JP2015109868A - 分岐デキストリン、その製造方法及び飲食品 - Google Patents
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Abstract
【課題】消化を受けにくく、浸透圧が低い分岐デキストリン及びその製造方法を提供する。
【解決手段】デキストリンの非還元末端に、グルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合した構造を有し、且つＤＥが１０−５２であることを特徴とする分岐デキストリン。デキストリン水溶液にマルトース生成アミラーゼ及びトランスグルコシダーゼを作用させて分岐デキストリンを製造する方法において、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比を２：１〜４４：１に調整して作用させることを特徴とする方法。
【選択図】なし
【解決手段】デキストリンの非還元末端に、グルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合した構造を有し、且つＤＥが１０−５２であることを特徴とする分岐デキストリン。デキストリン水溶液にマルトース生成アミラーゼ及びトランスグルコシダーゼを作用させて分岐デキストリンを製造する方法において、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比を２：１〜４４：１に調整して作用させることを特徴とする方法。
【選択図】なし
Description
本発明は、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い分岐デキストリン及びその製造方法に関する。本発明はまたこの方法により得られた分岐デキストリンを含有する飲食品、栄養補給剤に関する。
近年、糖尿病患者が急速に増加していることが知られている。糖尿病はインスリンの働き、もしくは生産が低下する病気であり、糖質を摂取した糖尿病患者は血中糖濃度の上昇つまり高血糖を抑制することができない。高血糖が続くと人体に悪影響が及ぼされるため、糖尿病患者の栄養補給剤に使用される糖質としては、消化を受けにくく、血糖値の上昇を抑制するものが求められている。加えて、栄養補給剤に使用される糖質としては、グルコースや砂糖などでは浸透圧が高く、浸透圧性の下痢を誘発するため、澱粉を酸または酵素で加水分解して得られるデキストリンなど浸透圧の低いものが求められている。よって、糖尿病患者にとって、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い糖質の開発は極めて有用である。また、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い糖質は、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、及び栄養補助食品などの糖質源としても利用が可能であり、開発する意義はきわめて大きい。
デキストリンはグルコースを構成単位として、α−１，４グルコシド結合の直鎖構造を形成する成分と、α−１，６グルコシド結合を含む分岐構造を形成する成分からなっている。そのうちのα−１，６グルコシド結合を含む分岐構造はアミラーゼなどの消化酵素により消化（分解）を受けにくい構造である。このため、この分岐構造の割合が高い、いわゆる分岐デキストリンは消化を受けにくいことがこれまでの研究で明らかにされている（特許文献１、２、３、４、非特許文献１）。
このような研究において、消化を受けにくいデキストリンを得ることを目的とした分岐デキストリンの製造方法には大別して２つの方法がある。すなわち、「澱粉が本来有する分岐構造を含む成分を分離、採取して分岐デキストリンを得る方法」及び「酵素の転移反応によりα−１，６グルコシド結合を合成して分岐デキストリンを得る方法」である。
このような研究において、消化を受けにくいデキストリンを得ることを目的とした分岐デキストリンの製造方法には大別して２つの方法がある。すなわち、「澱粉が本来有する分岐構造を含む成分を分離、採取して分岐デキストリンを得る方法」及び「酵素の転移反応によりα−１，６グルコシド結合を合成して分岐デキストリンを得る方法」である。
「澱粉が本来有する分岐構造を含む成分を分離、採取して分岐デキストリンを得る方法」では、例えば、澱粉をα−アミラーゼ又は酸で分解し、この分解物をさらにβ−アミラーゼあるいはα−アミラーゼとβ−アミラーゼの混合物で分解し、α−１，６グルコシド結合の割合の高い高分岐デキストリンを採取することを特徴とする高分岐デキストリンの製造方法（特許文献１）が知られている。しかし、この製造方法で得られる高分岐デキストリンの収率は僅か２０％程度であり、効率的な製造方法とは言い難いものであった。
一方、「酵素の転移反応によりα−１，６グルコシド結合を合成して分岐デキストリンを得る方法」では、分岐酵素を用いる方法とα−グルコシダーゼを用いる方法が知られている。
一方、「酵素の転移反応によりα−１，６グルコシド結合を合成して分岐デキストリンを得る方法」では、分岐酵素を用いる方法とα−グルコシダーゼを用いる方法が知られている。
前者の分岐酵素を用いる方法としては、例えば、デキストリンに分岐酵素を作用させ、その後引き続いてβ−アミラーゼを作用させ、高分子画分を回収するための分取を行うことを特徴とする分岐デキストリンの製造方法（特許文献２）が知られている。しかし、この製造方法は操作が煩雑であり、効率的な製造方法とは言い難いものであった。
後者のα−グルコシダーゼを用いる方法としては、例えば、少なくとも７０質量％のデキストリン溶液を、少なくとも４０℃に加熱し、α−グルコシダーゼを含むグルコシド結合の切断または生成を促進する酵素を作用させて分岐オリゴ糖を生成させる方法（特許文献３）が知られている。しかし、この方法は基質濃度が７０質量％以上という制限があり、さらに、生成する分岐オリゴ糖は浸透圧が高く、そのままでは栄養補給剤への使用が制限される場合があった。
後者のα−グルコシダーゼを用いる方法としては、例えば、少なくとも７０質量％のデキストリン溶液を、少なくとも４０℃に加熱し、α−グルコシダーゼを含むグルコシド結合の切断または生成を促進する酵素を作用させて分岐オリゴ糖を生成させる方法（特許文献３）が知られている。しかし、この方法は基質濃度が７０質量％以上という制限があり、さらに、生成する分岐オリゴ糖は浸透圧が高く、そのままでは栄養補給剤への使用が制限される場合があった。
また、例えば、糊化した澱粉にβ−アミラーゼを乾燥質量当たり０．６４％、α−グルコシダーゼの一種であるトランスグルコシダーゼを乾燥質量当たり０．６％（本発明で定める酵素単位で表すと、添加した２つの酵素単位比は６６０：１になる）になるよう同時に添加して作用させ、当量のエタノールを加えて遠心分離することで沈殿物を得ることを特徴とする分岐澱粉の製造法（非特許文献１）が知られている。しかし、この製造方法は基質濃度が僅か４％程度の糊化澱粉であるのに加えて、エタノール沈殿操作が必要であるなど、効率的な製造方法とは言い難いものであった。
また、例えば、固形分濃度が２０％以上のデキストリン溶液にβ−アミラーゼを０．３〜１．２質量％、α−グルコシダーゼの一種であるトランスグルコシダーゼを０．０２〜０．４ＩＵ／ｇ（本発明で定める酵素単位で表すと、添加した２つの酵素単位比は１０３：１〜８２４１：１になる）になるよう同時に添加して作用させ、分岐オリゴ糖を生成させることを特徴とする製造方法（特許文献４）が知られている。しかし、この製造方法によって生成する分岐オリゴ糖は浸透圧が高く、そのままでは栄養補給剤への使用が制限されるものであった。事実、この製造方法で製造されているイソマルトオリゴ糖は、現在産業レベルで製造されているにも関わらず、栄養補給剤のエネルギー源として使用された実績はない。
J.Agric.Food Chem.2007,55,4540-4547
本発明の目的は、このような状況に鑑み、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い分岐デキストリン及びその効率的な製造方法を提供することである。
本発明の他の目的は、上記分岐デキストリンを含有する、栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、栄養補助食品等の飲食品を提供することである。
さらに、本発明の他の目的は、上記分岐デキストリンを含有するエネルギー持続剤及び腹持ち剤を提供することである。
本発明の他の目的は、上記分岐デキストリンを含有する、栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、栄養補助食品等の飲食品を提供することである。
さらに、本発明の他の目的は、上記分岐デキストリンを含有するエネルギー持続剤及び腹持ち剤を提供することである。
本発明者らは、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い分岐デキストリンの製造方法について鋭意研究した結果、デキストリン溶液にβ−アミラーゼ及びトランスグルコシダーゼを同時に作用させて分岐デキストリンを製造するという、いわゆるイソマルトオリゴ糖の製造において、特に添加する２つの酵素の単位比に着目した。
なお、本明細書では、学会出版センター発行の「アミラーゼ」（監修：中村道徳、編集：大西正健ら三名、１９８６年発行）に記載の定義に従い、マルトース生成アミラーゼの内、α−マルトースを生成するアミラーゼをα−マルトース生成アミラーゼと称し、β−マルトースを生成するアミラーゼをβ−アミラーゼ又はβ−マルトース生成アミラーゼと称する。
