JP2016511823A - ブラジキニン媒介障害の評価および治療 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2013年1月20日に出願された米国仮特許出願第61/754,607号の出願日の恩典を主張する。この参照される出願の全内容は参照により本明細書に組み込まれる。
便宜上、本発明をさらに説明する前に、明細書、実施例および添付の特許請求の範囲において使用される一定の用語をここで規定する。他の用語は、明細書中で現れるように規定される。
[結合]=N・[遊離]/((1/Ka)+[遊離])。
血漿カリクレインは、大部分がその基質、高分子量キニノーゲン(HMWK)に結合されたプレカリクレインと呼ばれる不活性チモーゲンとして循環する。刺激に応じて、FXIIは、FXIIaに活性化される。FXIIaはプレカリクレインを切断し、活性血漿カリクレインを形成させる(図1)。循環プレカリクレインのおよそ75−90%がHMWKに、HMWKのドメイン6との非活性部位相互作用により結合される。遊離のおよびHMWK−結合された活性pKalは、切断されたHMWKおよびブラジキニンを生成させる。血漿カリクレイン活性化のバイオマーカーが表2に示される。バイオマーカーの適合性は、HAEの急性発作の存在下、およびそれなしのそのレベルに従い証明することができる。これらのバイオマーカーのレベルもまた、ブラジキニン媒介浮腫またはpKal活性により媒介される他の疾患の発作中に変化され得る。表2を参照されたい。
表2はpKalまたはブラジキニン媒介障害に対して被験体を評価するための表2および本明細書のどこかに記載される方法により評価することができるマーカーを提供する。表2はpKalまたはブラジキニン媒介障害と関連するマーカーのレベルにおける変化の方向を示す。
いくつかの実施形態では、HMWKの1つの形態に、HMWKの他の形態と比べて特異的に(優先的に)結合する検出試薬(例えば、抗体)を、試料(候補患者由来の生体試料(例えば、血液試料または血漿試料)とすることができる)中の切断されたHMWKのレベルを決定するための本明細書で記載されるアッセイ法において使用することができる。1つの例では、検出試薬は無傷のHMWKと比べて切断されたHMWKに特異的に結合する抗体である。別の例では、検出試薬は切断された形態と比べて無傷のHMWKに特異的に結合する抗体である。あるいは、または加えて、抗体は、切断されたHMWKの軽鎖のC末端に特異的に結合する。そのような抗体はHMWKをLMWKから区別するために使用することができ、というのも、LMWKは選択的スプライシングによる切断されたHMWKの軽鎖のC末端フラグメントを含まないからである。
式中v=測定した速度;v0=阻害剤がない場合の速度;Ki,app=見かけの阻害定数;I=総阻害剤濃度;ならびにE=総酵素濃度。
高分子量キニノーゲン(HMWK)は血漿中に、およそ110kDaの分子量を有する単一ポリペプチド(1−鎖)多ドメイン(ドメイン1−6)タンパク質として存在する(図4)。HMWKはドメイン4内でpKalにより切断され、9アミノ酸の、炎症促進性ペプチドブラジキニンおよびHMWKの2−鎖形態(切断されたキニノーゲン)が放出される。HMWKの2鎖は重鎖(これは、HMWKのドメイン1−3を含む)、および軽鎖(これはHMWKのドメイン5および6を含む)である。重および軽鎖は、それぞれ、およそ56および46キロダルトンの分子量を有する。図4。
無傷の高分子量キニノーゲン(HMWK)は、本明細書では「無傷のキニノーゲン」とも呼ばれ、例えば、凝固薬または免疫学的方法、例えば、ラジオイムノアッセイを使用してアッセイすることができる(例えば、Kerbiriou−Nabias, D.M., Br J Haematol, 1984, 56(2):2734−86を参照されたい)。ヒトHMWKの軽鎖に対するモノクローナル抗体は知られている。例えば、Reddigari, S.R. & Kaplan, A.P., Blood, 1999, 74:695−702を参照されたい。発色性基質に依存するHMWKのためのアッセイもまた使用することができる。例えば、Scott, C.F. et al. Thromb Res, 1987, 48(6):685−700;Gallimore, M.J. et al. Thromb Res, 2004, 114(2):91−96を参照されたい。
>gi|156231037|ref|NP_001095886.1|キニノーゲン−1アイソフォーム1前駆体[ホモサピエンス]
MKLITILFLCSRLLLSLTQESQSEEIDCNDKDLFKAVDAALKKYNSQNQSNNQFVLYRITEATKTVGSDT
FYSFKYEIKEGDCPVQSGKTWQDCEYKDAAKAATGECTATVGKRSSTKFSVATQTCQITPAEGPVVTAQY
DCLGCVHPISTQSPDLEPILRHGIQYFNNNTQHSSLFMLNEVKRAQRQVVAGLNFRITYSIVQTNCSKEN
FLFLTPDCKSLWNGDTGECTDNAYIDIQLRIASFSQNCDIYPGKDFVQPPTKICVGCPRDIPTNSPELEE
TLTHTITKLNAENNATFYFKIDNVKKARVQVVAGKKYFIDFVARETTCSKESNEELTESCETKKLGQSLD
CNAEVYVVPWEKKIYPTVNCQPLGMISLMKRPPGFSPFRSSRIGEIKEETTVSPPHTSMAPAQDEERDSG
KEQGHTRRHDWGHEKQRKHNLGHGHKHERDQGHGHQRGHGLGHGHEQQHGLGHGHKFKLDDDLEHQGGHV
LDHGHKHKHGHGHGKHKNKGKKNGKHNGWKTEHLASSSEDSTTPSAQTQEKTEGPTPIPSLAKPGVTVTF
SDFQDSDLIATMMPPISPAPIQSDDDWIPDIQIDPNGLSFNPISDFPDTTSPKCPGRPWKSVSEINPTTQ
MKESYYFDLTDGLS(SEQ ID NO:1)
切断された高分子量キニノーゲン(HMWK)は、本明細書では「切断されたキニノーゲン」とも呼ばれ、例えば、実施例1、および3〜7で記載される方法、例えば、ウエスタンブロットを使用して評価することができる。いくつかの実施形態では、切断されたHMWKの軽鎖は評価することができる。切断されたHMWKに結合する抗体、例えば切断されたHMWKの軽鎖(例えば、C末端残基を含むエピトープ)に結合する抗体を使用することができる。1つの例はマウスmAbクローン11H05である。加えて、切断されたHMWKは質量分析を使用して評価することができる。切断されたHMWKのレベルを評価するための免疫ブロット技術が当技術分野で知られている。、例えば、Buhler R. et al. Blood Coagul Fibrinolysis, 1995, 6(3):223−232を参照されたい。
>切断されたキニノーゲン−1重鎖
QESQSEEIDCNDKDLFKAVDAALKKYNSQNQSNNQFVLYRITEATKTVGSDTFYSFKYEI
KEGDCPVQSGKTWQDCEYKDAAKAATGECTATVGKRSSTKFSVATQTCQITPAEGPVVTA
QYDCLGCVHPISTQSPDLEPILRHGIQYFNNNTQHSSLFMLNEVKRAQRQVVAGLNFRIT
YSIVQTNCSKENFLFLTPDCKSLWNGDTGECTDNAYIDIQLRIASFSQNCDIYPGKDFVQ
PPTKICVGCPRDIPTNSPELEETLTHTITKLNAENNATFYFKIDNVKKARVQVVAGKKYF
IDFVARETTCSKESNEELTESCETKKLGQSLDCNAEVYVVPWEKKIYPTVNCQPLGMISL
MK(SEQ ID NO:2)
>切断されたキニノーゲン−1軽鎖
