1A及びO6A抗原多糖の2分の1でさえあり、O25B抗原多糖の2~4分の1でさえあった。対照的に、本発明のある特定の態様では、O75の用量は、O1、O2、及び/又はO6の用量と比較してそのように実際に増加される。
この試験のコホート2において、過去5年にUTIの病歴を有する安定した健康状態の60歳以上の合計でおよそ420名の参加者が登録され、2:1の比で並行して無作為化された(完全な結果の解析が実施されたセットは、ExPEC10V(高用量)群において278名の参加者及びプラセボ群において138名を含んだ)。
全体的に見て、ExPEC10Vワクチンは忍容性が良好であった。反応源性プロファイルは一般に、コホート1における中用量及び高用量のExPEC10Vで観察されるものと同等であった。最も頻度の高い局所非自発的AEは、疼痛/圧痛であり、最も頻繁に報告させる全身性AEは、筋肉痛、頭痛、及び疲労であった。注射部位紅斑及び膨化は、最も一般的な遅発型事象(最初の発症までの時間はワクチン接種の5日より後)であった。ExPEC10Vの反応源性プロファイルは、より高齢の成人集団において使用される他のライセンス化されたワクチンと比較して許容される。
ワクチンに誘導される抗体応答は、血清型特異的血清抗体(総IgG)のレベルを測定するマルチプレックスECL系イムノアッセイを使用してベースライン(ワクチン接種前の1日目)並びにワクチン接種後の15日目及び30日目に評価された。
ExPEC10Vワクチンは、ベースラインから1日目~15日目に力価の少なくとも2倍の増加を有する参加者のGMT、GMT FI及びパーセンテージの値の増加に基づいて、全ての血清型に対して免疫原性であった。15日目~30日目の3つ全ての測定値において変化は最小限であった。
新たな試験が設計され、これは、ExPECワクチンの2種の適合した組成物(本明細書では適合した製剤とも称される)を含んだ(ExPEC9V a及びb、表17)。これらの適合した製剤は、低い免疫原性が第1/2a相臨床試験のコホート1の解析中にこれらの抗原について観察されたため、血清型O8多糖が除去され、大腸菌(E.coli)血清型O75(ExPEC9V b)に関して増加した多糖含量を有する。上記の先行する実験を検証するための対照として、ExPEC10V組成物もまた評価された。生理食塩水対照(ワクチン未接種群)も含まれた。
ニュージーランドホワイトラビット(NZW、試験の開始時に13週齢)は、2週間隔で投与されるExPECワクチン又は生理食塩水の異なる製剤による3回の筋肉内免疫化(500μL/注射)を受けた(表17)。試験は、4種の異なる群(表18)を含有した:群1(ExPEC10V)は、8μg/用量のO1A、O2、O6A、O4、O8、O15、O16、O18及びO75、並びに16μg/用量のO25B(すなわち、EPAキャリアタンパク質に別々にバイオコンジュゲートされた各抗原多糖である16μg/mLのO1A、O2、O6A、O4-Glc+、O8、O15、O16、O18A及びO75抗原多糖の各々、並びに32μg/mLのO25B抗原多糖を含む0.5mLの組成物、上の実施例を参照のこと)を受容した;群2(ExPEC9V a)は、8μg/用量のO1A、O2、O6A、O4、O15、O16、O18A及びO75、並びに16μg/用量のO25B(すなわち、EPAキャリアタンパク質に別々にバイオコンジュゲートされた各抗原多糖である16μg/mLのO1A、O2、O6A、O4-Glc+、O15、O16、O18A及びO75抗原多糖の各々、並びに32μg/mLのO25B抗原多糖を含む0.5mLの組成物、上の実施例を参照のこと)を受容した;群3(ExPEC9V b)は、8μg/用量のO1A、O2、O6A、O4、O15、O16及びO18A、並びに16μg/用量のO75及びO25B(すなわち、EPAキャリアタンパク質に別々にバイオコンジュゲートされた各抗原多糖である16μg/mLのO1A、O2、O6A、O4-Glc+、O15、O16、及びO18A抗原多糖の各々、並びに32μg/mLのO25B及びO75抗原多糖を含む0.5mLの組成物、上の実施例を参照のこと)を受容した。
ヒトにおける有効性試験は、増加した濃度のO75抗原多糖を有する九価ExPECワクチン組成物で実行される。試験の表題は、「過去2年に尿路感染症の病歴を有する60歳以上の成人における侵襲性腸管外病原性大腸菌(Escherichia coli)疾患の予防におけるExPEC9Vによるワクチン接種の有効性、安全性及び免疫原性を評価するための無作為化、二重盲検、プラセボ対照、多施設第3相試験」であり、それは、本明細書で「BAC3001」試験と称されることになる。
