JP2018510209A - 治療剤としてのヒトヘリカーゼddx3阻害剤 - Google Patents
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Abstract
Description
ウイルスは、偏性細胞内寄生体であり、したがって、複製するために宿主の代謝機構を利用する(Alquistら、2003年、Prussiaら、2011年)。そのような特殊な能力は、ウイルス及び細胞機構の重要な成分の間の特異的相互作用に基づく。ゲノムワイドトランスクリプトーム解析及びsiRNAスクリーニングにより、ウイルス感染への反応に関与し、かつ/又は、ウイルスのライフサイクルに重要である宿主のタンパク質の数は、HIV-1(M. Friedrichら、2011年)及びHCV(Ruppら、2014年)のようなウイルスに関して、1,000種を超えることが明らかになっている。経路のうち、ウイルスにより標的化されることが常に見られるものは、先天性免疫応答及びRNA代謝に関与する経路である。宿主-病原体相互作用の複雑なネットワークを理解することにより、ウイルス感染を処置するための新たな道が開かれる可能性があり、その上、ウイルスの複製に不可欠の細胞因子を同定することにより、ウイルス感染を処置する代替手段に関する、まったく新しい標的が得られる。ウイルス感染の細胞の補因子を標的化することは、細胞のタンパク質がウイルスタンパク質よりも変異しにくいので、原則として、薬物耐性が発生することを制限できる(Garbelliら、2011年)。標的タンパク質の正常な細胞機能を阻害することで重篤な副作用の可能性を制限するためには、ウイルスに絶対に不可欠であるが、細胞にはそうではないタンパク質を選択すること、及び、標的タンパク質の特異的機能のみを標的化する、又は、ウイルスの相互作用界面を直接的に標的化することが重要である。
えれば、これは、新規な抗ウイルス化合物を開発する上で絶好の標的である。DDX3を標的化すると、HCV及びHIVに同時感染した患者の比較的大規模なコホートにおいて、それらを同時に処置する可能性さえも得られる場合がある。
DEAD-ボックスヘリカーゼは、あらゆる態様のRNA代謝に関与する。その役割は、RNAの巻き戻し、すなわち二次構造モチーフの除去、短いRNA-RNA相互作用の巻き戻し、また、RNA結合タンパク質の除去と考えられており(Yangら、2006年)、DDX3は、名前の由来となるAsp-Glu-Ala-Asp(D-E-A-D)モチーフを含むRNAヘリカーゼスーパーファミリーのメンバーを特徴とする全9種の保存モチーフを、2つのRecA様ドメインを形成する構造的に保存されたコアエレメント内に含有するATPアーゼ/RNAヘリカーゼである。保存ヘリカーゼモチーフは、ATP結合、ATPアーゼ活性、RNA基質結合及び巻き戻しに関与する(Linderら、2004年)。DDX3の結晶構造は、これらの保存モチーフが、短いフレキシブルリンカーを経由してつながる2つのサブドメインで見出されていることを示す。DDX3は、N末端に核外輸送シグナル(NES)を含有する。アミノ末端ドメイン1は、ATP結合モチーフQ、I(ウォーカーA)及びII(ウォーカーB)並びにRNA結合モチーフIa、Ib及びモチーフIIIを含有する。RNA結合モチーフIV、V及びモチーフVIは、ATPアーゼ及び巻き戻し活性を調和させることができ、カルボキシル末端ドメイン2で見出されている。
DDX3は、多くの細胞の代謝経路に関与すると想定されている。最近の証拠から、DDX3は、2つの他のシャトルタンパク質、CRM1及びTAPと関連して、mRNA核外輸送に関与することが示唆されている。提起されている機構は、DDX3が核のmRNA及びTAPに結合し、続いて、細胞質へのmRNP輸送の促進を援助する機構である。CRM1との相互作用は、HIVの、スプライシングされていない又はスプライシングが不完全なRNAの輸送にのみ重要と考えられている(Kohler Aら、2007年)。DDX3は、翻訳開始因子eIF4E、eIF4A、eIF4G、PABP及びeIF3と相互作用する。最近、Marsden及び共同研究者により、5'-UTR内に特異的な構造的特徴を保有する細胞及びウイルスmRNAの特異的サブセットの翻訳の向上におけるDDX3の役割が実証された。
DDX3は、E-カドヘリンを下方調節し(Botlaguntaら、2008年)、それぞれのプロモーターとの相互作用によりインターフェロン(IFN)及びp21の発現を刺激する(Schroderら、2008年)。IFNプロモーターにおけるDDX3の効果は、ATPアーゼ活性又は巻き戻し機能とは無関係であるが、ATPアーゼ機能はp21プロモーターの刺激を必要とする。
先天性免疫系は、エンドソームサブセットのToll様受容体(TLR)及びRIG様ヘリカーゼ(RLH)を介して、細胞質内ウイルスの核酸を感知することによるウイルス感染の早期検出に貢献する。いずれの受容体系も、転写因子NF-kB及びIRF3及びIRF7の活性化を引き起こし、ひいては、抗ウイルス性のI型インターフェロンの産生を刺激する。DDX3は、IRF3及びIRF7をリン酸化及び活性化する重要なキナーゼである、プロテインキナーゼIKKε及びTBK-1と相互作用する。興味深いことに、DDX3のこの機能は、ATPアーゼ依存性(Schroderら、2008年)である。更に、DDX3は、RLHシグナル伝達を促進するアダプタータンパク質であるIPS-1と相互作用すること、及びTBK1によるリン酸化反応に続いて、ifnbプロモーターに直接結合することが見出されている。したがって、ヒトDDX3がIFNβの誘導に寄与する確かな証拠はあるが、シグナル伝達経路における正確な位置及び作用機序は明らかになっていない。Schroederらは、DDX3が、IKKε及びIRF3の同時活性化を媒介する下流スキャフォールディングアダプターとして作用するIKKεの活性化を直接的に向上させることを示唆している。HIVの感染に続く、TLR7媒介性IFNαの産生は、過剰な免疫活性化及び免疫病理に寄与することが示されている。したがって、DDX3は、HIV病変に寄与する過剰な免疫活性化にも関与し得、DDX3を阻害すると、HIV感染症に関して二重の利益があり得ることが示唆される。
マウスNVを、遺伝学的に近縁のヒトNVに対する代用モデルとして、最近開発されたヒトNVレプリコンシステムと共に使用することにより、細胞培養におけるNVゲノム翻訳及び複製の機構を試験した。Vashist及び共同研究者は、DDX3が、細胞で複製中のNV RNAゲノムに関連することを最近実証している。重要なことに、NV複製中のDDX3は、大まかに分散した細胞質染色から、ウイルス複製部位に部分的に重複した、更に強調された染色に再分配され、DDX3発現をサイレンシングすると、ウイルス複製は有意に低下する。定量SILACベースのプロテオミクスから、DDX3は、NV複製複合体で濃縮されることが確認された。
