JP2020022507A - カンナビノイドの生合成 - Google Patents
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Abstract
【課題】互いに異なるカンナビノイド生成物を回収する方法及びシステムが開示される。【解決手段】反応混合物中で、カンナビゲロール酸(CBGA)をCBDA合成酵素と反応させ、前記反応混合物のpHを4.0と8.0のレンジ内に選択して、前記CBDA及び前記CBCAを生成し、生成された前記CBDA及び前記CBCAを回収することを含む方法が提案される。【選択図】図1
Description
本願は、2013年2月28日付けで出願された米国仮特許出願第61/770,766号(その内容が引用することにより本明細書の一部をなすものとする)の優先権の利益を主張するものである。
本発明はカンナビノイドの生合成に関する。より具体的には本発明は、薬学的及び栄養学的用途に好適なex vivoでのミリグラム〜グラム又はキログラム量のカンナビノイドの製造に植物中のカンナビノイドの合成に関与するプロテインキナ−ゼ合成酵素を使用する方法に関する。
カンナビノイドはアサ科の一年生植物であるカンナビス・サティバ(Cannabis sativa:アサ)に由来する化合物である。植物は約60種のカンナビノイドを含有する。最もよく知られている天然のカンナビノイドはテトラヒドロカンナビノール(THC)であり、緑内障、AIDS消耗症、神経障害性疼痛を含む広範な病状の治療、多発性硬化症と関連する痙縮、線維筋痛及び化学療法による嘔気の治療に用いられている。さらに、THCはアレルギ−、炎症、感染、癲癇、鬱病、片頭痛、双極性障害、不安障害、並びに薬物依存及び離脱症候群の治療において治療効果を示すことが報告されている。THCは制吐薬として特に効果的であり、オピオイド系鎮痛薬及び麻酔薬の使用、高活性抗レトロウイルス療法及び癌化学療法に付随する一般的な副作用である嘔吐を抑えるために投与される。
カンナビノイドは薬学的及び栄養学的用途でますます使用されるようになっている。かかる用途で使用されるカンナビノイド化合物は、ほぼ例外なく天然源、例えば植物組織から得られる。このため従来技術では、種々の溶媒抽出法を用いてカンナビス・サティバ(C. sativa)植物のトリコームからカンナビノイド化合物を得ることが開示されている。かかる方法と関連する幾つかの欠点としては、低い収率、植物の栽培及び維持と関連する高いコスト、並びに植物抽出物の抽出及び精製と関連するコストが挙げられる。植物の安全性も、医薬品グレードのカンナビノイド化合物の製造コストを増大させる重要な考慮事項である。
しかしながら、特に化学療法と関連する嘔気及び嘔吐、疼痛を治療するための、消耗症候群を患うAIDS患者の食欲を刺激する薬剤としての、並びに緑内障の治療のためのカンナビノイド化合物の重要性の増大から、本発明者らはカンナビノイド及びカンナビノイド類似体の大規模製造のためのex vivo酵素により触媒される半合成プロトコルを開発することとなった。本発明の方法により、カンナビノイド及びそれらの類似体を減少したコストで合成することも可能である。
上述の概要並びに以下の図面の簡単な説明及び詳細な説明は例示的かつ説明的なものであり、特許請求される本発明の更なる説明を提供することを意図する。他の目的、利点及び新規の特徴は以下の本発明の詳細な説明から当業者に容易に明らかである。
本発明の方法の態様の1つでは、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体を、
(a)式Iによる化合物:
を選択することと、
(b)前記式Iの化合物を前記カンナビノイド又はカンナビノイド類似体へと変換する触媒としてカンナビノイド合成酵素を選択することと、
(c)前記式Iの化合物と前記カンナビノイド合成酵素とを接触させることと、
(d)工程(b)の生成物を単離することと、
によって作製する方法が提供される。本合成戦略に従うと、単離された生成物を脱炭酸することができる。
(a)式Iによる化合物:
(b)前記式Iの化合物を前記カンナビノイド又はカンナビノイド類似体へと変換する触媒としてカンナビノイド合成酵素を選択することと、
(c)前記式Iの化合物と前記カンナビノイド合成酵素とを接触させることと、
(d)工程(b)の生成物を単離することと、
によって作製する方法が提供される。本合成戦略に従うと、単離された生成物を脱炭酸することができる。
式Iにおいて、Rは−OH、ハロゲン、−SH又は−NRaRb基から選択される。置換基R1及びR2は各々独立して−H、−C(O)Ra、−ORa、任意に置換されたC1〜C10直鎖又は分岐アルキレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルケニレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルキニレン、任意に置換されたC3〜C10アリール、任意に置換されたC3〜C10シクロアルキル、(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキレン、(C3〜C10)アリール−(C2〜C10)アルケニレン及び(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキニレンからなる群から選択される。
幾つかの式Iの化合物については、R1及びR2はそれらが結合する炭素原子とともにC5〜C10環式環を形成する。一態様では、C5〜C10環式環は酸素、硫黄又は窒素から選択される1つ又は複数のヘテロ原子を含む。式I中のR3はH、−C(O)Ra及びC1〜C10直鎖又は分岐アルキルからなる群から選択され、Ra及びRbは各々独立して−H、−OH、−SH、−NH2、(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキル、又はC3〜C10シクロアルキルである。しかしながら、テトラヒドロカンナビノール又はカンナビジオールの合成は本発明の方法では可能でない。
この戦略に従って、カンナビノイド合成酵素がカンナビジオール酸合成酵素、テトラヒドロカンナビノール酸合成酵素又はカンナビクロメン酸合成酵素からなる群から選択される。
式I中のR2は直鎖アルキレン、
等のC2〜C10アルケニレン、又は、
から選択されるC2〜C10直鎖若しくは分岐アルキニレンであり得る。幾つかの式Iの化合物については、R2は、
(式中、Xは−OH、−SH又は−NRaRbから選択される)である。
本発明の方法の態様の1つでは、固体支持体へのカンナビノイド合成酵素の固定化を記載している。上記の方法に従って作製されるカンナビノイド及びカンナビノイド類似体は、単一エナンチオマーとして存在する。これらの化合物のエナンチオマー純度は少なくとも95%〜少なくとも99%である。
別の実施の形態によれば、式IIによるカンナビノイド又はカンナビノイド類似体を、
(a)式IIIによる化合物と式IVによる化合物とを:
該式IIIの化合物及び式IVの化合物の反応を触媒する酵素の存在下で反応させ、式IIの化合物:
を形成することと、
(b)前記式IIの化合物とカンナビノイド合成酵素とを接触させることと、
(c)工程(b)の生成物を単離することと、
(d)任意に(c)の生成物を脱炭酸して、前記カンナビノイド又はカンナビノイド類似体を得ることと、
によって作製する方法が提供される。
(a)式IIIによる化合物と式IVによる化合物とを:
(b)前記式IIの化合物とカンナビノイド合成酵素とを接触させることと、
(c)工程(b)の生成物を単離することと、
(d)任意に(c)の生成物を脱炭酸して、前記カンナビノイド又はカンナビノイド類似体を得ることと、
によって作製する方法が提供される。
置換基R、R1、R2及びR3は上記で規定される通りであり、R5は直鎖又は分岐(C1〜C10)アルキレン、直鎖又は分岐(C2〜C10)アルケニレン、直鎖又は分岐(C2〜C10)アルキニレン、−C(O)−(C1〜C10)アルキレン、−C(O)−(C2〜C10)アルケニレン及び−C(O)−(C2〜C10)アルキニレンからなる群から選択される。さらに式II、式III及び式IVの化合物については、任意のアルキレン、アルケニレン、アルキニレン、アリール、アリールアルキレン又はシクロアルキル基が−OH、ハロゲン、−NRbRc、−C(O)Ra、−C(O)NRbRc、(C1〜C10)アルキル、−CN、(C1〜C4)アルコキシ、(C1〜C4)ハロアルキル及び(C1〜C4)ヒドロキシアルキルからなる群から選択される1つ又は複数の基で更に置換され、Ra、Rb及びRcは各々独立して−H、−OH、−SH、−NH2、(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキル又はC3〜C10シクロアルキルとすることができる。
テトラヒドロカンナビノール、カンナビクロメン、若しくはテトラヒドロカンナビノール及びカンナビクロメンの両方、又はそれらの類似体を、
(a)式Vによる化合物:
を選択することと、
(b)前記式Vの化合物とテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素とを接触させることと、
(c)式Vの化合物及びテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素を含む反応混合物の少なくとも1つの特性を変更して、テトラヒドロカンナビノール、カンナビクロメン、若しくはテトラヒドロカンナビノール及びカンナビクロメンの両方、又はそれらの類似体を生成物として得ることと、
によって作製する方法も提供される。
(a)式Vによる化合物:
(b)前記式Vの化合物とテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素とを接触させることと、
(c)式Vの化合物及びテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素を含む反応混合物の少なくとも1つの特性を変更して、テトラヒドロカンナビノール、カンナビクロメン、若しくはテトラヒドロカンナビノール及びカンナビクロメンの両方、又はそれらの類似体を生成物として得ることと、
によって作製する方法も提供される。
式Vの化合物については、Rは−OH、ハロゲン、−SH又は−NRaRb基から選択され、R1及びR2は各々独立して−H、−C(O)Ra、−ORa、任意に置換されたC1〜C10直鎖又は分岐アルキレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルケニレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルキニレン、任意に置換されたC3〜C10アリール、任意に置換されたC3〜C10シクロアルキル、(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキレン、(C3〜C10)アリール−(C2〜C10)アルケニレン及び(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキニレンからなる群から選択され、R3はH、−C(O)Ra又はC1〜C10直鎖若しくは分岐アルキルから選択される。幾つかの化合物については、R1及びR2はそれらが結合する炭素原子とともにC5〜C10環式環を形成し、置換基Ra及びRbは各々独立して−H、−OH、−SH、−NH2、(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキル又はC3〜C10シクロアルキルである。
一態様では、反応混合物の少なくとも1つの特性の変更は反応混合物のpHを変化させること、例えば上記の方法によって作製されるテトラヒドロカンナビノールとカンナビクロームとの比率を制御するためにpHを約4.0〜約8.0単位の範囲に変化させることを含む。
本技術はカンナビノイド又はカンナビノイド類似体を作製するシステムも提供する。かかるシステムは、培地及び複数の細胞を収容する発酵装置であって、細胞がカンナビノイド合成酵素を産生及び分泌するように構成される、発酵装置と、反応物を含有するバイオリアクターであって、反応物がカンナビノイド合成酵素と相互作用して第1のカンナビノイド及び第2のカンナビノイドを形成するように構成される、バイオリアクターと、バイオリアクターの条件を制御するように構成される制御機構とを備える。後者の制御機構は、第2のカンナビノイドの形成量に対する第1のカンナビノイドの形成量に影響を与えるために使用される。
システムは、培地から複数の細胞を少なくとも部分的に分離し、分離後にカンナビノイド合成酵素を含有する培地をバイオリアクターに導入するように構成されるフィルターを更に備えていてもよい。一実施の形態では、複数の細胞によって発現される酵素には、酵素をバイオリアクター内のニッケル支持体に結合させるタグが含まれる。任意の式Iの化合物又はカンナビゲロール酸を、酵素であるテトラヒドロカンナビノール酸(tetrahydrocannabinolic acid)合成酵素の基質とすることができる。バイオリアクター内の条件に応じて、テトラヒドロカンナビノール酸又はカンナビクロメン酸が第1のカンナビノイドとして作製され、第2のカンナビノイドがテトラヒドロカンナビノール酸及びカンナビクロメン酸のもう一方である。
定義
本明細書で使用される場合、他に指定のない限り、数量を特定していない単数形(the singular forms "a," "an," and "the")は複数の指示対象を含む。このため例えば、「細胞(a cell)」への言及は複数の細胞を含み、「分子(a molecule)」への言及は1つ又は複数の分子への言及である。
本明細書で使用される場合、他に指定のない限り、数量を特定していない単数形(the singular forms "a," "an," and "the")は複数の指示対象を含む。このため例えば、「細胞(a cell)」への言及は複数の細胞を含み、「分子(a molecule)」への言及は1つ又は複数の分子への言及である。
本明細書で使用される場合、「約」は当業者に理解され、それが使用される文脈に応じて或る程度異なる。当業者に明らかでない用語が使用される場合、それが使用される文脈から判断すると、「約」は特定の用語の最大で±10%を意味する。
「アルキル」という用語は、指定数の炭素原子を有する直鎖又は分岐鎖の飽和炭化水素を指す。例えば、(C1〜C10)アルキルは、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、sec−ブチル、tert−ブチル、ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、ヘキシル、イソヘキシル、及びネオヘキシル等を含むことを意味するが、これらに限定されない。アルキル基は非置換であっても、又は本明細書で下記の1つ若しくは複数の置換基で任意に置換されていてもよい。
「アルケニル」という用語は、指定数の炭素原子及び少なくとも1つの二重結合を有する直鎖又は分岐鎖の不飽和炭化水素を指す。(C2〜C10)アルケニル基の例としては、エチレン、プロピレン、1−ブチレン、2−ブチレン、イソブチレン、sec−ブチレン、1−ペンテン、2−ペンテン、イソペンテン、1−ヘキセン、2−ヘキセン、3−ヘキセン、イソヘキセン、1−ヘプテン、2−ヘプテン、3−ヘプテン、イソヘプテン、1−オクテン、2−オクテン、3−オクテン、4−オクテン、及びイソオクテンが挙げられるが、これらに限定されない。アルケニル基は非置換であっても、又は本明細書で下記の1つ若しくは複数の置換基で任意に置換されていてもよい。