これは、60歳以上であり、過去2年にUTIの病歴を有する医学的に安定したおよそ18,556名の成人において実行されることになる無作為化、二重盲検、プラセボ対照、並行群、多施設、介入第3相試験である。
重要な安全性評価は、SAE、身体検査、及び生命徴候を含む。加えて、非自発的局所及び全身性AE並びに自発的AEは、「安全性サブセット」における参加者、すなわち、追加の評価のための無作為化前に所与のインフォームドコンセントを有する選択された試験現場からのおよそ4,000名の参加者について記録される。
免疫原性の評価のために、9種のワクチンO血清型及びキャリアタンパク質EPAの各々に対するワクチンによって誘発されるIgG抗体レベルは、マルチプレックスECL系イムノアッセイによって測定され、血清型特異的機能性抗体は、MOPAによって測定される。免疫原性解析は、「免疫原性サブセット」における参加者、すなわち、追加の免疫原性評価のための無作為化の前に所与のインフォームドコンセントを有する選択された試験現場からのおよそ1,200名の参加者、及び確定IED事象を有する全ての参加者、及びUTI又は急性細菌性前立腺炎(ABP)事象を有する免疫原性サブセットにおける参加者について実施される。
主要目的は、ExPEC血清型O1A、O2、O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75によって引き起こされる第1のIED事象の予防においてプラセボと比較してExPEC9Vの有効性を実証することである。IED、UTI、又はABPとして定義される事象は、全体的な試験期間(1,096日;3年)に全ての参加者に関して収集される。試験の追跡調査の間、参加者は、UTI又はABPのいずれかの徴候又は症状を経験する場合、又は全身性感染によって引き起こされる可能性がある症状のいずれかの新たな発症又は悪化を経験する場合、可能な限り早く試験現場に通知することが期待される。加えて、全ての参加者は、UTI、ABP、又は潜在的なIEDであった可能性がある、現場によって即時に把握されなかった過去の入院又は医学的事象についても質問されることになる。IED(全ての参加者)及びUTI又はABP(免疫原性サブセットのみ)に関する医療との接触に関連する医療資源利用データが収集される。2つの患者報告アウトカム(PRO)書類を使用して、健康に関連する生活の質を測定する:SF-36バージョン2及びEQ-5D-5L。加えて、フレイルは、SPPB及びフレイル指標スコアを使用して評価される。
免疫原性の評価のために、9種のワクチンO血清型及びキャリアタンパク質EPAの各々に対するワクチンによって誘発されるIgG抗体レベルは、マルチプレックスECL系イムノアッセイによって測定され、血清型特異的機能性抗体は、MOPAによって測定される。免疫原性解析は、「免疫原性サブセット」における参加者、すなわち、追加の免疫原性評価のための無作為化の前に所与のインフォームドコンセントを有する選択された試験現場からのおよそ1,200名の参加者、並びに確定IEDを有する全ての参加者及びUTI又はABP事象を有する免疫原性サブセットにおける参加者について実施される。1日目及び30日目の免疫原性血液試料は、全ての参加者から回収される。
重要な安全性評価は、SAE、身体検査、及び生命徴候を含む。加えて、非自発的局所及び全身性AE並びに自発的AEは、「安全性サブセット」における参加者、すなわち、追加の評価のための無作為化前に所与のインフォームドコンセントを有する選択された試験現場からのおよそ4,000名の参加者について記録される。
第1の主要評価項目の主要解析は、治験実施計画書に適合した有効性(PPE)集団において、プラセボ群と比較して、実薬ワクチン(ExPEC9V)群におけるワクチン接種の少なくとも29日後の発症を有するExPEC血清型O1A、O2、O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75によって引き起こされる少なくとも1つのIED事象を有する参加者の数を評価する。第2の主要評価項目の主要解析は、PPE集団において、プラセボ群と比較して、実薬ワクチン(ExPEC9V)群におけるワクチン接種の少なくとも29日後(30日目から)の発症を有するExPEC血清型O1A、O2、O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75によって引き起こされる血液又は他の無菌部位における微生物学的確認による少なくとも1つのIED事象を有する参加者の数を評価する。追跡調査期間もまた、考慮される。IED事象を有する参加者に関して、追跡調査期間は、ワクチン接種と最初の事象の発生の間の期間として定義される。IED事象を有しない参加者に関して、それはワクチン接種と最後の来院(又は試験を中断した参加者については最後の接触)の間の期間である。VE≦20%の帰無仮説は、対立仮説VE>20%に対して試験される。
