JP2015104364A - 核酸増幅反応用容器、核酸増幅反応用カートリッジ、及び核酸増幅反応用カートリッジキット - Google Patents

Abstract

【課題】核酸増幅反応用容器、核酸増幅反応用カートリッジ、及び核酸増幅反応用カートリッジキットを提供する。
【解決手段】 凍結乾燥された核酸増幅反応試薬と、オイルと、前記核酸増幅反応試薬及び前記オイルを収容する容器と、を含み、前記核酸増幅反応試薬が前記オイル中に保持されている、核酸増幅反応用容器とし、それを用いて、核酸増幅反応用カートリッジ、及び核酸増幅反応用カートリッジキットを構成する。
【選択図】図１

Description

本発明は、核酸増幅反応用容器、核酸増幅反応用カートリッジ、及び核酸増幅反応用カートリッジキットに関する。

近年、遺伝子の利用技術の発展により、遺伝子診断や遺伝子治療など遺伝子を利用した医療が注目されている。また農畜産分野においても品種判別や品種改良に遺伝子を用いた手法が多く開発されている。遺伝子を利用するための技術として、ＰＣＲ（Polymerase Chain Reaction）などの技術が広く普及している。今日では、ＰＣＲは生体物質の情報解明において必要不可欠な技術となっている。ＰＣＲは、増幅の対象とする核酸（標的核酸）及び試薬を含む溶液（反応液）に熱サイクルを施すことで、標的核酸を増幅させる手法である。ＰＣＲの熱サイクルとしては、２段階又は３段階の温度で熱サイクルを施す手法が一般的である。

一方、医療の現場におけるインフルエンザに代表される感染症の診断は、現状ではイムノクロマト等の簡易検査キットを用いることが主流である。しかしこのような簡易検査では、精度が不十分となる場合があり、より高い検査精度を期待できるＰＣＲを感染症の診断に適用することが望まれている。また、医療機関における一般外来等では、診察の時間が制限される関係から、検査に費やすことのできる時間は短時間に制限される。そのため、例えばインフルエンザの検査は、検査の精度を犠牲にして、簡易的なイムノクロマト等の検査により短時間化して行われているのが現状である。

このような事情から、医療の現場で、より高い精度を期待できるＰＣＲによる検査を実現するためには反応に要する時間を短縮する必要があった。ＰＣＲの反応を短時間で行うための装置として、例えば特許文献１には、反応液と、反応液と混和せず反応液よりも比重の小さい液体とが充填された生体試料反応用チップを、水平方向の回転軸の周りに回転させることで、反応液を移動させて熱サイクルを施す生体試料反応装置が開示されている（特許文献１）。また、ＰＣＲの一手法として、磁性ビーズを用いた方法（特許文献２）や、磁性ビーズを液滴の移動手段として用い、基板上の温度変化領域での液滴を移動させることによりＰＣＲの熱サイクルを行う方法（特許文献３）等の開示がある。

特開２００９−１３６２５０号公報 特開２００９−２０７４５９号公報 特開２００８−０１２４９０号公報

本発明は、核酸増幅反応用容器、核酸増幅反応用カートリッジ、及び核酸増幅反応用カートリッジキットを提供することを目的とする。

本発明に係る一実施態様は、凍結乾燥された核酸増幅反応試薬と、オイルと、前記核酸増幅反応試薬及び前記オイルを収容する容器と、を含み、前記核酸増幅反応試薬がオイル中に保持されている、核酸増幅反応用容器である。前記オイルが脱水処理されていてもよい。前記凍結乾燥された核酸増幅反応試薬がケーキ状であることが好ましい。前記凍結乾燥された核酸増幅反応試薬は、直径２０μｍ以下の孔を有する多孔質であることが好ましい。前記核酸増幅反応試薬が、ＤＮＡポリメラーゼ及びｄＮＴＰを含んでもよく、核酸増幅反応用プライマーを含んでもよく、逆転写酵素を含んでもよい。また、前記核酸増幅反応試薬と前記核酸増幅反応用オイルとが、固形ワックスで隔てられていてもよい。
本発明に係るさらなる一実施態様は、核酸増幅反応用カートリッジであって、長手方向を有し、オイルからなる第１プラグ、オイルと相分離し、核酸が結合した微粒子を洗浄する第１洗浄液からなる第２プラグ、オイルからなる第３プラグ、オイルと相分離し、前記核酸が結合した微粒子から前記核酸を溶出する溶出液からなる第４プラグ、オイルからなる第５プラグ、を、順に内部に備えたチューブと、前記チューブの前記第５プラグの配置された側に連通し、オイルを含む核酸増幅反応用容器と、を備え、オイルに溶解せず、凍結乾燥された核酸増幅反応試薬が前記核酸増幅反応用容器に含まれる前記オイルに保持されている、核酸増幅反応用カートリッジである。前記核酸増幅反応試薬は、前記核酸増幅反応用容器の前記チューブに連通する側とは反対側の端部に配置されていることが好ましい。前記核酸反応用容器の前記チューブに連通する側とは反対側の端部はテーパー状であることが好ましい。前記オイルの比重が前記溶出液の比重より小さいことが好ましく、前記核酸増幅反応用容器に含まれる前記オイルの粘度が５０ｃｓ以下であることが好ましい。前記チューブの第１プラグの配置された側の開口部に取り付けられ、前記チューブの第５プラグの配置された側から前記核酸増幅反応用容器へ液体を押し出すための押出手段を備えてもよい。前記チューブの第５プラグの配置された側の先端は、前記核酸増幅反応用容器中に保持されたオイルに接していてもよい。前記核酸増幅反応用容器中のオイルが脱水処理されていてもよい。前記核酸増幅反応試薬が、ＤＮＡポリメラーゼ及びｄＮＴＰを含んでもよい。前記核酸増幅反応試薬が、核酸増幅反応用プライマーを含んでもよく、あるいは、前記溶出液が、核酸増幅反応用プライマーを含んでもよい。前記核酸増幅反応試薬が、逆転写酵素を含んでもよい。前記核酸増幅反応試薬とオイルとが、固形ワックスで隔てられていてもよい。なお、前記核酸増幅反応試薬を凍結乾燥させるための核酸増幅反応試薬溶液の量は、前記溶出液の溶液量より少なくてもよい。
本発明に係るさらなる一実施態様は、核酸増幅反応用カートリッジキットであって、上記いずれかの核酸増幅反応用カートリッジと、前記チューブに前記核酸結合性固相担体を導入するためのタンクと、を備えた核酸増幅反応用カートリッジキットである。前記タンクは、核酸を抽出するための溶解液と前記核酸結合性固相担体を含んでもよい。前記タンクは開口部を有し、前記開口部には、取り外し可能な蓋を有してもよい。前記タンクの開口部は、前記チューブの第１プラグ側の開口部に取り付け可能であるように構成されていてもよい。