「アルキニル」という用語は、指定数の炭素原子及び少なくとも1つの三重結合を有する直鎖又は分岐鎖の不飽和炭化水素を指す。(C2〜C10)アルキニル基の例としては、アセチレン、プロピン、1−ブチン、2−ブチン、1−ペンチン、2−ペンチン、1−ヘキシン、2−ヘキシン、3−ヘキシン、1−ヘプチン、2−ヘプチン、3−ヘプチン、1−オクチン、2−オクチン、3−オクチン及び4−オクチンが挙げられるが、これらに限定されない。アルキニル基は非置換であっても、又は本明細書で下記の1つ若しくは複数の置換基で任意に置換されていてもよい。
「アルコキシ」という用語は指定数の炭素原子を有する−O−アルキル基を指す。例えば、(C1〜C6)アルコキシ基としては、−O−メチル、−O−エチル、−O−プロピル、−O−イソプロピル、−O−ブチル、−O−sec−ブチル、−O−tert−ブチル、−O−ペンチル、−O−イソペンチル、−O−ネオペンチル、−O−ヘキシル、−O−イソヘキシル、及び−O−ネオヘキシルが挙げられる。
「アリール」という用語は3員〜14員の単環式、二環式、三環式又は多環式の芳香族炭化水素環系を指す。アリール基の例としては、ナフチル、ピレニル及びアントラシルが挙げられる。アリール基は非置換であっても、又は本明細書で下記の1つ若しくは複数の置換基で任意に置換されていてもよい。
「アルキレン」、「アルケニレン」及び「アリーレン」という用語は、単独で又は別の置換基の一部として、−CH2CH2CH2CH2−により例示されるように、それぞれアルキル、シクロアルキル、アルケニル、アリール、又はヘテロアリール基から誘導される二価ラジカルを意味する。アルキレン、アルケニル又はアリール連結基については、連結基の配向を意味するものではない。
「ハロゲン」及び「ハロ」という用語は−F、−Cl、−Br又は−Iを指す。
「ヘテロ原子」という用語は酸素(O)、窒素(N)、及び硫黄(S)を含むことを意味する。
「ヒドロキシル」又は「ヒドロキシ」は−OH基を指す。
「ヒドロキシアルキル」という用語は、指定数の炭素原子を有し、アルキル基の水素原子の1つ又は複数が−OH基で置き換えられたアルキル基を指す。ヒドロキシアルキル基の例としては、−CH2OH、−CH2CH2OH、−CH2CH2CH2OH、−CH2CH2CH2CH2OH、−CH2CH2CH2CH2CH2OH、−CH2CH2CH2CH2CH2CH2OH、及びそれらの分岐型が挙げられるが、これらに限定されない。
「シクロアルキル」という用語は、単環式、二環式、三環式又は多環式の3員〜14員の飽和した、不飽和の又は芳香族の環系を指す。複素環は任意のヘテロ原子又は炭素原子を介して付着していてもよい。シクロアルキルとしては、上記で規定されるアリール及びヘテロアリール(heteroaryls)が挙げられる。シクロアルキル(cycloalkyl)の代表例としては、シクロエチル、シクロプロピル、シクロイソプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロプロペン、シクロブテン、シクロペンテン、シクロヘキセン、フェニル、ナフチル、アントラシル、ベンゾフラニル、及びベンゾチオフェニルが挙げられるが、これらに限定されない。シクロアルキル基は非置換であっても、又は本明細書で下記の1つ若しくは複数の置換基で任意に置換されていてもよい。
「ニトリル」又は「シアノ」という用語はほぼ同じ意味で使用することができ、ヘテロアリール環、アリール環及びヘテロシクロアルキル環の炭素原子に結合した−CN基を指す。
「アミン」又は「アミノ」という用語は−NRcRd基(ここで、Rc及びRdは各々独立して水素、(C1〜C8)アルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキル、(C1〜C8)ハロアルキル、及び(C1〜C6)ヒドロキシアルキル基を表す)を指す。
「アルキルアリール」という用語は、C1〜C8アルキル鎖の少なくとも1つの水素原子が、本明細書で下記の1つ又は複数の置換基で任意に置換され得るアリール原子で置き換えられたC1〜C8アルキル基を指す。アルキルアリール基の例としては、メチルフェニル基、エチルナフチル基、プロピルフェニル基、及びブチルフェニル基が挙げられるが、これらに限定されない。
「アリールアルキレン」は、C1〜C10アルキレン基の1つ又は複数の水素原子が(C3〜C14)アリール基で置き換えられた二価アルキレンを指す。(C3〜C14)アリール−(C1〜C10)アルキレン基の例としては、1−フェニルブチレン、フェニル−2−ブチレン、1−フェニル−2−メチルプロピレン、フェニルメチレン、フェニルプロピレン、及びナフチルエチレンが挙げられるが、これらに限定されない。
「アリールアルケニレン」は、C2〜C10アルケニレン基の1つ又は複数の水素原子が(C3〜C14)アリール基で置き換えられた二価アルケニレンを指す。
「アリールアルキニレン」という用語は、C2〜C10アルキニレン基の1つ又は複数の水素原子が(C3〜C14)アリール基で置き換えられた二価アルキニレンを指す。
式中のEは結合又はOであり、Rfは個別にH、アルキル、アルケニル、アリール又は薬学的に許容可能な塩である。EがOであり、Rfが上記で規定される通りである場合、この部分は本明細書でカルボキシル基と称され、特にRfが水素である場合、式は「カルボン酸」を表す。概して、明示的に示される酸素が硫黄で置き換えられる場合、式は「チオカルボニル」基を表す。
他に指定のない限り、「立体異性体」は、化合物の他の立体異性体を実質的に含まないその化合物の1つの立体異性体を意味する。このため、1つの不斉中心を有する立体異性体的に純粋な化合物は、化合物の反対のエナンチオマーを実質的に含まない。2つの不斉中心を有する立体異性体的に純粋な化合物は、化合物の他のジアステレオマーを実質的に含まない。典型的な立体異性体的に純粋な化合物は、約80重量%超の化合物の1つの立体異性体及び約20重量%未満の化合物の他の立体異性体、例えば約90重量%超の化合物の1つの立体異性体及び約10重量%未満の化合物の他の立体異性体、又は約95重量%超の化合物の1つの立体異性体及び約5重量%未満の化合物の他の立体異性体、又は約97重量%超の化合物の1つの立体異性体及び約3重量%未満の化合物の他の立体異性体を含む。
示される構造とその構造に与えられる名称とに食い違いがある場合、示される構造を優先する。さらに、構造又は構造の一部の立体化学が例えば太字又は破線で示されない場合、構造又は構造の一部はその全立体異性体を包含すると解釈される。
本発明は、無細胞環境でのカンナビノイド又はカンナビノイド類似体の酵素触媒合成の方法に焦点を合わせている。カンナビノイド及びカンナビノイド類似体のex vivo製造のための装置も記載される。「類似体」という用語は、天然のカンナビノイドに構造的に関連するが、化学的及び生物学的特性が天然のカンナビノイドとは異なり得る化合物を指す。本文脈において、類似体(単数又は複数)は天然のカンナビノイドの1つ又は複数の不要な副作用を示さない可能性がある化合物を指す。類似体は、天然のカンナビノイドの化学的、生物学的又は半合成変換により天然のカンナビノイドから誘導された化合物も指す。
本発明に含まれるカンナビノイド化合物の例は、限定されるものではないが、カンナビノール、カンナビジオール、Δ9−テトラヒドロカンナビノール、Δ8−テトラヒドロカンナビノール、11−ヒドロキシ−テトラヒドロカンナビノール、11−ヒドロキシ−Δ9−テトラヒドロカンナビノール、レボナントラド−ル、Δ11−テトラヒドロカンナビノール、テトラヒドロカンナビバリン、ドロナビノール、アマンダミド(amandamide)及びナビロン、並びに基本的なカンナビノイド構造を有し、合成的に修飾されてカンナビノイド類似体をもたらす天然又は合成分子である。
本技術は、カンナビノイドの生合成に関与する酵素の大規模クローニング及び発現、並びにカンナビノイド及びカンナビノイド類似体の製造への真核生物の発現系の使用にも関する。カンナビノイド合成酵素のクローニング及び発現に適した真核細胞の例としては、限定されるものではないが、大腸菌(E coli)、酵母及びバキュロウイルス宿主が挙げられる。本技術の実施形態では、pinkピキア酵母発現系を用いたテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素(THCA合成酵素)、カンナビクロメン酸合成酵素(CBCA合成酵素)及びカンナビジオール酸合成酵素(CBDA合成酵素)を含む幾つかのカンナビノイド合成酵素の大規模製造の方法が開示される。したがって、これらの酵素の大規模製造は、THCA合成酵素、CBCA合成酵素又はCBDA合成酵素の遺伝子を含むDNA構築物で酵母を形質転換し、形質転換酵母細胞を機能的に活性な酵素の発現を促進するのに好適な条件下で培養することによって行うことができる。
THCA合成酵素及びCBDA合成酵素の遺伝子の配列を公的に利用可能なデータベースから得て、それらのタンパク質コード領域を変更してピキア・パストリス(Pichia Pastoris)酵母細胞におけるタンパク質発現を最適化した。InvitrogenのGeneArt(登録商標)プログラムを用いてコドン最適化を行った。
さらに両方の遺伝子を、酵母α分泌配列及び発現タンパク質にHisタグを組み入れるためのコドンを含むように修飾した。酵母α分泌配列は遺伝子の5’末端に挿入され、発現タンパク質の細胞外分泌に必要とされる。Hisタグ用のコドンは遺伝子の3’末端に存在し、親和性クロマトグラフィーによる発現タンパク質の精製を容易にするために導入される。
これらのキメラ配列、α−CBDA合成酵素及びα−THCA合成酵素をpPink−HCベクター(Invitrogen(登録商標))に挿入し、Top 10 F−形質転換大腸菌細胞を得るために使用し、この細胞を今後の使用のために寒天スタブとして保管した。酵母細胞の形質転換の前に対象のカンナビノイド合成酵素遺伝子(GOI)を含有するベクターを、形質転換大腸菌細胞を含有する寒天スタブから単離し、PmeI又はSpeI制限酵素を用いて線状化した。線状化プラスミドを、PichiaPink(商標)酵母発現系(Invitrogen(登録商標))を用いてピキア・パストリスpepB欠失突然変異細胞に電気穿孔した。制限酵素PmeIを用いた線状化では挿入断片がピキアゲノムのAOX1プロモーター領域に指向され、制限酵素SpeIでは挿入断片がTRP遺伝子に指向される。
形質転換酵母細胞をアデニン欠乏選択的プレートで増殖させ、色によるスクリーンを使用して陽性形質転換体を特定した。このスクリーニング法に従うと、赤色/ピンク色のコロニーは対象の遺伝子を保有しない形質転換体、及びピキア・パストリスのゲノムに組み込まれた限定数の対象の遺伝子のコピーを保有する形質転換体を示す。一方で白色コロニーは、複数の対象の遺伝子のコピーを有する形質転換体を示す。通例、多量の組み換えタンパク質、例えば培養物1L当たり約1.0g〜約2.0gのタンパク質を得るためには、6コピー〜10コピーの対象の遺伝子を有する細胞が所望される。メタノールを形質転換酵母細胞に添加することによるTHCA合成酵素又はCBDA合成酵素の誘導時の基質カンナビゲロール酸(CBGA)からTHCA又はCBDA生成物への変換を定量化する酵素アッセイを用いて、20%超の基質から生成物への変換をもたらす酵母細胞の白色コロニーを特定した。
したがって、THCA合成酵素遺伝子又はCBDA合成酵素遺伝子を保有する酵母細胞の個々の白色コロニーを、BMGY培地を用いてフラスコ内で別個に培養した後、BMMY培地中での増殖により誘導し、下記に更に記載されるようにTHCA合成酵素又はCBDA合成酵素の発現を誘導した。簡潔に述べると、各々の培養物中の酵素を含有する培地を細胞から分離し、既知の量の基質CBGAを各々の培養フラスコの培地に添加した。インキュベーションの後、各々の培養フラスコを分析して、CBGAから生成物への変換率を定量化した。20%超の変換を示す形質転換体の培養物を、本発明の方法に従うカンナビノイド又はカンナビノイド類似体の商業的合成に用いる。
claim 16-27対応
上記のPichiaPink(商標)酵母発現系を用いて得られるカンナビノイド合成酵素、THCA合成酵素及びCBDA合成酵素を、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体の製造に使用することができる。一実施形態では、式Iの化合物及びカンナビノイド合成酵素を、式Iの化合物をカンナビノイド又はカンナビノイド類似体へと変換する触媒として選択することによってカンナビノイド又はカンナビノイド類似体を作製する方法が提供される。
上記のPichiaPink(商標)酵母発現系を用いて得られるカンナビノイド合成酵素、THCA合成酵素及びCBDA合成酵素を、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体の製造に使用することができる。一実施形態では、式Iの化合物及びカンナビノイド合成酵素を、式Iの化合物をカンナビノイド又はカンナビノイド類似体へと変換する触媒として選択することによってカンナビノイド又はカンナビノイド類似体を作製する方法が提供される。
式Iにおいて、Rはヒドロキシル(−OH)、ハロゲン、チオール(−SH)又は−NRaRb基から選択することができる。置換基R1及びR2は各々独立して−H、−C(O)Ra、−ORa、任意に置換されたC1〜C10直鎖又は分岐アルキレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルケニレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルキニレン、任意に置換されたC3〜C10アリール、任意に置換されたC3〜C10シクロアルキル、(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキレン、(C3〜C10)アリール−(C2〜C10)アルケニレン及び(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキニレンからなる群から選択される。代替的には、R1及びR2はそれらが結合する炭素原子とともにC5〜C10環式環を形成する。式Iによる化合物については、R3はH、−C(O)Ra及びC1〜C10直鎖又は分岐アルキルからなる群から選択され、Ra及びRbは各々独立して−H、−OH、(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキル、−SH、−NH2又はC3〜C10シクロアルキルである。
式Iの化合物とカンナビノイド合成酵素とを接触させることによって得られるカンナビノイド若しくはカンナビノイド類似体は、治療薬として単離、精製及び使用することができ、又はカンナビノイド若しくはカンナビノイド(cannabinoid)類似体を任意の脱炭酸工程に供して、例えばカンナビクロメン酸(CBCA)をカンナビクロメン(CBC)に変換した後、カンナビクロメン(CBC)を医薬品又は栄養剤として使用することができる。
幾つかの実施形態では、カンナビノイド合成酵素はカンナビジオール酸合成酵素である。本技術の他の態様については、カンナビノイド合成酵素はテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素又はカンナビクロメン酸合成酵素である。幾つかの式Iの化合物については、R1及びR2はそれらが結合する環炭素原子とともにC5〜C10環式環を形成する。このような式Iの化合物については、環の1つ又は複数の炭素原子が酸素、硫黄又は窒素から選択されるヘテロ原子で置換されていてもよい。
式Iによる化合物については、R2は直鎖アルキレン又は分岐アルキレンであり得る。直鎖アルキレンの例としては、CH3、C2H5、C3H7、C4H9、C5H11、C6H13、C7H15及びC8H17が挙げられるが、これらに限定されない。分岐アルキレンの例は、イソプロピル基、sec−ブチル基、イソブチル基、ネオペンチル基、2−メチルヘキシル基、又は2,3−ジメチルヘキシル基から選択される基である。幾つかの実施形態では、R2は任意に置換された直鎖又は分岐アルキレンとすることができ、ここで1つ又は複数の水素原子が、限定されるものではないが塩素、フッ素、臭素、ニトロ、アミノ、ヒドロキシル、フェニル、又はベンジル基から選択される基で置き換えられている。
