JP2021138771A - 異なる医薬品の制御送達のためのビヒクル - Google Patents

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Abstract

【課題】異なる医薬品の制御送達のためのビヒクルを提供すること。【解決手段】「ナノリポゲル」は、シクロデキストリンまたはイオン交換樹脂などの吸収剤を含み得るヒドロゲルコアを包囲する１種またはそれより多くの脂質層を含む送達ビヒクルである。ナノリポゲルを、その後に制御様式で放出させることができる種々の異なる化学物質を組み込むように構築することができる。これらの異なる組み込まれた化学物質は、サイズおよび組成が全く異なり得る。ナノリポゲルは、脂質二重層内に同時カプセル化タンパク質および小型の疎水性薬物を含むように構築されている。ナノリポゲル内に組み込まれた薬剤を、制御様式で環境内に放出することができ、例えば、ナノリポゲルは、化学的組成および分子量が大きく異なる薬剤の同時徐放を達成するための手段を提供する。さらに、ナノリポゲルは、好ましくは、生体内分布を調整することができる。【選択図】なし

Description

連邦政府によって資金供与を受けた研究開発についての声明
この発明は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ ＨｅａｌｔｈによってＴａｒｅｋ Ｍ．Ｆａｈｍｙに付与された契約Ｒ０１−ＨＬ０８５４１６およびＲ０１−ＥＢ００８２６０、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ ＦｏｕｎｄａｔｉｏｎによってＴａｒｅｋ Ｍ．Ｆａｈｍｙに付与されたＰｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ助成金番号ＨＬ−５５３９７およびＴａｒｅｋ Ｍ．Ｆａｈｍｙに付与されたＮＩＲＴ助成金番号ＣＴＳ３０９０６０９３２６の下、政府の支援を受けてなされた。政府は、本発明に一定の権利を有する。
発明の分野
本発明は、一般に、有効性を増強するためにサイズおよび組成によって所望の細胞型または組織型を標的することができるコア−シェルナノ粒子を使用した高分子量および低分子量または親水性および疎水性の分子、特に、抗原または腫瘍および免疫調節分子の持続送達分野にある。
発明の背景
治療上の処置の有効性は使用薬剤の作用機構に非常に依存するが、しばしば他の要因が至適な応答の誘発に役立つ。疾患発症に関連する投与の許容用量および時間は他の重要な検討事項である。さらに、治療反応においても重要であり得る薬物動態学的特徴および薬力学的特徴に関する複雑な問題が多数存在する。長年にわたり、薬物送達に最適なストラテジーを確立する努力において無数の治療薬を使用した研究が多数行われている。長い時間をかけて、実質的にすべての疾患型のための薬物レジメンは、ますます、併用療法を含めるようにデザインされている。いくつかの例では、同一または異なる疾患を標的とする薬物の組み合わせによって有効性を改善するために組み合わせを使用する。他の例では、異なる作用機構を有する薬物を相乗的に作用することができる。さらに他の例では、併用療法は、有益な効果（疼痛の軽減および／または疾患に直接関与しない器官の副作用からの防御および／または天然の防御機構、特に免疫系による所望の活性の促進など）を有する１種またはそれより多くの薬剤と共に病状に直接作用する１種またはそれより多くの薬物を含むことができる。疾患の処置における役割の異なるかかる異種薬物は、しばしば、化学的性質が劇的に異なり、したがって、併用療法における薬物送達問題は非常に困難であり得る。
制御放出が可能な方法で薬物をカプセル化することができる小型化ビヒクルの使用に関与するストラテジーは、薬物送達の特徴を至適化する方法として有望であることが示されている。かかる系は、その全身的半減期および生体内分布が重要な薬物を使用して多数の疾患を首尾よく処置および制御することが可能である。薬物が異なればその化学的性質も多様であるため、薬物の化学的性質に対して無関係な様式で薬物放出を有用に調節することができる小型化ビヒクルのデザインおよび利用可能性において明確な利点を有する。
粒子状ワクチンは、広範な種々の状態に対する調整可能な予防薬および治療薬の作製のための有望なテクノロジーである。それぞれリポソームおよびポリエステルによって例示される小胞および固体の生分解性ポリマープラットフォームは、ワクチン送達研究における最も普遍性の高いプラットフォームのうちの２つである。ポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）ナノ粒子での免疫化により、リポソームおよびミョウバンと比較して抗体価が長期間誘発される。細胞性免疫応答の大きさはＰＬＧＡをワクチン接種した動物で最も高く、それによりエフェクター様記憶Ｔ細胞表現型の頻度もより高くなり、細胞内細菌が有効にクリアランスされることが示される。これら２つの一般的な粒子プラットフォームの性能の相違は、材料の相違に起因することを示さず、抗原送達の動態に関連するようである。リポソームは、親水性小分子、およびさらにタンパク質をカプセル化するために容易に改変される。しかし、これらの処方物の安定性およびカプセル化された薬剤の放出プロフィールは容易に調節されない。他方では、生分解性固体粒子（ポリ（ラクチック−ｃｏ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）から作製された生分解性固体粒子など）は、安定性が高く、調節可能な放出特性を有するが、治療用サイトカインの容易なカプセル化および制御放出や組み合わせ送達が困難である。これらの制限を克服するために、異なる材料の特徴を統合するハイブリッドプラットフォームは、カプセル化および送達の組み合わせにおいて利点を提供することができる。かかる系は、目的の有機または無機のメソ多孔質またはナノ多孔質のコア捕捉分子を脂質またはポリマーでコーティングするコア−シェル法に基づいて証明されている。これらのハイブリッド系は、カプセル材料（ｅｎｃａｐｓｕｌａｎｔ）の好ましい薬物動態学および生体内分布を促進しながら、小分子薬物、タンパク質、および核酸などの種々の薬剤のカプセル化および放出を増強することができる。
ハイブリッド系は、そのようなものとして、明確に魅力的な薬物送達代替法であり、異なる研究で調査されてきた。かかる系を、系の循環またはターゲティングのための能力を増強する一方で、物理的性質の異なる薬剤を送達させることができる流体生物学的二重層を使用して操作することができる。いくつかのコア−シェルハイブリッド系は、この目的について証明されており、実際、刺激的で新規な癌治療で役立ち得る組み合わせ送達が得られる可能性がある。
特にワクチン分野において、生物活性物質の放出速度は、単にどの生物活性物質が組み込まれるのかということだけでなく、機能にとって非常に重要であることが明らかである。抗原および免疫調節薬などの２つの異なる薬剤の送達に関連する複雑さが、異なる速度で薬剤を制御放出させることが可能な送達ビヒクルを見出すのをより困難にしている。これは特に、２つの薬剤の性質が異なる場合（一方が疎水性であり、且つ他方が親水性であるか、一方が高分子量であり、且つ他方が低分子量である場合など）に当てはまる。化学的特性が異なる粒子を提供することができる場合でさえ、例えば、コアが疎水性であり、シェルが親水性であり（逆もまた同じ）、かつこの薬剤の特性によって送達デバイスの外側よりもむしろ送達デバイスの別の領域に薬剤が移動する場合、または、例えば、一方の薬剤が非常に低分子量であって迅速に拡散する傾向があり、他方の薬剤が非常に高分子量であって非常に遅く拡散する傾向がある場合、確実にコアからシェルに拡散することなく正確な時間に薬剤を放出させることは困難である。
したがって、本発明の目的は、２種またはそれより多い医薬品、特に、異なる化学的特性および／または分子量を有する薬剤を異なる速度で送達させるための手段を提供することである。
ナノリポゲル、これらの送達ビヒクルへ薬剤を組み込む方法、ならびに疾患の処置のためのこれらの組成物の作製および使用方法を開発した。これらを、形成前、形成中、または形成後に薬剤を負荷し、その後に薬剤の制御放出ビヒクルとして機能するようにデザインする。「ナノリポゲル」は、タンパク質および小分子の両方を持続送達させるためのリポソームおよびポリマーベースの粒子の両方の利点を組み合わせたナノ粒子である。１つの好ましい実施形態では、ナノリポゲルは脂質包囲デンドリマー（ＬＥＤ）である。
ナノリポゲルに、典型的には、複数の薬剤の制御放出がその後に達成されるような１つを超える薬剤を負荷する。
ナノリポゲルに、形成中に１種またはそれより多くの第１の薬剤を負荷し、形成後に第２の薬剤の存在下でのナノリポゲルの再水和過程によって１種またはそれより多くの第２の薬剤を負荷する。例えば、ナノリポゲルに、アジュバントとしての機能を果たす分子を負荷し、その後、形成後に標的抗原と共にアジュバントを制御放出させるための１種またはそれより多くの標的抗原を組み込む。あるいは、アジュバントを負荷したナノリポゲルを患者の腫瘍部位に挿入し、腫瘍を切除し、ナノリポゲルに、放出される腫瘍抗原を負荷する。このナノリポゲルは、患者の体内に制御様式でアジュバントと共に腫瘍抗原を放出する。
任意のいくつかの適切なヒドロゲル材料もしくはその組み合わせまたはシクロデキストリンまたはイオン交換樹脂などの薬剤をｉｎ ｓｉｔｕで負荷および放出することが可能な他の材料からナノリポゲルを構築する。ナノリポゲルは、球状、円板、ロッド、または異なるアスペクト比の他の幾何学的形状であり得る。ナノリポゲルは、典型的には、遠隔負荷によって薬剤をカプセル化可能であり、且つ異なる放出速度を容易にするために特性を調整可能な合成ポリマーまたは天然ポリマーから形成される。
ナノリポゲルは、シクロデキストリンまたはイオン交換樹脂などの吸収剤を含み得るヒドロゲルコアを包囲する脂質二重層を含む送達ビヒクルである。ナノリポゲルを、その後に制御様式で放出させることができる種々の異なる化学的実体を組み込むように構築することができる。これらの異なる組み込まれた化学的実体は、サイズおよび組成が劇的に異なり得る。ナノリポゲルは、脂質二重層の内側に同時にカプセル化されたタンパク質および小型の疎水性薬物を含むように構築されている。ナノリポゲル内に組み込まれた薬剤を、制御様式で環境内に放出することができ、例えば、ナノリポゲルは、化学的組成および分子量が大きく異なる薬剤の同時徐放を達成するための手段を提供する。さらに、ナノリポゲルは、好ましくは、生体内分布を調整することができる。
非限定的な例では、一方の薬剤は抗原であり、第２の薬剤は免疫アジュバントである。それにより、アジュバントと共に抗原が徐放されて免疫応答が至適化される。１つの例では、免疫賦活性タンパク質であるインターロイキン−２（ＩＬ−２）および低分子量有機分子である２−（５−ベンゾ［１，３］ジオキソール−５−イル−２−ｔｅｒｔ−ブチル−３Ｈ−イミダゾール−４−イル）−６−メチルピリジン塩酸塩（トランスフォーミング成長因子−β（ＴＧＦ−β）のインヒビター）のナノリポゲルによって同時持続送達が達成される。この構築物は、マウス系において、単独の薬剤または２種の薬剤の組み合わせの溶液での投与によって達成可能な抗腫瘍応答よりもはるかに優れた抗腫瘍応答が得られる。
この例は、粒子プラットフォームによって媒介される抗原持続の重要性およびエフェクター記憶細胞応答の長期出現におけるその役割を証明している。ＣＤ４標的化サイトカイン負荷ナノ粒子（「ＮＰ」）の全身投与により、マウス同種移植片モデルにおいて宿主調節細胞の増殖によって寛容を促進することができた。ＣＤ４標的化ＴＧＦ−β／ＩＬ−２
ＮＰのみで、健康なマウスの脾臓および腸間膜リンパ節のＴｒｅｇ頻度の３％増大が誘導された。ＣＤ４標的化ＬＩＥナノ粒子ＮＰで前処置した脾細胞のドナー特異的輸血により、ドナー特異的Ｔｒｅｇが４倍に増加し、完全に不適合の心臓同種移植片の寛容が７〜１２日間有意に増強された。
Ｂ１６マウス黒色腫モデルでは、ＩＬ−２サイトカイン治療の増殖効果および抗腫瘍効果は、腫瘍内のＴＧＦ−β分泌およびＴｒｅｇの活性によって阻止されるとの仮説がたてられている。したがって、ナノリポゲルを、小分子ＴＧＦ−βインヒビターであるＳＢ５０５１２４およびＩＬ−２を腫瘍微小環境に同時送達させるために使用した。腫瘍局在化薬物送達が重要であることが見出された。最も顕著且つ有意な生存利益または腫瘍成長の減少が、ＳＢおよびＩＬ−２の同時ナノリポゲル（「ｎＬＧ」）媒介送達を受けたマウスで認められた。単剤治療および可溶性薬剤治療では、腫瘍内注射によって投与した場合でさえも皮下腫瘍成長を遅延させることができなかったが、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２では腫瘍成長速度の有意な遅延が誘導され、さらに、長期生存について追跡したマウスの４０％で完全後退が認められた。ナノリポゲル中のカプセル化により、静脈内投与後に薬物循環が改善され、投与７２時間後までに肺内で用量がほぼ４倍に増加した。治療１週間後、静脈内ナノリポゲル（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）治療により、コントロールと比較して転移性の肺成長の数が有意に減少した。
例えば、本発明は、以下の項目を提供する：
（項目１）
ナノリポゲルであって、以下：
送達されるべき治療薬、診断薬、または予防薬に結合してｉｎ ｖｉｖｏ条件下で上記薬剤を放出することができるホスト分子を含むポリマーマトリクスコアおよび
脂質シェル
を含む、ナノリポゲル。
（項目２）
上記ポリマーマトリクス、上記脂質シェル、またはその両方が架橋している、項目１に記載のナノリポゲル。
（項目３）
上記ホスト分子と複合体化されるか、上記ポリマーマトリクス内に分散されるか、上記脂質シェル中に分散されるか、もしくは上記脂質シェルに結合されるか、またはそれらの組み合わせが行われる薬剤を含む、項目１に記載のナノリポゲル。
（項目４）
上記ポリマーマトリクスが、ポリ（乳酸）、ポリ（グリコール酸）、ポリ（乳酸−ｃｏ−グリコール酸）、ポリヒドロキシアルカノアート、例えば、ポリ３−ヒドロキシブチラートまたはポリ４−ヒドロキシブチラート；ポリカプロラクトン；ポリ（オルトエステル）；ポリ酸無水物；ポリ（ホスファゼン）；ポリ（ラクチド−ｃｏ−カプロラクトン）；ポリ（グリコリド−ｃｏ−カプロラクトン）；ポリカーボネート；ポリアミド、ポリペプチド、およびポリ（アミノ酸）；ポリエステルアミド；他の生分解性ポリエステル；ポリ（ジオキサノン）；ポリ（アルキレンアルキラート）；親水性ポリエーテル；ポリウレタン；ポリエーテルエステル；ポリアセタール；ポリシアノアクリラート；ポリシロキサン；ポリ（オキシエチレン）／ポリ（オキシプロピレン）コポリマー；ポリケタール；ポリホスファート；ポリヒドロキシバレラート；ポリアルキレンオキサラート；ポリアルキレンスクシナート；ポリ（マレイン酸）、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン；ポリ（アルキレンオキシド）；セルロース、ポリアクリル酸、アルブミン、コラーゲン、ゼラチン、プロラミン、ポリサッカリド、それらの誘導体、コポリマー、およびブレンドからなる群より選択されるポリマーを含む、項目１に記載のナノリポゲル。
（項目５）
上記ホスト分子が、ポリサッカリド、例えば、アミロース、シクロデキストリン、および複数のアルドース環を含む他の環状またはらせん状の化合物、およびジサッカリド、クリプタンド、クリプトファン、キャビタンド、クラウンエーテル、デンドリマー、イオン交換樹脂、カリックスアレーン、バリノマイシン、ナイジェリシン、カテナン、ポリカテナン、カルセランド、ククルビツリル、スフェランド、カーボンナノチューブ、フラーレン、およびグラフェンベースのホスト材料からなる群より選択される、ナノリポゲル。
（項目６）
上記薬剤が、小分子活性薬剤、タンパク質、ポリペプチド、ポリサッカリド、および核酸からなる治療薬、予防薬、診断薬、および栄養補助薬の群より選択される、項目３に記載のナノリポゲル。
（項目７）
上記薬剤が、抗生物質、抗ウイルス剤、抗寄生虫薬、サイトカイン、成長因子、成長抑制物質、ホルモン、ホルモンアンタゴニスト、抗体およびその生物活性フラグメント、抗原およびワクチン処方物、抗炎症薬、免疫調節薬、およびオリゴヌクレオチド薬、常磁性分子、蛍光化合物、磁性分子、および放射性核種、Ｘ線造影剤、および造影剤からなる群より選択される、項目６に記載のナノリポゲル。
（項目８）
上記薬剤が、アルキル化剤、代謝拮抗物質、抗有糸分裂薬、アントラサイクリン、細胞傷害性抗生物質、トポイソメラーゼインヒビター、血管内皮成長因子に対する抗体；サリドマイド；エンドスタチン；アンギオスタチン；受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）インヒビター）；チロシンキナーゼインヒビター；トランスフォーミング成長因子−αインヒビターまたはトランスフォーミング成長因子−βインヒビター、および上皮成長因子受容体に対する抗体からなる群より選択される、項目７に記載のナノリポゲル。
（項目９）
任意選択的に架橋した１種またはそれより多くの同心状の脂質層から構成されるリポソームシェルを含む、項目１に記載のナノリポゲルであって、上記脂質が生理学的ｐＨで中性、アニオン性、またはカチオン性の脂質であり得る、ナノリポゲル。
（項目１０）
上記脂質が、コレステロール、リン脂質、リゾ脂質、リゾリン脂質、およびスフィンゴ脂質、ならびにそれらの誘導体からなる群より選択される、項目９に記載のナノリポゲル。
（項目１１）
ホスファチジルコリン；ホスファチジルセリン、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルイノシトール；糖脂質；スフィンゴミエリン、セラミドガラクトピラノシド、ガングリオシド、セレブロシド；脂肪酸、ステロール；１，２−ジアシル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン、１，２−ジヘキサデシルホスホエタノールアミン、１，２−ジステアロイルホスファチジルコリン、１，２−ジパルミトイルホスファチジルコリン、１，２−ジミリストイルホスファチジルコリン、Ｎ−［１−（２，３−ジオレオイルオキシ）プロピル］−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウム塩、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド、１，２−ジアシルオキシ−３−トリメチルアンモニウムプロパン、Ｎ−［１−（２，３−ジオロイルオキシ）プロピル］−Ν，Ν−ジメチルアミン、１，２−ジアシルオキシ−３−ジメチルアンモニウムプロパン、Ｎ−［１−（２，３−ジオレイルオキシ）プロピル］−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウムクロリド、１，２−ジアルキルオキシ−３−ジメチルアンモニウムプロパン、ジオクタデシルアミドグリシルスペルミン、３−［Ｎ−（Ｎ’，Ｎ’−ジメチルアミノ−エタン）カルバモイル］コレステロール（ＤＣ−Ｃｈｏｌ）；２，３−ジオレオイルオキシ−Ｎ−（２−（スペルミンカルボキサミド）−エチル）−Ｎ，Ｎ−ジメチル−１−プロパンアミニウムトリフルオロ−アセタート（ＤＯＳＰＡ）、β−アラニルコレステロール、セチルトリメチルアンモニウムブロミド（ＣＴＡＢ）、ジＣ１４−アミジン、Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチル−Ｎ’−テトラデシル−３−テトラデシルアミノ−プロピオンアミジン、Ｎ−（α−トリメチルアンモニオアセチル）ジドデシル−Ｄ−グルタマートクロリド（ＴＭＡＧ）、ジテトラデカノイル−Ｎ−（トリメチルアンモニオ−アセチル）ジエタノールアミンクロリド、１，３−ジオレオイルオキシ−２−（６−カルボキシ−スペルミル）−プロピルアミド（ＤＯＳＰＥＲ）、およびＮ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチル−、Ｎ’−ビス（２−ヒドロキシルエチル）−２，３−ジオレオイルオキシ−１，４−ブタンジアンモニウムヨージド、１−［２−（アシルオキシ）エチル］２−アルキル（アルケニル）−３−（２−ヒドロキシエチル）−イミダゾリニウムクロリド誘導体、例えば、１−［２−（９（Ｚ）−オクタデセノイルオキシ）エチル］−２−（８（Ｚ）−ヘプタデセニル−３−（２−ヒドロキシエチル）イミダゾリニウムクロリド（ＤＯＴＩＭ）および１−［２−（ヘキサデカノイルオキシ）エチル］−２−ペンタデシル−３−（２−ヒドロキシエチル）イミダゾリニウムクロリド（ＤＰＴＩＭ）、および第四級アミン上にヒドロキシアルキル部分を含む２，３−ジアルキルオキシプロピル第四級アンモニウム誘導体、例えば、１，２−ジオレオイル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩ）、１，２−ジオレイルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ）、１，２−ジオレイルオキシプロピル−３−ジメチル（ｄｉｍｅｔｙｌ）−ヒドロキシプロピルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ−ＨＰ）、１，２−ジオレイル−オキシ−プロピル−３−ジメチル−ヒドロキシブチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ−ＨＢ）、１，２−ジオレイルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシペンチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ−Ｈｐｅ）、１，２−ジミリスチルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシルエチルアンモニウムブロミド（ＤＭＲＩＥ）、１，２−ジパルミチルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＰＲＩＥ）、および１，２−ジステリルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＳＲＩＥ）からなる群より選択される脂質を含む、項目９に記載のナノリポゲル。
（項目１２）
上記脂質が中性、アニオン性、またはカチオン性の脂質のＰＥＧ化誘導体である、項目１に記載のナノリポゲル。
（項目１３）
ホスト分子とポリマーマトリクスとを混合する工程、およびポリマー混合物を脂質とともに同時押し出しする工程を含む、項目１に記載のナノリポゲルを作製する方法。
（項目１４）
形成中に１種またはそれより多くの第１の薬剤を負荷し、そして形成後に１種またはそれより多くの第２の薬剤の存在下でのポリマーマトリクス−ホスト分子の再水和過程によって上記第２の薬剤を負荷する工程を含む、項目１に記載のナノリポゲルを負荷する方法。
（項目１５）
項目１に記載のナノリポゲルを負荷する方法であって、上記方法は、形成中に１種またはそれより多くの第１の薬剤を負荷し、形成後に１種またはそれより多くの第２の薬剤の存在下でのポリマーマトリクス−ホスト分子の再水和過程によって上記第２の薬剤を負荷する工程、および患者内の摘除したかまたは化学的にもしくは放射線によって切除した腫瘍の部位に移植する工程を含むか、あるいは、アジュバントを負荷した上記ポリマーマトリクス−ホスト分子を患者の腫瘍の部位に挿入し、上記腫瘍を切除し、上記ポリマーマトリクス−ホスト分子が放出された腫瘍抗原を吸収し、かつ上記ポリマーマトリクス−ホスト分子ｔが制御様式で上記患者の体内にアジュバントと共に上記腫瘍抗原を放出する、方法。
（項目１６）
治療薬、予防薬、または診断薬を投与する方法であって、ナノリポゲルに、送達されるべき薬剤を負荷する工程、および負荷した上記ナノリポゲルを静脈内、皮下、筋肉内に投与するか、鼻もしくは肺の系に投与するか、粘膜表面に投与するか、または経口送達のためにカプセル化する工程を含む、方法。
図１Ａ〜１Ｂは、ナノリポゲル粒子（ｎＬＧ）作製の略図である。図１Ａでは、メタクリラート官能化シクロデキストリン（ＣＤ）を使用して、ＴＧＦ−βインヒビター（ＳＢ５０５１２４）などの生物活性物質を可溶化した。図１Ｂでは、ナノリポゲルを、生分解性架橋ポリマー、アクリル化薬物（ＣＤ−ＳＢ５０５）複合体、およびペプチドＩＬ−２サイトカインなどの第２の薬物が負荷された凍結乾燥リポソームから処方した。このコア−シェル構造は、ＰＥＧ化リポソーム外部を有する内部生分解性ポリマーマトリクス中への薬物を負荷したＣＤおよびＩＬ−２の捕捉を容易にした。スクシニル化β−シクロデキストリン（ＣＴＤ，Ｉｎｃ．）を、１：３の化合物モル比で１×ＰＢＳ中にて室温で１時間撹拌することによって２−アミノエチルメタクリラート（Ｓｉｇｍａ）で官能化した。ＳＢ５０５１２４、ランダムスクシニル化β−ＣＤ、およびＳＢ５０５１２４のランダムスクシニル化β−ＣＤとの包接複合体の１Ｈ ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）を決定した。ＳＢ５０５１２４の芳香族プロトン領域で認められた相違は、包接複合体の形成を示す。ローダミンＢの芳香族プロトン領域で認められた相違を示したローダミンＢ、ランダムスクシニル化β−ＣＤ、およびローダミンＢのランダムスクシニル化β−ＣＤとの包接複合体の１Ｈ ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）は、包接複合体の形成を示す。 図１Ａ〜１Ｂは、ナノリポゲル粒子（ｎＬＧ）作製の略図である。図１Ａでは、メタクリラート官能化シクロデキストリン（ＣＤ）を使用して、ＴＧＦ−βインヒビター（ＳＢ５０５１２４）などの生物活性物質を可溶化した。図１Ｂでは、ナノリポゲルを、生分解性架橋ポリマー、アクリル化薬物（ＣＤ−ＳＢ５０５）複合体、およびペプチドＩＬ−２サイトカインなどの第２の薬物が負荷された凍結乾燥リポソームから処方した。このコア−シェル構造は、ＰＥＧ化リポソーム外部を有する内部生分解性ポリマーマトリクス中への薬物を負荷したＣＤおよびＩＬ−２の捕捉を容易にした。スクシニル化β−シクロデキストリン（ＣＴＤ，Ｉｎｃ．）を、１：３の化合物モル比で１×ＰＢＳ中にて室温で１時間撹拌することによって２−アミノエチルメタクリラート（Ｓｉｇｍａ）で官能化した。ＳＢ５０５１２４、ランダムスクシニル化β−ＣＤ、およびＳＢ５０５１２４のランダムスクシニル化β−ＣＤとの包接複合体の１Ｈ ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）を決定した。ＳＢ５０５１２４の芳香族プロトン領域で認められた相違は、包接複合体の形成を示す。ローダミンＢの芳香族プロトン領域で認められた相違を示したローダミンＢ、ランダムスクシニル化β−ＣＤ、およびローダミンＢのランダムスクシニル化β−ＣＤとの包接複合体の１Ｈ ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）は、包接複合体の形成を示す。 図１Ａ〜１Ｂは、ナノリポゲル粒子（ｎＬＧ）作製の略図である。図１Ａでは、メタクリラート官能化シクロデキストリン（ＣＤ）を使用して、ＴＧＦ−βインヒビター（ＳＢ５０５１２４）などの生物活性物質を可溶化した。図１Ｂでは、ナノリポゲルを、生分解性架橋ポリマー、アクリル化薬物（ＣＤ−ＳＢ５０５）複合体、およびペプチドＩＬ−２サイトカインなどの第２の薬物が負荷された凍結乾燥リポソームから処方した。このコア−シェル構造は、ＰＥＧ化リポソーム外部を有する内部生分解性ポリマーマトリクス中への薬物を負荷したＣＤおよびＩＬ−２の捕捉を容易にした。スクシニル化β−シクロデキストリン（ＣＴＤ，Ｉｎｃ．）を、１：３の化合物モル比で１×ＰＢＳ中にて室温で１時間撹拌することによって２−アミノエチルメタクリラート（Ｓｉｇｍａ）で官能化した。ＳＢ５０５１２４、ランダムスクシニル化β−ＣＤ、およびＳＢ５０５１２４のランダムスクシニル化β−ＣＤとの包接複合体の１Ｈ ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）を決定した。ＳＢ５０５１２４の芳香族プロトン領域で認められた相違は、包接複合体の形成を示す。ローダミンＢの芳香族プロトン領域で認められた相違を示したローダミンＢ、ランダムスクシニル化β−ＣＤ、およびローダミンＢのランダムスクシニル化β−ＣＤとの包接複合体の１Ｈ ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）は、包接複合体の形成を示す。 図１Ｃ〜１Ｇはナノリポゲルの特徴付けを示す。ナノリポゲルのサイズを、室温のＰＢＳ中におけるＺｅｔａＰＡＬＳ装置（Ｂｒｏｏｋｈａｖｅｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）での動的光散乱によって決定した。図１Ｃは、ＳＢまたはＳＢ＋ＩＬ−２のカプセル化が粒子の平均直径や多分散性に有意に影響を及ぼさなかったことを示す。平均直径および多分散性指数は、２ロットの各ナノリポゲル型（サンプルあたりの測定数はｎ＝１０）の代表値である。ＰＣ／コレステロールリポソーム、ＰＣ／コレステロール／ＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ２リポソーム、およびナノリポゲルのゼータ電位を、Ｍａｌｖｅｒｎナノサイザーを使用して０．１×ＰＢＳ中にて評価した。図１Ｄは、アミン末端化ＰＥ−ＰＥＧを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルのゼータ電位が中性付近であることが見出されたことを示す。図１Ｅは、ナノリポゲル処方物の組成および処方特性を示す。図１Ｆは、１Ｈ ＮＭＲによって検証されたポリマー構造を示す。ナノリポゲルの低温ＴＥＭは、球状リポソーム構造の形成を示す。ＴＥＭ分析のために、ナノリポゲルサンプルを四酸化オスミウムで染色し、次いで、ＦＥＩ Ｔｅｎａｉ Ｂｉｏｔｗｉｎ顕微鏡で画像化した。低温で切片にしたサンプルの脂質特異的四酸化オスミウム染色は、粒子の外膜に限定される局在化した染色パターンであった。図１Ｇは、光重合ポリマー／ＣＤが界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であるナノ粒子ヒドロゲル構造を形成することを示す。 図１Ｃ〜１Ｇはナノリポゲルの特徴付けを示す。ナノリポゲルのサイズを、室温のＰＢＳ中におけるＺｅｔａＰＡＬＳ装置（Ｂｒｏｏｋｈａｖｅｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）での動的光散乱によって決定した。図１Ｃは、ＳＢまたはＳＢ＋ＩＬ−２のカプセル化が粒子の平均直径や多分散性に有意に影響を及ぼさなかったことを示す。平均直径および多分散性指数は、２ロットの各ナノリポゲル型（サンプルあたりの測定数はｎ＝１０）の代表値である。ＰＣ／コレステロールリポソーム、ＰＣ／コレステロール／ＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ２リポソーム、およびナノリポゲルのゼータ電位を、Ｍａｌｖｅｒｎナノサイザーを使用して０．１×ＰＢＳ中にて評価した。図１Ｄは、アミン末端化ＰＥ−ＰＥＧを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルのゼータ電位が中性付近であることが見出されたことを示す。