JP2019180392A - 青汁用の飲食用組成物 - Google Patents
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Landscapes
- Non-Alcoholic Beverages (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Cereal-Derived Products (AREA)
Abstract
Description
前記大麦は以下の条件(A)並びに、条件(B)〜(D)から選ばれる1以上を有する、青汁用の飲食用組成物。
(A)遺伝子マーカーTe945による判定においてセリンプロテアーゼCxp1の高発現型遺伝子を有する。
(B)遺伝子マーカーk09554-AvaIによる判定において縞萎縮病耐性遺伝子rym3を有する。
(C)遺伝子マーカーom2による判定においてうどんこ病耐性遺伝子ml-oを有する。
(D)遺伝子マーカーE31/M41による判定において縞萎縮病耐性遺伝子rym5を有する。
以下ではこのような大麦を、単に「特定の大麦」とも称する。
(A)遺伝子マーカーTe945による判定においてセリンプロテアーゼCxp1(以下単に「Cxp1」と記載することもある)の高発現型遺伝子を有する。
(B)遺伝子マーカーk09554-AvaIによる判定において縞萎縮病耐性遺伝子rym3(以下単に、「rym3」又は「遺伝子rym3」と記載することもある)を有する。
(C)遺伝子マーカーom2による判定においてうどんこ病耐性遺伝子ml-o(以下単に、「ml-o」又は「遺伝子ml-o」と記載することもある)を有する。
(D)遺伝子マーカーE31/M41による判定において縞萎縮病耐性遺伝子rym5(以下単に、「rym5」又は「遺伝子rym5」と記載することもある)を有する。
<セリンプロテアーゼCxp1の高発現型遺伝子>
本実施形態において、大麦が(A)の条件を満たすか否かはTe945と呼ばれるCAPS(Cleaved Amplified Polymorphic Sequences)マーカーに基づいて判定する。
Te945は、セリンプロテアーゼCxp1遺伝子における一塩基多型(Single Nucleotide Polymorphism(SNP))を利用した遺伝子マーカーであり、セリンプロテアーゼCxp1のmRNAの発現量の多寡に関わるeQTLマーカーとして報告されている(Funct. Integr.Genomics,(2006)6:p25-35)。この一塩基多型(SNP)の位置を、図1に示すセリンプロテアーゼCxp1遺伝子配列において二重下線部で示す。図1の配列は、遺伝子バンクDNA DataBank of Japan (DDBJ)においてアクセッションNo.CAJV010037927として開示されている配列の一部である。上記文献(Funct. Integr.Genomics, (2006)6:p25-35)には、大麦の遺伝子は、図1の二重下線部及びその周辺配列が図1のように「atgacattcttg」となっているタイプIIと、「atgacatccttg」となっているタイプIとに分かれていること、CxpIの発現レベルはタイプI>タイプIIであることが示されている。本実施形態においては、このSNP位置をはさむプライマーとして図2に示すプライマー(Fプライマー:配列番号2、Rプライマー:配列番号3)を用い、このプライマーで挟まれた領域をpolymerasechain reaction (PCR)で増幅し、「catcc」の配列を特異的に切断する制限酵素であるBseGIで処理した後、酵素処理後のDNA断片を電気泳動法に供し、DNA断片の塩基長を確認することによりセリンプロテアーゼCxp1高発現型遺伝子(タイプI)を有するか否かを確認する。図1の配列において、図2のプライマーに対応する位置を一重下線で示す。図1に示す配列において図2のプライマーを用いたPCRにより増幅される断片は382bpであり、低発現型の場合、上記の制限酵素処理後もこの塩基長の断片が観察される。一方、高発現型(catcc)配列を有する場合は、上記制限酵素で切断されることにより、より塩基長の小さなバンド(178bp)が検出されるようになる。より明確な判定のため前記の塩基長の小さなバンドが検出される場合は、202bpの位置に更に別のDNA断片(バンド)が観察されることが好ましい。