幾つかの式Iの化合物については、R2はC2〜C10アルケニレンであり、
からなる群から選択され、R4は上記の直鎖又は分岐アルキレンである。R2がC2〜C10直鎖又は分岐アルキニレンである場合、R2は、
であり得る。代替的には、式I中のR2は、
であり、置換基Xは−OH、−SH又は−NRaRbから選択される基であり、基Ra及びRbは上記で規定される通りである。
天然のカンナビノイドの多くが植物においてそれらのカルボン酸誘導体として産生される。しかしながら、それらの精神刺激活性はカンナビノイド酸を含有する植物組織に熱を加えること、又は植物材料を使用前に乾燥させることで起こる脱炭酸により増強される。本発明の方法を用いて合成されるカンナビノイド及びカンナビノイド類似体は、R1置換基としてカルボン酸(−COOH)基を有していてもよく、かかる化合物を医薬品又は栄養剤として使用する前に任意の脱炭酸工程に供してもよい。かかるカンナビノイド又はカンナビノイド類似体の例は、Rが−OHであり、R1が−COOHであり、R2がC5H11であり、R3が−Hである式Iの種とカンナビノイド合成酵素とを接触させることによって得られる化合物である。
カンナビノイド又はカンナビノイド類似体の合成、単離及び精製は、カンナビノイド合成酵素を固体支持体に固定化すること、又は合成酵素をリポソームに封入することで改善することができる。合成の一態様では、酵素を固体支持体に固定化する。かかる固定化は固定化酵素の再循環及び再利用を可能にし、医薬品グレードのカンナビノイド又はカンナビノイド類似体の製造と関連するコストを顕著に低減するため有利である。酵素の固定化は酵素触媒の容易な使用及び回収、所望の生成物の容易な精製、最終生成物のエナンチオマー過剰率(ee)の維持、並びに生成物の収率の全体的な改善も可能にする。通例、特許請求される方法によるカンナビノイド又はカンナビノイド類似体のエナンチオマー純度は約90%ee〜約100%eeであり、例えば本発明の方法を用いて作製されるカンナビノイド又はカンナビノイド類似体は、約91%ee、約92%ee、約93%ee、約94%ee、約95%ee、約96%ee、約97%ee、約98%ee及び約99%eeのエナンチオマー純度を有し得る。
通例、固定化される酵素は固体支持体に吸収させる、支持体に吸着させる、支持体に共有結合する、又はイオン相互作用により固体支持体に固定化することができる。一実施形態では、カンナビノイド合成酵素を固体支持体に共有結合させる。酵素を固体支持体に連結するのに好適な戦略は生化学分野で既知であり、適切に官能化された支持体とアミノ酸基の側鎖との共有結合、又は支持体を酵素から分離するための適切に官能化されたリンカー若しくはスペーサーを用いた共有結合によるものが含まれる。「リンカー」という用語は、支持体を酵素から分離する任意の基を指す。したがって、リンカーは共有結合により支持体の表面上の基の一端に繋がれ、もう一端の酵素に付着する基である。例示的なリンカーとしては、エチレングリコールの(C1〜C10)アルキレンリンカーポリマー、例えば−(OCH2−CH2)n−O−基(ここで、nは0〜10の整数である)、−(C1〜C10)アルキレン−NH−、−(C1〜C10)アルキレンシロキシ、又は−(C1〜C10)アルキレン−C(O)−が挙げられる。
酵素の固定化に好適な支持体としては、限定されるものではないが、アンバーライト(Amberlite)樹脂、デュオライト樹脂、Eupergit(登録商標) C、DEAE−Sephadex等のアクリル樹脂が挙げられ、ポリビニルアルコールを用いて作製されるゲルを本技術のカンナビノイド合成酵素を固定化する支持体として使用することができる。
カンナビノイドは種々の生理学的特性を示し、痛みを軽減し、食欲を刺激することが知られており、アレルギ−、炎症、感染、癲癇、鬱病、片頭痛、双極性障害、不安障害及び緑内障等の様々な疾患状態を治療する候補治療薬として試験されている。カンナビノイドが示す生理的効果は、主にカンナビノイド受容体、例えばCB1、CB2及びCB3受容体を刺激又は不活性化するその能力によるものである。受容体活性の調節は結合相互作用及びカンナビノイド受容体活性部位内のリガンドの配向に応じて異なり、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体に付着した置換基の性質及び配向が、かかる化合物が示す薬学的特性に影響を与えることとなる。
一実施形態では、中央コアに付着した構造的に異なる多様な置換基を有するカンナビノイドを製造する方法が提供される。かかる化合物は、種々の薬学的に有益な特性を示すことが期待される。構造多様性は適切に置換された式IIIの化合物と式IVの化合物とを、GPPオリベトレートゲラニルトランスフェラーゼ(ポリケチド合成酵素)等の酵素の存在下で接触させ、式IIの化合物を得ることによって導入される。スキーム1に、本実施形態に従う式IIの化合物を合成するプロトコルを構造的に示す。
式III及び式IV中のR、R1、R2、R3及びR5の置換基の性質及びタイプに応じて、本発明の方法は、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体の製造のための前駆体又はシントンとしての中央フェニルコアの周囲に異なる置換基を有する式IIの化合物の合成を可能にする。したがって本方法によると、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体は、式IIの化合物とカンナビノイド合成酵素、例えばTHCA合成酵素、CBCA合成酵素又はCBDA合成酵素とを接触させた後、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体を得るために得られる生成物を単離及び脱炭酸することによって得ることができる。
式IIIにおいて、Rはヒドロキシル(−OH)、ハロゲン、チオール(−SH)又は−NRaRb基から選択することができる。置換基R1及びR2は各々独立して−H、−C(O)Ra、−ORa、任意に置換された直鎖又は分岐(C1〜C10)アルキレン、任意に置換された直鎖又は分岐(C2〜C10)アルケニレン、任意に置換された直鎖又は分岐(C2〜C10)アルキニレン、任意に置換されたC3〜C10アリール、任意に置換されたC3〜C10シクロアルキル、(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキレン、(C3〜C10)アリール−(C2〜C10)アルケニレン及び(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキニレンからなる群から選択される。
幾つかの実施形態では、R1及びR2はそれらが結合する炭素原子とともにC5〜C10環式環を形成し、R3はH、−C(O)Ra及びC1〜C10直鎖又は分岐アルキルからなる群から選択される。
式IV中のR5は直鎖又は分岐(C1〜C10)アルキレン、直鎖又は分岐(C2〜C10)アルケニレン、直鎖又は分岐(C2〜C10)アルキニレン、−C(O)−(C1〜C10)アルキレン、−C(O)−(C2〜C10)アルケニレン及び−C(O)−(C2〜C10)アルキニレンとすることができる。式II、式III及び式IVの化合物については、任意のアルキレン、アルケニレン、アルキニレン、アリール、アリールアルキレン又はシクロアルキル基が−OH、ハロゲン、−NRbRc、−C(O)Ra、−C(O)NRbRc、(C1〜C10)アルキル、−CN、(C1〜C4)アルコキシ、(C1〜C4)ハロアルキル及び(C1〜C4)ヒドロキシアルキルからなる群から選択される1つ又は複数の基で更に置換されていてもよく、Ra、Rb及びRcは各々独立して−H、−OH、又は(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキル、−SH、−NH2、又はC3〜C10シクロアルキルから選択される。
一実施形態によると、式IV中のR5は、
から選択される(C2〜C10)アルケニレンであってもよく、R4はCH3、C2H5、C3H7、C4H9、C5H11、C6H13、C7H15及びC8H17からなる群から選択される直鎖アルキレンである。幾つかの式IVの化合物については、R5は、
であり、R6基は(C1〜C10)アルキレン、(C2〜C10)アルケニレン、−OH、−SH、NO2、F、Cl、Br、−NH2又は−NHRaから選択され、Raは上記で規定される通りである。
酵素はそれらが触媒する化学反応のタイプ、並びにこれらの反応に関与する基質の性質及びタイプに対して非常に特異的である。酵素は高レベルの立体特異性、位置特異性及び化学選択性も示す。したがって本発明者らにより認められた時点で、酵素であるTHCA合成酵素が環化反応を触媒する条件に応じて同じ基質カンナビゲロール酸(CBGA)を用いて2つの異なる生成物、テトラヒドロカンナビノール酸(THCA)及びカンナビクロメン酸(CBCA)を生成することができることは予期されていなかった。
したがって、THCAとCBCA生成物との分配比率に対する温度、pH、溶媒、イオン強度及びインキュベーション時間の影響を研究した。一実施形態では、生成物の分配比率に対する溶媒の影響を評価した。カンナビノイドは親油性(lipophilic)であり、水性溶媒に殆ど可溶化しない。水性溶媒におけるカンナビノイドの低い溶解性のため、ex vivo酵素により触媒されるカンナビノイド及びカンナビノイド類似体の合成法の開発が妨げられていた。本発明者らは驚くべきことに、THCA合成酵素が緩衝液及び非水性溶媒、例えばジメチルスルホキシド(DMSO)、ジメチルホルムアミド(DMF)、イソプロピルアルコール及びシクロデキストリンを含有する溶媒混合物において、混合物中の非水性溶媒の濃度が40%(v/v)未満に維持される場合にその触媒活性を保持することを見出した。
例えば、非水性溶媒の濃度が約20%である場合に酵素触媒反応は最も効果的であった。触媒反応速度は非水性溶媒の濃度が増大するにつれ僅かに減少する。このため20%DMSOは、緩衝液単独での触媒反応よりおよそ2.5倍速いという最も高い触媒反応速度をもたらした。表1に触媒活性の速度に対する非水性溶媒の濃度の影響を示す。
表1に更に示されるように、非水性溶媒の濃度は生成物として生成するTHCAとCBCAとの比率を変化させ得る。このため、10%DMSOを溶媒として使用する場合、10:1というTHCA:CBCA分配比率が観察されるため、緩衝液におけるDMSOの濃度が20%未満である場合により高レベルのTHCAが得られる。
100mMリン酸ナトリウム緩衝液へのドデシル硫酸ナトリウム(SDS)等の洗浄剤の添加は、基質CBGAから生成物への変換率に影響を与えなかったことが観察された。対照的に、シクロデキストリンを含有する100mMクエン酸緩衝液へのSDSの添加は、反応を触媒するTHCA合成酵素の能力を消失させた。これらの反応条件下では僅か8%の基質しか生成物へと変換されず、THCAの形成がこれらの反応条件下での生成物として有利であった。
カンナビゲロール酸(CBGA)は、天然のカンナビノイドの生合成における種々のカンナビノイド合成酵素の共通の基質として働く。例えば以前の研究では、酵素であるTHCA合成酵素、CBDA合成酵素及びCBCA合成酵素が、テトラヒドロカンナビノール酸、カンナビジオール酸及びカンナビクロメン酸のそれぞれの生合成において各々のCBGAを基質として使用することが示唆されている。
このため、THCA合成酵素活性の最適pHの評価を目的とする研究において、本発明者らは驚くべきことに、触媒反応が行われるpHに応じて、酵素であるTHCA合成酵素が基質CBGAからTHCA又はCBCAへの変換を触媒することに気付いた。この観察結果は、単一の酵素であるTHCA合成酵素が植物において2つの異なるカンナビノイド生成物の形成に関与し得るために予期せぬものであった。
表3に生成物の比率、すなわちTHCA合成酵素を基質であるCBGAと接触させた場合に生成するTHCAとCBCA化合物との比率に対するpHの影響を特定することを目的とするものであったpH研究の結果を示す。本研究における反応混合物のpHは4.0〜8.0のpH範囲であった。THCA合成酵素が8.0を超えるpHで触媒的に不活性であるため、より高いpH値は試験しなかった。
表3に示されるように、THCAは6.0未満のpH値で優先的に合成される。実際に、触媒反応がpH4.0で行われる場合にTHCAが主要生成物である。反応混合物のpHを増大させることで生成物の分配比率が変化し、およそ30%のCBCAがpH5.0で生成物として生成し、およそ15%のCBCAがpH値6.0で生成物として生成した。反応混合物のpHの更なる増大、例えばpH7.0までの反応混合物のpHの増大により、THCA合成酵素により触媒されるCBGAの変換の生成物として専らCBCAが生じた。さらに、pHの任意の更なる増大はTHCA合成酵素の触媒活性を低減又は消去し、pH8.0の反応混合物については生成物は観察されなかった。
したがって一実施形態では、本発明はテトラヒドロカンナビノール、カンナビクローム、又はテトラヒドロカンナビノール及びカンナビクロームの両方、又はそれらの類似体を、式Vの化合物を反応物として選択し、式Vの化合物をテトラヒドロカンナビノール酸合成酵素(THCA合成酵素)と接触させ、テトラヒドロカンナビノール、カンナビクローム、又はテトラヒドロカンナビノール及びカンナビクロームの両方、又はそれらの類似体が生成物として得られるように反応混合物の少なくとも1つの特性を変更することによって作製する方法を提供する。
式Vにおいて、Rは−OH、ハロゲン、−SH又は−NRaRb基から選択される。置換基R1及びR2は各々独立して−H、−C(O)Ra、−ORa、任意に置換されたC1〜C10直鎖又は分岐アルキレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルケニレン、任意に置換されたC2〜C10直鎖又は分岐アルキニレン、任意に置換されたC3〜C10アリール、任意に置換されたC3〜C10シクロアルキル、(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキレン、(C3〜C10)アリール−(C2〜C10)アルケニレン及び(C3〜C10)アリール−(C1〜C10)アルキニレンからなる群から選択される。
幾つかの実施形態については、R1及びR2はそれらが結合する環炭素原子とともにC5〜C10環式環を形成し、ここで1つ又は複数の炭素原子が任意に酸素、硫黄、窒素又は−NRa基から選択される1つ又は複数のヘテロ原子で置き換えられていてもよい。式V中のR3はH、−C(O)Ra又は(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキルから選択される基であってもよく、置換基Ra及びRbは各々独立して−H、−OH、−SH、NH2、(C1〜C10)直鎖若しくは分岐アルキル、又はC3〜C10シクロアルキル部分から選択される。
酵素活性及び触媒反応に影響を与えることが知られる任意の物理的特性は、生成物THCAとCBCAとの比率を変化させるように調節することができる。したがって一実施形態では、反応混合物のpHを変化させ、生成物として酵素的に生成するTHCAとCBCAとの比率を調節した。本合成方法に従うと、約4.0〜約6.0の範囲のより低いpHでの触媒反応は生成物としてのTHCAの形成に有利であり、約6.5〜約7.5の範囲の中性pHでの触媒反応は生成物としてのCBCAの形成に有利であった。
このため、本発明者らは、反応混合物のpHを制御することによって触媒反応の生成物としてのTHCA又はCBCAの形成を制御することが可能であることを示した。