図１Ｅは、ナノリポゲル処方物の組成および処方特性を示す。図１Ｆは、１Ｈ ＮＭＲによって検証されたポリマー構造を示す。ナノリポゲルの低温ＴＥＭは、球状リポソーム構造の形成を示す。ＴＥＭ分析のために、ナノリポゲルサンプルを四酸化オスミウムで染色し、次いで、ＦＥＩ Ｔｅｎａｉ Ｂｉｏｔｗｉｎ顕微鏡で画像化した。低温で切片にしたサンプルの脂質特異的四酸化オスミウム染色は、粒子の外膜に限定される局在化した染色パターンであった。図１Ｇは、光重合ポリマー／ＣＤが界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であるナノ粒子ヒドロゲル構造を形成することを示す。 図１Ｃ〜１Ｇはナノリポゲルの特徴付けを示す。ナノリポゲルのサイズを、室温のＰＢＳ中におけるＺｅｔａＰＡＬＳ装置（Ｂｒｏｏｋｈａｖｅｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）での動的光散乱によって決定した。図１Ｃは、ＳＢまたはＳＢ＋ＩＬ−２のカプセル化が粒子の平均直径や多分散性に有意に影響を及ぼさなかったことを示す。平均直径および多分散性指数は、２ロットの各ナノリポゲル型（サンプルあたりの測定数はｎ＝１０）の代表値である。ＰＣ／コレステロールリポソーム、ＰＣ／コレステロール／ＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ２リポソーム、およびナノリポゲルのゼータ電位を、Ｍａｌｖｅｒｎナノサイザーを使用して０．１×ＰＢＳ中にて評価した。図１Ｄは、アミン末端化ＰＥ−ＰＥＧを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルのゼータ電位が中性付近であることが見出されたことを示す。図１Ｅは、ナノリポゲル処方物の組成および処方特性を示す。図１Ｆは、１Ｈ ＮＭＲによって検証されたポリマー構造を示す。ナノリポゲルの低温ＴＥＭは、球状リポソーム構造の形成を示す。ＴＥＭ分析のために、ナノリポゲルサンプルを四酸化オスミウムで染色し、次いで、ＦＥＩ Ｔｅｎａｉ Ｂｉｏｔｗｉｎ顕微鏡で画像化した。低温で切片にしたサンプルの脂質特異的四酸化オスミウム染色は、粒子の外膜に限定される局在化した染色パターンであった。図１Ｇは、光重合ポリマー／ＣＤが界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であるナノ粒子ヒドロゲル構造を形成することを示す。 図１Ｃ〜１Ｇはナノリポゲルの特徴付けを示す。ナノリポゲルのサイズを、室温のＰＢＳ中におけるＺｅｔａＰＡＬＳ装置（Ｂｒｏｏｋｈａｖｅｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）での動的光散乱によって決定した。図１Ｃは、ＳＢまたはＳＢ＋ＩＬ−２のカプセル化が粒子の平均直径や多分散性に有意に影響を及ぼさなかったことを示す。平均直径および多分散性指数は、２ロットの各ナノリポゲル型（サンプルあたりの測定数はｎ＝１０）の代表値である。ＰＣ／コレステロールリポソーム、ＰＣ／コレステロール／ＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ２リポソーム、およびナノリポゲルのゼータ電位を、Ｍａｌｖｅｒｎナノサイザーを使用して０．１×ＰＢＳ中にて評価した。図１Ｄは、アミン末端化ＰＥ−ＰＥＧを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルのゼータ電位が中性付近であることが見出されたことを示す。図１Ｅは、ナノリポゲル処方物の組成および処方特性を示す。図１Ｆは、１Ｈ ＮＭＲによって検証されたポリマー構造を示す。ナノリポゲルの低温ＴＥＭは、球状リポソーム構造の形成を示す。ＴＥＭ分析のために、ナノリポゲルサンプルを四酸化オスミウムで染色し、次いで、ＦＥＩ Ｔｅｎａｉ Ｂｉｏｔｗｉｎ顕微鏡で画像化した。低温で切片にしたサンプルの脂質特異的四酸化オスミウム染色は、粒子の外膜に限定される局在化した染色パターンであった。図１Ｇは、光重合ポリマー／ＣＤが界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であるナノ粒子ヒドロゲル構造を形成することを示す。 図２Ａ〜２Ｅは、ｎＬＧ、リポソーム、および固体ポリマーナノ粒子（ＰＬＧＡ）からの放出プロフィールの比較である。初期キャリア質量によって正規化されたｎＬＧからのＣＤ可溶化ＳＢまたはメタクリラート官能化ＣＤ（ｆ−ＣＤ）可溶化ＳＢの累積放出は、ナノリポゲルの重合によってＳＢ放出の徐放性が改善されたことを示した（図２Ａ）。ヒドロキシプロピルβ−ＣＤを、非官能化ＣＤとのＳＢ複合体化のために使用した。ＥＬＩＳＡ（免疫活性）研究および生物活性研究（生物活性）によって決定された初期ナノリポゲル質量によって正規化されたｎＬＧからのＩＬ−２の累積放出は、ＩＬ−２の生物活性がカプセル化の影響を受けないことを示していた（図２Ｂ）。ＳＢおよびＩＬ−２の放出は、１ｍｌ全血清中での１０ｍｇ ｎＬＧのインキュベーションの影響を受けなかった（図２Ｃ）。リポソーム、ナノリポゲル、および分解性ポリマー（ポリラクチド−ｃｏ−グリコリド）ナノ粒子（ＰＬＧＡ ＮＰ）からのＳＢの累積放出の比較により、ナノリポゲルビヒクル中への光硬化ポリマーの組み込みによってシクロデキストリン可溶化ＳＢのより良好な徐放およびより完全な放出が可能になることが示された（図２Ｄ）。ＰＬＧＡ ＮＰ（平均直径＝１５０±５０ｎｍ）を、修正された水／油／水二重エマルジョン技術の使用によって調製した。リポソームを、ポリマーコアを含めずにｎＬＧと同一の様式で調製した。リポソームに、ナノリポゲルと同様にＩＬ−２およびＳＢを負荷した。ＰＬＧＡ ＮＰからのカプセル化ＳＢの放出率の減少は、比較的疎水性のポリマーのＳＢとの相互作用に起因する。７日目に全粒子処方物を０．１Ｎ ＮａＯＨ＋１％ＳＤＳに溶解して１００％放出を決定した（矢印）（図２Ｄ）。リポソーム、ナノリポゲル、およびＰＬＧＡ ＮＰからのＩＬ−２の累積放出の比較により、ナノリポゲル中へのＩＬ−２のカプセル化によってサイトカインのより良好な徐放が可能になることが示された。累積放出を、７日間にわたって放出された全ＩＬ−２に対する％として示す。（図２Ｅ）全グラフ中のデータは、三連のサンプルの平均±１標準偏差を示す。図２Ｆは、ＰＬＧＡ、ナノリポゲル、およびリポソームのサイズおよびこれらへのＩＬ−２およびＳＢの負荷を比較している。 図２Ａ〜２Ｅは、ｎＬＧ、リポソーム、および固体ポリマーナノ粒子（ＰＬＧＡ）からの放出プロフィールの比較である。初期キャリア質量によって正規化されたｎＬＧからのＣＤ可溶化ＳＢまたはメタクリラート官能化ＣＤ（ｆ−ＣＤ）可溶化ＳＢの累積放出は、ナノリポゲルの重合によってＳＢ放出の徐放性が改善されたことを示した（図２Ａ）。ヒドロキシプロピルβ−ＣＤを、非官能化ＣＤとのＳＢ複合体化のために使用した。ＥＬＩＳＡ（免疫活性）研究および生物活性研究（生物活性）によって決定された初期ナノリポゲル質量によって正規化されたｎＬＧからのＩＬ−２の累積放出は、ＩＬ−２の生物活性がカプセル化の影響を受けないことを示していた（図２Ｂ）。ＳＢおよびＩＬ−２の放出は、１ｍｌ全血清中での１０ｍｇ ｎＬＧのインキュベーションの影響を受けなかった（図２Ｃ）。リポソーム、ナノリポゲル、および分解性ポリマー（ポリラクチド−ｃｏ−グリコリド）ナノ粒子（ＰＬＧＡ ＮＰ）からのＳＢの累積放出の比較により、ナノリポゲルビヒクル中への光硬化ポリマーの組み込みによってシクロデキストリン可溶化ＳＢのより良好な徐放およびより完全な放出が可能になることが示された（図２Ｄ）。ＰＬＧＡ ＮＰ（平均直径＝１５０±５０ｎｍ）を、修正された水／油／水二重エマルジョン技術の使用によって調製した。リポソームを、ポリマーコアを含めずにｎＬＧと同一の様式で調製した。リポソームに、ナノリポゲルと同様にＩＬ−２およびＳＢを負荷した。ＰＬＧＡ ＮＰからのカプセル化ＳＢの放出率の減少は、比較的疎水性のポリマーのＳＢとの相互作用に起因する。７日目に全粒子処方物を０．１Ｎ ＮａＯＨ＋１％ＳＤＳに溶解して１００％放出を決定した（矢印）（図２Ｄ）。リポソーム、ナノリポゲル、およびＰＬＧＡ ＮＰからのＩＬ−２の累積放出の比較により、ナノリポゲル中へのＩＬ−２のカプセル化によってサイトカインのより良好な徐放が可能になることが示された。累積放出を、７日間にわたって放出された全ＩＬ−２に対する％として示す。（図２Ｅ）全グラフ中のデータは、三連のサンプルの平均±１標準偏差を示す。図２Ｆは、ＰＬＧＡ、ナノリポゲル、およびリポソームのサイズおよびこれらへのＩＬ−２およびＳＢの負荷を比較している。 図３Ａ〜３Ｇは、制御放出、クリアランス、および生体内分布を示すグラフである。ナノリポゲルキャリアおよびカプセル化薬物ペイロードの両方の分布を二重標識ＮＬＧを使用して調査し、フルオレセイン標識ホスホエタノールアミンを、ローダミン負荷ナノリポゲルの脂質成分に組み込んだ。５４０／６２５ｎｍおよび４９０／５１７ｎｍでの分光蛍光分光分析は、スペクトル重複のない用量依存性蛍光を示す。図３Ａは、キャリア質量によって正規化された同時負荷ｎＬＧからのＩＬ−２（ｎｇ／ｍｇ ｎＬＧ）および薬物（μｇ ＳＢ／ｍｇ ｎＬＧ）の累積放出のグラフである。全プロット中のエラーバーは、±１標準偏差を示す。全実験を少なくとも２回繰り返し、類似の結果を得た。図３Ｂは、日数での時間をわたっての薬物用量のクリアランス（初期用量に対する百分率）を示すグラフである：ナノリポゲル中へのカプセル化により、注射１時間後および２４時間後の血中の初期用量の残存率が有意に増大した（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１＃＃＃）。図３Ｃは、全身分布のグラフである。マウスに、静脈内尾静脈注射によって単回用量のローダミン負荷ナノリポゲルまたは可溶性ローダミン（食塩水中）を投与した。動物を、抽出および蛍光の定量のために注射の１、２４、４８、および７２時間後に屠殺し、全身生体内分布を、ローダミン標識を使用して決定した。遊離色素を注射した動物と比較してナノリポゲル処置動物の主要器官において有意により大量の（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１）ローダミンが検出された。図３Ｄは、皮下腫瘍における時間依存的蓄積ｎのグラフである：Ｂ６マウスにおけるＢ１６腫瘍周囲注射後の累積的ローダミン腫瘍透過（円）。腫瘍周囲組織を回収して、腫瘍周囲のｎＬＧの残存用量を定量した（四角）。制御放出はローダミンの放出を示すが、脂質ではない（図３Ｅ）。皮下Ｂ１６腫瘍を保有するマウスに、二重標識ＮＬＧの単回ＩＶ（尾静脈）注射を行った。注射１、２、３、および７日後に動物を屠殺し、均質化、抽出、およびローダミンおよびフルオレセイン−ＰＥの定量のために組織を回収した。血清分析は、カプセル材料および送達ビヒクルの両方の循環の延長を示す。脂質（図３Ｆ）と薬物ペイロード（図３Ｇ）との間で類似の生体内分布パターンが認められ、肺および肝臓で最高の薬物蓄積が認められた。 図３Ａ〜３Ｇは、制御放出、クリアランス、および生体内分布を示すグラフである。ナノリポゲルキャリアおよびカプセル化薬物ペイロードの両方の分布を二重標識ＮＬＧを使用して調査し、フルオレセイン標識ホスホエタノールアミンを、ローダミン負荷ナノリポゲルの脂質成分に組み込んだ。５４０／６２５ｎｍおよび４９０／５１７ｎｍでの分光蛍光分光分析は、スペクトル重複のない用量依存性蛍光を示す。図３Ａは、キャリア質量によって正規化された同時負荷ｎＬＧからのＩＬ−２（ｎｇ／ｍｇ ｎＬＧ）および薬物（μｇ ＳＢ／ｍｇ ｎＬＧ）の累積放出のグラフである。全プロット中のエラーバーは、±１標準偏差を示す。全実験を少なくとも２回繰り返し、類似の結果を得た。図３Ｂは、日数での時間をわたっての薬物用量のクリアランス（初期用量に対する百分率）を示すグラフである：ナノリポゲル中へのカプセル化により、注射１時間後および２４時間後の血中の初期用量の残存率が有意に増大した（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１＃＃＃）。図３Ｃは、全身分布のグラフである。マウスに、静脈内尾静脈注射によって単回用量のローダミン負荷ナノリポゲルまたは可溶性ローダミン（食塩水中）を投与した。動物を、抽出および蛍光の定量のために注射の１、２４、４８、および７２時間後に屠殺し、全身生体内分布を、ローダミン標識を使用して決定した。遊離色素を注射した動物と比較してナノリポゲル処置動物の主要器官において有意により大量の（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１）ローダミンが検出された。図３Ｄは、皮下腫瘍における時間依存的蓄積ｎのグラフである：Ｂ６マウスにおけるＢ１６腫瘍周囲注射後の累積的ローダミン腫瘍透過（円）。腫瘍周囲組織を回収して、腫瘍周囲のｎＬＧの残存用量を定量した（四角）。制御放出はローダミンの放出を示すが、脂質ではない（図３Ｅ）。皮下Ｂ１６腫瘍を保有するマウスに、二重標識ＮＬＧの単回ＩＶ（尾静脈）注射を行った。注射１、２、３、および７日後に動物を屠殺し、均質化、抽出、およびローダミンおよびフルオレセイン−ＰＥの定量のために組織を回収した。血清分析は、カプセル材料および送達ビヒクルの両方の循環の延長を示す。脂質（図３Ｆ）と薬物ペイロード（図３Ｇ）との間で類似の生体内分布パターンが認められ、肺および肝臓で最高の薬物蓄積が認められた。 図３Ａ〜３Ｇは、制御放出、クリアランス、および生体内分布を示すグラフである。ナノリポゲルキャリアおよびカプセル化薬物ペイロードの両方の分布を二重標識ＮＬＧを使用して調査し、フルオレセイン標識ホスホエタノールアミンを、ローダミン負荷ナノリポゲルの脂質成分に組み込んだ。５４０／６２５ｎｍおよび４９０／５１７ｎｍでの分光蛍光分光分析は、スペクトル重複のない用量依存性蛍光を示す。図３Ａは、キャリア質量によって正規化された同時負荷ｎＬＧからのＩＬ−２（ｎｇ／ｍｇ ｎＬＧ）および薬物（μｇ ＳＢ／ｍｇ ｎＬＧ）の累積放出のグラフである。全プロット中のエラーバーは、±１標準偏差を示す。全実験を少なくとも２回繰り返し、類似の結果を得た。図３Ｂは、日数での時間をわたっての薬物用量のクリアランス（初期用量に対する百分率）を示すグラフである：ナノリポゲル中へのカプセル化により、注射１時間後および２４時間後の血中の初期用量の残存率が有意に増大した（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１＃＃＃）。図３Ｃは、全身分布のグラフである。マウスに、静脈内尾静脈注射によって単回用量のローダミン負荷ナノリポゲルまたは可溶性ローダミン（食塩水中）を投与した。動物を、抽出および蛍光の定量のために注射の１、２４、４８、および７２時間後に屠殺し、全身生体内分布を、ローダミン標識を使用して決定した。遊離色素を注射した動物と比較してナノリポゲル処置動物の主要器官において有意により大量の（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１）ローダミンが検出された。図３Ｄは、皮下腫瘍における時間依存的蓄積ｎのグラフである：Ｂ６マウスにおけるＢ１６腫瘍周囲注射後の累積的ローダミン腫瘍透過（円）。腫瘍周囲組織を回収して、腫瘍周囲のｎＬＧの残存用量を定量した（四角）。制御放出はローダミンの放出を示すが、脂質ではない（図３Ｅ）。皮下Ｂ１６腫瘍を保有するマウスに、二重標識ＮＬＧの単回ＩＶ（尾静脈）注射を行った。注射１、２、３、および７日後に動物を屠殺し、均質化、抽出、およびローダミンおよびフルオレセイン−ＰＥの定量のために組織を回収した。血清分析は、カプセル材料および送達ビヒクルの両方の循環の延長を示す。脂質（図３Ｆ）と薬物ペイロード（図３Ｇ）との間で類似の生体内分布パターンが認められ、肺および肝臓で最高の薬物蓄積が認められた。 図４Ａ〜４Ｃは、皮下黒色腫に及ぼす腫瘍内ナノリポゲル治療の臨床効果を示すグラフである。図４Ａは、腫瘍面積対時間のグラフである（０日目は腫瘍細胞注射日であった）。赤色矢印は、処置（腫瘍内注射による）を示す。皮下腫瘍を保有するマウスを、最大の腫瘍寸法が１５ｍｍを超えた場合、または疾病の兆候を示した場合に安楽死させた。死亡日以降は死亡マウスの腫瘍面積を含めなかった。各群は、最初に、４匹が含まれていたｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群以外は５匹のマウスを含んでいた。エラーバーは±１標準偏差を示す。ｎＬＧ−ＳＢ群およびｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群の腫瘍は、１２日目から他のすべての群より有意に小さい（２集団ｔ検定、Ｐ＜０．００１）。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群の腫瘍は、１７日目からｎＬＧ−ＳＢ群より有意に小さく（Ｐ＜０．０１、＃＃）、その後の全日数で小さかった（Ｐ＜０．００１）。図４Ｂは、処置７日後のｎＬＧ処置群の腫瘍量のグラフである。腫瘍量決定前にマウスを直接安楽死させた。エラーバーは、６匹（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）、１０匹（ｎＬＧ−ＩＬ−２）、９匹（ｎＬＧ−ＳＢ）、および１０匹（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）のマウスにわたり平均した±１標準偏差を示す。各群は、最初に１０匹のマウスを含んでいた。２集団ｔ検定は、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群の腫瘍がｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ群（Ｐ＜０．００１、＊＊＊）、ｎＬＧ−ＩＬ−２群（Ｐ＜０．００１、＊＊＊）、およびｎＬＧ−ＳＢ群（Ｐ＜０．０５、＊）よりも有意に小さいことを示した。２集団ｔ検定は、ｎＬＧ−ＩＬ−２群の腫瘍量がｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙよりも有意に小さいことを示した（Ｐ＜０．０５、＃）。図４Ｃは、図４Ａと同一の研究由来のマウスの生存プロットである。矢印は処置日を示す。ｎＬＧ−ＳＢで処置したマウスの生存は、Ｍａｎｔｅｌ−Ｃｏｘ解析およびＧｅｈａｎ−Ｂｒｅｓｌｏｗ−Ｗｉｌｃｏｘｏｎ解析によると有意に長く（Ｐ＜０．０１）、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２は両解析によると有意に生存を延長させた（Ｐ＜０．００１）。研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。 図４Ａ〜４Ｃは、皮下黒色腫に及ぼす腫瘍内ナノリポゲル治療の臨床効果を示すグラフである。図４Ａは、腫瘍面積対時間のグラフである（０日目は腫瘍細胞注射日であった）。赤色矢印は、処置（腫瘍内注射による）を示す。皮下腫瘍を保有するマウスを、最大の腫瘍寸法が１５ｍｍを超えた場合、または疾病の兆候を示した場合に安楽死させた。死亡日以降は死亡マウスの腫瘍面積を含めなかった。各群は、最初に、４匹が含まれていたｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群以外は５匹のマウスを含んでいた。エラーバーは±１標準偏差を示す。ｎＬＧ−ＳＢ群およびｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群の腫瘍は、１２日目から他のすべての群より有意に小さい（２集団ｔ検定、Ｐ＜０．００１）。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群の腫瘍は、１７日目からｎＬＧ−ＳＢ群より有意に小さく（Ｐ＜０．０１、＃＃）、その後の全日数で小さかった（Ｐ＜０．００１）。図４Ｂは、処置７日後のｎＬＧ処置群の腫瘍量のグラフである。腫瘍量決定前にマウスを直接安楽死させた。エラーバーは、６匹（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）、１０匹（ｎＬＧ−ＩＬ−２）、９匹（ｎＬＧ−ＳＢ）、および１０匹（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）のマウスにわたり平均した±１標準偏差を示す。各群は、最初に１０匹のマウスを含んでいた。２集団ｔ検定は、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群の腫瘍がｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ群（Ｐ＜０．００１、＊＊＊）、ｎＬＧ−ＩＬ−２群（Ｐ＜０．００１、＊＊＊）、およびｎＬＧ−ＳＢ群（Ｐ＜０．０５、＊）よりも有意に小さいことを示した。２集団ｔ検定は、ｎＬＧ−ＩＬ−２群の腫瘍量がｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙよりも有意に小さいことを示した（Ｐ＜０．０５、＃）。図４Ｃは、図４Ａと同一の研究由来のマウスの生存プロットである。矢印は処置日を示す。ｎＬＧ−ＳＢで処置したマウスの生存は、Ｍａｎｔｅｌ−Ｃｏｘ解析およびＧｅｈａｎ−Ｂｒｅｓｌｏｗ−Ｗｉｌｃｏｘｏｎ解析によると有意に長く（Ｐ＜０．０１）、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２は両解析によると有意に生存を延長させた（Ｐ＜０．００１）。研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。 図５Ａ〜５Ｃは、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２作用の適応免疫応答および作用機構を示す。各群は６匹のマウスを含んでおり、研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。図５Ａは、肺腫瘍中に存在する活性化ＣＤ８＋細胞の絶対数のグラフである（腫瘍数で正規化）。全群は、空のｎＬＧと比較して有意に多数の細胞を有する（Ｐ＜０．０１）。図５Ｂは、処置７日後にマウスから取り出した腫瘍中に存在する活性化ＣＤ８＋細胞の絶対数のグラフである（腫瘍量で正規化）。ｎＬＧ−ＳＢでの処置によって非負荷粒子よりも活性化ＣＤ８＋集団（Ｐ＜０．０５）が有意に増加し、ｎＬＧ−ＩＬ−２またはｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２での処置も同様であった（Ｐ＜０．００１）。エラーバーは、６匹（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）、１０匹（ｎＬＧ−ＩＬ−２）、９匹（ｎＬＧ−ＳＢ）、および１０匹（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）のマウスにわたり平均した±１標準偏差を示す。各群は、最初に、１０匹のマウスを含んでいた。図５Ｃは、ＴＩＬにおける活性化ＣＤ８＋：Ｔｒｅｇ比のグラフである。全群は、空のｎＬＧと比較して比が有意に高かった（Ｐ＜０．０５）。 図６Ａ〜６Ｃは、組み合わせ送達後の腫瘍免疫療法におけるＮＫ細胞の役割を示すグラフである。各群は６匹のマウスを含んでおり、研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。図６Ａは、腫瘍中に存在するＮＫ細胞の絶対数のグラフである（腫瘍数で正規化）。空の粒子群と比較して、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２（Ｐ＜０．０５）、ｎＬＧ−ＳＢ（Ｐ＜０．０５）、およびｎＬＧ−ＩＬ−２（Ｐ＜０．０１）による処置後の肺内に有意により多数のＮＫが存在した。図６Ｂは、最初の処置から７日後に安楽死させた野生型（ＷＴ）マウスまたはＮＫ枯渇（ＮＫＤ）マウス由来の腫瘍量を比較したグラフである。各群は、最初に、１０匹のマウスを含んでいた。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置ＷＴ群は、すべての他の処置群よりも腫瘍が有意に小さかった（Ｐ＜０．００１）。ＮＫＤ ｎＬＧ−ＳＢおよびｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群は、そのＷＴ対応物より有意に大きな腫瘍を有する（共にＰ＜０．００１）。研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。図６Ｃは、同一の研究についての腫瘍中に存在するＮＫ細胞の絶対数のグラフである（腫瘍量で正規化）。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置群は、コントロール群（Ｐ＜０．０１）、ＳＢ処置群（Ｐ＜０．０５）、およびＩＬ−２処置群（Ｐ＜０．０１）よりも有意に多数のＮＫを有している。エラーバーは、６匹（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）、１０匹（ｎＬＧ−ＩＬ−２）、９匹（ｎＬＧ−ＳＢ）、および１０匹（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）のマウスにわたり平均した±１標準偏差を示す。 図６Ａ〜６Ｃは、組み合わせ送達後の腫瘍免疫療法におけるＮＫ細胞の役割を示すグラフである。各群は６匹のマウスを含んでおり、研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。図６Ａは、腫瘍中に存在するＮＫ細胞の絶対数のグラフである（腫瘍数で正規化）。空の粒子群と比較して、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２（Ｐ＜０．０５）、ｎＬＧ−ＳＢ（Ｐ＜０．０５）、およびｎＬＧ−ＩＬ−２（Ｐ＜０．０１）による処置後の肺内に有意により多数のＮＫが存在した。図６Ｂは、最初の処置から７日後に安楽死させた野生型（ＷＴ）マウスまたはＮＫ枯渇（ＮＫＤ）マウス由来の腫瘍量を比較したグラフである。各群は、最初に、１０匹のマウスを含んでいた。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置ＷＴ群は、すべての他の処置群よりも腫瘍が有意に小さかった（Ｐ＜０．００１）。ＮＫＤ ｎＬＧ−ＳＢおよびｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群は、そのＷＴ対応物より有意に大きな腫瘍を有する（共にＰ＜０．００１）。研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。図６Ｃは、同一の研究についての腫瘍中に存在するＮＫ細胞の絶対数のグラフである（腫瘍量で正規化）。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置群は、コントロール群（Ｐ＜０．０１）、ＳＢ処置群（Ｐ＜０．０５）、およびＩＬ−２処置群（Ｐ＜０．０１）よりも有意に多数のＮＫを有している。エラーバーは、６匹（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）、１０匹（ｎＬＧ−ＩＬ−２）、９匹（ｎＬＧ−ＳＢ）、および１０匹（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）のマウスにわたり平均した±１標準偏差を示す。 図７Ａは、ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスと薬物の組み合わせをカプセル化し、外側シェルをターゲティング抗体または単鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）で共有結合的に修飾したＬＥＤ調製の略図である。図７Ｂは、ＬＥＤおよびモデル薬物であるメトトレキサート（ＭＴＸ）をカプセル化したＬＥＤの細胞傷害性のグラフである。バーは、１ｍｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌのＬＥＤまたは薬物またはその組み合わせの連続希釈物を示す。アジ化合物を、細胞死滅のポジティブコントロールとして使用する。図７Ｃは、未修飾第４世代ＰＡＭＡＭデンドリマー（Ｇ４）、またはＦＣＣＰ（小分子イオノフォア、カルボニルシアニドｐ−トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン）を使用するか使用しないで第一級アミンで置換し、遮蔽したシクロデキストリン分子（ＣＤ）に結合体化したデンドリマーでの処理後のエンドソーム破壊を示す細胞の百分率を示す棒グラフである。図７Ｄは、種々のＮ／Ｐ比で種々のＬＥＤ（Ｇ４、Ｇ４−３ＣＤ、Ｇ４−６ＣＤ）を使用してｐＧＦＰでトランスフェクションした全細胞に対する百分率としてのＧＦＰ陽性細胞数のを示す棒グラフである。図７Ｅは、ＭＦＩＣＤ３＋、ＣＤ４＋細胞コントロール、および異なる投薬量のＣＤ４ｓｉＲＮＡ構築物またはルシフェラーゼｓｉＲＮＡ構築物をカプセル化した種々のＬＥＤの相対数を示す棒グラフである。図７Ｆは、リポフェクタミン（登録商標）または異なるデンドリマー（Ｇ）−シクロデキストリン結合体（ＣＤ）の組み合わせ含む種々のＬＥＤを使用したｓｉＧＦＰ構築物のトランスフェクション後のｅＧＦＰで安定にトランスフェクションした２９３Ｔ細胞中のＧＦＰの発現レベルを示す棒グラフである。このグラフは、ｓｉＧＦＰと複合体化した修飾デンドリマーのサイレンシング能力を評価するためにＧＦＰの平均蛍光強度（ＭＦＩ）を測定している。ｘ軸を、以下のように読み取るべきである：ｍｏｃｋ：ナンセンスｓｉＲＮＡＬＦＡ：ＬＦＡに対するコントロールｓｉＲＮＡ Ｇ３：未修飾第３世代ＰＡＭＡＭデンドリマーＧ３ ５Ｘ：１つのシクロデキストリンが結合体化されたＧ３デンドリマー（Ｇ３−１ＣＤ）Ｇ３ ５ｘｄ：２ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−２ＣＤ）Ｇ３ １０ｘ：３ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３ＣＤ）Ｇ３ ２０ｘ：３．４ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３．４ＣＤ）Ｇ４：未修飾のＧ４デンドリマー（Ｇ４）Ｇ４ ５ｘ：１ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１ＣＤ）Ｇ４ ５ｘｄ：１．３ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１．３ＣＤ）Ｇ４ １０ｘ：Ｇ４−３ＣＤＧ５：未修飾の第５世代（Ｇ５）デンドリマーＧ５ ５ｘ：Ｇ５−１ＣＤＧ５ １０ｘ：Ｇ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ ０．５ｍｇ：他の処理で２００ｕｇの代わりに５００ｕｇ使用したＧ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ Ｄ：Ｇ５−２．５ＣＤＧ５ ２０ｘ：Ｇ５−４ＣＤ 。 