従来のイソマルトオリゴ糖を製造する酵素単位比で得られる分岐デキストリンは、消化を受けにくいが浸透圧が高く、そのままでは使用が制限されるものであった。本発明者らは、添加する２つの酵素単位比を従来にない特定の範囲とすることにより、意外にも、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという２つの性質を兼ね備えた分岐デキストリンを製造できることを見出した。すなわち、固形分濃度が好ましくは２０質量％以上のデキストリン溶液に、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼを酵素単位比で２：１〜４４：１となるように調整して作用させると、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い分岐デキストリンを製造できることを見出し、本発明を完成するに至った。
なお、本明細書では、学会出版センター発行の「アミラーゼ」（監修：中村道徳、編集：大西正健ら三名、１９８６年発行）に記載の定義に従い、マルトース生成アミラーゼの内、α−マルトースを生成するアミラーゼをα−マルトース生成アミラーゼと称し、β−マルトースを生成するアミラーゼをβ−アミラーゼ又はβ−マルトース生成アミラーゼと称する。
従来のイソマルトオリゴ糖を製造する酵素単位比で得られる分岐デキストリンは、消化を受けにくいが浸透圧が高く、そのままでは使用が制限されるものであった。本発明者らは、添加する２つの酵素単位比を従来にない特定の範囲とすることにより、意外にも、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという２つの性質を兼ね備えた分岐デキストリンを製造できることを見出した。すなわち、固形分濃度が好ましくは２０質量％以上のデキストリン溶液に、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼを酵素単位比で２：１〜４４：１となるように調整して作用させると、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低い分岐デキストリンを製造できることを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は下記に示す分岐デキストリン及びその製造方法を提供するものである。
１．デキストリンの非還元末端に、グルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合した構造を有し、且つＤＥが１０−５２であることを特徴とする分岐デキストリン。
２．１０質量％水溶液の浸透圧が７０〜３００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇである上記１記載の分岐デキストリン。
３．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する飲食品。
４．ダイエット食品、エネルギー補給飲料、エネルギー持続食品又は栄養補助食品である上記３記載の飲食品。
５．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する栄養補給剤。
６．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有するエネルギー持続剤。
７．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する腹持ち剤。
８．デキストリンの水溶液にマルトース生成アミラーゼ及びトランスグルコシダーゼを作用させて分岐デキストリンを製造する方法において、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比を２：１〜４４：１に調整して作用させることを特徴とする、上記１又は２に記載の分岐デキストリンの製造方法。
９．マルトース生成アミラーゼがα−マルトース生成アミラーゼである、上記８に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１０．デキストリンのＤＥが２〜２０である、上記８又は９に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１１．デキストリンの濃度が２０〜５０質量％である、上記８〜１０のいずれか１項に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１２．デキストリンが澱粉の酸加水分解物である、上記８〜１１のいずれか１項に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１．デキストリンの非還元末端に、グルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合した構造を有し、且つＤＥが１０−５２であることを特徴とする分岐デキストリン。
２．１０質量％水溶液の浸透圧が７０〜３００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇである上記１記載の分岐デキストリン。
３．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する飲食品。
４．ダイエット食品、エネルギー補給飲料、エネルギー持続食品又は栄養補助食品である上記３記載の飲食品。
５．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する栄養補給剤。
６．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有するエネルギー持続剤。
７．上記１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する腹持ち剤。
８．デキストリンの水溶液にマルトース生成アミラーゼ及びトランスグルコシダーゼを作用させて分岐デキストリンを製造する方法において、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比を２：１〜４４：１に調整して作用させることを特徴とする、上記１又は２に記載の分岐デキストリンの製造方法。
９．マルトース生成アミラーゼがα−マルトース生成アミラーゼである、上記８に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１０．デキストリンのＤＥが２〜２０である、上記８又は９に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１１．デキストリンの濃度が２０〜５０質量％である、上記８〜１０のいずれか１項に記載の分岐デキストリンの製造方法。
１２．デキストリンが澱粉の酸加水分解物である、上記８〜１１のいずれか１項に記載の分岐デキストリンの製造方法。
本発明によれば、消化を受けにくく、従って低グリセミックインデックス（低ＧＩ）の、しかも浸透圧が低い分岐デキストリンを効率的に得ることができる。本発明の分岐デキストリンの製造方法は、通常のデキストリンの製造工程に酵素処理という１ステップを加えるだけでよいという点、また、使用する酵素は市販品が入手可能であり、添加する酵素の単位比を調節するだけで所望の分岐デキストリンが得られるという点において非常に簡便且つ効率的である。
本発明の方法により得られる分岐デキストリンは、摂取後の血糖値の上昇が緩慢であるので、糖尿病対応栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給食品、特に持続型エネルギー補給食品及び栄養補助食品の糖質源など広範な医療食品及び食品分野への応用が期待できる。
本発明の方法により得られる分岐デキストリンは、摂取後の血糖値の上昇が緩慢であるので、糖尿病対応栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給食品、特に持続型エネルギー補給食品及び栄養補助食品の糖質源など広範な医療食品及び食品分野への応用が期待できる。
この明細書において、「分岐デキストリン」とは、通常の澱粉を公知の方法で加水分解して得られる、いわゆる通常のデキストリンと比べて、α−１，６グルコシド結合からなる分岐構造の割合が高いデキストリンを指す。
本発明における「マルトース生成アミラーゼの酵素単位」とは、５質量％デキストリン（ＰＤｘ＃２（ＤＥ＝１１、数平均分子量＝１７００、平均重合度＝１０）：松谷化学工業社製）水溶液を基質として、ｐＨ５．５、反応温度５５℃の反応条件下において、１分間に１μｍｏｌのマルトースを生成する酵素力を１単位としたものである。また、「トランスグルコシダーゼの酵素単位」とは、１質量％メチル−α−Ｄ−グルコピラノシド水溶液を基質として、ｐＨ５．５、反応温度５５℃の反応条件下において、１分間に１μｍｏｌのグルコースを生成する酵素力を１単位としたものである。
本発明における「マルトース生成アミラーゼの酵素単位」とは、５質量％デキストリン（ＰＤｘ＃２（ＤＥ＝１１、数平均分子量＝１７００、平均重合度＝１０）：松谷化学工業社製）水溶液を基質として、ｐＨ５．５、反応温度５５℃の反応条件下において、１分間に１μｍｏｌのマルトースを生成する酵素力を１単位としたものである。また、「トランスグルコシダーゼの酵素単位」とは、１質量％メチル−α−Ｄ−グルコピラノシド水溶液を基質として、ｐＨ５．５、反応温度５５℃の反応条件下において、１分間に１μｍｏｌのグルコースを生成する酵素力を１単位としたものである。
本発明における浸透圧とは、Ｂｒｉｘ１０％に調整した水溶液を氷点降下法により、浸透圧計測器（ＶＯＧＥＬ ＯＭ８０２−Ｄ）を用いて測定した値である。本発明の分岐デキストリンの浸透圧は好ましくは９０〜３００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ程度、より好ましくは１００〜２００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇである。