反応溶媒の組成、イオン強度、温度、圧力、反応媒体の粘度及び試薬の濃度等の他の物理的特性も生成物の比率を変化させ得る。実際に、これらの物理的パラメーターの多くはバイオリアクターを用いたカンナビノイド又はカンナビノイド類似体の大規模製造における触媒反応の調節に重要な役割を果たす。
このため、一実施形態では、第2のカンナビノイド又はその類似体の形成量に対する第1のカンナビノイド又はその類似体の形成量に影響を与える条件を制御することによって、カンナビノイド又はカンナビノイド類似体を作製するシステム100が提供される。図1に概略的に示されるシステム100は発酵装置2、フィルター18、バイオリアクター10及び制御機構20を備えることができる。図1に表示されるシステムの説明を下記に提示する。
発酵装置2は細胞培養培地4及び複数の細胞6を収容する。細胞6はカンナビノイド合成酵素8を産生及び分泌するように構成される。カンナビノイド合成酵素8の製造用の発酵装置2に使用される細胞6は、カンナビノイド合成酵素タンパク質をコードする核酸配列又は遺伝子を含むように遺伝子操作した任意の真核細胞であり得る。幾つかの実施形態では、カンナビノイド合成酵素タンパク質をコードする核酸配列は、酵母α分泌配列をその5’末端に含み、6残基ヒスチジンタグをその3’末端に組み込むように修飾される。酵母α分泌配列の付加は、カンナビノイド合成酵素タンパク質の真核細胞増殖に用いる培地への分泌を可能にする。カンナビノイド合成酵素8の細胞外分泌は、フィルター18を用いた発酵装置2とバイオリアクター10との間での酵素の分離及び輸送を容易にするため有利である。発酵装置2におけるカンナビノイド合成酵素8の作製に続いて、上清(例えば培地4、細胞6及びカンナビノイド合成酵素8)をパス24に沿ってフィルター18へと輸送する。パス24は上清の輸送に好適な管又は任意の他の経路であり得る。
フィルター18は上清を濾過し、発現された酵素を含有する培地4から細胞6を少なくとも部分的に分離することができる。通例、フィルター18は全細胞6の少なくとも80%を培地4から分離する。幾つかの実施形態については、フィルター18は全細胞6の少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%又は100%を、培地4をバイオリアクター10に導入する前にこの培地4から分離する。濾過の後、細胞6はパス26に沿って発酵装置2へと再び輸送される。一実施形態では、フィルター18は、カンナビノイド合成酵素8を精製するための複数のフィルター及びリザーバを備える濾過及び精製システムであり得る。
フィルター18を通過した後、カンナビノイド合成酵素8はパス28に沿ってバイオリアクター10に流入し、入口30を介してバイオリアクター10に入る。バイオリアクター10は、基質CBGA又は上記の式Iの化合物に従う他の基質等の反応物の入口32も備える。このため図1に示されるように、バイオリアクター10はカンナビノイド合成酵素8と相互作用して第1のカンナビノイド14を形成するように構成される反応物12を含有する。バイオリアクター10は第2のカンナビノイド16の合成環境も提供し得る。第2のカンナビノイド16は、第1のカンナビノイド14と同じタイプのカンナビノイド合成酵素8及び基質を用いて作製することができる。例えば、第1のカンナビノイド14及び第2のカンナビノイド16の両方を反応物12としてCBGA、カンナビノイド合成酵素8としてTHCA合成酵素を用いて作製することができる。本実施形態では、第1のカンナビノイド14はTHCAであり、第2のカンナビノイド16はCBCAであり得る。代替的な実施形態では、第2のカンナビノイド16は、第1のカンナビノイド14の合成に使用されるものとは異なる基質又はカンナビノイド合成酵素を用いて合成することができる。
バイオリアクター10は、二価金属イオンを含浸させた固体支持体又は表面を二価金属イオンで官能化した支持体を有するカラムバイオリアクターであり得る。通例、セファロース、アガロース又は他の生体高分子をニッケル、コバルト、マグネシウム及びマンガン等の二価金属イオンを結合する支持体として使用する。かかる支持体は、発現されたカンナビノイド合成酵素8上に存在するヒスチジンタグに対して強い親和性を有し、合成酵素を隔離し、カンナビノイド合成を阻害又は妨害し得る他の不必要なタンパク質及び残屑から分離するために使用することができる。
カンナビノイドの合成に使用されるバイオリアクター10は、薬学的に有用なカンナビノイドの商業的製造を可能にするバッチ及び連続合成プロセス用に構成される。一実施形態では、バイオリアクター10は培地4の組成、酵素及び基質の濃度がプロセスの開始時に固定され、触媒反応中に変化しないバッチ合成用に構成される。合成は、バイオリアクター10の培地中の所望の生成物の濃度が所定の値に達した又は基質の濃度が、例えば基質から生成物への検出可能な触媒変換が存在しないレベルまで所定のレベルを下回った時点で終了する。
したがって一実施形態では、Hisタグ付きカンナビノイド合成酵素8は既知の量の基質、例えばカンナビゲロール酸(CBGA)又は式I、式II若しくは式Vの化合物をバイオリアクター10に導入する前にバイオリアクターカラム内のニッケル含有樹脂支持体に隔離される。代替的な実施形態では、カンナビゲロール酸(CBGA)又は式I、式II若しくは式Vの化合物は、カンナビノイド合成酵素8を含有する培地4をバイオリアクター10に導入する前にニッケル樹脂支持体を有するバイオリアクター10内に存在し得る。いずれの場合も、既知の量の酵素と基質である既知の量の式I、式II若しくは式Vの化合物又はCBGAとを接触させ、生成物としてカンナビノイド又はカンナビノイド類似体、例えば第1のカンナビノイド14又は第2のカンナビノイド16を合成する。
バイオリアクター10内の反応の進行は定期的又は連続的にモニタリングすることができる。例えば、光学モニタリングシステムを利用して、時間に応じたバイオリアクター10内の培地4中の生成物の濃度を検出してもよい。代替的には、基質の濃度の低下をモニタリングして合成の終了を知らせることができる。このようにして作製されたカンナビノイド生成物は、標準的な溶媒抽出又はクロマトグラフィー精製法を用いて培地から容易に回収することができる。モニタリングシステムは、下記に更に説明されるように制御機構20の一部であっても又はそれと対話するものであってもよい。
バッチプロセスモードの代替手段は、規定量の基質及び培地4を連続的にバイオリアクター10に添加し、カンナビノイド生成物を含有する等量の培地4を同時にバイオリアクター10から取り出すことで、一定の生成物形成速度を維持する連続プロセスモードである。培地4は入口32を介してバイオリアクター10に入り、出口34を介してバイオリアクター10から出ることができる。基質、酵素及び生成物形成速度の最大化に関わる他の因子の濃度を調節する方法は当該技術分野で既知である。
バイオリアクター10の条件は制御機構20を用いて制御することができる。制御機構20はバイオリアクター10に連結させてもよく、又は代替的にはバイオリアクター10とワイヤレス又は遠隔で対話するものであってもよい。制御機構20はバイオリアクター10の少なくとも1つの条件を制御し、それにより第2のカンナビノイド16の形成量に対する第1のカンナビノイド14の形成量に影響を与えることができる。例えば一実施形態では、カンナビノイド合成酵素8はTHCA合成酵素であり、遺伝子組み換えピキア・パストリス酵母細胞により産生される。上記のように、この酵素とカンナビゲロール酸とを接触させることでTHCA又はCBCAの両方の作製が可能となる。CBCAに対するTHCAの産生量(例えばTHCAとCBCAとの比率)に影響を与える一条件は、バイオリアクター10内の培地4のpHである。温度、圧力及び流量等のバイオリアクター10内の他の条件も、バイオリアクター10内で産生される第1のカンナビノイド14(例えばTHCA)及び第2のカンナビノイド16(例えばCBCA)の相対量に影響を与え得る。一実施形態では、条件(例えばpH、温度、圧力及び/又は流量)の変化は、第2のカンナビノイド16と比べてより多量の第1のカンナビノイド14の形成から、第1のカンナビノイド14と比べてより多量の第2のカンナビノイド16の形成へのシフトを引き起し得る。
別の実施形態では、制御機構20を酸素レベル、撹拌、pH及び供給速度等の発酵装置2の条件を制御するために使用することもできる。制御機構20は、発酵装置2、フィルター18及びバイオリアクター10への材料の(例えば制御ポンプによる)出入りを制御することもできる。
制御機構20はプロセッサ及び記憶装置を有する処理回路を備えていてもよい。プロセッサは汎用プロセッサ、特定用途向け集積回路(ASIC)、1つ又は複数のフィールドプログラマブルゲートアレイ(FPGA)、処理要素群、又は他の好適な電子処理要素として実装され得る。記憶装置(例えばメモリ、メモリユニット、ストレージ装置等)は、本願に記載の様々なプロセス及び機能を完成させる又は容易にする、例えばバイオリアクター10のpH、温度及び圧力を制御する、又はバイオリアクター10に出入りする培地4の流量を変更するためのデータ及び/又はコンピュータコードを保存する1つ又は複数の装置(例えばRAM、ROM、フラッシュメモリ、ハードディスクストレージ等)である。記憶装置は揮発性メモリ又は不揮発性メモリであっても又はそれを含んでいてもよい。記憶装置はデータベース要素、オブジェクトコード要素、スクリプト要素、又は本願に記載の様々な動作及び情報構造を支持する任意の他のタイプの情報構造を含み得る。一実施形態によると、記憶装置はプロセッサに処理回路を介した通信によって接続し、本明細書に記載の1つ又は複数のプロセスを(例えば処理回路及び/又はプロセッサによって)実行するコンピュータコードを含む。
本開示は様々な操作を達成する、例えばバイオリアクター10の条件を制御するための任意の機械可読媒体上の方法、システム及びプログラム製品を企図する。本開示の実施形態は、この又は別の目的で組み込まれる既存のコンピュータプロセッサ又は適切なシステムの専用コンピュータプロセッサを用いて、又はハードワイヤードシステムによって実行することができる。本開示の範囲内の実施形態としては、機械可読媒体に保存されている機械により実行可能な指示又はデータ構造を実行する又は有する機械可読媒体を含むプログラム製品が挙げられる。かかる機械可読媒体は、汎用若しくは専用コンピュータ又はプロセッサを有する他の機械がアクセスすることができる任意の利用可能な媒体であり得る。例としては、かかる機械可読媒体はRAM、ROM、EPROM、EEPROM、CD−ROM又は他の光ディスクストレージ、磁気ディスクストレージ、他の磁気ストレージ装置、半導体ストレージ装置、又は所望のプログラムコードを機械により実行可能な指示若しくはデータ構造の形態で実行若しくは保存するのに使用することができ、汎用若しくは専用コンピュータ若しくはプロセッサを有する他の機械がアクセスすることができる任意の他の媒体を含み得る。情報がネットワーク又は別の通信接続(ハードワイヤード、ワイヤレス、又はハードワイヤード若しくはワイヤレスの組合せ)を通じて機械に転送又は提供された場合、機械は機械可読媒体の接続を適切に表示する。このため、任意のかかる接続は機械可読媒体と適切に称される。上記の組合せも機械可読媒体の範囲に含まれる。機械により実行可能な指示としては、例えば汎用コンピュータ、専用コンピュータ又は専用処理機械に或る特定の機能又は機能群を実行させる指示及びデータが挙げられる。
制御機構20は、バイオリアクター10の条件を制御するためにユーザーと制御機構20との対話を可能にするキーボード22及びディスプレー36等の付加的な装置を更に備えていてもよい。例えば、ディスプレーはユーザーがバイオリアクター10のpH、温度、圧力及び流量の変化をモニタリングする、又はカンナビノイド若しくはカンナビノイド類似体を作製するシステムの任意の他の条件をモニタリングするのを可能にするスクリーンを備えていてもよい。
様々な例示的な実施形態に示されるカンナビノイド又はカンナビノイド類似体を作製するシステムの構築及び配置は例示的なものにすぎない。ごく少数の実施形態を本開示で詳細に記載したが、多くの修正(例えば様々な要素のサイズ、寸法、構造、形状及び割合、パラメーターの値、材料の使用、色、配向等の変更)が可能である。例えば、要素の位置を入れ替えても又は別の形で変更してもよく、個別の要素の性質若しくは数又は位置を交換又は変更してもよい。したがって、かかる修正は全て本開示の範囲に含まれることが意図される。さらに、任意のプロセス又は方法工程の順序又は配列を代替的な実施形態に従って変更又は並び替えることができる。本開示の範囲から逸脱することなく他の置換、修正、変更及び省略を例示的な実施形態の設計、操作条件及び配置に対して行うことができる。
本技術を以下の実施例によって更に説明するが、これらの実施例は特許請求の範囲を限定することを意図するものではない。
A. 高収率酵母形質転換体からのタンパク質の分子クローニング、スクリーニング及び発現
1. 制限消化
THCA αプラスミドDNA又はCBDA αプラスミドDNAを、プラスミドをPme I又はSpe I制限酵素によって37℃で適切な時間消化することによって線状化した。次いで、3M酢酸ナトリウムの10倍希釈溶液及び2.5容量の90%エタノールを用いてDNAをエタノール沈殿した。沈殿後にDNAを12000rpmで10分間遠心分離することによってペレット化した。ペレットを80μLの80%エタノールで洗浄し、加熱遠心分離を用いて遠心分離して乾固した。この洗浄及び遠心分離工程を繰り返し、それにより得られたDNAを10μLの滅菌水に再懸濁し、−20℃で使用時まで凍結した。
1. 制限消化
THCA αプラスミドDNA又はCBDA αプラスミドDNAを、プラスミドをPme I又はSpe I制限酵素によって37℃で適切な時間消化することによって線状化した。次いで、3M酢酸ナトリウムの10倍希釈溶液及び2.5容量の90%エタノールを用いてDNAをエタノール沈殿した。沈殿後にDNAを12000rpmで10分間遠心分離することによってペレット化した。ペレットを80μLの80%エタノールで洗浄し、加熱遠心分離を用いて遠心分離して乾固した。この洗浄及び遠心分離工程を繰り返し、それにより得られたDNAを10μLの滅菌水に再懸濁し、−20℃で使用時まで凍結した。
2. エレクトロコンピテント酵母細胞の調製
エレクトロコンピテントPichiaPink(pPink)細胞を、10mLのYPD培地に遺伝子組み換えAde2、pep4ノックアウトpPink酵母株2のグリセロールストックを接種することによって作製した。これらの細胞を、270rpmで回転する振盪機を用いて培養物のOD600が対数期増殖を示す1.3単位の値に達するまで125mL容のバッフル底フラスコにおいて27℃で一晩増殖させた。次いで、この培養物を100mLのYPD培地に添加し、同じ条件下で一晩インキュベートした。OD600を1時間毎に確認し、12時間のインキュベーション期間後に1.3単位の値に達した。
エレクトロコンピテントPichiaPink(pPink)細胞を、10mLのYPD培地に遺伝子組み換えAde2、pep4ノックアウトpPink酵母株2のグリセロールストックを接種することによって作製した。これらの細胞を、270rpmで回転する振盪機を用いて培養物のOD600が対数期増殖を示す1.3単位の値に達するまで125mL容のバッフル底フラスコにおいて27℃で一晩増殖させた。次いで、この培養物を100mLのYPD培地に添加し、同じ条件下で一晩インキュベートした。OD600を1時間毎に確認し、12時間のインキュベーション期間後に1.3単位の値に達した。