図７Ａは、ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスと薬物の組み合わせをカプセル化し、外側シェルをターゲティング抗体または単鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）で共有結合的に修飾したＬＥＤ調製の略図である。図７Ｂは、ＬＥＤおよびモデル薬物であるメトトレキサート（ＭＴＸ）をカプセル化したＬＥＤの細胞傷害性のグラフである。バーは、１ｍｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌのＬＥＤまたは薬物またはその組み合わせの連続希釈物を示す。アジ化合物を、細胞死滅のポジティブコントロールとして使用する。図７Ｃは、未修飾第４世代ＰＡＭＡＭデンドリマー（Ｇ４）、またはＦＣＣＰ（小分子イオノフォア、カルボニルシアニドｐ−トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン）を使用するか使用しないで第一級アミンで置換し、遮蔽したシクロデキストリン分子（ＣＤ）に結合体化したデンドリマーでの処理後のエンドソーム破壊を示す細胞の百分率を示す棒グラフである。図７Ｄは、種々のＮ／Ｐ比で種々のＬＥＤ（Ｇ４、Ｇ４−３ＣＤ、Ｇ４−６ＣＤ）を使用してｐＧＦＰでトランスフェクションした全細胞に対する百分率としてのＧＦＰ陽性細胞数のを示す棒グラフである。図７Ｅは、ＭＦＩＣＤ３＋、ＣＤ４＋細胞コントロール、および異なる投薬量のＣＤ４ｓｉＲＮＡ構築物またはルシフェラーゼｓｉＲＮＡ構築物をカプセル化した種々のＬＥＤの相対数を示す棒グラフである。図７Ｆは、リポフェクタミン（登録商標）または異なるデンドリマー（Ｇ）−シクロデキストリン結合体（ＣＤ）の組み合わせ含む種々のＬＥＤを使用したｓｉＧＦＰ構築物のトランスフェクション後のｅＧＦＰで安定にトランスフェクションした２９３Ｔ細胞中のＧＦＰの発現レベルを示す棒グラフである。このグラフは、ｓｉＧＦＰと複合体化した修飾デンドリマーのサイレンシング能力を評価するためにＧＦＰの平均蛍光強度（ＭＦＩ）を測定している。ｘ軸を、以下のように読み取るべきである：ｍｏｃｋ：ナンセンスｓｉＲＮＡＬＦＡ：ＬＦＡに対するコントロールｓｉＲＮＡ Ｇ３：未修飾第３世代ＰＡＭＡＭデンドリマーＧ３ ５Ｘ：１つのシクロデキストリンが結合体化されたＧ３デンドリマー（Ｇ３−１ＣＤ）Ｇ３ ５ｘｄ：２ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−２ＣＤ）Ｇ３ １０ｘ：３ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３ＣＤ）Ｇ３ ２０ｘ：３．４ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３．４ＣＤ）Ｇ４：未修飾のＧ４デンドリマー（Ｇ４）Ｇ４ ５ｘ：１ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１ＣＤ）Ｇ４ ５ｘｄ：１．３ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１．３ＣＤ）Ｇ４ １０ｘ：Ｇ４−３ＣＤＧ５：未修飾の第５世代（Ｇ５）デンドリマーＧ５ ５ｘ：Ｇ５−１ＣＤＧ５ １０ｘ：Ｇ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ ０．５ｍｇ：他の処理で２００ｕｇの代わりに５００ｕｇ使用したＧ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ Ｄ：Ｇ５−２．５ＣＤＧ５ ２０ｘ：Ｇ５−４ＣＤ 。 図７Ａは、ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスと薬物の組み合わせをカプセル化し、外側シェルをターゲティング抗体または単鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）で共有結合的に修飾したＬＥＤ調製の略図である。図７Ｂは、ＬＥＤおよびモデル薬物であるメトトレキサート（ＭＴＸ）をカプセル化したＬＥＤの細胞傷害性のグラフである。バーは、１ｍｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌのＬＥＤまたは薬物またはその組み合わせの連続希釈物を示す。アジ化合物を、細胞死滅のポジティブコントロールとして使用する。図７Ｃは、未修飾第４世代ＰＡＭＡＭデンドリマー（Ｇ４）、またはＦＣＣＰ（小分子イオノフォア、カルボニルシアニドｐ−トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン）を使用するか使用しないで第一級アミンで置換し、遮蔽したシクロデキストリン分子（ＣＤ）に結合体化したデンドリマーでの処理後のエンドソーム破壊を示す細胞の百分率を示す棒グラフである。図７Ｄは、種々のＮ／Ｐ比で種々のＬＥＤ（Ｇ４、Ｇ４−３ＣＤ、Ｇ４−６ＣＤ）を使用してｐＧＦＰでトランスフェクションした全細胞に対する百分率としてのＧＦＰ陽性細胞数のを示す棒グラフである。図７Ｅは、ＭＦＩＣＤ３＋、ＣＤ４＋細胞コントロール、および異なる投薬量のＣＤ４ｓｉＲＮＡ構築物またはルシフェラーゼｓｉＲＮＡ構築物をカプセル化した種々のＬＥＤの相対数を示す棒グラフである。図７Ｆは、リポフェクタミン（登録商標）または異なるデンドリマー（Ｇ）−シクロデキストリン結合体（ＣＤ）の組み合わせ含む種々のＬＥＤを使用したｓｉＧＦＰ構築物のトランスフェクション後のｅＧＦＰで安定にトランスフェクションした２９３Ｔ細胞中のＧＦＰの発現レベルを示す棒グラフである。このグラフは、ｓｉＧＦＰと複合体化した修飾デンドリマーのサイレンシング能力を評価するためにＧＦＰの平均蛍光強度（ＭＦＩ）を測定している。ｘ軸を、以下のように読み取るべきである：ｍｏｃｋ：ナンセンスｓｉＲＮＡＬＦＡ：ＬＦＡに対するコントロールｓｉＲＮＡ Ｇ３：未修飾第３世代ＰＡＭＡＭデンドリマーＧ３ ５Ｘ：１つのシクロデキストリンが結合体化されたＧ３デンドリマー（Ｇ３−１ＣＤ）Ｇ３ ５ｘｄ：２ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−２ＣＤ）Ｇ３ １０ｘ：３ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３ＣＤ）Ｇ３ ２０ｘ：３．４ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３．４ＣＤ）Ｇ４：未修飾のＧ４デンドリマー（Ｇ４）Ｇ４ ５ｘ：１ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１ＣＤ）Ｇ４ ５ｘｄ：１．３ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１．３ＣＤ）Ｇ４ １０ｘ：Ｇ４−３ＣＤＧ５：未修飾の第５世代（Ｇ５）デンドリマーＧ５ ５ｘ：Ｇ５−１ＣＤＧ５ １０ｘ：Ｇ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ ０．５ｍｇ：他の処理で２００ｕｇの代わりに５００ｕｇ使用したＧ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ Ｄ：Ｇ５−２．５ＣＤＧ５ ２０ｘ：Ｇ５−４ＣＤ 。 図７Ａは、ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスと薬物の組み合わせをカプセル化し、外側シェルをターゲティング抗体または単鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）で共有結合的に修飾したＬＥＤ調製の略図である。図７Ｂは、ＬＥＤおよびモデル薬物であるメトトレキサート（ＭＴＸ）をカプセル化したＬＥＤの細胞傷害性のグラフである。バーは、１ｍｇ／ｍｌ〜１０μｇ／ｍｌのＬＥＤまたは薬物またはその組み合わせの連続希釈物を示す。アジ化合物を、細胞死滅のポジティブコントロールとして使用する。図７Ｃは、未修飾第４世代ＰＡＭＡＭデンドリマー（Ｇ４）、またはＦＣＣＰ（小分子イオノフォア、カルボニルシアニドｐ−トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン）を使用するか使用しないで第一級アミンで置換し、遮蔽したシクロデキストリン分子（ＣＤ）に結合体化したデンドリマーでの処理後のエンドソーム破壊を示す細胞の百分率を示す棒グラフである。図７Ｄは、種々のＮ／Ｐ比で種々のＬＥＤ（Ｇ４、Ｇ４−３ＣＤ、Ｇ４−６ＣＤ）を使用してｐＧＦＰでトランスフェクションした全細胞に対する百分率としてのＧＦＰ陽性細胞数のを示す棒グラフである。図７Ｅは、ＭＦＩＣＤ３＋、ＣＤ４＋細胞コントロール、および異なる投薬量のＣＤ４ｓｉＲＮＡ構築物またはルシフェラーゼｓｉＲＮＡ構築物をカプセル化した種々のＬＥＤの相対数を示す棒グラフである。図７Ｆは、リポフェクタミン（登録商標）または異なるデンドリマー（Ｇ）−シクロデキストリン結合体（ＣＤ）の組み合わせ含む種々のＬＥＤを使用したｓｉＧＦＰ構築物のトランスフェクション後のｅＧＦＰで安定にトランスフェクションした２９３Ｔ細胞中のＧＦＰの発現レベルを示す棒グラフである。このグラフは、ｓｉＧＦＰと複合体化した修飾デンドリマーのサイレンシング能力を評価するためにＧＦＰの平均蛍光強度（ＭＦＩ）を測定している。ｘ軸を、以下のように読み取るべきである：ｍｏｃｋ：ナンセンスｓｉＲＮＡＬＦＡ：ＬＦＡに対するコントロールｓｉＲＮＡ Ｇ３：未修飾第３世代ＰＡＭＡＭデンドリマーＧ３ ５Ｘ：１つのシクロデキストリンが結合体化されたＧ３デンドリマー（Ｇ３−１ＣＤ）Ｇ３ ５ｘｄ：２ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−２ＣＤ）Ｇ３ １０ｘ：３ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３ＣＤ）Ｇ３ ２０ｘ：３．４ＣＤが結合体化されたＧ３（Ｇ３−３．４ＣＤ）Ｇ４：未修飾のＧ４デンドリマー（Ｇ４）Ｇ４ ５ｘ：１ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１ＣＤ）Ｇ４ ５ｘｄ：１．３ＣＤが結合体化されたＧ４デンドリマー（Ｇ４−１．３ＣＤ）Ｇ４ １０ｘ：Ｇ４−３ＣＤＧ５：未修飾の第５世代（Ｇ５）デンドリマーＧ５ ５ｘ：Ｇ５−１ＣＤＧ５ １０ｘ：Ｇ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ ０．５ｍｇ：他の処理で２００ｕｇの代わりに５００ｕｇ使用したＧ５−３ＣＤＧ５ １０ｘ Ｄ：Ｇ５−２．５ＣＤＧ５ ２０ｘ：Ｇ５−４ＣＤ 。 図８Ａは、％ＭＨＣ−ＳＩＩＮＦＥＫＬ、マウス骨髄由来樹状細胞（ＢＭＤＣ）を示す棒グラフである。オボアルブミンのみ（ＯＶＡ）、デンドリマーのみ、またはＯＶＡとデンドリマーとの組み合わせを含むリポソームでの処理後のＭＨＣ−ＳＩＮＦＥＫＬ陽性細胞。＊ｐ＜０．０５（一元配置ＡＮＯＶＡボンフェローニ事後検定による）。図８Ｂは、種々のコントロールならびに１種またはそれより多くのデンドリマー（すなわち、Ｇ５）、抗原（すなわち、オボアルブミン（ＯＶＡ））、および標識する場合の表面修飾物質（すなわち、ＭＰＬＡ、および／またはＣｐＧ）を含むリポソームを用いた％ＭＨＣ−ＳＩＮＦＥＫＬ陽性細胞（２５．Ｄ１６−ＰＥ染色による）を示す棒グラフである。ＭＰＬＡ、ＯＶＡ、Ｇ５、およびＣｐＧを含む粒子処方物を示さなかった。なぜなら、これらの粒子処方物は、極めて少量のＯＶＡタンパク質をカプセル化し、粒子濃度が他の群より高いので、この量のＯＶＡによる処理群の正規化によって細胞傷害性を示したからである。図８Ｃは、漸増量のＣｐＧが存在するＬＥＤで処理した骨髄樹状細胞（ＢＭＤＣ）から発現したＩＬ−６（ｐｇ／ｍＬ）を示す棒グラフである。 図８Ａは、％ＭＨＣ−ＳＩＩＮＦＥＫＬ、マウス骨髄由来樹状細胞（ＢＭＤＣ）を示す棒グラフである。オボアルブミンのみ（ＯＶＡ）、デンドリマーのみ、またはＯＶＡとデンドリマーとの組み合わせを含むリポソームでの処理後のＭＨＣ−ＳＩＮＦＥＫＬ陽性細胞。＊ｐ＜０．０５（一元配置ＡＮＯＶＡボンフェローニ事後検定による）。図８Ｂは、種々のコントロールならびに１種またはそれより多くのデンドリマー（すなわち、Ｇ５）、抗原（すなわち、オボアルブミン（ＯＶＡ））、および標識する場合の表面修飾物質（すなわち、ＭＰＬＡ、および／またはＣｐＧ）を含むリポソームを用いた％ＭＨＣ−ＳＩＮＦＥＫＬ陽性細胞（２５．Ｄ１６−ＰＥ染色による）を示す棒グラフである。ＭＰＬＡ、ＯＶＡ、Ｇ５、およびＣｐＧを含む粒子処方物を示さなかった。なぜなら、これらの粒子処方物は、極めて少量のＯＶＡタンパク質をカプセル化し、粒子濃度が他の群より高いので、この量のＯＶＡによる処理群の正規化によって細胞傷害性を示したからである。図８Ｃは、漸増量のＣｐＧが存在するＬＥＤで処理した骨髄樹状細胞（ＢＭＤＣ）から発現したＩＬ−６（ｐｇ／ｍＬ）を示す棒グラフである。
発明の詳細な説明
Ｉ．定義
「ナノリポゲル」は、本明細書中で使用される場合、単層または二層であり得るリポソームシェル内に、ホスト分子を含むことができるポリマーマトリクスコアを有し、任意選択的にコアとシェルが架橋しているコア−シェルナノ粒子をいう。
「ホスト分子」は、本明細書中で使用される場合、活性薬剤と可逆的に会合して複合体を形成する分子または材料をいう。特定の実施形態では、ホストは、活性薬剤と包接複合体を形成する分子である。包接複合体は、活性薬剤（すなわち、ゲスト）または活性薬剤の一部が別の分子、分子群、または材料（すなわち、ホスト）の空隙内に挿入された場合に形成される。ホストは、小分子、オリゴマー、ポリマー、またはその組み合わせであり得る。例示的なホストには、ポリサッカリド（アミロース、シクロデキストリン、および複数のアルドース環を含む他の環状またはらせん状の化合物（例えば、モノサッカリド（グルコース、フルクトース、およびガラクトースなど）の１，４結合および１，６結合を介して形成された化合物）など）およびジサッカリド（スクロース、マルトース、およびラクトースなど）が含まれる。他の例示的なホスト化合物には、クリプタンド、クリプトファン、キャビタンド、クラウンエーテル、デンドリマー、イオン交換樹脂、カリックスアレーン、バリノマイシン、ナイジェリシン、カテナン、ポリカテナン、カルセランド、ククルビツリル、およびスフェランドが含まれる。
「小分子」は、本明細書中で使用される場合、約２０００ｇ／ｍｏｌ未満、より好ましくは約１５００ｇ／ｍｏｌ未満、最も好ましくは約１２００ｇ／ｍｏｌ未満の分子量を有する分子をいう。
「ヒドロゲル」は、本明細書中で使用される場合、共有結合架橋または非共有結合架橋によって共に保持された高分子の三次元網目構造から形成された水膨潤性ポリマーマトリクスをいう。これは相当量（重量）の水を吸収してゲルを形成することができる。
「ナノ粒子」は、本明細書中で使用される場合、一般に、直径が約１０ｎｍから約１ミクロンまで（未満）、好ましくは１００ｎｍ〜約１ミクロンの粒子をいう。粒子は任意の形状を有し得る。球状のナノ粒子を、一般に、「ナノスフェア」という。
「分子量」は、本明細書中で使用される場合、一般に、特別の規定がない限り、バルクのポリマーの相対平均鎖長をいう。実際には、分子量を、種々の方法（ゲル浸透クロマトグラフィ（ＧＰＣ）または細管式粘度測定（ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｖｉｓｃｏｍｅｔｒｙ）が含まれる）を使用して推定または特徴づけることができる。ＧＰＣ分子量を、数平均分子量（Ｍｎ）と対照的な重量平均分子量（Ｍｗ）として報告する。細管式粘度測定により、特定の一連の濃度、温度、および溶媒条件を使用して希釈ポリマー溶液から決定した固有粘度として分子量が推定される。
「平均粒径」は、本明細書中で使用される場合、一般に、粒子集団中の粒子の統計的平均粒径（直径）をいう。本質的に球状の粒子の直径は、物理的直径または流体力学直径をいうことができる。非球状粒子の直径は、優先的に、流体力学直径をいうことができる。本明細書中で使用される場合、非球状粒子の直径は、粒子表面上の２点間の最長の直線距離をいうことができる。平均粒径を、当該分野で公知の方法（動的光散乱など）を使用して測定することができる。
「単分散」および「均一サイズ分布」は、本明細書中で互換的に使用され、全粒子が同一またはほぼ同一のサイズであるナノ粒子または微粒子の集団を説明する。本明細書中で使用される場合、単分散分布は、分布の９０％がメジアン粒径の１５％以内、より好ましくはメジアン粒径の１０％以内、最も好ましくはメジアン粒径の５％以内にある粒子分布をいう。
「活性薬剤」は、本明細書中で使用される場合、体内で局所的におよび／または全身に作用する生理学的にまたは薬理学的に活性な物質をいう。活性薬剤は、疾患または障害の処置（例えば、治療薬）、防止（例えば、予防薬）、または診断（例えば、診断薬）のために患者に投与される物質である。
ＩＩ．ナノリポゲル
ナノリポゲルは、活性薬剤の持続送達のためのリポソームおよびポリマーベースの粒子の両方の利点を組み合わせたコア−シェルナノ粒子である。以下でより詳細に考察するように、典型的には、外側シェルは、カーゴを保護し、生体適合性およびターゲティング分子での機能付与のための表面を提供する。外側シェルは、所望するまで（例えば、環境条件または刺激に応答して単分散性の再生可能な粒子集団を作製し、所望の細胞型への内在化を媒介するまで）成分が曝露されないように成分をカプセル化する。デンドリマーまたは他のポリマーであり得る内部コアは、外側シェルとは個別且つ付加的な機能性を有する。例えば、内側シェルは、薬物、ワクチン、または造影薬を二次的に堆積させ、異なる生理化学的特性を有する成分の粒子への負荷を増大させ、粒子から内容物を調整可能に放出させ、エンドソーム破壊によってＤＮＡ／ＲＮＡ、薬物、および／またはタンパク質のサイトゾルでの利用可能性を増大させ、これらすべてによって薬物効果、抗原提示、およびトランスフェクション／サイレンシングが増強される。
ナノリポゲルは、１種またはそれより多くのホスト分子を含むポリマーマトリクスコアを有する。ポリマーマトリクスは、好ましくは、１種またはそれより多くのポリ（アルキレンオキシド）セグメント（ポリエチレングリコールなど）および１種またはそれより多くの脂肪族ポリエステルセグメント（ポリ乳酸など）を含むヒドロゲル（架橋ブロックコポリマーなど）である。１種またはそれより多くのホスト分子（シクロデキストリン、デンドリマー、またはイオン交換樹脂など）は、ポリマーマトリクス内に分散しているか、ポリマーマトリクスに共有結合している。ヒドロゲルコアを、リポソームシェルで包囲する。
ナノリポゲルを、その後に制御様式で放出することができる種々の活性薬剤を組み込むように構築することができる。活性薬剤を、ヒドロゲルマトリクス内に分散させるか、１種またはそれより多くのホスト分子と会合させるか、リポソームシェル内に分散させるか、リポソームシェルに共有結合させるか、その組み合わせを行うことができる。活性薬剤を、ナノリポゲル内のこれらの各局所に選択的に組み込むことができる。さらに、これらの各局所からの活性薬剤の放出速度を、独立して調整することができる。これらの各局所が異なる特性（サイズおよび疎水性／親水性が含まれる）を保有するので、これらの各局所に独立して組み込まれた化学的実体はサイズおよび組成が劇的に異なり得る。例えば、ナノリポゲルに、ポリマーマトリクス内に分散させた１種またはそれより多くのタンパク質およびホスト分子と会合した小分子疎水性薬物を負荷することができる。
このような方法で、ナノリポゲルは、化学的組成および分子量が非常に異なる薬剤を同時徐放することができる。非限定的な例では、ナノリポゲルに、ポリマーマトリクス内に分散させたホスト分子に会合した疎水性の小分子抗原および免疫アジュバント（免疫賦活性タンパク質など）の両方を負荷することができる。これらのナノリポゲルは、免疫応答を至適化するためにアジュバントと共に抗原を徐放することができる。特定の例では、免疫賦活性タンパク質であるインターロイキン−２（ＩＬ−２）および低分子量有機分子である２−（５−ベンゾ［１，３］ジオキソール−５−イル−２−ｔｅｒｔ−ブチル−３Ｈ−イミダゾール−４−イル）−６−メチルピリジン塩酸塩（トランスフォーミング成長因子−β（ＴＧＦ−β）のインヒビター）のナノリポゲルによって同時持続送達が達成される。この構築物は、マウス系において、単独の薬剤または２種の薬剤の組み合わせの溶液での投与によって達成可能な抗腫瘍応答よりもはるかに優れた抗腫瘍応答が得られる。さらに、ナノリポゲルは、好ましくは、ナノリポゲル内にカプセル化させた１種またはそれより多くの活性薬剤の生体内分布を調整することができる。
ナノリポゲルは、典型的には、球状であり、平均粒径は約５０ｎｍと約１０００ｎｍとの間、より好ましくは約７５ｎｍと約３００ｎｍとの間、最も好ましくは約９０ｎｍと約２００ｎｍとの間である。一定の実施形態では、ナノリポゲルの平均粒径は、約１００ｎｍと約１４０ｎｍとの間である。粒子は、非球状であり得る。
ナノリポゲルのリポソームシェル中に存在する脂質の性質に依存して、陽性、陰性、または中性付近の表面電荷を有するナノリポゲルを調製することができる。一定の実施形態では、ナノリポゲルは中性付近の表面電荷を保有する。一定の実施形態では、ナノリポゲルのζ電位は、約１０ｍＶと約−１０ｍＶとの間、より好ましくは約５ｍＶと約−５ｍＶとの間、より好ましくは約３ｍＶと約−３ｍＶとの間、最も好ましくは約２ｍＶと約−２ｍＶとの間である。
Ａ．コア
ナノリポゲルコアは、ポリマーマトリクスおよび１種またはそれより多くのホスト分子から形成される。ナノリポゲルコアは、１種またはそれより多くの活性薬剤をさらに含むことができる。活性薬剤を、ホスト分子と複合体化するか、ポリマーマトリクスを用いて分散させるか、それらの組み合わせを行うことができる。
１．ポリマーマトリクス
ナノリポゲルのポリマーマトリクスを、１種またはそれより多くのポリマーまたはコポリマーから形成することができる。ポリマーマトリクスの組成および形態を変動させることにより、種々の制御放出特徴を達成することができ、それにより、中程度の一定用量の１種またはそれより多くの活性薬剤を長期間にわたって送達可能である。
ポリマーマトリクスを非生分解性ポリマーまたは生分解性ポリマーから形成することができるが、しかし、好ましくは、ポリマーマトリクスは生分解性である。ポリマーマトリクスを、１日〜１年間、より好ましくは７日〜２６週間、より好ましくは７日〜２０週間、最も好ましくは７日〜１６週間の範囲の期間にわたって分解されるように選択することができる。
一般に、天然ポリマーを使用することができるが、合成ポリマーが好ましい。代表的なポリマーには、ポリ（乳酸）、ポリ（グリコール酸）、ポリ（乳酸−ｃｏ−グリコール酸）、ポリヒドロキシアルカノアート（ポリ３−ヒドロキシブチラートまたはポリ４−ヒドロキシブチラートなど）；ポリカプロラクトン；ポリ（オルトエステル）；ポリ酸無水物；ポリ（ホスファゼン）；ポリ（ラクチド−ｃｏ−カプロラクトン）；ポリ（グリコリド−ｃｏ−カプロラクトン）；ポリカーボネート（チロシンポリカーボネートなど）；ポリアミド（合成および天然のポリアミドが含まれる）、ポリペプチド、およびポリ（アミノ酸）；ポリエステルアミド；他の生体適合性ポリエステル；ポリ（ジオキサノン）；ポリ（アルキレンアルキラート）；親水性ポリエーテル；ポリウレタン；ポリエーテルエステル；ポリアセタール；ポリシアノアクリラート；ポリシロキサン；ポリ（オキシエチレン）／ポリ（オキシプロピレン）コポリマー；ポリケタール；ポリホスファート；ポリヒドロキシバレラート；ポリアルキレンオキサラート；ポリアルキレンスクシナート；ポリ（マレイン酸）、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン；ポリ（アルキレンオキシド）（ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）など）；誘導体化セルロース（アルキルセルロース（例えば、メチルセルロース）、ヒドロキシアルキルセルロース（例えば、ヒドロキシプロピルセルロース）、セルロースエーテル、セルロースエステル、ニトロセルロースなど）、アクリル酸、メタクリル酸のポリマーまたはそのコポリマーもしくは誘導体（エステル、ポリ（メチルメタクリラート）、ポリ（エチルメタクリラート）、ポリ（ブチルメタクリラート）、ポリ（イソブチルメタクリラート）、ポリ（ヘキシルメタクリラート）、ポリ（イソデシルメタクリラート）、ポリ（ラウリルメタクリラート）、ポリ（フェニルメタクリラート）、ポリ（メチルアクリラート）、ポリ（イソプロピルアクリラート）、ポリ（イソブチルアクリラート）、およびポリ（オクタデシルアクリラート）（本明細書中で集合的に「ポリアクリル酸）と呼ばれる）が含まれる）、ならびにその誘導体、コポリマー、およびブレンドが含まれる。
本明細書中で使用される場合、「誘導体」には、化学基の置換、付加、および当業者によって日常的に作製される上記のポリマー骨格への他の修飾を有するポリマーが含まれる。天然ポリマー（タンパク質（アルブミン、コラーゲン、ゼラチン、プロラミン（ゼインなど）など）およびポリサッカリド（アルギナートおよびペクチンなど）が含まれる）を、ポリマーマトリクスに組み込むこともできる。種々のポリマーを使用してポリマーマトリクスを形成することができるが、一般に、得られたポリマーマトリクスはヒドロゲルであろう。一定の例では、ポリマーマトリクスが天然ポリマーを含む場合、天然ポリマーは、加水分解によって分解されるバイオポリマー（ポリヒドロキシアルカノアートなど）である。
好ましい実施形態では、ポリマーマトリクスは、１種またはそれより多くの架橋性ポリマーを含む。好ましくは、架橋性ポリマーは、ナノリポゲル形成後にポリマーマトリクスを架橋可能な１種またはそれより多くの光重合性基を含む。適切な光重合性基の例には、ビニル基、アクリラート基、メタクリラート基、およびアクリルアミド基が含まれる。存在する場合、光重合性基を、架橋性ポリマーの骨格内、架橋性ポリマーの側鎖のうちの１つ以上内、架橋性ポリマーの末端の１つ以上で、またはその組み合わせに組み込むことができる。
ポリマーマトリクスを、特定の適用に最適な特性（薬物放出速度が含まれる）を有するナノリポゲルを形成するための種々の分子量を有するポリマーから形成することができる。一般に、ポリマーマトリクスを構成するポリマーの平均分子量は約５００Ｄａおよび５０ｋＤａである。ポリマーマトリクスを非架橋性ポリマーから形成する場合、ポリマーの平均分子量は、典型的には、約１ｋＤａと約５０ｋＤａとの間、より好ましくは約１ｋＤａと約７０ｋＤａとの間、最も好ましくは約５ｋＤａと約５０ｋＤａとの間の範囲である。ポリマーマトリクスを架橋性ポリマーから形成する場合、ポリマーは、典型的には、約５００Ｄａと約２５ｋＤａとの間、より好ましくは約１ｋＤａと約１０ｋＤａとの間、最も好ましくは約３ｋＤａと約６ｋＤａとの間の範囲のより低い平均分子量を有する。特定の実施形態では、ポリマーマトリクスを、平均分子量が約５ｋＤａの架橋性ポリマーから形成する。
いくつかの実施形態では、ポリマーマトリクスを、ポリ（アルキレンオキシド）ポリマーまたは１種またはそれより多くのポリ（アルキレンオキシド）セグメントを含むブロックコポリマーから形成する。ポリ（アルキレンオキシド）ポリマーまたはポリ（アルキレンオキシド）ポリマーセグメントは、８と５００との間の反復単位、より好ましくは４０と３００との間の反復単位、最も好ましくは５０と１５０との間の反復単位を含むことができる。適切なポリ（アルキレンオキシド）には、ポリエチレングリコール（ポリエチレンオキシドまたはＰＥＧとも呼ばれる）、ポリプロピレン１，２−グリコール、ポリ（プロピレンオキシド）、ポリプロピレン１，３−グリコール、およびそのコポリマーが含まれる。
いくつかの実施形態では、ポリマーマトリクスを、脂肪族ポリエステルまたは１種またはそれより多くの脂肪族ポリエステルセグメントを含むブロックコポリマーから形成する。好ましくは、ポリエステルまたはポリエステルセグメントは、ポリ（乳酸）（ＰＬＡ）、ポリ（グリコール酸）ＰＧＡ、またはポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）である。
好ましい実施形態では、ポリマーマトリクスを、１種またはそれより多くのポリ（アルキレンオキシド）セグメント、１種またはそれより多くの脂肪族ポリエステルセグメント、および任意選択的な１種またはそれより多くの光重合性基を含むブロックコポリマーから形成する。これらの場合、１種またはそれより多くのポリ（アルキレンオキシド）セグメントは、得られたポリマーマトリクスが適切なヒドロゲルを形成するようにポリマーに必要な親水性を付与する一方で、ポリエステルセグメントは調整可能な疎水性／親水性および／または所望のｉｎ ｖｉｖｏ分解特徴を有するポリマーマトリクスを提供する。
ポリエステルセグメントの分解速度、しばしば対応する薬物放出速度を、数日（純粋なＰＧＡの場合）から数ヶ月（純粋なＰＬＡの場合）まで変化させることができ、ポリエステルセグメント中のＰＬＡのＰＧＡに対する比を変化させることによって容易に操作することができる。さらに、ポリ（アルキレンオキシド）（ＰＥＧなど）および脂肪族ポリエステル（ＰＧＡ、ＰＬＡ、およびＰＬＧＡなど）はヒトでの使用の安全性が確立されており、これらの材料はヒトへの臨床適用（薬物送達系が含まれる）において３０年を超えて使用されている。
一定の実施形態では、ポリマーマトリクスを、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメント、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメントのいずれかの末端に結合した隣接脂肪族ポリエステルセグメント、および１種またはそれより多くの光重合性基を含むトリブロックコポリマーから形成する。好ましくは、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメントはＰＥＧであり、脂肪族ポリエステルセグメントは、ＰＧＡ、ＰＬＡ、またはＰＬＧＡである。
一般に、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメントの平均分子量は、隣接ポリエステルセグメントの平均分子量より高い。一定の実施形態では、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメントの平均分子量は、１つの隣接ポリエステルセグメントの平均分子量の少なくとも３倍、より好ましくは１つの隣接ポリエステルセグメントの平均分子量の少なくとも５倍、最も好ましくは１つの隣接ポリエステルセグメントの平均分子量の少なくとも１０倍である。
いくつかの場合、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメントの平均分子量は、約５００Ｄａと約１０，０００Ｄａとの間、より好ましくは約１，０００Ｄａと約７，０００Ｄａとの間、最も好ましくは約２，５００Ｄａと約５，０００Ｄａとの間の範囲である。特定の実施形態では、中心ポリ（アルキレンオキシド）セグメントの平均分子量は約４，０００Ｄａである。典型的には、各隣接ポリエステルセグメントの平均分子量は、約１００Ｄａと約３，５００Ｄａとの間、より好ましくは約１００Ｄａと約１，０００Ｄａとの間、最も好ましくは約１００Ｄａと約５００Ｄａとの間の範囲である。
１つの好ましい実施形態では、ポリマーマトリクスを、以下：
Figure 2021138771
に示すトリブロックコポリマーから形成し、式中、ｍおよびｎは、それぞれ独立して、１と５００との間、より好ましくは１０と１５０との間の整数である。