SSRIGEIKEETTVSPPHTSMAPAQDEERDSGKEQGHTRRHDWGHEKQRKHNLGHGHKHER
DQGHGHQRGHGLGHGHEQQHGLGHGHKFKLDDDLEHQGGHVLDHGHKHKHGHGHGKHKNK
GKKNGKHNGWKTEHLASSSEDSTTPSAQTQEKTEGPTPIPSLAKPGVTVTFSDFQDSDLI
ATMMPPISPAPIQSDDDWIPDIQIDPNGLSFNPISDFPDTTSPKCPGRPWKSVSEINPTT
QMKESYYFDLTDGLS(SEQ ID NO:3)
本明細書で開示されるバイオマーカーの値(例えば、絶対量もしくはレベルまたは相対量もしくはレベル、例えばパーセンテージ)、または本明細書で開示されるバイオマーカーの値の変化は、本明細書で記載されるアッセイおよび/または当技術分野で知られているアッセイを使用して評価することができる。いくつかの実施形態では、被験体由来の試料中の切断されたキニノーゲンのパーセンテージは本明細書で記載される方法のいずれかにおいて使用される。
本開示はまた、そのようなものを含む試料、例えば、ヒト患者由来の生体試料中の切断されたおよび/または無傷のキニノーゲンを評価する際に使用するためのキットを提供する。そのようなキットは他の形態、および任意で、対照としての切断されたキニノーゲンおよび/または無傷のキニノーゲンと比べて、切断されたキニノーゲンまたは無傷のキニノーゲンのいずれかに特異的に結合する検出試薬を含むことができる。いくつかの実施形態では、キットはさらに、検出試薬の切断されたおよび/または無傷のキニノーゲンへの結合を検出するための二次抗体および/または試薬を含む。
本明細書で記載されるアッセイ法およびキットは疾患の評価、例えば、疾患の診断または予後のために適用することができる。評価は被験体を、本明細書で記載される疾患、例えば、pKal媒介障害、例えばHAEおよび自己免疫疾患、例えばRA、UC、およびクローン病の危険がある、またはこれを有するとして同定することを含み得る。評価はまた、疾患の治療をモニタすること、例えばpKal媒介障害、例えばHAEに対する治療の有効性を評価することを含み得る。さらに、評価はpKal阻害剤により治療することができる疾患を同定することを含み得る。
いくつかの実施形態では、アッセイ法およびキットは、候補被験体(例えば、pKal媒介障害、例えばHAEまたは自己免疫疾患、例えばRA、UC、およびクローン病を有する疑いがあるヒト患者)から採取した生体試料(例えば、血液試料または血漿試料)中の切断されたキニノーゲンおよび/または無傷のキニノーゲンのレベルを決定するために実施される。切断されたキニノーゲンのレベルはその後、試料中の、無傷のキニノーゲンまたはキニノーゲンの総量のいずれかと比較することができ、試料中の、切断されたキニノーゲンの値(例えば、パーセンテージ)、無傷のキニノーゲンの値、または両方が決定される。切断されたキニノーゲンおよび/または無傷のキニノーゲンの値は、基準値と比較することができ、被験体がpKal媒介障害、例えばHAEまたは自己免疫疾患、例えばRA、UC、およびクローン病を有するか、またはその危険があるかどうか決定される。例えば、切断されたキニノーゲンのパーセンテージが基準数字にある、またはそれより高い場合、被験体は、pKal媒介障害、例えばHAE、RA、UC、およびクローン病を有する、またはその危険があるとして同定することができる。あるいは、無傷のキニノーゲンのパーセンテージが基準数字にある、またはそれより低い場合、被験体はpKal媒介障害、例えばHAE、RA、UC、およびクローン病を有する、またはその危険があるとして同定することができる。
いくつかの実施形態では、血漿カリクレイン活性が関与する疾患または病状は遺伝性血管浮腫(HAE)である。遺伝性血管浮腫(HAE)は「クインケ浮腫」、C1エステラーゼインヒビター欠損、C1インヒビター欠損、および遺伝性血管神経性浮腫(HANE)としても知られている。HAEは、重篤な腫脹の再発性エピソード(血管浮腫)により特徴付けられ、これは、例えば、肢、顔、生殖器、胃腸管、および気道に影響し得る。HAEの症状としては、例えば、腕、脚、唇、眼、舌、および/または咽頭における腫脹;咽頭腫脹および突然の嗄声が関与し得る気道閉塞;明らかな原因のない腹部疝痛の反復エピソード;および/または腸の腫脹(重篤であり、腹部疝痛、嘔吐、脱水、下痢、疼痛、および/またはショックにつながることがある)が挙げられる。このHAEを有する個体の約3分の1が発作中に輪状紅斑と呼ばれるかゆみのない皮膚発疹を発症する。
関節リウマチ(RA)は関節腫脹および疼痛を引き起こす自己免疫性、慢性炎症疾患であり、普通は関節破壊が起こる。RAは一般に、疾患活動性の「再燃」が疾患症状の緩解によって中断される、再発/緩解過程をたどる。RAは多くの追加の炎症性障害、例えば下記と関連する:シェーグレン症候群(涙および唾液腺の炎症により引き起こされるドライアイおよびマウス)、胸膜炎(深呼吸および咳嗽時に疼痛を引き起こす胸膜の炎症)、リウマトイド結節(肺内で発症する炎症の結節性部位)、心膜炎(横になるまたは前かがみになると疼痛を引き起こす心膜の炎症)、フェルティ症候群(RAと共に観察される脾腫および白血球減少症、被験体が感染しやすくなる)、および血管炎(血流をブロックする可能性のある血管の炎症)。血漿カリクレインは関節リウマチに関与する。
炎症性腸疾患(IBD)は大腸および、場合によっては、小腸の炎症状態の群である。IBDの主要な形態はクローン病および潰瘍性大腸炎(UC)である。ずっと少ない症例には他の形態のIBDが関与している:コラーゲン大腸炎、リンパ球性大腸炎、虚血性大腸炎、便流変更性大腸炎、ベーチェット症候群、感染性大腸炎、および不確定大腸炎。クローン病とUCの間の主な違いは炎症性変化の位置および性質である。クローン病は口から肛門までの胃腸管の任意の部分に影響する可能性があるが(スキップ病変)、症例の大部分は回腸末端において始まる。潰瘍性大腸炎は、対照的に、結腸および直腸に限定される。顕微鏡的に、潰瘍性大腸炎は粘膜(腸の上皮層)に限定されるが、クローン病は腸壁全体に影響する。最後に、クローン病および潰瘍性大腸炎は異なった割合で腸外徴候を与える(例えば肝臓障害、関節炎、皮膚徴候および眼障害)。
血漿カリクレイン活性と関連する他の例示的な疾患または病状としては下記が挙げられる:ヒスタミン非依存性特発性血管浮腫、関節リウマチ、クローン病、潰瘍性大腸炎、ループス、アルツハイマー病、敗血症性ショック、熱傷、脳虚血/再灌流傷害、脳浮腫、糖尿病性網膜症、糖尿病性腎症、黄斑浮腫、血管炎、動脈または静脈血栓症、補助人工心臓またはステントと関連する血栓症、血栓症を伴うヘパリン誘導血小板減少症、血栓塞栓性疾患、および不安定狭心症を伴う冠動脈心疾患、浮腫、眼疾患、痛風、腸疾患、口腔粘膜炎、神経障害性疼痛、炎症痛、脊柱管狭窄−変性脊椎疾患、術後イレウス、大動脈瘤、変形性関節症、遺伝性血管浮腫、肺塞栓症、脳卒中、頭部外傷もしくはペリ腫瘍脳浮腫、敗血症、急性中大脳動脈(MCA)虚血性イベント(脳卒中)、再狭窄(例えば、血管形成術後)、全身性エリテマトーデス腎炎、自己免疫疾患、炎症疾患、心血管疾患、神経疾患、タンパク質ミスフォールディングと関連する疾患、血管新生と関連する疾患、高血圧性腎症および糖尿病性腎症、アレルギー性および呼吸器疾患(例えばアナフィラキシー、喘息、慢性閉塞性肺疾患、急性呼吸促迫症候群、嚢胞性線維症、持続性、鼻炎)および組織傷害(例えば火傷または化学的損傷)。