この時点で、培養物を500mL容の遠心分離管に移し、4℃及び5200rpmで5分間回転させた。上清をデカントし、250mLの滅菌氷冷水を添加して、細胞を再懸濁した。この洗浄及び遠心分離プロトコルを2回繰り返して、YPD培地の完全な除去を確実にした。50mLの滅菌氷冷水を用いて最終洗浄を行い、細胞を懸濁し、続いて細胞を5200rpmで再ペレット化し、上清をデカントにより除去した。
細胞ペレットに10mLの滅菌氷冷1Mソルビトールを添加した。次いで、ソルビトール−細胞混合物を15mL容の滅菌円錐管に移し、5200rpmで遠心分離した。300μLの滅菌氷冷1Mソルビトールを用いた細胞ペレットの2回目の洗浄を行った後、これらの細胞をエレクトロポレーションに使用した。
3. エレクトロポレーション
予め凍結しておいた線状化THCA αプラスミドDNA又はCBDA αプラスミドDNAを氷上で解凍し、80μLのエレクトロコンピテントpPink細胞を管に添加した。次いで、この混合物を0.2cmエレクトロポレーションキュベットに移し、氷上で5分間インキュベートした。キュベットに1640V、200Ω及び25μF、総パルス時間およそ4msでパルスした。パルスの直後に、1mLのYPDS培地をキュベットに添加し、全混合物をピペッティングにより十分に混合した。次いで、キュベットを振盪することなく27℃のインキュベーターに2時間入れ、続いて300μLを新鮮PADプレートに画線培養した(streaked)。これらのプレートを27℃でおよそ7日〜10日間インキュベートし、細胞増殖を促進した。
予め凍結しておいた線状化THCA αプラスミドDNA又はCBDA αプラスミドDNAを氷上で解凍し、80μLのエレクトロコンピテントpPink細胞を管に添加した。次いで、この混合物を0.2cmエレクトロポレーションキュベットに移し、氷上で5分間インキュベートした。キュベットに1640V、200Ω及び25μF、総パルス時間およそ4msでパルスした。パルスの直後に、1mLのYPDS培地をキュベットに添加し、全混合物をピペッティングにより十分に混合した。次いで、キュベットを振盪することなく27℃のインキュベーターに2時間入れ、続いて300μLを新鮮PADプレートに画線培養した(streaked)。これらのプレートを27℃でおよそ7日〜10日間インキュベートし、細胞増殖を促進した。
4. スクリーニング及びタンパク質発現
色によるスクリーンを使用して、陽性酵母細胞形質転換体を特定した。白色コロニーは対象の遺伝子の陽性発現の指標であり、赤色コロニーは発現を示さない。したがって、白色コロニーをPADプレートから選択し、新鮮PADプレートに再び画線培養して、これを3日〜5日間インキュベートして、個々のコロニーの増殖を促進した。次いで、単一コロニーを使用して125mL容のバッフル底フラスコに入った10mLのBMGY培地に播種し、これを振盪(270rpm)しながら27℃で一晩インキュベートした。600nmでの光学密度(OD)(OD600)を培養物の10倍希釈サンプルについて定期的に測定した。
色によるスクリーンを使用して、陽性酵母細胞形質転換体を特定した。白色コロニーは対象の遺伝子の陽性発現の指標であり、赤色コロニーは発現を示さない。したがって、白色コロニーをPADプレートから選択し、新鮮PADプレートに再び画線培養して、これを3日〜5日間インキュベートして、個々のコロニーの増殖を促進した。次いで、単一コロニーを使用して125mL容のバッフル底フラスコに入った10mLのBMGY培地に播種し、これを振盪(270rpm)しながら27℃で一晩インキュベートした。600nmでの光学密度(OD)(OD600)を培養物の10倍希釈サンプルについて定期的に測定した。
接種材料培養物が1.2単位〜1.5単位のOD600を達成した時点でインキュベーションを停止した。次いで、接種材料を50mL容の円錐管に移し、5200rpmで5分間遠心分離し、細胞をペレット化した。上清をデカントした後、1mLの新鮮BMMY培地をペレットに添加し、続いて管を、滅菌空気交換を可能にする空気孔テープで覆い、27℃の振盪インキュベーターに入れた。
24時間後に100μLの細胞サンプルを取り出し、これに100μLの40%メタノールを添加して、酵素産生を誘導した。次いで、このメタノールサンプルを12000rpmで5分間遠心分離し、上清及びペレットをT1サンプルとして保存した。第2の培養物サンプルを48時間のインキュベーション期間後に得て、上記のようにメタノールで処理した。遠心分離後に上清及びペレットをT2サンプルとして保存した。72時間の時点で全インキュベーション混合物を適切な容量の40%メタノールで処理した。72時間のインキュベーション期間後に培養物のメタノール処理により得られた上清及びペレットをT3と標識する。T3上清をAmicon 30kDタンパク質フィルターを通して回転させ、SDS−PAGEゲルを用いてタンパク質について分析した。
商業的量のTHCA合成酵素又はCBDA合成酵素を、発酵装置を用いて培養物の容量をスケールアップすることによって得た。このため、酵母接種材料を初めに125mL容のバッフル底フラスコ内の10mLのBMGY培地を酵母の単一白色コロニーと接触させることによって調製した。このスターター培養物を270rpmで振盪しながら27℃で一晩インキュベートし、OD600が1.2単位〜1.5単位の培養物を得た。このスターター培養物を用いて1L容のバッフル底フラスコ内の90mLのBMGY培地に播種した。この培養物のOD600が1.2単位〜1.5単位に達した時点で、接種材料を500mL容の遠心分離ボトルに移し、酵母細胞を5200rpmで5分間ペレット化した。
5. 酵素変換
THCA合成酵素の触媒活性を、25μlのT3サンプルに由来する無細胞上清を、10%DMSOを含むpH4.8の200μlの100mMクエン酸緩衝液中の25μlの1mg/ml CBGAストックとともに30℃で2時間インキュベートすることによって測定した。反応混合物中のCBGAの最終濃度は0.1mg/mlであった。最終pHは5.0である。表4に、形質転換pPink酵母細胞、すなわち線状化THCA合成酵素プラスミドを用いて形質転換されたpPink酵母細胞の独立コロニーから得られたTHCA合成酵素の触媒活性に関するデータを示す。20%超の基質CBGAが生成物THCAへと変換された培養物サンプルをスケールアップに選択した。
THCA合成酵素の触媒活性を、25μlのT3サンプルに由来する無細胞上清を、10%DMSOを含むpH4.8の200μlの100mMクエン酸緩衝液中の25μlの1mg/ml CBGAストックとともに30℃で2時間インキュベートすることによって測定した。反応混合物中のCBGAの最終濃度は0.1mg/mlであった。最終pHは5.0である。表4に、形質転換pPink酵母細胞、すなわち線状化THCA合成酵素プラスミドを用いて形質転換されたpPink酵母細胞の独立コロニーから得られたTHCA合成酵素の触媒活性に関するデータを示す。20%超の基質CBGAが生成物THCAへと変換された培養物サンプルをスケールアップに選択した。
6. 多コピーGOI挿入断片をin vitroで生成するクローニング戦略
上記のように、6コピー〜10コピーの対象の遺伝子を有する形質転換細胞を、異種タンパク質の作製を潜在的に高めるために使用することができる。代替酵母発現系を使用して、対象の遺伝子の複数のコピーを有する形質転換細胞を得た。Invitrogenの多コピーピキア発現キットを用いて、酵母細胞をプラスミドの複数のコピーで形質転換させる新たなプラスミドを構築した。
上記のように、6コピー〜10コピーの対象の遺伝子を有する形質転換細胞を、異種タンパク質の作製を潜在的に高めるために使用することができる。代替酵母発現系を使用して、対象の遺伝子の複数のコピーを有する形質転換細胞を得た。Invitrogenの多コピーピキア発現キットを用いて、酵母細胞をプラスミドの複数のコピーで形質転換させる新たなプラスミドを構築した。
簡潔に述べると、pAO815ベクターを使用して対象の遺伝子をクローニングした。このため、α−CBDA合成酵素及びα−THCA合成酵素の遺伝子をEcoR I及びBam HI制限酵素を用いてpPink−HCプラスミドから切り取った。α−CBDA合成酵素遺伝子又はα−THCA合成酵素遺伝子を含有する100ngのpPink−HCベクターを1μlのEcoR I緩衝液、1ulの各制限酵素(10単位/ul)及び1ulのBSAとともに20ulの総反応容量、37℃で2時間インキュベートした。別個に、100ngのpAO815ベクターを上記のプロトコルを用いてEcoR I及びBam HI酵素で消化した。
次いで、消化混合物を0.8%アガロースゲルにロードし、DNAフラグメントを95Vで1時間の電気泳動により互いに分離した。THCA合成酵素又はCBDA合成酵素の遺伝子に対応するバンドを、Invitrogenのゲル抽出キットを用いてゲルから抽出した。これらの遺伝子フラグメントをT4 DNAリガーゼを用い、NEB(登録商標)のライゲーションプロトコルに従って線状化pAO815ベクターにライゲートした。
ライゲーションに続いて、対象の遺伝子を含有する環状ベクターを1500V、200Ω及び25μFで4msのエレクトロポレーションにより大腸菌Top 10 F−細胞に形質転換した。次いで、形質転換細胞を250ulのSOC培地(InvitrogenのOne Shot(登録商標) Top 10 Electrocomp(商標)大腸菌を添加した)と混合し、LB−Amp100プレートに37℃で一晩プレーティングした。
インキュベーション後に、PCR実行用の5’AOX1及び3’AOX1プライマーによるコロニーPCRプロトコルを用いて陽性コロニーを特定した。対象の遺伝子を含有する陽性コロニーを液体LB−Amp100培地中、37℃で一晩増殖させた。翌日、Invitrogenのfast prepキットを用いてプラスミドミニプレップを行い、更なる増幅の前にプラスミドの濃度を0.8%アガロースゲルで分析した。
α−THCA合成酵素及びα−CBDA合成酵素の遺伝子がpAO815に挿入された後、組み換えプラスミドを2つのバッチに分ける。第1のバッチを対象の遺伝子の第2のコピーが挿入されるベクターとして使用した。pAO815組み換えプラスミドの第2のバッチは、α−THCA合成酵素又はα−CBDA合成酵素の遺伝子の抽出に使用した。したがって、ベクターとして使用されるpAO815組み換えプラスミドを、初めにBam HI制限酵素でNEBの単一消化プロトコルに従って消化した。同時に、pAO815組み換えプラスミドの第2のバッチをBgl II及びBam HI制限酵素で消化した。
第1及び第2の消化混合物を、0.8%アガロースゲルを用いて精製し、続いて精製した線状化ベクター及びα−THCA合成酵素又はα−CBDA合成酵素の遺伝子配列をゲルから抽出した。次いで、各々の遺伝子配列をNEBのT4 DNAリガーゼプロトコルに従って線状化ベクターにライゲートし、遺伝子を含有するベクターを使用して大腸菌Top10 F−細胞をエレクトロポレーションにより形質転換した。形質転換細胞を37℃で一晩インキュベートした後、正確な遺伝子挿入断片についてスクリーニングした。上記のプロトコルを数回繰り返し、多コピー挿入断片プラスミドを得る。遺伝子挿入断片の配列同一性を確認した後、多コピープラスミドをHis4配列領域で制限酵素消化により線状化し、コンピテントピキア・パストリス株G115(his4、Mut+)細胞の形質転換に使用した。形質転換細胞をスクリーニングのためにHis−プレート上で増殖させた。スクリーニングをHis−プレートで行い、ピキア・パストリスゲノムのHis部位でのプラスミドの組込みを確認した。陽性コロニーをタンパク質のメタノール誘導で選び、分泌タンパク質の活性を上記のプロトコルを用いてアッセイした。
化学合成
A. ゲラニオール(3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエン−1−オール)の合成
ゲラニオールをパルマローザ油の蒸留によって得た。パルマローザ油(New Directions Aromatics)を減圧下で蒸留し、139℃〜145℃、25mm Hgの減圧下で蒸留される画分をプールして純粋なゲラニオールを得た。
A. ゲラニオール(3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエン−1−オール)の合成
B. オリベトールの合成
オリベトールを公表されている手法(Focella, A, et al., J. Org. Chem., Vol. 42, No. 21, (1977), p. 3456-3457)を用いて合成した。
1. メチル6−N−ペンチル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレート
230mLの無水メタノール中のナトリウムメトキシド(32.4g、0.60mol)及びマロン酸ジメチル(90g、0.68mol)の撹拌溶液に、75g(0.48mol)の90%3−ノネン−2−オンを少量ずつ添加した。次いで、反応混合物をN2下で3時間還流させ、室温まで冷却した。溶媒を減圧下で蒸留し、残渣を350mLの水に溶解した。白色結晶とほぼ透明な溶液とのスラリーを80mLのクロロホルムで3回抽出した。水層を濃HClでpH4まで酸性化し、形成される白色沈殿物を一晩静置した後、濾過した。結晶を高真空下、50℃で5時間乾燥させ、106.5g(0.4416mol)(92%)のメチル6−n−ペンチル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレート(融点96℃〜98℃)を得た。生成物を、石油エーテル:酢酸エチル(9:1)の混合物を用いて再結晶化し、94gの純粋なメチル6−n−ペンチル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレート(融点98℃〜100℃)を得た。
2. 1−N−ペンチル−3,5−ジヒドロキシベンゼン(オリベトール)
115mLのジメチルホルムアミドに溶解したメチル6−N−ペンチル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレート(58.4g、0.24mol)の撹拌氷冷溶液に、60mLのジメチルホルムアミドに溶解した37.9g(0.23mol)の臭素を滴加した。添加(およそ90分)の終了後に反応混合物を80℃までゆっくりと加熱すると、二酸化炭素の発生が非常に激しくなった。
反応をガス発生が止まるまでこの温度に維持し、続いて反応物を160℃まで更に加熱し、この温度におよそ10時間保持した。加熱後に反応物を冷却し、溶媒DMFを減圧下で除去した。これにより得られた残渣を水(80mL)で処理し、250mLのエーテルで2回抽出した。合わせたエーテル層を水で洗浄した後、2×80mLの亜硫酸水素ナトリウムの10%溶液、2×80mLの酢酸の10%溶液、続いて水で再び洗浄した。
無水硫酸ナトリウムで乾燥させた後、溶媒を減圧下で除去し、46.8gの粘性の油を得た。油を減圧下で蒸留し、30.3g(0.168mol)(69.3%)のオリベトールを生成物として得た。HPLC分析により97.5%の純度が示された。
C. CBGの合成
CBGをTaura et al., (1996), The Journal of Biological Chemistry, Vol. 271, No. 21, p. 17411-17416に開示のプロトコルに従って合成した。
CBGをTaura et al., (1996), The Journal of Biological Chemistry, Vol. 271, No. 21, p. 17411-17416に開示のプロトコルに従って合成した。
1. 2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−ペンチル−ベンゼン−1,3−ジオール(カンナビゲロール(CBG))の合成