本実施形態において、大麦が(B)の条件に満たすか否かはrym3と連鎖するCAPSマーカーであるk09554-AvaIに基づいて判定される。具体的には、図4に示すプライマーにより増幅した増幅産物を、制限酵素AvaIで処理した場合、この酵素処理によりDNAが切断されることにより縞萎縮病耐性遺伝子rym3を有すると判定する。図3に、このプライマーにより増幅される遺伝子配列を示す。図3の配列において図4のプライマーを用いて増幅したバンド長は365bpであり、上記制限酵素で切断した場合には205bp及び156bpの2つのDNA断片に切断される。図3には、図4に示すプライマーに対応する部分を下線で示している。更に具体的には、大麦DNAを鋳型として図8に示すプライマーでPCRを行い、得られた増幅産物を制限酵素AvaIで処理し、処理物を電気泳動に供したときに205bpに相当する長さのフラグメント及び、156bpに相当する長さのフラグメントが確認された場合に、遺伝子rym3を有するものとする。
本実施形態において、(C)の条件を満たすか否かは、ml-o遺伝子の5'上流域(−2.3kb)の挿入/欠失変異(In/del変異)を検出する遺伝子マーカーとして報告されているom2を用いて判定する。本実施形態において、ml-o遺伝子を有するとは、om2により検出される挿入変異を有することを意味する。この挿入変異がなされた大麦遺伝子配列の例を図5に示す。図5に示す遺伝子配列はDDBJにおいてアクセッションNo.Y14573.1である遺伝子の一部である。図5において、二重下線部が挿入された配列である。また遺伝子マーカーom2による挿入/欠失変異の判定に用いられるプライマーとしてGenome.Vol.49,2006,p864-872において提案されているプライマーを図6に示し、更に、このプライマーに対応する配列を図5に一重下線で示す。図5に示す例において、挿入変異を有する遺伝子を図6のプライマーで増幅した場合のDNA断片の塩基長は約1000bpであり、挿入変異を有しない場合は約750bpである。このDNA断片の塩基長の違いによりml-oの有無を判定できる。具体的には、大麦のDNAを鋳型とし、図6に示すプライマーによるPCRにより増幅した増幅産物を電気泳動に供することで増幅産物の塩基長を確認できる。前記のプライマーによりPCRで増幅して得られた増幅産物を電気泳動に供したときに約1000bpのフラグメントが検出された場合に、遺伝子ml-oを有するものとする。
本実施形態では、大麦が(D)の条件を満たすか否かは、rym5と0.034cMで連鎖することが報告されているAFLP多型由来のSTSマーカーであるE31/M41に基づいて判定する。
rym5遺伝子座のeIF4E遺伝子の塩基配列の一部を図7に示す。図7に示す配列は、DDBJにアクセッションNo. AY661558として記載されている。本実施形態においては、E31/M41に由来するプライマーとして図8に示すプライマー(Theor. Appl. Genet.(2005)110:p283-293により報告されたもの)を用いたPCRを行い、PCR処理物を電気泳動に供し、DNA断片であるバンドの有無及びバンドの塩基長を確認することにより遺伝子rym5を有するか否かを確認する。図7には、図8に示すプライマーに対応する部分を下線で示している。図7に示す配列では、図8のプライマーを用いたPCRにより増幅される断片は436bpである。一方、遺伝子rym5を有しない大麦は通常当該PCRにより増幅産物は得られない。大麦DNAを鋳型とし前記図8に示すプライマーによりPCRで増幅して得られた増幅産物を電気泳動に供したときに436bpに相当する長さのフラグメントが検出された場合に、縞萎縮病耐性遺伝子rym5を有するものとする。
<遺伝子有無判定試験>
(1)大麦からDNAを抽出する。この抽出は適宜市販のキット等を用いて行うことができる。得られたDNA溶液は、DNA濃度が1ng/μL以上20ng/μL以下となるように濃度調整してPCRに供することが好ましい。
(2)(1)で得られたDNA液を鋳型としたPCRを行う。PCRは例えば下記表1の条件にて行うことが好ましい。プライマーとしては上述した図2、4、6及び8に記載のものを用いることができる。
