JP2022091828A - 併用抗がん剤の感受性の判定マーカー - Google Patents

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Abstract

【課題】新たな抗がん剤感受性判定マーカーの提供。【解決手段】２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子からなる、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカー。【選択図】なし

Description

本発明は、対象となる患者のがんが、使用しようとする抗がん剤に治療反応性を有するか否かを判定するために用いる抗がん剤感受性判定マーカー及びその利用に関する。
抗がん剤には、アルキル化剤、白金製剤、代謝拮抗剤、抗がん性抗生物質、抗がん性植物アルカロイド等の種類がある。そしてこれらの抗がん剤には、がんの種類によって効果を示す場合と効果を示さない場合がある。しかし、有効であると認められている種類のがんであっても、個々の患者によって効果を示す場合と効果を示さない場合があることが知られている。このような個々の患者のがんに対して抗がん剤が効果を示すか否かを抗がん剤感受性という。
オキサリプラチン（ＳＰ－４－２）－［（１Ｒ，２Ｒ）－ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ－１，２－ｄｉａｍｉｎｅ－κＮ，κＮ'］［ｅｔｈａｎｅｄｉｏａｔｏ（２－）－κＯ1，κＯ2］ｐｌａｔｉｎｕｍ（ＩＵＰＡＣ）は第三世代白金錯体系抗悪性腫瘍薬である。作用機序は先行薬剤であるシスプラチン（ＣＤＤＰ）やカルボプラチン（ＣＢＤＣＡ）と同様、ＤＮＡ塩基との架橋形成によるＤＮＡ合成阻害、蛋白合成阻害と考えられているが、ＣＤＤＰやＣＢＤＣＡが無効な大腸癌に対してもオキサリプラチン（Ｌ－ＯＨＰ）は抗腫瘍効果を示し、従来の白金錯体系抗悪性腫瘍薬とは異なる抗腫瘍スペクトルを示す。アメリカでは２００４年１月にフルオロウラシル（５－ＦＵ）／レボホリナート（ＬＶ）との併用で転移性結腸・直腸癌のファーストライン治療として承認されており、日本においても２００５年４月、「治癒切除不能な進行・再発の結腸・直腸癌」に対して他の抗悪性腫瘍剤との併用（本剤はレボホリナート及びフルオロウラシルの静脈内持続投与法等との併用の場合に有用性が認められている）にて薬価収載された。進行再発大腸癌の治療は、１９９０年代前半まで行われていた５－ＦＵ／ＬＶ療法での生存率は１０～１２ヶ月であったのに対し、オキサリプラチンを加えたＦＯＬＦＯＸ療法での生存期間は１９．５ヶ月とほぼ２倍にまで到達している。さらに２００９年８月には、同じくレボホリナート及びフルオロウラシルの静脈内持続投与法との併用による「結腸癌における術後補助化学療法」が効能・効果として追加され、大腸癌患者での使用拡大と有益性が期待できる薬剤である。大腸癌以外でも、２００９年８月には治癒切除不能な膵癌で、２０１５年３月には胃癌で、いずれも他の化学療法剤との併用で効能・効果が追加されている。
しかし、それでもなお進行再発大腸癌に対するＦＯＬＦＯＸ療法の奏効率は５０％程度であり、換言すれば治療を受けた患者の半数は効果が得られていないことを意味する。また、オキサリプラチンの使用により好中球減少症のほか高頻度の末梢神経障害を呈し、これは致死的副作用ではないものの治療継続を困難にする因子ともなっている。したがって、治療開始前に効果の期待できる患者（レスポンダー）と、効果の期待できない患者（ノンレスポンダー）を予測し、治療反応性を早期に診断できるバイオマーカーにより、有効性と安全性の高い化学療法が実現する。
さらに、一般にがん化学療法の治療スケジュールは長期に渡るため、治療継続中における抗がん剤に対する感受性の経時的モニターは治療継続の可否の判定を可能とし、患者負担や副作用軽減につながるのみならず医療経済の観点からも有用であると考えられる。個々の患者における治療反応性を予測、そして早期に診断して適切な薬剤や治療レジメンを選択する「個別化治療」実現のためには、オキサリプラチン等の抗がん剤の効果予測もしくは治療応答性の早期診断を可能とするバイオマーカーの確立は急務である。
かかる観点から本発明者らは、薬剤感受性の異なる複数のヒトがん細胞株あるいは当該細胞株を移植した担癌マウスに薬剤を曝露し、薬剤曝露後の細胞内代謝変動についてキャピラリー電気泳動－飛行時間型質量分析計（ＣＥ－ＴＯＦ ＭＳ）を用いて網羅的に解析し、薬剤感受性と比較解析することにより、抗がん剤感受性判定マーカーの探索を行い、いくつかのマーカーを報告した（特許文献１～４）。しかしながら、これらのマーカーは、いまだ実用化には至っていない。また、近年では、ＦＯＬＦＯＸ療法にベバシズマブ、セツキシマブやパニツムマブ等の抗体医薬を加えた併用療法も確立されていることから、ＦＯＬＦＯＸ療法の効果予測もしくは治療応答性の早期診断を可能とするバイオマーカーの重要性は益々増大している。
国際公開第２００９／０９６１８９号 国際公開第２０１１／０５２７５０号 国際公開第２０１２／１２７９８４号 国際公開第２０１３／１２５６７５号
本発明の課題は、個々の患者の治療反応性を判別できる抗がん剤感受性判定マーカー及びそれを利用する新たながん治療手段を提供することにある。
そこで本発明者らは、結腸・直腸がん患者の血液検体を対象とし、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法開始前の血中代謝物をＣＥ－Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ及びＣＥ－ＴＯＦ ＭＳを用いて網羅的に解析した結果、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法に対する治療反応性の高いレスポンダー群の患者で、２－ｄｅｏｘｙｇｌｕｃｏｓｅ ６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（２ＤＧ６Ｐ）、２－ｍｅｔｈｙｌｓｅｒｉｎｅ（２ＭＳＥ）、ｃｙｓｔｅｉｎｅ－ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ ｄｉｓｕｌｐｈｉｄｅ（ＣＳＳＧ）、ｄｏｐａｍｉｎｅ（ＤＯＰＭ）、ｏｘｉｄｉｚｅｄ ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ（ＧＳＳＧ）、ｉｍｉｄａｚｏｌｅ－４－ａｃｅｔａｔｅ（Ｉ４Ａ）及びｐｙｒｉｄｉｎｅ－２－ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ ａｃｉｄ ｂｕｔｙｌ ｅｓｔｅｒ（Ｐ２ＣＢ）の濃度が、治療反応性の低いノンレスポンダー群の患者に比して高いことを見出した。また、レスポンダー群の患者で、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ａｓｐａｒｔａｔｅ（ＡＳＰ）、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｕｃｏｓｅ ６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（ＧＬ６Ｐ）、ｇｌｙｃｙｌｇｌｙｃｉｎ（Ｇｌｙ－Ｇｌｙ）、ｈｙｐｏｔａｕｒｉｎｅ（ＨＹＰＴ）及びｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ（ＨＹＰＸ）の濃度が、ノンレスポンダー群の患者に比して低いことを見出した。
かかる知見に基づき、さらに検討した結果、がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子の濃度を測定すれば、当該がん患者のがんが抗がん剤に対する感受性を有するか否かを判定できることを見出した。また、がん患者由来の生体試料中の（１）２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、ＨＹＰＴ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢの濃度、（２）２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＬ６Ｐ及びＨＹＰＴの濃度、又は（３）ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ及びＨＹＰＴの濃度を測定し、当該濃度がレスポンダーのカットオフ値以上（あるいは、以下）であったか否かを数値化して特定の算出式に代入すれば、当該がん患者のがんが抗がん剤に対する感受性を有するか否か、具体的には当該がん患者がレスポンダーであるか否かを判定できることを見出した。また、がん患者由来の生体試料中のＡＳＰ及びＣＳＳＧから選ばれる１以上の分子の濃度を測定すれば、治療開始前の腫瘍の大きさを予測できることを見出した。また、がん患者由来の生体試料中の２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－ｇｌｕｔａｍｙｌｃｙｓｔｅｉｎｅ（ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ）、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の濃度を測定すれば、抗がん剤治療時の予後予測ができることを見出した。
さらに、がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、ＨＹＰＸ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の発現変動を指標とすれば抗がん剤感受性亢進剤のスクリーニングが可能になること、さらに当該抗がん剤感受性亢進剤と感受性亢進の対象となる抗がん剤を併用すれば、当該抗がん剤の治療効果が飛躍的に向上することを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、次の〔１〕～〔２２〕の発明を提供するものである。
〔１〕２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子からなる、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカー。
〔２〕抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む〔１〕記載の抗がん剤感受性判定マーカー。
〔３〕がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子の量を測定する工程を含む、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定方法。
〔４〕さらに、前記測定結果を対照レベルと比較することにより、当該がん患者の抗がん剤に対する感受性を判定する工程を含む〔３〕記載の判定方法。
〔５〕前記対照レベルがレスポンダーのカットオフ値であって、該カットオフ値が２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4≦であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3≦であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2≦であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3≦であり、ＧＳＳＧの場合に１．０６１×１０-3≦であり、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3≦であり、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4≦であり、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅの場合に≦８．４２２×１０-2であり、ＡＳＰの場合に≦３．４０１×１０-2であり、ｂｅｎｚａｍｉｄｅの場合に≦９．８５９×１０-2であり、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄの場合に≦１．０５８×１０-3であり、ＧＬ６Ｐの場合に≦８．１６７×１０-4であり、Ｇｌｙ－Ｇｌｙの場合に≦５．３４９×１０-3であり、ＨＹＰＴの場合に≦１．８３７×１０-2であり、ＨＹＰＸの場合に≦１．０５０×１０-1である〔４〕記載の判定方法。
〔６〕さらに、次式（１）により、レスポンダーである確率（ｐ）を算出し、当該がん患者がレスポンダーであるか否かを判定する工程を含む〔３〕記載の判定方法。
Figure 2022091828000001
 （式中、２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢは、各分子の測定結果が各分子のカットオフ値以上であった場合に１を、カットオフ値未満であった場合に０を示し、ＨＹＰＴは測定結果がカットオフ値以下であった場合に１を、カットオフ値を超えた場合に０を示し、該カットオフ値は、２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3であり、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2である。）
〔７〕さらに、次式（２）により、レスポンダーである確率（ｐ）を算出し、当該がん患者がレスポンダーであるか否かを判定する工程を含む〔３〕記載の判定方法。
Figure 2022091828000002