図１Ａ及び図１Ｂは、カートリッジ１の説明図である。 図２Ａ〜図２Ｃは、カートリッジ１の動作説明図である。 図３Ａ〜図３Ｄは、タンク３の説明図である。 図４は、固定爪２５及びガイド板２６と装着部６２の説明図である。 図５Ａ及び図５Ｂは、ＰＣＲ容器３０の周辺の説明図である。 図６Ａは、ＰＣＲ装置５０の内部構成の斜視図である。図６Ｂは、ＰＣＲ装置５０の主要構成の側面図である。 図７は、ＰＣＲ装置５０のブロック図である。 図８Ａは、回転体６１の説明図である。図８Ｂは、回転体６１の装着部６２にカートリッジ１を装着した状態の説明図である。 図９Ａ〜図９Ｄは、カートリッジ１の装着時のＰＣＲ装置５０の状態の説明図である。 図１０は、磁石７１を下方向に移動させたときの磁気ビーズ７の挙動の概念図である。 図１１Ａ〜図１１Ｃは、核酸溶出処理の説明図である。 図１２は、磁石７１を揺動させたときの磁気ビーズ７の挙動の概念図である。 図１３は、磁石７１の揺動の有無を示す表である。 図１４Ａ〜図１４Ｃは、液滴形成処理の説明図である。 図１５Ａ及び図１５Ｂは、熱サイクル処理の説明図である。 一実施例において用いた核酸抽出用キット及びその組み立て後の装置を示す図である。 一実施例におけるリアルタイムＰＣＲの結果を示すグラフである。 一実施例における核酸増幅溶液の保存安定性能の比較の結果を示すグラフである。 一実施形態において、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を、チューブに固着させたときの模式図。 一実施形態において、図１９Ａに記載の構成を用いて、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を溶解させる方法を示した模式図である。 一実施例において、図２０の方法を用いて核酸増幅試薬を溶出液に溶解させて得られた試薬を用いたＲＴ−ＰＣＲの結果を示すグラフである。

以下、本発明の実施の形態を、詳細に説明する。なお、本発明の目的、特徴、利点、および、そのアイデアは、本明細書の記載により、当業者には明らかであり、本明細書の記載から、当業者であれば容易に本発明を再現できる。以下に記載された発明の実施の形態は、本発明の好ましい実施態様を示すものであり、例示又は説明のために示されているのであって、本発明をそれらに限定するものではない。本明細書で開示されている本発明の意図並びに範囲内で、本明細書の記載に基づき、様々な改変並びに修飾ができることは、当業者にとって明らかである。

＝＝＝第１実施形態＝＝＝
本発明の第１実施形態は、凍結乾燥された核酸増幅反応試薬と、オイルと、核酸増幅反応試薬及びオイルを収容する容器とを含み、核酸増幅反応試薬がオイル中に保持されている、核酸増幅反応用容器である。凍結乾燥された核酸増幅反応試薬はオイルに溶解しないことが好ましい。

この核酸増幅反応用容器に含まれる容器は特に限定されないが、例えば、ＰＣＲ装置などの核酸増幅機に直接用いることができる、０．２ｍＬから１．５ｍＬの小型チューブであることが好ましい。

この容器中で、凍結乾燥された核酸増幅反応試薬がオイル中に保持されている。核酸増幅反応試薬は、少なくともＤＮＡポリメラーゼ及びｄＮＴＰを含むが、核酸増幅反応用プライマー及び／又は核酸増幅反応用プローブを含んでいることが好ましい。また、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬は、逆転写酵素を含んでいてもよい。その場合、逆転写用プライマーは、核酸増幅反応用プライマーと別に含んでいてもよく、核酸増幅反応用プライマーと共用してもよい。

ＤＮＡポリメラーゼは特に限定されないが、耐熱性の酵素やＰＣＲ用酵素が好ましく、例えば、Ｔａｑポリメラーゼ、Ｔｆｉポリメラーゼ、Ｔｔｈポリメラーゼ、あるいはそれらの改良型など、非常に多数の市販品があるが、ホットスタートを行えるＤＮＡポリメラーゼが好ましい。また、逆転写酵素も特に限定されず、例えば、アビアンミエロブラストウイルス（Ａｖｉａｎ Ｍｙｅｌｏｂｌａｓｔ Ｖｉｒｕｓ）、ラスアソシエーテッドウイルス２型（Ｒａｓ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ Ｖｉｒｕｓ２型）、マウスモロニーミュリーンリューケミアウイルス（Ｍｏｕｓｅ Ｍｏｌｏｎｙ Ｍｕｒｉｎｅ Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｖｉｒｕｓ）、ヒト免疫不全ウイルス１型（Ｈｕｍａｎ Ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ Ｖｉｒｕｓ１型）由来の逆転写酵素などが使用できるが、耐熱性の酵素が好ましい。

ｄＮＴＰや塩の濃度は、用いる酵素について適した濃度にすれば良いが、通常、ｄＮＴＰを１０〜１０００μＭ、好ましくは１００〜５００μＭ、Ｍｇ^２＋を１〜１００ｍＭ、好ましくは５〜１０ｍＭ、Ｃｌ⁻を１〜２０００ｍＭ、好ましくは２００〜７００ｍＭ、とすれば良く、総イオン濃度は、特に限定されないが、５０ｍＭより高い濃度であってもよく、１００ｍＭより高い濃度が好ましく、１２０ｍＭより高い濃度がより好ましく、１５０ｍＭより高い濃度がさらに好ましく、２００ｍＭより高い濃度がさらに好ましい。上限は、５００ｍＭ以下が好ましく、３００ｍＭ以下がより好ましく、２００ｍＭ以下がさらに好ましい。プライマー用オリゴヌクレオチドは、それぞれ０．１〜１０μＭ、好ましくは０．１〜１μＭが用いられる。

核酸増幅反応試薬の凍結乾燥は、通常行われる方法で行えばよく、例えば、核酸増幅反応用容器のための容器に、核酸増幅反応用バッファーの中に１反応分の核酸増幅反応試薬を入れ、急速凍結させ、低圧にして、所定時間放置する。核酸増幅反応用バッファーの量は特に限定されないが、５μＬでもよく、２．５μＬが好ましく、１．６μＬがより好ましく、バッファーの量が少ないほど，核酸増幅反応試薬が容器の底に小さく硬く固着するようになる。急速凍結の際の温度は特に限定されず、−１０℃から−１６０℃が好ましいが、約−８０℃であることが最も好ましい。凍結乾燥した核酸増幅反応試薬はスポンジ状もしくはケーキ状で、中に気泡がたまっている微細孔（気孔）が沢山ある多孔質であることが好ましく、それによって、溶解性が良くなる。そして、急速に凍結させた方が、微細孔がさらに小さくなり、保存性がさらに良くなる。孔の平均空隙径（例えば、断面の孔の径を顕微鏡下で一定回数計測し、その平均値をとったもの）が２０μｍ以下であることが好ましい。低圧時の圧力は特に限定されず、１００ｍｍＨｇ以下であることが好ましいが、２０ｍｍＨｇ以下であることが最も好ましい。低圧に保つ時間も特に限定されず、２−２４時間であることが好ましいが、８時間程度であることが最も好ましい。なお、核酸増幅反応試薬を凍結乾燥させるための核酸増幅反応試薬溶液の量は、核酸増幅反応試薬を溶解させる水溶液の量より少ないことが好ましい。