好ましい天然ポリマーの例には、タンパク質（アルブミン、コラーゲン、ゼラチン、およびプロラミン（例えば、ゼイン）など）およびポリサッカリド（アルギナート、セルロース誘導体、およびポリヒドロキシアルカノアート（例えば、ポリヒドロキシブチラート）など）が含まれる。微粒子のｉｎ ｖｉｖｏ安定性を、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）と共重合したポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）などのポリマーの使用によって生成中に調整することができる。ＰＥＧを外面上に曝露する場合、ＰＥＧは、ＰＥＧの親水性によってこれらの材料が循環する時間を増大させることができる。
好ましい非生分解性ポリマーの例には、エチレンビニルアセタート、ポリ（メト）アクリル酸、ポリアミド、コポリマー、およびその混合物が含まれる。
マトリクスを、伝統的なイオン性ゲル化技術によって生成されたゲル型ポリマー（アルギナートなど）から作製することもできる。ポリマーを最初に水溶液に溶解し、硫酸バリウムまたはいくつかの生物活性剤と混合し、次いで、いくつかの場合に液滴を分離するために窒素ガス流を使用する微小滴形成デバイスによって押し出す。ゆっくり撹拌させた（およそ１００〜１７０ＲＰＭ）イオン性硬化浴を、形成された微小滴を捕捉するために押し出しデバイス下に配置する。微粒子を、十分な時間でゲル化させるために浴中で２０〜３０分間インキュベートする。微粒子の粒径を、種々のサイズの押出機の使用または窒素ガスの流量またはポリマー溶液の流量のいずれかの変化によって制御する。キトサン微粒子を、ポリマーの酸性溶液への溶解およびトリホスファートとの架橋によって調製することができる。カルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ）微粒子を、酸溶液へのポリマーの溶解および鉛イオンでの微粒子の沈殿によって調製することができる。負に荷電したポリマー（例えば、アルギナート、ＣＭＣ）の場合、異なる分子量の正に荷電したリガンド（例えば、ポリリジン、ポリエチレンイミン）を、イオン結合させることができる。
おそらく、脂肪族ポリエステル、特に、疎水性ポリ（乳酸）（ＰＬＡ）、より親水性のポリ（グリコール酸）ＰＧＡおよびそのコポリマーであるポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）が最も広く使用されている。これらのポリマーの分解速度、しばしば対応する薬物放出速度を、数日（ＰＧＡ）から数ヶ月（ＰＬＡ）まで変化させることができ、ＰＬＡのＰＧＡに対する比を変化させることによって容易に操作される。第２に、ＰＬＧＡならびにそのホモポリマーＰＧＡおよびＰＬＡの生理学的適合性は、ヒトでの使用の安全性が確立されており、これらの材料は種々のヒトへの臨床適用（薬物送達系が含まれる）において３０年を超える歴史がある。ＰＬＧＡナノ粒子を、受動的または能動的なターゲティングのいずれかによって薬物の薬物動態学および標的組織への生体内分布を改善する種々の方法で処方することができる。微粒子を、カプセル化または結合された分子が数日から数週間にわたって放出されるようにデザインする。放出持続時間に影響を及ぼす要因には、周辺媒質のｐＨ（ＰＬＧＡの酸触媒加水分解に起因するｐＨ５およびそれ未満で放出速度がより早い）およびポリマー組成が含まれる。脂肪族ポリエステルは疎水性が異なり、それによって分解速度に影響を及ぼす。特に、疎水性ポリ（乳酸）（ＰＬＡ）、より親水性の高いポリ（グリコール酸）ＰＧＡ、およびそのコポリマーであるポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）は、種々の放出速度を有する。これらのポリマーの分解速度、しばしば対応する薬物放出速度を、数日（ＰＧＡ）から数ヶ月（ＰＬＡ）まで変化させることができ、この速度はＰＬＡのＰＧＡに対する比を変化させることによって容易に操作される。
２．ホスト分子
ホスト分子は、活性薬剤と可逆的に会合して複合体を形成する分子または材料である。可逆的に活性薬剤と複合体を形成する能力のために、ホスト分子は複合体化した活性薬剤のｉｎ ｖｉｖｏでの放出を調節するように機能することができる。
いくつかの場合、ホスト分子は、活性薬剤と包接複合体を形成する分子である。包接複合体は、活性薬剤（すなわち、ゲスト）または活性薬剤の一部が別の分子、分子群、または材料（すなわち、ホスト）の空隙内に挿入された場合に形成される。典型的には、ゲスト分子は、宿主の枠組みや構造に影響を及ぼすことなくホスト分子と会合する。例えば、包接複合体の場合、ホスト分子中の利用可能な空隙のサイズおよび形状は、複合体形成の結果として実質的に不変である。
ホスト分子は、小分子、オリゴマー、ポリマー、またはその組み合わせであり得る。例示的なホストには、ポリサッカリド（アミロース、シクロデキストリン、および複数のアルドース環を含む他の環状またはらせん状の化合物（例えば、モノサッカリド（グルコース、フルクトース、およびガラクトースなど）の１，４結合および１，６結合を介して形成された化合物）など）およびジサッカリド（スクロース、マルトース、およびラクトースなど）が含まれる。他の例示的なホスト化合物には、クリプタンド、クリプトファン、キャビタンド、クラウンエーテル、デンドリマー、イオン交換樹脂、カリックスアレーン、バリノマイシン、ナイジェリシン、カテナン、ポリカテナン、カルセランド、ククルビツリル、およびスフェランドが含まれる。
さらなる他の実施形態では、有機ホスト化合物または有機ホスト材料には、カーボンナノチューブ、フラーレン、および／またはグラフィーム（ｇｒａｐｈｅｍｅ）ベースのホスト材料が含まれる。カーボンナノチューブ（ＣＮＴ）は、円柱ナノ構造を有する炭素の同素体である。ナノチューブは球状バッキーボールも含まれるフラーレン構造ファミリーのメンバーであり、ナノチューブの末端をバッキーボール構造の半球でキャッピングすることができる。その名称は、グラフェンと呼ばれる１原子の厚さの炭素シートによって形成された壁を有するその長い中空構造に由来する。これらのシートは特異的且つ個別の（「カイラル」）角で丸められ、ローリング角と半径との組み合わせがナノチューブの特性を決定する。ナノチューブを、単一壁ナノチューブ（ＳＷＮＴ）および多重壁ナノチューブ（ＭＷＮＴ）に分類することができる。ナノチューブおよび／またはフラーレンは、例えば、チューブまたはフラーレン内に送達すべき材料（すなわち、ゲスト）のカプセル化または捕捉によってホストとしての機能を果たすことができる。あるいは、チューブおよび／またはフラーレンの外部および／または内部を、送達すべきゲストと複合体化することができる官能基で官能化することができる。複合体化には、イオン相互作用、水素結合、ファンデルワールス相互作用、およびπ−π相互作用（πスタッキングなど）が含まれるが、これらに限定されない。
グラフェンは炭素同素体でもある。グラフェンの構造は、ハニカム状の結晶格子中に高密度に充填されたｓｐ２結合炭素原子の１原子の厚さの平面シートである。グラフェンは、いくつかの炭素同素体（グラファイト、チャコール、カーボンナノチューブ、およびフラーレンが含まれる）の基本構造要素である。送達すべきゲストは、ナノチューブおよびフラーレンについて上記のように、グラフェンまたは官能化グラフェンと会合および／または複合体化することができる。
ホスト材料は無機材料でもあり得、無機リン酸塩およびシリカが含まれるが、これらに限定されない。
適切なホスト分子は、一般に、送達すべき活性薬剤の正体および所望の薬物放出プロフィールを考慮してナノリポゲルに組み込むために選択される。送達される活性薬剤との複合体を形成するために、ホスト分子を、一般に、立体的性質（サイズ）および電子的性質（電荷および極性）の両方の観点から活性薬剤に有利なように選択する。例えば、送達すべき活性薬剤と包接複合体を形成するホスト分子の場合、ホスト分子は、典型的には、活性薬剤を組み込むための適切なサイズの間隙を保有するであろう。さらに、ホスト分子は、典型的には、活性薬剤との複合体形成を促進するのに適切な疎水性／親水性の間隙を保有する。ゲスト−ホスト相互作用の強度は、ナノリポゲルからの活性薬剤の薬物放出プロフィールに影響を及ぼし、ゲスト−ホスト相互作用が強いほど一般に薬物放出が長期になるであろう。
一般に、ホスト分子を、ナノリポゲルコアを形成するポリマーマトリクス内に分散させる。いくつかの場合、１種またはそれより多くのホスト分子を、ポリマーマトリクスに共有結合させる。例えば、ホスト分子を、ポリマーマトリクスと反応する１種またはそれより多くのペンダント反応性官能基で官能化することができる。特定の実施形態では、ホスト分子は、ポリマーマトリクスと反応してポリマーマトリクスと架橋する１種またはそれより多くのペンダント反応性官能基を含む。適切な反応性官能基の例には、メタクリラート、アクリラート、ビニル基、エポキシド、チイラン、アジド、およびアルキンが含まれる。
一定の実施形態では、ホスト分子はシクロデキストリンである。シクロデキストリンは、６個（α−シクロデキストリン）、７個（β−シクロデキストリン）、８個（γ−シクロデキストリン）、またはそれを超えるα−（１，４）連結グルコース残基を含む環状オリゴサッカリドである。シクロデキストリンのヒドロキシル基が環の外側に配向している一方で、グルコシドの酸素および非交換性水素原子の２つの環は間隙の内側に向かっている。結果として、シクロデキストリンは、親水性の外部と組み合わせた疎水性の内部間隙を保有する。疎水性活性薬剤との組み合わせの際に、活性薬剤（すなわち、ゲスト）は、シクロデキストリン（すなわち、ホスト）の疎水性の内部に挿入される。
シクロデキストリンを、大環状分子の一級または二級ヒドロキシル基またはその両方のいくつかまたはすべてが１種またはそれより多くのペンダント基で官能化されるように化学修飾することができる。ペンダント基は、ポリマーマトリクス（メタクリラート、アクリラート、ビニル基、エポキシド、チイラン、アジド、アルキン、およびその組み合わせなど）と反応することができる反応性官能基であり得る。ペンダント基はまた、シクロデキストリンの溶解度を改変する働きをすることができる。例示的なこの型の基には、１種またはそれより多くの（例えば、１、２、３、または４つの）ヒドロキシ基、カルボキシ基、カルボニル基、アシル基、オキシ基、およびオキソ基で任意選択的に置換されたスルフィニル、スルホニル、ホスファート、アシル、およびＣｌ〜Ｃ１２アルキル基が含まれる。これらのアルコール残基の修飾方法は当該分野で公知であり、多数のシクロデキストリン誘導体が市販されている。
適切なシクロデキストリンの例には、α−シクロデキストリン；β−シクロデキストリン；γ−シクロデキストリン；メチルα−シクロデキストリン；メチルβ−シクロデキストリン；メチルγ−シクロデキストリン；エチルβ−シクロデキストリン；ブチルα−シクロデキストリン；ブチルβ−シクロデキストリン；ブチルγ−シクロデキストリン；ペンチルγ−シクロデキストリン；ヒドロキシエチルβ−シクロデキストリン；ヒドロキシエチルγ−シクロデキストリン；２−ヒドロキシプロピルα−シクロデキストリン；２−ヒドロキシプロピルβ−シクロデキストリン；２−ヒドロキシプロピルγ−シクロデキストリン；２−ヒドロキシブチルβ−シクロデキストリン；アセチルα−シクロデキストリン；アセチルβ−シクロデキストリン；アセチルγ−シクロデキストリン；プロピオニルβ−シクロデキストリン；ブチリルβ−シクロデキストリン；スクシニルα−シクロデキストリン；スクシニルβ−シクロデキストリン；スクシニルγ−シクロデキストリン；ベンゾイルβ−シクロデキストリン；パルミチルβ−シクロデキストリン；トルエンスルホニルβ−シクロデキストリン；アセチルメチルβ−シクロデキストリン；アセチルブチルβ−シクロデキストリン；グルコシルα−シクロデキストリン；グルコシルβ−シクロデキストリン；グルコシルγ−シクロデキストリン；マルトシルα−シクロデキストリン；マルトシルβ−シクロデキストリン；マルトシルγ−シクロデキストリン；α−シクロデキストリンカルボキシメチルエーテル；β−シクロデキストリンカルボキシメチルエーテル；γ−シクロデキストリンカルボキシメチルエーテル；カルボキシメチルエチルβ−シクロデキストリン；リン酸エステルα−シクロデキストリン；リン酸エステルβ−シクロデキストリン；リン酸エステルγ−シクロデキストリン；３−トリメチルアンモニウム−２−ヒドロキシプロピルβ−シクロデキストリン；スルホブチルエーテルβ−シクロデキストリン；カルボキシメチルα−シクロデキストリン；カルボキシメチルβ−シクロデキストリン；カルボキシメチルγ−シクロデキストリン、およびその組み合わせが含まれる。
好ましいシクロデキストリンには、１種またはそれより多くのペンダントアクリラート基またはペンダントメタクリラート基で官能化されたα−シクロデキストリン、β−シクロデキストリン、およびγ−シクロデキストリンが含まれる。特定の実施形態では、ホスト分子は、複数のメタクリラート基で官能化されたβ−シクロデキストリンである。例示的なこの型のホスト分子を以下：
Figure 2021138771
に例示し、ここで、ＲはＣ１〜Ｃ６アルキル基を示す。
さらなる例として、ホスト分子はまた、イオン相互作用を介して活性薬剤と一過性に会合する材料であり得る。例えば、制御薬物放出で用いる当該分野で公知の従来のイオン交換樹脂は、ホスト分子としての機能を果たし得る。例えば、Ｃｈｅｎ，ら、“Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｉｏｎ−ｅｘｃｈａｎｇｅ ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓ ａｓ ｃａｒｒｉｅｒｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ ｄｒｕｇ ｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎ：ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｓｔｕｄｉｅｓ．”Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．４４（３）：２１１−２１５（１９９２）およびＦａｒａｇ，ら、“Ｒａｔｅ ｏｆ ｒｅｌｅａｓｅ ｏｆ ｏｒｇａｎｉｃ ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ ａｃｉｄｓ ｆｒｏｍ ｉｏｎ ｅｘｃｈａｎｇｅ ｒｅｓｉｎｓ”Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｃｉ．７７（１０）：８７２−８７５（１９８８）を参照のこと。
例示を目的として、送達される活性薬剤がカチオン種である場合、適切なイオン交換樹脂は、生理学的に許容され得る足場上にスルホン酸基（または修飾スルホン酸基）または任意選択的に修飾されたカルボン酸基を含むことができる。同様に、活性薬剤がアニオン種である場合、適切なイオン交換樹脂は、アミンベースの基（例えば、強力な相互作用のためのトリメチルアミンまたは弱い相互作用のためのジメチルエタノールアミン）を含むことができる。カチオン性ポリマー（ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）など）は、複合体オリゴヌクレオチド（ｓｉＲＮＡなど）のホスト分子として機能することができる。
他の場合では、ホスト分子はデンドリマー（ポリ（アミドアミン）（ＰＡＭＡＭ）デンドリマーなど）である。カチオン性およびアニオン性のデンドリマーは、上記のように活性薬剤とのイオン性会合によってホスト材料として機能することができる。さらに、中サイズのデンドリマー（第３世代および第４世代のＰＡＭＡＭデンドリマーなど）は、例えば、核酸の複合体化によって活性薬剤に適応することができる内部ボイドスペースを保有し得る。
いくつかの実施形態では、ホスト分子は、シクロデキストリンと結合体化したデンドリマーである。いくつかの実施形態では、シクロデキストリンは、デンドリマーの第一級アミンを遮蔽する。適切なデンドリマーおよびシクロデキストリンは上記で考察している。未修飾デンドリマー（すなわち、第４世代ＰＡＭＡＭデンドリマー（Ｇ４））は、経験的に、エンドソーム破壊において、シクロデキストリン（ｃｙｃｌｏｄｅｘｒｉｎ）（ＣＤ）と結合体化したデンドリマーより優れている（以下の実施例を参照のこと）。理論に拘束されないが、ＰＡＭＡＭデンドリマー上の末端アミン基がプロトンスポンジ効果によってエンドソームを緩衝化し、エンドソームを破壊すると考えられる。したがって、ＣＤが増えることによってエンドソーム破壊が減少する。以下の実施例で考察するように、デンドリマーとシクロデキストリンとの異なる組み合わせを使用して、細胞内でのトランスフェクション効率およびエンドソーム破壊レベルを調整することができる。
好ましくは、１種またはそれより多くのホスト分子は、ポリマーマトリクスの約０．１％〜約４０％ｗ／ｗ、より好ましくは全処方物の約０．１％〜約２５％ｗ／ｗの量で存在する。
３．活性薬剤
送達すべき活性薬剤には、治療薬、栄養補助薬（ｎｕｔｒｉｔｉｏｎａｌ ａｇｅｎｔ）、診断薬、および予防薬が含まれる。活性薬剤は、小分子の活性薬剤または生体高分子（タンパク質、ポリペプチド、または核酸など）であり得る。適切な小分子活性薬剤には、有機化合物および有機金属化合物が含まれる。小分子活性薬剤は、親水性、疎水性、または両親媒性の化合物であり得る。
ナノリポゲルに組み込むことができる例示的な治療薬には、腫瘍抗原、ＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ、サイトカイン、化学治療剤、放射性核種、小分子シグナル伝達インヒビター、光熱アンテナ（ｐｈｏｔｏｔｈｅｒｍａｌ ａｎｔｅｎｎａ）、モノクローナル抗体、免疫性危険シグナル伝達分子（ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ ｄａｎｇｅｒ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｍｏｌｅｃｕｌｅ）、他の免疫療法薬、酵素、抗生物質、抗ウイルス剤（特に、プロテアーゼインヒビターのみまたはＨＩＶまたはＢ型肝炎もしくはＣ型肝炎の処置のためのヌクレオシドとの組み合わせ）、抗寄生虫薬（蠕虫、原生動物）、成長因子、成長抑制物質（ｇｒｏｗｔｈ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ）、ホルモン、ホルモンアンタゴニスト、抗体およびその生物活性フラグメント（ヒト化抗体、単鎖抗体、およびキメラ抗体が含まれる）、抗原およびワクチン処方物（アジュバントが含まれる）、ペプチド薬、抗炎症薬、免疫調節薬（先天性免疫系を活性化するためにＴｏｌｌ様受容体に結合するリガンド（ＣｐＧオリゴヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない）、適応免疫系を動員して至適化する分子、細胞傷害性Ｔリンパ球、ナチュラルキラー細胞、およびヘルパーＴ細胞の作用を活性化または上方制御する分子、およびサプレッサーＴ細胞または調節性Ｔ細胞を不活化または下方制御する分子が含まれる）、ナノリポゲルの細胞内への取り込みを促進する薬剤（樹状細胞および他の抗原提示細胞が含まれる）、栄養補助物質（ｎｕｔｒａｃｅｕｔｉｃａｌ）（ビタミンなど）、およびオリゴヌクレオチド薬（ＤＮＡ、ＲＮＡ、アンチセンス、アプタマー、低分子干渉ＲＮＡ、リボザイム、リボヌクレアーゼＰのための外部ガイド配列、および三重鎖形成剤が含まれる）が含まれる。
例示的な診断薬には、常磁性分子、蛍光化合物、磁性分子、および放射性核種、Ｘ線造影剤、および造影剤が含まれる。
一定の実施形態では、ナノリポゲルは１種またはそれより多くの抗癌剤を含む。代表的な抗癌剤には、アルキル化剤（シスプラチン、カルボプラチン、オキサリプラチン、メクロレタミン、シクロホスファミド、クロラムブシル、ダカルバジン、ロムスチン、カルムスチン、プロカルバジン、クロラムブシル、およびイフォスファミドなど）、代謝拮抗物質（フルオロウラシル（５−ＦＵ）、ゲムシタビン、メトトレキサート、シトシンアラビノシド、フルダラビン、およびフロクスウリジンなど）、抗有糸分裂薬（タキサン（パクリタキセルおよびドセタキセル（ｄｏｃｅｔａｘｅｌ）など）およびビンカアルカロイド（ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、およびビンデシンなど）が含まれる）、アントラサイクリン（ドキソルビシン、ダウノルビシン、バルルビシン、イダルビシン、エピルビシン、およびアクチノマイシン（アクチノマイシンＤなど）が含まれる）、細胞傷害性抗生物質（マイトマイシン、プリカマイシン、およびブレオマイシンが含まれる）、トポイソメラーゼインヒビター（カンプトセシン（カンプトセシン、イリノテカン、およびトポテカンなど）およびエピポドフィロトキシンの誘導体（アムサクリン、エトポシド、エトポシドホスファート、およびテニポシドなど）が含まれる）、血管内皮成長因子（ＶＥＧＦ）に対する抗体（ベバシズマブ（アバスチン（登録商標）など）、他の抗ＶＥＧＦ化合物；サリドマイド（サロミド（登録商標））およびその誘導体（レナリドマイド（レブリミド（登録商標））など）；エンドスタチン；アンギオスタチン；受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）インヒビター（スニチニブ（スーテント（登録商標））など）；チロシンキナーゼインヒビター（ソラフェニブ（ネクサバール（登録商標））、エルロチニブ（タルセバ（登録商標））、パゾパニブ、アキシチニブ、およびラパチニブなど）；トランスフォーミング成長因子−αインヒビターまたはトランスフォーミング成長因子−βインヒビター、および上皮成長因子受容体に対する抗体（パニツムマブ（ベクチビックス（登録商標））およびセツキシマブ（エルビタックス（登録商標）など））が含まれるが、これらに限定されない。
一定の実施形態では、ナノリポゲルは、１種またはそれより多くの免疫調節薬を含む。例示的な免疫調節薬には、サイトカイン、キサンチン、インターロイキン、インターフェロン、オリゴデオキシヌクレオチド、グルカン、成長因子（例えば、ＴＮＦ、ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、およびＧ−ＣＳＦ）、ホルモン（エストロゲン（ジエチルスチルベストロール、エストラジオール）、アンドロゲン（テストステロン、ハロテスチン（登録商標）（フルオキシメステロン））、プロゲスチン（メガス（登録商標）（酢酸メゲストロール）、プロベラ（登録商標）（酢酸メドロキシプロゲステロン））、およびコルチコステロイド（プレドニゾン、デキサメタゾン、ヒドロコルチゾン）など）が含まれる。
粒子と会合することができる免疫学的アジュバントの例には、ＴＬＲリガンド、Ｃ型レクチン受容体リガンド、ＮＯＤ様受容体リガンド、ＲＬＲリガンド、およびＲＡＧＥリガンドが含まれるが、これらに限定されない。ＴＬＲリガンドには、リポ多糖（ＬＰＳ）およびその誘導体、ならびにリピドＡおよびその誘導体（モノホスホリルリピドＡ（ＭＰＬ）、グリコピラノシルリピドＡ、ＰＥＴ−リピドＡ、および３−Ｏ−デスアシル−４’−モノホスホリルリピドＡが含まれるが、これらに限定されない）が含まれ得る。特定の実施形態では、免疫学的アジュバントはＭＰＬである。別の実施形態では、免疫学的アジュバントはＬＰＳである。ＴＬＲリガンドには、ＴＬＲ３リガンド（例えば、ポリイノシン酸−ポリシチジル酸（ポリ（Ｉ：Ｃ））、ＴＬＲ７リガンド（例えば、イミキモドおよびレシキモド）、およびＴＬＲ９リガンドも含まれ得るが、これらに限定されない。
ナノリポゲルはまた、抗原および／またはアジュバント（すなわち、免疫応答を増強する分子）を含むことができる。ペプチド、タンパク質、およびＤＮＡベースのワクチンを使用して、種々の疾患または状態に対する免疫を誘導することができる。細胞媒介性免疫は、ウイルス感染細胞を検出および破壊するために必要である。最も伝統的なワクチン（例えば、タンパク質ベースのワクチン）は、体液性免疫のみを誘導することができる。ＤＮＡベースのワクチンが体液性免疫および細胞媒介性免疫の両方を誘導することができるので、ＤＮＡベースのワクチンは、ウイルスまたは寄生虫に対してワクチン接種するための固有の手段である。さらに、ＤＮＡベースのワクチンは、潜在的に、伝統的なワクチンより安全である。ＤＮＡワクチンは、相対的により安定であり、製造および保存の際の費用効果がより高い。ＤＮＡワクチンは、２つの主な成分（ＤＮＡキャリア（または送達ビヒクル）および抗原をコードするＤＮＡ）からなる。ＤＮＡキャリアはＤＮＡを分解から保護し、特定の組織または細胞へのＤＮＡ侵入および有効レベルでの発現を容易にすることができる。
一定の実施形態では、ナノリポゲルコアは２つ以上の活性薬剤を含む。好ましい実施形態では、ナノリポゲルコアは、好ましくは１種またはそれより多くの適切なホスト分子と会合した小分子疎水性活性薬剤およびポリマーマトリクス内に分散された親水性活性薬剤の両方を含む。特定の実施形態では、親水性活性薬剤は、タンパク質（治療サイトカインなど）である。ホスト分子と会合した疎水性活性薬剤およびポリマーマトリクス内に分散された親水性分子の組み込みにより、２つ以上の活性薬剤（多様な生理化学的特徴（溶解度、疎水性／親水性、分子量、およびその組み合わせなど）を有する２つ以上の活性薬剤が含まれる）を制御放出させることができる。
実施例によって証明された好ましい実施形態では、ホスト分子を使用して、低分子量化合物（化学療法薬など）（ホスト分子が低分子量化合物の放出を遅延させる場合）およびより大きな親水性化合物（サイトカインなど）を、類似の期間にわたって両分子が放出するように送達させる。
Ｂ．シェル成分
ナノリポゲルは、１種またはそれより多くの同心円状の脂質単層または脂質二重層から構成されるリポソームシェルを含む。シェルは、１種またはそれより多くの（ｏｎｅ ｏｒ）活性薬剤、ターゲティング分子、またはその組み合わせをさらに含むことができる。
１．脂質
ナノリポゲルは、１種またはそれより多くの同心円状の脂質単層または脂質二重層から構成されるリポソームシェルを含む。リポソームシェルの組成を、ｉｎ ｖｉｖｏでの１種またはそれより多くの活性薬剤の放出速度に影響を及ぼすように変化させることができる。脂質を、必要に応じて共有結合的に架橋させてｉｎ ｖｉｖｏ薬物放出を変更することもできる。
脂質シェルを、単一の脂質二重層（すなわち、シェルは単層であり得る）またはいくつかの同心円状の脂質二重層（すなわち、シェルは多層であり得る）から形成することができる。脂質シェルを単一の脂質から形成することができるが、好ましい実施形態では、脂質シェルを、１つを超える脂質の組み合わせから形成する。脂質は、生理学的ｐＨで中性、アニオン性、またはカチオン性の脂質であり得る。
適切な中性およびアニオン性の脂質には、ステロールおよび脂質（コレステロール、リン脂質、リゾ脂質、リゾリン脂質、およびスフィンゴ脂質など）が含まれる。中性およびアニオン性の脂質には、ホスファチジルコリン（ＰＣ）（卵ＰＣ、ダイズＰＣなど）（１，２−ジアシル−グリセロ−３−ホスホコリンが含まれる）；ホスファチジルセリン（ＰＳ）、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）；糖脂質；スフィンゴリン脂質（スフィンゴミエリンなど）；スフィンゴ糖脂質（１−セラミジルグルコシドとしても公知）（セラミドガラクトピラノシド、ガングリオシド、およびセレブロシドなど）；脂肪酸、カルボン酸基を含むステロール（コレステロールなど）、またはその誘導体；および１，２−ジアシル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン（１，２−ジオレオイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミンまたは１，２−ジオレオリルグリセリルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）、１，２−ジヘキサデシルホスホエタノールアミン（ＤＨＰＥ）、１，２−ジステアロイルホスファチジルコリン（ＤＳＰＣ）、１，２−ジパルミトイルホスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）、および１，２−ジミリストイルホスファチジルコリン（ＤＭＰＣ）が含まれる）が含まれるが、これらに限定されない。これらの脂質の天然の誘導体（例えば、組織由来のＬ−α−ホスファチジル：卵黄、心臓、脳、肝臓、ダイズ）および／または合成の誘導体（例えば、飽和および不飽和の１，２−ジアシル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホコリン、１−アシル−２−アシル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホコリン、１，２−ジヘプタノイル−ＳＮ−グリセロ−３−ホスホコリン）も適切である。
適切なカチオン性脂質には、例えば、メチル硫酸塩として、ＴＡＰ脂質とも呼ばれるＮ−［１−（２，３−ジオレオイルオキシ）プロピル］−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウム塩が含まれる。適切なＴＡＰ脂質には、ＤＯＴＡＰ（ジオレオイル−）、ＤＭＴＡＰ（ジミリストイル−）、ＤＰＴＡＰ（ジパルミトイル−）、およびＤＳＴＡＰ（ジステアロイル−）が含まれるが、これらに限定されない。他の適切なカチオン性脂質には、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド（ＤＤＡＢ）、１，２−ジアシルオキシ−３−トリメチルアンモニウムプロパン、Ｎ−［１−（２，３−ジオロイルオキシ）プロピル］−Ν，Ν−ジメチルアミン（ＤＯＤＡＰ）、１，２−ジアシルオキシ−３−ジメチルアンモニウムプロパン、Ｎ−［１−（２，３−ジオレイルオキシ）プロピル］−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウムクロリド（ＤＯＴＭＡ）、１，２−ジアルキルオキシ−３−ジメチルアンモニウムプロパン、ジオクタデシルアミドグリシルスペルミン（ＤＯＧＳ）、３−［Ｎ−（Ｎ’，Ｎ’−ジメチルアミノ−エタン）カルバモイル］コレステロール（ＤＣ−Ｃｈｏｌ）；２，３−ジオレオイルオキシ−Ｎ−（２−（スペルミンカルボキサミド）−エチル）−Ｎ，Ｎ−ジメチル−１−プロパンアミニウムトリフルオロ−アセタート（ＤＯＳＰＡ）、β−アラニルコレステロール、セチルトリメチルアンモニウムブロミド（ＣＴＡＢ）、ジＣ１４−アミジン、Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチル−Ｎ’−テトラデシル−３−テトラデシルアミノ−プロピオンアミジン、Ｎ−（α−トリメチルアンモニオアセチル）ジドデシル−Ｄ−グルタマートクロリド（ＴＭＡＧ）、ジテトラデカノイル−Ｎ−（トリメチルアンモニオ−アセチル）ジエタノールアミンクロリド、１，３−ジオレオイルオキシ−２−（６−カルボキシ−スペルミル）−プロピルアミド（ＤＯＳＰＥＲ）、およびＮ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチル−、Ｎ’−ビス（２−ヒドロキシルエチル）−２，３−ジオレオイルオキシ−１，４−ブタンジアンモニウムヨージド、１−［２−（アシルオキシ）エチル］２−アルキル（アルケニル）−３−（２−ヒドロキシエチル）−イミダゾリニウムクロリド誘導体（１−［２−（９（Ｚ）−オクタデセノイルオキシ）エチル］−２−（８（Ｚ）−ヘプタデセニル−３−（２−ヒドロキシエチル）イミダゾリニウムクロリド（ＤＯＴＩＭ）および１−［２−（ヘキサデカノイルオキシ）エチル］−２−ペンタデシル−３−（２−ヒドロキシエチル）イミダゾリニウムクロリド（ＤＰＴＩＭ）など）、および第四級アミン上にヒドロキシアルキル部分を含む２，３−ジアルキルオキシプロピル第四級アンモニウム誘導体（例えば、１，２−ジオレオイル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩ）、１，２−ジオレイルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ）、１，２−ジオレイルオキシプロピル−３−ジメチル（ｄｉｍｅｔｙｌ）−ヒドロキシプロピルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ−ＨＰ）、１，２−ジオレイル−オキシ−プロピル−３−ジメチル−ヒドロキシブチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ−ＨＢ）、１，２−ジオレイルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシペンチルアンモニウムブロミド（ＤＯＲＩＥ−Ｈｐｅ）、１，２−ジミリスチルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシルエチルアンモニウムブロミド（ＤＭＲＩＥ）、１，２−ジパルミチルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＰＲＩＥ）、および１，２−ジステリルオキシプロピル−３−ジメチル−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド（ＤＳＲＩＥ））が含まれる。