 （式中、２ＤＧ６Ｐは、２ＤＧ６Ｐの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１０．２１９０を、カットオフ値未満であった場合に－１０．２１９０を示し、２ＭＳＥは、２ＭＳＥの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．４７７８を、カットオフ値未満であった場合に－１．４７７８を示し、ＡＳＰは、ＡＳＰの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．４９７６を、カットオフ値未満であった場合に１．４９７６を示し、ＣＳＳＧは、ＣＳＳＧの測定結果がカットオフ値以上であった場合に２．０９３７を、カットオフ値未満であった場合に－２．０９３７を示し、ＤＯＰＭは、ＤＯＰＭの測定結果がカットオフ値以上であった場合に２．２２５８を、カットオフ値未満であった場合に－２．２２５８を示し、ＧＬ６Ｐは、ＧＬ６Ｐの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．６６２３を、カットオフ値未満であった場合に１．６６２３を示し、ＨＹＰＴは、ＨＹＰＴの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－２．３２００を、カットオフ値未満であった場合に２．３２００を示し、該カットオフ値は、２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3であり、ＡＳＰの場合に３．４０１×１０-2であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、ＧＬ６Ｐの場合に８．１６７×１０-4であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2である。）
〔８〕さらに、次式（３）により、レスポンダーである確率（ｐ）を算出し、当該がん患者がレスポンダーであるか否かを判定する工程を含む〔３〕記載の判定方法。
Figure 2022091828000003
 （式中、ＣＳＳＧは、ＣＳＳＧの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．８７０１を、カットオフ値未満であった場合に－１．８７０１を示し、ＤＯＰＭは、ＤＯＰＭの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．４０８１を、カットオフ値未満であった場合に－１．４０８１を示し、ＨＹＰＴは、ＨＹＰＴの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．０８６９を、カットオフ値未満であった場合に１．０８６９を示し、該カットオフ値は、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2である。）
〔９〕生体試料が、抗がん剤を投与されたがん患者由来の生体試料である〔３〕～〔８〕のいずれかに記載の判定方法。
〔１０〕抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む〔３〕～〔９〕のいずれかに記載の判定方法。
〔１１〕がん患者由来の生体試料中のＡＳＰ及びＣＳＳＧから選ばれる１以上の分子の量を測定する工程を含む、当該がん患者の腫瘍径の和の判定方法。
〔１２〕２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子からなる、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤治療時の予後予測マーカー。
〔１３〕抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む〔１２〕記載の予後予測マーカー。
〔１４〕がん患者由来の生体試料中の２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の量を測定する工程を含む、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤治療時の予後予測方法。
〔１５〕抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む〔１４〕記載の予後予測方法。
〔１６〕がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子の量を測定するためのプロトコールを含むことを特徴とする〔３〕～〔１１〕のいずれかに記載の判定方法を実施するためのキット。
〔１７〕がん患者由来の生体試料中の２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の量を測定するためのプロトコールを含むことを特徴とする〔１４〕又は〔１５〕記載の予後予測方法を実施するためのキット。
〔１８〕オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の存在下、がん細胞株又は担癌動物由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、ＨＹＰＸ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の発現変動を指標とする抗がん剤感受性亢進剤のスクリーニング方法。
〔１９〕抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む〔１８〕記載のスクリーニング方法。
〔２０〕〔１８〕又は〔１９〕記載の方法により得られたオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤に対する感受性亢進剤。
〔２１〕〔２０〕記載の感受性亢進剤とオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤とを組み合わせてなるがん治療用組成物。
〔２２〕抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む〔２１〕記載のがん治療用組成物。
本発明の抗がん剤感受性判定マーカーを用いれば、個々の患者の抗がん剤感受性、予後又は腫瘍の抗がん剤耐性を治療開始前もしくは治療開始後早期に適確に判定できる結果、治療効果の高い抗がん剤の選択が可能となる。さらに効果が得られない抗がん剤の使用を回避できるため不必要な副作用を回避できる。また、抗がん剤を用いた治療スケジュールは長期に及ぶため、治療継続中においても治療サイクルごとに抗がん剤感受性を判定することにより、そのがんに対する抗がん剤の感受性の経時的評価が可能となり、治療を継続すべきか否かの判定ができる。その結果、治療効果の得られない抗がん剤の継続投与に伴うがんの進行、副作用の増大を防止でき、患者の負担軽減、医療費の削減にもつながる。
さらに、また、このマーカーを用いれば、抗がん剤感受性を亢進させる薬剤がスクリーニングでき、その対象となった抗がん剤と抗がん剤感受性亢進剤とを併用すれば、がん治療効果が飛躍的に向上する。本発明の抗がん剤感受性判定マーカーの測定試薬は、抗がん剤感受性判定試薬として有用である。
解析方法１において、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法に対する治療反応性の異なるレスポンダー（Ｒ）群とノンレスポンダー（Ｎ－Ｒ）群で濃度に有意差が見られた物質を示す図である。 治療開始前の腫瘍径の和とＡＳＰ又はＣＳＳＧの濃度との相関関係を示す図である。 式（１）の抗がん剤感受性判定モデルのＲＯＣ曲線を示す図である。 ＣＳＳＧの濃度が高値のグループ（ＣＳＳＧ Ｈｉｇｈ）と低値のグループ（ＣＳＳＧ Ｌｏｗ）の無増悪生存期間（ＰＦＳ、図４Ａ）及び全生存期間（ＯＳ、図４Ｂ）を示す図である。 解析方法２において有意となった１５の代謝物のうち９代謝物の、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法に対する治療反応性の異なるＲ群とＮ－Ｒ群の分布図である。 解析方法２において有意となった１５の代謝物のうち６代謝物の、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法に対する治療反応性の異なるＲ群とＮ－Ｒ群の分布図である。 （ａ）式（２）（７代謝物モデル）の抗がん剤感受性判定モデルのＲＯＣ曲線を示す図である。（ｂ）式（３）（３代謝物モデル）の抗がん剤感受性判定モデルのＲＯＣ曲線を示す図である。 （ａ）式（２）（７代謝物モデル）により治療開始前の代謝物を元にＲ群とＮ－Ｒ群に分けた上で、カプラン・マイアー曲線を描いた図である。（ｂ）式（３）（３代謝物モデル）により治療開始前の代謝物を元にＲ群とＮ－Ｒ群に分けた上で、カプラン・マイアー曲線を描いた図である。 治療開始前の代謝物濃度とＯＳの関係をＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した際に有意差を示した代謝物のハザード比とその９５％信頼区間の図である。 治療開始前の代謝物濃度とＯＳの関係をＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した際に、９５％信頼区間の上限が１未満であった代謝物についてカットオフ値で群別した場合のカプラン・マイアー曲線とログランク検定の結果の図である。 治療開始前の代謝物濃度とＯＳの関係をＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した際に、９５％信頼区間の上限が１を超えた代謝物についてカットオフ値で群別した場合のカプラン・マイアー曲線とログランク検定の結果の図である。
本発明における抗がん剤感受性判定マーカーは、２－ｄｅｏｘｙｇｌｕｃｏｓｅ ６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（２ＤＧ６Ｐ）、２－ｍｅｔｈｙｌｓｅｒｉｎｅ（２ＭＳＥ）、ｃｙｓｔｅｉｎｅ－ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ ｄｉｓｕｌｐｈｉｄｅ（ＣＳＳＧ）、ｄｏｐａｍｉｎｅ（ＤＯＰＭ）、ｏｘｉｄｉｚｅｄ ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ（ＧＳＳＧ）、ｉｍｉｄａｚｏｌｅ－４－ａｃｅｔａｔｅ（Ｉ４Ａ）、ｐｙｒｉｄｉｎｅ－２－ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ ａｃｉｄ ｂｕｔｙｌ ｅｓｔｅｒ（Ｐ２ＣＢ）、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ａｓｐａｒｔａｔｅ（ＡＳＰ）、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｕｃｏｓｅ ６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（ＧＬ６Ｐ）、ｇｌｙｃｙｌｇｌｙｃｉｎ（Ｇｌｙ－Ｇｌｙ）、ｈｙｐｏｔａｕｒｉｎｅ（ＨＹＰＴ）及びｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ（ＨＹＰＸ）の１５種の代謝物質である。これらの物質のうち、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢについては、後記実施例に示すように、結腸・直腸がん患者由来の血液検体を対象とし、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法開始前の血中代謝物の量をＣＥ－Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ及びＣＥ－ＴＯＦ ＭＳを用いて網羅的に解析した結果、ベバシズマブ併用ｍＦＯＬＦＯＸ６療法に対する治療反応性の高いレスポンダー群の患者で、治療反応性の低いノンレスポンダー群の患者に比して高いことが判明した。また、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸについては、後記実施例に示すように、レスポンダー群の患者で、ノンレスポンダー群の患者に比して低いことが判明した。したがって、これら１５物質は、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤に対する感受性判定マーカー、特にオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩とベバシズマブを含む抗がん剤に対する抗がん剤感受性判定マーカーとして有用である。中でも、（１）２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、ＨＹＰＴ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢの５物質の組み合わせ、（２）２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＬ６Ｐ及びＨＹＰＴの７物質の組み合わせ、又は（３）ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ及びＨＹＰＴの３物質の組み合わせは特に有用であり、これらを用いることで対象とするがん患者がレスポンダーであるか否かを判定することが可能となる。
また、後記実施例に示すように、ＡＳＰはがん患者の治療開始前の腫瘍径の和と正の相関を、ＣＳＳＧは負の相関を示すことが判明した。したがって、ＡＳＰ及びＣＳＳＧは、がん患者の腫瘍径の和の判定マーカーとして有用である。
また、後記実施例に示すように、ＣＳＳＧのレベルに応じて無増悪生存期間（ＰＦＳ）及び全生存期間（ＯＳ）の解析を行ったところ、ＣＳＳＧ高値のグループはＣＳＳＧ低値のグループよりもＰＦＳ及びＯＳが有意に長いことが判明した。したがって、ＣＳＳＧは単独で、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤、特にオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩とベバシズマブを含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカー、特に、ＰＦＳの長短の予測のみならず、二次治療以降も含めたＯＳの長短の予測マーカーとして有用である。
さらに、後記実施例に示すように、ＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した結果、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－ｇｌｕｔａｍｙｌｃｙｓｔｅｉｎｅ（ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ）、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及びｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄは、血中の濃度が高いほど生存期間が長いこと、また、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄは血中濃度が高いほど生存期間が短いことが判明した。したがって、これら９物質は、単独で、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤、特にオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩とベバシズマブを含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカー、特に、二次治療以降も含めたＯＳの長短の予測マーカーとして有用である。