この明細書において、ＤＥとは、「〔（直接還元糖（ブドウ糖として表示）の質量）／（固形分の質量）〕×１００」の式で表される値で、ウイルシュテッターシューデル法による分析値である。本発明の分岐デキストリンのＤＥは１０−５２、好ましくは１０−４０である。
この明細書において、ＤＥとは、「〔（直接還元糖（ブドウ糖として表示）の質量）／（固形分の質量）〕×１００」の式で表される値で、ウイルシュテッターシューデル法による分析値である。本発明の分岐デキストリンのＤＥは１０−５２、好ましくは１０−４０である。
本発明の分岐デキストリンは、澱粉を公知の方法で加水分解して得たデキストリンにマルトース生成アミラーゼとα−グルコシダーゼの一種であるトランスグルコシダーゼを酵素単位比で２：１〜４４：１程度、好ましくは１０：１〜３０：１になるよう調整したものを同時に添加して作用させることで調製することができる。酵素単位比が２：１〜４４：１の範囲から外れると、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという２つの性質を兼ね備えた分岐デキストリンを調製することが困難になる。
具体的には、まず、澱粉を公知の方法で加水分解してデキストリンを得る。原料となる澱粉は、例えば、タピオカ澱粉、甘藷澱粉、馬鈴薯澱粉などの地下澱粉、あるいはコーンスターチ、ワキシコーンスターチ、米澱粉、などの地上澱粉などを利用することができる。デキストリンのＤＥは好ましくは２〜２０程度、さらに好ましくは５〜１２程度がよい。ＤＥが低すぎると溶液状態で保存した時に白濁する（老化する）要因となり、反対に高すぎると最終製品の浸透圧が高くなる要因となる。
澱粉の加水分解の方法としては、α−アミラーゼ等による酵素分解、酸分解及びそれらの組み合わせがあり、いずれの方法も使用できるが、工程の短縮化及び生成する分岐デキストリンの低粘度化という点で酸分解が好ましい。酸としては、シュウ酸、塩酸、等が使用できるが、シュウ酸が好ましい。例えば、タピオカ澱粉の３０質量％水溶液に粉末シュウ酸を加えてｐＨ１．８〜２．０に調整し、１００〜１３０℃で４０〜８０分程度処理すれば良い。
具体的には、まず、澱粉を公知の方法で加水分解してデキストリンを得る。原料となる澱粉は、例えば、タピオカ澱粉、甘藷澱粉、馬鈴薯澱粉などの地下澱粉、あるいはコーンスターチ、ワキシコーンスターチ、米澱粉、などの地上澱粉などを利用することができる。デキストリンのＤＥは好ましくは２〜２０程度、さらに好ましくは５〜１２程度がよい。ＤＥが低すぎると溶液状態で保存した時に白濁する（老化する）要因となり、反対に高すぎると最終製品の浸透圧が高くなる要因となる。
澱粉の加水分解の方法としては、α−アミラーゼ等による酵素分解、酸分解及びそれらの組み合わせがあり、いずれの方法も使用できるが、工程の短縮化及び生成する分岐デキストリンの低粘度化という点で酸分解が好ましい。酸としては、シュウ酸、塩酸、等が使用できるが、シュウ酸が好ましい。例えば、タピオカ澱粉の３０質量％水溶液に粉末シュウ酸を加えてｐＨ１．８〜２．０に調整し、１００〜１３０℃で４０〜８０分程度処理すれば良い。
次に、デキストリン濃度を好ましくは２０〜５０質量％、より好ましくは２０〜４０質量％、ｐＨを好ましくは４．０〜７．０、より好ましくは５．５程度に調整する。これに、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比が２：１〜４４：１程度、好ましくは１０：１〜３０：１になるよう調整したものを適量、例えば、デキストリン水溶液１００質量部に対して好ましくは０．１〜１．０質量部程度添加し、好ましくは５０〜６０℃、さらに好ましくは５５℃程度で酵素反応を好ましくは０．２５〜４４時間、さらに好ましくは０．５〜３．０時間行う。
次いで、反応混合物中の酵素の失活処理を行う。例えば、９５℃で３０分間処理するか、酸を用いてｐＨを３．５以下に調整してマルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素反応を終了させる。
次いで、反応混合物中の酵素の失活処理を行う。例えば、９５℃で３０分間処理するか、酸を用いてｐＨを３．５以下に調整してマルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素反応を終了させる。
マルトース生成アミラーゼとしては市販品が使用でき、例えばビオザイムＭＬ（アマノエンザイム社製）やβ−アミラーゼ＃１５００Ｓ（ナガセケムテックス社製）はβ−マルトース生成アミラーゼ（β−アミラーゼ）であり、ビオザイムＬ（アマノエンザイム社製）はα−マルトース生成アミラーゼである。この内、ビオザイムＬは老化安定性に優れた分岐デキストリンを生成するという点で好ましい。また、トランスグルコシダーゼとしては同様に市販品が使用でき、トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」（アマノエンザイム社製）やトランスグルコシダーゼＬ−５００（ジェネンコア協和社製）などがある。
以上の酵素反応では、必要に応じてα−アミラーゼを同時に添加して作用させてもよいし、反応終了後に作用させてもよい。また、これらの酵素反応は遊離の酵素であっても、固定化された酵素であってもよい。固定化酵素の場合、反応方法はバッチ式及び連続式のいずれでもよい。固定化方法としては、担体結合法、包括法あるいは架橋法など、公知の方法を利用することができる。
以上の酵素反応では、必要に応じてα−アミラーゼを同時に添加して作用させてもよいし、反応終了後に作用させてもよい。また、これらの酵素反応は遊離の酵素であっても、固定化された酵素であってもよい。固定化酵素の場合、反応方法はバッチ式及び連続式のいずれでもよい。固定化方法としては、担体結合法、包括法あるいは架橋法など、公知の方法を利用することができる。
最後に、活性炭処理、珪藻土ろ過、イオン交換樹脂等を用いた公知の方法で脱塩し、濃縮後噴霧乾燥により粉末品とするか、７０質量％程度に濃縮して液状品とする。さらに、上記酵素反応液をクロマト分離装置や膜分離装置を用いて分画処理を行ない、浸透圧を上昇させる低分子成分を必要最小限になるまで分離除去してもよい。
このようにして得られる分岐デキストリンは、分子内に分岐構造及び／又は直鎖構造を有する澱粉分解物（デキストリン）の非還元末端に、グルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合した構造を有し、且つＤＥが１０−５２である。そして、浸透圧が、好ましくは７０〜３００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ程度、より好ましくは１００〜２００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇである。
さらに、非還元末端にグルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合したグルコース、すなわち「→6)-Glcp-(1→」の割合が、好ましくは５質量％以上、さらに好ましくは８質量％以上、特に好ましくは１０〜３０質量％であり、内部の分岐構造を有するグルコース、すなわち「→4,6)-Glcp-(1→」の割合が、好ましくは５〜１３質量％、さらに好ましくは６〜１０質量％である。
これらの結合の割合は、Ｈａｋｏｍｏｒｉのメチル化法を改変したＣｉｕｃａｎｕらの方法（Carbohydr. Res., 1984, 131, 209-217）により、確認できる。
この分岐デキストリンは、消化吸収が緩やかで、従って低ＧＩであり、しかも浸透圧が低いので、糖尿病対応栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給食品及び栄養補助食品の糖質源など、広範な医療食品及び食品分野への応用が期待できる。
本発明の分岐デキストリンは、そのままの形態で上記栄養補給剤、食品として使用できるが、好ましくは、経腸栄養剤、食事代替飲料、持続型エネルギー補給剤、ゼリー等に好ましくは１０〜５０質量％、さらに好ましくは２０〜４０質量％程度含有させることが適当である。
また、本発明の分岐デキストリンを経腸栄養剤、食事代替飲料、持続型エネルギー補給剤、ゼリー等の前記飲食品、栄養補給剤に使用する場合、他の機能性食品素材、例えば難消化性デキストリンと併用すれば、その効果を一層高めることが期待できる。
さらに、非還元末端にグルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合したグルコース、すなわち「→6)-Glcp-(1→」の割合が、好ましくは５質量％以上、さらに好ましくは８質量％以上、特に好ましくは１０〜３０質量％であり、内部の分岐構造を有するグルコース、すなわち「→4,6)-Glcp-(1→」の割合が、好ましくは５〜１３質量％、さらに好ましくは６〜１０質量％である。
これらの結合の割合は、Ｈａｋｏｍｏｒｉのメチル化法を改変したＣｉｕｃａｎｕらの方法（Carbohydr. Res., 1984, 131, 209-217）により、確認できる。
この分岐デキストリンは、消化吸収が緩やかで、従って低ＧＩであり、しかも浸透圧が低いので、糖尿病対応栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給食品及び栄養補助食品の糖質源など、広範な医療食品及び食品分野への応用が期待できる。
本発明の分岐デキストリンは、そのままの形態で上記栄養補給剤、食品として使用できるが、好ましくは、経腸栄養剤、食事代替飲料、持続型エネルギー補給剤、ゼリー等に好ましくは１０〜５０質量％、さらに好ましくは２０〜４０質量％程度含有させることが適当である。
また、本発明の分岐デキストリンを経腸栄養剤、食事代替飲料、持続型エネルギー補給剤、ゼリー等の前記飲食品、栄養補給剤に使用する場合、他の機能性食品素材、例えば難消化性デキストリンと併用すれば、その効果を一層高めることが期待できる。
以下に実施例及び試験例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
