JP2022534403A - ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチド及びそれを用いたｌ－スレオニン生産方法 - Google Patents

Abstract

本出願は、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）活性が弱化した変異型ポリペプチド及びこれを用いてＬ－スレオニンを生産する方法に関する。

Description

本出願は、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）活性が弱化した変異型ポリペプチド及びそれを用いてＬ－スレオニン（ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を生産する方法に関する。

コリネバクテリウム属（ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）微生物、その例としてコリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）は、Ｌ－アミノ酸及びその他有用物質の生産に多用されているグラム陽性の微生物である。上記Ｌ－アミノ酸及びその他有用物質を生産するために、高効率生産の微生物及び発酵工程技術の開発のための多様な研究が行われている。例えば、Ｌ－リシン生合成に関与する酵素をコードする遺伝子の発現を増加したり、またはＬ－リシン生合成に不要な遺伝子を除去するような目的物質の特異的アプローチ方法が主に用いられている（米国登録特許第８０４８６５０号）。

一方、Ｌ－アミノ酸中、Ｌ－リシン、Ｌ－トレオニン、Ｌ－メチオニン、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－グリシンはアスパルテート由来のアミノ酸であり、アスパルテートからＬ－リシン及びその他アスパルテート由来のアミノ酸への生合成分岐（ｂｒａｎｃｈ）に作用する共通前駆体であるアスパルチルセミアルデヒド（Ａｓｐａｒｔｙｌ ｓｅｍｉａｌｄｅｈｙｄｅ）をホモセリン（ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ）に効果的に転換させることがＬ－スレオニンの合成水準に影響を及ぼし得る。

ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）は、微生物のリシン生合成経路に作用する酵素であり、微生物のスレオニン生合成とリシン生合成の共通した前駆体であるアスパルチルセミアルデヒド（Ａｓｐａｒｔｙｌ ｓｅｍｉａｌｄｅｈｙｄｅ）からリシンを生合成するための経路に送るにおいてジヒドロジピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）の直後に作用する重要な酵素である。

リシン生合成の前駆体であるジアミノピメリン酸（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ）の場合、微生物の細胞壁を構成するペプチドグリカン（ｐｅｐｔｉｄｏｇｌｙｃａｎ）の形成に用いられるために、ジアミノピメリン酸（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ）生成経路中に作用するジヒドロジピコリン酸レダクターゼをコードするｄａｐＢ遺伝子を欠損時に微生物の細胞壁の合成が阻害されるため、菌株の生長が阻害される。

従って、Ｌ－スレオニン生産能の向上のためには、Ｌ－リシンの生合成経路に作用する遺伝子を欠損するよりは、適切な水準に減らすためのアプローチが依然として必要な実情である。

米国特許第８０４８６５０号明細書 特開２００５－２２７９７７号公報 韓国特許第２００９－００９４４３３号公報 韓国登録特許第１０－０１５９８１２号公報

Ｊ． Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９ Ｆ．Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，ｓｕｐｒａ，９．５０－９．５１，１１．７－１１．８ ＴＵＲＢＡ Ｅ，ｅｔ ａｌ，Ａｇｒｉｃ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ５３：２２６９～２２７１，１９８９ Ｖａｎ ｄｅｒ Ｒｅｓｔ ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ． Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ． Ｂｉｏｔｅｃｎｏｌ． ５２：５４１－５４５，１９９９ Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ． ２００４ Ａｐｒ ２３；３３８（２）：３２９－３９ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍｕｎ． ２０１８ Ｊａｎ ８；４９５（２）：１８１５－１８２１

このような背景の下に、本発明者らは、菌株の成長速度の遅延なしにＬ－リシンの生産量は減少し、かつＬ－スレオニン生産量は高めるために鋭意努力・研究した結果、特定の水準にジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を弱化させた新規の変異型ポリペプチドを用いる場合、微生物の成長が維持されるだけでなく、Ｌ－スレオニンの生産量が増加することを確認することにより本出願を完成した。

本出願の一つの目的は、コリネバクテリウム・グルタミカム由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドを提供することにある。

本出願のもう一つの目的は、上記変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを提供することにある。
本出願のもう一つの目的は、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドを含むコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物を提供することにある。

本出願の更に他の一つの目的は、上記微生物を用いたＬ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を生産する方法を提供することにある。
本出願の更に他の一つの目的は、Ｌ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を生産するための上記微生物の使用を提供することにある。

本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を弱化させた新規の変異型ポリペプチドを用いる場合、野生型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有する菌株比成長速度の遅延なしにリシンの生産量を減少させ、スレオニンの生産量を増加させることができ、スレオニンの大量生産に広く活用され得るものである。

これを具体的に説明すると、次の通りである。一方、本出願で開示されたそれぞれの説明及び実施形態は、それぞれの異なる説明及び実施形態にも適用され得る。即ち、本出願で開示された多様な要素の全ての組合わせが本出願の範疇に属する。また、下記の具体的な記述により本出願の範疇が制限されるとは見られない。

上記目的を達成するための本出願の一つの様態は、コリネバクテリウム・グルタミカム由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドを提供する。

具体的には、上記コリネバクテリウム・グルタミカム由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドは、コリネバクテリウム・グルタミカム由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼの配列と同一の配列を変異対象の基準配列とし、一つ以上のアミノ酸置換を含むジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有するポリペプチドを提供する。さらに具体的には、上記アミノ酸の置換は、１３番目のアミノ酸が他のアミノ酸で置換されたことを含むジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを提供する。

上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドは、コリネバクテリウム・グルタミカム由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼの配列と同一の配列であってもよい。その例として、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸がアスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）またはグルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）で置換されたものである、変異型ポリペプチドであってもよい。その例として、上記配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性または相同性を有するアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸がアスパラギンで置換された、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有する変異型ポリペプチドを提供する。

その時、上記９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列は、配列番号５１からなるものであってもよい。また、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドは、配列番号３または配列番号５３のアミノ酸配列からなってもよい。

本出願において「ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ，Ｅｃ １．３．１．２６）」は微生物においてアスパルテート由来のアミノ酸であるＬ－メチオニン、Ｌ－スレオニン、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－リシン生合成の共通中間物質であるアスパルチルセミアルデヒド（Ａｓｐａｒｔｙｌ ｓｅｍｉａｌｄｅｈｙｄｅ）をジヒドロジピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）酵素を通じて２，３－ジヒドロジピコリン酸（２，３－ｄｉｈｙｄｅｏｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ）に転換し、これをＮＡＤＰＨを用いてリシン生合成の前駆体であるＰｉｐｅｒｉｄｉｎｅ ２，６－ｄｉｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅに転換してリシン生合成を触媒する酵素を意味する。

本出願においてジヒドロジピコリン酸レダクターゼは、上記転換活性を有するポリペプチドであれば、由来に関係なく含まれてもよく、任意の有機体（植物及び微生物など）に由来する酵素を用いることができる。具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼは、コリネバクテリウム属微生物由来の配列と同一であり、より具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）由来の配列と同一であってもよい。

本出願においてコリネバクテリウム・グルタミカム由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼは、上記微生物由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼと同一の配列も含まれることを意味する。

例えば、配列番号１またはこれと９８％以上の同一性または９９％以上の同一性を有する配列であってもよいが、これに限定するものではない。このような配列は、その例として、配列番号５１のアミノ酸配列を含むポリペプチドであってもよい。

上記配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列を含むポリペプチドは、配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列を有するポリペプチド、配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列で構成されるポリペプチドと混用されてもよい。

本出願において、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼを確保する方法は、当該分野においてよく知られている多様な方法が適用可能である。その方法の例としては、ポリペプチド発現に通常広く用いられるコリネバクテリウム属微生物でポリペプチドを高効率で確保できるようにコドン最適化が含まれた遺伝子合成技術、そして微生物の大量ゲノム情報を基盤に生物情報学的方法により有用酵素リソースのスクリーニング方法を通じて確保することができ、これに制限されるものではない。

本出願における「ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチド」とは、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドのアミノ酸配列、例えば、配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列、前後への無意味な配列追加または自然に発生し得る突然変異、あるいはその潜在性突然変異（ｓｉｌｅｎｔ ｍｕｔａｔｉｏｎ）を除くものではなく、上記配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列を含むポリペプチドと互いに同一または対応する活性を有する場合であれば、本願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドに該当する。

具体的な例として、本願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドは、配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列またはこれと少なくとも６０％、７０％、８０％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９７％、９８％または９９％の相同性または同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドであってもよい。また、このような相同性または同一性を有し、上記ポリペプチドに対応する生物学的活性を示すアミノ酸配列であれば、１３番目の位置のアミノ酸配列以外に、一部の配列が欠失、変形、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドも本出願の範囲に含まれることは自明である。

例えば、本出願におけるジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドは、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼであってもよい。より具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼのアミノ酸配列（配列番号１）またはコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３８６９由来のジヒドロジピコリン酸レダクターゼのアミノ酸配列（配列番号５１）であってもよい。上記配列を有するジヒドロジピコリン酸レダクターゼは、互いに相同性または同一性を示し、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼとして対応する効能を示すため、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドに含まれることは自明である。

上記「相同性」または「同一性（ｉｄｅｎｔｉｔｙ）」とは、２個の与えられたポリヌクレオチドまたはポリペプチドモイエティ（ｍｏｉｅｔｙ）間の同一性のパーセントをいう。与えられたアミノ酸配列または塩基配列と一致する程度を意味し、百分率で表されることができる。用語、相同性及び同一性は、しばしば相互交換的に用いられ得る。本明細書において、与えられたアミノ酸配列または塩基配列と同一または類似の活性を有するその相同性配列が「％相同性」で表される。一つのモイエティからもう一つのモイエティまでの配列間の相同性は知られている当該技術により決定され得る。例えば、点数（ｓｃｏｒｅ）、同一性（ｉｄｅｎｔｉｔｙ）及び類似度（ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ）などのパラメータ（ｐａｒａｍｅｔｅｒ）を計算する標準ソフトウェア、具体的には、ＢＬＡＳＴ２．０を用いたり、定義されたストリンジェントな条件下でサザンハイブリダイゼーション実験により配列を比較することにより確認することができ、定義される適切なハイブリダイゼーション条件は当該技術範囲内であり、当業者においてよく知られている方法（例えば、Ｊ． Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９； Ｆ．Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ）で決定され得る。

本出願において用語、「変異」、「変異型」または「変異体」とは、遺伝的または非遺伝的に一つの安定した表現型的変化を示す培養物や個体を意味する。具体的には、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドに対応するアミノ酸配列上において一つ以上のアミノ酸が変異され、その活性が野生型、天然型または非変異型と比較して弱化した変異体を意味してもよい。

本出願においてジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドは、「変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ」、「変異されたジヒドロジピコリン酸レダクターゼ」、「ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異体」、「変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ」または「ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異体」で混用され得る。一方、このような変異体は、非自然的な（ｎｏｎ－ｎａｔｕｒａｌｌｙ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ）ものであってもよい。