HIV-1の複製は、この初期の転写産物の、スプライシングされていない、1回スプライシングした、及び複数回スプライシングした誘導体の核外輸送及び翻訳を必要とする。完全にスプライシングしたmRNAは、ウイルスの調節タンパク質Tat、Rev及びNefをコードする。Revは、シークエンスに特異的な核mRNA-輸送因子であり、これは、Rev反応エレメント(RRE)に結合して、Rev/RNA複合体の核外輸送を、細胞輸送受容体CRM1及び細胞補因子DDX3との相互作用により媒介する。DDX3の発現は、ウイルスの転写活性化物質TatによりHIV-1感染細胞で誘導されることが見出され、DDX3をサイレンシングすると、スプライシングされていない/部分的にスプライシングしたHIV-1転写産物の輸送は止まった(Yedavalli、2004年)。しかし、この経路で機能するDDX3分子の詳細は、まだ完全に明らかになっていない。例えば、DDX3は、細胞の内因性転写産物のCRM1依存性輸送に必要とされず、DDX3のこの機能は、HIV-1 RNAに特異的であり得るという興味深い可能性を浮き彫りにする。ウイルスをRNA輸送する役割に加えて、Ohlmann及び共同研究者は、DDX3をノックダウンすると、スプライシングされていないゲノムRNAの翻訳において、特異的阻害が生じることを示している。興味深いことに、HCV及びノロウイルスに対して示されているように、DDX3は、HIV-1ゲノムRNAを共局在化する細胞質の強調した染色でも見出される。
いくつかの-ssRNAウイルス、例えばラッサウイルス及び肺炎ウイルスのライフサイクルにおけるDDX3の関与が説明されている(Eastonら、2015年)。フィロウイルス科(Filoviridae)ファミリーは同分類のウイルスに属し、エボラ及びマールブルグウイルスを含む。2014〜2015年の西アフリカにおけるエボラ大流行は、流行の拡散及びバイオテロリズムの危険性についての不安を募らせた;更に、2015年末には疾患の終息が宣言されているが、最近は新たな症例が報告されている。DDX3の阻害は、感染の影響を制限し、ウイルスの複製の阻害により拡散を止める可能性がある。
第IV群ウイルスは、タンパク質に直接翻訳できるプラスセンスRNAゲノムを特徴とする。プラスRNA鎖は、RNA依存性ポリメラーゼの鋳型としての機能を果たし、鋳型としての機能を果たす二重らせん構造RNAが得られる。
HCVは、細胞質で複製するプラス鎖RNAゲノムを保有する。ウイルスのRNA複製複合体は、ER由来膜及び脂肪滴(LD)で構成されるいわゆる膜性ウェブ(membranous web)に関連する。膜性ウェブの正確な組成物は、現在不明であるが、宿主並びにウイルスのいくつかの因子を含有すると考えられる。Owsianka及び共同研究者は、HCV核タンパク質は、LDにおけるウイルス複製/集合部位へと、通常の拡散している細胞質が分布することから、DDX3を特異的に隔離することを示している。DDX3(Y35)との相互作用に重要である核タンパク質における重要な残基の1つが変異することで、核-DDX3の相互作用は、ウイルスの増殖及び形態形成に重要ではないが、DDX3自体はウイルス複製に不可欠であることが示された。HCV感染に関するDDX3のこの二重の役割により、更なる調査が必要になる。一方、HCVによるDDX3の隔離は、DDX3の細胞機能に影響を与えやすい。したがって、HCV感染が、DDX3依存性遺伝子発現を変化させる方法を調査することは重要になるであろう。これにより、HCVが、抗ウイルス免疫応答におけるDDX3の役割を操作するか否か、及び、DDX3の隔離が肝細胞癌の発現に結び付くか否かが明らかになるであろう。
日本脳炎ウイルス(JEV)は、フラビウイルス科であるファミリーに属し、イエカ属(culex)のカにより動物及びヒト宿主の間で伝播する。日本脳炎は、東及び南アジア並びに環太平洋地域各地で頻発している(Usha Kant Misraら、2010年)。Mao及び共同研究者により、細胞のヘリカーゼDDX3は、JEV複製に関与することが最近実証された。実際に、DDX3のノックダウンによるJEVの複製の阻害から、DDX3のヘリカーゼ活性が、ウイルスの複製に欠かせないことが示唆されている。GST-プルダウン及び共免疫沈降法実験により、DDX3は、JEV非構造タンパク質3及び5と相互作用できることが実証された。共免疫沈降法及び共焦点顕微鏡法分析により、DDX3が、感染中にこうしたウイルスタンパク質及びウイルスRNAと相互作用し、共局在化することが確認された。更に、共免疫沈降法及び共焦点顕微鏡法分析により、DDX3は、非翻訳領域のJEV 5'及び3'に結合すると判定された。JEV-レプリコンシステムを使用して、DDX3はウイルスのRNA翻訳を正に調節し、それによってウイルス感染の後期段階におけるウイルスのRNA複製に影響を与え得ると、共免疫沈降法及び共焦点顕微鏡法分析により実証されている。
5種の血清型のうち1種のデングウイルス(DENV)が、デング熱の原因となる。これは、フラビウイルス科であるファミリー;フラビウイルス属の、カ媒介性の単一のプラス鎖RNAウイルスである。全5種の血清型は、あらゆる範囲の疾患を引き起こすことができる。細胞のタンパク質がDENV感染に必要とされるかどうかを判定するために、Khadka及び共同研究者は、低分子干渉RNAを使用して、その発現を阻害した。そのうち、DDX3は、DENVレプリコンの複製に関して有意な低下を引き起こした。
西ナイルウイルス(WNV)は、ヒトでは死亡率が最大10%である中枢神経系の重篤かつ潜在的に致死性の感染症を引き起こし得るフラビウイルスである。ウイルスは、カ及び野鳥により伝播し得る。ヒトは、主にカの刺咬を介して感染するが、感染症は、臓器移植及び血液により発生し得る。
幼虫のサナダムシが重要臓器において増殖することによって引き起こされるエキノコックス症(包虫症)及び嚢虫症は、ヒトにおける寄生虫性疾患の中でも最も重度であり、世界保健機関により優先順位を付けられている、顧みられない熱帯病17種のうち2種を占める。幼虫のサナダムシは、ヒト宿主において数十年間無症状で持続することがあり、最終的には様々な衰弱性病理及び死亡を引き起こす。診断して、手術がもはや選択肢にない場合、疾患は進行期であることが多い。サナダムシ感染症は、世界中で非常に頻発し、ヒト疾患の負荷量は、100万例での障害調整生存年数がアフリカ睡眠病、糸状虫症及びデング熱と同程度と評価されている。サナダムシ(扁形動物(Platyhelminthes)、条虫綱(Cestoda))は、宿主の間で受動的に伝播し、事実上すべての脊椎動物種に寄生する。最近、Brindley及び共同研究者により、vasaは条虫綱及び吸虫綱(trematodes)のゲノムにない一方、3種のDDX3様遺伝子、Smvlg1、Smvlg2及びSmvlg3が、マンソン住血吸虫(S. mansoni)における特徴とされることが特定された。こうしたDEAD-ボックスヘリカーゼの発現プロファイルから、これらは、GMP及び幹細胞の維持に関連した機能を含むVasaと同様の役割を行うことが示唆されている。Smvlg3のサイレンシングにより、このDDX3様酵素は、分子署名をプラナリアの新生芽細胞と共有する細胞集団(成体全能幹細胞)であるスポロシストにおける胚細胞の増殖及び維持に必要であることが指し示された。Smvlg1、Smvlg2及びSmvlg3は、vasaの役割を担うことができ、プラナリアの新生芽細胞と一緒に他の後生動物のGMPと同様の署名を表す。これらの観察を踏まえると、住血吸虫属(schistosomes)におけるこれらのDDX3様RNAヘリカーゼが、piRNA経路におけるVasaの役割を行い得ることは妥当と思われる。これらの理由から、サナダムシ感染症を処置するためのDDX3阻害剤の開発により、魅力的な方略が表され得る。
1.in vitroでDDX3の酵素活性を選択的に抑制する能力;
2.感染細胞においてHIV-1複製を抑制する能力;
3.感染細胞においてHCV複製を抑制する能力;
4.感染細胞においてJEV複製を抑制する能力;
5.感染細胞においてWNV複製を抑制する能力;
6.感染細胞においてDENV複製を抑制する能力;