主要:
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる、血液、他の無菌部位、又は尿からの微生物学的確認による最初のIED
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる、血液又は他の無菌部位からの微生物学的確認による最初のIED
副次:
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる全てのIED(参加者毎に複数のIEDを含む)
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる最初の入院させられたIED事象
- ExPEC O血清型によって引き起こされる敗血症に関する判定基準を満たす最初のIED事象
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる最初の菌血症IED事象
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる最初の腎盂腎炎事象
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる最初のUTI
- ExPEC9V O血清型によって引き起こされる全てのUTI(参加者毎に複数のUTIを含む)
- 任意のExPEC O血清型によって引き起こされる最初のIED事象
- 任意のExPEC O血清型によって引き起こされる最初の腎盂腎炎事象
- 任意のExPEC O血清型によって引き起こされる最初のUTI
● 以下のいずれかの存在によって示されるとおりの全身性細菌感染の徴候及び症状を有するいずれかの参加者である:
- 体温<36.0℃(96.8°F)又は>38.0℃(100.4°F)、
- 頻拍(HR)>90bpm、
- 頻呼吸(RR)>20呼吸/分、又は
- WBC数<4又は>12x109/L又は10%未成熟(帯状)形態、
並びに
● 以下の培養による微生物学的確認:
- 血液又は任意の他の無菌部位(例えば、脳脊髄液[CSF]、胸膜)における大腸菌(E.coli)、
及び/又は
- UTI徴候/症状を有し及び感染の他の同定可能な部位を有さず及びベースラインから全体的な逐次臓器不全評価(SOFA)スコア≧2点における急性の変化を有する尿中の大腸菌(E.coli)(コロニー形成単位/mL ≧105)。
● 非複雑性UTIに関して、以下の徴候又は症状の少なくとも2つ:
- 排尿障害、
- 尿意頻数、
- 尿意切迫、又は
- 恥骨上痛。
● 複雑性UTI(cUTI)に関して:
- 以下の徴候又は症状の少なくとも2つ:
○ 発熱(例えば、38.0℃以上の温度)を伴う悪寒、硬直若しくは温感、
○ 排尿障害、尿意頻数若しくは尿意切迫、
○ 下腹部痛若しくは骨盤痛、又は
○ 嘔気若しくは嘔吐、
及び
- 以下の複雑化因子の少なくとも1つ:
○ 尿貯留の病歴(男性参加者において)、
○ 現在留置している尿路カテーテル、
○ 閉塞性尿路疾患、又は
○ 任意の関連する機能的若しくは解剖学的異常。
● 以下の症状の少なくとも2つを有する腎盂腎炎(尿路の根底にある異常に関係なく)に関して:
- 発熱(例えば、38.0℃以上の温度)を伴う悪寒、硬直若しくは温感、又は
- 身体検査時の側腹部痛若しくは肋骨脊柱角の圧痛、又は
- 嘔気若しくは嘔吐。
● 再発性UTI(rUTI)に関して:
- 最近6ヶ月における2回のUTIの頻度を有する非複雑性及び/若しくは複雑性UTIの再発、又は
- 年に少なくとも3回のUTIの頻度を有する非複雑性及び/若しくは複雑性UTIの再発。
● 刺激性の排尿症状:
○ 排尿障害、
○ 尿意頻数、
○ 尿意切迫、又は
● 閉塞性の排尿症状:
- 排尿躊躇、
- 不完全な排尿、