本出願において変異は、一般に、酵素を改良するための方法として当業界の知られている公知となった方法が制限なく用いられ、これには、合理的設計（ｒａｔｉｏｎａｌ ｄｅｓｉｇｎ）と誘導進化（ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ）などの戦略がある。例えば、合理的設計戦略には特定位置のアミノ酸を部位指定突然変異導入（ｓｉｔｅ－ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓまたはｓｉｔｅ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）する方法などがあり、誘導進化戦略には、ランダム変異（ｒａｎｄｏｍ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）を引き起こす方法などがある。また、自然な突然変異により外部の操作なしに突然変異されたものであってもよい。具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドは、分離されたものであるか、組換えポリペプチドであってもよく、非自然的に発生したものであってもよい。しかし、これに制限されるものではない。

本出願の「ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチド」は、一つ以上のアミノ酸置換を含むジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有するポリペプチドであり、上記アミノ酸の置換は１３番目のアミノ酸が他のアミノ酸で置換されたことを含むジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを提供する。

「他のアミノ酸で置換」とは、置換前のアミノ酸と異なるアミノ酸で置換されるものであれば制限されない。具体的には、リシン、ヒスチジン、グルタミン酸、アスパラギン酸、グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、トリプトファン、プロリン、セリン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン及びグルタミンのいずれか一つのアミノ酸で置換されたものであってもよい。より具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドは、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸に対応する位置のアミノ酸が極性アミノ酸または塩基性アミノ酸に置換されたものであってもよい。

より具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）変異型ポリペプチドは、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸に対応する位置のアミノ酸がアスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）またはグルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）で置換されたものである、変異型ポリペプチドであってもよい。

また、上記置換されたアミノ酸残基には、天然アミノ酸だけでなく、非天然アミノ酸も含まれ得る。上記非天然アミノ酸は、例えば、Ｄ－アミノ酸、ホモ（Ｈｏｍｏ）－アミノ酸、ベータ－ホモ（Ｂｅｔａ－ｈｏｍｏ）－アミノ酸、Ｎ－メチルアミノ酸、アルファ－メチルアミノ酸、非通常アミノ酸（例えば、シトルリンまたはナフチルアラニン等）であってもよいが、これに制限されない。一方、本出願において「特定アミノ酸が置換された」と表現する場合、他のアミノ酸で置換されたと特に表記しなくても置換前のアミノ酸と異なるアミノ酸で置換されることであることは自明である。

一具体例として、上記配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸に対応する位置のアミノ酸がアスパラギンで置換された、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有する変異型ポリペプチドを提供することができる。この時、上記９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列は、配列番号５１からなるものであってもよい。

本出願において用語「対応する（ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇｔｏ）」とは、タンパク質またはペプチドで列挙される位置のアミノ酸残基であるか、またはタンパク質またはペプチドで列挙される残基と類似、同一、または相同のアミノ酸残基を指す。本出願で用いられた「対応領域」とは、一般に、関連タンパク質またはレファレンスタンパク質における類似の位置を指す。

本出願において、本出願に用いられるポリペプチド内のアミノ酸残基の位置に特定ナンバリングが用いられる。例えば、比較しようとする対象ポリペプチドと本出願のポリペプチド配列を整列させることにより、本出願のポリペプチドのアミノ酸残基の位置に対応する位置に対して再ナンバリングすることが可能である。

本出願で提供するジヒドロジピコリン酸レダクターゼの変異体は、上記で説明したジヒドロジピコリン酸レダクターゼにおいて特異的位置のアミノ酸が置換され、Ｌ－スレオニンの生産能が変異前のポリペプチド比増加することができる。上記変異型ポリペプチドは配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸に対応する位置でアスパラギンへの置換を含め、配列番号１のアミノ酸配列または配列番号５１のアミノ酸配列と少なくとも８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、または９９％以上、１００％未満の配列相同性を有し、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するものであってもよい。

上記変異型ポリペプチドのジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性は、野生型である配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有するジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性より弱化したものであってもよい。

具体的な例として、本出願の変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼは、配列番号３または配列番号５３のアミノ酸配列またはこれと相同性または同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドであってもよい。また、このような相同性または同一性を有し、上記ポリペプチドに対応する生物学的活性を示すアミノ酸配列であれば、１３番目のアミノ酸に対応する位置のアミノ酸以外に、一部のアミノ酸が欠失、変形、置換または付加されたアミノ酸配列を有するポリペプチドも本出願の範囲に含まれることは自明である。

また、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドは、これを含む微生物内でジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有する野生型もしくは天然型ポリペプチドまたは、非変形ポリペプチドとは異なり、最終産物であるリシンを生成する活性が弱化した特徴を有するものであってもよい。

本出願において「弱化」とは、タンパク質またはポリペプチドの機能が低下することを意味し、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性が弱化することによりスレオニン生合成とリシン生合成の共通した前駆体であるアスパルチルセミアルデヒドからリシンを生合成するための経路に送る機能が低下し、結果的に最終産物であるリシンの生産能力は減少する一方、スレオニンの生産能力は増加してスレオニン及びスレオニン由来のアミノ酸の生産性を高めることができる。上記スレオニン由来のアミノ酸は、スレオニンを前駆体にして生合成できるアミノ酸を意味し、スレオニンから生合成され得る物質であれば、制限されない。

また、本出願において上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼは、機能が弱化するだけで阻害されるものではないため、リシン生合成前駆体であるジアミノピメリン酸を生産するには問題はなく、微生物の細胞壁の合成は阻害されず、菌株の生長には問題はないことを特徴とする。即ち、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼをコードする遺伝子（ｄａｐＢ）を欠損することではなく、１３番目のアミノ酸が他のアミノ酸で置換される変異により適切な水準に活性を弱化させることができる。

本出願のもう一つの様態は、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを提供する。
上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、変異型ポリペプチドについては上記説明した通りである。

本出願において用語、「ポリヌクレオチド」とは、ヌクレオチド単量体（ｍｏｎｏｍｅｒ）が共有結合により長く鎖状につながったヌクレオチドの重合体（ｐｏｌｙｍｅｒ）で一定の長さ以上のＤＮＡまたはＲＮＡ鎖を含む意味を有し、この基本構成単位であるヌクレオチドは天然ヌクレオチドだけでなく、糖または塩基部位が変形された類似体（ａｎａｌｏｇｕｅ）も含む。本出願において上記ポリヌクレオチドは、細胞から分離されたポリヌクレオチドまたは人為的に合成されたポリヌクレオチドであってもよいが、これに制限されるものではない。

具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドであってもよい。本出願の変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有する変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列であれば、制限なく含まれてもよい。一具体例として、本出願の変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、配列番号４または配列番号５４の塩基配列またはこれと少なくとも６０％、７０％、８０％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９７％、９８％または９９％の相同性または同一性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチドであってもよい。また、このような相同性または同一性を有し、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼポリペプチドに対応する生物学的活性を示すアミノ酸配列をコードする塩基配列であれば、１３番目のアミノ酸をコードする塩基配列以外の一部の配列が欠失、変形、置換または付加された塩基配列を有するポリヌクレオチドも本出願の範囲に含まれることは自明である。

本出願においてジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異体のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドは、具体的には、コリネバクテリウム属微生物由来であってもよく、より具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカム由来であってもよい。しかし、これに制限されるものではない。

遺伝暗号の縮退性（ｇｅｎｅｔｉｃ ｃｏｄｅ ｄｅｇｅｎｅｒａｃｙ）に起因して同一アミノ酸配列をコードする塩基配列及びこの変異体も本出願に含まれてもよい。具体的には、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドはコドンの縮退性（ｄｅｇｅｎｅｒａｃｙ）により上記ポリペプチドを発現させようとする生物で好まれるコドンを考慮し、コーディング領域から発現されるポリペプチドのアミノ酸配列を変化させない範囲内でコーディング領域に多様な変形がなされてジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有する限り、制限なく含まれてもよい。

または公知の遺伝子配列から製造され得るプローブ、例えば、上記ポリヌクレオチド配列の全体または一部に対する相補配列とストリンジェントな条件下にハイブリッド化し、上記配列番号のアミノ酸配列からなるポリペプチドの活性を有するポリペプチドをコードする配列であれば、制限なく含まれ得る。

上記「ストリンジェントな条件」とは、ポリヌクレオチド間の特異的ハイブリダイゼーションを可能にする条件を意味する。このような条件は、当業者においてよく知られている方法である文献（例えば、Ｊ． Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９； Ｆ．Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ）に具体的に記載されている。例えば、相同性が高い遺伝子同士、８０％、９０％以上、より具体的には９５％以上、さらに具体的には９７％以上、特に具体的には９９％以上の相同性を有する遺伝子同士でハイブリッド化し、それより相同性が低い遺伝子同士でハイブリッド化しない条件、または通常のサザンハイブリッド化の洗浄条件である６０℃、１×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳ、具体的には６０℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳ、より具体的には、６８℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳに相当する塩濃度及び温度で、１回、具体的には２回～３回洗浄する条件を列挙することができる。ハイブリダイゼーションは、たとえハイブリダイゼーションの厳格さにより塩基間のミスマッチ（ｍｉｓｍａｔｃｈ）が可能であっても、２個の核酸が相補的配列を有することを要求する。

本出願において用語、「相補的」とは、互いにハイブリダイゼーションが可能なヌクレオチド塩基間の関係を記述するのに用いられる。例えば、ＤＮＡについて、アデノシンはチミンに相補的であり、シトシンはグアニンに相補的である。従って、本出願は、また、実質的に類似のヌクレオチド配列だけでなく、全体配列に相補的な単離されたヌクレオチド断片を含んでもよい。具体的には、相同性を有するポリヌクレオチドは５５℃のＴｍ値でハイブリダイゼーション段階を含むハイブリダイゼーション条件を用い、上述した条件を用いて探知することができる。また、上記Ｔｍ値は６０℃、６３℃または６５℃であってもよいが、これに制限されるものではなく、その目的に応じて当業者により適宜調節され得る。ポリヌクレオチドをハイブリダイズする適切な厳格さは、ポリヌクレオチドの長さ及び相補性程度に依存し、変数は該当技術分野においてよく知られている（Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，ｓｕｐｒａ，９．５０－９．５１，１１．７－１１．８を参照）。

本出願のもう一つの様態は、上記変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクターである。
本出願において用語、「ベクター」とは、適した宿主内で目的ポリペプチドを発現させるように適した調節配列に作動可能に連結された上記目的ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの塩基配列を含有するＤＮＡ製造物を意味する。上記調節配列は、転写を開始できるプロモーター、そのような転写を調節するための任意のオペレータ配列、適したｍＲＮＡリボソーム結合部位をコードする配列、及び転写及び解読の終結を調節する配列を含んでもよい。ベクターは、適当な宿主細胞内に形質転換された後、宿主ゲノムと関係なく複製されたり機能することができ、ゲノムそのものに統合されることができる。

本出願で用いられるベクターは、宿主細胞内で複製可能であれば、特に限定されず、当業界において知られた任意のベクターを用いることができる。通常用いられるベクターの例としては、天然状態であるか、組み換えられた状態のプラスミド、コスミド、ウイルス及びバクテリオファージを挙げることができる。例えば、ファージべクターまたはコスミドベクターとしてｐＷＥ１５、Ｍ１３、ＭＢＬ３、ＭＢＬ４、ＩＸＩＩ、ＡＳＨＩＩ、ＡＰＩＩ、ｔ１０、ｔ１１、Ｃｈａｒｏｎ４Ａ及びＣｈａｒｏｎ２１Ａなどを用いることができ、プラスミドベクターとしてｐＢＲ系、ｐＵＣ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ系、ｐＧＥＭ系、ｐＴＺ系、ｐＣＬ系及びｐＥＴ系などを用いることができる。具体的には ｐＤＺ、ｐＡＣＹＣ１７７、ｐＡＣＹＣ１８４、ｐＣＬ、ｐＥＣＣＧ１１７、ｐＵＣ１９、ｐＢＲ３２２、ｐＭＷ１１８、ｐＣＣ１ＢＡＣベクターなどを用いることができるが、これに制限されない。