得られた処理物を電気泳動のサンプルとする。電気泳動は適宜公知の方法にて行うことができる。
更に、本実施形態の青汁用の飲食用組成物は、上記の条件を満たす大麦の茎葉を用いていることによって、優れたα−グルコシダーゼ阻害作用を有するものとなる。α−グルコシダーゼは、ブドウ糖、デンプンなどの消化酵素であり、この酵素を阻害することによって、糖質の吸収が抑制され、糖質の体外排出を促進し得る。この結果、体内への余分なエネルギーの摂取が抑制され、体内への脂肪の蓄積を抑制し、さらには、体内に蓄積した脂肪を低減し得るため、優れたダイエット作用を有する。本明細書において、ダイエット作用とは、ヒト等の哺乳類の身体に、肥満の予防、防止若しくは低減、痩身又は体重低減をもたらす作用を指す。また、本明細書でいうダイエット作用には、α−グルコシダーゼ阻害作用に起因し、肥満の予防、防止若しくは低減、痩身又は体重低減をもたらす作用である体脂肪低減、体脂肪蓄積抑制、内臓脂肪低減、内臓脂肪蓄積抑制、皮下脂肪低減、皮下脂肪蓄積抑制等の作用も含む。このため、本実施形態の青汁用の飲食用組成物は、優れたα−グルコシダーゼ阻害作用を有することで、糖の消化吸収抑制効果、血糖値上昇抑制効果、糖尿病および糖尿病合併予防効果、ダイエット効果が期待できる。
従って、本実施形態の青汁用の飲食用組成物は、コラーゲン分解酵素阻害用途、コラーゲン低減抑制用途、コラーゲン保持用途、関節痛、炎症などの低減用途や皮膚のシワ防止用途、皮膚の潤滑性や柔軟性、保水性の向上用途、美容用途、糖の消化吸収抑制用途、血糖値上昇抑制用途、糖尿病又は糖尿病合併症の予防用途、ダイエット用途から選ばれる1又は2以上の用途に使用することができる。
複数品種の種子について、上記<遺伝子有無判定試験>を行った。つまり、上記表1に示す遺伝子マーカーを用いる上記の方法にてDNA抽出、PCR及び必要に応じた制限酵素処理並びに電気泳動を行った。具体的な条件・手順は以下の通りとした。
・DNA抽出:品種の異なる複数の大麦植物体それぞれから、複数の種子を採取した。一つの植物体に由来する複数の種子の一部についてDNA抽出した。DNA抽出は、Dneasy PlantMini Kit(QIAGEN)を用いた。抽出方法はキットに付属のプロトコル通りとした。
・PCR:上記で得られたDNAをDNA濃度が7.5ng/μLとなるようにNuclease Free Waterで希釈してPCRに用いた。PCRは上記濃度調整後のDNA液を鋳型として下記各試薬を下記表2の用量にて混合し、得られた液について上記表1の条件にて行った。なお表2中、Ex Taq及びそのバッファはタカラバイオ社の製品である。
を微量加えて再度攪拌した。専用の型を用いてアガロースゲル(以下、AGE)を形成した。泳動槽(Mupidαミニゲル泳動槽;アドバンス)に0.5xTBE Buffer、AGEを入れた。ゲルが浸るまで0.5xTBE Bufferを入れた。6x Loading Buffer(タカラバイオ社) 1μL、サンプル 5μLを混和した後、AGEの各ウェルへそれぞれアプライした。100Vにて、適時泳動を行った。
収穫した大麦の茎葉を水洗いし、付着した泥などを除去し、次いで5cm程度の大きさに切断する前処理を行った。前処理した茎葉を、90〜95℃の熱湯で約100秒間、1回のみブランチング処理し、その後、冷水で冷却した。続いて、得られた茎葉を、水分量が5質量%以下となるまで、乾燥機中で、70〜80℃の温風にて乾燥させた。乾燥した茎葉を、ミキサーを用いて約1mmの大きさに粗粉砕処理し、次いでジェットミル粉砕機を用いて微粉砕処理することにより、大麦の茎葉の粉砕末を得た。
(1)粉末状の青汁用の飲食用組成物をオートクレーブした後、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)にて4mg/mLに調製し、最終濃度の4倍濃度のサンプル液を調製した。このサンプル液を96well black plateへ50μL/well添加した。但し、一部のwellではコントロールとして、サンプル液の代わりにPBS50μLを添加した。