本明細書で記載されるアッセイ法はまた、pKal媒介障害(例えば、HAE)に対する治療の有効性を評価するために適用することができる。例えば、複数の生体試料(例えば、血液または血漿試料)は治療前後または治療の過程中のいずれかに、治療が実施される被験体から採取することができる。切断されたおよび/または無傷のキニノーゲンのレベルは、本明細書で記載されるアッセイ方法のいずかれにより測定することができ、切断されたおよび/または無傷のキニノーゲンの値(例えば、パーセンテージ)はこれに応じて決定することができる。切断されたキニノーゲンのパーセンテージが治療後または治療の過程にわたって減少した(初期に採取された試料中のものと比べた場合の、後に採取された試料中の切断されたキニノーゲンパーセンテージ)または無傷のキニノーゲンのパーセンテージが治療後または治療の過程にわたって増加した場合、治療が有効であることを示す。いくつかの例では、治療は治療薬、例えば本明細書で記載されるカリクレイン結合剤、本明細書で記載されるブラジキニンB2受容体アンタゴニスト、または本明細書で記載されるC1−INH補充剤を含む。治療薬の例としては、DX−2930またはDX88が挙げられるが、それらに限定されない。
切断されたキニノーゲンおよび/または無傷のキニノーゲンの値はまた、pKal阻害剤により治療可能であり得る障害を同定するために頼ることができる。この方法を実施するために、標的疾患を有する被験体から採取した試料(例えば、血液試料または血漿試料)中の切断されたキニノーゲンのレベルおよび/または無傷のキニノーゲンのレベルは、好適なアッセイ、例えば、本明細書で記載されるもの、例えばウエスタンブロットアッセイに測定することができる。切断されたおよび/または無傷のキニノーゲンの値、例えばパーセンテージは本明細書で記載されるように決定することができる。切断されたキニノーゲンおよび/または無傷のキニノーゲンの値は、本明細書で記載される基準値と比較することができる。切断されたキニノーゲン/無傷のキニノーゲンの値が、基準値から逸脱する場合(例えば、上昇したまたは減少した)、pKal阻害剤は、疾患の治療に有効であり得ることを示す。例えば、切断されたキニノーゲンのパーセンテージが治療後または治療の過程にわたって減少する場合、治療は有効であるとして同定することができる。あるいは、無傷のキニノーゲンのパーセンテージが治療後または治療の過程にわたって増加する場合、治療は有効であると同定される。
本明細書で記載される方法のいずかにより同定される、pKal媒介またはブラジキニン媒介障害の危険がある、またはこれを患う(例えば、有する)被験体は任意の適切な治療薬で治療することができる。いくつかの実施形態では、提供される方法は、提供されるアッセイ、例えば、バイオマーカー検出のアウトプットに基づき、被験体に対する治療を選択することを含む。
血漿カリクレイン結合剤(例えば、結合タンパク質、例えば、ポリペプチド、例えば、阻害ポリペプチド、例えば、抗体、例えば、阻害抗体、または他の結合剤、例えば、小分子)は様々な疾患および病状、例えば、血漿カリクレイン活性が関与する疾患および病状に有用な治療薬である。例えば、いくつかの実施形態では、血漿カリクレイン活性が関与する疾患または病状は遺伝性血管浮腫(HAE)である。いくつかの実施形態では、血漿カリクレイン結合タンパク質またはポリペプチドはpKal媒介またはブラジキニン媒介障害の危険があるまたはこれを患う被験体に投与される。
A4_HUMAN (P05067), A4_MACFA (P53601), A4_MACMU (P29216),
A4_MOUSE (P12023), A4_RAT (P08592), A4_SAISC (Q95241),
AMBP_PLEPL (P36992), APP2_HUMAN (Q06481), APP2_RAT (P15943),
AXP1_ANTAF (P81547), AXP2_ANTAF (P81548), BPT1_BOVIN (P00974),
BPT2_BOVIN (P04815), CA17_HUMAN (Q02388), CA36_CHICK (P15989),
CA36_HUMAN (P12111), CRPT_BOOMI (P81162), ELAC_MACEU (O62845),
ELAC_TRIVU (Q29143), EPPI_HUMAN (O95925), EPPI_MOUSE (Q9DA01),
HTIB_MANSE (P26227), IBP_CARCR (P00993), IBPC_BOVIN (P00976),
IBPI_TACTR (P16044), IBPS_BOVIN (P00975), ICS3_BOMMO (P07481),
IMAP_DROFU (P11424), IP52_ANESU (P10280), ISC1_BOMMO (P10831),
ISC2_BOMMO (P10832), ISH1_STOHE (P31713), ISH2_STOHE (P81129),
ISIK_HELPO (P00994), ISP2_GALME (P81906), IVB1_BUNFA (P25660),
IVB1_BUNMU (P00987), IVB1_VIPAA (P00991), IVB2_BUNMU (P00989),
IVB2_DABRU (P00990), IVB2_HEMHA (P00985), IVB2_NAJNI (P00986),
IVB3_VIPAA (P00992), IVBB_DENPO (P00983), IVBC_NAJNA (P19859),
IVBC_OPHHA (P82966), IVBE_DENPO (P00984), IVBI_DENAN (P00980),
IVBI_DENPO (P00979), IVBK_DENAN (P00982), IVBK_DENPO (P00981),
IVBT_ERIMA (P24541), IVBT_NAJNA (P20229), MCPI_MELCP (P82968),
SBPI_SARBU (P26228), SPT3_HUMAN (P49223), TKD1_BOVIN (Q28201),
TKD1_SHEEP (Q29428), TXCA_DENAN (P81658), UPTI_PIG (Q29100),
AMBP_BOVIN (P00978), AMBP_HUMAN (P02760), AMBP_MERUN (Q62577),
AMBP_MESAU (Q60559), AMBP_MOUSE (Q07456), AMBP_PIG (P04366),
AMBP_RAT (Q64240), IATR_HORSE (P04365), IATR_SHEEP (P13371),
SPT1_HUMAN (O43278), SPT1_MOUSE (Q9R097), SPT2_HUMAN (O43291),
SPT2_MOUSE (Q9WU03), TFP2_HUMAN (P48307), TFP2_MOUSE (O35536),
TFPI_HUMAN (P10646), TFPI_MACMU (Q28864), TFPI_MOUSE (O54819),
TFPI_RABIT (P19761), TFPI_RAT (Q02445), YN81_CAEEL (Q03610)
DX−2930重鎖可変領域:
EVQLLESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSHYIMMWVRQAPGKGLEWVSGIYSSGGITVYADSVKGRFTISRDNSKNTLYLQMNSLRAEDTAVYYCAYRRIGVPRRDEFDIWGQGTMVTVSS(SEQ ID NO:6)
DX−2930軽鎖可変領域:
DIQMTQSPSTLSASVGDRVTITCRASQSISSWLAWYQQKPGKAPKLLIYKASTLESGVPSRFSGSGSGTEFTLTISSLQPDDFATYYCQQYNTYWTFGQGTKVEI(SEQ ID NO:7)