２ＤＧ６Ｐは、ｇｌｕｃｏｓｅの２位のＯＨ基がＨになった２－ｄｅｏｘｙ－Ｄ－ｇｌｕｃｏｓｅが細胞内に取り込まれた後に、グルコースヘキソキナーゼにより生成されるものであり、非臨床試験では２ＤＧ６Ｐが解糖系による代謝を受けないため細胞内に蓄積するのみならず、ヘキソキナーゼをフィードバック阻害するためｇｌｕｃｏｓｅの代謝も阻害し、がん細胞の成長を抑制することが知られている。しかし、がん患者を対象とした臨床試験でがん患者の血清中の２ＤＧ６Ｐを検討した報告はなく、２ＤＧ６Ｐがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
２ＭＳＥは、保湿成分として化粧品等にも配合される物質であるが、２ＭＳＥがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
ＣＳＳＧとＧＳＳＧは共に、薬物の解毒化に関与する物質として知られるＧＳＨの代謝物である。ＣＳＳＧは、ＧＳＨとＣｙｓが結合したものであり、ＧＳＳＧはＧＳＨが酸化されることにより形成されるＧＳＨの２量体である。血中のＧＳＨは採血後速やかに酸化されＧＳＳＧになること、ＧＳＨは採血後速やかに血中にＧＳＨより豊富に存在するＣｙｓとより多くが結合し数分でＣＳＳＧを形成する等の知見が知られているが、薬効とＣＳＳＧ、ＧＳＳＧに注目した報告は、がんと関連した報告も含めてなく、ＣＳＳＧ又はＧＳＳＧがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにレスポンダーと判定できることは全く知られていない。また、ＣＳＳＧが、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤治療による予後の予測マーカー、特に、ＰＦＳおよびＯＳの予測マーカーとなることや濃度が高いときに生存期間が長いことは全く知られていない。加えて、ＣＳＳＧが、体内の腫瘍径の和を予測するマーカーとなることも全く知られていない。
ＤＯＰＭは、中枢神経系に存在する神経伝達物質で、運動調節、ホルモン調節、感情、意欲、学習などに関与する物質であるが、ＤＯＰＭがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
Ｉ４Ａは、肥満細胞や好塩基球やマクロファージにより産生される起炎物質であるＨｉｓｔａｍｉｎｅの代謝経路上の物質であるが、Ｉ４Ａがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
Ｐ２ＣＢは、ｐｙｒｉｄｉｎｅ－２－ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ ａｃｉｄのｂｕｔｙｌエステル体である。ｐｙｒｉｄｉｎｅ－２－ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ ａｃｉｄは、ｔｒｙｐｔｏｐｈａｎ代謝経路上の物質で、キレート作用があり、グルコースデヒドロゲナーゼの活性化阻害剤としての働きや、ピコリン酸処理により細胞のタンパク合成が約５０％阻害されることが知られているが、Ｐ２ＣＢがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅは、医薬品等の中間体や合成試薬として使用されることで知られているが、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
ＡＳＰは、アミノ酸の一つであり、一般的には生体内の窒素処理で中心的な役割を持つことが知られている。すでに、ＡＳＰがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用でき、オキサリプラチン高感受性の細胞株で低感受性の細胞株と比較して高濃度となることが知られている（国際公開第２０１３／１２５６７５号）が、レボホリナート又はその塩も含む３剤併用抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。また、ＡＳＰがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が短いことは全く知られていない。
ｂｅｎｚａｍｉｄｅは、安息香酸アミドとも呼ばれ、その誘導体は鎮静剤や抗精神病薬として用いられているが、ｂｅｎｚａｍｉｄｅがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄは、代表的な糖酸の一つで、その誘導体が溶剤等に使用できることから原料としての需要が高まっており、いくつかの製造方法が知られている（国際公開第２０１３／１２５５０９号）が、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
ＧＬ６Ｐは、ペントースリン酸経路や解糖系等により代謝される物質であるが、ＧＬ６Ｐがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
Ｇｌｙ－Ｇｌｙは、生物学実験のバッファーやより複雑なペプチドの合成原料として用いられているが、Ｇｌｙ－Ｇｌｙがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
ＨＹＰＴは、システインからタウリンの生合成における中間産物であり、３－ｓｕｌｆｉｎｏ－Ｌ－ａｌａｎｉｎｅやｃｙｓｔｅａｍｉｎｅの酸化により合成される。ＨＹＰＴは、抗炎症作用（特開２０１７－７９８０号公報）や抗酸化作用（特開２０１７－１４１６７号公報）が知られているが、ＨＹＰＴがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。
ＨＹＰＸは、プリン代謝経路上の代謝物であり、イノシンや、キサンチンからｈｙｄｒｏｇｅｎ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅによりＯ2 -から生じたＨ2Ｏ2を用いて合成される。ＨＹＰＸは、変形性関節症や前立腺癌の診断バイオマーカーとなり得ること（特表２００６－５０４０９３号公報及び特開２０１６－１５３８０８号公報）が知られているが、ＨＹＰＸがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカーとして使用できること、濃度が高いときにノンレスポンダーと判定できることは全く知られていない。また、ＨＹＰＸがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が短いことは全く知られていない。
２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄは、システイン・メチオニン代謝経路上の代謝物であるが、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が長いことは全く知られていない。
ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓは、グルタチオン代謝経路上の代謝物である。しかしながら、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が長いことは全く知られていない。
ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅは、グリセロ脂質やグリセロリン酸代謝経路やがんにおけるコリン代謝経路上の代謝物である。しかしながら、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が長いことは全く知られていない。
ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄは、フェニルアラニン・チロシン・トリプトファン合成経路上の代謝物である。しかしながら、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が長いことは全く知られていない。
ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄは、胆汁酸合成系やコレステロール代謝経路上の代謝物である。しかしながら、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が短いことは全く知られていない。
ｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄは、解糖や糖新生に関連する物質として様々な経路に関与している。しかしながら、ｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄがオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤による治療時の予後予測マーカーとして使用できること、濃度が高いときに生存期間が短いことは全く知られていない。
ここで、レスポンダーとは、Ｒｅｃｉｓｔ基準（Ｊ Ｎａｔｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ．２０００ Ｆｅｂ ２；９２（３）：２０５－１６）に従い放射線診断医による画像診断の結果、試験治療期間中の最大の効果がｃｏｍｐｌｅｔｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅあるいはｐａｒｔｉａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅを示した患者のことをさし、ノンレスポンダー（Ｎ－Ｒ）とは、Ｒｅｃｉｓｔ基準に従い放射線診断医による画像診断の結果、試験治療期間中の最大の効果がｓｔａｂｌｅ ｄｉｓｅａｓｅあるいはｐｒｏｇｒｅｓｓｉｖｅ ｄｉｓｅａｓｅの患者をさす。
本発明の抗がん剤感受性判定マーカーの対象となる抗がん剤はオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤であるが、体内で代謝されてオキサリプラチン、フルオロウラシル又はレボホリナートに変換される抗がん剤も、同様に本発明の抗がん剤感受性判定マーカーの対象となる。具体的に、テガフール（ｔｅｇａｆｕｌ）やカペシタビン（ｃａｐｅｃｉｔａｂｉｎｅ）は体内で代謝されてフルオロウラシルに変換されることが明らかになっているため、フルオロウラシルに代えてテガフールやカペシタビンも本発明の抗がん剤感受性判定マーカーの対象となり、その場合は、オキサリプラチン又はその塩とテガフール又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤、オキサリプラチン又はその塩とカペシタビン又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤が、本発明の抗がん剤感受性判定マーカーの対象となる。
オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤と組み合わせて使用する他の抗がん剤としては特に限定されないが、例えばシクロフォスファミド（ｃｙｃｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、イフォスファミド（ｉｆｏｓｆａｍｉｄｅ）、チオテパ（ｔｈｉｏｔｅｐａ）、メルファラン（ｍｅｌｐｈａｌａｎ）、ブスルファン（ｂｕｓｕｌｆａｎ）、ニムスチン（ｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、ラニムスチン（ｒａｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、ダカルバジン（ｄａｃａｒｂａｚｉｎｅ）、プロカルバジン（ｐｒｏｃａｒｂａｚｉｎｅ）、テモゾロミド（ｔｅｍｏｚｏｌｏｍｉｄｅ）、シスプラチン（ｃｉｓｐｌａｔｉｎ）、カルボプラチン（ｃａｒｂｏｐｌａｔｉｎ）、ネダプラチン（ｎｅｄａｐｌａｔｉｎ）、メトトレキサート（ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ）、ペメトレキセド（ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ）、テガフール／ウラシル（ｔｅｇａｆｕｌ・ｕｒａｃｉｌ）、ドキシフルリジン（ｄｏｘｉｆｌｕｒｉｄｉｎｅ）、テガフール／ギメラシル／オテラシル（ｔｅｇａｆｕｌ・ｇｉｍｅｒａｃｉｌ・ｏｔｅｒａｃｉｌ）、カペシタビン（ｃａｐｅｃｉｔａｂｉｎｅ）、シタラビン（ｃｙｔａｒａｂｉｎｅ）、エノシタビン（ｅｎｏｃｉｔａｂｉｎｅ）、ゲムシタビン（ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）、６－メルカプトプリン（６－ｍｅｒｃａｐｔｏｐｕｒｉｎｅ）、フルダラビン（ｆｕｌｕｄａｒａｂｉｎ）、ペントスタチン（ｐｅｎｔｏｓｔａｔｉｎ）、クラドリビン（ｃｌａｄｒｉｂｉｎｅ）、ヒドロキシウレア（ｈｙｄｒｏｘｙｕｒｅａ）、ドキソルビシン（ｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎ）、エピルビシン（ｅｐｉｒｕｂｉｃｉｎ）、ダウノルビシン（ｄａｕｎｏｒｕｂｉｃｉｎ）、イダルビシン（ｉｄａｒｕｂｉｃｉｎｅ）、ピラルビシン（ｐｉｒａｒｕｂｉｃｉｎ）、ミトキサントロン（ｍｉｔｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、アムルビシン（ａｍｕｒｕｂｉｃｉｎ）、アクチノマイシンＤ（ａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ Ｄ）、ブレオマイシン（ｂｌｅｏｍｙｃｉｎｅ）、ペプレオマイシン（ｐｅｐｌｅｏｍｙｃｉｎ）、マイトマイシンＣ（ｍｙｔｏｍｙｃｉｎ Ｃ）、アクラルビシン（ａｃｌａｒｕｂｉｃｉｎ）、ジノスタチン（ｚｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、ビンクリスチン（ｖｉｎｃｒｉｓｔｉｎｅ）、ビンデシン（ｖｉｎｄｅｓｉｎｅ）、ビンブラスチン（ｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ）、ビノレルビン（ｖｉｎｏｒｅｌｂｉｎｅ）、パクリタキセル（ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）、ドセタキセル（ｄｏｃｅｔａｘｅｌ）、イリノテカン（ｉｒｉｎｏｔｅｃａｎ）、イリノテカン活性代謝物（ＳＮ－３８）、ノギテカン（ｎｏｇｉｔｅｃａｎ、ｔｏｐｏｔｅｃａｎ）、エトポシド（ｅｔｏｐｏｓｉｄｅ）、プレドニゾロン（ｐｒｅｄｎｉｓｏｌｏｎｅ）、デキサメタゾン（ｄｅｘａｍｅｔｈａｓｏｎｅ）、タモキシフェン（ｔａｍｏｘｉｆｅｎ）、トレミフェン（ｔｏｒｅｍｉｆｅｎｅ）、メドロキシプロゲステロン（ｍｅｄｒｏｘｙｐｒｏｇｅｓｔｅｒｏｎｅ）、アナストロゾール（ａｎａｓｔｒｏｚｏｌｅ）、エキセメスタン（ｅｘｅｍｅｓｔａｎｅ）、レトロゾール（ｌｅｔｒｏｚｏｌｅ）、リツキシマブ（ｒｉｔｕｘｉｍａｂ）、イマチニブ（ｉｍａｔｉｎｉｂ）、ゲフィチニブ（ｇｅｆｉｔｉｎｉｂ）、ゲムツズマブ・オゾガマイシン（ｇｅｍｔｕｚｕｍａｂ ｏｚｏｇａｍｉｃｉｎ）、ボルテゾミブ（ｂｏｒｔｅｚｏｍｉｂ）、エルロチニブ（ｅｒｌｏｔｉｎｉｂ）、セツキシマブ（ｃｅｔｕｘｉｍａｂ）、ベバシズマブ（ｂｅｖａｃｉｚｕｍａｂ）、スニチニブ（ｓｕｎｉｔｉｎｉｂ）、ソラフェニブ（ｓｏｒａｆｅｎｉｂ）、ダサチニブ（ｄａｓａｔｉｎｉｂ）、パニツムマブ（ｐａｎｉｔｕｍｕｍａｂ）、アスパラギナーゼ（ａｓｐａｒａｇｉｎａｓｅ）、トレチノイン（ｔｒｅｔｉｎｏｉｎ）、三酸化ヒ素（ａｒｓｅｎｉｃ ｔｒｉｏｘｉｄｅ）、又はそれらの塩、又はそれらの活性代謝物等が挙げられる。このうち、イリノテカン、ＳＮ－３８若しくはそれらの塩又はベバシズマブが好ましく、特にベバシズマブが好ましい。