(2)96well black plateに、更に酵素溶液(Test)または0.1質量%BSA含有D-PBS(-)(Blank)を100μL/wellで添加し、37℃で10分間インキュベートした。なおD-PBS(-)は和光純薬製のタブレット型PBS(型番T900)1錠を100mLの純水に溶解した溶液であり、これにアルブミン(ウシ血清由来コーンフラクションV、和光純薬製)を溶解して濃度0.1質量%としたものが0.1質量%BSA含有D-PBS(-)である。また酵素溶液はCollagenase B(Roche)が10mg/mL入ったD-PBS(-)溶液を0.1質量%BSA含有D-PBS(-)にて濃度10μg/mLに希釈したものである。
(3)インキュベート後の96well black plateに、蛍光基質溶液(MOCAc-Pro-Leu-Gly-Leu-A2pr(DNP)-Ala-NH2(ペプチド研究所)の1mM DMSO溶液を0.1質量%BSA含有D-PBS(-)で5μMに調製したもの)を50μL/wellで添加し、遮光して37℃、60分間インキュベートした。
(4)マイクロプレートリーダーを用いて、320nmで励起し、405nmにおける蛍光強度を測定した。
(5)測定した蛍光強度を用いて、下記式にてコラゲナーゼ阻害率を算出した。結果を図10に示す。
コラゲナーゼ阻害率(%)=[1− (Sampletest - Sampleblank)/(Controltest- Controlblank)]×100
なお上記式で、Sampletestはサンプル液及び酵素溶液を添加したwellの蛍光強度、Sampleblankはサンプル液を添加し、酵素溶液未添加(0.1%BSA含有D-PBS(-)添加)であるwellの蛍光強度、Controltestはサンプル液未添加(PBSを添加)であり酵素溶液を添加したwellの蛍光強度、Controlblankはサンプル液及び酵素溶液が未添加であるwellの蛍光強度である。
実施例1〜3、比較例1及び2の青汁用の飲食用組成物のα−グルコシダーゼ阻害作用を以下の方法で評価した。
実施例1〜3、比較例1及び2の青汁用の飲食用組成物を80μL分取し、サンプル液とした。次いで、このサンプル液に40μLの0.02Mの基質水溶液(基質:p−ニトロフェニル−α−Dグルコピラノシド;和光純薬工業社)を添加して37℃で5分間保持した。
α−グルコシダーゼ阻害率(%)=(1−[A−C]/[B−D])×100
結果を図10に示す。図10に示すとおり、実施例1〜3の青汁用の飲食用組成物は、比較例1及び2に比べて優れたα−グルコシダーゼ阻害作用を有することがわかった。従って、実施例1〜3の青汁用の飲食用組成物は優れたダイエット効果を有する。
[製造例1](インスタント飲料用顆粒の製造)
下記成分を混合してインスタント飲料用顆粒3gを製造した。得られたインスタント飲料用顆粒を、水100mLに溶解して服用することで、優れた美容効果が得られる。
難消化性デキストリン 5質量%
エリスリトール 5質量%
香料 2質量%
デキストリン 残部
[製造例2](インスタント飲料用顆粒の製造)
下記成分を混合してインスタント飲料用顆粒4gを製造した。得られたインスタント飲料用顆粒を、水100mLに溶解して服用することで、優れた美容効果が得られる。
ケール粉砕末 10質量%
抹茶 3質量%
トレハロース 20質量%
ビタミンB 0.2質量%
ビタミンC 0.2質量%
デキストリン 残部
Claims (2)
- 大麦の茎及び/又は葉を用いた青汁用の飲食用組成物であって、
前記大麦は以下の条件(A)を満たし、更に条件(B)〜(D)から選ばれる1以上を満たす、青汁用の飲食用組成物。
(A)遺伝子マーカーTe945による判定においてセリンプロテアーゼCxp1の高発現型遺伝子を有する。
(B)遺伝子マーカーk09554-AvaIによる判定において縞萎縮病耐性遺伝子rym3を有する。(C)遺伝子マーカーom2による判定においてうどんこ病耐性遺伝子ml-oを有する。
(D)遺伝子マーカーE31/M41による判定において縞萎縮病耐性遺伝子rym5を有する。 - 前記大麦は(B)縞萎縮病耐性遺伝子rym3を有する、請求項1に記載の青汁用の飲食用組成物。
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