- 腹圧性排尿、
- 尿勢低下、及び
● 恥骨上痛、直腸痛、若しくは会陰部痛。
配列番号1(グリコシル化コンセンサス配列)
Asn-X-Ser(Thr)(Xは、Proを除く任意のアミノ酸であり得る)
配列番号2(最適化されたグリコシル化コンセンサス配列)
Asp(Glu)-X-Asn-Z-Ser(Thr)(X及びZは、独立して、Proを除く任意のアミノ酸から選択される)
配列番号3(4個のグリコシル化コンセンサス配列を含むEPAキャリアタンパク質(EPA-4))
配列番号4(O4 GtrSアミノ酸配列)
配列番号5(例のO4 gtrS核酸配列)
配列番号6(例のPglB配列(「野生型」))
配列番号7(例のgtrAアミノ酸配列;大腸菌(E.coli)W3110 yfdG、GenBank:BAA16209.1)
MLKLFAKYTSIGVLNTLIHWVVFGVCIYVAHTNQALANFAGFVVAVSFSFFANAKFTFKASTTTMRYMLYVGFMGTLSATVGWAADRCALPPMITLVTFSAISLVCGFVYSKFIVFRDAK
配列番号8(例のgtrBアミノ酸配列-大腸菌(E.coli)W3110 yfdH、GenBank:BAA16210.1)
配列番号9(例のO4 rfb座位ヌクレオチド配列-O4-EPA産生株BVEC-L-00684f)
配列番号10(EPAキャリアタンパク質に関する例のシグナル配列)
MKKIWLALAG LVLAFSASA
配列番号11(例のO1A rfb座位ヌクレオチド配列-O1A-EPA産生株stGVXN4411及びstLMTB10217)
配列番号12(例のO2 rfb座位ヌクレオチド配列-O2-EPA産生株-stGVXN4906)
配列番号13(例のO6A rfb座位ヌクレオチド配列-O6A-EPA産生株stGVXN4112及びstLMTB10923)
配列番号14(例のO8 rfb座位ヌクレオチド配列-O8-EPA産生株-stLMTB11734)
配列番号15(例のO15 rfb座位ヌクレオチド配列-O15-EPA産生株-stLMTB11738)
配列番号16(例のO16 rfb座位ヌクレオチド配列-O16-EPA産生株-stLMTB11739)
配列番号17(例のO18A rfb座位ヌクレオチド配列-O18A-EPA産生株-BVEC-L-00559)
配列番号18(例のO25B rfb座位ヌクレオチド配列-O25B-EPA産生株-stGVXN4459)
配列番号19(例のO75 rfb座位ヌクレオチド配列-O75-EPA産生株-stLMTB11737)
配列番号20(例のCRM197配列)
また、本発明は以下を提供する。
[1]
大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6抗原多糖を含む組成物であって、前記抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75及びO25抗原多糖の各々の濃度が、独立して、O1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々の濃度と比較して高い、組成物。
[2]
O75抗原多糖の濃度と、独立してO1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々の濃度との重量比が、約1.5:1~約2.5:1である、[1]に記載の組成物。
[3]
O75抗原多糖の濃度と、独立してO1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々の濃度との重量比が、約2:1である、[1]又は[2]に記載の組成物。
[4]
大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6抗原多糖を含む組成物であって、前記抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75抗原多糖とO1、O2、及び/又はO6抗原多糖の濃度との重量比が、約1:5:1~約4:1、好ましくは、約2:1である組成物。
[5]
O75抗原多糖の濃度と、O4、O15、O16及び/又はO18抗原多糖の濃度との重量比が、約1.5:1~約4:1、好ましくは、約2:1である、[4]に記載の組成物。
[6]
前記組成物中のO75抗原多糖の濃度とO25抗原多糖の濃度との重量比が、約1:1である、[1]~[5]のいずれか一項に記載の組成物。