本発明の抗がん剤感受性判定マーカーを用いて抗がん剤感受性を判定するには、がん患者由来の生体試料（検体）中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子の量を測定すること、詳細にはさらに当該測定結果を対照レベル（標準濃度、レスポンダーにおける濃度範囲、レスポンダーにおけるカットオフ値（以下、カットオフ値はＬＣ／ＭＳ用内部標準溶液の濃度を１とした場合の相対濃度を意味する）（２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4≦であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3≦であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2≦であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3≦であり、ＧＳＳＧの場合に１．０６１×１０-3≦であり、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3≦であり、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4≦であり、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅの場合に≦８．４２２×１０-2であり、ＡＳＰの場合に≦３．４０１×１０-2であり、ｂｅｎｚａｍｉｄｅの場合に≦９．８５９×１０-2であり、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄの場合に≦１．０５８×１０-3であり、ＧＬ６Ｐの場合に≦８．１６７×１０-4であり、Ｇｌｙ－Ｇｌｙの場合に≦５．３４９×１０-3であり、ＨＹＰＴの場合に≦１．８３７×１０-2であり、ＨＹＰＸの場合に≦１．０５０×１０-1である）、抗がん剤投与前の本発明の抗がん剤感受性判定マーカーの濃度等）と比較することにより行うことができる。あるいは、がん患者由来の生体試料（検体）中の（１）２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、ＨＹＰＴ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢの量、（２）２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＬ６Ｐ及びＨＹＰＴの量、又は（３）ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ及びＨＹＰＴの量を測定すること、詳細にはさらに当該測定結果を各物質のレスポンダーのカットオフ値（２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3であり、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4であり、ＡＳＰの場合に３．４０１×１０-2であり、ＧＬ６Ｐの場合に８．１６７×１０-4であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2である）と比較して数値化し、特定の算出式に代入することにより行うことができる。
ここで、がん患者としては、がんを有する被験者又はがんを有していた被験者が包含される。生体試料としては、例えば血液、血清、血漿、がん組織生検検体、がん摘出手術標本、便、尿、腹水、胸水、脳脊髄液、喀痰等が挙げられるが、血清が特に好ましい。
また、本発明の対象となるがんとしては、咽頭がんを代表とする口唇、口腔及び咽頭がん、食道がん、胃がん、結腸・直腸がんなどを代表とする消化器がん、肺がんを代表とする呼吸器及び胸腔内臓器がん、骨及び関節軟骨がん、皮膚の悪性黒色腫、有棘細胞がん及びその他の皮膚のがん、中皮腫を代表とする中皮及び軟部組織がん、乳房がん、子宮がん、卵巣がんを代表とする女性性器がん、前立腺がんを代表とする男性性器がん、膀胱がんを代表とする尿路がん、脳腫瘍を代表とする眼、脳及び中枢神経系がん、甲状腺及びその他の内分泌腺がん、非ホジキンリンパ腫やリンパ性白血病を代表とするリンパ組織、造血組織及び関連組織がん、及びこれらを原発巣とする転移組織のがん等が挙げられ、結腸・直腸がん（大腸がん）に対して好適に利用できるが、化学療法未治療がんが特に好ましい。
検体中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、ＨＹＰＸ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる分子の測定手段は、被測定対象物質により適宜決定すればよく、例えばＣＥ－Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ、ＣＥ－ＴＯＦ ＭＳ、Ｇａｓ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ－ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ（ＧＣ－ＭＳ）等の各種質量分析装置、ＨＰＬＣ、免疫学的測定法、生化学的測定法等により測定可能である。
２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢから選ばれる１以上の分子により、対象とする抗がん剤に対する感受性を判定するには、抗がん剤投与前又は投与後早期の段階において、がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢから選ばれる１以上の分子の量、例えば濃度を測定すればよい。濃度が所定の対照レベルより高いと判断される濃度を有する場合は、そのがんは対象とする抗がん剤に対して感受性であると判定できるため、これら抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できる。一方、濃度が所定の対照レベルより低いと判断される濃度を有する場合は、そのがんは対象とする抗がん剤に対して感受性ではないと判定できる。対象とする抗がん剤に対して感受性を有さない場合は、その薬効を期待することができず、このような薬効の期待できない抗がん剤の投与が行われたり、続けられた場合、がんの進行、副作用の増大が危惧される。このように、本発明における抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できるのに加え、薬効の期待できない抗がん剤の継続投与に伴うがんの進行や副作用の増大を回避するためのマーカーとしても使用できる。
対照レベルとしては、例えば、カットオフ値が挙げられ、カットオフ値としては、２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4≦、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3≦、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2≦、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3≦、ＧＳＳＧの場合に１．０６１×１０-3≦、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3≦、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4≦が挙げられる。
１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子により、対象とする抗がん剤に対する感受性を判定するには、抗がん剤投与前又は投与後早期の段階において、がん患者由来の生体試料中の１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子の量、例えば濃度を測定すればよい。濃度が所定の対照レベルより低いと判断される濃度を有する場合は、そのがんは対象とする抗がん剤に対して感受性であると判定できるため、これら抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できる。一方、濃度が所定の対照レベルより高いと判断される濃度を有する場合は、そのがんは対象とする抗がん剤に対して感受性ではないと判定できる。対象とする抗がん剤に対して感受性を有さない場合は、その薬効を期待することができず、このような薬効の期待できない抗がん剤の投与が行なわれたり、続けられた場合、がんの進行、副作用の増大が危惧される。このように、本発明における抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できるのに加え、薬効の期待できない抗がん剤の継続投与に伴うがんの進行や副作用の増大を回避するためのマーカーとしても使用できる。
対照レベルとしては、例えば、カットオフ値が挙げられ、カットオフ値としては、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅの場合に≦８．４２２×１０-2、ＡＳＰの場合に≦３．４０１×１０-2、ｂｅｎｚａｍｉｄｅの場合に≦９．８５９×１０-2、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄの場合に≦１．０５８×１０-3、ＧＬ６Ｐの場合に≦８．１６７×１０-4、Ｇｌｙ－Ｇｌｙの場合に≦５．３４９×１０-3、ＨＹＰＴの場合に≦１．８３７×１０-2、ＨＹＰＸの場合に≦１．０５０×１０-1が挙げられる。
２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、ＨＹＰＴ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢにより、対象とする抗がん剤に対する感受性を判定するには、抗がん剤投与前又は投与後において、がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、ＨＹＰＴ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢの量、例えば濃度を測定し、２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢについては、各分子の測定結果が各分子のカットオフ値以上であった場合に１を、カットオフ値未満であった場合に０を、ＨＹＰＴについては測定結果がカットオフ値以下であった場合に１を、カットオフ値を超えた場合に０を、式（１）に代入すればよい。
Figure 2022091828000004
 （式中、２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢは、各分子の測定結果が各分子のカットオフ値以上であった場合に１を、カットオフ値未満であった場合に０を示し、ＨＹＰＴは測定結果がカットオフ値以下であった場合に１を、カットオフ値を超えた場合に０を示す。）
各物質のカットオフ値は、以下の通りである。２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2であり、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3であり、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4。
式（１）により算出されるｐは、対象とするがん患者がレスポンダーである確率を示す。ｐが０．５以上であれば、該がん患者のがんは対象とする抗がん剤に対して感受性である、すなわち該がん患者はレスポンダーであると判定できるため、これら抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できる。一方、ｐが０.５未満であれば、該がん患者のがんは対象とする抗がん剤に対して感受性ではない、すなわち該がん患者はノンレスポンダーであると判定できる。対象とする抗がん剤に対して感受性を有さない場合は、その薬効を期待することができず、このような薬効の期待できない抗がん剤の投与が行われたり、続けられた場合、がんの進行、副作用の増大が危惧される。このように、本発明における抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できるのに加え、薬効の期待できない抗がん剤の継続投与に伴うがんの進行や副作用の増大を回避するためのマーカーとしても使用できる。