このようにして核酸増幅反応用容器に用いる容器中で核酸増幅反応試薬を凍結乾燥することにより、核酸増幅反応試薬を容器の底に固着させる。その後でオイルを添加するが、容器を満たすように添加するのが好ましい。凍結乾燥した核酸増幅反応試薬は水分に弱く、水分がある状態では、長期間安定して保存できないので、オイルは予めシリカゲルなどで脱水しておくことが好ましく、オイルの添加はグローブボックス内などで行うことが好ましい。また、オイルを加えた後、容器を軽く遠心して、気泡を除去しておくのが好ましい。

凍結乾燥した核酸増幅反応試薬にオイルを加える前に、溶解したワックスを加え、ワックスが固形化した後でオイルを加えることによって、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬がオイル中で拡散するのを防ぐことができる。ここで、ワックスとは、室温で固体であって、加熱すると液体となる有機物のことであるが、本発明に使用できるワックスは、３１℃以上、好ましくは３６℃以上、より好ましくは４１℃以上、さらに好ましくは４６℃以上であって、かつ１００℃以下、好ましくは９０℃以下、より好ましくは８０℃以下、さらに好ましくは７０℃以下の融点を有し、中性脂肪、高級脂肪酸、炭化水素などからなることが好ましい。ワックスとしては、特に限定されず、例えば、パラフィン、マイクロクリスタリンなどの石油由来のワックス、蜜蝋、ウールワックス、鯨蝋などの動物由来のワックス、カルナバ、ロジン、キャンデリラワックス、木蝋などの植物由来のワックスのほか、エルクリスタ（登録商標、出光興産）、ニッサンエレクトール（登録商標、日油株式会社）、ポエム（登録商標、理研ビタミン）、リケマール（登録商標、理研ビタミン）、ネオワックス（登録商標、ヤスハラケミカ（株））、ハイワックス（登録商標、三井化学）、シリコンワックス（登録商標、東レ・ダウコーニング）などを用いることができる。

核酸増幅反応用容器に含まれる容器がＰＣＲ装置などの核酸増幅機に使用できる場合、この核酸増幅反応試薬とオイルとを有する核酸増幅反応用容器は、そのまま核酸増幅反応に用いることができる。具体的には、増幅させるＤＮＡを含んだ適量の純水またはバッファーを凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を浸すように添加し、核酸増幅反応を始めればよい。純水またはバッファーの量は、塩類などの最終濃度が核酸増幅反応に適するように、容易に決定することができる。なお、反応前に加熱処理や振とう処理をして、核酸増幅反応試薬を十分に溶解してもよい。

凍結乾燥した核酸増幅反応試薬が逆転写酵素を含んでいる場合は、ＲＮＡを含んだ適量の純水またはバッファーを凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を浸すように添加してもよく、その場合、逆転写反応を行うことができ、その後で核酸増幅反応を行うことができる。

核酸増幅反応用容器中で固形ワックスが、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を覆っている場合、ワックスが溶解する温度まで加熱し、ワックスを溶解させてから、上述のように核酸を含んだ適量の純水またはバッファーを添加すればよい。

＝＝＝第２実施形態＝＝＝
まず、ＰＣＲ装置５０（核酸増幅反応装置）に装着されるカートリッジについて説明した後、本実施形態のＰＣＲ装置５０の構成・動作について説明する。

＜カートリッジ１＞
図１Ａ及び図１Ｂは、カートリッジ１の説明図である。図２Ａ〜図２Ｃは、カートリッジ１の動作説明図である。図２Ａは、カートリッジ１の初期状態の説明図である。図２Ｂは、図２Ａの状態からプランジャー１０を押して、シール１２Ａが下シリンジ２２に接触したときの側面図である。図２Ｃは、プランジャー１０を押した後のカートリッジ１の説明図である。

カートリッジ１は、核酸の結合した磁気ビーズ７から核酸を溶出させる核酸溶出処理を行う容器であるとともに、溶出液４７に対し、ポリメラーゼ反応のための熱サイクル処理を行う容器である。

核酸抽出処理は、タンク３で行われ、チューブ２０を通る間に精製される。チューブ２０の材質は、特に限定されないが、例えば、ガラス、プラスティックなどの樹脂、金属などとすることができる。特に、チューブ２０の材質として透明なガラスや樹脂を選択すると、チューブ２０の外部から内部を観察することができるので、より好ましい。また、チューブ２０の材質に、磁力を透過する物質や非磁性体を選択すると、チューブ２０に磁性粒子を通過させる場合などに、チューブ２０の外部から磁力を与えることによって、磁性粒子を移動させることが容易化されるため好ましい。また、チューブの材質は、付近にヒーター（後述する溶出用ヒーター６５Ａや高温側ヒーター６５Ｂ）が配置されるため、少なくとも１００℃以上の耐熱性を有することが好ましい。なお、チューブ２０の材質は、タンクの材質と同じにしても構わない。

チューブ２０は、洗浄液プラグ４５、溶出液プラグ４７及びオイルプラグを有している。核酸の結合した磁気ビーズ７が外部の磁石に引き寄せられるので、チューブ２０に沿って外部で磁石を移動させることにより、磁気ビーズ７がチューブ２０内を移動し、洗浄液プラグ４５を通って、溶出液プラグ４７に到達する。磁気ビーズ７に結合した核酸は、洗浄液プラグ４５で洗浄液により洗浄され、溶出液プラグ４７で溶出する。ここで、「プラグ」とは、チューブ２０内において、特定の液体が一区画を占める場合の液体を意味する。例えば、図２Ａ〜図２Ｃにおいてキャピラリー２３内で柱状に保持されている液体を「プラグ」と呼ぶ。なお、オイルは、その他の溶液とは相分離し（その他の溶液とは混和せず）、従って、オイルからなるプラグは、その両側の水溶性のプラグが互いに混合することを防止する機能を有する。プラグの中やプラグの間には、気泡や他の液体がないことが好ましいが、磁気ビーズ７がプラグを通過できる限りにおいて、気泡や他の液体が存在しても良い。

オイルの種類は、特に限定されず、ミネラルオイル、シリコーンオイル（２ＣＳシリコーンオイルなど）、植物油などを用いることができるが、より高粘度なオイルにすることによって、上側のプラグとの界面で、核酸結合性固相担体を移動させる場合に、オイルによる「ぬぐい効果」を高めることができる。これにより、上側のプラグから、オイルからなるプラグに核酸結合性固相担体を移動させた場合に、核酸結合性固相担体に付着した水溶性の成分をオイル内に、より持ち込まれにくくすることができる。

