JP2017093426A - 12量体trail及びhsv−tk自殺遺伝子を同時に発現するベクター並びにそれを用いた抗癌幹細胞治療剤 - Google Patents

12量体trail及びhsv−tk自殺遺伝子を同時に発現するベクター並びにそれを用いた抗癌幹細胞治療剤 Download PDF

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Abstract

【課題】12量体TRAILをコードする核酸配列及び自殺遺伝子の核酸配列を含むDNAカセットの提供。【解決手段】12量体TRAILをコードするヌクレオチド配列及び自殺遺伝子のヌクレオチド配列を含み、両配列の間に転写/翻訳開始配列を更に含むDNAカセット。前記DNAカセットを含む組換え発現ベクター、前記組換え発現ベクターを用いて作製された組換えアデノウイルス、前記組換えアデノウイルスでトランスフェクションした宿主細胞、前記宿主細胞を含む癌治療用組成物、並びに前記癌治療用組成物を個体に投与する段階を含む癌治療方法。【効果】前記DNAカセットが導入されて12量体TRAIL及びHSV−TKを同時に生産する幹細胞治療剤は、従来の治療剤に比べて抗癌効果に優れるので、様々な固形癌及び転移癌の治療に効果的に用いることができる。【選択図】図7

Description

本発明は、12量体TRAIL(TNF related apoptosis inducing ligand)及びHS
V−TK(Herpes simplex virus thymidine kinase)自殺遺伝子を同時に発現するベク
ター並びにそれを用いた抗癌幹細胞治療剤に関する。より詳細には、本発明は、12量体
TRAILをコードする核酸配列及び自殺遺伝子の核酸配列を含むDNAカセット、前記
DNAカセットを含む組換え発現ベクター、前記組換え発現ベクターを用いて作製された
組換えアデノウイルス、前記組換えアデノウイルスでトランスフェクションした宿主細胞
、前記宿主細胞を含む癌治療用組成物、並びに前記癌治療用組成物を被験体に投与する段
階を含む癌治療方法に関する。
間葉系幹細胞(mesenchymal stem cells, MSCs)とは、骨芽細胞(osteoblast)、軟骨
細胞(chondrocyte)、脂肪細胞(adipocyte)などに分化可能な多分化性の成体幹細胞で
あり、組織再生が必要な様々な疾患の治療剤として広く用いられている。それだけでなく
、間葉系幹細胞は、生体内で癌病変を特異的に検出して移動させる性質を有することが知
られており、標的抗癌治療のための担体として最近脚光を浴びている(非特許文献1)。
間葉系幹細胞の癌特異的移動性を用いた標的転移癌治療の研究が多く行われてきた。実際
に、抗癌サイトカインであるIL−12やIFN−beta、又はオンコリティックウイ
ルスを間葉系幹細胞に導入して転移癌マウスに全身投与すると、転移癌の大きさとマウス
の生存が向上することが報告されている(非特許文献2)。
TRAILは、TNF(tumor necrosis factor)ファミリータンパク質であり、選択
的に癌細胞の死滅を誘導するという特徴が知られている(非特許文献3)。実際に、TR
AILは一般細胞に対しては無害であり、かつ様々な癌細胞株に対してのみ毒性を誘導す
るという特徴が知られている(非特許文献4,5)。このような一般細胞に無害な特性は
、一般細胞の表面にのみ存在するおとり受容体1、2(DcR1,DcR2)の機能によ
るものである(非特許文献6)。DcR1、DcR2はTRAILと結合することができ
るが、細胞内シグナル伝達部分が欠如しているので一般細胞はTRAILによるアポトー
シス誘導が生じない。このようなTRAILの選択的な癌細胞アポトーシス誘導の特徴は
、癌治療の画期的な媒体として注目されている。本発明者らは、先行特許において、TR
AILを用いた効果的な抗癌遺伝子治療のために、TRAIL受容体DR4、DR5と反
応するTRAILの細胞外(アミノ酸114−281)のアミノ末端に分泌シグナル配列
であるtPA(tissue plasminogen activation)及び12量体形成ドメインであるSP
D(surfactant protein D)を連結することにより12量体TRAILを考案した(特許
文献1)。
自殺遺伝子治療法とは、抗癌遺伝子治療方法の1つであり、癌細胞に直接HSV−TK
、シトシンデアミナーゼ(Cytosin deaminase)、ニトロレダクターゼ(Nitroreductase
)、カルボキシルエステラーゼ(Carboxylesterase)、シトクロムP450(Cytochrome
P450)、PNP(Purine nucleoside phosphorylase)などの自殺遺伝子を導入する方法
である。自殺遺伝子は、一種の酵素を発現し、この酵素は外部から注入された細胞に無害
なプロドラッグ(prodrug)を酵素反応で細胞毒性を有する物質に変えることにより、自
殺遺伝子を有する細胞だけでなく、ギャップ結合(gap junction)により毒性物質が隣接
する細胞に伝達され、周囲のアポトーシスを誘導するバイスタンダー効果(bystander ef