本出願で使用可能なベクターは、特に制限されるものではなく、公知となった発現ベクターを用いることができる。また、細胞内染色体挿入用ベクターを通じて染色体内に目的ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを挿入させることができる。上記ポリヌクレオチドの染色体内への挿入は、当業界において知られた任意の方法、例えば、相同組換えにより行われ得るが、これに限定されない。上記染色体挿入如何を確認するための選別マーカー（ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｍａｒｋｅｒ）をさらに含んでもよい。選別マーカーは、ベクターで形質転換された細胞を選別、即ち、目的核酸分子の挿入如何を確認するためのものであり、薬物耐性、栄養要求性、細胞毒性剤に対する耐性または表面タンパク質の発現のような選択可能表現型を付与するマーカーが用いられる。選択剤（ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ａｇｅｎｔ）が処理された環境では選別マーカーを発現する細胞のみ生存したり異なる表現形質を示すため、形質転換された細胞を選別することができる。

本出願の更に他の一つの様態は、上記ベクターが導入された形質転換体である。
本出願において用語「形質転換」とは、標的ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含むベクターを宿主細胞内に導入して宿主細胞内で上記ポリヌクレオチドがコードするポリペプチドが発現できるようにすることを意味する。形質転換されたポリヌクレオチドは宿主細胞内で発現できさえすれば、宿主細胞の染色体内に挿入されて位置したり染色体外に位置したりに関係なく、これらをいずれも含んでもよい。また、上記ポリヌクレオチドは、標的ポリペプチドをコードするＤＮＡまたはＲＮＡを含む。上記ポリヌクレオチドは、宿主細胞内に導入されて発現できるものであれば、如何なる形態で導入されても問題ない。例えば、上記ポリヌクレオチドは、独自に発現されるのに必要な全ての要素を含む遺伝子構造体である発現カセット（ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｃａｓｓｅｔｔｅ）の形態で宿主細胞に導入されてもよい。上記発現カセットは、通常、上記ポリヌクレオチドに作動可能に連結されているプロモーター（ｐｒｏｍｏｔｅｒ）、転写終結信号、リボソーム結合部位及び翻訳終結信号を含んでもよい。上記発現カセットは、自体複製が可能な発現ベクターの形態であってもよい。また、上記ポリヌクレオチドは、それ自体の形態で宿主細胞に導入されて宿主細胞で発現に必要な配列と作動可能に連結されているものであってもよく、これに限定されない。上記形質転換する方法は、核酸を細胞内に導入する如何なる方法も含まれ、宿主細胞により当分野において公知となった通り、適した標準技術を選択して行うことができる。例えば、電気穿孔法（ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ）、リン酸カルシウム（Ｃａ（Ｈ_２ＰＯ_４）_２、ＣａＨＰＯ_４またはＣａ_３（ＰＯ_４）_２）沈殿、塩化カルシウム（ＣａＣｌ_２）沈殿、マイクロインジェクション法（ｍｉｃｒｏｉｎｊｅｃｔｉｏｎ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）法、ＤＥＡＥ－デキストラン法、カチオンリポソーム法、及び硝酸リチウム－ＤＭＳＯ法などがあるが、これに制限されない。

また、上記において用語「作動可能に連結」されたとは、本出願の目的ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの転写を開始及び媒介させるプロモーター配列と上記ポリヌクレオチド配列が機能的に連結されていることを意味する。作動可能な連結は、当業界の公知となった遺伝子組換え技術を用いて製造することができ、部位特異的ＤＮＡ切断及び連結は、当業界の切断及び連結酵素などを用いて製作できるが、これに制限されない。

本出願の更に他の一つの様態は、変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼを含む微生物を提供する。具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを含む、Ｌ－スレオニンを生産するコリネバクテリウム属（ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ ｏｆ Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）微生物を提供する。

上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、変異型ポリペプチドは、上記説明した通りである。
本出願において用語、「微生物」とは、野生型微生物や、自然なまたは人為的に遺伝的変形が起こった微生物をいずれも含み、外部遺伝子が挿入されたり内在的遺伝子の活性が強化されたり弱化されるなどの原因により特定機序が弱化されたり強化された微生物をいずれも含む概念である。

本出願において用語「スレオニン」または「Ｌ－スレオニン」は混用されてもよく、「リシン」または「Ｌ－リシン」も混用されてもよい。
具体的には、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを含む微生物は、自然にＬ－アミノ酸生産能を有している微生物またはＬ－アミノ酸の生産能がない親株にＬ－アミノ酸の生産能が付与された微生物を意味する。具体的には、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼを含む微生物は、配列番号１または配列番号５１のアミノ酸配列で１３番目のアミノ酸がアスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）またはグルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）で置換された変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼを発現する微生物であってもよく、一具体例として、上記アミノ酸配列で１３番のアミノ酸であるアルギニンがアスパラギンで置換された変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼを発現する微生物であってもよいが、これに制限されない。

上記微生物は、１３番目のアミノ酸が置換されたジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを含むことにより生長に妨害されず、リシンの生産量は減少しながらスレオニンの生産量は増加させることを特徴とする。

上記変異位置によりジヒドロジピコリン酸レダクターゼの酵素活性が弱化し、菌株の成長速度の遅延なしにもリシンの生産量減少及びスレオニン生産量増加をもたらすことができる。

本出願の変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼを含む微生物は、野生型または非変形ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を有するポリペプチドを含む微生物に比べてリシンの生産能が減少し、スレオニンの生産能が向上するため、これら微生物からスレオニンを高収率で得ることができる。

本出願において上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを含む微生物は、その種類が特に制限されないが、エンテロバクター（Ｅｎｔｅｒｂａｃｔｅｒ）属、エシェリキア（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）属、エルウィニア（Ｅｒｗｉｎｉａ）属、セラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）属、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属、プロビデンシア（Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ）属、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属及びブレビバクテリウム（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属する微生物であってもよい。より具体的には、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属に属する微生物であってもよい。

本出願において「コリネバクテリウム属微生物」は、具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅｓ）、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌａｃｔｏｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）、ブレビバクテリウム・フラバム（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｌａｖｕｍ）、コリネバクテリウム・テルモアミノゲネス（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｈｅｒｍｏａｍｉｎｏｇｅｎｅｓ）、コリネバクテリウム・エフィシエンス（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｅｆｆｉｃｉｅｎｓ）などであるが、必ずしもこれに限定されるものではない。一具体例では、本出願においてコリネバクテリウム属の微生物は、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）であってもよい。

上記微生物は、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含み、または変異型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼをコードするポリヌクレオチドを含むベクターが導入された微生物であってもよい。具体的には、上記導入は形質転換により行われ得るが、これに制限されず、本出願の目的上、上記宿主細胞または微生物は、上記変異型ポリペプチドを含みリシンまたはスレオニンまたは上記アミノ酸であるリシンまたはスレオニン由来のアミノ酸を生産できる微生物であればいずれも可能である。

上記コリネバクテリウム属微生物は、具体的には、上記Ｌ－スレオニンの生合成経路を強化させるために、例えば、スレオニン合成酵素をコードするｔｈｒＣ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ｐｈｏｓｐｈｏｅｎｏｌｐｙｒｕｖａｔｅ ｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ）をコードするｐｐｃ遺伝子、ブドウ糖流入に関与するｇａｌＰ遺伝子、リシン感受性アスパルトキナーゼ３（ｌｙｓｉｎｅ－ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ａｓｐａｒｔｏｋｉｎａｓｅ ３）をコードするｌｙｓＣ遺伝子、ホモセリン脱水素酵素（ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）をコードするｈｏｍ遺伝子またはオキサロ酢酸（Ｏｘａｌｏａｃｅｔａｔｅ）ｐｏｏｌの増加を誘導するｐｙｃ遺伝子などの発現は、微生物内で強化または増加され得る。

上記Ｌ－スレオニンに対するフィードバック阻害を解除させるために、例えば、１ｙｓＣ遺伝子、ｈｏｍ遺伝子または、アスパルトキナーゼ及びホモセリン脱水素酵素１の二官能性を有する（Ｂｉｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｓｐａｒｔｏｋｉｎａｓｅ／ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ １）ｔｈｒＡ遺伝子などに遺伝子変異を導入することができる。

上記Ｌ－スレオニンの生合成経路を弱化させる遺伝子を不活性化させるために、例えば、Ｌ－スレオニン生合成中間体であるオキサロ酢酸（ＯＡＡ）をホスホエノールピルビン酸（ＰＥＰ）に転換するのに関与するｐｃｋＡ遺伝子、１ｙｓＣ遺伝子を抑制するｔｙｒＲ遺伝子、ブドウ糖の流入に関与するｇａｌＰ遺伝子の発現を抑制するｇａｌＲ遺伝子またはＤＮＡ結合転写二重調節因子（ＤＮＡ－ｂｉｎｄｉｎｇ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ ｄｕａｌ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ）であるｍｃｂＲ遺伝子などの発現は、微生物内で弱化または不活性化され得る。

上記Ｌ－スレオニンオペロンの活性を増加させるために、アスパルトキナーゼ（ａｓｐａｒｔｏｋｉｎａｓｅ）、ホモセリンデヒドロゲナーゼ（ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）、ホモセリンキナーゼ（ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ ｋｉｎａｓｅ）及びスレオニンシンターゼ（ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）をコードする遺伝子で構成されたスレオニンオペロン（日本公開特許第２００５－２２７９７７号）を含むプラスミドまたは大腸菌由来のスレオニンオペロンなどを微生物に導入し（ＴＵＲＢＡ Ｅ，ｅｔ ａｌ，Ａｇｒｉｃ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ５３：２２６９～２２７１，１９８９）、微生物内でスレオニンオペロンの発現を増加させることができる。

また、Ｌ－スレオニン類似体であるα－アミノ－β－ヒドロキシ吉草酸またはＤ，Ｌ－スレオニンヒドロキサメートなどに対して耐性を付与することができる。
また、Ｌ－スレオニンと共通した前駆体を有するＬ－リシンの生合成経路に作用する遺伝子であるｄａｐＡ（ジヒドロピコリン酸シンターゼ：ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）、１ｙｓＡ（ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ：Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ）、またはｄｄｈ（ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ：ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）遺伝子を弱化させることができる。

しかし、これに制限されずに当業界において公知となった遺伝子発現調節方法でＬ－スレオニン生産能を強化することができる。
本出願において、用語「強化／増加」とは、内在的活性に比べて活性が増加することをいずれも含む概念である。

このような遺伝子活性の強化または増加は、当該分野においてよく知られている多様な方法の適用により達成される。上記方法の例として、遺伝子の細胞内コピー数の増加；遺伝子の発現調節の配列に変異を導入する方法；遺伝子発現調節配列を活性が強力な配列に交替する方法；遺伝子の活性が強化されるように当該遺伝子に変異を追加で導入させる方法；及び微生物に外来遺伝子を導入する方法からなる群から選択されるいずれか一つ以上の方法で行われ、これらの組合わせでも達成できるが、上記例により特に制限されるものではない。

