JP2015506964A - 15−ベンジリデン−14−デオキシ−11,12−ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の肝臓保護及び抗c型肝炎ウイルス医薬品製造における使用 - Google Patents
15−ベンジリデン−14−デオキシ−11,12−ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の肝臓保護及び抗c型肝炎ウイルス医薬品製造における使用 Download PDFInfo
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Abstract
Description
A: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=H;
B: R1=H,R2=C6H5, R3= R4=H;
C: R1=H,R2=3-Br-C6H4, R3= R4= H;
D: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=COR5,R5=3-ピリジル;
E:R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=COR5,R5=CH2CH2COOH。
A: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=H;
D: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=COR5,R5=3-ピリジル;
E: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=COR5,R5= CH2CH2COOH。
ConA誘導免疫性肝臓損傷モデルにおいて、化合物A、B、C、ADは肝臓損傷に対して明らかな保護作用を表した。
クリーングレード昆明マウス(雄、体重20±2g、 河南省実験動物中心から提供)をランダムに組分けし、各組6匹とする。ビフェンダート(浙江医薬股ふん有限公司新昌製薬工場、200mg/kg)を陽性対照組とし、アンドログラホリド(AD)は輔仁薬業集団有限公司から提供、試験薬物は本発明者が合成し、純度99.0%超え。正常対照組とモデル組に0.5%のカルボキシメチルセルロースナトリウム塩(CMC-Na)を投与し、投与組にそれぞれ0.5% のCMC-Naが懸濁されたAD(0.88mmol/kg)と化合物A、B及びCの低用量(0.66mmol/kg)及び高用量(0.88mmol/kg)を与えた。3日間、薬物を投与し、最後の投与から1時間後、正常対照組を除き、他のマウスに対してConA(20mg/kg)を一回のみ尾静脈注射し、8時間後、眼球採血し、3000rpmで15min分間遠心し、血清を分離し、キットの説明書の要求(南京建成生物工程研究所)に基づき、ALTとASTをそれぞれ測定した。肝臓の左葉を取り、生理塩水で10%のホモジネートを作り、キットの説明書の要求(南京建成生物工程研究所)に基づき、MDAを測定した。50μLの肝ホモジネート液を2mL 0.5 mol/L のKOH-メチルアルコール溶液に入れ、50℃の水浴で、20分間異性化した後、波長 278nm 箇所で吸光度(A値)を測定し、毎ミリリットルのホモジネート液相当の A 値はPGE2含有量を表す。実験データは平均±標準偏差
マウス血清中ALT、AST活性及び肝ホモジネート中MDA、PGE2含有量に対する化合物A、B、C、ADの影響の結果は図1-4のとおり。この結果、AD組に比べ、化合物の各用量組はみな、ある程度においてAD組より優れる。また、各化合物の高用量組(0.88mmol/kg)は同じ用量のAD組に比べ、酵素低下效果がより優れている(P<0.05)。特に、化合物Aの高用量組(0.88mmol/kg)は基本的に正常レベルまで下がった。
ConA誘導免疫性肝臓損傷モデルにおいて、15- p-クロロベンジリデン-3,19-ニコチネート-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド(化合物D)は肝臓損傷に対して明らかな保護作用を表した。