fect)を有することを特徴とする。実際に、自殺遺伝子を癌組織で発現させ、その後前駆
体を生体に全身投与すると、正常細胞には毒性が現れないが、治療遺伝子が発現する腫瘍
細胞にのみ前駆体が毒性物質に変換されて腫瘍細胞を破壊することができる(非特許文献
7)。
様々な自殺遺伝子のうちHSV−TKは最も広く用いられている自殺遺伝子であり、実
際に臨床第3相まで終えたことが報告され、効能と安全性が確認されている候補物質であ
る。HSV−TKはガンシクロビル(ganciclovir、GCV)というプロドラ
ッグをリン酸化し、リン酸化したガンシクロビル三リン酸(ganciclovir t
riphosphate、GCV−3P)はDNAに入り込むことにより正常な遺伝子の
合成を阻害してアポトーシスを誘導する(非特許文献8)。GCV−3Pは急速に増殖す
る細胞に特異的に作用するので、正常細胞に比べて癌細胞を選択的に除去することのでき
る方法となりうる。実際に、局所部位に形成された腫瘍の場合、病変部位にアデノウイル
スやレンチウイルスによりHSV−TKを導入し、その後GCVを投与すると癌細胞特異
的なアポトーシスを期待することができ、癌特異性を一層向上させるために癌特異的プロ
モーターやウイルスの向性(tropism)を改変する戦略が用いられている。
TRAIL及びHSV−TKは、癌細胞特異的なアポトーシスを誘導できることから、
抗癌遺伝子治療における安全性に優れた標的抗癌治療物質候補として間葉系幹細胞を用い
た転移癌治療にも研究されているが、その単独治療だけでは抗癌効能が不十分であり、抗
癌治療の成功のための臨床適用が困難な状況である(非特許文献9,10)。
国際公開第2007/102690号 韓国公開特許第10−2009−0015885号公報
Aboody et al., Proc Natl Acad Sci, 97: 12846, 2000 Shah et al. Advanced Drug Delivery Reviews, 2011 Wiley et al., Immunity, 3(6):673-682, 1995 Ashkenazi et al., J. Clin. Invest.,104:155-162, 1999 Walczak et al., Nat. Med.,5:157-163, 1999 Sheridan et al., Science,277:81 8-821, 1997 The FASEB journal, 23:1584, 2009 Moolten et al., Cancer Res. 46: 5276, 1986 Loebinger et al., Cancer Res, 69: 4134, 2009 Miletic et al. Molecular Ther, 15: 1373, 2007 Pitti. R. M. et al., J. Biol. Chem. 271: 12687, 1996
本発明者らは、効能に優れた標的抗癌遺伝子治療のために、12量体TRAIL及びH
SV−TK自殺遺伝子を同時に発現するベクターを開発して組換えアデノウイルスを生産
し、これを幹細胞に導入すると様々な癌細胞において高いアポトーシス誘導能力を示すこ
とが確認された。12量体TRAIL及びHSV−TKを同時に発現する幹細胞の抗癌効
能は、TRAIL、12量体TRAILやHSV−TKを単独で発現する幹細胞より相乗
的に増加することを見出した。また、間葉系幹細胞の癌特異的移動能力を用いて、12量
体TRAIL及びHSV−TKを同時に発現する間葉系幹細胞をマウス転移性腎臓癌モデ
ルに全身投与すると、細胞が転移癌特異的に移動することができ、転移癌の大きさと数を
大幅に減少させることにより、マウスの生存率を延長できることが確認された。特に、1
2量体TRAILとHSV−TKを同時に発現する幹細胞治療剤の反復投与で抗癌効果が
大幅に向上し、3回の反復投与で転移癌マウスが完治したことを確認することにより、本
発明を完成するに至った。
本発明は、12量体TRAILをコードする核酸配列、及び自殺遺伝子の核酸配列を含
むDNAカセットを提供することを目的とする。
また、本発明は、前記DNAカセットを含む組換え発現ベクターを提供することを目的
とする。
さらに、本発明は、前記組換え発現ベクターを用いて作製された組換えアデノウイルス
を提供することを目的とする。
さらに、本発明は、前記組換えアデノウイルスでトランスフェクションした宿主細胞を
提供することを目的とする。
さらに、本発明は、前記宿主細胞を含む癌治療用組成物を提供することを目的とする。
さらに、本発明は、前記癌治療用組成物を癌の疑いのある被験体に投与する段階を含む
癌治療方法を提供することを目的とする。
本発明のDNAカセットが導入されて12量体TRAIL及びHSV−TKを同時に生
産する幹細胞治療剤は、従来の治療剤に比べて抗癌効果に優れるので、様々な固形癌及び
転移癌の治療に効果的に用いることができる。