7.感染細胞においてNOROV複製を抑制する能力;
8.感染細胞においてPRRSV複製を抑制する能力;
9.感染細胞においてエボラウイルス(EBOV)複製を抑制する能力;
を示した。
X及びYは、それぞれ独立してC又はNであり;
Aは、非置換若しくは置換アリール又は非置換若しくは置換ヘテロアリールであり、
アリール又はヘテロアリールにおける1個又は複数の置換基は、非置換若しくは置換C1〜C6アルキル、非置換若しくは置換C2〜C6アルケニル、非置換若しくは置換C2〜C6アルキニル、ハロアルキル、ハロゲン、ORA、SRA、S(=O)(=O)-RA、SO2NHRA、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、NHC(O)RA、COONRARB、OS又は
C1〜C6アルキル又はC2〜C6アルケニル又はC2〜C6アルキニルにおける1個又は複数の置換基は、ORA、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、NHC(O)RA、NHC(O)ORA、COONRARB、SRA、S(=O)(=O)-RA、SO2NHRAから独立して選択され;
R1、R2、R3、R4、R6、R7及びR10は、H、ハロゲン、アルコキシ、C1〜C6アルキル、ハロアルキル、ORA、SRA、S(=O)(=O)-RA、SO2NHRA、COORB、OC(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、NHC(O)RA、COONRARB、NO2、CNからそれぞれ独立して選択され、
X及び/又はYがNである場合、R2、R4、R7及びR10は存在せず;
Zは、
R5は、H、非置換又は置換C1〜C10アルキル又はC1〜C8ハロアルキル、非置換又は置換フェニルであり、
C1〜C10アルキルにおける1個又は複数の置換基は、ハロゲン、ORA、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、OC(O)NRARB、NHC(O)ORA、NHC(O)RA、COONRARB、OC(O)CHCHRC、
ハロアルキルにおける1個又は複数の置換基は、アルコキシ、フェニル、OH、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、OC(O)NRARB、NHC(O)ORA、NHC(O)RA、COONRARB、OC(O)CHCHRCから独立して選択され、
フェニルにおける1個又は複数の置換基は、ハロゲン、ハロアルキル、アルコキシ、C1〜C3アルキル、OHから独立して選択され;
RA及びRBは、H、C1〜C6アルキル、非置換若しくは置換アラルキル、ハロアルキルからそれぞれ独立して選択され、
又はRA及びRBは、それらが結合する窒素と一緒に、N、S及びOから独立して選択される1個若しくは複数の追加のヘテロ原子を任意選択で含有する4〜7員環の飽和若しくは部分不飽和環を形成し、該環は、ハロゲン、C1〜C6アルキル、ハロアルキル、OH、アルコキシから独立して選択される1個、2個若しくはそれ超の基で、任意選択で置換されており;
RCは、置換又は非置換フェニル、1,3ベンゾジオキソリルであり、フェニルにおける1個又は複数の置換基は、ハロゲン、ハロアルキル、アルコキシ、C1〜C3アルキル又はOHから独立して選択され;
フェニルにおける1個又は複数の置換基は、ハロゲン、ハロアルキル、アルコキシ、C1〜C3アルキル、OHから独立して選択され;
R8及びR9は、H、ハロゲン、アルコキシ、COOH、ニトロからそれぞれ独立して選択され、R8及びR9の少なくとも1つは、
- モルホリニル
- ピペラジニル
から選択され、
C1〜C6アルキル、ハロアルキル、OH、アルコキシから独立して選択される1個、2個又はそれ超の基で、任意選択で置換されている。
RA及びRBは、それらが結合する窒素と一緒に:
- モルホリニル
- ピペラジニル
から選択される6員環の飽和環を形成し、該環は、C1〜C6アルキル、ハロアルキル、OH、アルコキシから独立して選択される1個、2個又はそれ超の基で、任意選択で置換されている。
Aは、フェニル、ピリジニル又はイソキノリニルであり、好ましくは、メチル、イソプロピル、CF3、F、Cl、OH又はOMeから独立して選択される1個、2個又はそれ超の基で、それぞれ独立して置換されており、
R5は、ブチル、tert-ブチル、メチル、エチル、イソペンチル、n-ヘキサニル、フェニル、CH2OH、CH2CH2OH、CH2CH2OCH3、CH2OCH2CH3、CHOHCH(CH3)(CH2CH2CH3)、CH2CH2COOH、CH2CH2CH2N(CH3)2、CH2NRARB、CH2CH2NRARB、CH2CH2CH2NRARB、CH2CH2N(CH3)CH2C6H5、CH2CH2OP(O)(OCH3)2、CH2CH2OC(O)CHCH-(ベンゾ[d][1,3]ジオキソール-5-イル)、CH2CH2OC(O)CH2CH(CH3)2、C4F9、CH2CH2CH2F、CHFCH(CH3)(CH2CH2CH3)又は
RA及びRBは、それらが結合する窒素と一緒に:
- モルホリニル
- ピペラジニル
から選択される6員環の飽和環を形成し、該環は、C1〜C6アルキル、ハロアルキル、OH、アルコキシから独立して選択される1個、2個又はそれ超の基で、任意選択で置換されており、
X及びYはCであり、
R1、R3、R4はHであり、
R2は、H、F又はOMeである。
Aはフェニルであり、好ましくは、メチル、イソプロピル、CF3、F、Cl、OH又はOMeで置換されている。
Aはフェニルであり、好ましくは、メチル、イソプロピル、CF3、F、Cl、OH又はOMeで置換されており、
R5は、H、ブチル、イソペンチル又はCH2OCH2CH3であり、
X及びYはCであり、
R6、R7及びR10はHである。
Aはフェニルであり、好ましくは、メチル、イソプロピル、CF3、F、Cl、OH又はOMeで置換されており、
R5は、H、ブチル、イソペンチル又はCH2OCH2CH3であり、
X及びYはCであり、
R6、R7及びR10はHである。
Aはイソキノリニルであり、
R5は、H、ブチル、イソペンチル又はCH2OCH2CH3であり、
X及びYはCであり、
R6、R7及びR10はHである。
R8又はR9のもう一方はHであり、
Aはフェニルであり、好ましくは、メチル、イソプロピル、CF3、F、Cl、OH又はOMeで置換されており
R5はHであり、
X及びYはCであり、
R6、R7及びR10はHである。
X及びYはCであり、
R6、R7及びR10はHである。
「置換されている」という用語は、特定された基又は部分が、独立して炭素原子、窒素原子又は他の原子のそれぞれにおいて、水素原子を有し、独立して置換基で置き換えられ得ることを意味する。
合成
概要
試薬は、商業的供給業者(例えばSigma-Aldrich社)から得た。すべての市販の化学物質を、更なる精製をせずに購入したままで使用した。CH3CNは、水素化カルシウムで脱水し、CH2Cl2は、水素化カルシウムで脱水し、THFは使用する前にNa/ベンゾフェノンで脱水したが、DMFは既に無水で入手した。無水反応は正圧の乾燥N2又はアルゴン下で、実行した。TLCは、Merck社TLCプレートシリカゲル60 F254を使用して実行した。クロマトグラフの精製は、フラッシュ技術のためのMerck社のシリカゲル60、23-400メッシュをパックしたカラムで行った。1H-NMR及び13C-NMRスペクトルを、400MHzのBrucker社Avance DPX400分光計で記録した。化学シフトは、0.00ppmでのテトラメチルシランに対して、報告されている。1Hパターンは、以下の略語:s=一重線、d=二重線、t=三重線、q=四重線、quint=五重線、sx=六重線、sept=七重線、m=多重線、br=幅広シグナル、br s=幅広一重線を使用して記載されている。