２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＬ６Ｐ及びＨＹＰＴにより、対象とする抗がん剤に対する感受性を判定するには、抗がん剤投与前又は投与後において、がん患者由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＬ６Ｐ及びＨＹＰＴの量、例えば濃度を測定し、以下のとおり、式（２）に代入すればよい。
Figure 2022091828000005
 （式中、２ＤＧ６Ｐは、２ＤＧ６Ｐの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１０．２１９０を、カットオフ値未満であった場合に－１０．２１９０を示し、２ＭＳＥは、２ＭＳＥの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．４７７８を、カットオフ値未満であった場合に－１．４７７８を示し、ＡＳＰは、ＡＳＰの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．４９７６を、カットオフ値未満であった場合に１．４９７６を示し、ＣＳＳＧは、ＣＳＳＧの測定結果がカットオフ値以上であった場合に２．０９３７を、カットオフ値未満であった場合に－２．０９３７を示し、ＤＯＰＭは、ＤＯＰＭの測定結果がカットオフ値以上であった場合に２．２２５８を、カットオフ値未満であった場合に－２．２２５８を示し、ＧＬ６Ｐは、ＧＬ６Ｐの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．６６２３を、カットオフ値未満であった場合に１．６６２３を示し、ＨＹＰＴは、ＨＹＰＴの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－２．３２００を、カットオフ値未満であった場合に２．３２００を示す。）
各物質のカットオフ値は、以下の通りである。２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3であり、ＡＳＰの場合に３．４０１×１０-2であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、ＧＬ６Ｐの場合に８．１６７×１０-4であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2。
式（２）により算出されるｐは、対象とするがん患者がレスポンダーである確率を示す。ｐが０．５以上であれば、該がん患者のがんは対象とする抗がん剤に対して感受性である、すなわち該がん患者はレスポンダーであると判定できるため、これら抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できる。一方、ｐが０.５未満であれば、該がん患者のがんは対象とする抗がん剤に対して感受性ではない、すなわち該がん患者はノンレスポンダーであると判定できる。対象とする抗がん剤に対して感受性を有さない場合は、その薬効を期待することができず、このような薬効の期待できない抗がん剤の投与が行われたり、続けられた場合、がんの進行、副作用の増大が危惧される。このように、本発明における抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できるのに加え、薬効の期待できない抗がん剤の継続投与に伴うがんの進行や副作用の増大を回避するためのマーカーとしても使用できる。
ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ及びＨＹＰＴにより、対象とする抗がん剤に対する感受性を判定するには、抗がん剤投与前又は投与後において、がん患者由来の生体試料中のＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ及びＨＹＰＴの量、例えば濃度を測定し、以下のとおり、式（３）に代入すればよい。
Figure 2022091828000006
 （式中、ＣＳＳＧは、ＣＳＳＧの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．８７０１を、カットオフ値未満であった場合に－１．８７０１を示し、ＤＯＰＭは、ＤＯＰＭの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．４０８１を、カットオフ値未満であった場合に－１．４０８１を示し、ＨＹＰＴは、ＨＹＰＴの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．０８６９を、カットオフ値未満であった場合に１．０８６９を示す。）
各物質のカットオフ値は、以下の通りである。ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2。
式（３）により算出されるｐは、対象とするがん患者がレスポンダーである確率を示す。ｐが０．５以上であれば、該がん患者のがんは対象とする抗がん剤に対して感受性である、すなわち該がん患者はレスポンダーであると判定できるため、これら抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できる。一方、ｐが０.５未満であれば、該がん患者のがんは対象とする抗がん剤に対して感受性ではない、すなわち該がん患者はノンレスポンダーであると判定できる。対象とする抗がん剤に対して感受性を有さない場合は、その薬効を期待することができず、このような薬効の期待できない抗がん剤の投与が行われたり、続けられた場合、がんの進行、副作用の増大が危惧される。このように、本発明における抗がん剤感受性判定マーカーは、治療効果を期待出来る患者に対して積極的に治療を継続するためのマーカーとして使用できるのに加え、薬効の期待できない抗がん剤の継続投与に伴うがんの進行や副作用の増大を回避するためのマーカーとしても使用できる。
なお、対象とするがん患者がレスポンダーである確率（ｐ）を示す上記の式（１）～（３）のうち、感度の観点から、式（２）が好ましい。
ＡＳＰ及び／又はＣＳＳＧにより、対象とするがん患者の治療開始前の腫瘍径の和を予測するには、抗がん剤投与前において、がん患者由来の生体試料中のＡＳＰ及び／又はＣＳＳＧの量、例えば濃度を測定し、各測定結果を式（４）又は式（５）に代入すればよい。
腫瘍径の和（ｍｍ）＝ ３９．５＋５８５．５×ＡＳＰ・・・・・（４）
（式中、ＡＳＰは相対濃度（ＬＣ／ＭＳ用内部標準溶液の濃度を１とした場合の相対濃度）を示す。）
腫瘍径の和（ｍｍ）＝１７１．１－３５４０．６×ＣＳＳＧ・・・・・（５）
（式中、ＣＳＳＧは相対濃度（ＬＣ／ＭＳ用内部標準溶液の濃度を１とした場合の相対濃度）を示す。）
２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子により、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤、特にオキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩とベバシズマブを含む抗がん剤による治療時の予後を予測するには、抗がん剤投与前又は投与後において、がん患者由来の生体試料中の２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の量、例えば濃度を測定すればよい。これらのうち、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子の量、例えば濃度を測定することが好ましい。２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及びｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子について、濃度が所定の対照レベルより高いと判断される濃度を有する場合は、低いと判断される濃度を有する場合と比較して、予後がよいと予測できる。一方、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の場合には、濃度が所定の対照レベルより低いと判断される濃度を有する場合は、高いと判断される濃度を有する場合と比較して、予後がよいと予測できる。予後予測は、無増悪生存期間（ＰＦＳ）、全生存期間（ＯＳ）、無病生存期間（ＤＦＳ）等の長短で表すことができるが、ＰＦＳ及び／又はＯＳで表すことが好ましく、ＯＳで表すことが特に好ましい。対照レベルとしては、例えば、カットオフ値を挙げることができ、ＣＳＳＧおよびＨＹＰＸの場合には各々レスポンダーの閾値と同じ２．２２３×１０-2≦、≦１．０５０×１０-1が挙げられ、それ以外は２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄの場合に０．２３０１≦、ＡＳＰの場合に＜２．３３６×１０-2、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓの場合に６．９１０×１０-3≦、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅの場合に５．２０７×１０-2≦、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄの場合に３．５３８×１０-2≦、ｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄの場合に＜１１．８８３９、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄの場合に１．７６６×１０-2≦が挙げられる。
本発明の抗がん剤感受性又は腫瘍径の和の判定方法を実施するには、検体中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ及びＨＹＰＸから選ばれる１以上の分子を測定するためのプロトコールを含むキットを用いるのが好ましい。また、本発明の予後予測方法を実施するには、検体中の２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及び、ｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子を測定するためのプロトコールを含むキットを用いるのが好ましい。当該キットには、これら代謝物質の測定試薬、及びプロトコール（測定試薬の使用方法、及び抗がん剤感受性の有無を判定するための基準等）が含まれる。当該基準には、これら代謝物質の標準濃度、高いと判断される濃度、低いと判断される濃度、測定結果に影響を与える要因とその影響の程度等が含まれ、これらの濃度は対象とする抗がん剤ごとに設定することが可能である。当該基準を用いて、前記のように判定又は予測することができる。
また、抗がん剤の存在下、がん細胞株又は担癌動物由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、ＨＹＰＸ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の発現変動を指標とすることにより抗がん剤感受性亢進剤のスクリーニングが可能となる。
すなわち、がん細胞株又は担癌動物に抗がん剤及び試験物質を添加又は投与し、がん細胞株又は担癌動物由来の生体試料中の２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、ＨＹＰＸ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の濃度を測定する工程、及び当該濃度の変動に基づいて、前記がん細胞株又は担癌動物の前記抗がん剤に対する感受性を亢進する試験物質を選択する工程を行うことにより、前記抗がん剤に対する感受性亢進剤をスクリーニングすることができる。なお、発現変動には、上記分子の発現の有無及び／又は上記分子の発現量の増減（変動）を含む。
例えば、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及びｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子について、抗がん剤存在下、これらの代謝物質の発現変動、具体的には濃度の上昇を指標とすれば、抗がん剤感受性亢進剤がスクリーニングできる。すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏ又はｉｎ ｖｉｖｏにおいてこれらの代謝物質の濃度を上昇させる物質は、抗がん剤感受性を亢進する。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏでは、各種がん細胞株において抗がん剤の存在下でこれらの代謝物質の濃度を上昇させる物質は、当該がん細胞株の当該抗がん剤感受性を亢進する物質（抗がん剤感受性亢進剤）である。またｉｎ ｖｉｖｏでは、担癌動物における抗がん剤投与前後において、これらの代謝物質の濃度を上昇させる物質は、当該担癌動物の当該抗がん剤感受性を亢進する物質（抗がん剤感受性亢進剤）である。
また、例えば、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ＡＳＰ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、ＨＹＰＸ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子について、抗がん剤存在下、これらの代謝物質の発現変動、具体的には濃度の低下を指標とすれば、抗がん剤感受性亢進剤がスクリーニングできる。すなわち、ｉｎ ｖｉｔｒｏ又はｉｎ ｖｉｖｏにおいてこれらの代謝物質の濃度を低下させる物質は、抗がん剤感受性を亢進する。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏでは、各種がん細胞株において抗がん剤の存在下でこれらの代謝物質の濃度を低下させる物質は、当該がん細胞株の当該抗がん剤感受性を亢進する物質（抗がん剤感受性亢進剤）である。またｉｎ ｖｉｖｏでは、担癌動物における抗がん剤投与前後において、これらの代謝物質の濃度を低下させる物質は、当該担癌動物の当該抗がん剤感受性を亢進する物質（抗がん剤感受性亢進剤）である。