熱サイクル処理は、チューブ２０と連通したカートリッジ１のＰＣＲ容器３０で行われる。ＰＣＲ容器３０は、オイルで満たされており、チューブの第５プラグの配置された側の先端が、ＰＣＲ容器３０中に保持されたオイルに接していることが好ましい。溶出液４７は、そのオイルと相分離するので、チューブ２０から溶出液プラグ４７がＰＣＲ容器３０中に押し出されると液滴状になり、また、オイルよりも比重が大きいため、液滴状になった溶出液４７は沈降する。ここで、オイルの粘性は特に限定されないが、９０ｃｓ以下であることが好ましく、７０ｃｓ以下であることがより好ましく、５０ｃｓ以下であることがさらに好ましく、３０ｃｓ以下であることがさらに好ましい、というように、小さい方が好ましく、それによって、溶解液がスムーズに沈降できるようになる。ＰＣＲ容器３０はまた、チューブ２０に連通する側とは反対側の端部、例えば容器内の底に固着した、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を有する。ＰＣＲ容器３０内を沈降した溶出液４７は、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬に接し、核酸増幅反応試薬を溶解させる。一方、外部のヒーターによってＰＣＲ容器３０に高温領域３６Ａと低温領域３６Ｂが形成され、カートリッジ１全体をヒーターとともに上下反転させることを繰り返すと、高温領域３６Ａと低温領域３６Ｂとの間で液滴状の溶出液４７が交互に移動して、ＰＣＲ溶液である溶出液４７に２段階の温度処理が施される。

ＰＣＲ容器３０の材質は特に限定されないが、例えば、ガラス、プラスティックなどの樹脂、金属などとすることができる。また、ＰＣＲ容器３０の材質は、付近に高温側ヒーター６５Ｂがあるため、少なくとも１００℃以上の耐熱性を有することが好ましい。ＰＣＲ容器３０の材質は透明又は半透明な材質を選択すると、蛍光測定（蛍光強度測定）が容易になるので好ましい。但し、ＰＣＲ容器３０の全ての領域で透明又は半透明である必要はなく、少なくとも蛍光測定器５５と対向する部位（例えばＰＣＲ容器３０の底３５Ａ）が透明又は半透明であればよい。なお、ＰＣＲ容器３０の材質は、タンク３やプランジャー１０の材質と同じにしても構わない。なお、ＰＣＲ容器３０内での凍結乾燥した核酸増幅反応試薬の作製方法は、第１実施態様に準じる。チューブ２０に連通する側とは反対側の端部はテーパー状であることが好ましく、例えば、先端に近づくに従って断面積が小さくなる形状であることが好ましい。それによって、液滴状になった溶出液４７が沈降する際、確実に凍結乾燥した核酸増幅反応試薬に到達することができる。

カートリッジ１は、タンク３と、カートリッジ本体９とから構成される。カートリッジ１を構成するキットには、タンク３及びカートリッジ本体９とともにアダプター５が予め用意されている。アダプター５を介してタンク３とカートリッジ本体９とが接続されることによって、カートリッジ１が組み立てられる。但し、タンク３をカートリッジ本体９に直接取り付けるように構成することも可能である。

以下のカートリッジ１の構成要素の説明では、図２Ａに示すように、長尺のカートリッジ１に沿った方向を「長手方向」とし、タンク３側を「上流側」とし、ＰＣＲ容器３０側を「下流側」とする。なお、上流側のことを単に「上」、下流側のことを「下」と表現することもある。

（１）タンク
図３Ａ〜図３Ｄは、タンク３の説明図である。

キットに予め用意されているタンク３には、溶解液４１と磁気ビーズ７が収容されている。タンク３の開口には、取り外し可能な蓋３Ａが取り付けられている（図３Ａ参照）。溶解液４１としては、５Ｍグアニジンチオシアン酸塩、２％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．２）を用いる。作業者は、蓋３Ａを外してタンク３の開口を開放し（図３Ｂ参照）、ウイルスの付着した綿棒をタンク３内の溶解液４１に浸し、ウイルスを溶解液４１に採取する（図３Ｃ参照）。タンク３内の液体を攪拌するとき、図３Ｃの状態でタンク３を振とうしてもよいが、これでは溶解液４１が溢れやすいので、図３Ｄに示すように、蓋５Ａの付いたアダプター５をタンク３の開口に取り付けてからタンク３を振とうするのが好ましい。これによりタンク３内の物質が攪拌され、溶解液４１によりウイルス粒子が溶解し、核酸が遊離するとともに、磁気ビーズ７にコーティングされたシリカが核酸を吸着する。磁気ビーズ７は、核酸結合性固相担体に相当する。その後、作業者は、タンク３の開口に取り付けたアダプター５の蓋５Ａを外し、アダプター５を介してタンク３をカートリッジ本体９に取り付ける（図２Ａ参照）。

タンク３は、可撓性のある樹脂で構成されており、タンク３が膨張可能である。プランジャー１０がスライドして図２Ａの状態から図２Ｂの状態になるとき、タンク３が膨張することによって、チューブ２０内の液体の圧力が上昇し過ぎることが抑制され、チューブ２０内の液体が下流側に押し出されることが抑制される。タンク３が膨張しやすいように、タンク３に変形部３Ｂを形成することが望ましい。

なお、核酸を抽出・増幅する試料はウイルスに限らず、細胞であってもよい。細胞の由来も、特に限定されず、微生物であってもよく、高等生物の組織片や血液などであっても構わない。

なお、溶解液４１は、核酸結合性固相担体である微粒子（例えば磁性粒子Ｍ）に核酸を吸着させる液体のことをいう。溶解液４１は、カオトロピック物質を含有すれば特に限定されないが、細胞膜の破壊あるいは細胞中に含まれるタンパク質を変性させる目的で界面活性剤を含有させてもよい。この界面活性剤としては、一般に細胞等からの核酸抽出に使用されるものであれば特に限定されないが、具体的には、Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘなどのトリトン系界面活性剤やＴｗｅｅｎ２０などのツイーン系界面活性剤のような非イオン性界面活性剤、Ｎ‐ラウロイルサルコシンナトリウム（ＳＤＳ）等の陰イオン性界面活性剤が挙げられるが、特に非イオン性界面活性剤を、０．１〜２％の範囲となるように使用するのが好ましい。さらに、溶解液には、２−メルカプトエタノールあるいはジチオスレイトール等の還元剤を含有させることが好ましい。溶解液４１は、緩衝液であってもよいが、ｐＨ６〜８の中性であることが好ましい。これらのことを考慮し、具体的には、３〜７Ｍのグアニジン塩、０〜５％の非イオン性界面活性剤、０〜０．２ｍＭのＥＤＴＡ、０〜０．２Ｍの還元剤などを含有することが好ましい。