Glu Ala Met His Ser Phe Cys Ala Phe Lys Ala Asp Asp Gly Pro Cys Arg Ala Ala His Pro Arg Trp Phe Phe Asn Ile Phe Thr Arg Gln Cys Glu Glu Phe Ile Tyr Gly Gly Cys Glu Gly Asn Gln Asn Arg Phe Glu Ser Leu Glu Glu Cys Lys Lys Met Cys Thr Arg Asp(SEQ ID NO:8)
EpiKal2: Met His Ser Phe Cys Ala Phe Lys Ala Asp Asp Gly Pro Cys Arg Ala Ala His Pro Arg Trp Phe Phe Asn Ile Phe Thr Arg Gln Cys Glu Glu Phe Ser Tyr Gly Gly Cys Gly Gly Asn Gln Asn Arg Phe Glu Ser Leu Glu Glu Cys Lys Lys Met Cys Thr Arg Asp(SEQ ID NO:9)
いくつかの実施形態では、ブラジキニンB2受容体アンタゴニストは被験体に投与される。例示的なブラジキニンB2受容体アンタゴニストとしては、インカチバント(Firazyr(登録商標))が挙げられ、これは10アミノ酸を含むペプチド模倣薬であり、これは、天然ブラジキニンのブラジキニンB2受容体への結合をブロックする。
いくつかの実施形態では、補充C1−INH剤は被験体に投与される。例示的なC1−INH補充剤は、公的に入手可能であり、例えば、Berinert(登録商標)が挙げられ、これは、精製ヒト低温殺菌ナノ濾過C1−INH濃縮物である。
実施例1:切断されたキニノーゲン
接触系の分析に基づいて、切断されたキニノーゲンは接触系活性化を測定するのに好適なバイオマーカーである。切断されたキニノーゲンは以前、HAE発作中、硬変において、および敗血症中接触系活性化の結果として、上昇したことが示されている。抗体ファージディスプレイライブラリを、無傷のキニノーゲンの枯渇と組み合わせて、切断されたキニノーゲンに対してパニングした。並行してマウスを、切断されたキニノーゲンおよびハイブリドーマ細胞株から得られたモノクローナル抗体により免疫化した。どちらの試みも、切断されたおよび無傷のキニノーゲンの両方に結合する多くの異なるモノクローナル抗体を提供したが、切断されたキニノーゲンのみに結合する抗体は提供されなかった。
ウエスタンブロットを使用して、発作中に得られ、アンチプロテアーゼカクテルを含むクエン酸塩添加血漿管中に採取した、患者由来の血漿は、無傷のキニノーゲン(すなわち、1−鎖)の量の減少を示すことを示した(図3)。切断されたキニノーゲン(すなわち、2−鎖)の増加が観察された。
無傷の(1−鎖)および切断された(2−鎖)高分子量キニノーゲン(HMWK)の検出のためのウエスタンブロットアッセイを、Licor検出を使用してさらに最適化させた。本明細書で記載されるこのアッセイは、動物を2−鎖HMWKで免疫化し、ハイブリドーマ融合物を1−鎖および2−鎖HMWKの両方に対し、ELISAによりスクリーニングすることにより、ハイブリドーマ技術により生成されたマウスモノクローナル抗体(クローン11H05)を使用する。11H05mAbをウエスタンブロットアッセイにおけるその性能、HMWKの軽鎖に特異的に結合し、重鎖に結合しないその能力に基づいて選択した。軽鎖バインダーが好ましく、というのも、軽鎖は他の血漿キニノーゲン(低分子量キニノーゲン、LMWK)に存在しないからであり、それはpKal基質ではない。アッセイはまた、血漿をプラスチック管に採取する重要性を証明するために使用され、というのも、ガラス管中での採取は接触系活性化となってしまったからである(図4)。
XCell SureLock(登録商標)ミニセル、Life Technologies(Invitrogen)、Cat.#EI0001
Gel Boxパワーサプライ
iBlot(登録商標)ウエスタンブロッティングトランスファー装置、Life Technologies(Invitrogen)、Cat. # IB1001
iBlot(登録商標)トランスファースタック、ニトロセルロース、ミニ、Life Technologies(Invitrogen)、Cat. # IB301001
Matrix Laboratories Impact2多チャネルピペッター、または等価物
Rainin Pipetman、様々な体積範囲、Rainin、Cat #:P−10、P−20、P−100、P−200、およびP−1000、または等価物
チャートレコーダを備えた−80℃フリーザー
チャートレコーダを備えた−20℃フリーザー
チャートレコーダを備えた2−8℃冷蔵庫
0.22μmポリエーテルスルホン(PES)Filter Systems、Corning、Cat#431096または等価物
脱イオンおよび精製水(DI水)、Ricca Chemical、Cat#9150−5、または等価物
NuPAGE7%トリス−酢酸ゲル、15ウェル、Life Technologies(Invitrogen)、Cat. # EA03555Box
トリス−酢酸SDS泳動用緩衝液(20X)、Life Technologies(Invitrogen)、Cat.#LA0041
NuPAGE試料還元剤(10X)、Life Technologies(Invitrogen)、Cat.#NP0009
NuPAGE試料緩衝液(4X)、Life Technologies(Invitrogen)、Cat.#NP0007
NuPAGE4−12%ビス−トリスゲル、15ウェル、Life Technologies(Invitrogen)、Cat. # NP0336BOX
MES SDS泳動用緩衝液(20X)、Life Technologies(Invitrogen)、Cat.#NP0002
Odysseyブロッキング緩衝液、LI−COR、Cat.#927−40000
Tween20、Sigma、Cat.#P1379
リン酸緩衝生理食塩水pH7.4、Sigma、Cat#P−3813または等価物
トリス、Fisher Scientific、Cat. # T393−5000
塩化ナトリウム、JT Baker、Cat. # 3624−19
6N塩酸、EMD、Cat.#HX0603M−6
3M酢酸ナトリウム緩衝液pH5.2、Teknova、Cat.#S0296
ウシ血清アルブミン(BSA)、IgGおよびプロテアーゼなし、Jackson ImmunoResearch、Cat. # 001−000−162
マウスモノクローナル抗LC HMWK抗体クローン、クローン11H05(#16)、1.4mg/mL、Dyax
ヤギ抗マウスIRDye 680RD、LI−COR、Cat.#926−68070
Odyssey1色分子量マーカー、LI−COR、Cat. # 928−40000
アンチプロテアーゼインヒビターカクテル(10X)、Dyaxにより提供
第XIIa因子、1.47mg/mL(21.6μM)、Enzyme Research Labs、Dyaxにより提供
キニノーゲン欠損血漿、Hyphen−Biomed、Dyaxにより提供
単鎖HMWK、1.61mg/mL、Enzyme Research Labs、Cat. # HK2700
2−鎖HMWK、2.01mg/mL、Enzyme Research Labs、Cat. # HK2362
正常ヒト血漿試料、HAE患者試料、およびBioreclamation試料、Dyaxにより提供
DX2930、Dyax、Lot#PURDX1−L01、32.1mg/mL
DX88、Dyax、Lot#B2007−029、10.1mg/mL
目的:
この実験の目的は、DX−2930のFXIIa接触系活性化に対する効果を決定することであった。DX2930は血漿カリクレイン阻害することができ、FXIIaによる治療に応じて、測定される2−鎖対1−鎖比を減少させる。5人の男性および5人の女性由来のクエン酸ナトリウム添加NHP試料を、未処理で、FXIIa活性化後、および、試料を10μg/mLのDX−2930で前処理した場合のFXIIa活性化後に試験した。各試料セットを非還元および還元条件下でアッセイした。