かくして得られた抗がん剤感受性亢進剤と感受性亢進の対象となる抗がん剤とを併用すれば、当該抗がん剤の治療効果が飛躍的に向上する。抗がん剤感受性亢進剤と感受性亢進の対象となる抗がん剤とを組み合せた形態としては、それらの成分の両方を含む一の組成物であってもよく、それぞれ別個の製剤の組み合せであってもよい。また、それらの成分はそれぞれ別の投与経路であってもよい。ここで用いられる対象となる抗がん剤は、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤であり、この抗がん剤と組み合わせて使用する他の抗がん剤としては特に限定されないが、例えばシクロフォスファミド（ｃｙｃｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、イフォスファミド（ｉｆｏｓｆａｍｉｄｅ）、チオテパ（ｔｈｉｏｔｅｐａ）、メルファラン（ｍｅｌｐｈａｌａｎ）、ブスルファン（ｂｕｓｕｌｆａｎ）、ニムスチン（ｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、ラニムスチン（ｒａｎｉｍｕｓｔｉｎｅ）、ダカルバジン（ｄａｃａｒｂａｚｉｎｅ）、プロカルバジン（ｐｒｏｃａｒｂａｚｉｎｅ）、テモゾロミド（ｔｅｍｏｚｏｌｏｍｉｄｅ）、シスプラチン（ｃｉｓｐｌａｔｉｎ）、カルボプラチン（ｃａｒｂｏｐｌａｔｉｎ）、ネダプラチン（ｎｅｄａｐｌａｔｉｎ）、メトトレキサート（ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ）、ペメトレキセド（ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ）、テガフール／ウラシル（ｔｅｇａｆｕｌ・ｕｒａｃｉｌ）、ドキシフルリジン（ｄｏｘｉｆｌｕｒｉｄｉｎｅ）、テガフール／ギメラシル／オテラシル（ｔｅｇａｆｕｌ・ｇｉｍｅｒａｃｉｌ・ｏｔｅｒａｃｉｌ）、カペシタビン（ｃａｐｅｃｉｔａｂｉｎｅ）、シタラビン（ｃｙｔａｒａｂｉｎｅ）、エノシタビン（ｅｎｏｃｉｔａｂｉｎｅ）、ゲムシタビン（ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）、６－メルカプトプリン（６－ｍｅｒｃａｐｔｏｐｕｒｉｎｅ）、フルダラビン（ｆｕｌｕｄａｒａｂｉｎ）、ペントスタチン（ｐｅｎｔｏｓｔａｔｉｎ）、クラドリビン（ｃｌａｄｒｉｂｉｎｅ）、ヒドロキシウレア（ｈｙｄｒｏｘｙｕｒｅａ）、ドキソルビシン（ｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎ）、エピルビシン（ｅｐｉｒｕｂｉｃｉｎ）、ダウノルビシン（ｄａｕｎｏｒｕｂｉｃｉｎ）、イダルビシン（ｉｄａｒｕｂｉｃｉｎｅ）、ピラルビシン（ｐｉｒａｒｕｂｉｃｉｎ）、ミトキサントロン（ｍｉｔｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、アムルビシン（ａｍｕｒｕｂｉｃｉｎ）、アクチノマイシンＤ（ａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ Ｄ）、ブレオマイシン（ｂｌｅｏｍｙｃｉｎｅ）、ペプレオマイシン（ｐｅｐｌｅｏｍｙｃｉｎ）、マイトマイシンＣ（ｍｙｔｏｍｙｃｉｎ Ｃ）、アクラルビシン（ａｃｌａｒｕｂｉｃｉｎ）、ジノスタチン（ｚｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、ビンクリスチン（ｖｉｎｃｒｉｓｔｉｎｅ）、ビンデシン（ｖｉｎｄｅｓｉｎｅ）、ビンブラスチン（ｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ）、ビノレルビン（ｖｉｎｏｒｅｌｂｉｎｅ）、パクリタキセル（ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）、ドセタキセル（ｄｏｃｅｔａｘｅｌ）、イリノテカン（ｉｒｉｎｏｔｅｃａｎ）、イリノテカン活性代謝物（ＳＮ－３８）、ノギテカン（ｎｏｇｉｔｅｃａｎ、ｔｏｐｏｔｅｃａｎ）、エトポシド（ｅｔｏｐｏｓｉｄｅ）、プレドニゾロン（ｐｒｅｄｎｉｓｏｌｏｎｅ）、デキサメタゾン（ｄｅｘａｍｅｔｈａｓｏｎｅ）、タモキシフェン（ｔａｍｏｘｉｆｅｎ）、トレミフェン（ｔｏｒｅｍｉｆｅｎｅ）、メドロキシプロゲステロン（ｍｅｄｒｏｘｙｐｒｏｇｅｓｔｅｒｏｎｅ）、アナストロゾール（ａｎａｓｔｒｏｚｏｌｅ）、エキセメスタン（ｅｘｅｍｅｓｔａｎｅ）、レトロゾール（ｌｅｔｒｏｚｏｌｅ）、リツキシマブ（ｒｉｔｕｘｉｍａｂ）、イマチニブ（ｉｍａｔｉｎｉｂ）、ゲフィチニブ（ｇｅｆｉｔｉｎｉｂ）、ゲムツズマブ・オゾガマイシン（ｇｅｍｔｕｚｕｍａｂ ｏｚｏｇａｍｉｃｉｎ）、ボルテゾミブ（ｂｏｒｔｅｚｏｍｉｂ）、エルロチニブ（ｅｒｌｏｔｉｎｉｂ）、セツキシマブ（ｃｅｔｕｘｉｍａｂ）、ベバシズマブ（ｂｅｖａｃｉｚｕｍａｂ）、スニチニブ（ｓｕｎｉｔｉｎｉｂ）、ソラフェニブ（ｓｏｒａｆｅｎｉｂ）、ダサチニブ（ｄａｓａｔｉｎｉｂ）、パニツムマブ（ｐａｎｉｔｕｍｕｍａｂ）、アスパラギナーゼ（ａｓｐａｒａｇｉｎａｓｅ）、トレチノイン（ｔｒｅｔｉｎｏｉｎ）、三酸化ヒ素（ａｒｓｅｎｉｃ ｔｒｉｏｘｉｄｅ）、又はそれらの塩、又はそれらの活性代謝物等が挙げられる。このうち、イリノテカン、ＳＮ－３８若しくはそれらの塩又はベバシズマブが好ましく、特にベバシズマブが好ましい。
次に実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は何らこれらに限定されるものではない。
（１）方法
（ａ）試薬
ＬＣ／ＭＳ用メタノール（和光純薬工業製）、ＨＰＬＣ用クロロホルム（和光純薬工業製）、逆浸透水（Ｄｉｒｅｃｔ－Ｑ ＵＶ、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ製）を溶解およびサンプル調製に用いた。
ＬＣ／ＭＳ用内部標準溶液（カチオン）として、Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｓｔａｎｄａｒｄ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ Ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ｃ１（ＩＳＣ１）およびＩｎｔｅｒｎａｌ Ｓｔａｎｄａｒｄ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ Ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ｃ２（ＩＳＣ２）を使用した。ＩＳＣ１は、水溶液中に１０ｍＭのＬ－ｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ ｓｕｌｆｏｎｅ（Ｈｕｍａｎ Ｍｅｔａｂｏｌｏｍｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ製）を含み、ＩＳＣ２は、水溶液中に１０ｍＭのＬ－Ａｒｇｉｎｉｎｅ－13Ｃ6 ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ製）、Ｌ－Ａｓｐａｒａｇｉｎｅ－15Ｎ2 ｍｏｎｏｈｙｄｒａｔｅ（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｉｓｏｔｏｐｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ製）、β－Ａｌａｎｉｎｅ－13Ｃ3，15Ｎ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ製）とＴｕｂｅｒｃｉｄｉｎ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ製）を含む。
ＬＣ／ＭＳ用内部標準溶液（アニオン）として、Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｓｔａｎｄａｒｄ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ Ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ａ１（ＩＳＡ１）およびＩｎｔｅｒｎａｌ Ｓｔａｎｄａｒｄ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ａ２（ＩＳＡ２）を使用した。ＩＳＡ１は、水溶液中に１０ｍＭのＤ－ｃａｍｐｈｏｒ－１０－ｓｕｌｆｏｎｉｃ ａｃｉｄ ｓｏｄｉｕｍ ｓａｌｔ（Ｈｕｍａｎ Ｍｅｔａｂｏｌｏｍｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ製）を含み、ＩＳＡ２は、水溶液中に１０ｍＭのｃｈｌｏｒａｎｉｌｉｃ ａｃｉｄ（東京化成工業製）を含む。
これらの内部標準溶液は、信号強度を標準化し、遊走時間を調整するのに用いた。また、ＩＳＣ１およびＩＳＡ１は得られた各代謝物の相対的な濃度を算出するためにも用いた。
（ｂ）臨床サンプル
（ｂ－１）患者背景
組織学的に確認された進行結腸・直腸癌（ＡＣＲＣ）患者で、標準的な化学療法の一次治療を行う対象として適格な合計６８名の患者から、前向きに血清サンプルを採取した。本研究の登録基準（適格性）は以下の通りである。
・登録時の年齢が２０歳以上
・Ｅａｓｔｅｒｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｖｅ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ（ＥＣＯＧ）のＰｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｓｔａｔｕｓ（ＰＳ）が０あるいは１
・結腸・直腸癌であることが組織病理学的に確認されている
・治癒切除不能で化学療法未治療の進行性あるいは再発性疾患（ただし、５－ＦＵ系薬剤による術後補助化学療法に限り、再発確認日から６ヶ月前に終了していれば登録可能とする）
・予測生存期間が３ヵ月以上
・主要臓器に重大な機能障害がない
・本試験登録前に、遺伝子多型検査やプロテオーム・メタボローム分析を含む試験の参加について、患者本人による署名、日付が記載された同意書が得られている。
（ｂ－２）患者への治療
全ての患者は一次化学療法として、ｂｅｖａｃｉｚｕｍａｂ（ＢＶ） ５ｍｇ／ｋｇを３０～９０分にわたって静脈内に投与され、引き続きｏｘａｌｉｐｌａｔｉｎ（Ｌ－ＯＨＰ） ８５ｍｇ／ｍ2とｌｅｖｏｆｏｌｉｎａｔｅ（ｌ－ＬＶ） ２００ｍｇ／ｍ2を１２０分で静脈内に投与された。その後、５－ＦＵ ４００ｍｇ／ｍ2を静脈内にｂｏｌｕｓ投与され、引き続き５－ＦＵ ２４００ｍｇ／ｍ2を４６時間で静脈内に持続点滴投与された（ｍＦＯＬＦＯＸ６療法）。この治療は、２週ごとに繰り返された。
Ｌ－ＯＨＰの治療が中断された後でも、必要な場合ＢＶ処置の有無にかかわらず簡略化されたｌ－ＬＶと５－ＦＵの併用投与（ｓＬＶ５ＦＵ２）は試験治療と認められた。
疾患進行、更なる試験治療を中止しなければならない有害事象の出現、医師の判断、患者からの試験治療継続の拒否、腫瘍の治癒切除手術に移行などがない限り、試験治療として最長２４サイクル継続した。
（ｂ－３）抗腫瘍効果の評価
抗腫瘍効果は、独立外部レビュー・ボードによってｔｈｅ Ｒｅｓｐｏｎｓｅ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ Ｃｒｉｔｅｒｉａ ｉｎ Ｓｏｌｉｄ Ｔｕｍｏｒｓ Ｇｕｉｄｅｌｉｎｅ １．０（ＲＥＣＩＳＴ）に基づき評価した。
治療前の腫瘍径の総和は、登録前１ヵ月以内のコンピューター断層装置または磁気共鳴画像によって撮影された画像を用いて計測した、そして、治療開始後は治療前と同様の方法で８週ごと繰り返し撮影された画像を用いて計測した。
（ｂ－４）サンプルの採取
血液サンプルは、化学療法開始前２週間以内と化学療法開始後からｏｘａｌｉｐｌａｔｉｎによる治療が中止されるまでの間、各治療サイクルの化学療法実施後２週後に採取した。
採取した血液検体は、室温で１５分の間放置し凝固させた後、４℃で３０分間、３０００ｒｐｍで遠心した。その後、血清は４つのポリプロピレン管に等しい量ずつ移し、液体窒素で直ちに凍結した。全てのこれらの手順は、採血から１時間以内で終了した。血清サンプルは、分析までの間－８０℃で保管した。
（ｂ－５）サンプルの調製
サンプル調製は、既報告の方法（Ｊ Ｐｒｏｔｅｏｍｅ Ｒｅｓ．２００３ Ｓｅｐ－Ｏｃｔ；２（５）：４８８－９４，Ｍｅｔａｂｏｌｏｍｉｃｓ．２０１０ Ｍａｒ；６（１）：７８－９５，Ｍｅｔａｂｏｌｏｍｉｃｓ．２０１３ Ａｐｒ；９（２）：４４４－４５３）に準じて行った。血清サンプルは氷上で解凍し、１８００μＬのメタノールを入れた遠沈管に２００μＬの血清と内部標準（ＩＳＡ１あるいはＩＳＣ１ １０μＭ）とクロロホルム２０００μＬおよび逆浸透水８００μＬを入れ混合した。ｖｏｒｔｅｘｉｎｇしたあと、混合物は４℃、５分間、４６００ｇで遠心分離した。その後、上層の１５００μＬをタンパク質の除去のため５ｋＤａフィルタ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ製）に移し、４℃、９１００ｇで２～４時間遠心ろ過した。濾過液は、減圧遠心分離機によって乾燥した。ＣＥ－ＴＯＦ ＭＳ分析の直前に、乾燥した濾過液は氷の上でＩＳＣ２あるいはＩＳＡ２を終濃度０．１ｍＭで含む逆浸透水５０μＬに溶解し、分析バイアルに入れ４℃、１０分間、１０００ｇで遠心し、分析に供した。
（ｃ）ＣＥ－ＴＯＦ ＭＳによるサンプル中の代謝物質測定
全てのサンプルは、ｄｕｐｌｉｃａｔｅで測定した。ＣＥ－Ｑ－ＴＯＦ ＭＳを用いて陽イオン測定条件で、また、ＣＥ－ＴＯＦ ＭＳを用いて陰イオン測定条件で、質量数１０００以下の代謝物質を網羅的に測定した。
（ｃ－１）カチオン性代謝物質測定条件
１）測定機器
カチオン性代謝物質の測定には、Ａｇｉｌｅｎｔ ７１００ ＣＥ ｓｙｓｔｅｍを装備したＡｇｉｌｅｎｔ ６５３０ Ａｃｃｕｒａｔｅ－Ｍａｓｓ Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ製）を使用した。キャピラリーには、Ｈｕｍａｎ Ｍｅｔａｂｏｌｏｍｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．（ＨＭＴ）のｃａｔａｌｏｇｕｅ ｎｕｍｂｅｒ（Ｃａｔ．Ｎｏ．）Ｈ３３０５－２００２のフュ－ズドシリカキャピラリー（内径５０μｍ、全長８０ｃｍ）を用いた。緩衝液には、ＨＭＴのＣａｔ．Ｎｏ．３３０１－１００１の緩衝液を用いた。印加電圧は＋２７ｋｖ、キャピラリー温度は２０℃で測定した。試料は加圧法を用いて５０ｍｂａｒで１０秒間注入した。