ヒト12量体TRAIL配列、IRES配列、及びHSV−TK配列で構成されたDNAカセット(dTRAIL−TK)の概略図である。 dTRAIL−TK DNAカセットが導入された間葉系幹細胞(MSC/dTRAIL−TK)のTRAIL発現及びHSV−TK発現を確認した結果を示す図である。 dTRAIL−TK DNAカセットが導入された間葉系幹細胞(MSC/dTRAIL−TK)におけるGCV処理後の細胞生存及びTRAIL発現を確認した結果を示す図である。 インビトロのRENCA細胞において、12量体TRAIL及びHSV−TKを同時に発現する間葉系幹細胞(MSC/dTRAIL−TK)の向上した癌細胞殺傷能力を確認した結果を示す図である。 MSC/dTRAIL−TKの抗癌効能をマウス転移性腎臓癌モデルにおける肺腫瘍結節の減少により確認した結果を示す図である。 MSC/dTRAIL−TKの投与により延長された転移性腎臓癌マウスの生存期間を確認した結果を示す図である。 MSC/dTRAIL−TKの反復投与による転移性腎臓癌マウスの増加した生存率及び完治率を確認した結果を示す図である。
上記目的を達成するために、本発明の一態様は、12量体TRAILをコードする核酸
配列、及び自殺遺伝子の核酸配列を含むDNAカセットを提供する。
本発明における用語「12量体TRAIL(TNF related apoptosis inducing ligand
)」とは、発現したTRAILが結合して12量体(dodecamer)の構造を有する分泌型
TRAILタンパク質をいい、特許文献1及び2に記載された方法で作製された12量体
TRAILであってもよい。本発明の12量体TRAILタンパク質は、単量体又は3量
体構造のTRAILより増加した選択的な癌細胞アポトーシス誘導活性を示すことが確認
されている。本発明においては、TRAILタンパク質を12量体形態で作製するために
、12量体形成ドメインをコードする核酸配列がTRAILタンパク質をコードする核酸
配列の5’上流に位置するようにし、タンパク質の細胞外分泌のために、分泌シグナル配
列をコードする核酸配列が12量体形成ドメインの5’上流に位置するようにした。
本発明においては12量体TRAILを用いたが、本発明の自殺遺伝子と共に発現して
治療剤として用いると相乗的な抗癌効果を示すものであれば、3量体以上のTRAILも
本発明の範囲に含まれる。
本発明の12量体TRAILをコードする核酸配列は、分泌シグナル配列(secretion
signal sequence)をコードする核酸配列、12量体形成ドメイン(dodecamer-forming d
omain)をコードする核酸配列、及びTRAILをコードする核酸配列を含んでもよい。
本発明における用語「TRAIL」とは、アポトーシスと呼ばれる細胞死過程を誘導す
るリガンドとして機能するタンパク質の一種であり、本発明においてTRAILをコード
する核酸配列としては、ヒト、サル、ラット、マウス、又は他種由来のTRAILタンパ
ク質をコードする遺伝子を用いることができ、ヒトTRAIL遺伝子を用いることが好ま
しい。
本発明のTRAILをコードする核酸配列から発現するタンパク質がTRAIL受容体
DR4又はDR5と反応する活性を有する場合は、TRAILをコードする核酸配列の一
部のみ用いることができる。TRAILの114〜281位のアミノ酸配列をコードする
核酸配列を用いることが好ましい。前記TRAILをコードする核酸配列は、当該分野に
おける通常の知識を有する者がGenBank(GeneID:8743,非特許文献1
1)から容易に情報を入手することにより、容易に作製することができる。
本発明において、分泌シグナル配列はTRAILタンパク質が細胞外に分泌されるよう
に誘導する役割を果たす。TRAILタンパク質は本来細胞膜に位置するタンパク質であ
るので、それ自体は分泌シグナル配列を有さず、TRAIL細胞外領域はTRAILタン
パク質によるアポトーシスシグナルを誘導することが知られている。本発明において、1
2量体構造のTRAILタンパク質を細胞外に分泌して抗癌効果を増大させるために分泌
シグナル配列を用い、この分泌シグナル配列をコードする核酸配列は12量体形成ドメイ
ンをコードする核酸配列の5’上流に位置するようにしてもよい。前記分泌シグナル配列
は、これらに限定されるものではないが、tPA、HSV、gDs、SEC2、SEC(
CV)などを用いることができ、tPA(tissue plasminogen activator)を用いること
が好ましい。
本発明の一実施例においては前記分泌シグナル配列としてtPAを用いたが、これは優
れた分泌誘導性を有する分泌シグナル配列であり、本発明の12量体TRAILタンパク
質を細胞外に分泌することに優れるからである。
本発明において、12量体形成ドメインは、TRAILタンパク質が12量体を形成す
るようにする。これは、TRAILタンパク質を多量体化して安定した形態にするためで
あり、このために前記12量体形成ドメインをコードする核酸配列がTRAILタンパク
質をコードする核酸配列の5’上流に位置するようにした。前記12量体形成ドメインは
、これに限定されるものではないが、SPD(surfactant protein D)を用いることが好
ましい。
前述したように、本発明の12量体TRAILをコードする核酸配列は、分泌シグナル
配列をコードする核酸配列、12量体形成ドメインをコードする核酸配列、及びTRAI
Lをコードする核酸配列から構成される。本発明の一実施例においては、配列番号4のt