カオトロピック物質は、水溶液中でカオトロピックイオン（イオン半径の大きな１価の陰イオン）を生じ、疎水性分子の水溶性を増加させる作用を有しており、核酸の固相担体への吸着に寄与するものであれば、特に限定されない。具体的には、グアニジンチオシアン酸塩、グアニジン塩酸塩、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、過塩素酸ナトリウム等が挙げられるが、これらのうち、タンパク質変成作用の強いグアニジンチオシアン酸塩またはグアニジン塩酸塩が好ましい。これらのカオトロピック物質の使用濃度は、各物質により異なり、例えば、グアニジンチオシアン酸塩を使用する場合には、３〜５．５Ｍの範囲で、グアニジン塩酸塩を使用する場合は、５Ｍ以上で使用するのが好ましい。

この溶解液４１は、アルコール、又はアセトニトリルを含むことが好ましい。この場合、アルコール等の濃度は、特に限定されないが、下限については、１０％以上であってもよく、２０％以上であってもよく、３０％以上であってもよいが、４０％以上であることが最も好ましい。上限については、８０％以下であってもよく、７０％以下であってもよく、６０％以下であってもよいが、５０％以下であることが最も好ましい。アルコールの種類は特に限定されないが、メタノール、エタノール、プロパノールなどが例示できる。溶解液にアルコール等を添加することにより、粒子等に核酸を吸着する効果を高め、核酸抽出用デバイスとしてみた場合には核酸の抽出効率を高めることが可能になる。

また、試料を採取する器具は特に限定されず、綿棒の代わりに、スパチュラ、棒、スクレイパーなど、用途に合わせて選択すればよい。

タンク３の内容積は、特に限定されないが、例えば、０．１ｍＬ以上１００ｍＬ以下とすることができる。タンク３の材質は、特に限定されないが、例えば、ガラス、プラスティックなどの樹脂、金属などとすることができる。特に、タンクの材質として透明なガラスや樹脂を選択すると、タンク３の外部から内部を観察することができるので、より好ましい。なお、タンク３と各チューブ２０は、一体成形されていても、着脱可能になっていても構わない。タンク３の材質にゴム、エラストマー、高分子等の可とう性を有するものを利用すると、タンク３に蓋を装着した状態で、タンク３を変形させることにより、タンク３の内部を加圧することができる。それにより、チューブの内部から外部へと、チューブの先端側からチューブ２０の内容物を押し出すことができる。

（２）カートリッジ本体
カートリッジ本体９は、プランジャー１０と、チューブ２０と、ＰＣＲ容器３０とを有する。

（２−１）プランジャー
以下、図２Ａ〜図２Ｃを参照しながら、プランジャー１０について説明する。

プランジャー１０は、シリンジとして機能するチューブ２０の下流側から液体を押し出す可動式の押子である。プランジャー１０は、チューブ２０内の所定量の液体をチューブ２０の末端からＰＣＲ容器３０へ押し出す機能を有する。また、プランジャー１０は、アダプター５を介してタンク３を取り付ける機能も有する。

プランジャー１０は、筒状部１１及び棒状部１２を有する。筒状部１１はタンク３側（上流側）に設けられ、棒状部１２はチューブ２０側（下流側）に設けられている。棒状部１２は、筒状部１１の下流側の内壁から板状の２つのリブ１３によって支持されている。棒状部１２の下流側は、筒状部１１から下流側に突出している。

筒状部１１は上流側及び下流側に開口しており、筒状部１１の内壁は液体の通路となる。筒状部１１の上流側（タンク３側）の開口にはアダプター５が嵌合する。キットに予め用意されているカートリッジ本体９のプランジャー１０には、筒状部１１の上流側の開口に取り外し可能な蓋が取り付けられていても良い。筒状部１１の下流側の開口は、チューブ２０の上シリンジ２１の内部に位置する。筒状部１１の上流側の開口から導入される磁気ビーズ７は、筒状部１１の内部を通り、リブ１３の表裏を抜けて筒状部１１の下流側の開口から出て、チューブ２０の上シリンジ２１に導入されることになる。

筒状部１１の下流側は、チューブ２０の上シリンジ２１の内壁に嵌合している。筒状部１１はチューブ２０の上シリンジ２１に内接しながら、上シリンジ２１に対して長手方向にスライドできる。

筒状部１１の上流側の開口の周囲には、アダプター５を取り付ける取付台１１Ａが形成されている。また、取付台１１Ａは、プランジャー１０を押すときに押される部位でもある。取付台１１Ａが押されることによって、プランジャー１０がチューブ２０に対してスライドし、図２Ａの状態から図２Ｃの状態になる。プランジャー１０が下流側に移動すると、取付台１１Ａがチューブ２０の上縁に接触する（図２Ｃ参照）。つまり、プランジャー１０の取付台１１Ａとチューブ２０の上縁との間隔が、プランジャー１０のスライド長になる。

棒状部１２は、初期状態では、チューブ２０の上シリンジ２１の内部に位置し、下シリンジ２２から離れている（図２Ａ参照）。プランジャー１０がチューブ２０に対してスライドすると、棒状部１２がチューブ２０の下シリンジ２２に挿入され、棒状部１２が下シリンジ２２に内接しながら、下シリンジ２２に対して下流方向にスライドする（図２Ｂ及び図２Ｃ参照）。

棒状部１２の長手方向に直交する断面の形状は、円形状である。但し、棒状部１２の断面形状は、チューブ２０の下シリンジ２２の内壁に嵌合できるかぎり、円、楕円、多角形とすることができ、特に限定されない。

棒状部１２の下流側の端部には、シール１２Ａが形成されている。シール１２Ａが下シリンジ２２に嵌合すると、下流側のチューブ２０内の液体が上シリンジ２１へ逆流することが防止される。そして、図２Ｂの状態から図２Ｃの状態までプランジャー１０が押されると、その間にシール１２Ａが下シリンジ２２内でスライドした体積相当分だけ、チューブ２０内の液体が下流側から押し出されることになる。

なお、シール１２Ａが下シリンジ２２内でスライドする体積（チューブ２０内の液体が下流側から押し出される量）は、チューブ２０内の溶出液プラグ４７及び第３オイルプラグ４８の合計よりも多い。これにより、チューブ２０に溶出液４７が残らないように、チューブ２０内の液体を押し出すことができる。

プランジャー１０の材質は特に限定されないが、例えば、ガラス、プラスティックなどの樹脂、金属などとすることができる。また、プランジャー１０の筒状部１１及び棒状部１２は、同じ材質で一体的に形成されても良いし、別の材質で形成されても良い。ここでは、筒状部１１及び棒状部１２を樹脂で別々に成型し、リブ１３を介して筒状部１１と棒状部１２を接合することによって、プランジャー１０が形成されている。