ゲラニオール(3g、0.0194mol)及びオリベトール(2g、0.0111mol)を、80mgのp−トルエンスルホン酸を触媒として含有する400mLのクロロホルムに溶解し、反応混合物を暗所、室温で12時間撹拌した。12時間後に反応混合物を飽和重炭酸ナトリウム(400mL)、続いてH2O(400mL)で洗浄した。クロロホルム層を減圧下、40℃で濃縮し、得られた残渣を、ベンゼン(1000mL)を溶離液として用いた2.0cm×25cmシリカゲルカラムでのクロマトグラフにかけ、1.4g(0.00442mol)(39.9%)のCBGを生成物として得た。
代替的には、粗CBGを以下のようにして精製した。250mL容のビーカーに7.25gの粗CBG及び50mLのベンゼンを添加した。フラスコをかき混ぜてCBGを溶解し、50gのシリカゲルを撹拌子とともに添加した。溶液を一晩撹拌した後、44cm×2.75cmカラムに注ぎ入れた。カラムを300mLのベンゼンで溶出した。溶離液のおよそ70mLの画分をCBGについてアッセイした。CBGを含有する画分1、2及び3(約230mL)を合わせ、溶媒を加圧下で除去し、次の合成工程での使用に好適な純度を有する80%超のCBGを含む残渣を6.464g得た。
一実施形態では、7.25gの粗CBG残渣とシリカゲル(50mL)のスラリーとを250ml容のビーカー内で混合することによって粗CBGを精製した。この混合物を1時間ゆっくりとかき混ぜた後、細目濾紙を用いて真空濾過した。濾過ケ−キを250mlのベンゼンで透明な濾液が得られるまで洗浄した。濾液から溶媒を減圧下で除去し、80%超のCBGを含む残渣を6.567g得た。
2. CBG酸(CBGA)の合成
A. 炭酸メチルマグネシウム(MMC)の合成
炭酸メチルマグネシウム(MMC)をBalasubrahmanyam et al., (1973), Organic Synthesis, Collective Volume V, John Wiley & Sons, Inc., p. 439-444に開示のプロトコルに従って合成した。
A. 炭酸メチルマグネシウム(MMC)の合成
炭酸メチルマグネシウム(MMC)をBalasubrahmanyam et al., (1973), Organic Synthesis, Collective Volume V, John Wiley & Sons, Inc., p. 439-444に開示のプロトコルに従って合成した。
乾燥した2L容の三つ口フラスコに機械的撹拌器、凝縮器及び1L容の均圧添加漏斗を取り付け、その最上部にガス導入管を取り付けた。清浄な乾燥マグネシウムリボン(40.0g、1.65mol)をフラスコに入れ、システムを窒素でフラッシングした後、無水メタノール(600mL)を添加した。反応混合物を外部から冷却することによって水素ガスの発生を制御した。水素の発生が止まった後、緩徐な窒素流をシステムに通過させ、凝縮器を全縮−分取蒸留ヘッドに交換した。窒素フローを停止し、メタノールの大部分を減圧下で溶液から蒸留した。マグネシウムメトキシドのペースト状の懸濁液の撹拌が実際的でなくなった時点で蒸留を停止した。システムを、窒素を用いて再度フラッシングし、蒸留ヘッドの出口を、鉱油を含有する小トラップに取り付け、それにより反応システムから流出するガスの容量を推定することができた。
無水ジメチルホルムアミド(DMF)(700mL)を反応フラスコに添加し、得られる懸濁液を激しく撹拌しながら、無水二酸化炭素流を添加漏斗に接続したガス導入管により反応容器に通した。二酸化炭素の溶解は懸濁マグネシウムメトキシドの発熱反応を伴っていた。CO2が吸収されなくなった時点で、無色の溶液を蒸留される液体の温度が140℃に達するまで緩徐なCO2ガス流下で加熱し、残留メタノールが反応混合物から除去されたことが示された。反応混合物を、不活性雰囲気下で混合物を室温まで冷却するのを助ける緩徐な窒素流を用いてフラッシングした。これにより536mg MMC/mLのDMFを含む溶液が得られた。
B. CBG−Aの形成
6−カルボン酸−2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−ペンチル−ベンゼン−1,3−ジオール、カンナビゲロール酸(CBGA)を以下のようにして調製した。10mL容の三角フラスコに1mLのMMCのDMF溶液を添加した。この溶液に2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−ペンチル−ベンゼン−1,3−ジオール(120mg、0.379mmol)を添加した。フラスコを120℃で1時間加熱した後、反応混合物を100mLのクロロホルム:メタノール(2:1)溶液に溶解した。この溶液のpHを希HClでpH2.0に調整した後、50mLのH2Oを用いて分配した。
6−カルボン酸−2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−ペンチル−ベンゼン−1,3−ジオール、カンナビゲロール酸(CBGA)を以下のようにして調製した。10mL容の三角フラスコに1mLのMMCのDMF溶液を添加した。この溶液に2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−ペンチル−ベンゼン−1,3−ジオール(120mg、0.379mmol)を添加した。フラスコを120℃で1時間加熱した後、反応混合物を100mLのクロロホルム:メタノール(2:1)溶液に溶解した。この溶液のpHを希HClでpH2.0に調整した後、50mLのH2Oを用いて分配した。
有機層を硫酸ナトリウムで乾燥させ、溶媒を蒸発により除去した。粗反応物のHPLC分析によりCBGからCBG−Aへの約40%の変換が示された。
代替的には、3.16g(10mmol)のCBG(又は任意の他の中性カンナビノイド)、8.63g(100mmol)のマグネシウムメチレート及び44g(1mol)のドライアイスを圧力適合容器に密封した。容器を50℃に加熱し、温度をその値に3時間保持した。加熱の後、容器を室温まで冷却し、ゆっくりと通気した。反応混合物を100mLのクロロホルム:メタノール(2:1)溶媒に溶解した。この溶液のpHを希HClによりpH2.0に調整した後、この溶液を50mLのH2Oを用いて分配した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥させ、溶媒を蒸発により除去した。粗反応混合物のHPLC分析により、このプロトコルを用いたCBGからCBG−Aへの約85%の変換が示された。
粗CBG−Aを、2.0cm×25cmシリカゲルカラムを用いたクロマトグラフィーにより精製した。生成物をn−ヘキサン:酢酸エチル(2:1)(1000mL)の混合物を用いて溶出し、45mg(0.125mmol)(37.5%)の所望の生成物を得た。
代替的には、超高純度CBGAを、粗生成物を媒体としてLH−20親油性樹脂を用いたクロマトグラフにかけることによって得た。400gのLH−20 Sephadex樹脂を、初めに2LのDCM:クロロホルム(4:1)溶媒を用いて膨潤させた。膨潤させた樹脂を44×2.75cmカラムに重力充填した。最小量のDCM:クロロホルム(4:1)溶媒に溶解した2.1gの粗CBGAをカラムにロードし、1.7Lの同じ溶媒で溶出した。100mLの画分を回収した。未反応のCBGを、この溶媒系を用いて黄色/橙色溶液として溶出した。約1.7Lのこの溶媒を通過させると黄色/橙色画分は観察されなくなり、溶出溶媒を結合したCBGAを溶出する100%アセトンに変更した。
CBGAを含有する画分をプールし、溶媒を除去して0.52gのCBGAを得た(約90%の回収率)。アセトンで溶出する前にカラムに通すDCM:クロロホルム(4:1)溶媒の容量を増大させることで、99.5%超の純度を有するCBGAを得た。
CBGVの合成
CBGVを以下のようにして合成した。
CBGVを以下のようにして合成した。
A. メチル6−N−プロピル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレート:
簡潔に述べると、3−ヘプテン−2−オン(30.1g、0.25mol)を、マロン酸ジエチル(52.016g、0.323mol)及びナトリウムメトキシド(16.206g、0.3mol)の乾燥メタノール(125mLの乾燥MeOH)溶液に滴加した。真空オーブン内、45℃で一晩乾燥させると、粗生成物は46.315gと秤量された。粗生成物を石油エーテル(300mL)に溶解した。撹拌後に任意の非溶解材料を溶液から濾過し、その後酢酸エチル(30mL)を添加し、CBGVを沈殿させた。沈殿物を濾過し、真空オーブン内、44℃で一晩乾燥させた。合計33.569g(0.157mol)(52.3%)の所望の生成物が回収された。
B. 1−N−プロピル−3,5−ジヒドロキシベンゼン
メチル6−N−プロピル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレートを出発物質として使用した以外は、オリベトールの合成のための上記と同様の手法を用いて表題の化合物を製造した。簡潔に述べると、メチル6−N−プロピル−2−ヒドロキシ−4−オキソ−シクロヘキサ−2−エン−1−カルボキシレートの撹拌氷冷DMF溶液に臭素のDMF溶液を添加した。臭素の添加の後、反応混合物を80℃に加熱した。加熱に伴って二酸化炭素ガスの生成及び放出が起こった。ガス発生が止まった後、反応物の温度を160℃まで増大させ、加熱を10時間継続した。次いで、反応物を冷却し、DMFを減圧下で除去した。粗混合物を水で希釈し、ジエチルエーテルを用いた溶媒抽出に供した。エーテルを除去し、残留する油を蒸留することによって表題の化合物を得た。
C. 2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−プロピル−ベンゼン−1,3−ジオール(CBGV)
CBGVの合成は、p−トルエンスルホン酸をゲラニオール及び1−N−プロピル−3,5−ジヒドロキシベンゼンのクロロホルム溶液に添加することによって進行した。反応物を暗所、室温で12時間撹拌した後、水を添加して粗生成物をクロロホルム層に分配した。次いで、クロロホルム層を飽和重炭酸ナトリウムで洗浄し、乾燥させ、有機溶媒を除去した後、CBGの合成について上記したように精製した。
CBGVの合成は、p−トルエンスルホン酸をゲラニオール及び1−N−プロピル−3,5−ジヒドロキシベンゼンのクロロホルム溶液に添加することによって進行した。反応物を暗所、室温で12時間撹拌した後、水を添加して粗生成物をクロロホルム層に分配した。次いで、クロロホルム層を飽和重炭酸ナトリウムで洗浄し、乾燥させ、有機溶媒を除去した後、CBGの合成について上記したように精製した。
D. 6−カルボン酸−2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−プロピル−ベンゼン−1,3−ジオール(CBGVA)
6−カルボン酸−2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−プロピル−ベンゼン−1,3−ジオール、カンナビゲロール酸(CBGVA)を以下のようにして調製した。炭酸メチルマグネシウム(MMC)を上記のようにして調製した。フラスコ内のMMCのDMF溶液に、2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−プロピル(propyl)−ベンゼン−1,3−ジオールを添加した。フラスコを120℃で1時間加熱した後、反応混合物をクロロホルム:メタノールの2:1混合物に溶解した。この溶液のpHを希HClでpH2.0に調整し、反応混合物を、H2Oを用いて抽出した。
6−カルボン酸−2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−プロピル−ベンゼン−1,3−ジオール、カンナビゲロール酸(CBGVA)を以下のようにして調製した。炭酸メチルマグネシウム(MMC)を上記のようにして調製した。フラスコ内のMMCのDMF溶液に、2−[(2E)−3,7−ジメチルオクタ−2,6−ジエニル]−5−プロピル(propyl)−ベンゼン−1,3−ジオールを添加した。フラスコを120℃で1時間加熱した後、反応混合物をクロロホルム:メタノールの2:1混合物に溶解した。この溶液のpHを希HClでpH2.0に調整し、反応混合物を、H2Oを用いて抽出した。
有機層を硫酸ナトリウムで乾燥させ、溶媒を蒸発により除去して、表題の化合物CBGVAを粗生成物として得た。
カンナビノイドの大規模酵素生成
100mlの10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH5.0)を、酸素ガススパージャー及び撹拌器を備えるガラス反応容器に入れた。この溶液に35g/lの2−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン(HPβCD;Kleptose(登録商標) HPB)、スルホブチルエーテルβ−シクロデキストリンナトリウム塩(SBEβCD;Captisol(登録商標))、又は無作為にメチル化したβ−シクロデキストリン(RMβCD)を添加した。CDを5gと少量で添加し、完全に溶解させた。
100mlの10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH5.0)を、酸素ガススパージャー及び撹拌器を備えるガラス反応容器に入れた。この溶液に35g/lの2−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン(HPβCD;Kleptose(登録商標) HPB)、スルホブチルエーテルβ−シクロデキストリンナトリウム塩(SBEβCD;Captisol(登録商標))、又は無作為にメチル化したβ−シクロデキストリン(RMβCD)を添加した。CDを5gと少量で添加し、完全に溶解させた。
2.5gのカンナビノイド合成酵素基質、例えばCBGA若しくはCBGV−A、又は式I、式II若しくは式Vの化合物を緩衝シクロデキストリン溶液に添加した。CDと基質とのモル比は約4:1であった。60mgの精製合成酵素を溶液に添加し、反応混合物を30℃で8時間インキュベートした。反応の進行をHPLCによって定期的にモニタリングし、酵素アッセイを用いて過酸化水素の発生を検出及び定量化した。
8時間後に、90%超のCBGA基質がTHCA及びCBCAに変換された。THCAとCBCAとの比率は5.0の酸性pHでおよそ10:1であった。CBC異性体の比率は5:1であった。
水溶液を95%EtOHで10倍に希釈した。これによりシクロデキストリンが沈殿し、カンナビノイドが溶液中に残る。シクロデキストリンを真空濾過し、1Lの90%EtOHで洗浄し、乾燥させて今後の反応における再利用を可能にする。カンナビノイドを含有するエタノール溶液の濃縮、その後のDCM:クロロホルム(chloroform)(4:1)溶媒への残渣の懸濁により、約25gの橙黄色の粗残渣が得られた。
カンナビノイドの大規模精製
本技術の方法を用いて合成したカンナビノイドの精製は、LH−20親油性樹脂を用いたクロマトグラフィーにより達成された。簡潔に述べると、4000gの樹脂を、20LのDCM:クロロホルム(4:1)を用いて膨潤させた。膨潤させた樹脂を44×27.5cmカラムに重力充填した。膨潤させた樹脂の容量は約1350mLであった。カラムに最小量の溶媒に溶解した25gの粗残渣をロードした後、4LのDCM:クロロホルム(4:1)溶媒で洗浄してCBGを溶出させた。カンナビノイド酸はこの溶出中にカラムから溶出しなかった。
本技術の方法を用いて合成したカンナビノイドの精製は、LH−20親油性樹脂を用いたクロマトグラフィーにより達成された。簡潔に述べると、4000gの樹脂を、20LのDCM:クロロホルム(4:1)を用いて膨潤させた。膨潤させた樹脂を44×27.5cmカラムに重力充填した。膨潤させた樹脂の容量は約1350mLであった。カラムに最小量の溶媒に溶解した25gの粗残渣をロードした後、4LのDCM:クロロホルム(4:1)溶媒で洗浄してCBGを溶出させた。カンナビノイド酸はこの溶出中にカラムから溶出しなかった。