試料調製
1.NHP試料を凍結貯蔵から取り出し、室温に平衡化させた。下記男性NHP試料を試験した:BRH745050、BRH745051、BRH745052、BRH745053、およびBRH745054。下記女性試料を試験した:BRH745065、BRH745066、BRH745067、BRH745068、およびBRH745069。
2.DX2930を、3.35μLのDX2930ストック(Lot#PURDX1−L01、32.1mg/mL)を496.65μLの1X TBSに添加することにより、215μg/mLで調製した。
3.FXIIa溶液の1:10中間体を、5μLのFXIIaストック溶液(25,300nM)を45μLのTBSに添加することにより調製した。56.25nMのFXIIa溶液を、4.45μLの1:10中間体を195.55μLのTBSに添加することにより調製した。
4.各NHP試料を10μg/mLのDX2930を用いて、2μLの215μg/mL DX2930溶液を41μLのNHPに添加することにより調製した。
5.各NHP試料を、2.5nMのFXIIaを用いて、2μLの56.25nM FXIIa溶液を43μLの各NHP試料に、DX2930あり、およびなしで添加することにより調製した。
6.試料を、FXIIaと共に37℃で10分インキュベートした。反応を、5μLの10Xアンチプロテアーゼインヒビターを添加することにより停止させた。
7.各NHP試料、FXIIaあり、DX2930およびFXIIaあり、ならびに未処理試料を、5μLの試料を95μLのTBSに添加することにより、5%血漿まで希釈した。
8.非還元試料を、5μLの4X試料緩衝液を15μLの試料に添加することにより調製した。
9.還元試料を5μLの4X試料緩衝液および2μLの10X還元剤を13μLの試料に添加することにより調製した。
10.試料は全て95℃で5分、熱ブロックを用いて加熱した。
ゲルローディング、泳動、および転写
1.1Lの体積の1Xトリス−酢酸SDS泳動用緩衝液を50mLの20Xトリス−酢酸SDS泳動用緩衝液を950mLのDI水に添加することにより調製した。
2.1Lの体積の1X MES泳動用緩衝液を、50mLの20X MES SDS泳動用緩衝液を950mLのDI水に添加することにより調製した。
3.アッセイ緩衝液(0.2%Tweenを有するOdysseyブロッキング緩衝液)を、1mLのTween−20を499mLのOdysseyブロッキング緩衝液に添加することにより調製した。
4.洗浄緩衝液(0.1%Tweenを有するPBS)を、1パケットのPBSおよび1mLのTween−20を900mLのDI水に添加することにより調製した。溶液をよく混合し、DI水を用いて1Lに適量化した。最終溶液を、0.22μM PES濾過システムに通して濾過した。
5.4μLの体積の1色タンパク質マーカーを、2つのゲルのレーン1に添加した。
6.13μlの体積の非還元試料を、7%トリス−酢酸ゲルの適切なレーンに添加した。
7.13μLの体積の還元試料を、4−12%ビス−トリスゲルの適切なレーンに添加した。
8.ゲルを125ボルトで約75分泳動させた。
9.各ゲルを、iBlotミニ−トランスファースタックおよびiBlot転写システムのプログラムP0を使用して、個々に膜に転写させた。
10.各膜を、20mLのOdysseyブロッキング緩衝液を含むプラスチックトレーに移した。膜を、Odysseyブロッキング緩衝液中、プレートシェーカー上、室温で1時間インキュベートした。
11.1μg/mLの一次抗体溶液を28.58μLのマウス抗HMWK mAb、クローン#11H05、1.4mg/mLを29,971.42μLのアッセイ緩衝液に添加することにより調製した。
12.ブロッキング緩衝液をプラスチックトレーから除去した。20mLの体積の一次抗体溶液を、各トレーに添加し、膜をプレートシェーカー上で、室温にて1時間インキュベートした。
13.ヤギ抗マウスIgG IRDye680の1:10中間体を、5μLのヤギ抗マウスIgG IRDye680を45μLのアッセイ緩衝液に添加することにより調製した。二次抗体溶液を、26.66μLの1:10ヤギ抗マウスIgG IRDye680中間体を39,973.34μLのアッセイ緩衝液に添加することにより、1:15,000希釈で調製した。
14.一次抗体溶液をトレーから除去した。
15.各膜を5分間、20mLの洗浄緩衝液で洗浄し、その後、洗浄溶液を廃棄した。洗浄を繰り返し、合計、4回の洗浄とした。
16.20mLの体積の二次抗体溶液を、各トレーに添加し、膜をプレートシェーカー上で、室温にて1時間インキュベートした。
17.二次抗体溶液をトレーから除去した。
18.各膜を5分間、20mLの洗浄緩衝液で洗浄し、その後、洗浄溶液を廃棄した。洗浄を繰り返し、合計、4回の洗浄とした。
19.各膜をPBSで5分間すすいだ。
20.膜をLiCor Odyssey CLxを使用して走査した。
表5および6は非還元試料データを含む。表7および8は還元試料データを含む。切断されたHMWKのパーセントを2つの方法を使用して計算した。レーン中の2−鎖のパーセントを下記式を使用して決定した:2−鎖シグナルの和/総シグナルの和。未処理シグナルからの2−鎖のパーセントを下記式を使用して決定した:1−(処理単鎖シグナル/未処理単鎖シグナル)。処理および未処理試料を、試料調製において、わずかに高いパーセンテージの血漿を有する未処理試料を用いてわずかに異なって調製した。よって、未処理試料は、処理試料よりもわずかに高い全体シグナルを生成させた。処理および未処理試料の間のわずかに異なる試料調製のために、レーン中の2−鎖のパーセント値を使用して、パーセント切断されたHWMKを決定した。
NHP試料のFXIIaによる処理は、未処理試料に比べ、パーセント切断されたHMWKを増加させた。DX−2930で前処理し、続いてFXIIa活性化させたNHP試料は、FXIIaのみで処理した試料よりも少ない切断されたHMWKを生成させたが、未処理試料に比べ、わずかに高いパーセント切断されたHMWKを生成させた。還元未処理NHP試料は非還元未処理NHP試料よりも少ない切断されたHMWKを含んだ。未処理、FXIIaで処理、DX−2930で前処理し続いてFXIIaで処理したNHP試料は、再現性のある結果を生成させたこともまた、見出された。
目的:
この実験の目的はFXIIa活性化の阻害に対するDX−2930およびDX−88の有効性を決定することであった。DX−2930を5つの濃度で試験した:200、100、30、12、および5μg/mL。DX−88を5つの濃度で試験した:9.4、4.7、1.4、0.56、および0.24μg/mL。DX−2930およびDX−88で前処理した試料をFXIIaで処理した。前処理した試料に加えて、1つの未処理試料、およびFXIIaのみで処理した2つの試料を試験した。試料を還元条件下で試験した。
1.NHPプールを、250μLの各血漿試料、BRH745070、BRH745071、およびBRH745048を1.5mLマイクロ遠心チューブに添加することにより調製し、よく混合した。
2.4500μg/mL DX2930溶液を、4.21μLのDX2930ストック溶液(32.1mg/mL)を25.79μLのTBSに添加することにより調製した。2250μg/mL DX2930溶液を15μLの4500μg/mL溶液を15μLのTBSに添加することにより調製した。675μg/mL DX2930溶液を6μLの2250μg/mL溶液を14μLのTBSに添加することにより調製した。270μg/mL DX2930溶液を、8μLの675μg/mL溶液を12μLのTBSに添加することにより調製した。112.5μg/mL DX2930溶液を、10μlの270μg/mL溶液を14μLのTBSに添加することにより調製した。