マイクロ波照射実験は、CEM社Discover Synthesis Unit(CEM Corp.社、Matthews、NC)を使用して実施した。この機械は、連続フォーカスマイクロ波電力伝送系と、操作者が選択可能な0から300Wの出力からなる。反応容器下に取り付けた較正した赤外温度コントロールを使用して、内容器の温度をモニターした。これにより容器の内容物が、マイクロ波空洞の底面下に位置する、回転する磁気プレート及び容器中のテフロン(登録商標)コーティングした電磁撹拌棒によって撹拌されることによる撹拌オプションを使用して、すべての実験を行った。
適正なアニリン2又は72(3.62mmol)を、無水CH2Cl2(10mL)中の適正なイソシアネート1又は1a(5.43mmol)の溶液に一度に添加した。溶液を窒素雰囲気下で60℃にて4時間撹拌した。黄色沈殿物を濾過し、冷DCM及び石油エーテルで洗浄し、高真空下で乾燥させて、望ましい生成物を白色固体として得た。
適正な尿素3a又は3b(1.10mmol)を、30mLの無水MeOH中で可溶化し、炭上パラジウム(50mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌し、次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、溶媒を減圧で蒸発し、残留物をアセトニトリルから結晶化した。
適正なアニリン4a又は4b(0.41mmol)を、CH3CNに溶解し、氷塩浴で0℃に冷却した。この撹拌した溶液に、tBuONO(0.61mmol)を添加し、混合物を10分間撹拌し、この後、TMSN3(65μL、0.49mmol)を10分間滴下添加し、生じた褐色溶液を室温にて撹拌した。1時間後、溶媒を減圧で除去し、残留物をフラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製した。1-(4-アジドフェニル)-3-o-トリル尿素(5a)。(精製溶離液:DCM-MeOH、9:1)。収率67%1H NMR (400 MHz, CDCl3-d) δ 9.10 (s, 1H), 7.91 (s, 1H), 7.80-7.78 (d, J= 8.0 Hz, 1H), 7.50-7.48 (d, J= 8.0 Hz, 2H), 7.16-7.19 (m, 2H), 7.04-7.02 (d, J= 8.0 Hz, 2H), 7.95-7.91 (t, J= 8.0 Hz, 1H), 2.22 (s, 3H) ppm. MS (ESI) m/z 267 [M+Na]+, 557 [2M+Na]+.
適切なアルキン(0.10mmol)及びアジド5(25mg、0.09mmol)を、小型電磁撹拌棒を備えた10mLガラスバイアル中において、水及びt-BuOH(各1.5mL)の1:1の混合物中で懸濁した。これに、アスコルビン酸ナトリウム(0.1当量)及び硫酸銅(II)五水和物(0.10mmol)を添加した。次いで、混合物を、マイクロ波照射下で125℃にて、300Wの照射電力を使用して10分間加熱した。この後、沈殿物を濾別し、シリカ上で精製して、最終生成物8a、8b、8c、8d又は8eを得た。
L-プロリン(1.9mg、0.01mmol)、CuCl(8.2mg、0.08mmol)、K2CO3(13.7mg)、アジド(20mg、0.08mmol)、適切なアルキン酸(0.08mmol)を順次、電磁撹拌機を備えた10mLガラスバイアルに添加した。バイアルを隔壁で閉鎖し、65℃にて照射した。15分後、混合物を、水20mLとAcOEt(40mL)との間で分配し、有機層を分離し、乾燥させ(Na2SO4)、溶媒を真空で除去して、褐色残留物を得、これを、フラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル(DCM-MeOH、98:2)上で精製して、望ましいトリアゾール化合物8e又は8fを得た。
適切なアルキン(0.10mmol)及びアジド13(25mg、0.09mmol)を、小型電磁撹拌棒を備えた10mLガラスバイアル中において、水及びt-BuOH(各1.5mL)の1:1の混合物中で懸濁した。これに、アスコルビン酸ナトリウム(0.1当量)及び硫酸銅(II)五水和物(0.10mmol)を添加した。次いで、混合物を、マイクロ波照射下で80℃にて、300Wの照射電力を使用して5分間加熱した。この後、沈殿物を濾別し、シリカ上で精製して、最終生成物15a又は15bを得た。
適切なアルキン30a〜h(4.34mmol)及びアジド16(594.11mg、3.62mmol)を、小型電磁撹拌棒を備えた10mLガラスバイアル中において、水及びt-BuOH(各1.5mL)の1:1の混合物中で懸濁した。これに、アスコルビン酸ナトリウム(1.81mmol)及び硫酸銅(II)五水和物(1.81mmol)を添加した。次いで、混合物を、マイクロ波照射下で120℃にて、300Wの照射電力を使用して10分間加熱した。この後、沈殿物を濾別し、シリカ上で精製して、望ましいトリアゾール化合物17a、17b、17c、17d、17e、17f、17g又は17hを得た。
適正なトリアゾール化合物17a〜f又は18g(400mg、1.60mmol)を、30mLの無水MeOH中で可溶化し、10%炭上パラジウム(25mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌し、次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、溶媒を減圧で蒸発し、残留物を、適正な溶離液を用いるフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカゲル上で精製した。
適正なアニリン19a〜h(100mg、0.46mmol)を、無水CH2Cl2(10mL)中の適切なイソシアネート(85μL、0.65mmol)の溶液に一度に添加した。溶液を窒素雰囲気下で、室温にて4時間撹拌した。溶媒を減圧で除去し、残留物を、適正な溶離液を使用するフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。
300mLの水中のNaOHの200gの撹拌溶液(0.3mol、16.8g)に、適正なアルコール(2.5mL、33.02mmol)を添加した。これに、対応する硫酸塩(15mmol、2082mg)を2時間でゆっくり滴下添加し、混合物を50℃にて加熱した。最終生成物を留去し、蒸留を95℃にて止め、次いで受け皿の内容物を冷NH4Cl水溶液で洗浄し、分離した。
適切なアルキン(6.08mmol)及びアジド16(831mg、5.07mmol)を、小型電磁撹拌棒を備えた10mLガラスバイアル中において、水及びt-BuOH(各1.5mL)の1:1の混合物中で懸濁した。これに、アスコルビン酸ナトリウム(2.5mmol)及び硫酸銅(II)五水和物(2.50mmol)を添加した。次いで、混合物を、マイクロ波照射下で125℃にて、300Wの照射電力を使用して10分間加熱した。この後、溶媒を減圧で除去し、水を添加し、混合物をEtOAc(3×20mL)で抽出した。有機層を収集し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水した。粗製物を、適正な溶離液を使用するフラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製して、望ましいトリアゾール化合物31a、31b、31c、31d又は31eを得た。