他の適切な脂質には、上記の中性、アニオン性、およびカチオン性の脂質のＰＥＧ化誘導体が含まれる。１種またはそれより多くのＰＥＧ化脂質誘導体の脂質シェルへの組み込みにより、その表面上にポリエチレングリコール鎖を示すナノリポゲルを得ることができる。得られたナノリポゲルは、その表面上にＰＥＧ鎖を欠くナノリポゲルと比較してｉｎ
ｖｉｖｏでの安定性および循環時間が増大し得る。適切なＰＥＧ化脂質の例には、ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン（ｅｔｈａｎｌａｍｉｎｅ）−ポリエチレングリコール（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）（ＤＳＰＥ ＰＥＧ（分子量２０００）およびＤＳＰＥ
ＰＥＧ（分子量５０００）が含まれる）、ジパルミトイル−グリセロ−スクシナートポリエチレングリコール（ＤＰＧＳ−ＰＥＧ）、ステアリル−ポリエチレングリコール、およびコレステリル−ポリエチレングリコールが含まれる。
好ましい実施形態では、脂質シェルを、１つを超える脂質の組み合わせから形成する。一定の実施形態では、脂質シェルを、少なくとも３つの脂質の混合物から形成する。特定の実施形態では、脂質シェルを、ホスファチジルコリン（ＰＣ）、１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン−Ｎ−［アミノ（ポリエチレングリコール）−２０００］（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）、およびコレステロールの混合物から形成する。
いくつかの実施形態では、脂質シェルを、１種またはそれより多くのＰＥＧ化リン脂質および１種またはそれより多くのさらなる脂質またはステロールの混合物から形成する。一定の例では、１種またはそれより多くのＰＥＧ化脂質の１種またはそれより多くのさらなる脂質またはステロールに対するモル比は、約１：１〜約１：６、より好ましくは約１：２〜約１：６、最も好ましくは約１：３〜約１：５の範囲である。特定の実施形態では、１種またはそれより多くのＰＥＧ化脂質の１種またはそれより多くのさらなる脂質またはステロールに対するモル比は約１：４である。
いくつかの実施形態では、脂質シェルを、１種またはそれより多くのリン脂質および１種またはそれより多くのさらなる脂質またはステロールの混合物から形成する。一定の例では、１種またはそれより多くのリン脂質の１種またはそれより多くのさらなる脂質またはステロールに対するモル比は、約１：１〜約６：１、より好ましくは約２：１〜約６：１、最も好ましくは約３：１〜約５：１の範囲である。特定の実施形態では、１種またはそれより多くのリン脂質の１種またはそれより多くのさらなる脂質またはステロールに対するモル比は約４：１である。
好ましい実施形態では、脂質シェルを、リン脂質（ホスファチジルコリン（ＰＣ）など）、ＰＥＧ化リン脂質（１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン−Ｎ−［アミノ（ポリエチレングリコール）−２０００］（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）など）、およびコレステロールの混合物から形成する。特定の実施形態では、脂質シェルを、３：１：１のモル比のホスファチジルコリン、１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン−Ｎ−［アミノ（ポリエチレングリコール）−２０００］（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）、およびコレステロールの混合物から形成する。
２．ターゲティング分子およびＲＥＳ取り込みを減少させる分子
ナノリポゲルの表面またはコアホストを、ターゲティング分子の結合によってターゲティングを容易にするように改変することができる。例示的な標的分子には、器官、組織、細胞、または細胞外基質、または特定の型の腫瘍もしくは感染細胞に会合する１種またはそれより多くの標的に結合するタンパク質、ペプチド、核酸、脂質、サッカリド、またはポリサッカリドが含まれる。ナノリポゲルがターゲティングする特異性の程度を、適切な親和性および特異性を有するターゲティング分子の選択によって調整することができる。例えば、ターゲティング部分は、ポリペプチド（悪性細胞上に排他的またはより大量に存在する腫瘍マーカー（例えば、腫瘍抗原）を特異的に認識する抗体など）であり得る。目的の細胞および組織にナノ粒子を誘導するために使用することができる適切なターゲティング分子ならびに標的分子のナノ粒子への結合体化方法は当該分野で公知である。例えば、Ｒｕｏｓｌａｈｔｉ，ら、Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｃａｎｃｅｒ，２：８３−９０（２００２）を参照のこと。ターゲティング分子には、ニューロピリンおよび内皮ターゲティング分子、インテグリン、セレクチン、および接着分子も含まれ得る。ターゲティング分子を、当該分野で公知の種々の方法を使用してナノリポゲルに共有結合させることができる。
一定の実施形態では、リポソームシェルは１種またはそれより多くのＰＥＧ化脂質を含む。ＰＥＧまたは他の親水性ポリアルキレンオキシドは細網内皮系（「ＲＥＳ」）によるリポゲル取り込みを回避し、それにより、ｉｎ ｖｉｖｏ滞留時間を延長する。
ナノリポゲル表面を、ターゲティング分子の結合によってターゲティングを容易にするように改変することができる。これらは、ターゲティングされる細胞の表面上の受容体または他の分子に結合するタンパク質、ペプチド、核酸分子、サッカリド、またはポリサッカリドであり得る。特異性の程度を、ターゲティング分子の選択によって調整することができる。例えば、抗体は非常に特異的である。これらの抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、フラグメント、組み換え抗体、または単鎖抗体であり得、これらの多くは市販されているか、標準的な技術を使用して容易に得られる。抗原提示細胞が結合するＴ細胞特異的分子および抗原ならびに腫瘍ターゲティング分子を、ナノリポゲル表面および／またはホスト分子に結合することができる。ターゲティング分子を、リポソームシェル表面上に存在する１種またはそれより多くのＰＥＧ鎖の末端に結合体化することができる。
３．活性薬剤
ナノリポゲルのシェルは、任意選択的に、１種またはそれより多くの活性薬剤（上記活性薬剤のうちのいずれかが含まれる）を含むことができる。
タンパク質などの疎水性活性薬剤をナノリポゲル表面に共有結合的に接続することができるのに対して、親水性活性薬剤をナノリポゲル表面に共有結合的に接続することができるかリポソームシェル内に分散させることができる。一定の実施形態では、リポソームシェルは１種またはそれより多くのＰＥＧ化脂質を含む。これらの場合、１種またはそれより多くの活性薬剤を、リポソームシェル表面上に存在する１種またはそれより多くのＰＥＧ鎖の末端に結合体化することができる。特定の実施形態では、１種またはそれより多くの活性薬剤を、所望の生理学的局所で活性薬剤の放出を誘発するために外部の化学的刺激または物理的刺激（周囲ｐＨの変化など）に反応して切断する連結基を介してナノリポゲル表面に共有結合的に接続する。
ＩＩＩ．製造方法、負荷方法、および薬学的組成物
Ａ．製造方法および負荷方法
ナノリポゲルは、核酸、タンパク質、および／または小分子の持続送達についてリポソームおよびポリマーベースの粒子の両方の利点を組み合わせたナノ粒子である。ナノリポゲルは、球状、円板、ロッド、または異なるアスペクト比の他の幾何学的形状であり得る。ナノスフェアは、より大きい可能性がある（すなわち、微粒子）。ナノリポゲルは、典型的には、遠隔負荷によって薬剤をカプセル化可能であり、且つ異なる放出速度を容易にするために特性を調整可能な合成ポリマーまたは天然ポリマーから形成される。放出速度を、ポリマー−脂質比を０．０５〜５．０、より好ましくは０．５〜１．５に変化させることによって調整する。
ナノリポゲルを、形成前、形成中、または形成後のいずれかに薬剤を負荷し、その後に薬剤のための制御放出ビヒクルとして機能するようにデザインする。ナノリポゲルに、その後に複数の薬剤が制御放出されるように１つを超える薬剤を負荷することができる。
ナノリポゲルに、形成中に１種またはそれより多くの第１の薬剤を負荷し、形成後に第２の薬剤の存在下でのナノリポゲルの再水和過程によって１種またはそれより多くの第２の薬剤を負荷する。例えば、ナノリポゲルに、アジュバントとしての機能を果たす分子を負荷し、その後、形成後に標的抗原と共にアジュバントを制御放出させるための１種またはそれより多くの標的抗原を組み込む。あるいは、アジュバントを負荷したナノリポゲルを患者の腫瘍部位に挿入し、腫瘍を切除し、ナノリポゲルに放出される腫瘍抗原を負荷する。このナノリポゲルは、患者の体内に制御様式でアジュバントと共に腫瘍抗原を放出する。
別の実施形態では、ナノリポゲルに抗原、アジュバントとしての機能を果たす分子、および抗原提示細胞のターゲティング分子を負荷し、このナノリポゲルは抗原提示細胞によって取り込まれ、抗原が適切にプロセシングされてＴヘルパー細胞および細胞傷害性Ｔ細胞に提示されて細胞媒介性免疫応答が促進される。
さらに別の実施形態では、アジュバントとしての機能を果たす分子および抗原提示細胞のためのターゲティング分子が負荷されたナノリポゲルを患者の腫瘍部位に挿入し、腫瘍を切除し、ナノリポゲルに放出される腫瘍抗原が負荷され、このナノリポゲルが抗原提示細胞によって取り込まれ、放出された腫瘍抗原が適切にプロセシングされ、Ｔヘルパー細胞および細胞傷害性Ｔ細胞に提示され、細胞媒介性免疫応答が促進される。
Ｂ．薬学的組成物
ナノリポゲルを含む薬学的組成物を提供する。薬学的組成物は、非経口（筋肉内、腹腔内、静脈内（ＩＶ）、または皮下注射）、経皮（受動的であるかイオン導入法またはエレクトロポレーションを使用する）、または経粘膜（鼻、膣、直腸、または舌下）の投与経路または生体浸食性挿入物の使用による投与のためのものであり得、薬学的組成物を、各投与経路に適切な投薬形態で処方することができる。
いくつかの実施形態では、組成物を、標的化細胞への組成物の送達に有効な量で、例えば、静脈内投与または腹腔内投与によって全身投与する。他の可能な経路には経皮または経口が含まれる。
一定の実施形態では、組成物を、例えば、処置すべき部位への直接注射によって局所投与する。いくつかの実施形態では、組成物を、１種またはそれより多くの腫瘍に注射するか、または別様に直接投与する。典型的には、局所注射により、組成物の局所濃度が全身投与によって達成することができる濃度より高くなる。いくつかの実施形態では、組成物を、カテーテルまたはシリンジの使用によって適切な細胞に局所的に送達させる。かかる組成物を細胞へ局所的に送達する他の手段には、注入ポンプの使用（例えば、Ａｌｚａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，Ｃａｌｉｆ．）または埋没物隣接領域へのナノリポゲルの徐放に影響を及ぼし得る組成物のポリマー埋没物への組み込み（例えば、Ｐ．Ｊｏｈｎｓｏｎ ａｎｄ Ｊ．Ｇ．Ｌｌｏｙｄ−Ｊｏｎｅｓ，ｅｄｓ．，Ｄｒｕｇ
Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｃｈｉｃｈｅｓｔｅｒ，Ｅｎｇｌａｎｄ：Ｅｌｌｉｓ Ｈｏｒｗｏｏｄ Ｌｔｄ．，１９８７を参照のこと）が含まれる。
細胞に対して直接的に（ナノリポゲルの細胞との接触などによる）または間接的に（任意の生物学的過程の作用などによる）ナノリポゲルを提供することができる。例えば、ナノリポゲルを、生理学的に許容され得るキャリアまたはビヒクル中に処方し、細胞周囲の組織または流体に注入することができる。ナノリポゲルは、単純拡散、エンドサイトーシス、または任意の能動輸送機構もしくは受動輸送機構によって細胞膜を横切ることができる。
さらなる研究を行うにつれて、種々の患者の種々の状態の処置に適切な投薬量レベルに関する情報が出現するであろう。当業者は、レシピエントの治療の状況、年齢、および一般的な健康状態を考慮して、適切な投与を確認することができるであろう。選択される投薬量は、所望の治療効果、投与経路、および所望の処置持続時間に依存する。一般に、０．００１〜１０ｍｇ／ｋｇ体重／日の投薬量レベルを哺乳動物に投与する。一般に、静脈内注射または静脈内注入のために、投薬量はより低い可能性がある。一般に、個体へ投与されるナノリポゲル会合活性薬剤の総量は、同一の所望の効果または意図する効果のために投与しなければならない、会合していない活性薬剤の量より少ないであろう。
１．非経口投与用処方物
好ましい実施形態では、ナノリポゲルを、非経口注射によって水溶液で投与する。処方物は、懸濁液または乳濁液の形態であり得る。一般に、有効量の１種またはそれより多くの活性薬剤を含む薬学的組成物を提供し、この薬学的組成物は、任意選択的に、薬学的に許容され得る希釈剤、防腐剤、可溶化剤、乳化剤、アジュバント、および／またはキャリアを含む。かかる組成物は、希釈剤、滅菌水、種々の緩衝液の成分（例えば、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、酢酸塩、リン酸塩）、ｐＨ、およびイオン強度の緩衝化食塩水；ならびに、任意選択的に、添加物（界面活性剤および溶解補助剤（ｓｏｌｕｂｉｌｉｚｉｎｇ ａｇｅｎｔ）（例えば、ＴＷＥＥＮ（登録商標）２０、ＴＷＥＥＮ（登録商標）８０、ポリソルベート２０または８０とも呼ばれる）、抗酸化剤（例えば、アスコルビン酸、メタ重亜硫酸ナトリウム）、および防腐剤（例えば、チメロサール（Ｔｈｉｍｅｒｓａｌ）、ベンジルアルコール）および増量物質（例えば、ラクトース、マンニトール）など）を含むことができる。非水性溶媒または非水性ビヒクルの例は、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、植物油（オリーブ油およびトウモロコシ油など）、ゼラチン、および注射用有機エステル（オレイン酸エチルなど）である。処方物を凍結乾燥させ、使用直前に再溶解／再懸濁することができる。処方物を、例えば、細菌保持フィルタを介した濾過、組成物への滅菌剤の組み込み、組成物の照射、または組成物の加熱によって滅菌することができる。
２．局所投与および粘膜投与のための処方物
ナノリポゲルを、局所適用することができる。局所投与には、肺、鼻、口（舌下、口内）、膣、または直腸の粘膜への適用が含まれ得る。これらの投与方法は、経皮または粘膜輸送構成要素でシェルを処方することによって有効となり得る。経皮送達のために、かかる構成要素には、化学的エンハンサーまたは物理的エンハンサー（エレクトロポレーションまたはマイクロニードル送達など）が含まれ得る。粘膜送達のために、外側シェルのＰＥＧ化またはキトサンもしくは他の粘膜浸透剤の添加、または経口送達のためのｐＨ保護構成要素。
組成物を吸入中に肺に送達させ、空気動力学的直径が約５ミクロン未満のエアロゾルまたは噴霧乾燥粒子のいずれかとして送達した場合に肺上皮内層を横切って血流に到達することができる。
治療用製品の肺送達のためにデザインした広範な機械デバイスを使用することができ、機械デバイスには、噴霧器、定量吸入器、および粉末吸入器（すべて当業者によく知られている）が含まれるが、これらに限定されない。市販のデバイスのいくつかの具体例は、Ｕｌｔｒａｖｅｎｔ（登録商標）噴霧器（Ｍａｌｌｉｎｃｋｒｏｄｔ Ｉｎｃ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｏ．）；Ａｃｏｒｎ（登録商標）ＩＩ噴霧器（Ｍａｒｑｕｅｓｔ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ，Ｅｎｇｌｅｗｏｏｄ，Ｃｏｌｏ．）；Ｖｅｎｔｏｌｉｎ（登録商標）定量吸入器（Ｇｌａｘｏ Ｉｎｃ．，Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｔｒｉａｎｇｌｅ Ｐａｒｋ，Ｎ．Ｃ．）；およびＳｐｉｎｈａｌｅｒ（登録商標）粉末吸入器（Ｆｉｓｏｎｓ Ｃｏｒｐ．，Ｂｅｄｆｏｒｄ，Ｍａｓｓ．）である。Ｎｅｋｔａｒ、Ａｌｋｅｒｍｅｓ、およびＭａｎｎｋｉｎｄは全て、承認されているか臨床試験中の吸入用インスリン粉末調製物を有し、そのテクノロジーを本明細書中に記載の処方物に適用することができる。
粘膜投与用の処方物は、典型的には、噴霧乾燥した薬物粒子であり、この粒子を錠剤、ゲル、カプセル、懸濁液、または乳濁液に組み込むことができる。標準的な薬学的賦形剤は、任意の調合者から利用可能である。経口処方物は、チューインガム、ゲルストリップ、錠剤、カプセル、またはロゼンジの形態であり得る。経口処方物は、腸での防御を付与するかＧＩ管（腸上皮および粘膜が含まれる）を介した送達を増強することができる賦形剤または粒子に対する他の改変を含むことができる（Ｓａｍｓｔｅｉｎ，ら、Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ．．２９（６）：７０３−８（２００８）を参照のこと）。
経皮処方物も調製することができる。これらは、典型的には、軟膏、ローション、スプレー、またはパッチであろう。これらの全てを標準的なテクノロジーを使用して調製することができる。経皮処方物は、透過増強剤を含むことができる。化学的増強剤および物理的方法（エレクトロポレーションおよびマイクロニードルが含まれる）は、この方法と併せて役立ち得る。
ＩＶ．処置方法
処置方法は、典型的には、１種またはそれより多くの活性薬剤を細胞中または細胞の微小環境に送達させるために１種またはそれより多くの活性薬剤を負荷したナノリポゲルの使用を含む。本方法は、典型的には、活性薬剤負荷ナノリポゲルを１種またはそれより多くの細胞に接触させる工程を含む。接触は、ｉｎ ｖｉｖｏまたはｉｎ ｖｉｔｒｏで起こり得る。
ナノリポゲルを使用した細胞または被験体への薬物または他のカーゴの投与を、コントロール（例えば、従来の送達方法（遊離カーゴ／薬物送達、従来のＰＬＧＡナノ粒子を使用した送達、またはリポフェクタミン（登録商標）などの従来のリポソーム法を使用した送達など））を使用した細胞または被験体への薬物または他のカーゴの送達）と比較することができる。ナノリポゲルを使用して、従来の送達方法と比較して高い有効性で標的細胞にカーゴを送達させることができる。いくつかの実施形態では、ナノリポゲルを使用して送達させる場合、従来の送達方法と比較して、同一またはより優れた治療上の利点を得るためにより少ないカーゴまたは薬物しか必要としない。
いくつかの実施形態では、従来の送達方法と比較して毒性が少ないか存在しない。例えば、いくつかの実施形態では、被験体への負荷ナノリポゲルの投与後に、白血球、血小板、ヘモグロビン、およびヘマトクリットレベルは通常の生理学的範囲内にあり、肝臓や腎臓への毒性は認められず、体重ならびにアルカリホスファターゼの血清濃度、アラニントランスフェラーゼ、総ビリルビン、および血中尿素窒素は正常であり、または、その組み合わせである。
Ａ．ｉｎ ｖｉｖｏ法
開示された組成物を、ｉｎ ｖｉｖｏでの細胞への活性薬剤の送達方法で使用することができる。いくつかのｉｎ ｖｉｖｏアプローチでは、組成物を治療有効量で被験体に投与する。本明細書中で使用される場合、用語「有効量」または「治療有効量」は、処置される障害の１種またはそれより多くの症状を処置、阻害、または緩和するか、そうでなければ、所望の薬理的および／または生理学的効果を得るのに十分な投薬量を意味する。正確な投薬量は、種々の要因（被験体に依存する変数（例えば、年齢、免疫系の健康状態など）、疾患、および実施される処置など）に応じて変化するであろう。
１．薬物送達
粒子を使用して、有効量の１種またはそれより多くの治療薬、診断薬、および／または予防薬をかかる処置を必要とする個体に送達させることができる。投与されるべき薬剤の量は、処方医師によって容易に決定することができ、この量は、患者の年齢および体重ならびに処置すべき疾患または障害に依存する。
粒子は、静脈内、皮下、または筋肉内に注射するか、鼻または肺の系に投与するか、腫瘍環境内に注射するか、粘膜表面（膣、直腸、口内、舌下）に投与するか、経口送達のためにカプセル化するかのいずれかでの薬物送達（本明細書中で使用される場合、「薬物」には、治療薬、栄養補助薬、診断薬、および予防薬が含まれる）で有用である。粒子を、乾燥粉末として、水性懸濁液（水、塩水、緩衝化食塩水中など）として、ヒドロゲル、オルガノゲルで、カプセル、錠剤、トローチ、または他の標準的な薬学的賦形剤で投与することができる。
好ましい実施形態は、目的のカプスラント（ｃａｐｓｕｌａｎｔ）を用いて滅菌食塩水または他の薬学的に許容され得る賦形剤で再水和される乾燥粉末である。
本明細書中で考察するように、組成物を、多数の活性薬剤（小分子、核酸、タンパク質、および他の生物活性薬剤が含まれる）のための送達ビヒクルとして使用することができる。活性薬剤または薬剤を、ナノリポゲル粒子内にカプセル化し、ナノリポゲル粒子内に分散させ、そして／またはナノリポゲル粒子表面と会合することができる。いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、細胞への同時投与のために２つ、３つ、４つ、またはそれを超える異なる活性薬剤をパッケージングする。
２．トランスフェクション
開示された組成物は、ポリヌクレオチドの細胞トランスフェクションのための組成物であり得る。以下でより詳細に考察するように、トランスフェクションはｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで起こり得、種々の用途（遺伝子療法および疾患の処置）に適用することができる。組成物は、コントロールと比較した場合、効率が高いか、毒性が低いか、その両方であり得る。いくつかの実施形態では、コントロールは、別のトランスフェクション試薬（リポフェクタミン２０００など）で処理した細胞である。
当業者は、ナノリポゲルによって送達される特定のポリヌクレオチドを、処置すべき状態または疾患に応じて選択することができる。ポリヌクレオチドは、例えば、目的の遺伝子またはｃＤＮＡ、機能的核酸（阻害性ＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｒＲＮＡなど）、または目的の遺伝子もしくはｃＤＮＡ、機能的核酸（ｔＲＮＡ、もしくはｒＲＮＡ）をコードする発現ベクターであり得る。いくつかの実施形態では、２つ以上のポリヌクレオチドを組み合わせて投与する。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドはタンパク質をコードする。例示的なタンパク質には、例えば、（ａ）血管新生因子および他の因子（成長因子（酸性および塩基性線維芽細胞成長因子、血管内皮成長因子、内皮分裂促進成長因子（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｍｉｔｏｇｅｎｉｃ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）、上皮成長因子、トランスフォーミング成長因子αおよびβ、血小板由来内皮成長因子、血小板由来成長因子、腫瘍壊死因子−α、肝細胞成長因子、およびインスリン様成長因子など）が含まれる）；（ｂ）細胞周期インヒビター（サイクリン依存性キナーゼ、チミジンキナーゼ（「ＴＫ」）および細胞増殖の干渉に有用な他の薬剤など）；（ｃ）骨形成タンパク質（「ＢＭＰ」）（ＢＭＰ−２、ＢＭＰ−３、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６（Ｖｇｒ−１）、ＢＭＰ−７（ＯＰ−１）、ＢＭＰ−８、ＢＭＰ−９、ＢＭＰ−１０、ＢＭＰ−１１、ＢＭＰ−１２、ＢＭＰ−１３、ＢＭＰ−１４、ＢＭＰ−１５、およびＢＭＰ−１６が含まれる）が含まれる。ＢＭＰは、典型的には、ホモ二量体、ヘテロ二量体、またはその組み合わせとして、単独または他の分子と共に提供することができる二量体タンパク質である。あるいはまたはさらに、ＢＭＰの上流効果または下流効果を誘導することができる分子を提供することができる。かかる分子には、「ヘッジホッグ」タンパク質またはこれをコードするＤＮＡのうちのいずれかが含まれる。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、宿主細胞のゲノム内に組み込まれない（すなわち、依然として染色体外である）。かかる実施形態は、ポリヌクレオチドの一過性発現または制御された発現に有用であり、挿入変異誘発のリスクを軽減できる。したがって、いくつかの実施形態では、ナノリポゲルを使用して、宿主細胞で一過性に発現するｍＲＮＡまたは非組み込み発現ベクターを送達させる。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドを、宿主細胞のゲノムに組み込む。例えば、遺伝子療法は、疾患発症を担う欠損遺伝子を修正する技術である。研究者は、以下のいくつかの欠陥遺伝子を修正するためのアプローチのうちの１つを使用することができる：（ａ）非機能的遺伝子を置換するためにゲノム内の非特異的位置に正常遺伝子を挿入することができる。このアプローチが最も一般的である。（ｂ）相同組換えによって異常遺伝子を正常遺伝子と交換することができる。（ｃ）異常遺伝子をその正常な機能に戻す選択的逆変異によって異常遺伝子を修復することができる。（ｄ）特定の遺伝子の制御（遺伝子がオンまたはオフする程度）を変更することができる。
遺伝子療法は、ウイルスベクター、例えば、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポリオウイルス、ＡＩＤＳウイルス、神経栄養ウイルス（ｎｅｕｒｏｎａｌ ｔｒｏｐｈｉｃ ｖｉｒｕｓ）、シンドビスウイルスおよび他のＲＮＡウイルス（ＨＩＶ骨格を有するこれらのウイルスが含まれる）の使用を含むことができる。ベクターとしての使用に適切になるウイルスの特性を共有する任意のウイルスファミリーも有用である。典型的には、ウイルスベクターは、非構造初期遺伝子、構造後期遺伝子、ＲＮＡポリメラーゼＩＩＩ転写物、複製およびキャプシド形成に必要な逆位末端反復、およびウイルスゲノムの転写および複製を調節するためのプロモーターを含む。ベクターとして操作する場合、ウイルスは、典型的には、１種またはそれより多くの初期遺伝子を除去し、遺伝子または遺伝子／プロモーターカセットを、除去したウイルスＤＮＡの代わりにウイルスゲノムに挿入する。
相同組換え（ＨＲ）などの標的組み換えによる遺伝子ターゲティングは、別の遺伝子修正ストラテジーである。標的遺伝子座での遺伝子修正を、標的遺伝子に対して相同なドナーＤＮＡフラグメントによって媒介することができる（Ｈｕ，ら、Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．，２９：１９７−２１０（２００５）；Ｏｌｓｅｎ，ら、Ｊ．Ｇｅｎｅ Ｍｅｄ．，７：１５３４−１５４４（２００５））。１つの標的化組み換え方法は、配列特異的様式で第３の鎖として二重鎖ＤＮＡ中のホモプリン／ホモピリミジン部位に結合する三重鎖形成オリゴヌクレオチド（ＴＦＯ）の使用を含む。三重鎖形成オリゴヌクレオチドは、二本鎖核酸または一本鎖核酸のいずれかと相互作用することができる。
三重鎖形成オリゴヌクレオチド（ＴＦＯ）およびペプチド核酸（ＰＮＡ）を使用した標的化遺伝子療法は、米国特許出願公開第２００７０２１９１２２号に記載されており、ＨＩＶなどの感染症の処置のためのその使用は、米国特許出願公開第２００８０５０９２０号に記載されている。三重鎖形成分子はまた、テールクランプペプチド核酸（ｔｃＰＮＡ）（米国特許出願公開第２０１１／０２６２４０６号に記載のものなど）であり得る。高安定性ＰＮＡ：ＤＮＡ：ＰＮＡ三重鎖構造を、２つのＰＮＡ鎖での二重鎖ＤＮＡのストランド侵入から形成することができる。この複合体では、ＰＮＡ／ＤＮＡ／ＰＮＡ三重らせん部分およびＰＮＡ／ＤＮＡ二重鎖部分は共に、ピリミジンリッチ三重らせんを置換し、ヌクレオチド除去修復経路を強く誘発し、ドナーオリゴヌクレオチドで組み換え部位を活性化することが示されている構造変化を引き起こす。２つのＰＮＡ鎖を共に連結してビス−ＰＮＡ分子を形成することもできる。
三重鎖形成分子は、１種またはそれより多くのドナーオリゴヌクレオチドと組み合わせて使用した場合に哺乳動物細胞において部位特異的相同組換えを誘導するために有用であり、この組み換えによって修正された配列が得られる。ドナーオリゴヌクレオチドを三重鎖形成分子に係留するか、三重鎖形成分子から分離することができる。ドナーオリゴヌクレオチドは、標的二重鎖ＤＮＡと比較して少なくとも１つのヌクレオチドの変異、挿入、または欠失を含むことができる。
二重の二重鎖形成分子（偽相補性オリゴヌクレオチド対など）は、染色体部位でのドナーオリゴヌクレオチドでの組み換えを誘導することもできる。標的化遺伝子療法における偽相補性オリゴヌクレオチドの使用は、米国特許出願公開第２０１１／０２６２４０６号に記載されている。偽相補性オリゴヌクレオチドは、例えば立体障害のために相互に認識もハイブリッド形成もしないが、それぞれが標的部位で相補性核酸鎖を認識してハイブリッド形成することができるような１種またはそれより多くの修飾を含む相補性オリゴヌクレオチドである。いくつかの実施形態では、偽相補性オリゴヌクレオチドは、偽相補性ペプチド核酸（ｐｃＰＮＡ）である。偽相補性オリゴヌクレオチドは、標的二本鎖ＤＮＡ中にポリプリン配列を必要とする三重らせんオリゴヌクレオチドおよびビス−ペプチド核酸などの組み換え誘導法よりも効率的であり、標的部位の柔軟性を増大し得る。