3.DX−2930で前処理した5つの血漿試料を、2μLの各DX2930溶液を41μLのNHPプールに添加することにより調製した。
4.211.5μg/mL DX88溶液を、6.28μLのDX88ストック溶液(10.1mg/mL)を293.72μLのTBSに添加することにより調製した。105.75μg/mL DX88溶液を、15μLの211.5μg/mL溶液を15μLのTBSに添加することにより調製した。31.5μg/mL DX88溶液を、8.94μLの105.75μg/mL溶液を21.06μLのTBSに添加することにより調製した。12.6μg/mL DX88溶液を、12μLの31.5μg/mL溶液を18μLのTBSに添加することにより調製した。5.4μg/mL DX88溶液を12.86μLの12.6μg/mLを17.14μLのTBSに添加することにより調製した。
5.DX−88で前処理した5つの血漿試料を、2μLの各DX−88溶液を41μLのNHPプールに添加することによりを調製した。
6.FXIIaの1:10中間体を、5μLのストック溶液(25,300nM)を45μLのTBSに添加することにより調製した。56.25nM FXIIa溶液を、4.45μLの1:10中間体を195.55μLのTBSに添加することにより調製した。
7.DX−2930およびDX88で前処理した各血漿試料を、2μLの56.25nM FXIIa溶液を各試料に添加することにより、2.5nMのFXIIaで処理した。
8.FXIIaのみを含む2つの試料を、2μLのTBSおよび2μLの56.25nM FXIIa溶液を41μLのNHPプールに添加することにより調製した。
9.1つの未処理試料を、4μLのTBSを41μLのNHPプールに添加することにより調製した。
10.FXIIaを含む試料は全て、37℃で10分間インキュベートした。
11.5μLの体積のアンチプロテアーゼインヒビターを、未処理試料を含む各試料に添加した。各同型物の総試料体積は50μLとした。
12.各試料を、5μLの試料を95μLのTBSに添加することにより、約5%血漿に希釈した。
13.試料を、5μLの4X試料緩衝液および2μLの10X還元剤を13μLの試料に添加することにより調製した。
14.試料は全て95℃で5分、熱ブロックを使用して加熱した。
15.1Lの体積の1X MES泳動用緩衝液を、50mLの20X MES SDS泳動用緩衝液を950mLのDI水に添加することにより調製した。
16.アッセイ緩衝液(0.2%Tweenを有するOdysseyブロッキング緩衝液)を、1mLのTween−20を499mLのOdysseyブロッキング緩衝液に添加することにより調製した。
17.洗浄緩衝液(0.1%Tweenを有するPBS)を、1パケットのPBSおよび1mLのTween−20を900mLのDI水に添加することにより調製した。溶液をよく混合し、DI水を用いて1Lに適量化した。最終溶液を、0.22μM PES濾過システムに通して濾過した。
18.4μLの体積の1色タンパク質マーカーを、2つのゲルのレーン1に添加した。
19.13μLの体積の還元試料を、4−12%ビス−トリスゲルの適切なレーンに添加した。
20.ゲルを125ボルトで約75分間泳動させた。
21.ゲルを、iBlotミニ−トランスファースタックおよびiBlot転写システム上のプログラムP0を使用して、膜に転写させた。
22.膜を、20mLのOdysseyブロッキング緩衝液を含むプラスチックトレーに移した。膜をOdysseyブロッキング緩衝液中、プレートシェーカー上で、室温にて1時間インキュベートした。
23.1μg/mL一次抗体溶液を、14.29μLのマウス抗HMWK mAb、クローン#11H05、1.4mg/mLを19,985.7μLのアッセイ緩衝液に添加することにより調製した。
24.ブロッキング緩衝液をプラスチックトレーから除去した。20mLの体積の一次抗体溶液を、膜に添加し、プレートシェーカー上で室温にて1時間インキュベートした。
25.ヤギ抗マウスIgG IRDye680の1:10中間体を、5μLのヤギ抗マウスIgG IRDye680を45μLのアッセイ緩衝液に添加することにより調製した。二次抗体溶液を、13.33μLの1:10ヤギ抗マウスIgG IRDye680中間体を19,986.7μLのアッセイ緩衝液に添加することにより、1:15,000希釈で調製した。
26.一次抗体溶液をトレーから除去した。
27.膜を5分間、20mLの洗浄緩衝液で洗浄し、その後洗浄溶液を廃棄した。洗浄を繰り返し、合計、4回の洗浄とした。
28.20mLの体積の二次抗体溶液を、膜に添加し、プレートシェーカー上で室温にて1時間インキュベートした。
29.二次抗体溶液をトレーから除去した。
30.膜を5分間、20mLの洗浄緩衝液で洗浄し、その後洗浄溶液を廃棄した。洗浄を繰り返し、合計、4回の洗浄とした。
31.膜をPBSで5分間すすいだ。
32.膜をLiCor Odyssey CLxを使用して走査した。
表10は、DX−2930およびDX−88阻害実験に対する結果を含む。2−鎖のパーセントを各レーン内で計算し、処理シグナルを未処理シグナルと比較することにより計算した。この比較のために、レーン中の2−鎖のパーセントを使用した。未処理NHPプールは、3.8%の2−鎖のパーセント値を生成させた。NHPプールをFXIIaのみで処理した場合、2つ同型試料は、24.4%の2−鎖のパーセント値を生成させた。DX−2930で前処理した試料は、DX−88で調製した試料に比べ、わずかに低い2−鎖のパーセント値を生成させた。5μg/mLのDX−2930および0.24μg/mLのDX−88で前処理した試料は、それぞれ、22.3%および23.9%の2−鎖のパーセント値を生成させた。これらの値はFXIIaのみで処理した試料における2−鎖のパーセント値に非常に近い。
目的:
この実験の目的は、遺伝性血管浮腫(HAE)を有する患者由来のアンチプロテアーゼ処理血漿試料を評価することであった。各患者由来の2つのHAE試料を試験し、1つは基礎試料であり、1つは発作試料とした。試料を還元および非還元条件下で試験した。加えて、クローン病、関節リウマチ、および潰瘍性大腸炎と診断された患者由来の試料を試験した。正常ヒト血漿試料もまた試験した。追加の試料を還元条件下のみで試験した。
1.6組のHAE患者試料を試験した。各血漿試料を5μLの試料を95μLのTBSに添加することにより調製した。
2.5つのクローン病血漿試料、5つの関節リウマチ血漿試料、および5つの潰瘍性大腸炎試料を試験した。各血漿試料を、5μLの試料を95μLのTBS添加することにより調製した。
3.7つの正常ヒト血漿試料を、対照として使用するために、5μLの試料を95μLのTBSに添加することにより調製した。
4.非還元試料を、5μLの4X試料緩衝液を15μLの試料に添加することにより調製した。
5.還元試料を、5μLの4X試料緩衝液および2μLの10X還元剤を13μLの試料に添加することにより調製した。
6.試料は全て95℃で5分、熱ブロックを使用して加熱した。
7.1Lの体積の1Xトリス−酢酸SDS泳動用緩衝液を、50mLの20Xトリス−酢酸SDS泳動用緩衝液を950mLのDI水に添加することにより調製した。
8.2Lの体積の1X MES泳動用緩衝液を、100mLの20X MES SDS泳動用緩衝液を1900mLのDI水に添加することにより調製した。
9.アッセイ緩衝液(0.2%Tweenを有するOdysseyブロッキング緩衝液)を、2mLのTween−20を998mLのOdysseyブロッキング緩衝液に添加することにより調製した。
10.洗浄緩衝液(0.1%Tweenを有するPBS)を1パケットのPBSおよび1mLのTween−20を900mLのDI水に添加することにより調製した。溶液をよく混合し、DI水を用いて1Lに適量化した。最終溶液を、0.22μM PES濾過システムに通して濾過した。