プランジャー１０の内部には、オイル４２と第１洗浄液４３とが予め収容されている。プランジャー１０内のオイル４２は第１洗浄液４３よりも比重が小さいため、カートリッジ本体９にタンク３を取り付けるときにプランジャー１０の取付台１１Ａを上にしてカートリッジ本体９を立てると、図２Ａに示すように、タンク３内の液体とカートリッジ本体９の第１洗浄液４３との間にオイル４２が配置されることになる。なお、オイル４２としては、２ＣＳシリコーンオイルを用い、第１洗浄液４３としては、８Ｍグアニジン塩酸塩、０．７％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を用いる。

なお、第１洗浄液４３は、オイル４２及びオイル４４のいずれとも、混ぜた時に相分離する液体であればよい。第１洗浄液４３は、水または低塩濃度水溶液であることが好ましく、低塩濃度水溶液の場合、緩衝液であることが好ましい。低塩濃度水溶液の塩濃度は、１００ｍＭ以下が好ましく、５０ｍＭ以下がより好ましく、１０ｍＭ以下が最も好ましい。また、低塩濃度水溶液の下限は特に無いが、０．１ｍＭ以上であることが好ましく、０．５ｍＭ以上であることがさらに好ましく、１ｍＭ以上であることが最も好ましい。また、この溶液はＴｒｉｔｏｎ、Ｔｗｅｅｎ、ＳＤＳなどの界面活性剤を含有しても良く、ｐＨは特に限定されない。緩衝液にするための塩は特に限定されないが、トリス、ヘペス、ピペス、リン酸などの塩が好ましく用いられる。さらに、この洗浄液は、アルコールを、核酸の担体への吸着、逆転写反応、ＰＣＲ反応などを阻害しない量だけ含むことが好ましい。この場合、アルコール濃度は、特に限定されないが、下限については、５０％以上であってもよく、６０％以上であってもよいが、７０％以上であることが最も好ましい。アルコール濃度の上限については、９０％以下であってもよく、８０％以下であってもよいが、７０％以下であることが最も好ましい。アルコールの種類は特に限定されないが、メタノール、エタノール、プロパノール、アセトニトリルなどが例示できる。なお、核酸、及び核酸が吸着した粒子等の洗浄という観点では、溶解液、又は第１洗浄液の少なくとも一方がアルコールを含めば、洗浄効果を高めることができるが、溶解液と第１洗浄液の双方がアルコールを含むと、さらに洗浄効果を高めることができるので好ましい。

なお、第１洗浄液４３にカオトロピック剤を含有させてもよい。例えば、第１洗浄液４３にグアニジン塩酸塩を含有させると、粒子等に吸着した核酸の吸着を維持又は強化しつつ粒子等を洗浄することができる。グアニジン塩酸塩を含有させる場合の濃度としては、例えば、３ｍｏｌ／Ｌ以上１０ｍｏｌ／Ｌ以下、好ましくは５ｍｏｌ／Ｌ以上８ｍｏｌ／Ｌ以下とすることができる。グアニジン塩酸塩の濃度がこの範囲であれば、粒子等に吸着された核酸をより安定に吸着させつつ、他の夾雑物等を洗浄することができる。

（２−２）チューブ
以下、図２Ａ〜図２Ｃを参照しながら、チューブ２０について説明する。

チューブ２０は、液体を長手方向に流通させることのできる筒状の形状である。チューブ２０は、上シリンジ２１、下シリンジ２２及びキャピラリー２３を有しており、各部の内径が段階的に異なっている。

上シリンジ２１は、液体を長手方向に流通させることのできる筒状の形状である。上シリンジ２１の内壁には、プランジャー１０の筒状部１１がスライド可能に内接しており、上シリンジ２１は、プランジャー１０の筒状部１１に対するシリンジとして機能する。

下シリンジ２２は、液体を長手方向に流通させることのできる筒状の形状である。下シリンジ２２の内壁は、プランジャー１０の棒状部１２のシール１２Ａがスライド可能に嵌合でき、下シリンジ２２は、プランジャー１０の棒状部１２に対するシリンジとして機能する。

キャピラリー２３は、液体を長手方向に流通させることのできる細管状の形状である。キャピラリー２３の内径は、液体がプラグの形状を維持できる大きさであり、ここでは１．０ｍｍである。キャピラリー２３の末端（チューブ２０の下流側の端）では、これより内径が小さくなっており、ここでは０．５ｍｍである。キャピラリー２３の末端の内径は、後述する液滴状の溶出液の直径（１．５〜２．０ｍｍ）よりも小さく設定されている。これにより、溶出液プラグ４７がキャピラリー２３の末端から押し出されたときに、液滴状の溶出液がキャピラリー２３の末端に付着したり、キャピラリー２３内に逆入したりすることを回避できる。

なお、キャピラリー２３は、内部に空洞を有し、液体を長手方向に流通させることのできる筒状の形状を有するものであればよく、長手方向に、屈曲してもよいが、直線状であるのが好ましい。チューブの内部の空洞は、液体がチューブ内でプラグの形状を維持できれば、大きさ、形状ともに特に限定されない。また、チューブ内の空洞の大きさや、長手方向に対して垂直な断面の形状は、チューブの長手方向に沿って変化してもよい。
チューブの外形の長手方向に垂直な断面の形状も限定されない。さらにチューブの肉厚（内部の空洞の側面から外部の表面までの寸法）も特に限定されない。チューブが円筒状の場合、その内径（内部の空洞の長手方向に垂直な断面における円の直径）は、例えば、０．５ｍｍ以上２ｍｍ以下とすることができる。チューブの内径がこの範囲であると、チューブの材質、液体の種類において広範な範囲で液体のプラグを形成しやすい。先端はよりテーパー状に細くなっていることが好ましく、０．２ｍｍ以上１ｍｍ以下とすることができる。そして、キャピラリー２３の末端の内径（キャピラリー２３の開口径）を小さくすることによって、ＰＣＲ容器３０内で液滴化した溶出液４７がキャピラリー２３の開口に吸着して離れなくなることを抑制できる。但し、キャピラリー２３の末端の内径を小さくし過ぎると、多数の小さな液滴の溶出液４７が形成されてしまう。なお、キャピラリー２３の末端以外の部分まで末端と同様に細径化すると、各プラグの体積を確保する必要性からカートリッジ１が長くなってしまい、望ましくない。

キャピラリー２３は、上流側から順に、第１オイルプラグ４４、洗浄液プラグ４５、第２オイルプラグ４６、溶出液プラグ４７、第３オイルプラグ４８を内部に備えている。つまり、水溶性のプラグ（洗浄液プラグ４５又は溶出液プラグ４７）の両側にオイルプラグが配置されている。

なお、第１オイルプラグ４４よりも上流側の上シリンジ２１及び下シリンジ２２には、オイル４２及び洗浄液４３が予め収容されている（図２Ａ参照）。上シリンジ２１及び下シリンジ２２の内径はキャピラリー２３の内径よりも大きく、上シリンジ２１及び下シリンジ２２では液体（オイル４２及び洗浄液４３）をプラグのような柱状に維持できないが、第１オイルプラグ４４はキャピラリー２３によってプラグの形状で保持されているため、第１オイルプラグ４４を構成するオイルが上流側に移動することが抑制されている。