Ｂ．ｉｎ ｖｉｔｒｏ法
開示された組成物を、ｉｎ ｖｉｔｒｏで細胞に活性薬剤を送達させる方法で使用することができる。例えば、ナノリポゲルを、細胞のｉｎ ｖｉｔｒｏトランスフェクションのために使用することができる。本方法は、典型的には、ポリヌクレオチドを細胞質内に導入するのに有効な量のポリヌクレオチドを含むナノリポゲルと細胞を接触させる工程を含む。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドを、細胞の遺伝子型または表現型を変化させるのに有効な量で細胞に送達させる。細胞は、被験体から単離した初代細胞または樹立細胞株の細胞であり得る。細胞は、均質な細胞型の細胞であり得るか、異なる細胞型の不均質な混合物であり得る。例えば、ポリプレックスを、支持細胞培養物中または種々の分化状態の混合培養物中などの異なる型の細胞を保有する不均質な細胞株由来の細胞の細胞質内に導入することができる。細胞は、細胞培養物中に無期限に維持することができる形質転換された細胞株であり得る。例示的な細胞株は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎから利用可能な細胞株（腫瘍細胞株が含まれる）である。
任意の真核細胞をトランスフェクションして、特異的核酸（例えば、代謝遺伝子）を発現する細胞（初代細胞および樹立細胞株が含まれる）を産生することができる。適切な細胞型には、未分化または部分的に分化した細胞（幹細胞、全能細胞、多能性細胞、胚性幹細胞、内細胞塊、成体幹細胞、骨髄細胞、臍帯血由来の細胞、および外胚葉、中胚葉、または内胚葉由来の細胞が含まれる）が含まれるが、これらに限定されない。適切な分化細胞には、体細胞、ニューロン細胞、骨格筋、平滑筋、膵臓細胞、肝臓細胞、および心臓細胞が含まれる。別の実施形態では、ｓｉＲＮＡ、アンチセンスポリヌクレオチド（ｓｉＲＮＡまたはアンチセンスポリヌクレオチドが含まれる）、または阻害性ＲＮＡを、本明細書中に記載の組成物を使用して細胞内にトランスフェクションすることができる。
本方法は、例えば、欠損遺伝子を修復するか、細胞を脱分化するか、細胞を再プログラミングするための個別化治療の分野で特に有用である。例えば、標的細胞を、最初に当該分野で公知の方法を使用してドナーから単離し、ポリヌクレオチドを含むナノリポゲルと接触させてｉｎ ｖｉｔｒｏ（ｅｘ ｖｉｖｏ）に変化させ、必要とする患者に投与する。供給源または細胞には、患者または同種移植（ａｌｌｏｇｒａｐｈｉｃ）ドナーから直接採取した細胞が含まれる。好ましい実施形態では、被験体に投与すべき標的細胞は、自家性（例えば、被験体由来）または同系であろう。同種異系細胞を、抗原的に適合しているが遺伝的に無関係のドナー（国家登録によって同定）から単離するか、遺伝的に関連する同胞または親から得たか由来する標的細胞の使用によって単離することもできる。
細胞を、ポジティブ選択および／またはネガティブ選択技術によって選択することができる。例えば、特定の細胞表面タンパク質に結合する抗体を磁性ビーズに結合体化し、免疫原性手順を利用して所望の細胞型を回収することができる。一過性トランスフェクション前に標的細胞を富化することが望ましいかもしれない。本明細書中の特定の標的細胞を富化する組成物の文脈で使用する場合、「富化された」は、天然の細胞供給源で見いだされるよりも所望の構成要素（例えば、標的細胞）の比率が高いことを示す。細胞組成物を、少なくとも１桁の規模、好ましくは２〜３桁、より好ましくは１０、１００、２００、または１０００桁の規模で天然の細胞供給源よりも富化することができる。一旦標的細胞が単離されると、これらの細胞を、当該分野で公知の確立された方法にしたがって適切な培地中で成長させることによって増殖させることができる。樹立細胞株はまた、この方法で有用であり得る。細胞を、必要に応じて、トランスフェクション前に凍結保存することができる。
次に、細胞を、ｉｎ ｖｉｔｒｏで開示された組成物と接触させて、細胞を修復、脱分化、再分化、および／または再プログラミングさせる。細胞をモニタリングすることができ、治療のための投与に望ましい細胞型を選択することができる。例えば、いくつかの実施形態では、開示された方法を使用して、分化細胞から同種異系の多能性細胞または多分化能性細胞（すなわち、幹細胞）を作製するか、免疫細胞の表現型を変化させる。
修復、脱分化、および／または再分化および／または再プログラミング後、細胞を必要とする患者に投与する。最も好ましい実施形態では、細胞を同じ患者から単離し、投与して戻す。代替的な実施形態では、細胞をある患者から単離し、別の患者に投与する。本方法を使用して、その後の使用のために長期間保存することができる変化した細胞の凍結ストックを産生することもできる。１つの実施形態では、線維芽細胞、ケラチノサイト、または造血幹細胞を患者から単離し、ｉｎ ｖｉｔｒｏで修復、脱分化、または再プログラミングして患者用の治療細胞を得る。
Ｃ．処置すべき疾患
ナノリポゲル送達ビヒクルを含む組成物を使用して、種々の疾患および状態（例えば、癌および感染症）を処置することができる。組成物を、被験体に治療的または予防的に投与することができる。例示的な治療的および予防的ストラテジーは、以下および実施例中により詳細に考察されている。
例えば、いくつかの実施形態では、細胞透過性ペプチド（細胞浸透性ペプチドとしても公知）、タンパク質形質導入ドメイン（ＰＴＤ）、膜移行配列（ＭＴＳ）、およびＴｒｏｊａｎペプチド（例えば、刺激応答性細胞透過性ペプチド）を、ナノリポゲル形成においてデンドリマーに結合体化させる。細胞透過性ペプチドには、ウイルス由来または模倣ポリマー（ＴＡＴなど）、インフルエンザ融合ペプチド、狂犬病ウイルス糖タンパク質フラグメント（ＲＶＧ）、ニューロピリン、ペネトラチン、およびポリアルギニンが含まれるが、これらに限定されない。Ａｎａｓｐｅｃは市販のＣＰＰを有する。
ナノリポゲルを使用して、透過するのが困難な細胞（ＨＩＶ感染細胞、Ｔ細胞リンパ腫、およびＢ細胞が含まれるが、これらに限定されない）に活性薬剤を送達させることができる。
いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、活性化または自己反応性のリンパ球、ウイルス感染細胞、および腫瘍細胞の免疫媒介中和に関与する細胞死受容体アゴニスト（Ｆａｓ／ＣＤ９５リガンドおよびＴＲＡＩＬ／Ａｐｏ２Ｌなど）および細胞死受容体（Ｆａｓ／ＣＤ９５、ＴＲＡＩＬ−Ｒ１／ＤＲ４、およびＴＲＡＩＬ−Ｒ２／ＤＲ５など）を含む。細胞死受容体依存性アポトーシスシグナル伝達経路の調節異常は、自己免疫疾患、免疫欠損、および癌の発症に関与している。さらに、デスリガンドＴＲＡＩＬは、ほとんどの非形質転換細胞型に影響を及ぼすことなく腫瘍細胞のアポトーシスを誘導する能力を考慮すると、潜在的な抗癌剤として非常に興味が持たれている。ＦＬＩＣＥ抑制タンパク質（ＦＬＩＰ）は、カスパーゼ−８活性化を妨害することによってＴＲＡＩＬ媒介細胞死を強力に遮断する。ＦＬＩＰの薬理的下方制御は、腫瘍細胞をＴＲＡＩＬによるアポトーシス誘導に対して感作する治療手段としての機能を果たし得る。したがって、デスリガンドまたは細胞死受容体を、細胞特異的送達および感受性標的細胞（癌細胞またはウイルス形質転換細胞など）のアポトーシスに対する感受性を増強するためのターゲティング部分および／または活性薬剤としてナノリポゲル上またはナノリポゲル内に組み込むことができる。
いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、サーチュインを特異的にターゲティングする部分を含む。サーチュインまたはＳｉｒ２タンパク質は、ヒストンデアセチラーゼ活性またはモノリボシルトランスフェラーゼ活性のいずれかを保有するタンパク質クラスである。サーチュインは、細菌、古細菌、および真核生物における重要な生物学的経路を制御し、老化および転写制御、アポトーシス、およびストレス耐性への影響ならびにエネルギー効率および低カロリー状況での警告に関与している。したがって、サーチュインまたはＳｉｒ２タンパク質を、抗老化予防または治療ストラテジーの一部としてターゲティングすることができる。
いくつかの実施形態では、活性薬剤は、ヒストンデアセチラーゼインヒビター（ＨＤＡＣｉ）を含む。ＨＤＡＣｉは、ＨＤＡＣ酵素の機能を妨害する化学物質である。ＨＤＡＣｉはＨＤＡＣ酵素活性を阻害し、したがって、アセチル化ヒストンを優先する方向に均衡を保つ。ＨＤＡＣｉをリジンアセチル化／脱アセチル化によってターゲティングすることもできるので、ＨＤＡＣｉは多数の非ヒストンタンパク質活性に影響を及ぼすこともでき、それにより、多数の遺伝子クラスターのアセチル化のエピソードを増大させ、転写活性を増大させ、その後、特異的遺伝子を上方制御する。いくつかの実施形態では、活性薬剤は化学治療剤を含む。ＨＤＡＣｉおよび化学療法薬の同時送達は、癌（多剤耐性癌（膵臓癌および黒色腫など）が含まれる）の処置に特に有効であり得る。
いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、ワクチンストラテジーの一部である。例えば、ナノリポゲルを使用して、抗原、免疫刺激薬、アジュバント、またはその組み合わせを送達することができる。いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、送達ビヒクルを特異的免疫細胞（例えば、樹状細胞などの抗原提示細胞）に誘導する標的部分を含む。いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、外側シェル上に提示した１種またはそれより多くの抗原提示細胞ターゲティング部分およびナノリポゲルの内側または外側のＴＬＲリガンドを単独または抗原と組み合わせて含む。抗原は、任意の公知の抗原（例えば、細菌、ウイルス、真菌、寄生虫、もしくは別の微生物由来の抗原、または腫瘍抗原もしくは環境抗原）であり得る。
いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、低ｐＨに遭遇した際にナノリポゲルの内容物が放出されるようなｐＨ応答エレメントを含む。このストラテジーを使用して、低酸素条件下でのナノリポゲルの内容物の腫瘍細胞または微小環境または心臓細胞への送達を増大させることができる。いくつかの実施形態では、ナノリポゲルを光力学療法で使用する。例えば、ｐＨ感受性ナノリポゲルは、光力学療法薬（ハイパーシリンなど）を処置領域（例えば、腫瘍細胞または腫瘍微小環境）に放出することができる。
いくつかの実施形態では、活性薬剤には、転写アクチベーター様エフェクターヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）が含まれる。ＴＡＬＥＮは、ＴＡＬエフェクターＤＮＡ結合ドメインをＤＮＡ切断ドメインに融合することによって生成される人工制限酵素である。ＴＡＬＥＮを、効率的でプログラミング可能な特異的ＤＮＡ切断のために使用することができ、これはｉｎ ｓｉｔｕでの強力なゲノム編集ツールである。ＴＡＬＥドメイン構築物を使用した合成転写因子を、複雑なゲノム中の特異的部位での発現に影響を及ぼす内因性活性化ドメインとのＴＡＬＥのＤＮＡ結合ドメインの対合による遺伝子調節に使用することもできる。転写アクチベーター様エフェクター（ＴＡＬＥ）を、実際に任意のＤＮＡ配列に結合するように迅速に操作することができる。したがって、ＴＡＬＥＮを、例えば、ＨＩＶ関連遺伝子（ＣＣＲ５など）を編集するか、遺伝病（嚢胞性線維症など）における一宿主性変異を処置するために遺伝子療法で使用することができる。
いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、病原体関連分子パターン分子（ＰＡＭＰ）ターゲティング部分を含む。ＰＡＭＰは、先天性免疫系の細胞によって認識される病原体群と関連する小分子モチーフである。ＰＡＭＰは、植物および動物の両方においてＴｏｌｌ様受容体（ＴＬＲ）および他のパターン認識受容体（ＰＲＲ）によって認識される。ＰＡＭＰは、いくつかの保存された非自己分子の同定によって先天性免疫応答を活性化し、感染から宿主を防御する。例えば、細菌リポ多糖（ＬＰＳ）（細菌の細菌細胞膜上に見いだされる内毒素）は、原型ＰＡＭＰであるとみなされる。ＬＰＳは、ＴＬＲ４（先天性免疫系の認識受容体）によって特異的に認識される。他のＰＡＭＰには、細菌フラジェリン（ＴＬＲ５によって認識される）、グラム陽性細菌由来のリポテイコ酸、ペプチドグリカン、および通常はウイルスに関連する核酸バリアント（二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）など）（ＴＬＲ３によって認識される）、または非メチル化ＣｐＧモチーフ（ＴＬＲ９によって認識される）が含まれるが、これらに限定されない。したがって、１種またはそれより多くのＰＡＭＰを使用して、感染症に対する免疫応答を増大させることができる。
いくつかの実施形態では、ナノリポゲルは、損傷関連分子パターン分子（ＤＡＭＰ）を含む。ＤＡＭＰには、活性化細胞または壊死細胞によって放出される細胞内分子および傷害の際に上方制御されるか組織損傷後に分解される細胞外基質分子が含まれる。ＤＡＭＰは、感染および組織損傷の際に組織損傷に対して免疫シグナルを発する危険シグナルであるが、過度の炎症（関節リウマチ、癌、およびアテローム性動脈硬化症が含まれる）にも関与している（Ｐｉｃｃｉｎｉｎｉ ａｎｄ Ｍｉｄｗｏｏｄ，Ｍｅｄｉａｔｏｒｓ ｏｆ Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ，Ｖｏｌ．２０１０，Ａｒｔｉｃｌｅ ＩＤ ６７２３９５，２１ ｐａｇｅｓ）。例えば、いくつかの実施形態では、ＤＡＭＰを、ＤＡＭＰが壊死細胞を模倣する免疫応答を誘導するためのナノリポゲルストラテジーの一部として使用することができる。例示的なＤＡＭＰには、Ｆ−アクチン、ＨＭＧＢ１（高移動度群ボックスタンパク質−１）、Ｓ１００Ａ８／Ｓ１００Ａ９、熱ショックタンパク質、尿酸、およびＤＮＡが含まれるが、これらに限定されない。いくつかの実施形態では、ＤＡＭＰを、ワクチンストラテジー（例えば、癌ワクチンストラテジー）に組み込む。例えば、ＤＡＭＰを、抗原提示細胞ターゲティングリガンドで修飾したナノリポゲルを使用して免疫細胞に送達させることができる。いくつかの実施形態では、癌ワクチンストラテジーはまた、１種またはそれより多くの腫瘍関連抗原の送達を含む。
Ｄ．例示的な疾患処置ストラテジー
１．免疫治療方法および癌処置方法
どのようにして黒色腫および他の癌が抗腫瘍応答を回避するのかについての背後にある１つの機構は、先天性免疫系が腫瘍を「非自己」と認識できないことであると仮定されている。これは、腫瘍細胞による多数の免疫抑制因子（トランスフォーミング成長因子−β（ＴＧＦ−β）（ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）の数および機能ならびに細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）の機能を低下させる一方で調節性Ｔリンパ球（Ｔｒｅｇ）の数を増加させる多面性サイトカイン）が含まれる）の分泌によって生じ得る。ＴＧＦ−β活性は多数の動物疾患系（マウス腫瘍モデルが含まれる）で広く評価され、その分泌は高用量インターロイキン−２（ＩＬ−２）治療を妨害すると疑われており、これは、黒色腫および腎細胞癌に対するＮＫ活性およびＣＴＬ活性を増強するが、大多数の患者で有効性を欠くと考えられている。これにより、グループは腫瘍から分泌される免疫抑制因子（ＴＧＦ−βが含まれる）に反作用するためのストラテジーを評価した。腫瘍内ＴＧＦ−βの正確な供給源は十分に確立されていないが、このサイトカインは、多数の異なる腫瘍（黒色腫が含まれる）において高レベルで見出されている。ＴＧＦ−βは腫瘍細胞の成長および分化ならびに確立された腫瘍を宿主免疫応答から防御するための免疫抑制環境の維持にきわめて重要であり、そのことがＴＧＦ−βを癌治療のための理想的な標的にしていると考えられる。特に、ＮＫ細胞が抗腫瘍応答で重要な役割を果たすので、腫瘍床に存在するＮＫ細胞数に及ぼすその抑制効果は、免疫寛容に重要であり得る。
実施例は、腫瘍に対するＩＬ−２およびＳＢの同時徐放の有効性を証明している。ＩＬ−２（可溶性の１７ｋＤａタンパク質）およびＳＢ（小型の疎水性薬物（Ｌｏｇ Ｐ＝４．３３））の非常に多様な生理化学的特性を考慮すると、徐放のための両薬剤の同時カプセル化は、従来の粒子テクノロジーでは困難な課題であった。例えば、リポソームは、親水性小分子のカプセル化のためおよびタンパク質のカプセル化のためでさえも容易に修飾されるが、これらの処方物の安定性およびカプセル化された薬剤の放出プロフィールは容易に調節されない。他方では、生分解性固体粒子（ポリ（ラクチック−ｃｏ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）から作製された粒子など）は、安定性が高く、制御可能な放出特徴を有するが、治療サイトカインの容易なカプセル化および制御放出または組み合わせ送達には複雑な問題がある。
転移性黒色腫は侵襲性が高く、非処置患者のメジアン生存期間は１２ヶ月未満である。外科的介入、照射、および細胞傷害性化学療法が無効であることにより、結果として免疫療法が一次処置様式となる。およそ５％の転移性黒色腫患者は、高用量ＩＬ−２で処置した場合、おそらく、黒色腫特異的Ｔ細胞応答の活性化の誘導または拡大によって持続可能な完全寛解が達成される。しかし、高用量に関連するＩＬ−２の毒性がその治療上の利点を妨害するので、より新しい世代の処方物では循環中のサイトカインの半減期の増大によって投与される用量を減少させることを目的とする。いくつかの例には、融合タンパク質（ＩＬ−２／Ｉｇ）、ペグ化ＩＬ−２、ＩＬ−２／抗ＩＬ−２複合体、リポソーム処方物、ウイルスベクター、およびプラスミドベクターが含まれる。ＴＧＦ−βインヒビターおよびＩＬ−２のナノリポゲル組み合わせ送達によって腫瘍免疫療法が増強される。ナノリポゲルからの２つの異なる化学的薬剤の徐放により、素晴らしい抗腫瘍効果が引き出される。腫瘍微小環境は、複数の免疫学的機構によって従来の免疫療法を妨害する。これらの機構のうちのいくつかは、局所腫瘍免疫応答を阻止するトランスフォーミング成長因子−β（ＴＧＦ−β）の分泌を含むと考えられる。したがって、高用量のインターロイキン−２（ＩＬ−２）でさえも、従来のサイトカインによるＦＤＡ承認された転移性黒色腫処置では制限された応答のみしか誘導されない。
腫瘍微小環境の免疫阻害性を克服するために、制御様式で腫瘍微小環境にＴＧＦ−βのインヒビターをＩＬ−２と共に放出するためのビヒクルが必要である。ＴＧＦ−βの１つの周知のインヒビターは、２−（５−ベンゾ［１，３］ジオキソール−５−イル−２−ｔｅｒｔ−ブチル−３Ｈ−イミダゾール−４−イル）−６−メチルピリジン塩酸塩（ＳＢ−５０５１２４として公知であり、本明細書中でＳＢと言及）である。しかし、ＩＬ−２（可溶性の１７ｋＤａタンパク質）およびＳＢ（小型の疎水性薬物（Ｌｏｇ Ｐ＝４．３３））の非常に多様な生理化学的特性を考慮すると、徐放のための両薬剤の同時カプセル化は、従来の粒子テクノロジーでは困難な課題であった。ナノリポゲルプラットフォームは、治療タンパク質および小分子疎水性薬物のカプセル化および持続送達のためにリポソームおよびポリマーベースの粒子の両方の特徴を組み合わせる。
この系からのＩＬ−２およびＳＢの両方の持続送達により、腫瘍内投与または全身投与後の黒色腫のＢ１６／Ｂ６マウスモデルにおいて強力な抗腫瘍免疫応答が誘導される。ＴＧＦ−βインヒビターおよびＩＬ−２を放出するナノリポゲルによって腫瘍成長が有意に遅延し、腫瘍保有マウスが延命され、腫瘍内ナチュラルキラー細胞（ＮＫ）が増加した。さらに、この併用療法での寛解の誘導は免疫応答の先天性アームおよび適応性アームの両方の活性化によって媒介され、先天性アームはｉｎ ｖｉｖｏでの抗腫瘍活性の媒介において重要な役割を果たしていた。処方物は、循環中でのサイトカイン半減期の増大だけでなく、持続様式でのＳＢ（腫瘍の免疫応答を妨害する能力を抑制する強力な多面性インヒビター）の同時送達によっても利点が得られる。
免疫応答を刺激する一方で腫瘍阻害環境を克服する併用療法は、癌免疫療法の魅力的な様式である。以下の実施例の併用療法において有効であることが証明されたナノリポゲルプラットフォームは、処置レジメンにおいて薬物の組み合わせを同時に利用することが望ましい種々の疾患における治療のためのプラットフォームを提供する。かかる併用療法および併用療法が有用な疾患は、当該分野で周知である。
例示的な癌治療を、以下の表１に概説する。表は、治療によって対処される病理学的異常；治療の細胞標的；ナノリポゲルのみまたはその任意の組み合わせによって送達することができる１、２、または３つの治療分子；ナノリポソームをターゲティングするために使用することができる所望の標的またはターゲティング部分；好ましい送達機構；および意図される治療の効果を示す。
Figure 2021138771
２．感染症
本明細書中に開示された組成物および方法を使用して処置することができるさらなる疾患の非限定的な例には、それぞれ抗ウイルス薬または抗生物質の組み合わせレジメンが望ましいストラテジーであるウイルスまたは微生物の感染症が含まれる。例えば、抗ＨＩＶ処方物は、ＨＩＶ複製を開始するためのアクチベーター、新規の細胞のＨＩＶ感染を防止するインヒビター、および他の細胞に悪影響を及ぼさない感染細胞内で排他的に活性化する死滅誘導物質の混合物を含み得る。外側脂質シェルを、全ヒトＴ細胞上で発現する分子に特異的に結合する抗体を使用して作製することができる。これは、内封成分を保護し、標的Ｔ細胞と融合するターゲティングビヒクルとしての機能を果たす。ナノリポゲルコアを、安全でＦＤＡ認証された「デンドリマー」をカプセル化するポリマーから作製する。
この内側デンドリマーコアを、以下と複合体化する。１）ＨＩＶを活性化するＨＤＡＣインヒビター（ＨＤＡＣｉ）。この薬剤は、ヒストン上のアセチル基を常に除去してヒストンの染色体ＤＮＡへの連続的結合を可能にし、ＨＩＶの潜伏状態の維持に役立つヒストンデアセチラーゼ（ＨＤＡＣ）として公知の酵素を阻害する；２）ウイルスＲＮＡと排他的に結合してＲＮＡ干渉と呼ばれる細胞経路によってこれを破壊する低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）と呼ばれるＲＮＡインヒビターをコードするプラスミド。ｓｉＲＮＡを、最小の副作用で意図するｍＲＮＡ標的のみをターゲティングして多大な利点を提供するようにデザインすることができる。感染細胞からのウイルスの拡散および非感染細胞中の増殖性感染を防止するために、これらのｓｉＲＮＡを全Ｔ細胞中で発現することができる；および３）ＨＩＶタンパク質ｔａｔおよびｒｅｖによって排他的に活性化され、それにより、感染細胞中のみで発現されるプロモーターによって調節されるｓｉＲＮＡをコードする別のプラスミド。これらのｓｉＲＮＡを、細胞生存を促進するタンパク質のＲＮＡに結合して破壊するようにデザインする。結合の際、系全体を、細胞の生理学的性質やホメオスタシスを変化させない細胞機構によって内在化し、粒子の最も外側が破壊されて内側の薬物／遺伝子複合体化コアを放出し、さらに分解されて成分を放出する。したがって、系は、Ｔ細胞（潜在性ＨＩＶのためのリザーバ）のみへの結合および感染Ｔ細胞のリザーバの選択的破壊について二重に調節される。
ＨＩＶおよび他の感染症の処置のための例示的な治療およびストラテジーを、以下の表２に概説する。表は、治療によって対処される病理学的異常；治療の細胞標的；ナノリポゲルのみまたはその任意の組み合わせによって送達することができる１、２、または３つの治療分子；ナノリポソームをターゲティングするために使用することができる所望の標的またはターゲティング部分；好ましい送達機構；および意図される治療効果を示す。
Figure 2021138771
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３．他の適応症
さらに別の非限定的な例は、血圧およびコレステロールレベルの両方を同時に低下させるために当該分野で周知の併用療法を使用する心血管疾患である。多数のかかる疾患において、生体内分布の調整によって処置ストラテジーで利点も得られ、本発明のいくつかの実施例で証明されるように、ナノリポゲルの使用によって生体内分布の調節が見込まれることは注目に値する。
首尾のよい併用療法は、持続的な様式で異なる生理化学的特性を有する種々のエフェクター分子を腫瘍床へ放出する安全且つ柔軟な送達プラットフォーム（本研究で開発したナノリポゲル送達系など）である。最近の研究では、別のＴＧＦ−β受容体−Ｉインヒビター（ＬＹ３６４９４７）と細胞傷害性化学治療剤であるドキソルビシンとの組み合わせが粒子処方物において膵癌腫および胃癌腫に対して有効であったことが証明されている。サイトカイン（ＩＬ−２が含まれる）は、免疫学的細胞およびエフェクター細胞の機能で重要な可溶性タンパク質の複雑なネットワークを代表する。類似の様式で、小分子疎水性薬（ＴＧＦ−βアンタゴニストなど）は、免疫応答を回避するために腫瘍によってもたらされたバリアを克服することができる免疫調節薬クラスを代表する。腫瘍床と組み合わせたこれらの薬剤の持続送達によって治療免疫応答を誘導することができる一方で、腫瘍微小環境の免疫耐性を軽減することができる。
Ｂ１６黒色腫モデルを使用して、不安定性タンパク質および疎水性小分子の両方の確実な同時かつ相乗的な送達の困難さを異なる薬物送達適用で個別の使用歴を有する不活性な生分解性成分から作製したナノスケール送達系の合理的操作によって取り組むことができることを確認した。実施例は、免疫系の先天性アームの活性化がＩＬ−２およびＳＢの同時送達の相乗効果の根底にある重要な免疫学的機構であり、その結果、腫瘍保有マウスの腫瘍成長を遅延させて生存を増強することを例示している。ＩＬ−２と組み合わせたＳＢの投与によって先天性免疫系が刺激され、この組み合わせを受容したマウスにおける腫瘍内のＮＫ数が大幅に増加した。ＮＫ枯渇後に治療有効性がないことが、両薬剤を放出するナノ粒子による先天性アームの刺激がこのモデルの生存の改善を達成するのに重要であることが証明された。ＳＢ、ＩＬ−２のみ、または組み合わせを放出する粒子も適応免疫系を刺激し、活性化ＣＤ８＋：Ｔｒｅｇ比を増強した。これらの結果は、併用療法が免疫系の両アームを同時に刺激することができることを示す。
腫瘍ターゲティングを用いない場合でさえも可溶性サイトカインおよび疎水性薬物分子の両方を持続的な様式で放出するようにデザインしたナノキャリアを使用して重要な免疫調節薬の組み合わせを同時送達させ、それにより、局所免疫抑制環境を減少させて抗腫瘍応答を増強することができる。腫瘍部位でのＩＬ−２およびＴＧＦ−βアンタゴニストの組み合わせにより、Ｂ１６／Ｂ６マウス黒色腫モデルで有意に腫瘍を遅延させ、選択された場合では微視的に寛解した。黒色腫などの浸潤性腫瘍が、急速に成長する腫瘍を支持するための迅速な血管形成に起因する１００〜８００ｎｍの孔を有する漏出性脈管構造を固有に生じることを注目すべきである。この脈管構造の欠陥および不十分なリンパ排液により、腫瘍床内へのナノ粒子の透過および滞留が亢進された。これは、しばしば、亢進された透過および滞留（ＥＰＲ）と呼ばれ、「受動的ターゲティング」の一形態である。正常組織よりも腫瘍中の薬物負荷ナノ粒子の蓄積が増大することの根拠は、漏出性脈管構造によって供給される腫瘍床と異なり、正常組織がナノサイズの粒子よりも透過性が低い密着結合を有する毛細血管を含むことである。したがって、受動的ターゲティングにより、抗体または他の薬物の遊離投与と比較して固形腫瘍中の粒子濃度が数倍になり得る。これは、静脈内注射後に認められる生存の増大および有効な転移の処置を説明することができる。
これは、どのようにしてナノリポゲルを使用して生体内分布に関する利点を得ることができるのかについての一例である。この生存指標をさらに増大させるための他のストラテジーには、腫瘍微小環境内の薬剤の選択的送達および滞留を改善するための注射頻度、注射あたりの投薬量、またはナノ粒子表面上の腫瘍滞留リガンドの包含の増大が含まれる。腫瘍に浸潤するリンパ球およびＮＫの活性を、サイトカインのＩＬ−２ファミリーに属し、ＩＬ−２活性化細胞の生存を増強するように機能することができるさらなるサイトカイン（ＩＬ−１５など）の送達によって増強することができる。
本発明は、以下の非限定的な実施例を参照してさらに理解されるであろう。
実施例１：抗腫瘍分子の送達のためのナノリポゲルの調製
材料と方法
ナノリポゲル合成。「ナノリポゲル」（「ｎＬＧ」）粒子を、分解性ポリマーから作製した（図１Ｂ）。リポソームを、光開始ヒドロゲル形成のためのナノスケールの鋳型として使用した。カプセル化タンパク質と併せた疎水性薬物の徐放を達成するために、メタクリラート結合体化β−シクロデキストリン（ＣＤ）を、リポソームの内部に組み込んだ。β−シクロデキストリンは、疎水性化合物のための可溶化剤としての長い歴史があり、種々の薬学的処方物中の重要な賦形剤である。この処方手順により、両方のタンパク質および小型の疎水性薬物を脂質二重層の内部に同時カプセル化することができた（図１Ａ〜１Ｂ）。
結合体化したＣＤを、加水分解性エステル基を介したスクシニル化ＣＤの感光性メタクリラート基との反応によって作製した。（図１Ａ）ＳＢまたはローダミン（画像化用）の官能化ＣＤとの複合体化を、５００ＭＨｚ Ｂｒｕｋｅｒ分光計でのプロトン核磁気共鳴（１Ｈ ＮＭＲ）によって検証した。全サンプルを、基準としての溶媒を用いた特徴付けのためにＤ２Ｏ中に１〜１０ｍｇ／ｍｌで溶解した。
ＰＬＡ−ＰＥＧ−ＰＬＡジアクリラートを、Ｓａｗｈｎｅｙ，ら、Ｍａｃｒｏｍｏｌｅ
２６，５８１−５８７（１９９３）にしたがって２工程で合成した。全ての化学物質を、他で断らない限り、Ｓｉｇｍａから購入し、これらの化学物質はＡＣＳグレード以上であった。α，ω−ジヒドロキシポリ（エチレンオキシド）（分子量４０００ｇ／ｍｏｌ）、３，６−ジメチル−１，４−ジオキサン−２，５−ジオン（ｄｌ−ラクチド）、およびスズ（ＩＩ）２−エチルヘキサノアート（第一スズオクトアート）を、５：１：０．００７５モル比で窒素下の丸底フラスコに入れ、反応物を真空下にて２００℃で４時間撹拌し、その後に１６０℃で２時間撹拌した。室温への冷却後、得られたコポリマーをジクロロメタンに溶解し、無水エーテル中で沈殿させた。この中間体をジクロロメタン（１０ｇ／ｍＬ）に溶解し、氷浴中で０℃に冷却した。１０ｇのポリマー中間体あたり、４４０μＬのトリエチルアミンおよび５３０μＬのアクリロイルクロリドを窒素下で添加し、反応混合物を、０℃で１２時間撹拌し室温で１２時間撹拌した。混合物を濾過し、得られたポリマーをジエチルエーテル中で沈殿させた。最終ポリマーをジクロロメタンに再溶解し、ヘキサン中で再沈殿させ、ＦＴＩＲおよびＮＭＲによって特徴づけた。
ローダミンおよびＳＢ５０５１２４のシクロデキストリンとの複合体化を、５００ＭＨｚ Ｂｒｕｋｅｒ分光計でのプロトン核磁気共鳴（１Ｈ ＮＭＲ）分光法によって試験した。