本出願において用語、「不活性化」とは、内在的活性に比べて活性が弱化したり、または活性がないことをいずれも含む概念である。
このような遺伝子活性の不活性化または弱化は、当該分野においてよく知られている多様な方法の適用により達成される。上記方法の例として、上記遺伝子の活性が除去された場合を含めて染色体上の遺伝子の全体または一部を欠失させる方法； 当該ポリペプチドの活性が減少するように突然変異された遺伝子で、染色体上の上記ポリペプチドをコードする遺伝子に代替する方法；上記ポリペプチドをコードする染色体上の遺伝子の発現調節の配列に変異を導入する方法；上記ポリペプチドをコードする遺伝子の発現調節配列を活性が弱かったり、ない配列に交替する方法（例えば、上記遺伝子のプロモーターを内在的プロモーターより弱いプロモーターに交替する方法）；上記ポリペプチドをコードする染色体上の遺伝子の全体または一部を欠失させる方法；上記染色体上の遺伝子の転写体に相補的に結合して上記ｍＲＮＡからポリペプチドへの翻訳を阻害するアンチセンスオリゴヌクレオチド（例えば、アンチセンスＲＮＡ）を導入する方法；上記ポリペプチドをコードする遺伝子のＳＤ配列の前段にＳＤ配列と相補的な配列を人為的に付加し、２次構造物を形成させてリボソーム（ｒｉｂｏｓｏｍｅ）の付着を不可能にさせる方法及び当該配列のＯＲＦ（ｏｐｅｎ ｒｅａｄｉｎｇ ｆｒａｍｅ）の３’末端に逆転写されるようにプロモーターを付加するＲＴＥ（Ｒｅｖｅｒｓｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ）方法などがあり、これらの組合わせでも達成できるが、上記例により特に制限されるものではない。

例えば、１ｙｓＣ，ｈｏｍ，またはｐｙｃの活性強化のために、遺伝子の細胞内コピー数の増加；遺伝子の発現調節の配列に変異を導入する方法；遺伝子発現調節配列を活性が強力な配列で交替する方法；遺伝子の活性が強化されるように当該遺伝子に変異を追加で導入させる方法；及び微生物に外来遺伝子を導入する方法などからなってもよいが、これに制限されるものではなく、活性の強化または増加のために公知となった方法が制限なく用いられる。

例えば、ｄａｐＡ、ｄｄｈまたは１ｙｓＡの活性弱化のために上記遺伝子の活性が除去された場合を含めて染色体上の遺伝子の全体または一部を欠失させる方法；当該ポリペプチドの活性が減少するように突然変異された遺伝子で、染色体上の上記ポリペプチドをコードする遺伝子に代替する方法；上記ポリペプチドをコードする染色体上の遺伝子の発現調節の配列に変異を導入する方法；上記ポリペプチドをコードする遺伝子の発現調節配列を活性が弱かったり、ない配列に交替する方法（例えば、上記遺伝子のプロモーターを内在的プロモーターより弱いプロモーターに交替する方法）；上記ポリペプチドをコードする染色体上の遺伝子の全体または一部を欠失させる方法などからなってもよいが、これに制限されるものではなく、活性弱化のために公知となった方法が制限なく用いられる。

また、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを含む微生物に次の変異型ポリペプチドのいずれか一つ以上をさらに含んでもよい。
上記さらに含まれる変異型ポリペプチドは、配列番号８０のアミノ酸配列で１１９番目のアミノ酸がチロシンからフェニルアラニンに置換されたジヒドロピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）変異型ポリペプチド、配列番号８１のアミノ酸配列で３０２番目のアミノ酸がアルギニンからアラニンに置換されたジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ）変異型ポリペプチド；及び配列番号８２のアミノ酸配列で１６９番目のアミノ酸がスレオニンからロイシンに置換されたジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）変異型ポリペプチドの中から選択されるいずれか一つ以上であってもよい。

上記配列番号８０のアミノ酸配列で１１９番目のアミノ酸がチロシンからフェニルアラニンに置換されたジヒドロピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）変異型ポリペプチドのアミノ酸の配列は配列番号６５であってもよいが、これに限定されるものではない。上記ジヒドロピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ，ｄａｐＡ）は、リシンとスレオニンの共通前駆体であるアスパルチルセミアルデヒド（Ａｓｐａｒｔｙｌ ｓｅｍｉａｌｄｅｈｙｄｅ）からリシンを生合成するための酵素であり、上記１１９番目のアミノ酸配列がチロシンからフェニルアラニンに置換されることでジヒドロピコリン酸シンターゼの機能が弱化することによりリシンの生産能は減少し得る。本出願の実施例において上記変異型ポリペプチドを導入することによりリシンの生産量は減少し、スレオニンの生産量が増加することを確認することができた。

上記配列番号８１のアミノ酸配列で３０２番目のアミノ酸がアルギニンからアラニンに置換されたジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ）変異型ポリペプチドのアミノ酸配列は配列番号７０であってもよいが、これに限定されるものではない。上記ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ，ｌｙｓＡ）は、リシン生合成に作用する最後の酵素であり、上記３０２番目のアミノ酸配列がアルギニンからアラニンに置換されることでジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼの機能が弱化することによりリシンの生産能は減少し得る。本出願の実施例において上記変異型ポリペプチドを導入することによりリシンの生産量は減少し、スレオニンの生産量が増加することを確認することができた。

上記配列番号８２のアミノ酸配列で１６９番目のアミノ酸がスレオニンからロイシンに置換されたジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）変異型ポリペプチドのアミノ酸配列は配列番号７５であってもよいが、これに限定されるものではない。上記ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ，ｄｄｈ）はリシンの生合成に作用する酵素であり、上記１６９番目のアミノ酸がスレオニンからロイシンに置換されることでジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼの機能が弱化することによりリシンの生産能は減少し得る。本出願の実施例において上記変異型ポリペプチドを導入することによりリシンの生産量は減少し、スレオニンの生産量が増加することを確認することができた。

本出願の更に他の一つの様態は、記述された微生物を培地で培養する段階を含む、スレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸の生産方法を提供する。
また、上記生産方法は、上記培養された微生物または培養された培地からスレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸を回収する段階をさらに含む、スレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸の生産方法を提供する。

上記微生物は、上記説明した通り、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを含むコリネバクテリウム属微生物であってもよく、より具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカムであってもよい。また、上記コリネバクテリウム属微生物またはコリネバクテリウム・グルタミカムは、スレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸を生産する微生物であってもよい。上記スレオニン由来Ｌ－アミノ酸はスレオニン由来Ｌ－アミノ酸だけでなく、この誘導体も含んでもよい。例えば、Ｌ－スレオニン、Ｌ－イソロイシン、Ｏ－アセチル－Ｌ－ホモセリン、Ｏ－スクシニル－Ｌ－ホモセリン、Ｏ－ホスホ－Ｌ－ホモセリン、Ｌ－メチオニン及び／又はＬ－グリシンであってもよいが、これに制限されない。より具体的には、Ｌ－スレオニン、Ｌ－イソロイシン、Ｏ－アセチル－Ｌ－ホモセリン、Ｏ－スクシニル－Ｌ－ホモセリン及び／又はＬ－メチオニンであってもよいが、これに制限されない。

上記スレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸は、本出願の記述された微生物が生産したスレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸培養液であるか、または精製された形態であってもよい。また、そのものの形態だけでなく、その塩の形態も全て含むことは、当業者に自明である。

上記スレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸を生産する方法は、当業界において公知となった最適化された培養条件及び酵素活性条件で当業者により容易に決定され得る。

上記方法において、上記微生物を培養する段階は、特に制限されないが、公知となった回分式培養方法、連続式培養方法、流加式培養方法などにより行われ得る。この時、培養条件は、特にこれに制限されないが、塩基性化合物（例：水酸化ナトリウム、水酸化カリウムまたはアンモニア）または酸性化合物（例：リン酸または硫酸）を用いて適正ｐＨ（例えば、ｐＨ５～９、具体的にはｐＨ６～８、最も具体的にはｐＨ６．８）を調節することができるが、これに制限されるものではない。また、酸素または酸素含有ガス混合物を培養物に導入させて好気性条件を維持することができる。培養温度は２０℃～４５℃、具体的には２５℃～４０℃を維持することができるが、これに制限されるものではない。培養時間は約１０～１６０時間培養できるが、これに制限されるものではない。上記培養により生産されたアミノ酸、一具体例として、スレオニンまたはリシンは、培地中に分泌されたり細胞内に残留してもよい。

併せて、用いられる培養用培地は、炭素供給源としては、糖及び炭水化物（例：グルコース、スクロース、ラクトース、フルクトース、マルトース、モラセス、澱粉及びセルロース）、油脂及び脂肪（例：大豆油、ヒマワリ種子油、ピーナッツ油及びココナッツ油）、脂肪酸（例：パルミチン酸、ステアリン酸及びリノール酸）、アルコール（例：グリセロール及びエタノール）及び有機酸（例：酢酸）などを個別に用いたりまたは混合して用いられるが、これに制限されない。窒素供給源としては、窒素含有有機化合物（例：ペプトン、酵母抽出液、肉汁、麦芽抽出液、トウモロコシ浸漬液、大豆粕粉及びウレア）、または無機化合物（例：硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、炭酸アンモニウム及び硝酸アンモニウム）などを個別に用いたり、または混合して用いられるが、これに制限されない。リン供給源としては、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム、これに対応するナトリウム含有塩などを個別に用いたり、または混合して用いられるが、これに制限されない。また、培地にはその他金属塩（例：硫酸マグネシウムまたは硫酸鉄）、アミノ酸及びビタミンのような必須成長促進物質を含んでもよい。

本出願の上記培養段階で生産されたスレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸を回収する方法は、培養方法により当該分野において公知となった適した方法を用いて培養液から目的とする産物を得ることができる。例えば、遠心分離、濾過、アニオン交換クロマトグラフィ、結晶化及びＨＰＬＣなどが用いられ、当該分野において公知となった適した方法を用いて培地または微生物から目的物質であるスレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸を回収することができる。また、上記回収段階は、追加の精製工程を含んでもよく、当該分野において公知となった適した方法を用いて行われ得る。

本出願のもう一つの様態は、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチド；上記変異体をコードするポリヌクレオチド；及び上記ポリヌクレオチドを含むベクター；のいずれか一つ以上を含む、微生物またはその培養液を含む、Ｌ－スレオニン生産用組成物を提供する。

上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、その変異型ポリペプチド、ポリヌクレオチド、ベクター及び微生物は、前述した通りである。
上記微生物は、コリネバクテリウム属であってもよく、具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカムであってもよいが、これに制限されない。これについては前述した通りである。

上記Ｌ－スレオニン生産用組成物は、本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドによりＬ－スレオニンを生産できる組成物を意味してもよい。上記組成物は、上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドまたは上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドを作動させる構成を制限なく含んでもよい。上記ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチドは、導入された宿主細胞で作動可能に連結された遺伝子を発現させるようにベクター内に含まれた形態であってもよい。