洗浄液プラグ４５は、第２洗浄液である５ｍＭトリス塩酸緩衝液からなってもよいが、酸性溶液であることが好ましく、特に酸性水溶液であることが好ましい。含有する酸は特に限定されないが、クエン酸、酢酸、グリシン塩酸塩などの水溶液が好ましい。ＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸）や、界面活性剤（Triton、Tween、SDSなど）等を含有してもよいが、カオトロピック物質を事実上含まない溶液であるほうが好ましい。ｐＨは、下限については、１以上であることが好ましく、２以上であることがより好ましく、３以上であることがさらに好ましく、４以上であることが最も好ましく、上限については、６以下であることが好ましく、５以下であることがさらに好ましく、４以下であることが最も好ましい。このような第１洗浄液を採用することにより、第２洗浄液の上流側で、核酸や核酸が吸着した粒子がアルコールを含む溶液と接しても、すなわちアルコールを含む溶解液で核酸を抽出する場合や、アルコールを含む洗浄液で核酸が吸着した粒子を洗浄する場合であっても、第２洗浄液により核酸が吸着した粒子等を効率よく洗浄することができ、かつ下流へのアルコールの持ち込み、いわゆるアルコールのキャリーオーバーを防ぐことができ、アルコールによる酵素反応の阻害を防ぐことができる。

洗浄液プラグ４５は、オイルのプラグによって分断された複数のプラグから構成されてもよい。洗浄液プラグ４５が複数のプラグからなる場合、各プラグの液体は、同じであっても異なっていても構わない。その中に、少なくとも１つの洗浄液のプラグがあれば、他のプラグの液体は特に限定されないが、全てのプラグが洗浄液であることが好ましい。洗浄液プラグ４５が分割される数は、例えば、チューブ２０の長さや洗浄の対象等を考慮して適宜設定すれることができる。その際、最も溶出液側の洗浄液は、洗浄液プラグ４５で述べたような酸性溶液であることが好ましく、他の洗浄液は、第１洗浄液４３で述べたようにアルコールを含有することが好ましい。

溶出液４７とは、核酸結合性固相担体に吸着した核酸を、担体から液中に溶出させ、その後、逆転写反応およびポリメラーゼ反応を行う液体のことをいう。従って、溶出液４７は、水やバッファーでもよく、核酸の溶出後の溶出液４７がそのまま逆転写反応およびポリメラーゼ反応に用いられるバッファー溶液となるように、予め調製されていてもよい。緩衝液にするための塩は、酵素反応を阻害しない限り、特に限定されないが、トリス、ヘペス、ピペス、リン酸などの塩が好ましく用いられる。また、逆転写反応のために、逆転写酵素、ｄＮＴＰ、及び逆転写酵素用プライマー（オリゴヌクレオチド）を含んでいてもよい。さらに、反応阻害防止剤として、ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）またはゼラチンを含有することが好ましい。溶媒は、水であることが好ましく、エタノールやイソプロピルアルコール等の有機溶媒およびカオトロピック物質を事実上含まないものがより好ましい。

溶出液に含まれる塩やｄＮＴＰや塩の濃度は、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬中のｄＮＴＰや塩の濃度を考慮し、最終的に、用いる酵素について適した濃度になるようにすれば良いが、通常、ｄＮＴＰを１０〜１０００μＭ、好ましくは１００〜５００μＭ、Ｍｇ２＋を１〜１００ｍＭ、好ましくは５〜１０ｍＭ、Ｃｌ−を１〜２０００ｍＭ、好ましくは２００〜７００ｍＭ、とすれば良く、総イオン濃度は、特に限定されないが、５０ｍＭより高い濃度であってもよく、１００ｍＭより高い濃度が好ましく、１２０ｍＭより高い濃度がより好ましく、１５０ｍＭより高い濃度がさらに好ましく、２００ｍＭより高い濃度がさらに好ましい。上限は、５００ｍＭ以下が好ましく、３００ｍＭ以下がより好ましく、２００ｍＭ以下がさらに好ましい。プライマー用オリゴヌクレオチドは、それぞれ０．１〜１０μＭ、好ましくは０．１〜１μＭが用いられる。ＢＳＡまたはゼラチンの濃度は、１ｍｇ／ｍＬ以下では、反応阻害防止効果が少なく、１０ｍｇ／ｍＬ以上だと、逆転写反応やその後の酵素反応を阻害する可能性があるため、１〜１０ｍｇ／ｍＬが好ましい。ゼラチンを用いる場合、その由来は、牛皮、豚皮、牛骨が例示できるが、特に限定されない。ゼラチンが溶解にしくいときは、加温して溶解させても良い。
溶出液プラグ４７の体積は、特に限定されず、核酸を吸着させた粒子等の量などを指標として適宜設定することができる。例えば、粒子等の体積が、０．５μＬである場合には、溶出液プラグ４７の体積は、０．５μＬ以上であれば十分であり、０．８μＬ以上５μＬ以下とすることが好ましく、１μＬ以上３μＬ以下とすることがさらに好ましい。溶出液プラグ４７の体積がこれらの範囲であれば、例えば、核酸結合性固相担体の体積を０．５μＬにしても、担体から核酸を十分溶出することができる。

キャピラリー２３の下流部は、ＰＣＲ容器３０に挿入されている。これにより、チューブ２０内の溶出液プラグ４７をチューブ２０から押し出すことによって、溶出液４７をＰＣＲ容器３０に導入することができる。

キャピラリー２３の外壁の環状の凸部がＰＣＲ容器３０の内壁と接触することによって、上シール部が形成される。また、上シール部よりも下流側のキャピラリー２３の外壁がＰＣＲ容器３０の内壁と接触することによって、下シール部が形成される。上シール部と下シール部については、後述する。

チューブ２０は、更に、固定爪２５及びガイド板２６を有する。図４は、固定爪２５及びガイド板２６と装着部６２の説明図である。

固定爪２５は、装着部６２にカートリッジ１を固定する部材である。固定爪２５が引っ掛かるまでカートリッジ１が装着部６２に挿入されると、カートリッジ１が装着部６２に対して正常な位置に固定されることになる。言い換えると、カートリッジ１が装着部６２に対して異常な位置にあるときには、固定爪２５は装着部６２に引っ掛からない。

ガイド板２６は、カートリッジ１をＰＣＲ装置５０の装着部６２に装着するときにカートリッジ１を案内する部材である。ＰＣＲ装置５０の装着部６２にガイドレール６３Ａが形成されており、チューブ２０のガイド板２６がガイドレール６３Ａに沿って案内しながら、カートリッジ１が装着部６２に挿入されて固定される。カートリッジ１は長尺の形状であるが、ガイド板２６で案内しながらカートリッジ１が装着部６２に挿入されるので、カートリッジ１を装着部６２に対して正常な位置に固定することが容易になる。