PA分泌シグナル配列をコードする核酸配列、配列番号5のSPD 12量体形成ドメイ
ンをコードする核酸配列、及び配列番号6のTRAILをコードする核酸配列を化学的に
合成することにより、コドン最適化された12量体ヒトTRAILをコードする核酸配列
を作製し、最終的に配列番号1のtPA−SPD−TRAIL DNAカセットを作製し
た。本発明の12量体TRAILをコードする核酸配列は、配列番号1の核酸配列を有す
るものであることが好ましい。
本発明における用語「自殺遺伝子」とは、アポトーシスを誘導する遺伝子であり、これ
らに限定されるものではないが、HSV−TK(Herpes simplex virus thymidine kinas
e)、シトシンデアミナーゼ(Cytosin deaminase)、ニトロレダクターゼ(Nitroreducta
se)、カルボキシルエステラーゼ(Carboxylesterase)、シトクロムP450(Cytochro
me P450)、又はPNP(Purine nucleoside phosphorylase)であることが好ましく、H
SV−TKであることがより好ましい。また、前記HSV−TKは、配列番号2で表され
るコドン最適化されたHSV−TKであることが好ましい。
本発明の12量体TRAIL及びHSV−TKタンパク質をコードする核酸配列は、野
生型と同じ配列をそのまま用いることができるが、哺乳類、特にヒト細胞内でタンパク質
の発現頻度が増加するように、12量体TRAIL及びHSV−TKタンパク質の遺伝子
コドンを最適化した配列を用いることが好ましい。前記「遺伝子コドンを最適化した配列
」又は本発明における用語「コドン最適化」とは、哺乳類、特にヒト細胞内で標的物質(
例えば、本発明の12量体TRAIL、HSV−TKタンパク質など)の発現量が増加す
るように、標的物質をコードするアミノ酸コドンのうち一部のアミノ酸コドンを置換する
ことをいう。このようなアミノ酸コドンの一部置換は、当業者であれば様々な組み合わせ
及び応用が可能である。本発明においては、12量体TRAIL及びHSV−TKタンパ
ク質のアミノ酸コドン、具体的にはアラニン(Ala:A)、アルギニン(Arg:R)
、アスパラギン(Asn:N)、アスパラギン酸(Asp:D)、システイン(Cys:
C)、グルタミン(Gln:Q)、グルタミン酸(Glu:E)、グリシン(Gly:G
)、ヒスチジン(His:H)、イソロイシン(Ile:I)、ロイシン(Leu:L)
、リジン(Lys:K)、フェニルアラニン(Phe:F)、プロリン(Pro:P)、
セリン(Ser:S)、トレオニン(Thr:T)、バリン(Val:V)、及びチロシ
ン(Tyr:Y)をコードする少なくとも1つの遺伝子コドンをヒト細胞で高い頻度で認
識される遺伝子コドンに置換してもよい。
本発明の具体的な実施例においては、12量体TRAILをコードする核酸配列を構成
するtPA分泌シグナル配列をコードする核酸配列の1〜23位のヌクレオチドをコドン
最適化し、それを配列番号4に示し、12量体形成ドメインであるSPDをコードする核
酸配列の78〜314位のヌクレオチドをコドン最適化し、それを配列番号5に示し、コ
ドン最適化されたTRAILをコードする核酸配列を配列番号6に示す。また、コドン最
適化された12量体TRAIL及びHSV−TKをコードする核酸配列をそれぞれ配列番
号1及び2に示す。よって、前記コドン最適化された12量体TRAIL及びHSV−T
Kをコードする核酸配列は、野生型に比べて発現程度に優れるので、分泌誘導性又は抗癌
効能に優れる。
本発明のDNAカセットは、前記12量体TRAILをコードする核酸配列と自殺遺伝
子の核酸配列の間に転写/翻訳開始核酸配列をさらに含んでもよい。これは、1つのベク
ターで2つの遺伝子を同時に発現させるための配列であり、IRES配列、9−nt配列
、又はデユアルプロモーターシステム(dual promoter system)を用
いることが好ましく、IRES配列を用いることがより好ましい。
本発明における用語「IRES(internal ribosome entry site)」とは、配列内リボ
ソーム進入部位ともいい、真核細胞において1つのmRNAから複数のタンパク質合成が
可能となるようにリボソームが直接結合するmRNA内部に存在する特定の領域を意味し
、本発明の12量体TRAIL及び自殺遺伝子を同時に発現させる役割を果たす。本発明
の一実施例においては、配列番号3で表されるIRES配列と12量体TRAIL及びH
SV−TKをコードする核酸配列を化学的に合成してdTRAIL−IRES−TKカセ
ットを作製した(図1)。
本発明の他の態様は、前記DNAカセットを含む組換え発現ベクターを提供する。
本発明のベクターは、宿主細胞において標的タンパク質、すなわち12量体TRAIL
及び自殺遺伝子タンパク質を発現する組換え発現ベクターであり、遺伝子挿入物(前記D
NAカセット)が発現するように作動可能に連結された必須の調節因子を含んでもよい。
本発明における用語「作動可能に連結された」とは、一般的機能が行えるように、核酸
発現調節配列と目的とするタンパク質をコードする核酸配列が機能的に連結されているこ
とをいう。組換え発現ベクターとの作動的連結は当該技術分野で周知の遺伝子組換え技術