クリーングレード昆明マウス(雄、20±2g)をランダムに正常組、モデル組、ビフェンダート(浙江万邦薬業有限公司)陽性対照組(200mg/kg)、AD組(0.88mmol/kg)、化合物Dの低用量組(0.66mmol/kg)及び高用量組(0.88mmol/kg)に分けた。ALT、AST、MDA測定キットは南京建成生物工程研究所から購入した。その他の試剤、薬品、実験方法は実施例1と同じ。
血清中ALT、AST及び肝ホモジネート中MDA、PGE2に対する化合物Dの影響の結果図6-9のとおり。
化合物Dの低用量組(P<0.05)、高用量組(P<0.01)のマウス血清中ALT、AST活性はモデル組に比べ明らかに低い。低、高用量の化合物Dは肝ホモジネート中MDA、PGE2含有量(P<0.01)が明らかに低下している。高用量組PGE2含有量は正常組に近い。AD 組に比べ、化合物Dの高用量組(0.88mmol/kg)の酵素低下及び抗肝臓脂質過酸化能力は明らかに向上した(P<0.05)。
アンドログラホリド誘導体体外抗BVDV活性実験
1.細胞培養と医薬品処理
MDBK (NBL-1)細胞(中科院上海典型培養物保藏中心から購入)、牛ウイルス性下痢ウイルス(BVDV-AV69)(中国獣医薬品監査所から購入)を利用し、BVDVウイルス接種による細胞病変に対する本発明の医薬品の治療作用を研究した。リバビリン(R;河南潤弘製薬股ふん有限公司、許可番号:1102261)を陽性薬物対照とした。MDBK細胞をRPMI1640培養液で調製した懸濁液 (1 × 105/mL)を96ウェルプレート中(美国Costar社)に200 μ L/ウェル接種し、培養液には体積分数10%のウシ胎児血清(浙江天杭生物科技有限公司、許可番号:100524)、100 μg/ mLストレプトマイシン(深せん華薬南方製薬有限公司、許可番号:N09081)、100U/ mLペニシリン(華北製薬股ふん有限公司生産、許可番号:E0909604)が含まれ、体積分数5%CO2培養ケース(ドイツBinder社製)に入れ、37℃で24 時間培養し、細胞が単層に成長した後、100TCID50のウイルス液(TCID50=10-2.5)を入れて1.5時間孵化する。PBSで三回洗浄した後、薬物を含有した維持液200 μ L/ウェルを加える。
成長状態が良好であるMDBK細胞をトリプシンで消化し、数えた後、7× 104/mLで96ウェルプレートに入れ、200 μ L/ウェル、37℃、5% のCO2の培養ケースの中で24時間培養し、薬物を含有した培養基を加え、続けて48時間培養し、MTT(5mg/mL)を入れ、 20 μ L/ウェル、4時間培養し、上澄みを除き、150μ L のDMSOを入れ、10分間振動させ、マイクロプレートリーダーで吸光値を測定する。測定波長は570nm、参考波長は450nm。化合物作用後の細胞生存率を計算し、生存率(%)=医薬品組A値/細胞対照組A値× 100%、結果は図10のとおり。細胞増殖値抑制率(%)=100%-生存率、Reed-Muench法で半数毒性濃度(TC50)を計算する。
MDBK細胞をトリプシンで消化した後、1 × 105/mL濃度で96ウェルプレート培養板に接種し、200μ L/ウェル、37℃、5%の CO2培養ケースで24時間培養し、細胞が単層に成長した後、100TCID50ウイルスで攻撃し、1. 5時間孵化し、ウイルス含有維持液を捨て、PBSで洗浄し、異なる濃度の薬物含有維持液200 μ Lを加え、 37℃、 5%の CO2の条件で培養する。正常細胞対照組、ウイルス対照組、医薬品処理組、リバビリン処理組を設ける。毎日、逆向きの顕微鏡で観察し、細胞病変の発生状況を記録する。本発明の化合物と陽性薬物病変抑制率は約50%の最低濃度(IC50)であり、図11のとおり。治療指数TI 値(TC50/IC50)を計算、結果は表1のとおり。
測定される化合物の抗ウイルス実験を行う前に、化合物がBVDVウイルスに作用する際にMDBK細胞の正常活性に影響しないことを保証するために測定される化合物のMDBK細胞に対する最低無毒濃度を確定する必要がある。本発明の化合物A、D、Eは0 -7.5 μ mol/L濃度範囲内においてMDBK細胞に48時間作用した後、明らかな細胞毒性は見られず、そのうち、化合物Eは濃度が30 μ mol/Lまで高くなった際も細胞毒性は見られなかった。化合物A、D、E、特に化合物EはADよりも良好な抗ウイルス效果を見せた。TI値の結果、AD及び化合物A、D、Eは陽性薬物よりも高い治療指数を見せ、中でも化合物Eの治療指数が最高であった。