２）飛行時間型質量分析計（Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ）の分析条件
カチオンモードを用い、イオン化電圧は４ｋｖ、フラグメンター電圧は８０ｖ、スキマー電圧は５０ｖ、ｏｃｔＲＦＶ電圧は６５０ｖに設定した。乾燥ガスには窒素を使用し、温度３００℃、圧力５ｐｓｉｇに設定した。シース液はＨＭＴのＣａｔ．Ｎｏ．Ｈ３３０１－１０２０のシース液を使用した。ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｍａｓｓはｍ／ｚ ６５．０５９７０６およびｍ／ｚ ６２２．０８９６３に設定した。
（ｃ－２）アニオン性代謝物質測定条件
１）測定機器
アニオン性代謝物質の測定には、Ａｇｉｌｅｎｔ １６００ ＣＥ ｓｙｓｔｅｍを装備したＡｇｉｌｅｎｔ ６２１０ ＴＯＦ ｓｙｓｔｅｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ製）を使用し、キャピラリーおよびその温度はアニオンと同じ設定のものを使用した。緩衝液には、ＨＭＴのＣａｔ．Ｎｏ．Ｈ３３０２－１０２１の緩衝液を用いた。印加電圧は３０ｋｖ、試料は加圧法を用いて５０ｍＢａｒで２５秒間で注入した。
２）飛行時間型質量分析計（ＴＯＦ ＭＳ）の分析条件
ニューアニオンモードを用い、イオン化電圧は３．５ｋｖ、フラグメンター電圧は１２５ｖ、スキマー電圧は５０ｖ、ｏｃｔＲＦＶ電圧は１７５ｖに設定した。乾燥ガス及びシース液は、陽イオンと同じものを同じ条件で使用した。ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ ｍａｓｓはｍ／ｚ ５１．０１３８５４およびｍ／ｚ ６８０．０３５５４１に設定した。
（ｃ－３）データ処理
ｍ／ｚ、遊走時間（ＭＴ）とピークの領域を含むピークの情報を得るために、ＣＥ－Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ あるいはＣＥ－ＴＯＦ ＭＳによって見つけられたピークの生データはＭａｓｔｅｒ Ｈａｎｄｓ自動統合ソフトウェア ｖｅｒｓｉｏｎ ２．０（慶應義塾大学製）によって処理した。当該ソフトウェアにより、全てのピークを見つけ、ノイズを除去し、代謝物の注釈と相対的なピーク面積を含むデータマトリクスを生成した。ピークは、ＣＥから得られるｍ／ｚとＴＯＦ ＭＳから得られるＭＴを元に、ＨＭＴのメタボライト・データベースから推定される代謝物名を注釈としてつけた。アニオンのピークに注釈をつけるＭＴ、ｍ／ｚ、最小限のＳ／Ｎ比の条件は各々１．５分、５０ｐｐｍ、２０に設定した、そして、カチオンのそれは各々０．５分、５０ｐｐｍ、２０に設定した。
注釈がつけられた各代謝物の相対濃度は、ＩＳＣ１（カチオン）あるいはＩＳＡ１（アニオン）の面積で、各々の代謝物のピークの面積を除することで算出した。
ＣＥ－Ｑ－ＴＯＦ ＭＳ およびＣＥ－ＴＯＦ ＭＳ分析において、個々の患者の抗腫瘍効果は、分析者にマスキングした。
処理されたピークのリストは、更なる統計解析のために外部に出力された。統計解析では、ｄｕｐｌｉｃａｔｅで測定したアノテートされた各代謝物の相対濃度の平均をとった。
（ｄ）統計解析
（ｄ－１）解析方法１
臨床およびメタボロミクス・データ処理と統計解析は、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｗｉｎｄｏｗｓ ７上でＪＭＰ ６４ビット版バージョン１２（ＳＡＳ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ製）を用いた。
本試験では、６８例の患者で本試験治療開始前の６８の血清サンプルが得られた。治療効果予測因子の検討のために、本試験治療開始前の６８の血清サンプルから得られた代謝物のデータを使用した。
本試験では、試験治療期間中の最大の抗腫瘍効果を把握し、治療反応群（レスポンダー）と治療無反応群（ノンレスポンダー）を以下のように定義した。
・レスポンダー（Ｒ）：Ｒｅｃｉｓｔ基準に従い放射線診断医による画像診断の結果、試験治療期間中の最大の効果がｃｏｍｐｌｅｔｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅあるいはｐａｒｔｉａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅを示した患者。
・ノンレスポンダー（Ｎ－Ｒ）：Ｒｅｃｉｓｔ基準に従い放射線診断医による画像診断の結果、試験治療期間中の最大の効果がｓｔａｂｌｅ ｄｉｓｅａｓｅあるいはｐｒｏｇｒｅｓｓｉｖｅ ｄｉｓｅａｓｅの患者。
患者背景の違いを確認するのにχ二乗テストを用いた。各代謝物のＮ－Ｒ群とＲ群の差異を検討するために、ｔ検定（ウェルチ）を用いた。この結果、有意となったものを抗がん剤感受性判定マーカーの候補物質とした。各候補物質間の関係および患者背景との関連を確認するためにピアソン相関係数を用いた。抗がん剤感受性判定モデルを確立するために、一変量および変数増減法を用いた多変量の名義ロジスティック回帰分析を実行した。候補物質の予測力を評価するために受信者動作特性（ＲＯＣ）を用いた。多変量のロジスティック回帰分析においてはｆａｌｓｅ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ｒａｔｅを制御するようにＢｅｎｊａｍｉｎｉとＨｏｃｈｂｅｒｇの偽発見率法（ＢＨ－ＦＤＲ）により多重性の調整を行ったｐ値を算出した（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｒｏｙａｌ Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ，Ｓｅｒｉｅｓ Ｂ，５７，２８９-３００）。生存曲線と治療期間はカプラン・マイアー法を用いて推定し、その曲線の違いはログランク検定を使用した。候補物質となった代謝物の予後予測に対する評価を、コックス比例ハザードモデルを使用し一変量および多変量分析で調べた。
加えて、ハザード解析で有意になった代謝物について、レスポンダーの閾値などを元に２群にわけ、カプラン・マイアー曲線を描出し、ログランク検定を行った。
ｐ値＜０．０５を、いずれの解析においても統計的に有意とした。
（ｄ－２）解析方法２
臨床およびメタボロミクス・データ処理と統計解析は、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｗｉｎｄｏｗｓ ７上でＪＭＰ ６４ビット版バージョン１２（ＳＡＳ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ製）を用いた。
本試験では、６８例の患者で本試験治療開始前の６８の血清サンプルが得られた。治療効果予測因子の検討のために、本試験治療開始前の６８の血清サンプルから得られた代謝物のデータを使用した。
レスポンダー（Ｒ）とノンレスポンダー（Ｎ－Ｒ）は、（ｄ－１）と同様に定義した。
各代謝物のＮ－Ｒ群とＲ群の差異を検討するために、測定した代謝物について網羅的に名義ロジスティック解析を行い、モデル全体で有意となったものを抗がん剤感受性判定マーカーの候補物質とした。（ｄ－１）と同様の方法で、これらの代謝物のＲＯＣ曲線およびそのＡＵＣや代謝物単独での感度、特異度、精度を求めた。
次に、抗がん剤感受性判定マーカーの候補物質を基に効果予測モデルを確立するため、単変量で有意になった各代謝物についてＲＯＣ曲線からカットオフ値を求め、その値を元に二値化した。その二値化した値を用いてＳＴＥＰ ＷＩＳＥ法でベイズ情報量基準（ＢＩＣ）を指標にして変数増加法にて変数を選択した。そこで選択された変数を用い、多変量名義ロジスティック回帰分析を行った。抗がん剤感受性判定マーカーの候補物質の効果の予測力を評価するために受信者動作特性（ＲＯＣ）を用いた。
実際の臨床効果と予測モデルに基づく効果予測の性能を評価するため、Ｃｏｎｆｕｓｉｏｎ ｍａｔｒｉｘを作成し、レスポンダーの予測性能を感度、特異度、精度から評価した。
効果予測モデルの予後予測の性能を検討する目的で、全生存期間をカプラン・マイアー法を用いて推定し、レスポンダーとノンレスポンダーの差異をログランク検定を用いて検討した。
さらに、治療開始前の血中代謝物の濃度と各患者の全生存期間から、予後を予測する代謝物をＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した。以上の統計解析については、ｐ値＜０．０５を有意とした。なお、検討は７５％以上の患者で検出された代謝物で行った。
（２）結果
（２－１）解析方法１における結果
（ａ）Ｒ群とＮ－Ｒ群で有意差が見られた物質
表１に示すように、２９人の患者はＮ－Ｒと定義され、３９人の患者はＲと定義された。Ｒ群とＮ－Ｒ群の間で患者背景に差は見られなかった。
Figure 2022091828000007
本試験治療の前に得られた血清サンプルで発現が見られた３８０の代謝物について網羅的にｔ検定（ウェルチ）を行ったところ、図１に示すように、Ｒ群がＮ－Ｒ群より統計学的に有意に高値を示した代謝物として、２－ｄｅｏｘｙｇｌｕｃｏｓｅ ６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（２ＤＧ６Ｐ）、ｃｙｓｔｅｉｎｅ－ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ ｄｉｓｕｌｐｈｉｄｅ（ＣＳＳＧ）、ｏｘｉｄｉｚｅｄ ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ（ＧＳＳＧ）、ｉｍｉｄａｚｏｌｅ－４－ａｃｅｔａｔｅ（Ｉ４Ａ）及びｐｙｒｉｄｉｎｅ－２－ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ ａｃｉｄ ｂｕｔｙｌ ｅｓｔｅｒ（Ｐ２ＣＢ）が見出された。それぞれのｐ値は０．０２４６、０．０１２１、０．０００５、０．０４１６、０．００８２であった。一方、Ｒ群がＮ－Ｒ群より有意に低値を示したものは、ａｓｐａｒｔａｔｅ（ＡＳＰ）、ｈｙｐｏｔａｕｒｉｎｅ（ＨＹＰＴ）及びｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ（ＨＹＰＸ）であった。それぞれのｐ値は、０．０４８７、０．０３１０、０．０３２８であった。特に、２ＤＧ６Ｐ、ＧＳＳＧ、Ｉ４ＡとＰ２ＣＢはＲ群患者だけに検出された。
（ｂ）試験治療開始前の腫瘍径の和と各物質の相関
ＡＳＰ及びＣＳＳＧは、図２に示したように、試験治療開始前の腫瘍径の和と有意な相関が見られ、各々の回帰式、相関係数（ｒ）およびｐ値は以下のようであった。回帰式：ＡＳＰ：３９．５＋５８５．５×ＡＳＰ、ＣＳＳＧ：１７１．１－３５４０．６×ＣＳＳＧ、相関係数およびｐ値：ＡＳＰ：ｒ＝０．４１（ｐ＝０．０００６）、ＣＳＳＧ：ｒ＝－０．４８（ｐ＜０．０００１）。
（ｃ）抗がん剤感受性判定モデルの算出
（ａ）に示した８つの抗がん剤感受性判定マーカー候補物質で、レスポンダーかノンレスポンダーであるかを目的変数として単変量名義ロジスティック解析を行い、各物質のカットオフ値、確率値、ＲＯＣ曲線下面積を求めた。それぞれの結果を表２に示した。各物質のレスポンダーのカットオフ値は、以下の通りであった。２ＤＧ６Ｐ（５．３０４×１０-4≦）；ＡＳＰ（≦３．４０１×１０-2）；ＣＳＳＧ（２．２２３×１０-2≦）；ＧＳＳＧ（１．０６１×１０-3≦）；ＨＹＰＴ（≦１．８３７×１０-2）；ＨＹＰＸ（≦１．０５０×１０-1）；Ｉ４Ａ（３．３１６×１０-3≦）；Ｐ２ＣＢ（５．９５２×１０-4≦）。ほとんどの候補物質において、ｐ値は０．０１未満であった。そして、ＡＳＰとＣＳＳＧは特に良好なＡＵＣ（０．７＜）を示した。さらに、２ＤＧ６Ｐ、ＧＳＳＧ、Ｉ４ＡとＰ２ＣＢの特異性と陽性的中率は、各単独で１．００００であった。ＣＳＳＧは最も小さいｐ値と最大のＡＵＣを示し、ＨＹＰＸは最高の感度と陰性的中率を示した。
Figure 2022091828000008
抗がん剤感受性判定モデルを、変数増減法を使って多変量名義ロジスティックモデルから算出した。その結果は表３に示すように、２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、ＨＹＰＴ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢが残り、各々のＦＤＲ ｐ値は０．０００８２、０．００９９６、０．００２２２、０．０１１６３、０．０１１６３となった。
Figure 2022091828000009
抗がん剤感受性判定モデルは、下記式（１）に示す通りである。
Figure 2022091828000010
 （式中、２ＤＧ６Ｐ、ＣＳＳＧ、Ｉ４Ａ及びＰ２ＣＢは、各分子の測定結果が各分子のカットオフ値以上であった場合に１を、カットオフ値未満であった場合に０を示し、ＨＹＰＴは測定結果がカットオフ値以下であった場合に１を、カットオフ値を超えた場合に０を示す。）
上記モデルは、患者がレスポンダーであるか否かを判定する式である。ｐ値は患者がレスポンダーである確率を表し、ｐ値が０.５以上の場合にレスポンダーと判断する。
この抗がん剤感受性判定モデルのＲＯＣ曲線のＡＵＣは０．９１０７で、そのカットオフ値は－２．６４０以下であった（図３）。その感度、特異度、陽性的中率および陰性的中率は、各々０．６９２３、１．００００、１．００００、０．７０７３であった。
（ｄ）ＣＳＳＧの濃度によるＰＦＳ及びＯＳの解析
ＣＳＳＧの濃度（上記（ｃ）記載のカットオフ値以上をＣＳＳＧ Ｈｉｇｈとし、カットオフ値未満をＣＳＳＧ Ｌｏｗとする）に応じて無増悪生存期間（ＰＦＳ）、全生存期間（ＯＳ）の解析を行ったところ、ＣＳＳＧ ＨｉｇｈのグループはＣＳＳＧ Ｌｏｗのグループよりも有意に長いＰＦＳ（ｐ＝０．０３３１）とＯＳ（ｐ＝０．００２５）を示していた（図４Ａ，４Ｂ）。
ＣＳＳＧ Ｈｉｇｈ群のＰＦＳの中央値は４２５日で、Ｌｏｗ群は３６３日であった。ＣＳＳＧ Ｈｉｇｈ群の１年生存率および２年生存率は各々９０．５％及び７６．２％であったが、ＣＳＳＧ Ｌｏｗ群の１年および２年生存率は各々８０．９％、５３．２％であった。
（２－２）解析方法２における結果
（ａ）Ｒ群とＮ－Ｒ群でロジスティック解析で差が見られた物質