塩化トシル(1.88mmol、359.00mg)、KOH(4.28mmol、240.39mg)及び適正なアルコールを、窒素雰囲気下で0℃にて、氷塩浴中の15mLの無水THF中で撹拌した。30分後、反応混合物を室温にて撹拌した。12時間後、溶媒を減圧で除去し、水を添加し、反応混合物をDCM(100mL×3)で抽出した。合わせた有機層をブラインで洗浄し、乾燥させ(Na2SO4)、濃縮した。残留物を、フラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル(PE/EtOAc、5:3)上で精製した。
適正なトシレートの溶液に、0℃にて対応するアミンを添加した。反応混合物を封管中で80℃にて撹拌した。24時間後、溶媒を減圧で除去し、残留物を、フラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製した。
適正なトリアゾール化合物31a〜d、又は33e〜i(400mg、1.60mmol)を、30mLの無水MeOH中で可溶化し、10%炭上パラジウム(25mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌し、次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、溶媒を減圧で蒸発した。
適正なアニリン34a〜i(0.10mmol)を、無水MeOH(10mL)中の適切なイソシアネート1又は24(0.15mmol)の溶液に一度に添加した。溶液を、窒素雰囲気下で室温にて9時間撹拌した。溶媒を減圧で除去し、残留物をシリカ上で精製して、最終生成物35a、35b又は35gを白色固体として得た。或いは、残留物をMeOHから結晶化して、化合物35e又は35fを得た。
適正なアルコール35b〜c(25mg、0.07mmol)、酸(10μL、0.07mmol)、N,N'-ジシクロヘキシルカルボジイミド(22mg、0.11mmol)及びDMAP(3mg、0.01mmol)を0℃にて、CH2Cl2 10mL及びDMF 2mLの混合物中で30分間撹拌した。この後、反応混合物を室温に到達させ、12時間撹拌した。次いで、溶媒を減圧で除去し、EtOAcを添加し、混合物を5%LiCl水溶液で洗浄し、無水Na2SO4で脱水し、真空で濃縮した。残留物を、適正な溶離液を用いるフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカゲル上で精製した。
適正なアルコール31a、31c又は31d(400mg、1.38mmol)を、15mLのCH2Cl2に溶解し、Deoxo-Fluor(登録商標)(533μL、2.48mmol)を、-40℃にて添加した。-40℃にて2時間撹拌した後で、反応混合物を室温まで温め、終夜撹拌した。溶媒を減圧で除去し、残留物を、フラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製した。
適正なトリアゾール化合物40a、40b又は40c(100mg、0.34mmol)を、10mLの無水MeOH中で可溶化し、10%炭上パラジウム(30mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌し、次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、溶媒を減圧で蒸発した。
適正なアニリン化合物41a〜c(100mg、0.46mmol)を、無水CH2Cl2(10mL)中の0-(トリフルオロメチル)フェニルイソシアネート24(85μL、0.65mmol)の溶液に一度に添加した。溶液を窒素雰囲気下で、室温にて4時間撹拌した。溶媒を減圧で除去し、残留物を、適正な溶離液を使用するフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。
尿素誘導体55a〜gは、Table 1(表2)で報告されている。
5mLのCH2Cl2中の適正な芳香族アミン(41mg、0.3835mmol)及びDMAP(19mg、0.1534mmol)の溶液を、CH2Cl2中の氷冷したトリホスゲン溶液に30分間滴下添加し、次いで、適正なアニリン17a〜cを一度に添加し、反応混合物を室温にて12時間撹拌した。この後、2M HClを添加し、混合物をCH2Cl2(3×20mL)で抽出した。有機層を収集し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水した。粗製物を、適正な溶離液を使用するフラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製した。
5mLの無水ピリジン中の適正な芳香族アミン(1当量)の撹拌した溶液に、0℃にて、対応する塩化スルホニル(1.1当量)を添加した。対応する溶液を、窒素雰囲気下で室温にて5時間撹拌した。反応の完了後、混合物を20mLの2N HClで酸性化し、水性相を数回抽出し、合わせた有機相を乾燥させ(Na2SO4)、濃縮した。
適正なスルホンアミド(400mg、1.35mmol)を、20mLの無水EtOH中で可溶化し、炭上パラジウム(60mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌した。次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、真空で濃縮し、粗生成物を、適切な溶離液を用いるフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカゲル上で精製した。
アミン(100mg、0.41mmol)を、CH3CNに溶解し、氷塩浴で0℃に冷却した。この撹拌した溶液に、tBuONOを添加し、混合物を10分間撹拌し、この後、TMSN3を10分間滴下添加し、生じた褐色溶液を室温にて撹拌した。1時間後、溶媒を減圧で除去し、残留物を、適切な溶離液を用いるフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカゲル上で精製した。
適切なアルキン(6.08mmol)及び適正なアジド(5.07mmol)を、小型電磁撹拌棒を備えた10mLガラスバイアル中において、水及びt-BuOH(各1.5mL)の1:1の混合物中で懸濁した。これに、アスコルビン酸ナトリウム(2.5mmol)及び硫酸銅(II)五水和物(2.50mmol)を添加した。次いで、混合物を、マイクロ波照射下で125℃にて、300Wの照射電力を使用して10分間加熱した。この後、溶媒を減圧で除去し、水を添加し、混合物をEtOAc(3×20mL)で抽出した。有機層を収集し、ブラインで洗浄し、Na2SO4で脱水した。粗製物を、適正な溶離液を使用するフラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製して、望ましいトリアゾール化合物64a、64b、64c、64d、64e、64f、65a、65c、66d、67d及び68を得た。