上記組成物は、凍結保護剤または賦形剤をさらに含んでもよい。上記凍結保護剤または賦形剤は、非自然的に発生した（ｎｏｎ－ｎａｔｕｒａｌｌｙ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ）物質または自然に発生した物質であってもよいが、これに制限されるものではない。もう一つの具体例として、上記凍結保護剤または賦形剤は、上記微生物が自然に接触しない物質、または上記微生物と自然に同時に含まれない物質であってもよいが、これに制限されるものではない。

本出願のもう一つの様態は、上記本出願のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異型ポリペプチド；上記変異体をコードするポリヌクレオチド；上記ポリヌクレオチドを含むベクター；またはそのうちのいずれか一つ以上を含む微生物のＬ－スレオニンまたはスレオニン由来Ｌ－アミノ酸の生産における使用を提供する。

以下、本出願を実施例を通じてより詳しく説明する。しかし、これら実施例は、本出願を例示的に説明するためのものであり、本出願の範囲がこれら実施例に局限されるわけではない。

実施例１：ｄａｐＢ遺伝子ＯＲＦ内変異導入用ベクターライブラリの製作
コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）のｄａｐＢ遺伝子の発現量またはその活性が弱化した変異体を発掘するための目的で下記の方法でライブラリを製作した。

まず、ｄａｐＢ（７４７ｂｐ）遺伝子を含むＤＮＡ断片（７４７ｂｐ）のｋｂ当たり０－４．５個を変異を導入するための目的でＧｅｎｅｍｏｒｐｈＩＩ Ｒａｎｄｏｍ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を用いた。コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２（ＷＴ）の染色体を鋳型とし、プライマー配列番号５及び６を用いてＥｒｒｏｒ－ｐｒｏｎｅ ＰＣＲを行った。具体的には、ＷＴ菌株の染色体（５００ｎｇ）、プライマー５及び６（それぞれ１２５ｎｇ）、Ｍｕｔａｚｙｍｅ ＩＩ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ（１Х），ｄＮＴＰ ｍｉｘ（４０ ｍＭ），Ｍｕｔａｚｙｍｅ ＩＩ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（２．５Ｕ）を含む反応液は９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で２分間の重合を２５回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。

増幅された遺伝子断片は、ＴＯＰＯ ＴＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いてｐＣＲＩＩベクターに連結し、大腸菌ＤＨ５αに形質転換してカナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。形質転換されたコロニー２０種を選別した後、プラスミドを獲得し、塩基配列を分析した結果、０．５ ｍｕｔａｔｉｏｎｓ／ｋｂの頻度で互いに異なる位置に変異が導入されていることを確認した。最終的には、約１０，０００個の形質転換された大腸菌コロニーをとってプラスミドを抽出し、これをｐＴＯＰＯ－ｄａｐＢ（ｍｔ）ライブラリと命名した。

実施例２：ｄａｐＢ欠損株の製作及び成長速度を基盤にｄａｐＢ変異株スクリーニング
野生型のコリネバクテリウム・グルタミカムグルタミカムＡＴＣＣ１３０３２でｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株を製作するために、下記の通りｄａｐＢ遺伝子が欠損したベクターｐＤＺ－ΔｄａｐＢを製造した。具体的には、ｄａｐＢ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各３００ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。報告されたｄａｐＢ遺伝子の塩基配列（配列番号２）に基づいて５’断片及び３’断片に制限酵素ＳａｌＩ認識部位を挿入したプライマー配列番号７及び８とこれらからそれぞれ３００ｂｐ離れた位置でプライマー配列番号９及び１０を合成した。コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片は、プライマー配列番号７及び９を用いてＰＣＲを通じて製作した。同様の方法でｇｌｔＡ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は、配列番号８及び１０を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。

一方、制限酵素ＳａｌＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換し、カナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号７及び８を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得し、このプラスミドをｐＤＺ－ΔｄａｐＢと命名した。

上記製作されたベクターｐＤＺ－ΔｄａｐＢをコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２に電気パルス法（Ｖａｎ ｄｅｒ Ｒｅｓｔ ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ． Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ５２：５４１－５４５，１９９９）で形質転換し、相同染色体組換えによりｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株を製作した。このようにｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株をコリネバクテリウム・グルタミカム１３０３２：：ΔｄａｐＢと命名した。

また、１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株を対象にｐＴＯＰＯ－ｄａｐＢ（ｍｔ）ライブラリを電気パルス法で形質転換し、カナマイシン（２５ｍｇ／１）が含まれた複合平板培地に塗抹して約１００個のコロニーを確保した。確保した１００株の菌株に対してＬ－リシン生産能テストを進めた。種培地２５ｍｌを含有する２５０ｍｌのコーナーバッフルフラスコに獲得した１００株の菌株を接種した後、３０℃で２０時間２００ｒｐｍで振盪培養した。下記Ｌ－リシン生産培地２４ｍｌを含有する２５０ｍｌのコーナーバッフルフラスコに１ｍｌの種培養液を接種し、３０℃で４８時間２００ｒｐｍで振盪培養した。

リシン生産培地（ｐＨ７．０）
ブドウ糖１００ｇ、（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４ ４０ｇ、大豆タンパク質２．５ｇ、トウモロコシ浸漬固形分（Ｃｏｒｎ Ｓｔｅｅｐ Ｓｏｌｉｄｓ） ５ｇ、尿素３ｇ、ＫＨ_２ＰＯ_４ １ｇ、ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ０．５ｇ、ビオチン１００μｇ、チアミン塩酸塩１０００μｇ、パントテン酸カルシウム２０００μｇ、ニコチンアミド３０００μｇ、ＣａＣＯ_３ ３０ｇ（蒸溜水１リットル基準）。

１３０３２及び１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株を対照群として用いた。培養終了後にＨＰＬＣを用いてリシンの生産量を測定した。野生型である１３０３２菌株対比Ｌ－リシン濃度は減少しながら１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株よりはＬ－リシン濃度が高く出る菌株６種を選別し、６種に対するアミノ酸の培養液内の濃度を表１に示した。上記選別された６種の菌株は１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－１～６と命名した。その他９４種のコロニーは対照群として用いられた１３０３２よりＬ－リシン濃度が高かったり１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株と同様な水準を示した。また、１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株の生長速度が１３０３２比で大幅に減少する一方、選別された６種の菌株は１３０３２：：ΔｄａｐＢよりは高い生長速度を維持することを確認することができた。

表１の結果のように、選別された６種の菌株は、Ｌ－リシン濃度がＷＴ菌株よりは少ないながら１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株よりは高く出る結果を示した。
実施例３：ｄａｐＢ変異株６種の塩基配列の確認
６種の選別菌株１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－１～６のｄａｐＢ遺伝子塩基配列を確認するために、実施例１に明示されたプライマーを（配列番号５及び６）用いて染色体内ｄａｐＢ遺伝子を含むＤＮＡ断片をＰＣＲ増幅した。ＰＣＲ条件は、９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。

増幅された遺伝子の塩基配列を分析した結果６種の菌株中、順に１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－１は配列番号２の３７～３９番目の塩基配列が既存のＣＧＴからＡＡＣに変わった、Ｎ末端から１３番目のアミノ酸であるアルギニンがアスパラギンで置換された形態の変異体、１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－２は配列番号２の１０６～１０８番目の塩基配列が既存のＧＴＣからＡＴＣに変わった、Ｎ末端から３６番目のアミノ酸であるバリンがメチオニンで置換された形態の変異体、１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－３は配列番号２の１７５～１７７番目の塩基配列が既存のＧＣＴからＣＴＧに変わった、Ｎ末端から５９番目のアミノ酸であるアラニンがロイシンで置換された形態の変異体、１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－４は配列番号２の２３５～２３７番目の塩基配列が既存のＡＣＧからＧＣＡに変わった、Ｎ末端から７９番目のアミノ酸であるスレオニンがアラニンで置換された変異体、１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－５は配列番号２の４３３～４３５番目の塩基配列がＡＣＧからＧＣＧに変わった、Ｎ末端から１４５番目のアミノ酸であるスレオニンがアラニンで置換された変異体、最後に１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－６は配列番号２の４１４番目の塩基配列がＧからＣに変わった、Ｎ末端から１３８番目のアミノ酸であるリシンがアルギニンで置換された変異体であることを確認した。

上記６種の菌株中、Ｌ－リシンの生産量がＷＴ菌株である１３０３２比減少しながら１３０３２：：ΔｄａｐＢとは最も類似にＬ－リシンの生産量が少ないながら生長速度はＷＴ菌株である１３０３２と類似の１３０３２：：ｄａｐＢ（ｍｔ）－１菌株を最も優れたジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性弱化菌株として選別した。

実施例４：ｄａｐＢ遺伝子の１３番目のアミノ酸であるアルギニンが他のアミノ酸で置換された多様な菌株の製作
上記アミノ酸配列１で１３番目のアミノ酸の位置に、野生型が有するアルギニンを除いた他のｐｒｏｔｅｏｇｅｎｉｃアミノ酸への置換を試みた。

実施例３で確認した変異であるＲ１３Ｎを含む１９種の異種性塩基置換変異を導入するためにそれぞれの組換えベクターを下記のような方法で製作した。
まず、ＷＴ菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型としてｄａｐＢ遺伝子の３６～３９番目の位置で前後にそれぞれ約６００ｂｐ離れた位置に５’断片及び３’断片に制限酵素ＳａｌＩ認識部位を挿入したプライマー配列番号１１及び１２を合成した。１９種の異種性塩基置換変異を導入するためにｄａｐＢ遺伝子の３６～３９番目の塩基配列を置換するためのプライマー配列番号１３～５０を合成した。

具体的には、ｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）プラスミドはｄａｐＢ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各６００ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。ＷＴ菌株の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片はプライマー配列番号１１及び１３を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は、９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。同様の方法でｄａｐＢ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は配列番号１２及び１４を用いてＰＣＲを通じて製作した。増幅されたＤＮＡ断片をＱｕｉａｇｅｎ社のＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いて精製した後、ベクター製作のための挿入ＤＮＡ断片として用いた。

一方、制限酵素ＳａｌＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換した。上記菌株をカナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号１１及び１２を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得した。上記プラスミドはｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）と命名した。

同様の方法でプライマー配列番号１１及び１５、１２及び１６を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｇ）、プライマー配列番号１１及び１７、１２及び１８を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ａ）、プライマー配列番号１１及び１９、１２及び２０を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｖ）、プライマー配列番号１１及び２１、１２及び２２を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｌ）、プライマー配列番号１１及び２３、１２及び２４を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｉ）、プライマー配列番号１１及び２５、１２及び２６を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｍ）、プライマー配列番号１１及び２７、１２及び２８を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｆ）、プライマー配列番号１１及び２９、１２及び３０を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｗ）、プライマー配列番号１１及び３１、１２及び３２を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｐ）、プライマー配列番号１１及び３３、１２及び３４を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｓ）、プライマー配列番号１１及び３５、１２及び３６を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｔ）、プライマー配列番号１１及び３７、１２及び３８を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｃ）、プライマー配列番号１１及び３９、１２及び４０を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｙ）、プライマー配列番号１１及び４１、１２及び４２を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｑ）、プライマー配列番号１１及び４３、１２及び４４を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｄ）、プライマー配列番号１１及び４５、１２及び４６を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｅ）、プライマー配列番号１１及び４７、１２及び４８を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｋ）、プライマー配列番号１１及び４９、１２及び５０を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｈ）を製作した。