11.4μLの体積の1色タンパク質マーカーを、4つのゲルのレーン1に添加した。
12.13μlの体積の非還元試料を、7%トリス−酢酸ゲルの適切なレーンに添加した。
13.13μLの体積の還元試料を、4−12%ビス−トリスゲルの適切なレーンに添加した。
14.ゲルを125ボルトで約75分間泳動させた。
15.各ゲルを、iBlotミニ−トランスファースタックおよびiBlot転写システム上のプログラムP0を使用して、個々に膜に転写させた。
16.各膜を、20mLのOdysseyブロッキング緩衝液を含むプラスチックトレーに移した。膜をOdysseyブロッキング緩衝液中、プレートシェーカー上で、室温にて1時間インキュベートした。
17.1μg/mL一次抗体溶液を57.14μLのマウス抗HMWK mAb、クローン#11H05、1.4mg/mLを79,942.86μLのアッセイ緩衝液に添加することにより調製した。
18.ブロッキング緩衝液をプラスチックトレーから除去した。20mLの体積の一次抗体溶液を、各トレーに添加し、膜をプレートシェーカー上で室温にて1時間インキュベートした。
19.ヤギ抗マウスIgG IRDye680の1:10中間体を、10μLのヤギ抗マウスIgG IRDye680を90μLのアッセイ緩衝液に添加することにより調製した。二次抗体溶液を、53.33μLの1:10ヤギ抗マウスIgG IRDye680中間体を79,946.67μLのアッセイ緩衝液に添加することにより、1:15,000希釈で調製した。
20.一次抗体溶液をトレーから除去した。
21.各膜を5分間20mLの洗浄緩衝液で洗浄し、その後、洗浄溶液を廃棄した。洗浄を繰り返し、合計、4回の洗浄とした。
22.20mLの体積の二次抗体溶液を、各トレーに添加し、膜をプレートシェーカー上で室温にて1時間インキュベートした。
23.二次抗体溶液をトレーから除去した。
24.各膜を5分間、20mLの洗浄緩衝液で洗浄し、その後、洗浄溶液を廃棄した。洗浄を繰り返し、合計、4回の洗浄とした。
25.各膜をPBSで5分間すすいだ。
26.膜を、LiCor Odyssey CLxを使用して走査した。
予想通りに、ほとんどの患者試料は、基礎試料とは対照的に、発作試料において2−鎖HMWKの上昇したレベルを示した。表11および12はこの実験に対するHAEデータを含む。表13は潰瘍性大腸炎および関節リウマチ患者試料に対するデータセットを含む。表14はクローン病患者試料に対するデータを含む。
この明細書で開示される特徴は全て、任意の組み合わせで組み合わせることができる。この明細書で開示される各特徴は同じ、等価な、または同様の目的を果たす他の特徴により置換することができる。よって、明確に別記されない限り、開示される各特徴は、包括的な一連の等価なまたは同様の特徴の一例にすぎない。
Claims (50)
- pKal媒介障害の危険がある、またはこれを有する被験体を同定するための方法であって、
被験体の試料中の切断されたキニノーゲンのレベルおよび無傷のキニノーゲンのレベルを測定すること;
前記切断されたキニノーゲンのレベル、前記無傷のキニノーゲンのレベル、または両方に基づき、前記試料中の前記切断されたキニノーゲンまたは前記無傷のキニノーゲンの値を決定すること;ならびに
前記切断されたキニノーゲンの値または前記無傷のキニノーゲンの値が基準値から逸脱する場合、前記被験体をpKal媒介障害の危険がある、またはこれを有するとして同定すること
を含む方法。 - 前記切断されたキニノーゲンまたは前記無傷のキニノーゲンの値は前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージまたは前記無傷のキニノーゲンのパーセンテージである、請求項1に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージが決定され、前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージが基準値にある、またはそれを超える場合、前記被験体は、pKal媒介障害の危険がある、またはこれを有するとして同定される、請求項2に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンおよび無傷のキニノーゲンのレベルは、無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合する、または切断されたキニノーゲンと比べて無傷のキニノーゲン特異的に結合する、検出剤により測定され、任意で前記検出剤はLMWKに結合しない、請求項1−3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記検出剤は抗体である、請求項4に記載の方法。
- 前記抗体は、無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合し、任意で、LMWKに結合しない、請求項5に記載の方法。
- 前記検出剤は、切断されたキニノーゲンの軽鎖のC末端に結合する抗体である、請求項4−6のいずれかに記載の方法。
- 前記無傷のキニノーゲンおよび切断されたキニノーゲンのレベルはウエスタンブロットアッセイにより測定される、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記試料は、血液試料または血漿試料である、請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pKal媒介障害は遺伝性血管浮腫(HAE)、関節リウマチ、潰瘍性大腸炎、またはクローン病である、請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法はさらに、前記被験体が、pKal媒介障害の危険がある、またはこれを有するとして同定された場合、有効量のpKal阻害剤を被験体に投与することを含む、請求項1〜10のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pKal阻害剤はDX−88、EPIKAL−2またはDX−2930である、請求項11に記載の方法。
- 前記被験体は、pKal媒介障害の症状を有する、請求項1〜12のいずれか一項に記載の方法。
- 前記被験体は、抗ヒスタミン療法、コルチコステロイド療法、または両方に耐性がある、請求項1−13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記症状は浮腫である、請求項13または14に記載の方法。
- 前記症状は
腫脹の再発性発作;
完全にまたは主に末梢性である、腫脹;
蕁麻疹;
感染の証拠がない場合の発赤、疼痛、および腫脹;または
ヒスタミンに媒介されない浮腫
である、請求項13または14に記載の方法。 - 前記被験体は、試料を採取した時点でpKal媒介障害の症状を有さず、pKal媒介障害の症状の病歴を有さず、またはpKal媒介障害の病歴を有さない、請求項1〜12のいずれか一項に記載の方法。
- 障害がpKal阻害剤による治療の影響を受けやすいかどうかを決定するための方法であって、
前記障害を有する被験体の試料中の切断されたキニノーゲンのレベルおよび無傷のキニノーゲンのレベルを測定すること;
前記試料中の、切断されたキニノーゲンの値、無傷のキニノーゲンの値、または両方を決定する、;ならびに
前記切断されたキニノーゲンの値が基準値から逸脱する場合、前記障害を、pKal阻害剤による治療の影響を受けやすいとして同定すること