四塩化炭素誘導化学性肝臓損傷モデルにおいて、化合物A、B、C、Dは肝臓損傷に対して明らかな保護作用を表した。
クリーングレード昆明マウス(雄、20±2g)に3日間、適応性餌付けを行いその後、ランダムに正常組、モデル組、ビフェンダート(200mg/kg)、AD組(0.88mmol/kg)、化合物A、B、C、Dの低用量組(0.66mmol/kg)及び高用量組(0.88mmol/kg)に分け、各組8匹とする。陽性薬物組と各薬物投与組に0.5% のCMC-Naで調製した対応濃度の懸濁液を投与し、正常組とモデル組に0.5%の CMC-Na投与した。3日間投与し、最後の薬物を投与してから1時間後に、正常組を除き、その他の組に一回のみ、0.3%の四塩化炭素落花生油溶液(0.1mL/10g)を腹腔注射した。16時間後、各組マウスの眼球採血し、3000rpmで15min分間遠心し、血清を分離し、それぞれ、血清中ALT及びAST(南京建成生物工程研究所)の活性を測定した。肝臓の左葉を取り、生理塩水で10%のホモジネートを作り、肝ホモジネート中MDA(南京建成生物工程研究所)とPGE2の含有量を測定した。実験データは平均±標準偏差
血清中ALT、AST及び肝ホモジネート中MDA、PGE2 に対する各組の影響結果は図13-16のとおり。その結果、化合物A、B、C、Dは四塩化炭素による肝臓損傷マウス血清中アミノフェラーゼ(ALT、AST)活性の上昇を効果的に抑制した(P<0.01)。化合物A、B、C、Dの低用量組(0.66mmol/kg)と高用量組(0.88mmol/kg)における酵素低下の幅は明らかにADよりも優れている(P<0.05)。
エタノール誘導肝臓損傷モデルにおいて、化合物A、B、ADは肝臓損傷に対して明らかな保護作用を表した。
クリーングレード昆明マウス(雄、20±2g,)に3日間、適応性餌付けを行いその後、ランダムに正常組、モデル組、ビフェンダート組(200mg/kg)、AD組(0.88mmol/kg)、化合物Aの低用量組(0.44mmol/kg)、中用量組(0.66mmol/kg)、高用量組(0.88mmol/kg)及び化合物Bの中用量組(0.66mmol/kg)、高用量組(0.88mmol/kg)に分け、各組8匹とする。陽性薬物組と各薬物投与組に0.5% CMC-Naで調製した対応濃度の懸濁液を投与し、正常組とモデル組に0.5% CMC-Na投与した。3日間投与し、最後の薬物を投与してから1時間後に、正常組を除き、その他の組に一回のみ、50% エタノール溶液(1.2mL/10g)を投与した。16時間後、各組マウスの眼球採血し、3000rpmで15min分間遠心し、血清を分離し、それぞれ、血清中ALT及びAST(南京建成生物工程研究所)の活性を測定した。肝臓の左葉を取り、生理塩水で10%のホモジネートを作り、肝ホモジネート中MDA(南京建成生物工程研究所)の含有量を測定した。実験データは平均±標準偏差
血清中ALT、AST及び肝ホモジネート中MDAに対する各組の影響結果は図17-19のとおり。その結果、化合物A及びBは有效抑制エタノールによる肝臓損傷マウス血清中アミノフェラーゼ(ALT、AST)活性と肝組織ホモジネート中MDA含有量の上昇を効果的に抑制した(P<0.01)。化合物A(P<0.01)とB(P<0.05)の高用量組(0.88mmol/kg)のALT活性に対する低下の幅は明らかにAD組よりも優れ、化合物A高用量組(0.88mmol/kg)のAST活性に対する低下の幅は明らかにAD組(P<0.01)よりも優れている。化合物AとBは肝臓損傷マウス肝ホモジネート中MDAレベルを効果的に低下させている(P<0.01)。
四塩化炭素誘導化学性肝臓損傷モデル及びConA誘導免疫性肝臓損傷モデルを採用し、肝臓損傷に対する化合物Eの保護作用を研究した。
1.実験方案
2種類のモデルにおける実験研究は、以下の組分けを採用する:クリーングレード昆明マウス(雄、20±2g)をランダムに正常組、モデル組、ビフェンダート組(200mg/kg)、AD組(0.88mmol/kg)、化合物Eの低用量組(0.66mmol/kg)及び高用量組(0.88mmol/kg)に分け、各組8匹とする。ALT、AST検査キットは南京建成生物工程研究所から購入。その他のキット、薬剤、実験方法は実施例2及び実施例4と同じ。