ｄａｐＢ変異導入によるリシン濃度及び生長速度をより明確にするために、それぞれ製作されたベクターをリシンを生産するコリネバクテリウム・グルタミカムＫＣＣＭ１１０１６Ｐ菌株（大韓民国登録特許第１０－０１５９８１２号）に電気パルス法で形質転換した。このようにｄａｐＢ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株１９種は ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｇ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ａ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｖ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｌ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｉ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｍ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｆ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｆ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｗ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｐ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｓ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｔ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｃ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｙ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｑ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｄ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｅ），ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｋ）とそれぞれ命名した。

実施例５：ｄａｐＢ変異株に対するリシン生産能の分析
ＫＣＣＭ１１０１６Ｐ菌株を対照群として用いて選別菌株１９種を下記のような方法で培養して糖消耗速度、リシン生産収率、スレオニン生産収率を測定した。

まず、種培地２５ｍｌを含有する２５０ｍｌのコーナーバッフルフラスコに各菌株を接種し、３０℃で２０時間、２００ｒｐｍで振盪培養した。その後、生産培地２４ｍｌを含有する２５０ｍｌのコーナーバッフルフラスコに１ｍｌの種培養液を接種し、３２℃で７２時間、２００ｒｐｍで振盪培養した。上記種培地と生産培地の組成は、それぞれ下記の通りである。培養終了後にＨＰＬＣ（Ｗａｔｅｒｓ ２４７８）を用いてＬ－リシンとＬ－スレオニンの濃度を測定した。

＜種培地（ｐＨ７．０）＞
ブドウ糖２０ｇ、ペプトン１０ｇ、酵母抽出物５ｇ、尿素１．５ｇ、 ＫＨ_２ＰＯ_４ ４ｇ、Ｋ_２ＨＰＯ_４ ８ｇ、ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ０．５ｇ、ビオチン１００μｇ、チアミンＨＣｌ １０００μｇ、パントテン酸カルシウム２０００μｇ、ニコチンアミド２０００μｇ（蒸溜水１リットル基準）
＜生産培地（ｐＨ７．０）＞
ブドウ糖１００ｇ、（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４ ４０ｇ、大豆タンパク質２．５ｇ、トウモロコシ浸漬固形分（Ｃｏｒｎ Ｓｔｅｅｐ Ｓｏｌｉｄｓ） ５ｇ、尿素３ｇ、ＫＨ_２ＰＯ_４ １ｇ、ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ０．５ｇ、ビオチン１００μｇ、チアミン塩酸塩１０００μｇ、パントテン酸カルシウム２０００μｇ、ニコチンアミド３０００μｇ、ＣａＣＯ_３ ３０ｇ（蒸溜水１リットル基準）。

リシン及びスレオニン生産能、及び糖消耗速度の測定結果は、下記表２の通りである。

配列番号１の１３番目のアミノ酸が他のアミノ酸で置換された変異型ポリペプチドを含む菌株の場合、置換されたアミノ酸が極性を帯びる場合（Ｓ，Ｔ，Ｃ，Ｙ，Ｎ，Ｑ，Ｋ）、菌株の生長は産業上活用可能な水準に維持されながらリシン生産能が弱化し、スレオニンの生産能が向上したことを確認することができた。そのうち、Ｒ１３Ｎ変異導入株の場合、菌株の生長はＫＣＣＭ１１０１６Ｐと最も類似しながらリシン生産能が最も下落し、スレオニンの生産能は最も大きく上昇したことが見られた。また、Ｒ１３Ｓ、Ｒ１３Ｔ、Ｒ１３Ｃ、Ｒ１３Ｙ、Ｒ１３Ｑ、Ｒ１３Ｋ変異菌株も菌株の生長が維持されながらリシンの生産能は減少する一方、スレオニンの生産能が向上したことが見られた。

一方、残りの性質のアミノ酸で置換された場合、スレオニン生産能が減少したり、菌株の糖消耗速度も対照群と同等であるか、またはそうでなければ、大きく下落して産業上活用不可能な水準であることが確認された。

上記のような結果により、本出願の変異を導入する場合、菌株の生長は適正水準に維持されながらリシン収率のみ減少させ、スレオニン生産性の向上に効果があることを確認することができた。

本結果は、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性調節を通じて、リシン生合成経路の弱化による細胞壁合成の阻害により引き起こされる菌株の生長速度は維持させながら適切な水準にリシン生産能を減少させ、同時に、それによる炭素の流れをスレオニンに送ることによりスレオニンの生産能を向上させる結果を確認することができた。

実施例６：コリネバクテリウム属微生物ＡＴＣＣ１３０３２基盤ｄａｐＢ遺伝子の１３番目のアミノ酸であるアルギニンがアスパラギンで置換された菌株の製作
１３番目のアミノ酸がアスパラギンで置換された変異体の効果を野生型菌株で再確認するために、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ １３０３２が内在的に有するジヒドロジピコリン酸レダクターゼのアミノ酸配列（配列番号１）で１３番目のアミノ酸であるアルギニンをアスパラギンで置換した。

具体的には、実施例４で製作したｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）ベクターをコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２に電気パルス法で形質転換した。このように、ｄａｐＢ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株を１３０３２：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）と命名した。

実施例７：コリネバクテリウム属微生物ＡＴＣＣ１３０３２基盤ｄａｐＢ変異株に対するスレオニン及びリシン生産能の分析
実施例１で用いた１３０３２：：ΔｄａｐＢ菌株とコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２菌株を対照群として用いて上記実施例６で製作された１３０３２：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）菌株を下記のような方法で培養し、糖消耗速度、スレオニン及びリシン生産収率を測定した。

まず、種培地２５ｍｌを含有する２５０ｍｌのコーナーバッフルフラスコに各菌株を接種し、３０℃で２０時間、２００ｒｐｍで振盪培養した。その後、生産培地２４ｍｌを含有する２５０ｍｌのコーナーバッフルフラスコに１ｍｌの種培養液を接種し、３２℃で２４時間、２００ｒｐｍで振盪培養した。上記種培地と生産培地の組成は、それぞれ下記の通りである。培養終了後にＨＰＬＣ（Ｗａｔｅｒｓ ２４７８）を用いてＬ－リシンとＬ－スレオニンの濃度を測定した。

種培地（ｐＨ７．０）
ブドウ糖２０ｇ、ペプトン１０ｇ、酵母抽出物５ｇ、尿素１．５ｇ、ＫＨ_２ＰＯ_４ ４ｇ、Ｋ_２ＨＰＯ_４ ８ｇ、ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ０．５ｇ、ビオチン１００μｇ、チアミンＨＣｌ １０００μｇ、パントテン酸カルシウム２０００μｇ、ニコチンアミド２０００ μｇ（蒸溜水１リットル基準）
Ｌ－スレオニン生産培地（ｐＨ７．２）
ブドウ糖３０ｇ、ＫＨ_２ＰＯ_４ ２ｇ、Ｕｒｅａ ３ｇ、（ＮＨ_４）_２ＳＯ_４ ４０ｇ、Ｐｅｐｔｏｎｅ ２．５ｇ、ＣＳＬ（Ｓｉｇｍａ） ５ｇ（１０ ｍｌ）、ＭｇＳＯ_４・７Ｈ_２Ｏ ０．５ｇ、Ｌｅｕｃｉｎｅ ４００ｍｇ、ＣａＣＯ_３ ２０ｇ（蒸溜水１リットル基準）。

培養の結果、スレオニン及びリシン生産能、糖消耗速度の測定結果は、下記表３の通りである。

ｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株の場合、親株比リシン濃度は減少し、スレオニン濃度は小幅増加したが、培養後半まで糖を消耗できなかった。即ち、ｄａｐＢ遺伝子が欠失してリシン生合成能がない場合は、菌株の生長が抑制され、産業上活用し難いと見られた。配列番号１の１３番目のアルギニンがアスパラギンで置換された変異型ポリペプチドを含む１３０３２：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）菌株の場合、菌株の生長は産業上活用可能な水準に維持されながらリシン濃度が減少し、スレオニン濃度は増加することを確認した。即ち、本出願の変異を導入する場合、スレオニン濃度は向上させながら、副産物であるリシンは減少させる効果があることを確認することができる。

本結果によりｄａｐＢ遺伝子の変異導入を通じてジヒドロジピコリン酸レダクターゼの活性を弱化させる時、スレオニンとリシンの共通前駆体であるアスパルチルセミアルデヒドから炭素の流れがリシン生合成側の流れに行くことを減らすことにより、スレオニンの生合成側の経路に流れるようにしてスレオニン生産量を増加させ、副産物であるリシン生産量を低減させることを確認することができる。

実施例８：コリネバクテリウム属微生物ＡＴＣＣ１３８６９基盤ｄａｐＢ遺伝子の１３番目のアミノ酸であるアルギニンがアスパラギンで置換された菌株の製作
１３番目のアミノ酸がアスパラギンで置換された変異体の効果を野生型菌株で再確認するために、コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３８６９微生物が内在的に有するジヒドロジピコリン酸レダクターゼのアミノ酸配列（配列番号５１）で１３番目のアミノ酸であるアルギニンをアスパラギンで置換した（配列番号５３）。

具体的には、実施例５で確認した変異であるＲ１３Ｎをコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ １３８６９菌株に導入するための組換えベクターを下記のような方法で製作した。

まず、１３８６９菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型とする点のみ実施例４と異なり、残りは実施例４と同一のプライマーと方法を用いてｐＤＺ－ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）－１３８６９プラスミドを製作した。

このように製作されたベクターをコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３８６９に電気パルス法で形質転換した。このようにｄａｐＢ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株を１３８６９：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）と命名した。

実施例９：コリネバクテリウム属微生物ＡＴＣＣ１３８６９基盤ｄａｐＢ欠損株の製作
実施例１で製作したｐＤＺ－ΔｄａｐＢをコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３８６９に電気パルス法（Ｖａｎ ｄｅｒ Ｒｅｓｔ ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ． Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ． Ｂｉｏｔｅｃｎｏｌ． ５２：５４１－５４５，１９９９）で形質転換し、相同染色体の組換えによりｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株を製作した。このように、ｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株をコリネバクテリウム・グルタミカム１３８６９：：ΔｄａｐＢと命名した。

実施例１０：１３８６９基盤ｄａｐＢ変異株に対するスレオニン及びリシン生産能の分析
コリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３８６９及び実施例９で製作した１３８６９：：ΔｄａｐＢ菌株を対照群として用いて実施例８で製作された１３８６９：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）菌株を先の実施例と同様な方法で培養し、糖消耗速度、スレオニン及びリシン生産収率を測定した。

培養の結果、スレオニン及びリシン生産能、糖消耗速度の測定結果は、下記表４の通りである。

ｄａｐＢ遺伝子が欠損した菌株の場合、親株比リシン濃度は減少し、スレオニン濃度は小幅増加したが、培養後半まで糖を消耗することができなかった。即ち、ｄａｐＢ遺伝子が欠失してリシン生合成能がない場合は、菌株の生長が抑制され、産業上活用し難いと見られる。配列番号５３のように１３番目のアルギニンがアスパラギンで置換された変異型ポリペプチドを含む１３８６９：：ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）菌株の場合、菌株の生長は、産業上活用可能な水準に維持されながらリシン濃度が減少し、スレオニン濃度は増加することを確認した。即ち、本出願の変異を導入する場合、スレオニン濃度は向上させながら副産物であるリシンは減少させる効果があることが分かった。