まず、β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質、すなわち、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという性質に及ぼす影響を調べるため、実施例１〜３及び比較例１〜４では、表１に示した酵素単位比で分岐デキストリンを調製した。
まず、β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質、すなわち、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという性質に及ぼす影響を調べるため、実施例１〜３及び比較例１〜４では、表１に示した酵素単位比で分岐デキストリンを調製した。
実施例１（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）９５単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位を同時に添加して酵素単位比が２：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から９０分後及び１８０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１０８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１８１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１５．３及び２４．９）。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）９５単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位を同時に添加して酵素単位比が２：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から９０分後及び１８０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１０８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１８１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１５．３及び２４．９）。
試験例１（ｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験）
得られた分岐デキストリンに対してｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。
本発明におけるｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験とは、生体内における糖質消化性の模擬試験であり、Englystら(European Journal of Clinical Nutrition、1992、46S33〜S50)の方法に基づいた変法で、糖質（本発明ではデキストリン）が酵素混合溶液（ブタ膵臓アミラーゼおよびラット小腸粘膜酵素）によって分解を受けて放出されるグルコース量を経時的に測定する試験である。
使用するブタ膵臓アミラーゼはＲｏｃｈｅ社製（１９２３０Ｕ／ｍｌ）を用いた。また、ラット小腸粘膜酵素はＳｉｇｍａ社製のラット小腸アセトンパウダーを以下の通りに調製して用いた。すなわち、ラット小腸アセトンパウダー１．２ｇを４５ｍＭ Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ・Ｃｌ Ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ６．６）／０．９ｍＭＣａＣｌ2 １５ｍｌで懸濁し、ホモジナイズした後、３０００ｒｐｍで１０分遠心分離し、その上清をラット小腸粘膜酵素の粗酵素液とした。粗酵素液の活性は２６ｍＭマルトース溶液において１分間に１ｍｍｏｌのマルトースを分解する活性を１Ｕとして算出した。
得られた分岐デキストリンに対してｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。
本発明におけるｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験とは、生体内における糖質消化性の模擬試験であり、Englystら(European Journal of Clinical Nutrition、1992、46S33〜S50)の方法に基づいた変法で、糖質（本発明ではデキストリン）が酵素混合溶液（ブタ膵臓アミラーゼおよびラット小腸粘膜酵素）によって分解を受けて放出されるグルコース量を経時的に測定する試験である。
使用するブタ膵臓アミラーゼはＲｏｃｈｅ社製（１９２３０Ｕ／ｍｌ）を用いた。また、ラット小腸粘膜酵素はＳｉｇｍａ社製のラット小腸アセトンパウダーを以下の通りに調製して用いた。すなわち、ラット小腸アセトンパウダー１．２ｇを４５ｍＭ Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ・Ｃｌ Ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ６．６）／０．９ｍＭＣａＣｌ2 １５ｍｌで懸濁し、ホモジナイズした後、３０００ｒｐｍで１０分遠心分離し、その上清をラット小腸粘膜酵素の粗酵素液とした。粗酵素液の活性は２６ｍＭマルトース溶液において１分間に１ｍｍｏｌのマルトースを分解する活性を１Ｕとして算出した。
被検物質を緩衝溶液（４５ｍＭ Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ・Ｃｌ Ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ６．６）／０．９ｍＭＣａＣｌ2）に溶解し、０．２４質量％の被検物質溶液を調製した。被検物質は、コントロールとして一般的なデキストリン（ＴＫ−１６：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１８）と実施例１で得られた浸透圧が１０８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１８１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを使用した。これらの被検物質溶液２．５ｍｌをそれぞれ試験管にとり、３７℃の恒温槽で１０分間加温したのち、酵素混合溶液（ブタ膵臓アミラーゼ（３８４．６Ｕ／ｍｌ）５０μｌ＋ラット小腸粘膜酵素（６．０Ｕ／ｍｌ）１４０μｌ＋緩衝溶液３１０μｌ）０．５ｍｌをそれぞれ添加し、よく混合して反応を開始した。反応開始後１５秒、１０分、３０分、１時間、１．５時間、２時間、３時間、４時間、６時間後に反応溶液２００μｌと０．５Ｍ過塩素酸５０μｌをそれぞれ混合して反応を停止した。これらの反応停止溶液のグルコース濃度を、グルコースＣIIテストワコー（和光純薬工業社製）を用いて定量した。図１に示す結果から、実施例１で得られた分岐デキストリンは２品共にＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。
実施例２（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）９５０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位を同時に添加して酵素単位比が２１：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から３０分後及び１８０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１８９ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１４．９及び２６．９）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図２に示す結果から、実施例２で得られた分岐デキストリンは２品共にＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）９５０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位を同時に添加して酵素単位比が２１：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から３０分後及び１８０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１８９ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１４．９及び２６．９）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図２に示す結果から、実施例２で得られた分岐デキストリンは２品共にＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。