四塩化炭素誘導化学性肝臓損傷研究において、血清中ALT、AST活性に対する各組の影響結果はそれぞれ図20-21のとおり。化合物Eは低く、高用量組マウス血清中ALT、AST活性はモデル組よりも明らかに低く(P<0.01)、AST及び高用量組のALT活性はAD組よりも明らかに低い(P<0.05)。ConA誘導免疫性肝臓損傷研究において、血清中ALT、AST活性に対する各組の影響結果はそれぞれ図22-23のとおり。その結果、化合物Eは低く、高用量組マウス血清中ALT、AST活性がモデル組よりも明らかに低く(P<0.01)、AD組(P<0.05)よりも明らかに低い。
Claims (10)
- 前記化合物は、R1は水素、R2は4-フルオロフェニル、4-クロロフェニル、4-ブロモフェニル、R3、R4はそれぞれ水素又はCOR5、R5は3-ピリジル又はCH2CH2COOHであることを特徴とする、請求項1に記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
- 前記化合物は、好ましくは下記のうちのいずれかであることを特徴とする、請求項2に記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
A: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=H;
D: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=COR5,R5=3-ピリジル;
E: R1=H,R2=4-Cl-C6H4, R3= R4=COR5,R5=CH2CH2COOH。 - 抗HCVの予防又は治療のための医薬品製造に用いられることを特徴とする、請求項1〜3のいずれかに記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
- 前記化合物は、R1は水素、R2は4-フルオロフェニル、4-クロロフェニル、4-ブロモフェニル、3-フルオロフェニル、3-クロロフェニル、3-ブロモフェニル、R3、R4はそれぞれ水素又はCOR5、R5は3-ピリジル又はCH2CH2COOHであることを特徴とする、請求項5に記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
- 前記化合物は、好ましくは下記のうちのいずれかであることを特徴とする、請求項5に記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
A: R1=H,R2=4-Cl-C6H4,R3= R4=H;
B: R1=H,R2=C6H5,R3= R4=H;
C: R1=H,R2=3-Br-C6H4,R3= R4= H;
D: R1=H,R2=4-Cl-C6H4,R3= R4=COR5,R5=3-ピリジル;
E: R1=H,R2=4-Cl-C6H4,R3= R4=COR5,R5=CH2CH2COOH。 - ウイルス感染又は薬物による肝臓損傷の予防又は治療のための医薬品製造に用いられることを特徴とする、請求項5〜7のいずれかに記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
- 活性成分として、又は他の薬物と組み合わせて、製薬的に許容可能な補助及び/又は添加成分と混合した後、通常の製薬方法及びプロセス要求に基づき、肝臓損傷および抗C型肝炎ウイルスの治療又は予防のための経口型製剤、注射型製剤の医薬品に調製することを特徴とする、請求項1又は5に記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
- 経口型製剤は錠剤、丸剤、カプセル、顆粒剤又はシロップであり、注射型製剤は注射液又は凍結乾燥粉末製剤であることを特徴とする、請求項9に記載の15-ベンジリデン-14-デオキシ-11,12-ジデヒドロアンドログラホリド誘導体の医薬品製造における使用。
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