適正な4-ニトロアニリン(7.24mmol)を、CH3CNに溶解し、氷塩浴で0℃に冷却した。この撹拌した溶液に、tBuONO(8.69mmol)を添加し、混合物を10分間撹拌し、この後、TMSN3(10.86mmol)を10分間滴下添加し、生じた褐色溶液を室温にて撹拌した。1時間後、溶媒を減圧で除去し、残留物をフラッシュクロマトグラフィーによりシリカゲル上で精製した。
適切なアルキン14a又は14b(0.10mmol)及び適正なアジド(0.09mmol)を、小型電磁撹拌棒を備えた10mLガラスバイアル中において、水及びt-BuOH(各1.5mL)の1:1の混合物中で懸濁した。これに、アスコルビン酸ナトリウム(0.1当量)及び硫酸銅(II)五水和物(0.10mmol)を添加した。次いで、混合物を、マイクロ波照射下で125℃にて、300Wの照射電力を使用して10分間加熱した。この後、沈殿物を濾別し、シリカ上で精製して、最終生成物76又は77を得た。
適正なトリアゾール化合物76又は78(1.60mmol)を、30mLのMeOH中で可溶化し、10%炭上パラジウム(25mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌し、次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、溶媒を減圧で蒸発して、78又は79を純粋化合物として得た。
適正なアニリン78又は79(0.10mmol)を、無水DCM(15mL)中の2-(トリフルオロメチル)フェニルイソシアネート(0.15mmol)の溶液に一度に添加した。溶液を、窒素雰囲気下で室温にて9時間撹拌した。溶媒を減圧で除去し、残留物をシリカ上で精製して、最終生成物80又は81を得た。
93(500mg、3.26mmol)を、窒素雰囲気下で無水DMF(3mL)に溶解した。これに、NaH(86mg、3.58mmol)を0℃にて一度に添加した。20分後、DMF(1mL)中の適正なハロゲン誘導体(3.9mmol)の溶液(94aの場合、ヨウ化シクロペンチル、又は94bの場合、クロロメチルメチルエーテル)をカニューレにより添加した。生じた溶液を室温にて2時間撹拌した。反応の完了後、水を添加し、混合物をEtOAcで数回抽出し、5%LiCl(水溶液)で洗浄し、合わせた有機相を乾燥させ(Na2SO4)、濃縮した。
適正なニトロ化合物94a又は94b(0.40mmol)を、30mLのMeOH中で可溶化し、10%炭上パラジウム(5mg)を添加した。反応混合物を水素雰囲気下で1時間撹拌し、次いで、混合物をセライトパッドで濾別し、溶媒を減圧で蒸発して、54a又は54bを純粋化合物として得た。
in vitroのADME研究
化合物のADME特性は、実質的に最も重要なものである。溶解度及び透過性の低さは、薬物開発中の失敗の中でも主な原因である。一般に、経口投与後の受動的拡散による胃腸の吸収に影響を与える脂質二分子膜透過性と溶解度との良好なバランスを見出すことは重要な試みである。こうした理由から、当該化合物の物理化学的性質を、QikProp(QP)予測プログラム(QikProp、バージョン3.3、Schrodinger, LLC社、New York、NY、2010年)を使用して第1フェーズから開始して、予測した。
化学物質。すべての溶媒、試薬は、Sigma-Aldrich Srl社(Milan、Italy)からのものであった。ドデカンは、Fluka社(Milan、Italy)から購入した。男性ドナーからプールした20mg mL-1 HLMは、BD Gentest-Biosciences社(San Jose、California)からのものであった。Milli-Q quality water(Millipore社、Milford、MA、USA)を使用した。疎水性フィルタープレート(MultiScreen-IP、Clear Plates、細孔径0.45μm)、96ウェルマイクロプレート及び96ウェルUV透過マイクロプレートはMillipore社(Bedford、MA、USA)から得た。
生物学
酵素アッセイ
ヘリカーゼアッセイ
二重らせん構造(ds)RNA(蛍光性の6-FAMを有するらせん構造の一方の5'末端で標識)の単一らせん構造(ss)核酸への変換を測定することにより、DDX3 wtのヘリカーゼ活性をモニターした。特に指定のない限り、25nMの最終濃度のRNA基質を実験に使用した。反応は、50mMトリスHCl、pH7.5、1mM DTT、0.2mg/ml BSA、5%グリセロール及び100μM ATP、10mM MgCl2中で、37℃にて10分間で行い、EDTA 50mM pH8を添加することにより止めた。生成物を、4℃にて、5Wで4時間にわたるTBE緩衝液中での非変性8%PAGEで分離した。基質及び生成物を、レーザースキャニングデンシトメトリー(Thyphoon-TRIO、GE Healthcare社)により定量した。
ヒト組換えDDX3を、(Francaら、Proteins 2007年、67、1128〜37頁)に記載されているようにクローニングし、発現させ、精製した。
デングウイルス(DENV)及び西ナイルウイルス(WNV)のin vitro抗ウイルス活性(EC50)及び細胞毒性(CC50)。
抗ウイルス活性アッセイを白色クリアボトム96ウェルプレートで実行し、細胞毒性アッセイをクリア96ウェルプレートで行った。LucUbiNeo-ET細胞を、100μL D-MEM中に104個/ウェルの密度で、抗生物質を選択せずにシードした。24時間後、各希釈を3回反復した化合物の9倍系列希釈液を、D-MEMで調製し、適切なウェルに添加し、D-MEM 100μLの最終体積で125から0,00032μg/mLの濃度を得た。2日間のインキュベーション後、本発明者らは、BriteLite Plusルシフェラーゼ(Perkin Elmer社)を用いて、ルシフェラーゼを定量することにより、抗ウイルス活性(EC50)を判定した。簡潔には、ウェル当たり50μLのルシフェラーゼを添加することによりLucUbiNeo-ET細胞を採取し、2分間の振とう後に、Luminometer Fluoroskan Ascent FLで光を読み取った。
前日に、6400個細胞/ウェルの濃度でナイーブHuh-7.5/RFP(TagRFP)-NLS-IPS/mitoEGFP細胞をクリア96ウェルプレートにシードした。次の日、細胞を0.02の感染多重度(MOI)でHCVキメラJc1(遺伝子型2a)感染上清で感染させた。24時間後、細胞をPBSで洗浄し、培地を、化合物の有無を問わず完全増殖培地で置き換えた。各希釈を3回反復した化合物の9倍系列希釈液を、D-MEMで調製し、適切なウェルに添加し、D-MEM 100μLの最終体積で125から0,00032μg/mLの濃度を得た。2日間のインキュベーション後、Lindenbach(Lindenbach B.D.ら、Complete Replication of Hepatitis C Virus in Cell Culture. Science 2005年;309:623〜626頁)により記載されているように、培養物をNS5A 9E10モノクローナル抗体に対して免疫染色した。各ウェルに対する単一のHCV NS5A+細胞を、手作業でカウントした。