を用いて作製することができ、部位特異的DNA切断及び連結は当該技術分野において一
般に知られた酵素などを用いる。ベクターは、プロモーター、オペレーター、開始コドン
、終止コドン、ポリアデニル化シグナル及びインハンサーなどの発現調節因子を含む。開
始コドン及び終止コドンは一般に標的タンパク質をコードするヌクレオチド配列の一部と
みなされ、遺伝子産物が投与された際にその被験体で必ず作用しなければならず、コード
配列とインフレーム(in frame)でなければならない。
本発明のベクターは、プラスミドベクター、コスミドベクター、バクテリオファージベ
クター、ウイルスベクターなどを含むが、これらに限定されるものではなく、ウイルスベ
クターが好ましく、アデノウイルスベクターがより好ましい。アデノウイルスベクターは
、様々な細胞への遺伝子導入効率に優れたベクターであり、癌患者の遺伝子治療に最もよ
く用いられるベクターの1つである。
本発明に用いられる組換えアデノウイルスは、タイプ5型であり、複製に必須な因子で
あるE1A遺伝子が欠如した複製不能のアデノウイルスである。本発明の一実施例におい
ては、12量体TRAILをコードする核酸配列、IRES配列、及びHSV−TK配列
を化学的に合成して作製したDNAカセットをアデノウイルスシャトルベクターに挿入す
ることにより、12量体TRAIL及びHSV−TKを同時に発現する組換え発現ベクタ
ーを構成した。
本発明のさらに他の態様は、前記組換え発現ベクターを用いて作製された組換えアデノ
ウイルスを提供する。
前記組換えアデノウイルスは、本発明のDNAカセットを含むアデノウイルス由来の組
換え発現ベクターをパッケージング細胞に導入し、これを培養してパッケージング細胞か
ら生成された組換えアデノウイルスを取得する方法で生成することができる。
前記組換えアデノウイルスは、誘導性プロモーターを用いて特定の物質により発現を調
節できる誘導性アデノウイルスを含む。前記誘導性プロモーターはCMV−Tet10で
あり、テトラサイクリン(tetracyclin)により発現が誘導される。テトラサイクリンを
用いた誘導性システムは、生体内で最も広範囲に用いられており、懸念される副作用がな
いので経済性の面でも優れている。
本発明のさらに他の態様は、前記組換えアデノウイルスでトランスフェクションした宿
主細胞を提供する。本発明の前記宿主細胞は、12量体TRAIL及びHSV−TKを同
時に発現生産することにより、癌細胞を死滅させることができ、癌治療効能に優れるので
、癌治療用細胞治療剤として用いることができる。
前記宿主細胞は、当業界で周知の宿主細胞を用いることができ、細胞治療剤として用い
ることができる宿主細胞であればいかなるものでもよいが、幹細胞を用いることが好まし
い。前記宿主細胞が幹細胞である場合、癌治療用幹細胞治療剤として用いることができる
本発明における用語「幹細胞」とは、各種細胞に分化することができ、自己複製するこ
とができる細胞を意味し、本発明においては胎児幹細胞や成体幹細胞であることが好まし
く、成体幹細胞の間葉系幹細胞であることがより好ましく、抗癌特異的移動性を有するヒ
ト間葉系幹細胞であることがさらに好ましい。
間葉系幹細胞の癌特異的移動能力を用いると、12量体TRAIL及びHSV−TKを
同時に発現する間葉系幹細胞を癌特異的に移動させることができ、安定して12量体TR
AILを分泌させることができ、HSV−TK発現物質によりプロドラッグを毒性物質に
変換することにより隣接する癌細胞に導入することができる。特に、12量体TRAIL
は、単量体TRAILより分泌型として安定しており、癌細胞アポトーシス誘導活性が増
加するので、癌細胞に直接注入できるだけでなく、細胞治療剤の作製に特に有用である。
また、12量体TRAIL又はHSV−TKを単独で発現する幹細胞と比較して相乗的に
抗癌効果が増加することが確認された。
本発明の一実施例においては、組換えアデノウイルスを用いて12量体TRAIL及び
HSV−TKを同時に発現する間葉系幹細胞を作製し、前記間葉系幹細胞がインビトロで
癌細胞と共に培養されると、癌細胞特異的なアポトーシスが大幅に増加することが確認さ
れ(図4)、転移性腎臓癌マウスモデルにおいても前記間葉系幹細胞の投与により肺腫瘍
結節が減少し(図5)、マウスの生存期間が大幅に延長することが確認された(図6)。
これらの結果から、本発明の細胞、特に幹細胞は、癌を治療するための抗癌細胞治療剤と
して使用可能であることが分かる。
本発明のさらに他の態様は、前記宿主細胞を含む癌治療用組成物を提供する。前記宿主
細胞は、前述したように、12量体TRAIL及び自殺遺伝子タンパク質を同時に発現す
ることにより、抗癌効能が相乗的に増加するので、癌治療効果を有する。
前記宿主細胞だけでなく、本発明の12量体TRAIL及びHSV−TKタンパク質を
同時に生産する組換え発現ベクター、前記ベクターを用いて作製した組換えアデノウイル
スも、本発明の癌治療用組成物の有効成分として含まれる。
本発明の組成物により治療可能な癌には一般的な癌疾患が全て含まれ、本発明の細胞治
療剤により死滅を誘導できる癌細胞による癌は限定されることなく含まれる。その例とし
て、肝臓癌、胃癌、結腸癌、乳癌、肺癌、膵臓癌、大腸癌、腎臓癌、子宮頸癌、前立腺癌