[7]
大腸菌(E.coli)抗原多糖O1:O2:O4:O6:O15:O16:O18:O25:O75の濃度の重量比が、1:1:1:1:1:1:1:2:2である、[1]~[6]のいずれか一項に記載の組成物。
[8]
前記O1抗原がO1Aであり、前記O4がグルコシル化されており、前記O6抗原がO6Aであり、前記O18抗原がO18Aであり、及び前記O25抗原がO25Bであり、
(i)前記大腸菌(E.coli)O1抗原多糖が、式(O1A)の構造:
を含み、
(ii)前記大腸菌(E.coli)O2抗原多糖が、式(O2)の構造:
を含み、
(iii)前記大腸菌(E.coli)O4抗原多糖が、式(O4-Glc+)の構造:
を含み、
(iv)前記大腸菌(E.coli)O6抗原多糖が、式(O6A)の構造:
を含み、
(v)前記大腸菌(E.coli)O15抗原多糖が、式(O15)の構造:
[→2)-β-D-Galp-(1→3)-α-L-FucpNAc-(1→3)-β-D-GlcpNAc-(1→]n
を含み、
(vi)前記大腸菌(E.coli)O16抗原多糖が、式(O16)の構造:
を含み、
(vii)前記大腸菌(E.coli)O18抗原多糖が、式(O18A)の構造:
を含み、
(viii)前記大腸菌(E.coli)O25抗原多糖が、式(O25B)の構造:
を含み、及び
(ix)前記大腸菌(E.coli)O75抗原多糖が、式(O75)の構造:
を含み、
各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である、[1]~[7]のいずれか一項に記載の組成物。
[9]
前記O75抗原多糖の濃度が、約8~約64μg/mL、好ましくは、約8~約50μg/mL、好ましくは、約12~約40μg/mL、好ましくは、約16~約32μg/mL、好ましくは、約28~約36μg/mL、好ましくは、約32μg/mLである、[1]~[8]のいずれか一項に記載の組成物。
[10]
前記組成物中に存在する大腸菌(E.coli)O抗原多糖が、O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6からなる、[1]~[9]のいずれか一項に記載の組成物。
[11]
キャリアタンパク質に共有結合的に連結された少なくとも1つの追加の大腸菌(E.coli)抗原多糖をさらに含み、好ましくは、前記少なくとも1つの追加の大腸菌(E.coli)抗原多糖が、式(O8):
α-D-Manp3Me-(1→[3)-β-D-Manp-(1→2)-α-D-Manp-(1→2)-α-D-Manp-(1→]n
を有するO8抗原多糖を含み、
nが、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である、[1]~[9]のいずれか一項に記載の組成物。
[12]
前記キャリアタンパク質が、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)の無毒化外毒素A(EPA)又はCRM 197 、好ましくは、EPAであり、好ましくは、前記キャリアタンパク質が、配列番号1のアミノ酸配列、例えば、配列番号2のアミノ酸配列を有するコンセンサス配列を有する1~20個、例えば、1~10個、又は2~4個のグリコシル化コンセンサス配列を含み、より好ましくは、前記キャリアタンパク質が、4個の前記グリコシル化コンセンサス配列を含み、最も好ましくは、各キャリアタンパク質が、配列番号3のアミノ酸配列を含むEPAである、[1]~[11]のいずれか一項に記載の組成物。
[13]
前記大腸菌(E.coli)抗原多糖が、バイオコンジュゲーション又は化学的コンジュゲーションによって前記キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、好ましくは、前記大腸菌(E.coli)抗原多糖が、バイオコンジュゲーションによって前記キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、好ましくは、前記多糖が、前記キャリアタンパク質中のグリコシル化部位におけるAsn残基に共有結合的に連結されている、[1]~[11]のいずれか一項に記載の組成物。
[14]
対象において大腸菌(E.coli)、好ましくは、腸管外病原性大腸菌(E.coli)(ExPEC)に対する免疫応答を誘導する方法であって、[1]~[13]のいずれか一項に記載の組成物を前記対象に投与することを含む方法。