化合物の存在下においてのHeLa細胞の生存能力を、標準的MTTアッセイにより判定した。HIV-1組換え株の薬物に対する感受性を既に報告されているように行った(Paolucciら、2004年)。詳細には、0.5μgの各HIV-1プラスミド構築物を、製造者(Invitrogen社、Groningen、The Netherlands)の推奨に従ってリポフェクチン試薬を使用して、CD4+ HeLa細胞にトランスフェクトした。37℃にて3日間インキュベートした後で、再構成した生存能力のある組換えウイルスを含有する細胞の上清を収集した。新たに生成した組換え株の定量は、細胞培養物上清でHIV RNAのコピー数を判定することにより達成した。詳細には、1×109/mLのRNAコピーを含有するトランスフェクトしたHeLa CD4+細胞培養物上清を使用して、HIVが血清学的陰性の供血者から得られた、フィトヘマグルチニンで刺激した末梢血単核細胞(PBMC)20×106個ずつを感染させた。4時間のインキュベーション後、上清を除去し、感染させたPBMCを、20%ウシ胎仔血清(Life Technologies, Ltd.社、Paisley、UK)、2mM Lグルタミン、100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン、50U/mLインターロイキン-2(Roche Diagnostics社、Mannheim、Germany)、5μg/mLヒドロコルチゾン(Sigma Chemical Co.社、St. Louis、MA)及び、抗レトロウイルス薬物を4倍希釈液を補充したRPMI1640培地(Eurobio社、Les Ulis Cedex B、France)10mLで37℃にてインキュベートした。各薬物の希釈液に対する「薬物なし」の対照は、各アッセイに含まれる。細胞培養物上清におけるHIV-1 RNAは、感染から72時間後に定量した。処置を受けていない患者からの組換えHIV-1株をアッセイした。ウイルスの複製を阻害する程度は、細胞培養物上清におけるHIV-1 RNAレベルを判定することにより測定され、耐性組換えHIV-1変異体に対する50%阻害濃度(IC50)では、野生型組換え変異体のIC50と比較して、倍増として表現した。各試験は、3回行った。
37℃及び5%CO2にて、10%ウシ胎仔血清(FCS)(GIBCO社)、ペニシリン(100μg/ml)及びストレプトマイシン(100U/ml)を補充したダルベッコ最小必須培地(Invitrogen社)で新生仔ハムスター腎臓(BHK)-21細胞(C-13、AmericanTypeCultureCollection)を維持した。JEV株(NJ2008、GenBank Accession ID:GQ918133)をBHK-21細胞で成長させ、プラーク形成アッセイにより、BHK-21細胞でのウイルス力価を判定した。最初の実験では、薬物(20μM)をまず細胞と3時間インキュベートし、次いで、細胞をPBS(10mM Na2HPO4、2mM KH2PO4、pH7.4、137mM NaCl、2.7mM KCl)で3回洗浄し、次いで、薬物(20μM)を、37℃にて、ウイルス(MOI=0.01)と同時に2時間接種した。細胞をPBSで3回洗浄し、細胞に薬物(20μM)を同一の濃度(20μM、2%FCS DMEMで希釈した)へと戻した。細胞を48時間培養した。上清を採取し、希釈し、6ウェルプレート中のBHK-21細胞(1.2×106個細胞/ウェル)に37℃で2時間接種した。過剰なウイルス接種材料は、ウェルをPBSで3回すすぐことにより除去した。続いて、重層培地(2%低融点アガロースと2%FBSを含有するDMEM培地)を各ウェルに添加し、プレートを、37℃にて5%CO2で3日間更にインキュベートした。細胞を0.5%クリスタルバイオレットで染色した。各化合物の用量に対する判定は、4回行った。CC50値は、判定の各セットの平均値を使用して用量反応曲線から計算した。
様々な実験の必要性に応じて、MARC-145細胞は、0.1、1若しくは10のMOIのPRRSVで感染させる、又はリン酸塩緩衝生理食塩水(PBS)でモック感染させた。37℃にて1時間インキュベートした後で、PBSで3回洗浄することにより結合していないウイルスを除去し、8%FBSを補充したDMEM中で、37℃にて様々な長さの時間で培養した。オートファジー誘導及び阻害の実験のために、ウイルス感染の前に4時間、ラパマイシン又は3-MAの濃度を変化させて、MARC-145細胞を前処理した。次いで、MARC-145細胞を、1のMOIでPRRSVに感染させた。37℃にて1時間インキュベートした後、PBSで3回洗浄することにより結合していないウイルスを除去し、37℃にて24時間、変化する濃度の化合物、3-MA又は対応する量のジメチルスルホキシド(DMSO、対照)を含有する2%FBSを補充したDMEMで培養した。各化合物の用量に対する判定は、4回行った。CC50値は、判定の各セットの平均値を使用して用量反応曲線から計算した。
抗酵素活性
DDX3ヘリカーゼに対する、代表的な化合物の抗酵素活性は、Table 5(表6)で報告されている。
抗ウイルス活性
Table 5(表6)から選択した化合物を、DDX3が関与しているウイルスに対して試験した。
HIV感染症を処置するために現在使用されている薬物への耐性を付与する変異を保有するHIV-1株に対する抗ウイルス活性の評価。
化合物16dの抗ウイルス活性を評価するために使用されるMT-2及びTZM-bl細胞株及び感染クローンは、すべてAIDS Reagent Program(ARP、Division of AIDS、NIAID、NIH)で得た。NIHクローンの薬物感受性は、「Phenosense」表現型アッセイ(Quest Diagnostics社、Monogram Biosciences laboratory、San Francisco、USAで入手できる)で既に特徴付けられている。参照ウイルス及び耐性ウイルスの特徴は、以下の表に示される:
EBOV感染細胞培養系でのin vitro抗ウイルス活性の評価。
Vero E6細胞を、感染の前日に48ウェルプレートにシードした。24時間後、細胞は、血清を含まない培地において、5μM濃度の異なる化合物の存在下において0.1の感染多重度(MOI)で、GFP(EBOV/GFP)を発現するEBOVに、37℃にて1時間感染させ、次いで、接種材料を除去し、5μMの薬物を含有する3%FCS培地で置き換え、次いで、細胞を37℃にて48時間インキュベートした。48時間後、細胞をプレートからトリプシンで剥がし、3%PBS緩衝パラホルムアルデヒドで20分間固定してから、Beckman Coulter Gallios装置(Beckman社、Brea、CA、USA)でのフローサイトメトリー分析を行った。ウイルス投入を、48時間で感染細胞の50〜70%に達するよう調整する。GFPをウイルスの遺伝子としてエボラゲノムに挿入し、GFP強度(MFI)がウイルスの複製に関連している場合は、感染細胞は、GFP(エボラGFP)の発現により同定される。Neg値は、非感染条件での背景強度を指し示す。すべてのデータは、3件の独立した実験の平均値及びSDを表す。
1)RNA結合部位と相互作用し、後続の触媒工程に干渉することにより、ヒトDDX3タンパク質のヘリカーゼ活性を阻害する;
2)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてHIV-1複製を抑制する;
3)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてHCV複製を抑制する;
4)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてWNV複製を抑制する;
5)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてDENV複製を抑制する;