、卵巣癌、甲状腺癌など、一般に知られる全ての癌が含まれ、固形癌や転移癌の全てが含
まれ、転移癌であることが好ましい。本発明の一実施例においては、腎臓癌細胞であるR
ENCA細胞による転移癌マウスモデルを用いて癌治療効能を確認した(図5〜7)。
本発明の組成物は、薬学的に許容される担体を含み、錠剤、トローチ剤、カプセル剤、
エリキシル剤、懸濁剤、シロップ剤、ウエハー剤、注射剤などの様々な剤形で作製するこ
とができる。薬学的受容可能な担体には、任意のあらゆる溶媒、分散媒体、コーティング
剤、抗菌及び防カビ剤、等張液、吸収遅延剤などが含まれる。薬学的活性物質に対するこ
れらの媒体及び物質は公知である。
前記組成物は、目的に応じて適切な薬学的組成物の形態で作製することができる。
具体的な態様として、本発明の前記12量体TRAIL及びHSV−TKタンパク質を
産生するベクター、前記ベクターを用いて生成されたアデノウイルス又は幹細胞は、癌疾
患治療組成物として提供される。前記治療組成物は、ヒトを含む哺乳類に接種することが
できる。
具体的な態様として、本発明の12量体TRAILとHSV−TKタンパク質とを含む
組成物は、経口投与、又は筋肉、静脈、動脈、腹腔、皮下、皮内などの非経口投与を行う
ことができる。好ましい投与方式及び製剤は、静脈注射剤、皮下注射剤、皮内注射剤、筋
肉注射剤、点滴注射剤、腫瘍内直接注射などである。前記組成物は、単一又は多重投与す
ることができる。特に、本発明の組成物は、GCV(ganciclovir)と同時に又はGCV
投与後に投与することができる。
また、前記組成物は、薬学的有効量で投与されるようにする。薬学的有効量は、投与方
法及び回数、癌の種類及び重症度、患者の年齢及び性別、患者の状態、並びにその他医学
分野で公知の要素により決定される。前記組成物は、単一又は多重投与することができる
本発明のさらに他の態様は、前記癌治療用組成物を癌の疑いのある被験体に投与する段
階を含む癌治療方法を提供する。前記癌及び癌治療用組成物については前述した通りであ
り、癌治療用組成物は、前述したように12量体TRAIL及び自殺遺伝子タンパク質を
同時に発現することにより、抗癌効能が相乗的に増加して癌治療効果を有するので、被験
体への投与により癌治療方法に用いることができる。
癌の疑いのある被験体に投与する癌治療用組成物は、前述した宿主細胞だけでなく、本
発明の12量体TRAIL及びHSV−TKタンパク質を同時に生産する組換え発現ベク
ター、前記ベクターを用いて作製した組換えアデノウイルスを有効成分として含んでもよ
い。
本発明における用語「被験体」とは、本発明による癌治療用の薬学的組成物の投与によ
り症状が好転する疾患である癌を有するヒトや、ウマ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、ラクダ、カ
モシカ、イヌなどの動物を意味する。前記癌治療用組成物を個体に投与することにより、
癌を効果的に予防及び治療することができる。
本発明における用語「投与」とは、任意の適切な方法で被験体に所定の物質を導入する
ことを意味し、本発明による癌治療用組成物の投与経路は、前述したように標的組織に送
達できるものであれば、一般的なあらゆる経路を介して経口又は非経口投与することがで
きる。また、本発明による癌治療用組成物は、有効成分を標的細胞に送達できる任意の装
置により投与することができる。
本発明の癌治療方法は、ガンシクロビル(ganciclovir, GCV)を投与する段階をさらに
含んでもよい。前記GCVは、本発明の癌治療用組成物と共に又は前記癌治療用組成物投
与前もしくは後に投与することができる。本発明の一実施例においては、本発明の幹細胞
治療剤投与後にGCVを投与して癌細胞アポトーシス及び癌治療効能を評価した。
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明する。これらの実施例は本発明をより具
体的に説明するためのものにすぎず、本発明の要旨に沿って本発明の範囲がこれらの実施
例に限定されないことは本発明の属する技術分野における通常の知識を有する者にとって
自明である。
実施例1:tPA−SPD−TRAIL DNAカセット(dTRAIL)の構成
配列番号4の核酸配列を有するコドン最適化されたtPA分泌シグナル配列と、配列番
号5の核酸配列を有するコドン最適化されたSPD 12量体形成配列とを連結した形態
に化学的に合成した。ベクターに容易に挿入できるように、末端にKpnI(5’)とN
otI(3’)サイトを添加した。tPA−SPDシグナル配列をKpnIとNotIで
切断された誘導性アデノウイルスシャトルベクターであるpShuttle−Tet10
ベクターに挿入してpShuttle−Tet10/tPA−SPDベクターを構成した
。誘導性アデノウイルスシャトルベクターであるpShuttle−Tet10は、誘導
性プロモーターであるCMV−Tet10を有する。次に、配列番号6の核酸配列を有す
るコドン最適化されたヒトTRAIL(114−281)を化学的に合成した。同様に、
ベクターに容易に挿入できるように、末端にNotI(5’)とXbaI(3’)サイト