ナノリポゲル処方。全ての脂質をＡｖａｎｔｉ Ｐｏｌａｒ Ｌｉｐｉｄｓから入手し、さらに調製することなく使用した。ホスファチジルコリン（ＰＣ）、１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン−Ｎ−［アミノ（ポリエチレングリコール）−２０００］（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ）、およびコレステロールを、３：１：１モル比にてクロロホルム中で混合し、リポソームをＰｅｅｒ，ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ３１９，６２７−６３０（２００８）の遠隔負荷技術を使用して処方した。脂質標識蛍光リポソームを、１０％の１，２−ジステアロイル−ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン−Ｎ−［ポリ（エチレングリコール）２０００−Ｎ’−カルボキシフルオレセイン］（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ−フルオレセイン）の組み込みによって処方した。簡潔に述べれば、溶解した脂質をガラスシンチレーションバイアル中で混合し、その後に定方向窒素流を使用して溶媒を完全に除去した。これによって内部ガラス面に薄い脂質フィルムが形成され、これを１×リン酸緩衝化食塩水（ＰＢＳ）の添加によって再水和した。３０秒間ボルテックスおよびその後の室温で５分間の静置を１サイクルとしてこれを１０回繰り返し、得られた多重膜リポソームをＬＩＰＥＸ押出機（Ｎｏｒｔｈｅｒｎ Ｌｉｐｉｄｓ，Ｉｎｃ．）を使用して５μｍポリカーボネート膜（Ｗｈａｔｍａｎ）に１０回、１μｍ膜に１０回、最後に１００ｎｍに１１回押し出した。次いで、得られた単層リポソームを凍結乾燥させた。
凍結乾燥させたリポソームを、５％（ｗ／ｖ）ポリマー（図１Ｂ）および光開始剤としての２．５ｍｇ／ｍＬ Ｃｉｂａ Ｉｒｇａｃｕｒｅ ２９５９を含み、さらに他の添加物を含まないか（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）、９ｍｇ ｆ−ＣＤ可溶化ＳＢ／１００ｍｇ ｎＬＧ（ｎＬＧ−ＳＢ；ＳＢ５０５１２４、Ｓｉｇｍａ）、１μｇ ＩＬ−２／１００ｍｇ脂質（ＬＧ−ＩＬ−２；Ａｌｄｅｓｌｅｕｋｉｎ Ｐｒｏｌｅｕｋｉｎ，Ｎｏｖａｒｔｉｓ）、またはｆ−ＣＤ可溶化ＳＢおよびＩＬ−２（ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２）の両方を含む溶液で再構成した。ＣＤ（ランダムスクシニル化β−ＣＤ；ＣＴＤ、Ｉｎｃ．）を、１：３の化合物モル比で１×ＰＢＳ中にて室温で１時間撹拌することによって２−アミノエチルメタクリラート（Ｓｉｇｍａ）で官能化した。メタノールに溶解した薬物をｆ−ＣＤに添加することによってＳＢをｆ−ＣＤに組み込んだ。室温で２０分間の強い撹拌によって複合体を形成させた後、メタノールを、定方向の窒素流を使用して蒸発させた。リポソームを再水和するための３０分間のボルテックスを用いて再構成工程を進行させた。次いで、リポソームに、Ｂｌａｋ−Ｒａｙ長波長紫外線ランプ（Ｍｏｄｅｌ Ｂ １００）を使用して作動距離１０ｃｍで８分間ＵＶ光を照射した。ＵＶ照射の直前に、大規模なゲル化（ｇｅｌｌａｔｉｏｎ）を防止するためにサンプルを５倍希釈した。得られたナノリポゲルを遠心分離（７２００ｒｃｆで５分間）によってペレット化し、１×ＰＢＳに再懸濁した。この遠心分離／再懸濁手順を３回繰り返した。ナノリポゲルをアリコートにし、さらなる使用まで−２０℃で凍結した。コンシステンシーのため、全ナノリポゲルを使用前に凍結した（ｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏ）。最終的なサイズおよび分散度を、１×ＰＢＳへ再懸濁したナノリポゲルのＺｅｔａＰＡＬＳ動的光散乱装置での分析によって確認した。ＰＣ／コレステロールリポソーム、ＰＣ／コレステロール／ＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ２リポソーム、およびナノリポゲルのゼータ電位を、Ｍａｌｖｅｒｎナノサイザーを使用して０．１×ＰＢＳ中にて評価した。
ＴＥＭ分析のために、ナノリポゲルサンプルを四酸化オスミウムで染色し、次いで、ＦＥＩ Ｔｅｎａｉ Ｂｉｏｔｗｉｎ顕微鏡で画像化した。低温で切片にしたサンプルの脂質特異的四酸化オスミウム染色により、粒子の外膜に限定される局在化したパターンで染色された。
結果
リポソームを、光開始ヒドロゲル形成のためのナノスケールの鋳型として使用した。カプセル化タンパク質と併せた疎水性薬物の徐放を達成するために、メタクリラート結合体化β−シクロデキストリン（ＣＤ）を、リポソームの内部に組み込んだ。β−シクロデキストリンは、疎水性化合物のための可溶化剤としての長い歴史があり、種々の薬学的処方物中の重要な賦形剤である。
ＳＢまたはローダミン（画像化用）の官能化ＣＤとの複合体化を、１Ｈ ＮＭＲを使用して検証した。官能化ＣＤ（ｆ−ＣＤ）は光誘発重合中にリポソームカプセル化ポリマーマトリクスに共有結合するようになる。したがって、ＳＢはポリマーエステル基のｆ−ＣＤ／ＳＢ加水分解およびその後のナノリポゲルからの拡散の際にのみ放出が可能であり、それにより、ゲル化ＣＤの非存在下でのＳＢのバースト優先放出と比較して徐放が可能である。この系により、単一成分放出と比較して、その生物活性を損なうことなく遠隔負荷ＩＬ−２放出の制御が可能であり、タンパク質および薬物の両方の同時放出が可能であった。ＳＢ／ＩＬ−２負荷ナノリポゲルの放出プロフィールは血清中でのインキュベーションによって変化せず、７日目までに放出が実質的に完了した。
ＳＢおよびＩＬ−２の放出プロフィールに及ぼすｎＬＧ内での重合の影響を証明するために、両薬剤の放出動態学を、両薬剤をカプセル化したリポソームおよび固体ポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）ナノ粒子（ＰＬＧＡ ＮＰ）からの放出と比較した。ナノリポゲルビヒクル中への光硬化ポリマーの組み込みにより、リポソームと比較してＳＢのより多い徐放が可能であり、同一直径の従来の５０：５０（ＰＬＧＡ ＮＰ）と比較してより完全な放出が可能であった。薬物の放出動態学は、リポソームからの分散依存放出とＰＬＧＡからの加水分解依存放出との間のようである。リポソーム、ナノリポゲル、およびＰＬＧＡ ＮＰからのＩＬ−２の累積放出の比較により、ナノリポゲル中へのＩＬ−２のカプセル化によってより優れたサイトカインの徐放が可能であることが証明された。
ＳＢおよびＩＬ−２の生物活性は、リポゲル組み込みの影響を受けなかった。ＩＬ−２（８０％）および／または薬物（３６％）のカプセル化は、ナノリポゲルの直径に有意に影響を及ぼさなかった。動的光散乱分析によって平均直径１２０ｎｍおよび多分散指数０．２が明らかとなった。アミン末端化ＰＥＧ化ホスファチジルエタノールアミンを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルは、ホスファチジルコリンおよびコレステロールのみを使用して処方したリポソームのおよそ−２２±１０ｍＶゼータ電位と比較して、中性ゼータ電位を示した。ナノリポゲルの低温ＴＥＭによって球状リポソーム構造の形成が示され、この構造は界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であり、インタクトなナノリポゲルとほぼ同一の直径を有する内側ゲルコアが確認された。この系のｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞傷害性は無視できた。
このプラットフォームの生体内分布およびクリアランスを調査するために、ＣＤ可溶化ローダミンをＳＢの蛍光代替マーカーモデルとして使用した。ＣＤでのローダミン複合体化は、ＣＤとのゲスト−ホスト相互作用を認定するために以前から使用されている。これを、ここでは１Ｈ ＮＭＲによって確認した。
ＳＢまたはＳＢ＋ＩＬ−２のカプセル化は、粒子の平均直径または多分散性に有意な影響を及ぼさなかった。図１Ｄは、アミン末端化ＰＥ−ＰＥＧを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルのゼータ電位が中性付近であることが見出されたことを示す。図１Ｅは、ナノリポゲル処方物の組成および処方特性を示す。図１Ｆは、１Ｈ ＮＭＲによって検証したポリマー構造を示す。ナノリポゲルの低温ＴＥＭは球状リポソーム構造の形成を示した。図１Ｇは、光重合ポリマー／ＣＤが界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であるナノ粒子ヒドロゲル構造を形成することを示す。
実施例２：ｉｎ ｖｉｔｒｏ放出および生物活性研究
材料と方法
制御放出研究。長期間にわたるカプセル化薬剤の制御放出についてのナノリポゲルビヒクルの利点を証明するために、ＳＢおよび／またはＩＬ−２を含むナノリポゲル粒子のｉｎ ｖｉｔｒｏ放出を評価するための一連の研究を行った。放出研究を、３７℃の１×ＰＢＳ＋１０％ウシ胎児血清中での一定の撹拌を使用して行った。各時点で、容積を完全に除去し、遠心分離（７２００ｒｃｆで５分間）後に新たな緩衝液と置換した。ナノリポゲルを、手作業のピペット操作によって再懸濁した。３００ｎｍでＢｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒプレートリーダーを使用して、ＳＢ濃度を決定するために吸光度を測定した。読み取り値がカプセル化ＳＢのみに起因することを確実にするために、ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ粒子由来の吸光度の読み取り値をｎＬＧ−ＳＢ粒子から得た読み取り値から差し引いた。ＩＬ−２放出を、製造者の説明書にしたがってヒト化捕捉抗体（ＢＤ、５５５０５１）およびビオチン化検出抗体（ＢＤ、５５５０４０）を有するＩＬ−２ ＥＬＩＳＡキット（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して決定した。これらの研究で使用したＩＬ−２について、国際単位変換は、２２ＭＵ＝１．３ｍｇであった。
官能化ＣＤ（ｆ−ＣＤ）は光誘発重合中にリポソームカプセル化ポリマーマトリクスに共有結合するようになる。したがって、ＳＢはポリマーエステル基のｆ−ＣＤ／ＳＢ加水分解およびその後のナノリポゲルからの拡散の際にのみ放出が可能であり、それにより、ゲル化ＣＤの非存在下でのＳＢのバースト優先放出と比較して徐放が可能である。
生物活性研究。ｎＬＧ−ＩＬ−２の累積放出を、完全培地（Ｌ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ）、非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ）、Ｈｅｐｅｓ緩衝液（Ｓｉｇｍａ）、ゲンタマイシン（Ｓｉｇｍａ）、およびβ−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ）を補足した１０％ウシ胎児血清（Ａｔｌａｎｔａ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ）およびペニシリン／ストレプトマイシン（Ｓｉｇｍａ）を含むＲＰＭＩ培地（Ｇｉｂｃｏ））中で１、３、５、および７日目に行った。脾細胞をＢ６マウスから単離し、１０μｇ／ｍＬ抗ＣＤ３（１×ＰＢＳ中にて４℃で一晩コーティングした）および５μｇ／ｍＬ可溶性抗ＣＤ２８（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）で予めコーティングした２４ウェルプレートの各ウェルの５００μＬ Ｔ細胞培地に１×１０６細胞を添加した。放出研究由来の培地を０．２２μｍシリンジフィルタ（Ｗｈａｔｍａｎ）で濾過し、５００μＬをウェルに添加した。さらに、全ウェルは５μｇ／ｍＬ可溶性抗ＣＤ２８（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を含んでいた。可溶性ＩＬ−２を、標準として種々の濃度でコントロールウェルに添加した。細胞を３７℃でインキュベートし、細胞刺激を、ＩＦＮ−γＥＬＩＳＡ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して７２時間後に評価した。
結果
図２Ａ〜２Ｅは、ｎＬＧ、リポソーム（ｌｉｐｓｏｓｏｍｅ）、および固体ポリマーナノ粒子（ＰＬＧＡ）からの放出プロフィールの比較である。初期キャリア質量によって正規化されたｎＬＧからのＣＤ可溶化ＳＢまたはメタクリラート官能化ＣＤ（ｆ−ＣＤ）可溶化ＳＢの蓄積放出は、ナノリポゲルの重合によってＳＢ放出の徐放性が改善されたことを示した（図２Ａ）。ヒドロキシプロピルβ−ＣＤを、非官能化ＣＤとのＳＢ複合体化のために使用した。ＥＬＩＳＡ（免疫活性）研究および生物活性研究（生物活性）によって決定された初期ナノリポゲル質量によって正規化されたｎＬＧからのＩＬ−２の累積放出は、ＩＬ−２の生物活性がカプセル化の影響を受けないことを示していた（図２Ｂ）。ＳＢおよびＩＬ−２の放出は、１ｍｌ全血清中での１０ｍｇ ｎＬＧのインキュベーションの影響を受けなかった（図２Ｃ）。リポソーム、ナノリポゲル、および分解性ポリマー（ポリラクチド−ｃｏ−グリコリド）ナノ粒子（ＰＬＧＡ ＮＰ）からのＳＢの累積放出の比較により、ナノリポゲルビヒクル中への光硬化ポリマーの組み込みによってシクロデキストリン可溶化ＳＢのより良好な徐放およびより完全な放出が可能になることが示された（図２Ｄ）。ＰＬＧＡ ＮＰ（平均直径＝１５０±５０ｎｍ）を、修正された水／油／水二重エマルジョン技術の使用によって調製した。リポソームを、ポリマーコアの使用を除いてｎＬＧと同一の様式で調製した。リポソームに、ナノリポゲルと類似のＩＬ−２およびＳＢを負荷した。ＰＬＧＡ ＮＰからのカプセル化ＳＢの放出率の減少は、比較的疎水性のポリマーのＳＢとの相互作用に起因する。７日目に全粒子処方物を０．１Ｎ ＮａＯＨ＋１％ＳＤＳに溶解して１００％放出を決定した（矢印）（図２Ｄ）。リポソーム、ナノリポゲル、およびＰＬＧＡ ＮＰからのＩＬ−２の累積放出の比較により、ナノリポゲル中へのＩＬ−２のカプセル化によってサイトカインのより良好な徐放が可能になることが示された。累積放出を、７日間にわたって放出された全ＩＬ−２に対する％として示す。（図２Ｅ）全グラフ中のデータは、三連のサンプルの平均±１標準偏差を示す。図２Ｆは、ＰＬＧＡ、ナノリポゲル、およびリポソームのサイズおよびこれらへのＩＬ−２およびＳＢの負荷を比較している。
この系により、その生物活性を損なうことなく遠隔負荷ＩＬ−２放出の制御が可能であった。ＣＤの外側のポリマーヒドロゲル空隙へのＩＬ−２の負荷により、タンパク質および薬物の両方の同時放出が可能であった。単一成分放出と比較した両成分の総放出の減少（図２Ｃ）は、ナノリポゲルの内側の立体的制約またはＳＢおよびＩＬ−２の負荷効率の減少に起因する可能性が高かった。ＳＢ／ＩＬ−２負荷ナノリポゲルの放出プロフィールは血清中でのインキュベーションによって変化せず、７日目までに放出が実質的に完了した。
ＳＢおよびＩＬ−２の放出プロフィールに及ぼすナノリポゲル内での重合の影響を証明するために、両薬剤の放出動態学を、両薬剤をカプセル化したリポソームおよび固体ポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）ナノ粒子（ＰＬＧＡ ＮＰ）からの放出と比較した。ナノリポゲルビヒクル中への光硬化ポリマーの組み込みにより、リポソームと比較してＳＢのより多い徐放が可能であり、同一直径の従来の５０：５０（ＰＬＧＡ ＮＰ）と比較してより完全な放出が可能であった。薬物の放出動態学は、リポソームからの分散依存放出とＰＬＧＡからの加水分解依存放出との間である。リポソーム、ナノリポゲル、およびＰＬＧＡ ＮＰからのＩＬ−２の累積放出の比較により、ナノリポゲル中へのＩＬ−２のカプセル化によってより優れたサイトカインの徐放が可能であることが証明された。
生物活性。ナノリポゲルビヒクルは、生物活性を損なうことなくカプセル化薬剤の放出を制御するのに必要な方法を提供する。ＳＢおよびＩＬ−２の生物活性は、リポゲル組み込みの影響を受けなかった。ＩＦＮ−γ産生は、生物活性を決定するためのＩＬ−２濃度と相関した。
実施例３：ナノリポゲルの特徴付け
ＩＬ−２（８０％）および／または薬物（３６％）のカプセル化は、ナノリポゲルの直径に有意に影響を及ぼさなかった。動的光散乱分析によって平均直径１２０ｎｍおよび多分散指数０．２が明らかとなった。アミン末端化ＰＥＧ化ホスファチジルエタノールアミンを組み込んだリポソームおよびナノリポゲルは、ホスファチジルコリンおよびコレステロールのみを使用して処方したリポソームの−２２±１０ｍＶゼータ電位と比較して、中性ゼータ電位を示した。ナノリポゲルの低温ＴＥＭによって球状リポソーム構造の形成が示され、この構造は界面活性剤によるリポソーム外部の破壊後でさえも光散乱によって検出可能であり、インタクトなナノリポゲルとほぼ同一の直径を有する内部ゲルコアが確認された。この系のｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞傷害性を無視できた。
実施例４：生体内分布
ナノリポゲルの生体内分布およびクリアランスを調査するために、ＣＤ可溶化ローダミンをＳＢの蛍光代替マーカーモデルとして使用した。ＣＤでのローダミン複合体化は、ＣＤとのゲスト−ホスト相互作用を認定するために以前から使用されている。これを１Ｈ ＮＭＲによって確認した。全身投与後のローダミンのｉｎ ｖｉｖｏ薬物動態学を、尾静脈注射を介してｎＬＧ−ｒｈｏｄ、等価用量の遊離ローダミン、またはＰＢＳコントロールの単回静脈内投与を受けた健康なマウスにおいて評価した。
結果
血液から抽出したローダミンの蛍光分光分析により、注射から１時間後および２４時間後に残存する、ナノリポゲルの初期用量に対する量がそれぞれ１５．７±４．１％および７．７±３．７％（平均±標準偏差）であることが示された。遊離ローダミンは迅速にクリアランスされ、注射後のいかなる時点でも血中で検出できなかった。
図３Ａ〜３Ｇは、制御放出、クリアランス、および生体内分布を示すグラフである。ナノリポゲルキャリアおよびカプセル化薬物ペイロードの両方の分布を二重標識ＮＬＧを使用して調査し、フルオレセイン標識ホスホエタノールアミンを、ローダミン負荷ナノリポゲルの脂質成分に組み込んだ。５４０／６２５ｎｍおよび４９０／５１７ｎｍでの蛍光分光分析は、スペクトル重複のない用量依存性蛍光を示した。図３Ａは、キャリア質量によって正規化された同時負荷ｎＬＧからのＩＬ−２（ｎｇ／ｍｇ ｎＬＧ）および薬物（μｇ ＳＢ／ｍｇ ｎＬＧ）の累積放出のグラフである。全プロット中のエラーバーは、±１標準偏差を示す。図３Ｂは、日数で表示した経時的な薬物用量のクリアランス（初期用量に対する百分率）を示すグラフである：ナノリポゲル中へのカプセル化により、注射１時間後および２４時間後の血中の初期用量の残存率が有意に増大した（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１＃＃＃）。図３Ｃは、全身分布のグラフである。マウスに、静脈内尾静脈注射によって単回用量のローダミン負荷ナノリポゲルまたは可溶性ローダミン（食塩水中）を投与した。動物を、抽出および蛍光の定量のために注射の１、２４、４８、および７２時間後に屠殺した。
全身生体内分布を、ローダミン標識を使用して決定した。遊離色素を注射した動物と比較してナノリポゲル処置動物の主な器官において有意により大量の（２集団ｔ検定、ｐ＜０，０１）ローダミンが検出された。図３Ｄは、皮下腫瘍における時間依存的蓄積ｎのグラフである：Ｂ６マウスにおけるＢ１６腫瘍周囲注射後の累積的ローダミン腫瘍透過（円）。腫瘍周囲組織を回収して、腫瘍周囲のｎＬＧの残存用量を定量した（四角）。制御放出はローダミンの放出を示すが、脂質ではない（図３Ｅ）。皮下Ｂ１６腫瘍を保有するマウスに、二重標識ＮＬＧの単回ＩＶ（尾静脈）注射を行った。注射１、２、３、および７日後に動物を屠殺し、均質化、抽出、およびローダミンおよびフルオレセイン−ＰＥの定量のために組織を回収した。血清分析は、カプセル材料および送達ビヒクルの両方の循環の延長を示した。脂質（図３Ｆ）と薬物ペイロード（図３Ｇ）との間で類似の生体内分布パターンが認められ、肺および肝臓で最高の薬物蓄積が認められた。
主な器官への生体内分布の分析により、肺、肝臓、および腎臓がナノリポゲルカプセル化ローダミンおよび遊離ローダミンの両方の主な蓄積部位であることが示された。ナノリポゲル中へのカプセル化により、ほとんどの組織の最初の総用量および３日間にわたる蓄積用量の両方が増大した。
実施例５：細胞傷害性および安全性の研究
材料と方法
Ｃｅｌｌ ｔｉｔｅｒ ｂｌｕｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を、製造者の説明書にしたがって細胞生存度のマーカーとして使用した。チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞（ＡＴＣＣ）を、５×１０４細胞／ウェル（細胞数の系列希釈を含んでいた標準を除く）の密度で９６ウェルプレートに入れた。細胞を、１×ＰＢＳ（ポジティブコントロール）、アジ化ナトリウム（ネガティブコントロール；Ｓｉｇｍａ）、リポソーム、またはナノリポゲルの系統希釈物と共に３７℃で２４時間インキュベートした。リポソームをナノリポゲルと同様に作製したが、凍結乾燥後に、純粋な１×ＰＢＳで再構成し、ＵＶ照射に供さなかった。ナノリポゲルは、ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ群に由来していた。２４時間後、ｃｅｌｌ ｔｉｔｅｒ ｂｌｕｅ試薬を添加した（２０μＬ／１００μＬ体積）。細胞を３７℃で４時間さらにインキュベートし、その後に細胞をペレット化し、上清の蛍光を測定した。１００％細胞生存を１×ＰＢＳ群由来の生存平均値と定義し、０％生存をアジ化合物群由来の生存平均値と定義した。全サンプルを三連で実験し、実験を３回繰り返して類似の結果を得た。
ナノリポゲル粒子のｉｎ ｖｉｖｏ安全性を試験するために、Ｃ５７／Ｂｌ６マウスに単回静脈内用量のナノリポゲルを投与し、７日後に急性毒物学を測定した。肺毒性を組織学によって評価して、全身投与したナノリポゲルが任意の急性炎症を誘導したかどうかを決定した。
結果
空のナノリポゲルまたはＳＢ５０５１２４（ＳＢ）またはＩＬ−２を用いて同時カプセル化したナノリポゲルの投与に由来する統計的に有意な毒性効果は認められなかった。アルカリホスファターゼおよびアラニンアミノトランスフェラーゼの血清レベルによって測定した場合、肝毒性（ｈｅｐａｔｏｘｉｃｉｔｙ）は認められなかった。マウスアルカリホスファターゼおよびアラニンアミノトランスフェラーゼについてのＩＤＥＸＸ ＶｅｔＴｅｓｔ（登録商標）システムによって得た正常な生理学的基準範囲は、それぞれ６２〜２０９ＩＵ／Ｌおよび２８−１３２ＩＵ／Ｌであった。さらに、血中尿素窒素レベルが正常マウス基準範囲１８〜２９ｍｇ／ｄＬに含まれていたので、腎臓毒性は認められなかった。任意の血液学的毒性を同定するために、全血球算定も行った。白血球数、血小板数、およびヘモグロビン含量は全て、マウスの正常な生理学的範囲に含まれていた（白血球：１．８〜１０．７×１０３細胞／ｕＬ；血小板：５９２〜２９７１×１０３細胞／ｕＬ；ヘモグロビン：１１．０〜１５．１ｇ／ｄＬ）。肺のヘマトキシリンおよびエオシン染色では明らかな肺毒性は証明されなかった。細気管支および肺胞構造は正常なようであり、肺切片において上皮層の破壊や炎症性浸潤は認められなかった。
ｉｎ ｖｉｔｒｏでの結果は、ナノリポゲルがリポソームに対して類似の無視できる毒性しか持たないことを証明している。
健康なＣ５７／Ｂｌ６マウスに単回静脈内用量のナノ粒子併用療法薬またはコントロールを投与し、７日後に急性毒物学を測定した。血清アルカリホスファターゼや血清アラニンアミノトランスフェラーゼの測定において有意な毒性は認められなかった。マウスアルカリホスファターゼの正常な生理学的範囲はおよそ６２〜２０９ＩＵ／Ｌであり、アラニンアミノトランスフェラーゼについてはおよそ２８〜１３２ＩＵ／Ｌである。血中尿素窒素レベルが正常なマウス基準範囲１８〜２９ｍｇ／ｄＬに含まれていたので、腎毒性は認められなかった。全血球算定により、白血球数、血小板数、およびヘモグロビン含量が正常な生理学的範囲内であることが証明された。肺毒性を組織学によって評価して、急性炎症の存在を決定した。肺のヘマトキシリンおよびエオシン染色では明らかな肺毒性や炎症性浸潤は証明されなかった。細気管支および肺胞構造は正常なようであり、上皮層の破壊は認められなかった。
実施例６：腫瘍への薬物送達および抗腫瘍活性−皮下腫瘍
ＩＬ−２およびＴＧＦ−βアンタゴニスト単剤療法がＢ１６黒色腫に対する抗腫瘍応答を増強する効果を決定した。
材料と方法
対応のあるｔ検定（両側）を使用して、腫瘍面積および腫瘍量の相違を解析した。ＯｒｉｇｉｎＰｒｏバージョン８．１（Ｍｉｃｒｏｃａｌ）およびＰｒｉｓｍバージョン５．０１（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｉｎｃ．）を、分析のために使用した。Ｏｒｉｇｉｎを使用したカプラン・マイヤーおよびウィルコクソン・ゲーハン検定を使用して、生存研究を分析した。
ｉｎ ｖｉｖｏ皮下腫瘍研究。Ｂ１６−Ｆ１０細胞（ＡＴＣＣ）をＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ）中で培養し、注射直前に１×ＰＢＳ（氷上で保持）で２×１０６細胞／ｍＬに懸濁した。皮下腫瘍研究のために、雌６〜８週齢Ｂ６アルビノマウスをＡＥｒｒａｎｅ（イソフルラン；Ｂａｘｔｅｒ）で鎮静し、右後側腹部の剪毛後に５０μＬの細胞懸濁液を皮下注射した。腫瘍をモニタリングし、平均腫瘍面積がおよそ５．５ｍｍ２に到達した時に処置を開始した（Ｂ１６注射から８〜１０日後；群間で腫瘍サイズを正規化するために、マウスを再配置した）。腫瘍内ナノリポゲル投与のために、マウスをイソフルランで鎮静させた。各用量は、５ｍｇナノリポゲルからなっていた。
観察者は、腫瘍面積および生存研究について盲検化された。任意の１つの腫瘍寸法が１５ｍｍを超える場合、疾患の任意の徴候を示した時、またはＦＡＣＳ分析研究のための処置から１週間後に二酸化炭素を使用してマウスを安楽死させた。ｉｎ ｖｉｖｏ送達研究において、ｎＬＧ−ＳＢについての上記のように調製したｆ−ＣＤ可溶化ローダミン（Ｓｉｇｍａ）負荷ナノリポゲルを５ｍｇ注射／マウスで使用した。異なる時点で群あたり５匹のマウスを安楽死させ、腫瘍を抽出し、秤量した。
ローダミンを、５００μＬ脱イオン水（ＤＩ）中で腫瘍を均質化することによって抽出した。−８０℃／室温での凍結／融解サイクル２回を使用して細胞が完全に溶解したことを確実にし、次いで、ホモジネートを室温に解凍し、４０％（ｖ／ｖ）ジメチルスルホキシドおよび１％（ｖ／ｖ）ＴＷＥＥＮ（登録商標）８０を添加して粒子を溶解した。ボルテックス後、ホモジネートを−８０℃で２４時間凍結し、室温で解凍し、１０分間ボルテックスし、次いで、細胞残渣を１３０００ｒｐｍでの３０分間の遠心分離によってペレット化した。上清を除去し、蛍光を励起５４０ｎｍ／放出６２５ｎｍで測定した。
ｉｎ ｖｉｖｏ ナノリポゲル
ナノリポゲル中へのカプセル化によって遊離薬物のクリアランスが減少し、生体内分布が改善されたので、最初に治療有効性を評価するために皮下腫瘍の局所治療を評価した。可溶性ＳＢのみの毎週の腫瘍内投与では腫瘍成長を遅延させることができず（図４Ａ）、前臨床の前立腺癌および胃癌動物モデルにおいてＬＹ３６４９４７を使用した以前の結果と一致していた。可溶性ＳＢおよびＩＬ−２の両方を毎週用量で同時投与した場合に同様に効果がなかったことが観察された（図４Ａ）。個別に投与したナノリポゲルカプセル化ＳＢ（ｎＬＧ−ＳＢ）により腫瘍成長が有意に遅延し（図４Ａ）、治療１週間後にマウスの腫瘍はより小さくなった（図４Ｂ）。個別に投与したナノリポゲルカプセル化ＩＬ−２（ｎＬＧ−ＩＬ−２）では腫瘍成長は有意に遅延しなかったが（図４Ａ）、１週間で腫瘍量はコントロール群中のマウスから得た腫瘍より有意に小さかった（図４Ｂ）。
これらの結果は、ＩＬ−２またはＴＧＦ−βシグナル伝達を阻害する小分子のいずれかの徐放の抗腫瘍応答の増強についての有効性がこれらの薬剤のパルス投与の有効性を超えることを示す以前の研究と一致する。全処置群を比較した場合、治療１週間後の腫瘍成長速度および腫瘍量の両方において最も顕著且つ有意な減少が、ＳＢおよびＩＬ−２の同時持続送達を受容したマウスで認められた（図４Ａおよび４Ｂ）。
結果
処置マウスおよび未処置マウスにおける腫瘍サイズは、その生存と相関していた（図４Ａ；４Ｃ）。ＩＬ−２と組み合わせた可溶性ＳＢまたはＳＢの投与では未処置コントロールを超えて生存は改善されなかった一方で、ＩＬ−２またはＳＢのみのナノリポゲル処方物は平均生存期間を少し増大させた（図４Ｃ）。対照的に、ナノリポゲルによって送達された併用免疫療法は生存を劇的に増大させた（図４Ｃ）。腫瘍動態学データから認められるように、各薬剤を放出する粒子の投与によって生存がわずかに改善されたが、両薬剤を放出する粒子による併用療法を受けたマウスは、他の処置群と比較して顕著に小さい腫瘍および長い生存期間が証明された。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２を受容した動物のうち１００％が、最初の腫瘍移植後の３５日での研究エンドポイントまで生存した。６０日間を通して、この群のコホート（４０％）において完全な腫瘍退縮および生存が認められた（図４Ｃ）。
ローダミン負荷ｎＬＧ（ｎＬＧ−ｒｈｏｄ）の局在化腫瘍周囲注射後の腫瘍への薬物送達を、腫瘍対腫瘍周囲組織におけるローダミン濃度の測定値の比較によって評価した。薬物動態学的プロフィールにより、ｎＬＧの局在化デポーからの薬物の持続送達が示唆され、腫瘍周囲投与の２４時間後、初期用量の３±１％しか腫瘍塊に透過せず、初期用量の３６±１７％が周囲組織に残った。７日間にわたり、腫瘍内のローダミン累積濃度は初期用量の２５±０．５％に増大した一方で、腫瘍周囲組織中の総ローダミン濃度は初期用量の４±２％に減少した。
実施例７：ｉｎ ｖｉｖｏナノリポゲルの生体内分布、安全性、および転移性肺腫瘍研究
重要な満たされていないニーズとして、遠隔転移性腫瘍の処置における短命なサイトカインおよび疎水性薬物の生体内分布の改善が挙げられる。一般に、ＴＧＦ−βシグナル伝達に耐性を示すＴ細胞を含む改変マウスは肺内の転移性Ｂ１６黒色腫沈着物の発生を抑制し、この腫瘍モデルにおいてＩＬ−２治療を使用するか使用しないでＴＧＦ−β遮断を評価するさらなる動機付けが得られた。高浸潤性Ｂ１６肺転移に対する全身ナノリポゲル治療の影響を、このモデルで試験した。Ｂ１６細胞の静脈内注射によってＢ６マウスの肺内で転移性腫瘍が急速に成長することが以前に示されている。
材料と方法
転移性Ｂ１６黒色腫を、Ｇｏｒｅｌｉｋ，ら、Ｎａｔ Ｍｅｄ ７，１１１８−１１２２（２００１）によって記載のように雌６〜８週齢Ｂ６マウスにおいて５０μＬのＢ１６細胞懸濁液の静脈内（尾静脈）投与によって確立した。尾静脈注射によって静脈内投与した５ｍｇナノリポゲルからなる各用量を使用して、処置を７日後に開始した。外部への腫瘍成長、麻痺または脱力、有意な体重減少を示した時、またはＦＡＣＳ分析研究のための最初の処置から１４日後にマウスを安楽死させた。屠殺後、胸腔（ｃｈｅｓｔ ｃａｖｉｔｙ）を露出させ、右心房を小さく切開して右心室に１０ｍＬの冷ＰＢＳを注入することによって肺灌流を行った。肺転移を、盲検化された観察者によって固有の腫瘍として０．１〜３ｍｍの範囲の暗色円形塊を記録することによって計数した。