[15]
対象において大腸菌(E.coli)、好ましくは、腸管外病原性大腸菌(E.coli)(ExPEC)に対する免疫応答を誘導する方法であって、前記対象に大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6抗原多糖の各々の有効量を投与することを含み、前記抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75及びO25抗原多糖の各々の前記有効量が、独立して、O1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々と比較して高い方法。
[16]
a)O75抗原多糖の前記有効量が、O1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々に対して独立して約1.5:1~約2.5:1、好ましくは、約2:1の重量比で投与されるか;又は
b)O75抗原多糖の前記有効量が、O1、O2、及び/又はO6抗原多糖に対して独立して約1.5:1~約4:1、好ましくは、約2:1の重量比で投与され、さらに、前記有効量のO75抗原多糖が、O25抗原多糖に対して1:1の重量比で投与される、[15]に記載の方法。
[17]
前記免疫応答が、前記対象において侵襲性ExPEC疾患の重症度を制限するか又は侵襲性ExPEC疾患を予防し、好ましくは、前記侵襲性ExPEC疾患が、敗血症及び/又は菌血症を含む、[14]~[16]のいずれか一項に記載の方法。
[18]
前記O1抗原がO1Aであり、前記O4がグルコシル化されており、前記O6抗原がO6Aであり、前記O18抗原がO18Aであり、及び前記O25抗原がO25Bであり、
好ましくは、前記O1A、O2、グルコシル化O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75抗原多糖が、表1に示されるとおりの式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造をそれぞれ含み、各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、
O75抗原多糖とO6抗原多糖の重量比が、約1.5:1~約4:1、より好ましくは、約2:1である、[15]~[17]のいずれか一項に記載の方法。
[19]
前記対象に投与される、大腸菌(E.coli)O抗原多糖が、
a)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6からなるか;又は
b)キャリアタンパク質にそれぞれ独立して共有結合的に連結された1~15種の追加の大腸菌(E.coli)O抗原多糖をさらに含む、[15]~[18]のいずれか一項に記載の方法。
[20]
前記対象が、大腸菌(E.coli)(好ましくは、ExPEC)感染、好ましくは、侵襲性ExPEC疾患を有するか又は有するリスクのあるヒトである、[14]~[19]のいずれか一項に記載の方法。
[21]
約8~16μg、好ましくは、約16μgの前記O75抗原多糖が、投与毎に投与される、[14]~[20]のいずれか一項に記載の方法。
[22]
O1:O2:O4:O6:O15:O16:O18:O25:O75の投与された大腸菌(E.coli)抗原多糖の前記有効量が、1:1:1:1:1:1:1:2:2の重量比で投与される、[14]~[21]のいずれか一項に記載の方法。
Claims (22)
- 大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6抗原多糖を含む組成物であって、前記抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75及びO25抗原多糖の各々の濃度が、独立して、O1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々の濃度と比較して高い、組成物。
- O75抗原多糖の濃度と、独立してO1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々の濃度との重量比が、約1.5:1~約2.5:1である、請求項1に記載の組成物。
- O75抗原多糖の濃度と、独立してO1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々の濃度との重量比が、約2:1である、請求項1又は2に記載の組成物。