1:1→0:1のDCM:アセトン溶媒による勾配溶出を用いてカンナビノイド酸を溶出した。各勾配工程に1カラム容量(4L)の溶媒を用いた。CBCAが初めに溶出し、続いてCBGA、その後THCAが溶出した。各々のカンナビノイドの純度は99.5%超であった。
純粋なカンナビノイドを、酸形態を真空下、90℃で加熱することによってそれらの中性又は「活性」形態へと更に加工することができる。脱炭酸により中性カンナビノイドが定量的に得られた。必要に応じて再結晶化を行い、医薬品グレードのカンナビノイドを得ることができる。
Claims (14)
- カンナビジオール酸(CBDA)及びカンナビクロメン酸(CBCA)を異なる比率で生成する方法であって、
(a)反応混合物中で、カンナビゲロール酸(CBGA)をCBDA合成酵素と反応させ、
(b)前記反応混合物のpHを4.0と8.0のレンジ内に選択して、前記CBDA及び前記CBCAを生成し、
(c)生成された前記CBDA及び前記CBCAを回収することを含む方法。 - 前記CBDA合成酵素は固体支持体に固定されていることを含む請求項1の方法。
- 前記CBDA合成酵素は遺伝子組み換えCBDA合成酵素であり、前記方法は更に前記遺伝子組み換えCBDA合成酵素を生成することを含む請求項1の方法。
- 前記遺伝子組み換えCBDA合成酵素を生成するステップはCBDA合成酵素を過剰に発現することを含む請求項3の方法。
- 前記CBDA合成酵素は酵母又は大腸菌内で発現することを含む請求項4の方法。
- 前記反応混合物は、ジメチルスルホオキシド(DMSO)、ジメチルホルムアミド(DMF)、イソプロピルアルコール、及びシクロデキストリンの一つ又は複数である溶媒であり、前記反応混合物中の前記溶媒の量は5%(v/v)と30%(v/v)の間である、請求項1の方法。
- カンナビノイド生成物を作製するシステムであって、
(a) 遺伝子操作された酵母またはバクテリア細胞を含む細胞培養培地を収容し、カンナビジオール酸(CBDA)合成酵素を前記細胞培養培地に産生及び分泌する発酵装置と、
(b)反応混合物を含むバイオリアクターであって、前記CBDA合成酵素をカンナビゲロリック酸(CBGA)と接触させ、前記CBDA合成酵素によって合成された少なくとも一つのカンナビノイド生成物を形成するバイオリアクターと、
(c)前記CBDA合成酵素を含む前記細胞培養培地の特性を調整するか、又は、前記反応混合物の特性を制御するように構成され、生成された一つ又はより多くのカンナビノイド生成物の量を修正する制御機構を含み、
前記反応生成物の前記特性は前記反応のイオン強度、前記反応のpH、前記反応の温度、前記反応の圧力の少なくとも一つであり、
前記反応混合物のpHは4〜8未満である、システム。 - 更に、前記細胞によって生成された前記カンナビノイド合成酵素を含む前記細胞培養培地から前記細胞を分離するフィルターを含んでいる請求項7のシステム。
- 前記制御機構は前記反応混合物の一つ又はより多くの特性を制御する処理回路及び表示装置を含んでいる請求項7のシステム。
- 遺伝子操作された酵母またはバクテリア細胞を含む前記細胞培養培地の特性は前記細胞培養培地の酸素レベル、前記細胞培養培地の攪拌レート、又は前記細胞培養培地のpHの一つ又はそれ以上である、請求項7のシステム。
- 前記制御機構は前記細胞培養培地の流量を前記バイオリアクターに対して調整するように構成されている請求項7のシステム。
- 前記バイオリアクターはニッケルを含むカラムバイオリアクターであり、前記カンナビノイド合成酵素はニッケル接合用タグを含んでいる、請求項7のシステム。
- 前記バイクテリア細胞は大腸菌の細胞である、請求項7のシステム。
- 前記反応混合物は溶媒(solvent)を含んでおり、前記溶媒はジメチルスルホオキシド(DMSO)、ジメチルホルムアミド(DMF)、イソプロピルアルコール、及びシクロデキストリンの一つ又は複数であり、前記反応混合物中における前記溶媒の量は5%〜30%(w/v)である請求項7のシステム。
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WO2017175064A1 (en) * | 2016-04-04 | 2017-10-12 | Full Spectrum Laboratories Ltd | Bioenzymatic synthesis of tetrahydrocannabivarin (thc-v), cannabinol (cbn), and cannabivarin (cbv) and their use as therapeutic agents |
AU2017250303B2 (en) * | 2016-04-15 | 2019-09-26 | Teewinot Technologies Limited | Biosynthesis of cannabinoid prodrugs |
CA3021660A1 (en) | 2016-04-22 | 2017-10-26 | Receptor Life Sciences, Inc. | Fast-acting plant-based medicinal compounds and nutritional supplements |
JP7454332B2 (ja) * | 2016-06-15 | 2024-03-22 | オーハイ エナジェティクス ピービーシー | 酸化ストレスを低減するための方法および組成物 |
WO2018091551A1 (en) * | 2016-11-15 | 2018-05-24 | Full Spectrum Laboratories Ltd | Bio-stable cannabinoid compounds and methods for enhancing their physiological concentration |
EA201892396A1 (ru) | 2016-12-02 | 2019-04-30 | Ресептор Лайф Сайенсиз, Инк. | Быстродействующие растительные лекарственные соединения и биологически активные добавки |
US10239808B1 (en) | 2016-12-07 | 2019-03-26 | Canopy Holdings, LLC | Cannabis extracts |
JP2020507351A (ja) | 2017-02-17 | 2020-03-12 | ヒヤシンス・バイオロジカルス・インコーポレイテッド | 酵母における植物性カンナビノイド及び植物性カンナビノイドアナログの生成のための方法及び細胞株 |
BR112019019966A2 (pt) | 2017-03-24 | 2020-04-28 | Trait Biosciences Inc | biossíntese in vivo de alto nível e isolamento de canabinoides solúveis em água em sistemas de plantas |
EP3615657A4 (en) * | 2017-04-26 | 2021-02-24 | Teewinot Technologies Limited | APPARATUS, METHODS AND COMPOSITION FOR THE SYNTHESIS OF CANNABINOID COMPOUNDS |
AU2018256863A1 (en) * | 2017-04-27 | 2019-11-14 | Regents Of The University Of California | Microorganisms and methods for producing cannabinoids and cannabinoid derivatives |
US11946059B2 (en) | 2017-07-11 | 2024-04-02 | Trait Biosciences, Inc. | In vivo generation of water-soluble cannabinoids in plant cell suspension cultures |
WO2019014395A1 (en) * | 2017-07-11 | 2019-01-17 | Trait Biosciences, Inc. | GENERATION OF WATER-SOLUBLE CANNABINOID COMPOUNDS IN PLANT CELL SUSPENSION YEAST AND CROPS AND MATERIAL COMPOSITIONS |
US11905543B2 (en) | 2017-07-11 | 2024-02-20 | Trait Biosceinces, Inc. | In vivo generation of water-soluble acetylated cannabinoid glycoside compounds in plant cell suspension cultures |
AU2018301828A1 (en) | 2017-07-12 | 2020-01-30 | Biomedican, Inc. | Production of cannabinoids in yeast |
US11473096B2 (en) | 2017-10-03 | 2022-10-18 | The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate | Method for differentiating cannabis plant cultivars based on cannabinoid synthase paralogs |
MX2020004029A (es) | 2017-10-20 | 2020-08-13 | Jfe Steel Corp | Lamina de acero de alta resistencia y metodo para la fabricacion de la misma. |
US11202771B2 (en) | 2018-01-31 | 2021-12-21 | Treehouse Biotech, Inc. | Hemp powder |
CA3098351A1 (en) | 2018-04-23 | 2019-10-31 | Renew Biopharma, Inc. | Enzyme engineering to alter the functional repertoire of cannabinoid synthases |
US10801049B2 (en) | 2018-06-14 | 2020-10-13 | Syntiva Therapeutics, Inc. | Genetically engineered microorganisms and processes for the production of cannabinoids from a carbon source precursor |
EP3864000A4 (en) | 2018-10-10 | 2022-08-10 | Treehouse Biosciences, Inc. | CANNABIGEROL SYNTHESIS |
CN113905730A (zh) | 2018-10-31 | 2022-01-07 | 南迪亚公司 | 大麻素共晶体的固体组合物 |
CN109734591A (zh) * | 2018-12-26 | 2019-05-10 | 江苏暨明医药科技有限公司 | 一种大麻二酚中间体及其制备方法与及应用 |
EP3931330A4 (en) | 2019-02-25 | 2023-03-15 | Ginkgo Bioworks, Inc. | BIOSYNTHESIS OF CANNABINOIDS AND CANNABINOID PRECURSORS |
CN114729337A (zh) * | 2019-05-22 | 2022-07-08 | 德美崔克斯公司 | 优化的大麻素合酶多肽 |
EP3983367A1 (en) | 2019-06-11 | 2022-04-20 | Symrise AG | Synthesis and purification of cannabigerol and its application |
US10717056B1 (en) | 2019-09-09 | 2020-07-21 | Michael Cem Gokay | Method and apparatus for purification of cannabinoid extracts |
AU2020362382A1 (en) * | 2019-10-11 | 2022-04-21 | National University Of Singapore | Biosynthesis of cannabinoids from cannabigerolic acid using novel cannabinoid synthases |
JP2022552953A (ja) * | 2019-10-11 | 2022-12-21 | ナショナル ユニヴァーシティ オブ シンガポール | サッカロマイセス・セレビシエを用いた簡単な前駆体原料からのカンナビノイドの持続可能な生成 |
EP4149916A1 (en) | 2020-05-12 | 2023-03-22 | Canopy Growth Corporation | Methods of synthesizing cannabigergol, cannabigerolic acid, and analogs thereof |
WO2021226711A1 (en) * | 2020-05-12 | 2021-11-18 | Canopy Growth Corporation | Methods of synthesizing cannabigergol, cannabigerolic acid, and analogs thereof |
AU2021411968A1 (en) | 2020-12-31 | 2023-07-13 | Cookies Creative Consulting & Promotions, Inc. | Compositions comprising cannabis and mushroom extracts, and uses thereof |
US20220298533A1 (en) * | 2021-03-22 | 2022-09-22 | Cb Therapeutics, Inc. | Biosynthetic methods for the modification of cannabinoids |
BR112023025333A2 (pt) * | 2021-06-04 | 2024-02-27 | Amyris Inc | Métodos de purificação de canabinoides |
WO2023043946A2 (en) * | 2021-09-15 | 2023-03-23 | The Regents Of The University Of California | Cannabinoid production in bacteria |
Family Cites Families (54)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5086646A (en) | 1989-09-12 | 1992-02-11 | Jamison Dale E | Apparatus and method for analyzing well fluid sag |