を添加した。その後、NotIとXbaIで切断されたpShuttle−Tet10/
tPA−SPDベクターに挿入してpShuttle−Tet10/tPA−SPD−T
RAILを構築し、tPA−SPD−TRAIL DNAカセットを作製した(配列番号
1)。
実施例2:dTRAIL−IRES−TKカセットの構成
実施例1で作製した配列番号1の核酸配列を有するコドン最適化された12量体ヒトT
RAIL配列、配列番号2の核酸配列を有するIRES配列、及び配列番号3の核酸配列
を有するコドン最適化されたHSV−TK配列をそれぞれ化学的に合成してDNAカセッ
トを作製した(図1)。作製されたDNAカセットをアデノウイルスシャトルベクターで
あるpShuttleベクターに挿入してpShuttle/dTRAIL−IRES−
TKベクターを構成した。pShuttle/dTRAIL−IRES−TKをPmeI
で切断し、その後複製不可能なpAd/EasyベクターとBJ5183コンピテントセ
ル(competent cell)で相同組換え(homologous recombination)反応を行った。その後
、カナマイシン抗生剤を用いてdTRAIL−IRES−TKカセットが存在するpAd
/dTRAIL−IRES−TKを選択した。正確な確認のために、PacIで切断して
35+4.5kbのDNAバンドを確認した。次に、pAd/dTRAIL−IRES−
TKをパッケージング細胞である293細胞株に形質転換し、10日後にdTRAIL−
IRES−TKカセットを発現する組換えアデノウイルスrAd/dTRAIL−IRE
S−TKを得た。
実施例3:MSC/dTRAIL−TKのTRAIL及びHSV−TK発現の確認
前記dTRAIL及びHSV−TKの両方を発現する間葉系幹細胞(mesenchymal stem
cell, MSC)であるMSC/dTRAIL−TKの作製のために、実施例2で作製したr
Ad/dTRAIL−IRES−TK及び鉄イオンを用いて30分間骨髄由来マウス間葉
系幹細胞(rBM−MSC)を感染させた。感染24時間後に、細胞溶解物(cell lysate)を
用いてヒトTRAILの発現をウェスタンブロッティング(westernblotting)で確認し
、HSV−TKの発現をRT−PCRで確認した(図2)。その結果、作製されたMSC
/dTRAIL−TKはTRAIL及びHSV−TKを発現することが確認された。
実施例4:GCV処理によるMSC/dTRAIL−TKの細胞生存率及びTRAIL
発現率の確認
GCV処理によるMSC/dTRAIL−TKの自殺誘導効果を確認するために、10
、30、100μMのGCVで細胞を処理した。GCV処理1日後から2日間隔でMSC
/dTRAIL−TKの細胞生存率をMTS方法で確認した。実験の結果、100μMの
GCVで処理して1週間経過したときに、ほとんど全ての細胞が除去されることが確認さ
れた(図3)。
次に、前述したように誘導されたMSC/dTRAIL−TKアポトーシスによりTR
AILの発現が減少する程度を確認するために、前述した濃度でGCV処理し、24時間
間隔で培養液を集めてTRAILの発現をELISA(enzyme-linked immunosorbent as
say)で確認した。実験の結果、GCV/TK処理によるアポトーシスによりTRAIL
発現が減少することが確認された(図3)。
実施例5:インビトロでdTRAIL及びHSV−TKの同時発現により大幅に増加し
た癌細胞アポトーシスの確認
12量体TRAIL及びHSV−TKを同時に発現するMSCが癌細胞アポトーシスに
おいて複合効果(シナジー効果)があるか否かをin vitroで確認するために、癌
細胞とMSC/dTRAIL−TKを共に培養してアポトーシスが起こった細胞と死んだ
細胞を分析した。ここで、比較のために、何も発現しないMSC/Mock、HSV−T
Kのみ発現するMSC/TK、及びdTRAILのみ発現するMSC/dTRAILを共
に培養した群を対照群として用いた。癌細胞特異的なアポトーシスを確認するために、C
FSE(Carboxyfluorescein succinimidyl ester)で標識して前記MSCを腎臓癌細胞
であるRENCA細胞と48時間培養し、その後GCV 100μMで処理した。さらに
48時間又は72時間培養し、その後全ての細胞を集め、Annexin−Vと7−AA
D染色を行ってアポトーシスをFACS(fluorescense activated cell sorter)で測定
した。その結果、MSC/dTRAIL又はMSC/TKと共に培養された細胞に比べて
、MSC/dTRAIL−TKで処理したRENCA細胞において大幅に増加した癌細胞
アポトーシスが観察され、特に72時間後には90%以上の癌細胞が除去されることが確
認された(図4)。これらのin vitro direct co−culture実験
結果から、本発明のMSC/dTRAIL−TKにより12量体TRAILとHSV−T
Kが同時に発現すると、癌細胞アポトーシス誘導のシナジー効果が発揮されることが確認
された。
実施例6:マウス転移癌モデルにおけるMSC/dTRAIL−TKの癌治療効能の評

In vitroで確認されたMSC/dTRAIL−TKの抗癌効果をRENCA転