6)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてJEV複製を抑制する;
7)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてPRRSV複製を抑制する;
8)感染細胞においてHIV-1変異株複製を抑制する;
9)対照として使用される非感染細胞に対して一切毒性を伴わずに、感染細胞においてEBOV複製を抑制することができると示される。
Claims (20)
- DDX3阻害剤である式:
式中、
X及びYが、それぞれ独立してC又はNであり;
Aが、非置換若しくは置換アリール又は非置換若しくは置換ヘテロアリールであり、
アリール又はヘテロアリールにおける1個又は複数の置換基が、非置換若しくは置換C1〜C6アルキル、非置換若しくは置換C2〜C6アルケニル、非置換若しくは置換C2〜C6アルキニル、ハロアルキル、ハロゲン、ORA、SRA、S(=O)(=O)-RA、SO2NHRA、COORB、OC(O)RB、C(O)RA、NRARB、OP(O)(ORA)2、NHC(O)RA、COONRARB又は
C1〜C6アルキル又はC2〜C6アルケニル又はC2〜C6アルキニルにおける1個又は複数の置換基が、ORA、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、NHC(O)RA、NHC(O)ORA、COONRARB、SRA、S(=O)(=O)-RA、SO2NHRAから独立して選択され;
R1、R2、R3、R4、R6、R7及びR10が、H、ハロゲン、アルコキシ、C1〜C6アルキル、ハロアルキル、ORA、SRA、S(=O)(=O)-RA、SO2NHRA、COORB、OC(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、NHC(O)RA、COONRARB、NO2、CNからそれぞれ独立して選択され、
X及び/又はYがNである場合、R2、R4、R7及びR10が存在せず;
Zが、
R5が、H、非置換又は置換C1〜C10アルキル又はC1〜C8ハロアルキル、非置換又は置換フェニルであり、
C1〜C10アルキルにおける1個又は複数の置換基が、ハロゲン、ORA、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、OC(O)NRARB、NHC(O)ORA、NHC(O)RA、COONRARB、OC(O)CHCHRC、
ハロアルキルにおける1個又は複数の置換基が、アルコキシ、フェニル、OH、COORB、OC(O)RB、C(O)RB、NRARB、OP(O)(ORA)2、OC(O)NRARB、NHC(O)ORA、NHC(O)RA、COONRARB、OC(O)CHCHRCから独立して選択され、
フェニルにおける1個又は複数の置換基が、ハロゲン、ハロアルキル、アルコキシ、C1〜C3アルキル、OHから独立して選択され;
RA及びRBが、H、C1〜C6アルキル、非置換若しくは置換アラルキル、ハロアルキルからそれぞれ独立して選択され、
又はRA及びRBが、それらが結合する窒素と一緒に、N、S及びOから独立して選択される1個若しくは複数の追加のヘテロ原子を任意選択で含有する4〜7員環の飽和若しくは部分不飽和環を形成し、該環が、ハロゲン、C1〜C6アルキル、ハロアルキル、OH、アルコキシから独立して選択される1個、2個若しくはそれ超の基で、任意選択で置換されており;
RCが、置換又は非置換フェニル、1,3ベンゾジオキソリルであり、フェニルにおける1個又は複数の置換基が、ハロゲン、ハロアルキル、アルコキシ、C1〜C3アルキル又はOHから独立して選択され;
フェニルにおける1個又は複数の置換基が、ハロゲン、ハロアルキル、アルコキシ、C1〜C3アルキル、OHから独立して選択され;
R8及びR9が、H、ハロゲン、アルコキシ、COOH、ニトロからそれぞれ独立して選択され、R8及びR9の少なくとも1つが、
- X及びYがCである、請求項1に記載の化合物。
- Aが置換アリールである、請求項1又は2に記載の化合物。
- 置換アリールがフェニルである、請求項3に記載の化合物。
- フェニルが、メチル、イソプロピル、CF3、F、Cl、OH、OMeから独立して選択される1個、2個又はそれ超の基で置換されている、請求項4に記載の化合物。
- Aが、非置換又は置換ヘテロアリールである、請求項1又は2に記載の化合物。
- 置換ヘテロアリールが、ピリジニル又はイソキノリニルである、請求項6に記載の化合物。
- 医学的使用のための、請求項1から9のいずれか一項に記載の化合物、又は医薬として許容できるその塩、溶媒和物、立体異性体。
- ウイルス性疾患の処置において使用するための、請求項10に記載の化合物又は医薬として許容できるその塩、溶媒和物、立体異性体。
- ウイルス性疾患が、DDX3により調節される、請求項11に規定の使用のための化合物。
- ウイルス性疾患が、プロテアーゼ阻害剤;ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害剤又はインテグラーゼ阻害剤からなる群から選択される少なくとも1つの化合物に耐性であるウイルスによって引き起こされる、請求項11又は12に規定の使用のための化合物。
- ヒト免疫不全ウイルス1型(HIV-1)、C型肝炎ウイルス、B型肝炎ウイルス、東部ウマ脳炎ウイルス、西部ウマ脳炎ウイルス、ベネズエラウマ脳炎ウイルス、日本脳炎ウイルス、ダニ媒介性脳炎ウイルス、黄熱ウイルス、セントルイス脳炎ウイルス、マレー渓谷脳炎ウイルス、ポワッサンウイルス、デングウイルス、ジカウイルス、西ナイルウイルス、風疹ウイルス、サイトメガロウイルス、オニョンニョンウイルス、マヤロウイルス、ロスリバーウイルス、シンドビスウイルス、ワクシニアウイルス、インフルエンザウイルス、ノロウイルス、SARSコロナウイルス、チクングニアウイルス、ラッサウイルス、エボラウイルス、ルジョウイルス、肺炎ウイルス、重症熱性血小板減少症候群ウイルス、ブタ繁殖・呼吸障害症候群ウイルス、ポックスウイルス、ウシウイルス性下痢ウイルス(BVDV)、ヒツジのボーダー病ウイルス(BDV)及びブタコレラウイルス(CSFV)からなる群から選択されるウイルスによって引き起こされるウイルス性疾患の処置において使用するための、請求項11から13のいずれか一項に記載の化合物。
- ヒト免疫不全ウイルス1型(HIV-1)、C型肝炎ウイルス、西ナイルウイルス、デングウイルス、日本脳炎ウイルス、ブタ繁殖・呼吸障害症候群ウイルス、エボラウイルス、ジカウイルスからなる群から選択されるウイルスによって引き起こされるウイルス性疾患の処置において使用するための、請求項14に記載の化合物。
- エボラウイルス及びジカウイルスからなる群から選択されるウイルスによって引き起こされるウイルス性疾患の処置に使用するための、請求項15に記載の化合物。
- 請求項1から9のいずれか一項に記載の化合物、及び医薬として許容できる賦形剤を含む、医薬組成物。
- 少なくとも1つの抗ウイルス剤を更に含む、請求項18に記載の医薬組成物。
- 抗ウイルス剤が、ヌクレオシド若しくは非ヌクレオシド類似体逆転写酵素阻害剤、ヌクレオチド類似体逆転写酵素阻害剤、NS3/4Aセリンプロテアーゼ阻害剤、NS5Bポリメラーゼ阻害剤又はインターフェロンαからなる群から選択される、請求項19に記載の医薬組成物。
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