実施例３（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）１７８２単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４０．５単位を同時に添加して酵素単位比が４４：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び９０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１０３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１７８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１３．１及び２３．８）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図３に示す結果から、実施例３で反応９０分後に得られた浸透圧１７８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンはＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。一方、浸透圧１０３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であった。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）１７８２単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４０．５単位を同時に添加して酵素単位比が４４：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び９０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１０３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１７８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１３．１及び２３．８）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図３に示す結果から、実施例３で反応９０分後に得られた浸透圧１７８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンはＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。一方、浸透圧１０３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であった。
比較例１（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、トランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）のみを５４単位添加し、５５℃で反応を開始させた。反応開始から６０分後及び４８０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧が１０６ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１７９ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１４．６及び２６．８）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図４に示す結果から、比較例１で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、トランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）のみを５４単位添加し、５５℃で反応を開始させた。反応開始から６０分後及び４８０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧が１０６ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１７９ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１４．６及び２６．８）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図４に示す結果から、比較例１で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
比較例２（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）２９７０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）２２．５単位を同時に添加して酵素単位比が１３２：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び６０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１２４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１８４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１７．１及び２６．１）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図５に示す結果から、比較例２で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）２９７０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）２２．５単位を同時に添加して酵素単位比が１３２：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び６０分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１２４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１８４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１７．１及び２６．１）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図５に示す結果から、比較例２で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
比較例３（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）２９７０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）９単位を同時に添加して酵素単位比が３３０：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び７５分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１２５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１９１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１７．０及び２７．４）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図６に示す結果から、比較例３で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）２９７０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）９単位を同時に添加して酵素単位比が３３０：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び７５分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１２５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１９１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを得た（ＤＥはそれぞれ１７．０及び２７．４）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図６に示す結果から、比較例３で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
比較例４（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの単位比が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）４９３０．２単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）７．４７単位を同時に添加して酵素単位比が６６０：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び４５分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１４３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１９４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ１９．９及び２９．６）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図７に示す結果から、比較例４で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