- 大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6抗原多糖を含む組成物であって、前記抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75抗原多糖とO1、O2、及び/又はO6抗原多糖の濃度との重量比が、約1:5:1~約4:1、好ましくは、約2:1である組成物。
- O75抗原多糖の濃度と、O4、O15、O16及び/又はO18抗原多糖の濃度との重量比が、約1.5:1~約4:1、好ましくは、約2:1である、請求項4に記載の組成物。
- 前記組成物中のO75抗原多糖の濃度とO25抗原多糖の濃度との重量比が、約1:1である、請求項1~5のいずれか一項に記載の組成物。
- 大腸菌(E.coli)抗原多糖O1:O2:O4:O6:O15:O16:O18:O25:O75の濃度の重量比が、1:1:1:1:1:1:1:2:2である、請求項1~6のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記O1抗原がO1Aであり、前記O4がグルコシル化されており、前記O6抗原がO6Aであり、前記O18抗原がO18Aであり、及び前記O25抗原がO25Bであり、
(i)前記大腸菌(E.coli)O1抗原多糖が、式(O1A)の構造:
を含み、
(ii)前記大腸菌(E.coli)O2抗原多糖が、式(O2)の構造:
を含み、
(iii)前記大腸菌(E.coli)O4抗原多糖が、式(O4-Glc+)の構造:
を含み、
(iv)前記大腸菌(E.coli)O6抗原多糖が、式(O6A)の構造:
を含み、
(v)前記大腸菌(E.coli)O15抗原多糖が、式(O15)の構造:
[→2)-β-D-Galp-(1→3)-α-L-FucpNAc-(1→3)-β-D-GlcpNAc-(1→]n
を含み、
(vi)前記大腸菌(E.coli)O16抗原多糖が、式(O16)の構造:
を含み、
(vii)前記大腸菌(E.coli)O18抗原多糖が、式(O18A)の構造:
を含み、
(viii)前記大腸菌(E.coli)O25抗原多糖が、式(O25B)の構造:
を含み、及び
(ix)前記大腸菌(E.coli)O75抗原多糖が、式(O75)の構造:
を含み、
各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である、請求項1~7のいずれか一項に記載の組成物。 - 前記O75抗原多糖の濃度が、約8~約64μg/mL、好ましくは、約8~約50μg/mL、好ましくは、約12~約40μg/mL、好ましくは、約16~約32μg/mL、好ましくは、約28~約36μg/mL、好ましくは、約32μg/mLである、請求項1~8のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物中に存在する大腸菌(E.coli)O抗原多糖が、O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6からなる、請求項1~9のいずれか一項に記載の組成物。
- キャリアタンパク質に共有結合的に連結された少なくとも1つの追加の大腸菌(E.coli)抗原多糖をさらに含み、好ましくは、前記少なくとも1つの追加の大腸菌(E.coli)抗原多糖が、式(O8):
α-D-Manp3Me-(1→[3)-β-D-Manp-(1→2)-α-D-Manp-(1→2)-α-D-Manp-(1→]n
を有するO8抗原多糖を含み、
nが、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数である、請求項1~9のいずれか一項に記載の組成物。 - 前記キャリアタンパク質が、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)の無毒化外毒素A(EPA)又はCRM197、好ましくは、EPAであり、好ましくは、前記キャリアタンパク質が、配列番号1のアミノ酸配列、例えば、配列番号2のアミノ酸配列を有するコンセンサス配列を有する1~20個、例えば、1~10個、又は2~4個のグリコシル化コンセンサス配列を含み、より好ましくは、前記キャリアタンパク質が、4個の前記グリコシル化コンセンサス配列を含み、最も好ましくは、各キャリアタンパク質が、配列番号3のアミノ酸配列を含むEPAである、請求項1~11のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記大腸菌(E.coli)抗原多糖が、バイオコンジュゲーション又は化学的コンジュゲーションによって前記キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、好ましくは、前記大腸菌(E.coli)抗原多糖が、バイオコンジュゲーションによって前記キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、好ましくは、前記多糖が、前記キャリアタンパク質中のグリコシル化部位におけるAsn残基に共有結合的に連結されている、請求項1~11のいずれか一項に記載の組成物。
- 対象において大腸菌(E.coli)、好ましくは、腸管外病原性大腸菌(E.coli)(ExPEC)に対する免疫応答を誘導する方法であって、請求項1~13のいずれか一項に記載の組成物を前記対象に投与することを含む方法。
- 対象において大腸菌(E.coli)、好ましくは、腸管外病原性大腸菌(E.coli)(ExPEC)に対する免疫応答を誘導する方法であって、前記対象に大腸菌(E.coli)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6抗原多糖の各々の有効量を投与することを含み、前記抗原多糖の各々が、独立して、キャリアタンパク質に共有結合的に連結され、O75及びO25抗原多糖の各々の前記有効量が、独立して、O1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々と比較して高い方法。
- a)O75抗原多糖の前記有効量が、O1、O2、O4、O15、O16、O18及びO6抗原多糖の各々に対して独立して約1.5:1~約2.5:1、好ましくは、約2:1の重量比で投与されるか;又は
b)O75抗原多糖の前記有効量が、O1、O2、及び/又はO6抗原多糖に対して独立して約1.5:1~約4:1、好ましくは、約2:1の重量比で投与され、さらに、前記有効量のO75抗原多糖が、O25抗原多糖に対して1:1の重量比で投与される、請求項15に記載の方法。 - 前記免疫応答が、前記対象において侵襲性ExPEC疾患の重症度を制限するか又は侵襲性ExPEC疾患を予防し、好ましくは、前記侵襲性ExPEC疾患が、敗血症及び/又は菌血症を含む、請求項14~16のいずれか一項に記載の方法。
- 前記O1抗原がO1Aであり、前記O4がグルコシル化されており、前記O6抗原がO6Aであり、前記O18抗原がO18Aであり、及び前記O25抗原がO25Bであり、
好ましくは、前記O1A、O2、グルコシル化O4、O6A、O15、O16、O18A、O25B、及びO75抗原多糖が、表1に示されるとおりの式(O1A)、(O2)、(O4-Glc+)、(O6A)、(O15)、(O16)、(O18A)、(O25B)、及び(O75)の構造をそれぞれ含み、各nが、独立して、1~100、好ましくは、3~50、例えば、5~40、より好ましくは、5~30、例えば、7~25、例えば、10~20の整数であり、
O75抗原多糖とO6抗原多糖の重量比が、約1.5:1~約4:1、より好ましくは、約2:1である、請求項15~17のいずれか一項に記載の方法。 - 前記対象に投与される、大腸菌(E.coli)O抗原多糖が、
a)O1、O2、O4、O15、O16、O18、O25、O75及びO6からなるか;又は
b)キャリアタンパク質にそれぞれ独立して共有結合的に連結された1~15種の追加の大腸菌(E.coli)O抗原多糖をさらに含む、請求項15~18のいずれか一項に記載の方法。 - 前記対象が、大腸菌(E.coli)(好ましくは、ExPEC)感染、好ましくは、侵襲性ExPEC疾患を有するか又は有するリスクのあるヒトである、請求項14~19のいずれか一項に記載の方法。
- 約8~16μg、好ましくは、約16μgの前記O75抗原多糖が、投与毎に投与される、請求項14~20のいずれか一項に記載の方法。
- O1:O2:O4:O6:O15:O16:O18:O25:O75の投与された大腸菌(E.coli)抗原多糖の前記有効量が、1:1:1:1:1:1:1:2:2の重量比で投与される、請求項14~21のいずれか一項に記載の方法。
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