ナノリポゲルの生体内分布研究を、５ｍｇのｆ−ＣＤ可溶化ローダミン負荷ナノリポゲル（脂質キャリアのフルオレセイン標識を含むまたは含まない）の注射（局所または全身）後に健康なマウスおよび腫瘍保有マウスで行った。上記のように、ローダミンを均質化した組織から抽出し、定量した。急性毒物学を、緩衝液コントロール、空のナノリポゲル、またはＳＢおよびＩＬ−２負荷ナノリポゲルの静脈内投与の７日後に健康なＣ５７／Ｂｌ６マウスで評価した。血清中のアルカリホスファターゼ、アラニンアミノトランスフェラーゼ、および血中尿素窒素のレベルの測定によって肝毒性（ｈｅｐａｔｏｘｉｃｉｔｙ）および腎毒性を評価した。任意の血液学的毒性を同定するために、全血球算定を行った。最後に、肺毒性を、全身投与したナノリポゲルが任意の急性炎症を誘導したかどうかを決定するための組織学によって評価した。
切除した腫瘍組織を１０％ホルマリン中で２４時間固定し、次いで、パラフィン包埋した。組織ブロックを５ｕｍスライスの切片にし、スライドガラスにマウント後、ヘマトキシリンおよび白血球染色抗ＬＣＡ（ＣＤ４５）−ペルオキシダーゼ結合体（１ｕｇ／ｍｌ）（Ｌｉｆｅ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で染色した。
２０倍の０．９５ＮＡ Ｏｌｙｍｐｕｓ対物レンズおよびＬａＶｉｓｉｏｎ Ｂｉｏｔｅｃ二光子顕微鏡システムと組み合わせたＯｌｙｍｐｕｓ ＢＸ６１ＷＩ蛍光顕微鏡を、腫瘍脈管構造および腫瘍中のナノリポゲル蓄積の画像化のために使用した。簡潔に述べれば、麻酔したＣ５７ＢＬ／６マウスの皮下腫瘍周囲の皮膚弁を曝露させるために切開した。生体内画像収集を、ナノリポゲルの静脈内投与から５分後に開始した。Ｖｅｒｄｉレーザー源によってポンピングした自動調整チタン−サファイア二光子レーザー（Ｃｈａｍｅｌｅｏｎ Ｖｉｓｉｏｎ ＩＩ，Ｃｏｈｅｒｅｎｔ）を、励起光源のために使用した。放出光を、以下の帯域フィルタを装着した非デスキャン型検出器（ｎｏｎ−ｄｅｓｃａｎｎｅｄ ｄｅｔｅｃｔｏｒ）を使用して回収した：４３５／９０ｎｍ、５２５／５０、および６１５／１００。各ｘｙ面の視野は、０．８ｕｍ／ピクセルの解像度で４００μｍ×４００μｍまたは５００μｍ×５００μｍのいずれかであった。ｚ軸間隔が１または２μｍの２６と１０１との間の光学切片のスタックを、８５０ｎｍまたは９４０ｎｍのいずれかの波長に設定したレーザーを使用して、６０秒毎に１時間にわたって収集した。Ｖｏｌｏｃｉｔｙ（登録商標）ソフトウェア（Ｉｍｐｒｏｖｉｓｉｏｎ）を使用して、連続したスタック画像を作製した。
結果
Ｐｅｔｅｒｓｅｎ，ら、Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ ２９，２４１−２４９（２００６）に記載のように、腫瘍浸潤リンパ球をＢ１６黒色腫から単離した。処置を、尾静脈注射によって与え、細胞注射から１週間後に開始して、成長腫瘍に対する有効性を評価した。皮下腫瘍保有マウスの場合のように、ナノリポゲルカプセル化併用療法を受けた群で最大の生存の利益が認められた。マンテル・コックス解析により、食塩水のみを投与した（すなわち、処置なし）動物よりも生存において統計的に有意な（ｐ＜０．０１）増大が証明された（図５ａ）。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２を投与した動物の半分は、４５日目の研究エンドポイントまで生存した（図５ａ）。
全身腫瘍組織量に及ぼす処置の影響を試験するために、最初の処置から２週間後に動物を屠殺し、全肺サンプルを黒色腫沈着について視覚的に調査した。ＩＬ−２同時治療を使用するか使用しない可溶性ＳＢの投与では、３週間で肺腫瘍数を減少させることができなかった（図５ｂ）。ナノリポゲル送達併用療法を受けた動物で全身腫瘍組織量の最大の減少が認められた（図５ｂ）。
Ｂ１６転移性肺腫瘍を保有するマウスにおいて生体内分布の比較を繰り返した。ローダミン負荷ナノリポゲルの脂質膜内へのフルオレセイン標識ＰＥＧ−ホスホエタノールアミンの組み込みによって処方した二重標識ナノリポゲルを使用して、粒子輸送対ペイロード輸送を評価した。フルオレセイン標識ＰＥＧは、ローダミンの検出や放出を干渉しなかった。肺腫瘍保有マウスに、単回ＩＶ（尾静脈）用量の二重標識ナノリポゲルを投与した。Ｂ１６転移は、しばしば、明視野での観察下でおよそ１ｍｍの不規則な小節として視覚可能であった一方で、送達ビヒクルのフルオレセイン標識脂質およびローダミンは投与から２４時間後までに蛍光フィルタ下で検出された。脂質の蛍光検出は、投与から４日後までに有意に減少した。
肺組織の範囲を超えた遠位腫瘍中のナノリポゲルおよび薬物の蓄積について試験するために、生体内分布実験を遠位皮下腫瘍を保有するマウスで繰り返した。静脈内注射後、皮下腫瘍中および均質化した組織中の脂質およびローダミンの濃度を、投与後の種々の時点で定量した。脂質およびローダミンのピーク腫瘍濃度（それぞれ、腫瘍１グラムあたり８．８±４．０％および２．５±０．８％）が投与から１日後に認められた。全組織の分析により、ナノリポゲル系の脂質およびローダミン成分の両方に類似する生体内分布パターンが確認され、このことは、薬物ペイロードが生体内分布中の粒子に会合していることを示していた。腫瘍脈管構造内のナノリポゲルおよびペイロードの輸送を、静脈内注射後の時間分解二光子レーザー走査生体内顕微鏡法を使用した皮下腫瘍の画像化によって確証した。脈管構造に沿ったフルオレセイン標識ナノリポゲルの蓄積が、静脈内注射後３０分以内に腫瘍周囲の領域および腫瘍自体の内部の両方で検出された。腫瘍脈管構造内の粒子輸送は、腫瘍微小環境内のカプセル材料の蛍光の増大を伴っていた。ローダミンの血管外遊出は、腫瘍周囲組織および腫瘍細胞間の間質腔で明らかであった。
フルオレセイン標識ＰＥＧは、ローダミンの検出も放出も妨害しなかった。全組織の分析により、静脈内注射後３０分以内にナノリポゲル系の脂質およびローダミン成分の両方ならびに腫瘍自体の内部にも類似する生体内分布パターンが確認された。
実施例８：ナノリポゲルの抗腫瘍効果の免疫学的機構
材料と方法
徐放併用療法の治療効果および単剤療法として送達された各薬剤の相対的な寄与の背後にある免疫学的機構を解明するために、最初の治療用量から１〜２週間後に安楽死させたマウスにおいて腫瘍浸潤リンパ球（ＴＩＬ）を採取し、評価した。この時点を、全群内のマウスが分析に適切なＴＩＬ数を単離するために十分なサイズの皮下腫瘍（最大寸法が１０ｍｍまで）または十分な肺腫瘍数（５個超）のいずれかを発達させた時に基づいて選択した。
腫瘍浸潤リンパ球をＢ１６黒色腫から単離した。簡潔に述べれば、皮下腫瘍または肺腫瘍をマウスから切除し、秤量し、最大寸法がおよそ３ｍｍの切片に切り刻み、次いで、皮下腫瘍用の１７５Ｕ／ｍＬのコラゲナーゼＩＡ（Ｓｉｇｍａ，ｎｏ．Ｃ９８９１）または肺腫瘍用の１００Ｕ／ｍＬのコラゲナーゼＩＶ（ＭＰ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ，ｎｏ．１９５１１０）を含む８ｍＬの無血清ＲＰＭＩ培地 （Ｉｒｖｉｎｇ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｓａｎｔａ Ａｎｎａ，ＣＡ）に入れた。得られた組織懸濁液を３７℃で１時間インキュベートし、７０μｍ組織フィルタを通過させ、得られた細胞を無血清ＲＰＭＩ培地で２回洗浄した。ペレットを０．５ｍＬのＲＰＭＩ培地に再懸濁し、次いで、リンパ球単離のためのマウスｌｙｍｐｈｏｌｙｔｅ−Ｍ培地（Ａｃｃｕｒａｔｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ、Ｗｅｓｔｂｕｒｙ、ＮＹ）に重層し、その後に製造者の説明書（Ａｃｃｕｒａｔｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ）にしたがって１５００×ｇで遠心分離した。得られたバフィーコート層を取り出し、上記のＲＰＭＩ培地で洗浄し、次いで、０．５％ウシ血清アルブミン（Ｓｉｇｍａ）を含む１ｍＬの１×ＰＢＳに再懸濁した。全細胞懸濁液を計数して、単離ＴＩＬの絶対数を決定し、次いで、ＦＡＣＳ染色および分析のために９６ウェルプレートに分注した。
Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｅｎｓｏｎ ＬＳＲＩＩフローサイトメーターを使用して、製造者の説明書（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）にしたがってＣＤ４、ＣＤ８、ＮＫ１．１、ＴＣＲ−βの細胞表面発現ならびに細胞内ＦｏｘＰ３を評価することによって腫瘍保有マウス内の免疫エフェクター細胞（ＣＤ４＋、ＣＤ８＋Ｔ細胞、およびＮＫ細胞）およびＴｒｅｇの百分率を定量した。絶対細胞数を、Ｃｏｕｌｔｅｒセルカウンターでの直接計数によって評価した。抗ＣＤ４（Ｐａｃｉｆｉｃ Ｂｌｕｅ結合体化、番号５５８１０７）、抗ＣＤ８−ａ（ペリジニン−クロロフィル−タンパク質（ＰｅｒｃＰ）結合体化、番号５５３０３６）、抗ＮＫ１．１（フルオレセインイソチオシアナート（ｆｌｕｏｒｏｓｃｅｉｎ ｉｓｏｔｈｙｏｃｙａｎａｔｅ）（ＦＩＴＣ）結合体化、番号５５３１６４）、抗ＴＣＲ−β（アロフィコシアニン（ａｌｌｏｐｈｙｏｃｙａｎｉｎ）（ＡＰＣ）結合体化、番号５５３１７４）、抗ＣＤ４４（ＦＩＴＣ結合体化、番号５５３１３３）、および抗ＣＤ６２Ｌ（ＡＰＣ結合体化、番号５５３１５２）を、Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｅｎｓｏｎ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎから購入した。抗ＦｏｘＰ３キット（フィコエリトリン（ｐｈｙｃｏｅｒｙｔｈｅｒｉｎ）結合体化ＦｏｘＰ３抗体を含む、番号７２−５７７５−４０）をｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅから購入した。
細胞を、（販売者の説明書にしたがって）非特異的結合を防止するために０．５％ ＢＳＡおよびＦｃ遮断抗体２．４Ｇ２（抗ＣＤ１６／３２）の２００倍希釈物を含む１×ＰＢＳで適切に希釈した４０μＬ抗体カクテルとインキュベートした。細胞を、抗体カクテルと４℃で３０分間インキュベートし、次いで、ＬＳＲＩＩ Ｇｒｅｅｎフローサイトメーターでの分析前に１回洗浄した。ＦｏｘＰ３の細胞内染色のために、細胞を固定し、透過処理し、購入済みのＦｏｘＰ３染色キット（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して染色した。
全ＦＡＣＳデータを、ＦｌｏＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅ Ｓｔａｒ Ｉｎｃ．，Ａｓｈｌａｎｄ，ＯＲ）を使用して解析した。ＣＤ４ Ｔｒｅｇｓ、ＣＤ８ Ｔ細胞、およびＮＫ細胞の絶対数を、腫瘍１グラムで正規化したＴＩＬの絶対数にＬＳＲＩＩ Ｇｒｅｅｎフローサイトメーターによって測定したＣＤ４＋／ＦｏｘＰ３＋細胞、ＣＤ８＋細胞、またはＮＫ１．１＋／ＴＣＲ−β細胞の百分率（生存、ＴＣＲ−β＋／−について最初にゲーティング）を掛けることによって決定した。ＣＤ８／Ｔｒｅｇ比を、ＣＤ８ Ｔ細胞の絶対数を調節性Ｔ細胞の絶対数で割ることによって得た。
ＮＫ１．１抗体を、Ｙｏｋｏｙａｍａ，Ｗ．Ｍ．Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｓｕｐｅｒｎａｔａｎｔ ａｎｄ ａｓｃｉｔｅｓ ｆｌｕｉｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，ｉｎ Ｃｕｒｒ Ｐｒｏｔ Ｉｍｍｕｎｏｌ（ｅｄ．Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ，Ｄ．Ｈ．）２．６．１−２．６．９（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，２０００）に記載のようにＨＢ１９１ハイブリドーマから単離した。これらの抗体を、Ｂ１６注射の１日前およびその後７日毎に腹腔内注射した。各注射は、２５０μＬの１ｍｇ／ｍｌ溶液であった。
ＮＫ１．１抗体を使用して処置したマウスで首尾よく生じたＮＫ枯渇を確認するために、ＮＫ枯渇マウスおよびＮＫ成熟マウスのおよそ３００マイクロリットルの血液および脾臓を得た。機械的解離を使用して得た末梢血および脾細胞を、製造者のプロトコールにしたがってＡＣＫ溶解緩衝液（Ｌｏｎｚａ，Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）で処理し、その後にテキストに記載の抗体を使用してＮＫ１．１またはＴＣＲ−βについて染色した。ＮＫ１．１／ＴＣＲ−β陰性細胞の百分率を、補足図８の右下象限に示した。これは、抗ＮＫ１．１抗体を使用した首尾のよいＮＫ枯渇を示す。
結果
ＩＬ−２およびＴＧＦ−βアンタゴニストの単剤療法がＢ１６黒色腫に対する抗腫瘍応答を増強する効果を評価した。ナノリポゲル中へのカプセル化が減少し、遊離薬物がクリアランスされ、生体内分布が改善され、それによって治療１週間後により小さい腫瘍を有するマウスが得られるので、１週間での腫瘍量はコントロール群のマウスから得た腫瘍より有意に小さかった。
ナノリポゲルのみまたはＳＢと組み合わせた投与によって、ＩＬ−２は腫瘍内の活性化ＣＤ８＋Ｔ細胞の百分率および絶対数の両方を増大させ（図６ａ；図６ｂ）、全ＣＤ４／ＣＤ８比およびＴｒｅｇへの影響は最小であり、この結果は報告された臨床結果と一致していた。腫瘍の代表的な組織学的画像は、ＩＬ−２が腫瘍へのリンパ球浸潤を有意に増大させることを示していた。このサイトカインの持続投与もＴＩＬ集団において活性化ＣＤ８＋：Ｔｒｅｇ比を増大させた（図６ｃ）。
ｎＬＧ−ＳＢでの処置によって非負荷粒子（ｎＬＧ−Ｅｍｐｔｙ）よりも活性化ＣＤ８＋集団を有意に増加させ（Ｐ＜０．０５）、ｎＬＧ−ＩＬ−２またはｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２での処置も同様であった（Ｐ＜０．００１）。全群は、空のｎＬＧと比較して比が有意に大きい（Ｐ＜０．０５）。
しかし、これらのデータは、ＩＬ−２およびＳＢの両方を放出する粒子を受容したマウスで認められた結果を完全に説明しておらず、別の機構が処置マウスで認められた抗腫瘍効果の増強に関与し得ることが示唆された。ＴＧＦ−βはＮＫ細胞の数および機能を調節することもできるので、この細胞型がＴＩＬに存在する免疫系の先天性アームに関与するかどうかを評価した。全腫瘍保有マウスにおいて認められたＴＩＬ Ｔｒｅｇの相対数と非常に対照的に、ＩＬ−２と組み合わせたＳＢの持続投与により、「空の」粒子またはＩＬ−２またはＳＢのみのいずれかを放出する粒子のいずれかを受容した群と比較して、腫瘍床内に存在するＮＫ細胞の百分率（図６ａ）および絶対数（図６ｃ）が有意に増大した。
両薬剤を放出する粒子で処置したマウスで認められた治療上の利点がＮＫ依存性であることを確証するために、ＮＫ枯渇マウスにおいて研究を行った。ＮＫ１．１抗体を使用してマウスのＮＫ細胞を枯渇させ、腫瘍細胞をＮＫ枯渇マウスおよびＮＫ細胞を保持するマウスに注射した。最初の処置から１週間後にマウスを再度安楽死させ、腫瘍量を測定した。
空の粒子群と比較して、ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２（Ｐ＜０．０５）、ｎＬＧ−ＳＢ（Ｐ＜０．０５）、およびｎＬＧ−ＩＬ−２（Ｐ＜０．０１）による処置後の肺内に有意により多数のＮＫが存在した。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置群は、コントロール群（Ｐ＜０．０１）、ＳＢ処置群（Ｐ＜０．０５）、およびＩＬ−２処置群（Ｐ＜０．０１）よりも有意に多くのＮＫを有する。ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置ＷＴ群は、全ての他の処置群よりも有意に小さな腫瘍を有する（Ｐ＜０．００１）。ＮＫＤ ｎＬＧ−ＳＢ群およびｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２群は、ＷＴ対応群よりも有意に大きな腫瘍を有する（共にＰ＜０．００１）。研究を２〜３回繰り返し、類似の結果を得た。
ＮＫ枯渇は、ＩＬ−２のみを放出する粒子を受容したマウスの腫瘍サイズに影響を及ぼさなかった（図６ｂ）。対照的に、これらの細胞が存在しないことにより、ＳＢおよびＩＬ−２を放出する粒子を投与した動物における腫瘍成長の遅延が無効にされた（図６ｂ）。ＮＫ枯渇によって無効にされた、薬物のみを放出する粒子を受容したマウスにおける治療上の利点は中程度であった（図６ｂ）。ＳＢのみを放出する粒子で処置したマウスのＴＩＬにおいて、ＮＫ細胞の増大は、中程度の統計的に有意なものであった（図６ｃ）。
したがって、ＳＢおよびＩＬ−２治療薬を同時送達させる粒子で処置したマウスで認められた最大の治療上の利点は、腫瘍部位でのＮＫ細胞数の増大に関連し、その結果、腫瘍内のエフェクター細胞集団が増加した可能性が高かった。
重要なことに、全身治療後の臨床効果は、局在化治療および薬物生体内分布の結果と一致した。ナノリポゲル中へのカプセル化により、肺への初期用量および３日間にわたる用量の持続の両方が増大し、投与３日後、可溶性薬物の１．５±０．７％と比較して、肺内でナノリポゲルの初期用量の９．０±０．８％（平均±標準偏差）が測定された。この薬物動態学的影響は、生存の増大および腫瘍数の有意な減少と相関する。肺浸潤性リンパ球の分析により、腫瘍内ｎＬＧ−ＳＢ＋ＩＬ−２処置を受けた皮下腫瘍で認められるように、活性化ＣＤ８＋（図５ａ）およびＮＫ（図６ａ）エフェクター細胞の数の増加が腫瘍抑制および生存の増大を媒介することが証明された。これらのデータは、転移性黒色腫に対する有意な抗腫瘍応答を臨床的に関連する投与様式でのＴＧＦ−βインヒビター薬およびＩＬ−２の持続的な組み合わせ送達によって実際に達成することができることを示す。
実施例９：ナノリポゲルキャリアおよびカプセル材料の分布の比較
材料と方法
ナノリポゲルキャリアおよびカプセル化薬物ペイロードの両方の分布を、二重標識ナノリポゲルを使用して調査した。フルオレセイン標識ホスホエタノールアミンを、ローダミン負荷ナノリポゲルの脂質成分に組み込んだ。５４０／６２５ｎｍおよび４９０／５１７ｎｍでの蛍光分光分析により、スペクトルが重複しない用量依存性の蛍光が証明された。脂質ではなくローダミンが制御放出された。
皮下Ｂ１６腫瘍を保有するマウスに、二重標識ＮＬＧの単回ＩＶ（尾静脈）注射を行った。注射の１、２、３、および７日後に動物を屠殺し、均質化、抽出、およびローダミンおよびフルオレセイン−ＰＥの定量のために組織を回収した。
結果
血清の分析により、カプセル材料および送達ビヒクルの両方の循環の延長が示された。類似の生体内分布パターンが脂質と薬物ペイロードとの間に認められ、肺および肝臓内の薬物蓄積が最高であった。
実施例１０：核酸、タンパク質、および薬物の組み合わせ送達のための脂質カプセル化デンドリマー
デンドリマーをカプセル化したナノリポゲルは、細胞に挿入される薬物およびｓｉＲＮＡ／デンドリマー複合体をカプセル化したリポソームからなるメインシェルを含む。樹状ポリマー（デンドリマー）は、中心コアから出発するその反復分岐構造によって識別される単分散ポリマーのクラスである。デンドリマーの多岐にわたる合成に固有の分岐により、枝分かれの増大またはより高い世代（第６世代以上）のほぼ球状に近づけることができるポリマーの幾何学的な成長をもたらす。この枝分かれにより、種々の疎水性小分子（薬物など）の捕捉および核酸の複合体化に理想的に適合するコアが作製される。例えば、スーパーフェクト（登録商標）は、市販の活性化デンドリマートランスフェクション薬である。その狭い分子量分布および小型（１０ｎｍ未満）と組み合わせて、デンドリマーは、多数の適用（薬物および遺伝子送達が含まれる）に利用されている。核酸と複合体化したデンドリマーを、ｉｎ ｖｉｖｏ投与の際に迅速にクリアランスすることができる。それ故、この複合体の防御的ターゲティングは、部位特異的送達のためのより魅力的な様式であろう。リポソーム処方物は、以下の２つの機能を果たす：１）ｓｉＲＮＡ複合体化リポソームの防御的カプセル化および２）親水性小分子薬（リボアブリンなど）またはタンパク質（ＩＦＮαなど）の送達の促進。内側デンドリマーコアのｓｉＲＮＡとの複合体化：核酸を、一般に、ヒストン周囲の核酸の生理学的パッケージングに類似するポリプレックス形成においてカチオン性ポリマーによって安定化する。カチオン性ポリアミドアミン（ＰＡＭＡＭ）デンドリマー（第５世代（Ｇ５）、直径５．４ｎｍ）は、この目的を果たす。
材料と方法
ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスを、１：１〜１０：１のアミン−ホスファート（Ｎ／Ｐ）比でのＧ５ ＰＡＭＡＭおよびｓｉＲＮＡの組み合わせによって形成する。最適なサイレンシングが得られる正確な比を、ストックｓｉＲＮＡおよびＰＡＭＡＭを異なるモル比にて軽くボルテックスしながら滅菌１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．２）中にて室温で３０分間混合することによって決定することができる。この手順により、リポソーム中へのカプセル化に適切な＋２０以上の電荷（ゼータ電位）および有効直径１０ｎｍを有するｓｉＲＮＡ−デンドリマーポリプレックスが得られる。次に、ポリプレックスを、リポソーム粒子中に薬物（ＩＦＮαおよび／またはリバビリン）と同時カプセル化する。ジステアロイル−グリセロ−ホスホコリン（ＤＳＰＣ）、コレステロール、およびジステアロイルグリセロ−ホスホエタノールアミン（ＤＳＰＥ）から構成され、アミン末端化ポリエチレングリコール（ＰＥＧ２０００）スペーサー（ＤＳＰＥ−ＰＥＧ２０００−ＮＨ２）を有する脱水脂質フィルムを、６５：３０：５のモル比で最初に混合し、次いで、ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスおよび薬物の１０ｍｇ／ｍｌ溶液を使用して超音波処理下で再水和する。溶液中の薬物のｓｉＲＮＡ／デンドリマーに対する比を、処方中に調整することができる。最適比を、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏでの有効性（ｅｆｆｉｃｉａｃｙ）研究で決定する。内因性の「ビルトイン」脂質ＰＥＧ化は、ＰＥＧを使用しない粒子と比較してより長い時間の循環を容易にする。ＰＥＧ組み込みにより、ｉｎ ｖｉｖｏ循環中での長寿命を容易にする立体的水和バリアシールドが得られる（すなわち、細網内皮系およびマクロファージによる非特異的取り込みの回避）。
脂質存在下での薬物およびｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスの混合後、溶液を一連のフィルタを通して押し出す。最初に５μｍフィルタに３回、１μｍフィルタに３回、および２００ｎｍフィルタに５回押し出し、押し出し物を滅菌チューブに回収する。過剰なｓｉＲＮＡ複合体、薬物、および脂質を、超遠心機中２４０００ｒｐｍにて４℃で４５分間スピンすること（３×）によって除去する。
図７Ａは、ｓｉＲＮＡ／デンドリマーポリプレックスと薬物の組み合わせをカプセル化し、外側シェルをターゲティング抗体または単鎖可変フラグメント（ｓｃＦｖ）で共有結合的に修飾したＬＥＤ調製の略図である。抗体またはｓｃＦｖのアミン末端化リポソームへの結合を、エチルジカルボジイミドおよびＮ−ヒドロキシスクシンイミドの存在下での０．１ ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ５．５）中で１０分間のタンパク質の活性化およびその後の緩衝化食塩水（ｐＨ７．４）中への粒子の添加によって達成する。この反応は、粒子上の曝露されたアミン基への共有結合のためにタンパク質上のカルボキシラート基を活性化する（ｒｅｆ）。最初に、反応化学量論（ｒｅａｃｔｉｏｎ ｓｔｏｉｃｈｅｍｅｔｒｙ）を粒子あたりおよそ１〜１０個のｓｃＦｖ分子の密度が得られるように調整するが、この密度を、最大内在化を容易にするために反応の化学量論を変化させることによって容易に増大させることができる。総反応時間は、室温で３０分間である。これらの反応条件は、カプセル化した薬剤の完全性にも機能にも影響を及ぼさない。
ＬＥＤを、異なるメタクリラート結合体化β−シクロデキストリン（ＣＤ）および窒素／リン（Ｎ／Ｐ）比を使用して機能的発現ベクター（ｐＧＦＰ）のＢＭＤＣ細胞、ＨｅＬａ細胞、２９３Ｔ細胞への送達能力について試験し、リポフェクタミン（登録商標）２０００およびリポソームを使用してベクター送達と比較した。
ＬＥＤを、機能的ｓｉＲＮＡの送達能力についても試験した。Ｊｕｒｋａｔ（ヒトＴ細胞株）を、ＣＤ４またはルシフェラーゼ（Ｌｕｃ）に対するｓｉＲＮＡをカプセル化し、内在化を媒介するために抗ＣＤ７で表面官能化したＬＥＤとインキュベートした。
結果
ＬＥＤは、培養におけるマクロファージを使用した図７Ａに記載の薬物内在化を容易にすることができる。薬物メトトレキサート（ＭＴＸ）を、モデル薬物として使用した。図７Ｂは、ＬＥＤおよびモデル薬物メトトレキサート（ＭＴＸ）をカプセル化したＬＥＤの細胞傷害性を示す。バーは、（左１ｍｇ／ｍｌから右１０ｕｇ／ｍｌ）から開始されるＬＥＤ、薬物、または組み合わせの連続希釈を示す。細胞死滅のポジティブコントロールとしてアジ化合物を使用する。１０％から始まって、左から右に１％まで増大し、グラフは、遊離薬物（ＭＴＸ）と比較して、ＭＴＸ含有ＬＥＤはわずかに毒性が低いことを示し、これはおそらく薬物隔離に起因する。ＬＥＤのみでは細胞傷害性を示さない。
色素ローダミンをカプセル化したＬＥＤは色素の内在化および細胞質局在化を容易にし、ｐＧＦＰプラスミドを含むＬＥＤは標準的なトランスフェクション薬（リポフェクタミン（登録商標）など）と比較して増強されたマクロファージのトランスフェクション効率を示した。
ＰＡＭＡＭデンドリマー上の末端アミン基がプロトンスポンジ効果によってエンドソームを緩衝化し、エンドソームを破壊するかどうかを決定するために、アクリジンオレンジ（そのスペクトル特性がエンドソームまたはサイトゾル内の位置に応じて変化する色素）アッセイを、未修飾第４世代ＰＡＭＡＭデンドリマー（Ｇ４）、またはイオノフォアであるカルボニルシアニド−ｐ−トリフルオロメトキシフェニルヒドラゾン（ＦＣＣＰ）を使用するか使用しないで第一級アミンで置換し、遮蔽したシクロデキストリン分子（ＣＤ）に結合体化したデンドリマーで処理したＢＭＤＣと共に使用した。結果は、試験した組み合わせのうち、未修飾Ｇ４デンドリマーがエンドソーム破壊で最良であり、Ｇ４−３ＣＤがそれに続いたことを示す（図７Ｃ）。Ｇ４−６ＣＤは、試験した組み合わせのうち、エンドソーム破壊に最も有効ではなかった。このことは、プロトンスポンジ効果が第一級アミンによって媒介され、アミンのＣＤとの置換によって緩衝能が減少するという考えを支持している。
ＬＥＤを、異なるデンドリマー（Ｇ）−シクロデキストリン結合体（ＣＤ）および窒素／リン（Ｎ／Ｐ）比を使用しても試験し、リポフェクタミン（登録商標）２０００およびリポソームを使用した種々の細胞型へのベクター送達（ｐＧＦＰ）と比較した。ＣＤは、デンドリプレックス（ｄｅｎｄｒｉｐｌｅｘ）に有意に影響を及ぼした（図７Ｄ）。デンドリプレックス（修飾デンドリマー由来）は、リポフェクタミン２０００よりもＢＭＤＣに良好にトランスフェクションする。ＬＥＤはまた、ベクターをカプセル化したリポソームよりもＢＭＤＣに良好にトランスフェクションした。
ＣＤ４またはルシフェラーゼ（Ｌｕｃ）に対するｓｉＲＮＡをカプセル化し、抗ＣＤ７で表面官能化したＬＥＤを、Ｊｕｒｋａｔ（ヒトＴ細胞株）細胞内で内在化標的ｍＲＮＡノックダウンを媒介する能力について試験した。結果は、ＬＥＤ送達ｓｉＲＮＡがコントロールと比較してＣＤ４またはＬｕｃの表面発現を減少させることを示した（図７Ｅ）。
第２の実験では、ＧＦＰ発現のノックダウンのために利用した２００ｕｇのデンドリマーおよび４００ｐｍｏｌ ｓｉＧＦＰ（Ｃｔｌ＝ＬＦＡ：ｓｉＧＦＰ）を含むＬＥＤは、安定にトランスフェクションされた細胞株である。安定な２９３Ｔ−ｅＧＦＰ細胞を、ＳＦＤＭＥＭ中にてデンドリマーで４時間処理し、その後にＧＦＰ発現を調べた。ほとんどのデンドリマー（Ｇ）−シクロデキストリン結合体（ＣＤ）組み合わせで処理した細胞は、ｍｏｃｋおよびリポフェクタミン（登録商標）：ｓｉＧＦＰコントロールと比較してＧＦＰ発現がより大きく減少した（図７Ｆ）。
実施例１１：脂質カプセル化デンドリマーでの抗原交差提示
材料と方法
マウス骨髄由来樹状細胞（ＢＭＤＣ）を、オボアルブミン（ＯＶＡ）のみ、デンドリマーのみ、またはＯＶＡおよびデンドリマー（ＬＥＤ）の両方をカプセル化したリポソームとインキュベートした。
結果
細胞のコントロールおよび空のリポソームは、検出不可能なレベルの２５．Ｄ１６抗体染色を示し、ＭＨＣクラスＩ−ＳＩＩＮＦＥＫＬ複合体に結合する。ＬＥＤを受容した細胞は、最高レベルの抗原交差提示を示した。＊ｐ＜０．０５（一元配置ＡＮＯＶＡボンフェローニ事後検定による）。（図８Ａを参照のこと）。
実施例１２：脂質カプセル化デンドリマーでのワクチン送達
材料と方法
抗原提示
１×１０５ ＢＭＤＣ／ウェル（９６ウェルプレート）＋２５ｕＬリポソーム粒子。粒子群：
ａ．−／−（粒子の外側に何もない、内側に何もない）
ｂ．−／ＯＶＡ（外側に何もない、ＯＶＡをカプセル化）
ｃ．−／Ｇ５＋ＯＶＡ（外側に何もない、内側にＯＶＡおよびＧ５デンドリマー）
ｄ．−／Ｇ５＋ＯＶＡ＋ＣｐＧ
ｅ．ＭＰＬＡ／−（外側にＭＰＬＡ、内側に何もない）
ｆ．ＭＰＬＡ／ＯＶＡ
ｇ．ＭＰＬＡ／ＯＶＡ＋Ｇ５
ｈ．ＭＰＬＡ／ＯＶＡ＋Ｇ５＋ＣｐＧ（外側にＭＰＬＡ；ＯＶＡ、Ｇ５デンドリマー、ＣｐＧをカプセル化） 。
ここで、ＯＶＡ＝オボアルブミン、ＭＰＬＡ＝モノホスホリルリピドＡ、Ｇ５＝第５世代デンドリマー、ＣｐＧ＝ＣｐＧオリゴヌクレオチド（ＴＬＲ９リガンド）。
処理をＢＭＤＣと２４時間インキュベートし、その後にＷＴ脾細胞と４日間同時インキュベートした。
炎症促進性サイトカイン産生の分析
ＢＭＤＣを、抗原をカプセル化したリポソームナノ粒子とインキュベートし、漸増量のＴＬＲリガンドＣｐＧで２４時間表面官能化し、その後、ＥＬＩＳＡによって上清を分析した。
結果
細胞を、２５．Ｄ１６−ＰＥ（フローサイトメトリーによって抗原交差提示について評価したところ、マウスＭＨＣクラスＩ−ＳＩＩＮＦＥＫＬ複合体に特異的な抗体）で染色した。結果は、−／ＯＶＡ粒子がある程度の交差提示を誘導し、この交差提示はデンドリマーを含むＯＶＡ粒子によって増大することを示した。ＭＰＬＡ、ＣｐＧ、およびデンドリマーを組み合わせた粒子は、最大量の交差提示を誘導する（図８Ｂを参照のこと）。
ＣｐＧで表面官能化したリポソームナノ粒子は、炎症促進性サイトカインＩＬ−６産生の用量依存性増大も誘導した（ブランク粒子、０．１μｇ ＣｐＧ／ｍｇ粒子、０．２５μｇ ＣｐＧ／ｍｇ粒子、および０．５μｇ ＣｐＧ／ｍｇ粒子と比較している図８Ｃを参照のこと）。
組成物ならびにその製造方法および使用方法の修正形態および変形形態は、前述の詳細な説明から当業者に明らかであり、添付の特許請求の範囲の範囲内にあることが意図される。全文献は、具体的に援用される。

Claims (1)

  1. 図面に記載の発明。
JP2021101463A 2012-04-12 2021-06-18 異なる医薬品の制御送達のためのビヒクル Withdrawn JP2021138771A (ja)

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