以上の実施例１〜３及び比較例１〜４で得られた分岐デキストリンについて行ったｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験より得られた消化性の評価結果を表２にまとめた。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１５０gに溶解し、β−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）４９３０．２単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）７．４７単位を同時に添加して酵素単位比が６６０：１の条件とし、５５℃で反応を開始させた。反応開始から１５分後及び４５分後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１４３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇ及び１９４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ１９．９及び２９．６）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図７に示す結果から、比較例４で得られた分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
以上の実施例１〜３及び比較例１〜４で得られた分岐デキストリンについて行ったｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験より得られた消化性の評価結果を表２にまとめた。
表２より、β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比が２：１〜４４：１の範囲では、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという２つの性質を兼ね備えた分岐デキストリンを得ることができるが、酵素単位比が２：１〜４４：１の範囲外では同様の分岐デキストリンを得ることができないことが確認された。
実施例４（基質濃度が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響および反応効率に及ぼす影響）
基質となるデキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを、それぞれ基質濃度が２０質量％、３０質量％、４０質量％、５０質量％、６０質量％になるように緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））を用いて溶解し、それぞれにβ−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）９５０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位を同時に添加して酵素単位比が２１：１の条件とし、５５℃で反応を開始した。各基質濃度における反応時間と得られた分岐デキストリンの浸透圧及びＤＥを表３に示す。
基質となるデキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１５０gを、それぞれ基質濃度が２０質量％、３０質量％、４０質量％、５０質量％、６０質量％になるように緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））を用いて溶解し、それぞれにβ−アミラーゼ（ビオザイムＭＬ：アマノエンザイム社製）９５０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位を同時に添加して酵素単位比が２１：１の条件とし、５５℃で反応を開始した。各基質濃度における反応時間と得られた分岐デキストリンの浸透圧及びＤＥを表３に示す。
表３に示す条件で得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図８に示す結果から、得られた分岐デキストリンは何れの基質濃度条件であっても、ＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、同じ程度にゆっくり消化されることが確認された。
表３と図８の結果より、何れの基質濃度においても、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという２つの性質を兼ね備えた分岐デキストリンを製造できることが確認された。また、基質濃度が低いほど、反応時間が短く、反応効率が良いことが確認された。
表３と図８の結果より、何れの基質濃度においても、消化を受けにくく、しかも浸透圧が低いという２つの性質を兼ね備えた分岐デキストリンを製造できることが確認された。また、基質濃度が低いほど、反応時間が短く、反応効率が良いことが確認された。
実施例５（酵素添加量が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１２５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ５．５））１２５gに溶解し、表４の条件１、２に示した単位の酵素（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比はいずれも２１：１であるが添加量が違う）をそれぞれ同時に添加し、５５℃で反応を開始させた。条件１は反応開始から４４時間後及び条件２は反応開始から２．５時間後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１８８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１９３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ２７．６及び２８．３）。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１２５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ５．５））１２５gに溶解し、表４の条件１、２に示した単位の酵素（β−アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比はいずれも２１：１であるが添加量が違う）をそれぞれ同時に添加し、５５℃で反応を開始させた。条件１は反応開始から４４時間後及び条件２は反応開始から２．５時間後に一部をサンプリングし、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１８８ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１９３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ２７．６及び２８．３）。
＊＊：トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製
表４に示す反応条件で得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図９に示す結果から、得られた分岐デキストリンは何れの酵素添加量であっても、ＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、同じ程度にゆっくり消化されることが確認された。
しかし、酵素単位比を同じにして酵素添加量を減らすと、所望の浸透圧の分岐デキストリンの生成に要する時間が増加することが確認された。
しかし、酵素単位比を同じにして酵素添加量を減らすと、所望の浸透圧の分岐デキストリンの生成に要する時間が増加することが確認された。
実施例６（マルトース生成アミラーゼの種類が分岐デキストリンの性質に及ぼす影響）
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１２５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１２５gに溶解し、表５の条件１、２に示した酵素（マルトース生成アミラーゼは９５０単位、トランスグルコシダーゼは４５単位、すなわちそれぞれの単位比が２１：１になるように）を同時に添加し、５５℃で反応を開始させた。条件１、２共に反応開始から１．５時間後、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１４３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１４５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ２１．２及び２１．２）。
デキストリン（ＰＤＸ＃１：松谷化学工業社製／ＤＥ＝８）１２５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１２５gに溶解し、表５の条件１、２に示した酵素（マルトース生成アミラーゼは９５０単位、トランスグルコシダーゼは４５単位、すなわちそれぞれの単位比が２１：１になるように）を同時に添加し、５５℃で反応を開始させた。条件１、２共に反応開始から１．５時間後、それぞれ９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ１４３ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇと１４５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ２１．２及び２１．２）。
＊＊ビオザイムＬ（アマノエンザイム社製）
＊＊＊トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」（アマノエンザイム社製）