US5290701A (en) * | 1991-08-28 | 1994-03-01 | Wilkins Judd R | Microbial detection system and process |
US5302525A (en) * | 1992-11-23 | 1994-04-12 | National Research Council Of Canada | Methylobacterium extorquwns microorganism useful for the preparation of poly-β-hydroxybutyric acid polymers |
US7530461B2 (en) * | 1995-03-10 | 2009-05-12 | Photocure Asa | Esters of 5-aminolevulinic acid as photosensitizing agents in photochemotherapy |
US6113940A (en) | 1997-03-03 | 2000-09-05 | Brooke; Lawrence L. | Cannabinoid patch and method for cannabis transdermal delivery |
JP2000078979A (ja) | 1998-09-04 | 2000-03-21 | Taisho Pharmaceut Co Ltd | テトラヒドロカンナビノール酸シンターゼ遺伝子 |
AR022383A1 (es) * | 1998-09-18 | 2002-09-04 | Univ Kentucky Res Found | Sintasas |
US6403126B1 (en) | 1999-05-26 | 2002-06-11 | Websar Innovations Inc. | Cannabinoid extraction method |
US6949582B1 (en) | 1999-05-27 | 2005-09-27 | Wallace Walter H | Method of relieving analgesia and reducing inflamation using a cannabinoid delivery topical liniment |
JP2001029082A (ja) * | 1999-07-22 | 2001-02-06 | Yukihiro Masayama | カンナビジオール酸シンターゼをコードするdna |
US6730330B2 (en) | 2001-02-14 | 2004-05-04 | Gw Pharma Limited | Pharmaceutical formulations |
US6946150B2 (en) | 2002-08-14 | 2005-09-20 | Gw Pharma Limited | Pharmaceutical formulation |
WO2004016254A2 (en) | 2002-08-16 | 2004-02-26 | Immugen Pharmaceuticals, Inc. | Contraceptive methods and formulations |
GB0222077D0 (en) | 2002-09-23 | 2002-10-30 | Gw Pharma Ltd | Methods of preparing cannabinoids from plant material |
DE10335130A1 (de) * | 2003-07-31 | 2005-02-24 | Blue Membranes Gmbh | Immobilisierung von Katalysatoren auf porösen Körpern auf Kohlenstoffbasis |
GB2418612A (en) | 2004-10-01 | 2006-04-05 | Gw Pharma Ltd | Inhibition of tumour cell migration with cannabinoids |
CN101137663A (zh) * | 2005-01-28 | 2008-03-05 | 索尔克生物学研究所 | 新型芳香异戊烯基转移酶,编码其的核酸和其使用 |
MX2007011125A (es) | 2005-04-01 | 2007-10-23 | Basf Ag | Uso de proteinas como agentes de desemulsionantes. |
US20090197308A1 (en) * | 2005-05-12 | 2009-08-06 | Jian Liu | Enzymatic synthesis of sulfated polysaccharides |
JP2007020466A (ja) | 2005-07-15 | 2007-02-01 | Institute Of Physical & Chemical Research | 大麻CannabissativaL.の識別方法 |
US20070104741A1 (en) | 2005-11-07 | 2007-05-10 | Murty Pharmaceuticals, Inc. | Delivery of tetrahydrocannabinol |
US9265724B2 (en) | 2005-11-07 | 2016-02-23 | Ram B. Murty | Oral dosage form of tetrahydrocannabinol and a method of avoiding and/or suppressing hepatic first pass metabolism via targeted chylomicron/lipoprotein delivery |
GB2434312B (en) | 2006-01-18 | 2011-06-29 | Gw Pharma Ltd | Cannabinoid-containing plant extracts as neuroprotective agents |
GB2450493A (en) * | 2007-06-25 | 2008-12-31 | Gw Pharma Ltd | Cannabigerol for use in treatment of diseases benefiting from agonism of CB1 and CB2 cannabinoid receptors |
WO2009102466A1 (en) | 2008-02-14 | 2009-08-20 | The General Hospital Corporation | Well-based flow system for cell culture |
GB2459125B (en) | 2008-04-10 | 2013-01-02 | Gw Pharma Ltd | Method if extracting cannabichromene and its acid from Cannabis sativa plant material |
US9921576B2 (en) * | 2008-05-05 | 2018-03-20 | Finesse Solutions, Inc. | Virtual transmitter for bioreactor automation system |
DK2285387T3 (en) * | 2008-06-13 | 2016-01-25 | Nutricia Nv | Nutrition for preventing infections |
JP2012523235A (ja) | 2009-04-08 | 2012-10-04 | ブリストル−マイヤーズ スクイブ カンパニー | Pdhおよびfdh酵素を発現する遺伝学的に安定なプラスミド |
DE102009019322A1 (de) * | 2009-04-30 | 2010-11-11 | The Health Concept Gmbh | Verfahren zur Herstellung von Synthetischen Cannabinoiden |
WO2010129574A1 (en) | 2009-05-04 | 2010-11-11 | The Regents Of The University Of California | Stress-tolerant plants expressing mannosylglycerate-producing enzymes |
US20110003703A1 (en) * | 2009-07-01 | 2011-01-06 | Charles Ma | Nucleic Acid Hybridization and Detection Using Enzymatic Reactions on a Microarray |
WO2011017798A1 (en) | 2009-08-12 | 2011-02-17 | National Research Council Of Canada | Aromatic prenyltransferase from cannabis |
AR079234A1 (es) * | 2009-12-01 | 2012-01-04 | Abbott Lab | Derivados heterociclicos condensados nitrogenados, composiciones farmaceuticas que los contienen y uso de los mismos para tratar afecciones oncologicas, del sistema nervioso y/o del sistema inmune. |
GB2478595B (en) | 2010-03-12 | 2018-04-04 | Gw Pharma Ltd | Phytocannabinoids in the treatment of glioma |
CA3130705A1 (en) * | 2010-04-15 | 2011-10-20 | National Research Council Of Canada | Genes and proteins for aromatic polyketide synthesis |
JP5751661B2 (ja) | 2010-11-02 | 2015-07-22 | 国立研究開発法人農業・食品産業技術総合研究機構 | デキストラングルカナーゼ |
JP2012130294A (ja) | 2010-12-22 | 2012-07-12 | Tosoh Corp | 抗体結合タンパク質およびその製造方法 |
WO2013009928A1 (en) * | 2011-07-11 | 2013-01-17 | Organic Medical Research | Cannabinoid formulations |
CA2851316C (en) | 2011-07-13 | 2021-10-19 | National Research Council Of Canada | Genes and proteins for alkanoyl-coa synthesis |
US20140057251A1 (en) | 2011-08-18 | 2014-02-27 | Medicinal Genomics Corporation | Cannabis Genomes and Uses Thereof |
GB2494461A (en) | 2011-09-12 | 2013-03-13 | Gw Pharma Ltd | Phytocannabinoids for use in the treatment of invasive cancers or metastases |
GB2514054A (en) | 2011-09-29 | 2014-11-12 | Gw Pharma Ltd | A pharmaceutical composition comprising the phytocannabinoids cannabidivarin (CBDV) and cannabidiol (CBD) |
GB2496688B (en) | 2011-11-21 | 2016-06-29 | Gw Pharma Ltd | Tetrahydrocannabivarin for use in the treatment of intestinal inflammatory diseases |
WO2013148631A1 (en) | 2012-03-30 | 2013-10-03 | The Scripps Research Institute | Cyclic prodrugs of duocarmycin analogs |
PL2844243T3 (pl) | 2012-05-03 | 2020-05-18 | Echo Pharmaceuticals B.V. | Sposób przygotowania izolatu z rośliny konopi zawierającego delta-9-tetrahydrokannabinol |
CA2902452C (en) | 2013-02-28 | 2018-09-04 | Full Spectrum Laboratories Limited | Chemical engineering processes and apparatus for the synthesis of compounds |
US9095554B2 (en) | 2013-03-15 | 2015-08-04 | Biotech Institute LLC | Breeding, production, processing and use of specialty cannabis |
ES2525137B1 (es) | 2013-06-13 | 2016-01-18 | Servicio Andaluz De Salud | Agentes para tratar el mieloma múltiple |
WO2015003012A2 (en) | 2013-07-01 | 2015-01-08 | Olivier Berteau | Distributed perfusion bioreactor system for continuous culture of biological cells |
US9326967B2 (en) | 2013-08-22 | 2016-05-03 | Stephen C. Perry | Vaporizable cannabinoid compositions |
WO2015142500A2 (en) | 2014-03-21 | 2015-09-24 | Bodybio Inc. | Compositions and methods for treating addiction |
CA2956919C (en) * | 2014-07-21 | 2022-07-19 | Glia, Llc | Method for treating radiotherapy- and chemotherapy-associated cognitive or emotional impairment with cannabinoids |
US9394510B2 (en) | 2014-08-25 | 2016-07-19 | Full Spectrum Laboratories Limited | Apparatus and methods for the simultaneous production of compounds |
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