本結果を通じてジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性を弱化させるために、ｄａｐＢ遺伝子の変異導入をさせる場合、スレオニンとリシンの共通前駆体であるアスパルチルセミアルデヒドから炭素の流れがリシン生合成側の流れに行くことを減らすことによりスレオニンの生合成側の経路に流れるようにしてスレオニン生産量を増加させ、副産物であるリシン生産量を低減させるということが分かった。

実施例１１：スレオニン生産株基盤ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）変異導入株の製作
ｄａｐＢ（Ｒ１３Ｎ）変異導入によるＬ－スレオニン生産能の変化を明確に確認するために、スレオニン生産菌株を製作した。具体的には、スレオニン生合成経路で最初の重要な酵素として作用するａｓｐａｒｔａｔｅ ｋｉｎａｓｅ（ｌｙｓＣ）のフィードバック阻害（ｆｅｅｄｂａｃｋ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ）の解消のために、ｌｙｓＣ（Ｌ３７７Ｋ）変異が導入された菌株を製作した（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）。変異導入のための組換えベクターは、下記のような方法で製作された。

ｌｙｓＣ（Ｌ３７７Ｋ）変異が導入された菌株を製作するために、１３０３２菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型としてｌｙｓＣ遺伝子の１１２８～１１３１番目の位置で前後にそれぞれ約５００ｂｐ離れた位置に５’断片及び３’断片に制限酵素Ｓｍａｌ認識部位を挿入したプライマー配列番号５６及び５７を合成した。Ｌ３７７Ｋ異種性塩基置換変異を導入するために、ｌｙｓＣ遺伝子の１１２８～１１３１番目の塩基配列を置換するためのプライマー配列番号５８及び５９を合成した。

具体的には、ｐＤＺ－ｌｙｓＣ（Ｌ３７７Ｋ）プラスミドは、ｌｙｓＣ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各５１５，５３８ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。１３０３２菌株の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片は、プライマー配列番号５６及び５８を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。同様の方法で１ｙｓＣ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は、配列番号５７及び５９を用いてＰＣＲを通じて製作した。増幅されたＤＮＡ断片をＱｕｉａｇｅｎ社のＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いて精製した後、ベクター製作のための挿入ＤＮＡ断片として用いた。

一方、制限酵素ＳｍａＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換した。上記菌株をカナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号５６及び５７を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得した。上記プラスミドはｐＤＺ－ｌｙｓＣ（Ｌ３７７Ｋ）と命名した。

上記製作されたベクターをコリネバクテリウム・グルタミカムＡＴＣＣ１３０３２菌株に電気パルス法で形質転換した。このように、ｌｙｓＣ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株をＣＪＰ１と命名した。上記ＣＪＰ１はＣＡ０１－２３０７と命名され、２０１７年３月２９日付でブダペスト条約下の国際寄託機関である韓国微生物保存センター（ＫＣＣＭ）に寄託し、受託番号ＫＣＣＭ１２０００Ｐの付与を受けた。

次に、上記製作されたＣＪＰ１菌株にＬ－トレオニン、Ｌ－イソロイシン生合成経路の共通の中間体であるホモセリン（ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ）を生産するホモセリンデヒドロゲナーゼ（ｈｏｍｏｓｅｒｉｎｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）をコードする遺伝子に変異を導入して強化した。具体的には、配列番号６０でのように１２１８～１２２１番目の塩基配列が既存のＴＴＧからＡＡＧに変わり、Ｎ末端から４０７番目のアミノ酸であるアルギニンがヒスチジンで置換された形態の変異体ｈｏｍ（Ｒ４０７Ｈ）変異が導入された菌株を製作した。変異導入のための組換えベクターは、下記のような方法で製作した。

まず、１３０３２菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型としてｈｏｍ遺伝子の１２１９～１２２１番目の位置で前後にそれぞれ約６００ｂｐ離れた位置に５’断片及び３’断片に制限酵素ＳａｌＩ認識部位を挿入したプライマー配列番号６１及び６２を合成した。Ｒ４０７Ｈ異種性塩基置換変異を導入するために、ｈｏｍ遺伝子の１２１９～１２２１番目の塩基配列を置換するためのプライマー配列番号６３及び６４を合成した。

具体的には、ｐＤＺ－ｈｏｍ（Ｒ４０７Ｈ）プラスミドはｈｏｍ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各６００ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。ＷＴ菌株の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片はプライマー配列番号６１及び６３を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は、９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。同様の方法でｈｏｍ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は配列番号６２及び６４を用いてＰＣＲを通じて製作した。増幅されたＤＮＡ断片をＱｕｉａｇｅｎ社のＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いて精製した後、ベクター製作のための挿入ＤＮＡ断片として用いた。

一方、制限酵素ＳａｌＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換した。上記菌株をカナマイシン（２５ｍｇ／１）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号６１及び６２を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得した。上記プラスミドは、ｐＤＺ－ｈｏｍ（Ｒ４０７Ｈ）と命名した。

上記製作されたベクターをＣＪＰ１に電気パルス法で形質転換した。このようにｈｏｍ 伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株をＣＡ０９－０９００（受託番号ＫＣＣＭ１２４１８Ｐ）と命名した。

上記菌株のジヒドロジピコリン酸レダクターゼ変異導入を通じたＬ－スレオニン生産とリシン生産の変化を確認するために、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼをコードする遺伝子に上記実施例４で確認した変異を導入した。具体的には、Ｒ１３Ｎ変異をＣＡ０９－０９００菌株に導入するために実施例４で製作されたｐＤＺ－Ｒ１３Ｎベクターを電気穿孔法でＣＡ０９－０９００に形質転換し、実施例４と同様の方法で２次交差過程を経て染色体上で塩基変異が変異型塩基で置換されている菌株を得た。変異型塩基に置換された菌株は、ＣＡ０９－０９０３と命名した。

上記菌株ＣＡ０９－０９０３は、２０１９年４月２５日付でブダペスト条約下の国際寄託機関である韓国微生物保存センター（ＫＣＣＭ）に国際寄託し、ＫＣＣＭ１２５０２Ｐとして寄託番号の付与を受けた。

実施例１２：スレオニン生産株基盤ｄａｐＢ変異株に対するスレオニン及びリシン生産能の分析
実施例１０で製作したＣＡ０９－０９００菌株を対照群としてＣＡ０９－０９０３菌株を実施例７と同様な方法で培養し、スレオニン及びリシン生産収率を測定した。

培養の結果、スレオニン及びリシン生産能の測定結果は、下記表５の通りである。

その結果、変異を導入した菌株は、対照群であるＣＡ０９－０９００菌株比Ｌ－リシンの生産量が減少し、Ｌ－スレオニン生産量が１．０７ｇ／Ｌ増加し、従って、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄａｐＢ）の１３番目のアミノ酸の置換による変異導入を通じたリシンの低減とスレオニンの生産量増加の効果を確認することができた。

実施例１３：リシン経路追加弱化株の製作（ｄａｐＡ）
リシン生合成経路の追加弱化によるＬ－スレオニン生産能の変化を明確に確認するために、リシン生合成経路の遺伝子に対する追加弱化をさせて実験を進めた。まず、リシンとスレオニンの共通前駆体であるアスパルチルセミアルデヒド（Ａｓｐａｒｔｙｌ ｓｅｍｉａｌｄｅｈｙｄｅ）からリシンを生合成するための最初の作用酵素であるジヒドロピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ，ｄａｐＡ）の活性を弱化させることと文献に報告された変異を導入するための菌株を製作した（Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ． ２００４ Ａｐｒ ２３；３３８（２）：３２９－３９）。具体的には、ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ（ｄａｐＡ）に配列番号６５のように３５５～３５７番目の塩基配列が既存のＴＡＣからＴＴＴに変わってＮ末端から１１９番目のアミノ酸であるチロシンがフェニルアラニンで置換された形態の変異体ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）変異が導入された菌株を製作した（配列番号８０）。変異導入のための組換えベクターは、下記のような方法で製作された。

ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）変異が導入された菌株を製作するために１３０３２菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型としてｄａｐＡ遺伝子の３５５～３５７番目の位置で前後にそれぞれ約３５０ｂｐ、６１０ｂｐ離れた位置に５’断片及び３’断片に制限酵素ＳａｌＩ認識部位を挿入したプライマー配列番号６６及び６７を合成した。Ｙ１１９Ｆ異種性塩基置換変異を導入するために、ｄａｐＡ遺伝子の３５５～３５７番目の塩基配列を置換するためのプライマー配列番号６８及び６９を合成した。

具体的には、ｐＤＺ－ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）プラスミドはｄａｐＡ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各３５０，６１０ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。１３０３２菌株の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片はプライマー配列番号６６及び６８を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は、９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。同様の方法でｄａｐＡ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は、配列番号６７及び６９を用いてＰＣＲを通じて製作した。増幅されたＤＮＡ断片をＱｕｉａｇｅｎ社のＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いて精製した後、ベクター製作のための挿入ＤＮＡ断片として用いた。

一方、制限酵素ＳａｌＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換した。上記菌株をカナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号６６及び６７を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得した。上記プラスミドは、ｐＤＺ－ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）と命名した。

上記製作されたベクターを実施例１１で製作されたＣＡ０９－０９０３菌株に電気パルス法で形質転換した。このようにｄａｐＡ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株を ＣＡ０９－０９０３／ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）と命名した。

実施例１４：ｄａｐＡ変異導入株に対するスレオニン及びリシン生産能の分析
実施例１１で製作したＣＡ０９－０９０３菌株を対照群としてＣＡ０９－０９０３／ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）菌株を実施例７と同様な方法で培養してスレオニン及びリシン生産収率を測定した。

培養の結果、スレオニン及びリシン生産能の測定結果は、下記表６の通りである。

その結果、ｄａｐＡ（Ｙ１１９Ｆ）変異をさらに導入した菌株は、対照群であるＣＡ０９－０９０３菌株比Ｌ－リシンの生産量が減少し、Ｌ－スレオニン生産量が０．９０ｇ／Ｌ増加し、従って、さらにジヒドロピコリン酸シンターゼｄａｐＡの１１９番目のアミノ酸変異体の導入を通じて、リシン生合成経路の追加弱化によりリシン生産能はさらに低減され、スレオニンの生産量がさらに増加する効果を確認することができた。

実施例１５：リシン経路追加弱化株の製作（１ｙｓＡ）
リシン生合成経路の追加弱化によるＬ－スレオニン生産能の変化を明確に確認するために、リシン生合成経路の遺伝子に対する追加弱化を進行した。リシン生合成に作用する最後の酵素であるジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ，ｌｙｓＡ）の活性を弱化させることと文献に報告された変異を導入するための菌株を製作した（Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｂｉｏｐｈｙｓ Ｒｅｓ Ｃｏｍｍｕｎ． ２０１８ Ｊａｎ ８；４９５（２）：１８１５－１８２１）。具体的には、Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ（ｌｙｓＡ）に配列番号７０のように９０４～９０６番目の塩基配列が既存のＣＧＣからＧＣＡに変わってＮ末端から３０２番目のアミノ酸であるアルギニンがアラニンで置換された形態の変異体ｌｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）変異が導入された菌株を製作した（配列番号８１）。変異導入のための組換えベクターは、下記のような方法で製作された。

ｌｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）変異が導入された菌株を製作するために、１３０３２菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型としてｌｙｓＡ遺伝子の９０４～９０６番目の位置で前後にそれぞれ約５００ｂｐ離れた位置に５’断片及び３’断片に制限酵素ＳａｌＩ認識部位を挿入したプライマー配列番号７１及び７２を合成した。Ｒ３０２Ａ異種性塩基置換変異を導入するために、ｌｙｓＡ遺伝子の９０４～９０６番目の塩基配列を置換するためのプライマー配列番号７３及び７４を合成した。

具体的には、ｐＤＺ－ｌｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）プラスミドは、ｌｙｓＡ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各５００ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。１３０３２菌株の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片は、プライマー配列番号７１及び７３を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は、９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。同様の方法でｌｙｓＡ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は、配列番号７２及び７４を用いてＰＣＲを通じて製作した。増幅されたＤＮＡ断片をＱｕｉａｇｅｎ社のＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いて精製した後、ベクター製作のための挿入ＤＮＡ断片として用いた。

一方、制限酵素ＳａｌＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換した。上記菌株をカナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号６６及び６７を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得した。上記プラスミドは、ｐＤＺ－ｌｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）と命名した。

上記製作されたベクターを実施例１１で製作されたＣＡ０９－０９０３菌株に電気パルス法で形質転換した。このように、ｌｙｓＡ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株を ＣＡ０９－０９０３／ｌｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）と命名した。

実施例１６：１ｙｓＡ変異導入株に対するスレオニン及びリシン生産能の分析
実施例１１で製作したＣＡ０９－０９０３菌株を対照群としてＣＡ０９－０９０３／１ｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）菌株を実施例７と同様な方法で培養してスレオニン及びリシン生産収率を測定した。

培養の結果、スレオニン及びリシン生産能の測定結果は、下記表７の通りである。

その結果、ｌｙｓＡ（Ｒ３０２Ａ）変異を追加で導入した菌株は、対照群であるＣＡ０９－０９０３菌株比Ｌ－リシンの生産量が減少し、Ｌ－スレオニン生産量が０．２０ｇ／Ｌ増加し、従って、さらに１ｙｓＡの３０２番目のアミノ酸変異体導入を通じて、リシン生合成経路の追加弱化によりリシンの生産能はさらに低減されており、スレオニンの生産量がさらに増加する効果を確認することができた。

実施例１７：リシン経路追加弱化株の製作（ｄｄｈ）
リシン生合成経路の追加弱化によるＬ－スレオニン生産能の変化を明確に確認するために、リシン生合成経路の遺伝子に対する追加弱化を進行した。リシン生合成に作用する酵素であるジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ，ｄｄｈ）の活性を弱化させるための菌株を製作した。具体的には、 ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（ｄｄｈ）に配列番号７５のように５０５～５０７番目の塩基配列が既存のＡＣＣからＣＴＣに変わってＮ末端から１６９番目のアミノ酸であるスレオニンがロイシンで置換された形態の変異体ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）変異が導入された菌株を製作した（配列番号８２）。変異導入のための組換えベクターは、下記のような方法で製作した。

ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）変異が導入された菌株を製作するために１３０３２菌株から抽出したゲノムＤＮＡを鋳型としてｌｙｓＡ遺伝子の５０５～５０７番目の位置で前後にそれぞれ約５００ｂｐ離れた位置に５’断片及び３’断片に制限酵素ＳａｌＩ認識部位を挿入したプライマー配列番号７６及び７７を合成した。Ｔ１６９Ｌ異種性塩基置換変異を導入するためにｄｄｈ遺伝子の５０５～５０７番目の塩基配列を置換するためのプライマー配列番号７８及び７９を合成した。

具体的には、ｐＤＺ－ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）プラスミドは、ｄｄｈ遺伝子の５’及び３’末端に位置したＤＮＡ断片が（各５００ｂｐ）ｐＤＺベクター（大韓民国特許第２００９－００９４４３３号）に連結された形態で製作された。１３０３２菌株の染色体を鋳型として５’末端の遺伝子断片はプライマー配列番号７６及び７８を用いてＰＣＲを通じて製作した。ＰＣＲ条件は、９４℃で２分間の変性後、９４℃で１分間の変性、５６℃で１分間のアニーリング、７２℃で４０秒間の重合を３０回繰り返した後、７２℃で１０分間の重合反応を行った。同様の方法でｄｄｈ遺伝子の３’末端に位置した遺伝子断片は、配列番号７７及び７９を用いてＰＣＲを通じて製作した。増幅されたＤＮＡ断片をＱｕｉａｇｅｎ社のＰＣＲ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｋｉｔを用いて精製した後、ベクター製作のための挿入ＤＮＡ断片として用いた。

一方、制限酵素ＳａｌＩで処理した後、６５℃で２０分間熱処理したｐＤＺベクターと上記ＰＣＲを通じて増幅した挿入ＤＮＡ断片をＩｎｆｕｓｉｏｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔを用いて連結した後、大腸菌ＤＨ５αに形質転換した。上記菌株をカナマイシン（２５ｍｇ／ｌ）が含まれたＬＢ固体培地に塗抹した。プライマー配列番号７６及び７７を用いたＰＣＲを通じて目的とした遺伝子が挿入されたベクターで形質転換されたコロニーを選別した後、通常知られているプラスミド抽出法を用いてプラスミドを獲得した。上記プラスミドはｐＤＺ－ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）と命名した。

上記製作されたベクターを実施例１１で製作されたＣＡ０９－０９０３菌株に電気パルス法で形質転換した。このようにｄｄｈ遺伝子に異種性塩基置換変異が導入された菌株を ＣＡ０９－０９０３／ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）と命名した。

実施例１８：ｄｄｈ変異導入株に対するスレオニン及びリシン生産能の分析
実施例１１で製作したＣＡ０９－０９０３菌株を対照群としてＣＡ０９－０９０３／ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）菌株を実施例７と同様な方法で培養してスレオニン及びリシン生産収率を測定した。

培養の結果、スレオニン及びリシン生産能の測定結果は、下記表８の通りである。

その結果、ｄｄｈ（Ｔ１６９Ｌ）変異をさらに導入した菌株は、対照群であるＣＡ０９－０９０３菌株比Ｌ－リシンの生産量が減少し、Ｌ－スレオニン生産量が０．３５ｇ／Ｌ増加し、従って、さらにｄｄｈの１６９番目のアミノ酸が置換された変異体導入を通じてリシン生合成経路の追加弱化によりリシンの生産能はさらに低減され、スレオニンの生産量はさらに増加する効果を確認することができた。

以上の説明から、本発明が属する技術分野の当業者であれば、本発明がその技術的思想や必須の特徴を変更することなく、他の具体的な形態で実施されうることが理解できるだろう。これに関連し、以上で記述した実施例はあくまで例示的なものであり、限定的なものでないことを理解すべきである。本発明の範囲は上記詳細な説明よりは、後述する特許請求の範囲の意味及び範囲、そしてその等価概念から導かれるあらゆる変更または変形された形態が本発明の範囲に含まれるものと解釈すべきである。

Claims (15)

1. 配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目の位置に対応するアミノ酸がアスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）またはグルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）で置換され、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列と少なくとも８０％以上、１００％未満の配列相同性を有し、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）活性を有する変異型ポリペプチド。
2. 変異型ポリペプチドのジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性は、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有する野生型ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ活性より弱化した活性を有する、請求項１に記載の変異型ポリペプチド。
3. 配列番号１のアミノ酸配列と９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列は、配列番号５１で記載されるアミノ酸配列である、請求項１に記載の変異型ポリペプチド。
4. 前記変異型ポリペプチドは、配列番号３または配列番号５３のアミノ酸配列からなる、請求項１に記載の変異型ポリペプチド。
5. 請求項１に記載の変異型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
6. 前記ポリヌクレオチドは、配列番号４または配列番号５４の塩基配列からなる、請求項５に記載のポリヌクレオチド。
7. 配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目の位置に対応するアミノ酸がアスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）またはグルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）で置換され、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列と少なくとも８０％以上、１００％未満の配列相同性を有し、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）活性を有する変異型ポリペプチド；前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；及び前記ポリヌクレオチドを含むベクターのいずれか一つ以上を含むコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物。
8. 前記配列番号１のアミノ酸配列と９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列は配列番号５１である、請求項７に記載のコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物。
9. 前記コリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物は、さらに次の（１）～（３）の変異型ポリペプチドから選択されるいずれか一つ以上を含む、請求項７に記載のコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物。
   （１）ジヒドロピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）活性が弱化した変異型ポリペプチド。
   （２）ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ）活性が弱化した変異型ポリペプチド
   （３）ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）活性が弱化した変異型ポリペプチド。
10. 前記変異型ポリペプチドは、（１）～（３）の変異型ポリペプチドから選択されるいずれか一つ以上を含む、請求項９に記載のコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物。
    （１）配列番号６５のアミノ酸配列で１１９番目のアミノ酸がチロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）からフェニルアラニン（Ｐｈｅｎｙｌａｌａｎｉｎｅ）に置換されたジヒドロピコリン酸シンターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ）変異型ポリペプチド
    （２）配列番号７０のアミノ酸配列で３０２番目のアミノ酸がアルギニン（Ａｒｇｉｎｉｎｅ）からアラニン（Ａｌａｎｉｎｅ）に置換されたジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（Ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｃａｒｂｏｘｙｌａｓｅ）変異型ポリペプチド；及び
    （３）配列番号７５のアミノ酸配列で１６９番目のアミノ酸がスレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）からロイシン（Ｌｅｕｃｉｎｅ）に置換されたジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（ｄｉａｍｉｎｏｐｉｍｅｌａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）変異型ポリペプチド。
11. 前記微生物は、非変異型菌株に比べてＬ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）生産能が増加したものである、請求項７に記載のコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物。
12. 前記微生物は、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）である、請求項７に記載の微生物。
13. 配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列で１３番目の位置に対応するアミノ酸がアスパラギン（Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ）、スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）、システイン（Ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、チロシン（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ）、セリン（Ｓｅｒｉｎｅ）、リシン（Ｌｙｓｉｎｅ）またはグルタミン（Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ）で置換され、配列番号１のアミノ酸配列またはこれと９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列と少なくとも８０％以上、１００％未満の配列相同性を有し、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（ｄｉｈｙｄｒｏｄｉｐｉｃｏｌｉｎａｔｅ ｒｅｄｕｃｔａｓｅ）活性を有する変異型ポリペプチドを含むコリネバクテリウム属（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）微生物を培地で培養する段階を含む、Ｌ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を生産する方法。
14. 前記配列番号１のアミノ酸配列と９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列は配列番号５１である、請求項１３に記載のＬ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を生産する方法。
15. 前記微生物を培養する段階に培養した培地及び微生物からＬ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を回収する段階をさらに含む、請求項１３に記載のＬ－スレオニン（Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ）を生産する方法。