表５の反応条件で得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図１０に示す結果から、得られた分岐デキストリンは何れの条件であっても、ＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、同じ程度にゆっくり消化されることが確認された。
（老化安定性試験）
次に、実施例６で得られた表５の分岐デキストリン溶液に対して「老化安定性試験」を行った。本発明における「老化安定性試験」とは、Ｂｒｉｘ５０％に調整した溶液を−２０度にて冷凍した後、室温で解凍し、Ｂｒｉｘ３０に調整した後、分光光度計にて溶液の濁度（ＯＤ７２０ｎｍ、１ｃｍセル換算）を測定する。この操作を、溶液の濁度が上昇するまで、あるいは５回繰り返して溶液の濁度を測定する方法である。この方法では、老化安定性が悪いデキストリンは５回繰り返す前に溶液の濁度が上昇するが、老化安定性が良いデキストリンは５回繰り返しても溶液の濁度は上昇しないことで評価される。老化安定性試験の結果を表６に示した。表６の結果より、条件２のα‐マルトース生成アミラーゼを作用させて得られた分岐デキストリンの方が老化安定性に優れていることが確認された。
次に、実施例６で得られた表５の分岐デキストリン溶液に対して「老化安定性試験」を行った。本発明における「老化安定性試験」とは、Ｂｒｉｘ５０％に調整した溶液を−２０度にて冷凍した後、室温で解凍し、Ｂｒｉｘ３０に調整した後、分光光度計にて溶液の濁度（ＯＤ７２０ｎｍ、１ｃｍセル換算）を測定する。この操作を、溶液の濁度が上昇するまで、あるいは５回繰り返して溶液の濁度を測定する方法である。この方法では、老化安定性が悪いデキストリンは５回繰り返す前に溶液の濁度が上昇するが、老化安定性が良いデキストリンは５回繰り返しても溶液の濁度は上昇しないことで評価される。老化安定性試験の結果を表６に示した。表６の結果より、条件２のα‐マルトース生成アミラーゼを作用させて得られた分岐デキストリンの方が老化安定性に優れていることが確認された。
実施例７(原料となるデキストリンのＤＥが分岐デキストリンの性質に及ぼす影響)
タピオカ澱粉を表７に示す公知の分解方法で分解し、表７に示すＤＥまで分解したデキストリン１２５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１２５gに溶解し、それぞれにα-マルトース生成アミラーゼ（ビオザイムＬ：アマノエンザイム社製）９５０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位、すなわち酵素単位比が２１：１になるように調製したものを同時に添加し、表７に示した時間作用させ、９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、表７に示した浸透圧の分岐デキストリン液状品を得た。
タピオカ澱粉を表７に示す公知の分解方法で分解し、表７に示すＤＥまで分解したデキストリン１２５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））１２５gに溶解し、それぞれにα-マルトース生成アミラーゼ（ビオザイムＬ：アマノエンザイム社製）９５０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）４５単位、すなわち酵素単位比が２１：１になるように調製したものを同時に添加し、表７に示した時間作用させ、９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、表７に示した浸透圧の分岐デキストリン液状品を得た。
表７に示す条件で得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図１１に示す結果から、得られた分岐デキストリンは何れの条件であっても、ＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、同じ程度にゆっくり消化されることが確認された。
次に、得られた表７の分岐デキストリン溶液に対して実施例６と同様の老化安定性試験を行った。表８の結果より、いずれの条件であっても分岐デキストリンの老化安定性は良いことが確認された。
次に、得られた表７の分岐デキストリン溶液に対して実施例６と同様の老化安定性試験を行った。表８の結果より、いずれの条件であっても分岐デキストリンの老化安定性は良いことが確認された。
（粘度測定）
実施例７で得られた表７の分岐デキストリン溶液に対して「粘度」を測定した。本発明における「粘度」とは、ＶＩＳＣＯＭＥＴＥＲ ＭＯＤＥＬ ＢＭにより以下の条件で測定する。濃度：３０質量％、測定温度：３０℃、回転数：６０ｒｐｍ、ホールド時間：３０秒。
表９の結果より、条件４でＤＥ１１．９まで分解した原料を用いて得られた分岐デキストリンが最も粘度が低いことが確認された。
実施例７で得られた表７の分岐デキストリン溶液に対して「粘度」を測定した。本発明における「粘度」とは、ＶＩＳＣＯＭＥＴＥＲ ＭＯＤＥＬ ＢＭにより以下の条件で測定する。濃度：３０質量％、測定温度：３０℃、回転数：６０ｒｐｍ、ホールド時間：３０秒。
表９の結果より、条件４でＤＥ１１．９まで分解した原料を用いて得られた分岐デキストリンが最も粘度が低いことが確認された。
実施例８(低ＤＥの分岐デキストリンの調製及びその性質)
タピオカ澱粉を公知の分解方法で分解して得られたＤＥ＝５．２のデキストリン１３５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））２６５gに溶解し、α-マルトース生成アミラーゼ（ビオザイムＬ：アマノエンザイム社製）２１０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）１０単位、すなわち酵素単位比が２１：１になるように調製したものを同時に添加して反応を開始させた。１５、３０、４５、９０及び１３５分後、それぞれ５０ｇを採取して９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ５３、６１、７３、１０１及び１４１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ８．３、９．５、１０．９、１４．４及び２０．０）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図１２に示す結果から、ＤＥ＝１０．９以上の分岐デキストリンは、ＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。一方、ＤＥ＝９．５以下の分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
タピオカ澱粉を公知の分解方法で分解して得られたＤＥ＝５．２のデキストリン１３５gを緩衝溶液（０．１Ｍリン酸緩衝液 （ｐＨ５．５））２６５gに溶解し、α-マルトース生成アミラーゼ（ビオザイムＬ：アマノエンザイム社製）２１０単位およびトランスグルコシダーゼ（トランスグルコシダーゼＬ「アマノ」：アマノエンザイム社製）１０単位、すなわち酵素単位比が２１：１になるように調製したものを同時に添加して反応を開始させた。１５、３０、４５、９０及び１３５分後、それぞれ５０ｇを採取して９５℃で１５分間保持して反応を停止させた。それぞれ珪藻土濾過及び両性イオン交換樹脂（オルガノ社製）を用いて脱塩し、浸透圧がそれぞれ５３、６１、７３、１０１及び１４１ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン液状品を得た（ＤＥはそれぞれ８．３、９．５、１０．９、１４．４及び２０．０）。
得られた分岐デキストリンに対して試験例１と同様のｉｎ ｖｉｔｒｏ消化性試験を行った。図１２に示す結果から、ＤＥ＝１０．９以上の分岐デキストリンは、ＴＫ−１６に比べ、ブタ膵臓アミラーゼとラット小腸粘膜酵素によって分解を受けにくく、ゆっくり消化されることが確認された。一方、ＤＥ＝９．５以下の分岐デキストリンはコントロールであるＴＫ−１６とほぼ同様であることが確認された。
実施例９（分岐デキストリンの分岐度分析）
本発明により製造したデキストリンの結合様式を測定するため、Ｃｉｕｃａｎｕらの方法に従ってメチル化分析を行った。実施例７の条件４で調製した浸透圧が１４０ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン（ＤＥ＝２０．７）、同条件で１８時間反応させて調製した２４４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン（ＤＥ＝３７．２）、及びデキストリン（ＴＫ−１６：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１８）のメチル化分析の結果を表１０に示す。この結果より、本発明の製造方法で調製された分岐デキストリンはデキストリンに対し、分岐構造である１→６結合を持つグルコース「→6)-Glcp-(1→」及び「→4,6)-Glcp-(1→」の内、「→4,6)-Glcp-(1→」の割合が増加していた。さらに、デキストリンには全く含まれない「→6)-Glcp-(1→」（非還元末端に１，６結合で結合したグルコース）が新たに形成されていた。
本発明により製造したデキストリンの結合様式を測定するため、Ｃｉｕｃａｎｕらの方法に従ってメチル化分析を行った。実施例７の条件４で調製した浸透圧が１４０ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン（ＤＥ＝２０．７）、同条件で１８時間反応させて調製した２４４ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン（ＤＥ＝３７．２）、及びデキストリン（ＴＫ−１６：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１８）のメチル化分析の結果を表１０に示す。この結果より、本発明の製造方法で調製された分岐デキストリンはデキストリンに対し、分岐構造である１→６結合を持つグルコース「→6)-Glcp-(1→」及び「→4,6)-Glcp-(1→」の内、「→4,6)-Glcp-(1→」の割合が増加していた。さらに、デキストリンには全く含まれない「→6)-Glcp-(1→」（非還元末端に１，６結合で結合したグルコース）が新たに形成されていた。