移癌マウスモデルで確認するために、5×10のRENCA細胞を静脈注射し、7日後
に同数のMSC/dTRAIL−TKを静脈注射した。ここで、比較のために、MSC/
EGFP、MSC/dTRAIL、MSC/TKを対照群として用いた。2日後から50
mg/kgのGCVを7日間毎日腹腔注射し、腫瘍を注射した14日後に肺に転移した腫
瘍結節の数を観察した。その結果、MSC/TK及びMSC/dTRAIL投与群に比べ
て、MSC/dTRAIL−TK投与群において約35%の肺腫瘍結節の減少が確認され
た(図5)。また、転移癌マウスの生存率の観察を続けた結果、MSC/dTRAIL−
TK投与により転移癌マウスの生存期間が80日まで延長されることが確認された(図6
)。これらの結果から、本発明のMSC/dTRAIL−TKがin vivo動物モデ
ルを用いた実験においても優れた抗癌効果を示すことが確認された。
実施例7:MSC/dTRAIL−TKの反復投与により誘導された転移癌の100%
完治率
反復投与によりMSC/dTRAIL−TKの転移癌治療効能を向上させることができ
るかを確認するために、実施例6と同じマウス転移癌モデルにMSC/dTRAIL−T
Kを腫瘍投与の7日後から2週間間隔で2回又は3回投与した。転移癌マウスの生存率を
観察した結果、1回投与した群では90日までに全ての転移癌マウスが死んだのに対して
、2回投与した群ではマウスの70%が完治したことが確認された(図7)。また、MS
C/dTRAIL−TKを3回投与した転移癌マウスは100%が完治したことが分かっ
た。転移癌は従来の化学療法、放射線療法による治療が非常に難しいだけでなく、従来の
遺伝子治療を単独で用いた転移癌治療研究において完治率100%の結果を得た報告がな
いことからも、本研究の結果は非常に優れたものであり、差別化された結果といえる。

Claims (19)

  1. 12量体TRAIL(TNF related apoptosis inducing ligand)をコードする核酸配
    列、及び自殺遺伝子の核酸配列を含むDNAカセット。
  2. 前記12量体TRAILをコードする核酸配列と自殺遺伝子の核酸配列の間に転写/翻
    訳開始核酸配列をさらに含む、請求項1に記載のDNAカセット。
  3. 前記転写/翻訳開始核酸配列がIRES(internal ribosome entry site)核酸配列で
    ある、請求項2に記載のDNAカセット。
  4. 前記12量体TRAILをコードする核酸配列が、分泌シグナル配列(secretion sign
    al sequence)をコードする核酸配列、12量体形成ドメイン(dodecamer-forming domai
    n)をコードする核酸配列、及びTRAILをコードする核酸配列を含む、請求項1に記
    載のDNAカセット。
  5. 前記分泌シグナル配列がtPA(tissue plasminogen activator)である、請求項4に
    記載のDNAカセット。
  6. 前記12量体形成ドメインがSPD(surfactant protein D)である、請求項4に記載
    のDNAカセット。
  7. 前記TRAILが、TRAILタンパク質配列全体において114〜281位のアミノ
    酸配列範囲に対応する細胞外ドメインである、請求項4に記載のDNAカセット。
  8. 前記自殺遺伝子がHSV−TK(Herpes simplex virus thymidine kinase)である、
    請求項1に記載のDNAカセット。
  9. 前記12量体TRAILをコードする核酸配列が配列番号1の核酸配列を有する、請求
    項1に記載のDNAカセット。
  10. 前記HSV−TKをコードする核酸配列が配列番号2の核酸配列を有する、請求項8に
    記載のDNAカセット。
  11. 前記IRES核酸配列が配列番号3の核酸配列を有する、請求項3に記載のDNAカセ
    ット。
  12. 請求項1〜11のいずれか一項に記載のDNAカセットを含む組換え発現ベクター。
  13. 前記組換え発現ベクターがアデノウイルス由来である、請求項12に記載の組換え発現
    ベクター。
  14. 請求項13の組換え発現ベクターを用いて作製された組換えアデノウイルス。
  15. 請求項14の組換えアデノウイルスでトランスフェクションした宿主細胞。
  16. 前記宿主細胞が幹細胞である、請求項15に記載の宿主細胞。
  17. 請求項15の宿主細胞を含む癌治療用組成物。
  18. 請求項17の癌治療用組成物を癌の疑いのある被験体に投与する段階を含む癌治療方法
  19. ガンシクロビル(ganciclovir, GCV)を投与する段階をさらに含む、請求項18に記載
    の癌治療方法。
JP2016219322A 2012-02-01 2016-11-10 12量体trail及びhsv−tk自殺遺伝子を同時に発現するベクター並びにそれを用いた抗癌幹細胞治療剤 Expired - Fee Related JP6552471B2 (ja)

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