を含む、方法。 - 前記切断されたキニノーゲンまたは前記無傷のキニノーゲンの値は前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージまたは前記無傷のキニノーゲンのパーセンテージである、請求項18に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージが決定され、前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージが基準値にある、またはそれを超える場合、前記被験体は、pKal媒介障害の危険がある、またはこれを有するとして同定される、請求項19に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンおよび無傷のキニノーゲンのレベルは、無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合する、または切断されたキニノーゲンと比べて無傷のキニノーゲンに特異的に結合する検出剤により測定され、任意で前記検出剤はLMWKに結合しない、請求項18−20のいずれかに記載の方法。
- 前記検出剤は抗体である、請求項21に記載の方法。
- 前記抗体は無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合し、任意で、LMWKに結合しない、請求項22に記載の方法。
- 前記検出剤は、切断されたキニノーゲンの軽鎖のC末端に結合する抗体である、請求項21−23のいずれかに記載の方法。
- 前記無傷のキニノーゲンおよび切断されたキニノーゲンのレベルはウエスタンブロットアッセイにより測定される、請求項18〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記試料は、血液試料または血漿試料である、請求項18〜25のいずれか一項に記載の方法。
- さらに、前記障害が、pKal阻害剤の治療の影響を受けやすいとして同定された場合、被験体に有効量のpKal阻害剤を投与することを含む、請求項18−26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pKal阻害剤はDX−88、EPIKAL−2、またはDX−2930である、請求項27に記載の方法。
- 被験体におけるpKal媒介障害の治療を評価するための方法であって、
前記治療前後または前記治療の過程中の前記被験体から採取した試料中の切断されたキニノーゲンのレベルおよび無傷のキニノーゲンのレベルを測定すること;
同じ試料中の切断されたおよび無傷のキニノーゲンのレベルに基づき、各試料中の切断されたキニノーゲンの値、無傷のキニノーゲンの値、または両方を決定すること;ならびに
前記治療の前後または前記治療の過程にわたる、前記試料中の前記切断されたキニノーゲンおよび/または無傷のキニノーゲンの値の変化に基づき、前記治療の有効性を評価すること
を含む、方法。 - 前記切断されたキニノーゲンの値または前記無傷のキニノーゲンは前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージまたは前記無傷のキニノーゲンのパーセンテージである、請求項29に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージが決定され、前記被験体が、pKal媒介障害の危険がある、またはこれを有するとして同定され、前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージの前記治療後または前記治療の過程にわたる減少は、前記治療が前記被験体に対して有効であることを示す、請求項30に記載の方法。
- 前記治療は、前記被験体に有効量のpKal阻害剤を投与することを含む、請求項29−31のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pKal阻害剤はDX−88、EPIKAL−2またはDX−2930である、請求項32に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンおよび無傷のキニノーゲンのレベルは、無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合する、または切断されたキニノーゲンと比べて無傷のキニノーゲンに特異的に結合する検出剤により測定され、前記検出剤は任意でLMWKに結合しない、請求項29−33のいずれか一項に記載の方法。
- 前記検出剤は抗体である、請求項34に記載の方法。
- 前記抗体は無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合し、任意で、LMWKに結合しない、請求項35に記載の方法。
- 前記検出剤は切断されたキニノーゲンの軽鎖のC末端に結合する抗体である、請求項34−36のいずれかに記載の方法。
- 前記無傷のキニノーゲンおよび切断されたキニノーゲンのレベルはウエスタンブロットアッセイにより測定される、請求項29〜37のいずれか一項に記載の方法。
- 前記試料は、血液試料または血漿試料である、請求項29−38のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pKal媒介障害は遺伝性血管浮腫(HAE)、関節リウマチ、潰瘍性大腸炎、またはクローン病である、請求項29−39のいずれか一項に記載の方法。
- 治療の必要な被験体に有効量のpKal阻害剤を投与することを含み、前記被験体は、基準値から逸脱する、切断されたキニノーゲンの値、無傷のキニノーゲンの値、または両方を有する、pKal媒介疾患を治療するための方法。
- 被験体のpKal媒介疾患を治療するのに使用するための医薬組成物であって、pKal阻害剤および薬学的に許容される担体を含み、前記被験体は基準値から逸脱する、切断されたキニノーゲンの値、無傷のキニノーゲンの値、または両方を有する、組成物。
- 試料中の切断されたキニノーゲン、無傷のキニノーゲン、または両方の値を決定するための方法であって、
無傷のおよび切断されたキニノーゲンを含む試料を検出試薬と、前記検出剤と前記無傷のおよび切断されたキニノーゲンの間の相互作用を可能にする条件下で接触させることであって、前記検出剤は無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合し、または切断されたキニノーゲンと比べて無傷のキニノーゲンに特異的に結合し、任意で前記検出剤LMWKに結合しない、こと;
前記試料中の前記切断されたキニノーゲンのレベルおよび前記無傷のキニノーゲンのレベルを、それらの前記検出試薬との相互作用に基づき測定すること;ならびに
前記切断されたキニノーゲンおよび無傷のキニノーゲンの量に基づき、前記試料中の、前記切断されたキニノーゲンの値、前記無傷のキニノーゲンの値、または両方の値を決定すること
を含む、方法。 - 前記切断されたキニノーゲンまたは前記無傷のキニノーゲンの値は前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージまたは前記無傷のキニノーゲンのパーセンテージである、請求項43に記載の方法。
- 前記切断されたキニノーゲンのパーセンテージが決定される、請求項44に記載の方法。
- 前記検出剤は抗体である、請求項43−45のいずれかに記載の方法。
- 前記抗体は無傷のキニノーゲンと比べて切断されたキニノーゲンに特異的に結合し、任意で、LMWKに結合しない、請求項46に記載の方法。
- 前記検出剤は切断されたキニノーゲンの軽鎖のC末端に結合する抗体である、請求項43−47のいずれか一項に記載の方法。
- 前記無傷のキニノーゲンおよび切断されたキニノーゲンのレベルはウエスタンブロットアッセイにより測定される、請求項43−48のいずれか一項に記載の方法。
- 前記試料は、血液試料または血漿試料である、請求項43−49のいずれか一項に記載の方法。
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