表１に示したように、Ｒ群とＮ－Ｒ群の間で患者背景に差は見られなかった。
本試験治療の前に得られた血清サンプルで発現が見られた４８０の代謝物について網羅的に治療への反応（レスポンダーかノンレスポンダーか）を目的変数とする名義ロジスティック解析を行った。その結果、表４に示す１５の代謝物が有意となった。各代謝物のレスポンダーとノンレスポンダーの分布を図５及び図６に示した。
Figure 2022091828000011
また、ＲＯＣ曲線から求めたＣｕｔ－ｏｆｆを元に２値化し、２値化した場合のｐ値、感度、精度、レスポンダー的中率、ノンレスポンダー的中率を求めた。それぞれの結果を表５に示した。各物質のカットオフ値は、以下の通りであった。１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ（≦８．４２２×１０-2）；２ＤＧ６Ｐ（５．３０４×１０-4≦）；２ＭＳＥ（１．４０４×１０-3≦）；ＡＳＰ（≦３．４０１×１０-2）；ｂｅｎｚａｍｉｄｅ（≦９．８５９×１０-2）；ＣＳＳＧ（２．２２３×１０-2≦）；ＤＯＰＭ（１．１５３×１０-3≦）；ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ（≦１．０５８×１０-3）；ＧＬ６Ｐ（≦８．１６７×１０-4）；ＧＳＳＧ（１．０６１×１０-3≦）；Ｇｌｙ－Ｇｌｙ（≦５．３４９×１０-3）；ＨＹＰＴ（≦１．８３７×１０-2）；ＨＹＰＸ（≦１．０５０×１０-1）；Ｉ４Ａ（３．３１６×１０-3≦）；Ｐ２ＣＢ（５．９５２×１０-4≦）。そして、ＡＳＰとＣＳＳＧは特に良好なＡＵＣ（０．７≦）を示した。さらに、２ＤＧ６Ｐ、ＧＳＳＧ、Ｉ４ＡとＰ２ＣＢの特異性と陽性的中率は、各単独で１．００００であった。
Figure 2022091828000012
（ｂ）抗がん剤感受性判定モデルの算出
抗がん剤感受性判定モデルを、変数増減法を使って多変量名義ロジスティックモデルから算出した。その結果は表６に示すように、７代謝物モデルが算出された。このモデルでは、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ、ＤＯＰＭ、ＧＬ６Ｐ、ＨＹＰＴが選択され、各々のＦＤＲ ｐ値は０．０２１６１、０．０２８５１、０．００６７９、０．０００２３、０．０００２３、０．０３４３９、０．０００２３となった。また、単変量解析でパラメータも有意であった代謝物から３代謝物モデルが算出され、この３代謝物モデルでは、ＣＧＧＳ、ＤＯＰＭ、ＨＹＰＴが選択され、各々のＦＤＲ ｐ値は０．００００１、０．０００３２、０．００２８１となった。
Figure 2022091828000013
抗がん剤感受性判定モデル（７代謝物モデル及び３代謝物モデル）は、それぞれ下記式（２）および（３）に示す通りである。
Figure 2022091828000014
 （式中、２ＤＧ６Ｐは、２ＤＧ６Ｐの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１０．２１９０を、カットオフ値未満であった場合に－１０．２１９０を示し、２ＭＳＥは、２ＭＳＥの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．４７７８を、カットオフ値未満であった場合に－１．４７７８を示し、ＡＳＰは、ＡＳＰの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．４９７６を、カットオフ値未満であった場合に１．４９７６を示し、ＣＳＳＧは、ＣＳＳＧの測定結果がカットオフ値以上であった場合に２．０９３７を、カットオフ値未満であった場合に－２．０９３７を示し、ＤＯＰＭは、ＤＯＰＭの測定結果がカットオフ値以上であった場合に２．２２５８を、カットオフ値未満であった場合に－２．２２５８を示し、ＧＬ６Ｐは、ＧＬ６Ｐの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．６６２３を、カットオフ値未満であった場合に１．６６２３を示し、ＨＹＰＴは、ＨＹＰＴの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－２．３２００を、カットオフ値未満であった場合に２．３２００を示し、該カットオフ値は、２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3であり、ＡＳＰの場合に３．４０１×１０-2であり、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、ＧＬ６Ｐの場合に８．１６７×１０-4であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2である。）
Figure 2022091828000015
 （式中、ＣＳＳＧは、ＣＳＳＧの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．８７０１を、カットオフ値未満であった場合に－１．８７０１を示し、ＤＯＰＭは、ＤＯＰＭの測定結果がカットオフ値以上であった場合に１．４０８１を、カットオフ値未満であった場合に－１．４０８１を示し、ＨＹＰＴは、ＨＹＰＴの測定結果がカットオフ値以上であった場合に－１．０８６９を、カットオフ値未満であった場合に１．０８６９を示し、該カットオフ値は、ＣＳＳＧの場合に２．２２３×１０-2であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3であり、ＨＹＰＴの場合に１．８３７×１０-2である。）
上記７代謝物モデル及び３代謝物モデルは、患者がレスポンダーであるか否かを判定する式である。ｐ値は患者がレスポンダーである確率を表し、ｐ値が０.５以上の場合にレスポンダーと判断する。
７代謝物モデルのＲＯＣ曲線のＡＵＣは０．９７であった（図７ａ）。その感度、特異度、陽性的中率および陰性的中率は、各々０．９４９、０．８６２、０．９０２、０．９１２であった。
また、３代謝物モデルのＲＯＣ曲線のＡＵＣは０．８８であった（図７ｂ）。その感度、特異度、陽性的中率および陰性的中率は、各々０．７６９、０．８２８、０．８５７、０．７９４であった。
式（１）～（３）のうち、特に式（２）は、式（１）及び（３）と比較して高いＡＵＣを示し、感度が高いことから、レスポンダーを誤ってノンレスポンダーとして判定する確率が低く、最も有用な抗がん剤感受性判定モデル式と言える。
（ｃ）７代謝物モデル及び３代謝物モデルにおけるＯＳの予測性能
上記７代謝物モデル及び３代謝物モデルがＯＳについて予測可能性を検証するために、上記モデルにより治療開始前の代謝物を元にレスポンダーと判断された群（Ｒ群）とノンレスポンダーと判断された群（Ｎ－Ｒ群）に分けた上で、カプラン・マイアー曲線を描き、Ｒ群とＮ－Ｒ群でＯＳに差が出るか確認した。Ｒ群とＮ－Ｒ群のＯＳは、ログランク検定で比較した。
その結果、７代謝物モデル及び３代謝物モデルの両方において、Ｒ群はＮ－Ｒ群に比べ有意にＯＳが長く（それぞれ、ｐ＝０．０００２、ｐ＝０．００５６）、本代謝物モデルの有用性を示す結果となった（図８ａ及び図８ｂ）。
（ｄ）代謝物のＣＯＸ比例ハザードモデルによるＯＳの解析
ＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した結果、有意となった代謝物のハザード比とその９５％信頼区間を図９に示した。２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ＣＳＳＧ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ及びｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄは、血中の濃度が高いほど生存期間が長いこと、また、ＡＳＰ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ、ＨＹＰＸ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄは血中濃度が高いほど生存期間が短いことが見出された。
これらの生存期間予測代謝物と（２－２）（ａ）に記載の抗がん剤感受性予測代謝物では、ＡＳＰ、ＣＳＳＧ及びＨＹＰＸが重複しており、表７に示したとおり、挙動が一致しているため、これら代謝物は特に有用であることが示された。
Figure 2022091828000016
（ｅ）ＣＯＸ比例ハザードモデルで有意になった代謝物の閾値別のカプラン・マイアー曲線とログランク検定結果
ＣＯＸの比例ハザードモデルで解析した結果有意となった代謝物について、各代謝物ごとに適宜カットオフ値を用いて群分けし、カプラン・マイアー曲線の描出とログランク検定を行った。中でもＣＳＳＧ，ＨＹＰＸはレスポンダーとノンレスポンダーのカットオフ値と同じ値で群分けされた。結果をハザード比が１未満のものについて図１０に、１を超えたものについて図１１に示した。すべての代謝物でカットオフ値以上と未満でＯＳに有意差が得られ、これら代謝物の有用性がさらに示された。

Claims (15)

  1. ＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子からなる、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤治療時の予後予測マーカー。
  2. 抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む請求項１記載の予後予測マーカー。
  3. がん患者由来の生体試料中のＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の量を測定する工程を含む、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤治療時の予後予測のための方法。
  4. 抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む請求項３記載の方法。
  5. ＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ及びＨＹＰＴから選ばれる１以上の分子からなる、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定マーカー。
  6. 抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む請求項５記載の抗がん剤感受性判定マーカー。
  7. がん患者由来の生体試料中のＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ及びＨＹＰＴから選ばれる１以上の分子の量を測定する工程を含む、オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の感受性判定のための方法。
  8. さらに、前記測定結果を対照レベルと比較することにより、当該がん患者の抗がん剤に対する感受性を判定する工程を含む請求項７記載の方法。
  9. 前記対照レベルがレスポンダーのカットオフ値であって、該カットオフ値がＨＹＰＸの場合に≦１．０５０×１０-1であり、ＡＳＰの場合に≦３．４０１×１０-2であり、２ＤＧ６Ｐの場合に５．３０４×１０-4≦であり、２ＭＳＥの場合に１．４０４×１０-3≦であり、ＤＯＰＭの場合に１．１５３×１０-3≦であり、ＧＳＳＧの場合に１．０６１×１０-3≦であり、Ｉ４Ａの場合に３．３１６×１０-3≦であり、Ｐ２ＣＢの場合に５．９５２×１０-4≦であり、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅの場合に≦８．４２２×１０-2であり、ｂｅｎｚａｍｉｄｅの場合に≦９．８５９×１０-2であり、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄの場合に≦１．０５８×１０-3であり、ＧＬ６Ｐの場合に≦８．１６７×１０-4であり、Ｇｌｙ－Ｇｌｙの場合に≦５．３４９×１０-3であり、ＨＹＰＴの場合に≦１．８３７×１０-2である請求項８記載の方法。
  10. 生体試料が、抗がん剤を投与されたがん患者由来の生体試料である請求項７～９のいずれか１項に記載の方法。
  11. 抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む請求項７～１０のいずれか１項に記載の方法。
  12. がん患者由来の生体試料中のＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の量を測定するためのプロトコールを含むことを特徴とする請求項３又は４記載の方法を実施するためのキット。
  13. がん患者由来の生体試料中のＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ及びＨＹＰＴから選ばれる１以上の分子の量を測定するためのプロトコールを含むことを特徴とする請求項７～１１のいずれか１項に記載の方法を実施するためのキット。
  14. オキサリプラチン又はその塩とフルオロウラシル又はその塩とレボホリナート又はその塩を含む抗がん剤の存在下、がん細胞株又は担癌動物由来の生体試料中のＨＹＰＸ、ＡＳＰ、２ＤＧ６Ｐ、２ＭＳＥ、ＤＯＰＭ、ＧＳＳＧ、Ｉ４Ａ、Ｐ２ＣＢ、１－ｍｅｔｈｙｌ－２－ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ、ｂｅｎｚａｍｉｄｅ、ｇｌｕｃａｒｉｃ ａｃｉｄ、ＧＬ６Ｐ、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ、ＨＹＰＴ、２－ａｍｉｎｏｂｕｔｙｒｉｃ ａｃｉｄ、ｇａｍｍａ－Ｇｌｕ－Ｃｙｓ、ｇｌｙｃｅｒｏｌ－３－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ、ｑｕｉｎｉｃ ａｃｉｄ、ｇｌｙｃｏｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ及びｌａｃｔｉｃ ａｃｉｄから選ばれる１以上の分子の発現変動を指標とする抗がん剤感受性亢進剤のスクリーニング方法。
  15. 抗がん剤が、さらにベバシズマブを含む請求項１４記載のスクリーニング方法。


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