実施例１０（分岐デキストリンのヒトにおける消化性試験）
健常成人男女１１名（平均年齢３４．３±１．１歳）には試験前日午後９時以降水以外の飲食を禁止した。実施例７の条件４で調製した浸透圧が１４０ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン又はデキストリン（グリスターＰ：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１５）各５０ｇを水２００ｍＬに溶解して試料とし、試験当日午前９時に摂取させた。試料摂取前、摂取３０、６０、９０、及び１２０分後にそれぞれ指先からヘマトクリット管へ採血し、血清グルコース濃度を測定した。
試料摂取前の血糖値を０として、摂取後の血糖値の上昇量を図１３に示し、その曲線下面積（ＡＵＣ）を図１４に示した。分岐デキストリン摂取後の血糖値上昇量はデキストリンに比べて少ない傾向にあった。分岐デキストリンのＡＵＣは、ｔ検定においてデキストリンより有意に低く、デキストリンのＡＵＣを１００とした場合の分岐デキストリンのＡＵＣ、すなわちグリセミックインデックス（ＧＩ）は７８であった。これより分岐デキストリンはデキストリンよりもヒトでの消化吸収が緩やかであることが明らかとなった。この結果より、分岐デキストリンは低ＧＩが求められる食品（糖尿病患者の栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、栄養補助食品など）への利用が可能であると考えられた。また、消化吸収が緩やかであることから、エネルギー持続型食品（ダイエット食品、スポーツドリンクなど）への利用が可能であると考えられた。
健常成人男女１１名（平均年齢３４．３±１．１歳）には試験前日午後９時以降水以外の飲食を禁止した。実施例７の条件４で調製した浸透圧が１４０ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリン又はデキストリン（グリスターＰ：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１５）各５０ｇを水２００ｍＬに溶解して試料とし、試験当日午前９時に摂取させた。試料摂取前、摂取３０、６０、９０、及び１２０分後にそれぞれ指先からヘマトクリット管へ採血し、血清グルコース濃度を測定した。
試料摂取前の血糖値を０として、摂取後の血糖値の上昇量を図１３に示し、その曲線下面積（ＡＵＣ）を図１４に示した。分岐デキストリン摂取後の血糖値上昇量はデキストリンに比べて少ない傾向にあった。分岐デキストリンのＡＵＣは、ｔ検定においてデキストリンより有意に低く、デキストリンのＡＵＣを１００とした場合の分岐デキストリンのＡＵＣ、すなわちグリセミックインデックス（ＧＩ）は７８であった。これより分岐デキストリンはデキストリンよりもヒトでの消化吸収が緩やかであることが明らかとなった。この結果より、分岐デキストリンは低ＧＩが求められる食品（糖尿病患者の栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、栄養補助食品など）への利用が可能であると考えられた。また、消化吸収が緩やかであることから、エネルギー持続型食品（ダイエット食品、スポーツドリンクなど）への利用が可能であると考えられた。
実施例１１（腹持ち試験）
被験者は健常成人男女１０名（平均年齢３３．８±１．１歳）とし、試験前日午後９時以降水以外の飲食を禁止した。試験当日、被験者は朝食を摂らない状態で安静の保てる試験室に集合させた。実施例７の条件４で調製した浸透圧が１４０ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンまたはデキストリン（グリスターＰ：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１５）各５０ｇを水２００ｍＬに溶解し、午前９時に被験者に摂取させた。摂取前、および摂取３時間後まで３０分おきに空腹感を以下の５段階にて評価させた。
スコア５：空腹感を感じない
スコア４：少し空腹感を感じる
スコア３：空腹を感じる
スコア２：強く空腹を感じる
スコア１：空腹で耐えられない
空腹感の評価結果を図１５に示した。図１５より、分岐デキストリンはデキストリンよりも長い時間空腹感が少なく、腹持ちが良いという結果が得られた。これより、分岐デキストリンは腹持ち感やエネルギー持続が求められる食品（糖尿病患者の栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、栄養補助食品など）への利用が可能である。
被験者は健常成人男女１０名（平均年齢３３．８±１．１歳）とし、試験前日午後９時以降水以外の飲食を禁止した。試験当日、被験者は朝食を摂らない状態で安静の保てる試験室に集合させた。実施例７の条件４で調製した浸透圧が１４０ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンまたはデキストリン（グリスターＰ：松谷化学工業社製／ＤＥ＝１５）各５０ｇを水２００ｍＬに溶解し、午前９時に被験者に摂取させた。摂取前、および摂取３時間後まで３０分おきに空腹感を以下の５段階にて評価させた。
スコア５：空腹感を感じない
スコア４：少し空腹感を感じる
スコア３：空腹を感じる
スコア２：強く空腹を感じる
スコア１：空腹で耐えられない
空腹感の評価結果を図１５に示した。図１５より、分岐デキストリンはデキストリンよりも長い時間空腹感が少なく、腹持ちが良いという結果が得られた。これより、分岐デキストリンは腹持ち感やエネルギー持続が求められる食品（糖尿病患者の栄養補給剤、ダイエット食品、エネルギー補給飲料、栄養補助食品など）への利用が可能である。
実施例１２（経腸栄養剤の調製）
表１１の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含む経腸栄養剤を調製し、良好な製品を得た。
表１１の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含む経腸栄養剤を調製し、良好な製品を得た。
実施例１３（食事代替飲料の調製）
表１２の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含む食事代替用の飲料を調製し、良好な製品を得た。
表１２の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含む食事代替用の飲料を調製し、良好な製品を得た。
＊２ 旭化成株式会社製（アビセルＣＬ‐６１１Ｓ）
＊３ 三菱化学フーズ株式会社製（シュガーエステルＰ‐１６７０）
＊４ 武田薬品工業株式会社製（新バイリッチＷＳ‐７Ｌ）
＊５ 高田香料株式会社製（カスタードバニラエッセンスＴ‐４８４）
実施例１４（エネルギー飲料の調製）
表１３の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含むエネルギー飲料を調製し、良好な製品を得た。
表１３の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含むエネルギー飲料を調製し、良好な製品を得た。
実施例１５（ゼリーの調製）
表１４の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含むゼリーを調製し、良好な製品を得た。
表１４の処方に従って実施例２の浸透圧が１０５ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇの分岐デキストリンを含むゼリーを調製し、良好な製品を得た。
＊２ 雄山商事株式会社製
＊３ 高田香料株式会社製（マスカットエッセンス＃５０６３１）
Claims (12)
- デキストリンの非還元末端に、グルコース又はイソマルトオリゴ糖がα−１,６グルコシド結合で結合した構造を有し、且つＤＥが１０−５２であることを特徴とする分岐デキストリン。
- １０質量％水溶液の浸透圧が７０〜３００ｍＯＳＭＯＬ／ｋｇである請求項１記載の分岐デキストリン。
- 請求項１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する飲食品。
- ダイエット食品、エネルギー補給飲料、エネルギー持続食品又は栄養補助食品である請求項３記載の飲食品。
- 請求項１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する栄養補給剤。
- 請求項１又は２に記載の分岐デキストリンを含有するエネルギー持続剤。
- 請求項１又は２に記載の分岐デキストリンを含有する腹持ち剤。
- デキストリンの水溶液にマルトース生成アミラーゼ及びトランスグルコシダーゼを作用させて分岐デキストリンを製造する方法において、マルトース生成アミラーゼとトランスグルコシダーゼの酵素単位比を２：１〜４４：１に調整して作用させることを特徴とする、請求項１又は２に記載の分岐デキストリンの製造方法。
- マルトース生成アミラーゼがα−マルトース生成アミラーゼである、請求項８に記載の分岐デキストリンの製造方法。
- デキストリンのＤＥが２〜２０である、請求項８又は９に記載の分岐デキストリンの製造方法。
- デキストリンの濃度が２０〜５０質量％である、請求項８〜１０のいずれか１項に記載の分岐デキストリンの製造方法。
- デキストリンが澱粉の酸加水分解物である、請求項８〜１１のいずれか１項に記載の分岐デキストリンの製造方法。
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