固定爪２５及びガイド板２６は、キャピラリー２３の左右から突出した板状の部材である。チューブ２０内の磁気ビーズ７を磁石で移動させるとき、板状の固定爪２５やガイド板２６の垂直な方向から磁石を近接させる。これにより、磁石とチューブ２０内の磁気ビーズ７との距離を近接させることができる。但し、磁石とチューブ２０内の磁気ビーズ７との距離を近接させられるのであれば、固定爪２５及びガイド板２６は他の形状でも良い。

（２−３）ＰＣＲ容器
図５Ａ及び図５Ｂは、ＰＣＲ容器３０の周辺の説明図である。図５Ａは、初期状態の説明図である。図５Ｂは、プランジャー１０が押された後の状態の説明図である。以下、図２Ａ〜図２Ｃも参照しながら、ＰＣＲ容器３０について説明する。

ＰＣＲ容器３０は、チューブ２０から押し出される液体を受け入れる容器であるとともに、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を有し、熱サイクル処理時に溶出液４７を収容する容器である。ＰＣＲ容器は、核酸増幅反応用容器に相当し、その構成は第１実施形態に準じる。

ＰＣＲ容器３０は、シール形成部３１及び流路形成部３５を有する。シール形成部３１は、チューブ２０が挿入されている部分であり、流路形成部３５から溢れるオイルが外部に漏洩することを抑制する部位である。流路形成部３５は、シール形成部３１よりも下流側の部分であり、液滴状の溶出液４７の移動する流路を形成する部位である。ＰＣＲ容器３０は、シール形成部３１の上シール部３４Ａと下シール部３４Ｂの２箇所でチューブ２０に対して固定される。

シール形成部３１は、オイル受容部３２及び段差部３３を有する。

オイル受容部３２は、筒状の部位であり、流路形成部３５から溢れ出るオイルを受容するリザーバーとして機能する。オイル受容部３２の内壁と、チューブ２０のキャピラリー２３の外壁との間には隙間があり、この隙間が、流路形成部３５から溢れるオイルを受容するオイル受容空間３２Ａとなる。オイル受容空間３２Ａの体積は、プランジャー１０のシール１２Ａがチューブ２０の下シリンジ２２でスライドする体積よりも大きい。

オイル受容部３２の上流側の内壁がチューブ２０の環状の凸部と接触することによって、上シール部３４Ａが形成される。上シール部３４Ａは、空気の通過は許容しつつ、オイル受容空間３２Ａのオイルが外部に漏洩することを抑制するシールである。上シール部３４Ａは、オイルの表面張力によってオイルが漏洩しない程度に、通気口が形成されている。上シール部３４Ａの通気口は、チューブ２０の凸部とオイル受容部３２の内壁との間の隙間でも良いし、チューブ２０の凸部に形成した穴、溝又は切欠でも良い。また、オイルを吸収するオイル吸収材によって上シール部３４Ａを形成しても良い。

段差部３３は、オイル受容部３２の下流側に設けられた段差のある部位である。段差部３３の下流部の内径は、オイル受容部３２の内径よりも小さい。段差部３３の内壁は、チューブ２０のキャピラリー２３の下流側の外壁と接触している。段差部３３の内壁とチューブ２０の外壁が接触することによって、下シール部３４Ｂが形成される。下シール部３４Ｂは、流路形成部３５のオイルがオイル受容空間３２Ａへ流れることを許容しつつ、その流れに抵抗するシールである。下シール部３４Ｂでの圧力損失によって、流路形成部３５の圧力が外気圧よりも高くなるので、熱サイクル処理時に流路形成部３５の液体が加熱されても、流路形成部３５の液体に気泡が発生しにくい。

流路形成部３５は、管状の部位であり、液滴状の溶出液４７の移動する流路を形成する容器となる。流路形成部３５にはオイルが充填されている。流路形成部３５の上流側はチューブ２０の末端によって閉じられており、流路形成部３５に向かってチューブ２０の末端が開口している。流路形成部３５の内径は、チューブ２０のキャピラリー２３の内径よりも大きく、溶出液プラグ４７の容量の液体が球状になったときの外径よりも大きい。流路形成部３５の内壁は、水溶性の溶出液４７が付着しない程度の撥水性を有することが望ましい。

なお、流路形成部３５の上流側は、外部の高温側ヒーター６５Ｂによって相対的に高温（例えば約９５℃）に加熱され、高温領域３６Ａを形成することになる。流路形成部３５の下流側は、外部の低温側ヒーター６５Ｃによって相対的に低温（例えば約６０℃）に加熱され、低温領域３６Ｂを形成することになる。ＰＣＲ容器３０の底３５Ａ（下流側の端部）は、低温領域３６Ｂに含まれる。これにより、流路形成部３５内の液体に温度勾配が形成されることになる。

図５Ａに示すように、初期状態では、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５にオイルが充填されている。オイルの界面は、オイル受容空間３２Ａの比較的下流側に位置している。オイル受容空間３２Ａにおけるオイルの界面よりも上流側の体積は、プランジャー１０のシール１２Ａがチューブ２０の下シリンジ２２でスライドする体積よりも大きい。

図５Ｂに示すように、プランジャー１０が押されると、チューブ２０内の液体が流路形成部３５に押し出されることになる。流路形成部３５には予めオイルが充填されており、その中にチューブ２０内の液体が押し出されるので、流路形成部３５に気体は流入しない。

プランジャー１０が押されると、まず、チューブ２０の第３オイルプラグ４８が流路形成部３５に流入し、流入分のオイルが流路形成部３５からオイル受容空間３２Ａに流れ込み、オイル受容空間３２Ａのオイル界面が上昇する。このとき、下シール部３４Ｂの圧力損失によって、流路形成部３５の液体の圧力が高くなる。第３オイルプラグ４８がチューブ２０から押し出された後、溶出液プラグ４７がチューブ２０から流路形成部３５に流入する。流路形成部３５の内径がキャピラリー２３の内径よりも大きいため、チューブ２０内でプラグ状（柱状）だった溶出液４７は、流路形成部３５のオイル中で液滴状になる。なお、オイル受容空間３２Ａにおける初期状態でのオイルの界面よりも上流側の体積は、プランジャー１０のシール１２Ａがチューブ２０の下シリンジ２２でスライドする体積よりも大きいので、オイル受容空間３２Ａからオイルが溢れずに済む。液滴状の溶出液４７は、ＰＣＲ容器３０内で凍結乾燥した核酸増幅反応試薬を溶解し、ＲＴ−ＰＣＲ反応液またはＰＣＲ反応液となる。

＜ＰＣＲ装置５０＞
図６Ａは、ＰＣＲ装置５０の内部構成の斜視図である。図６Ｂは、ＰＣＲ装置５０の主要構成の側面図である。図７は、ＰＣＲ装置５０のブロック図である。ＰＣＲ装置５０は、カートリッジ１を用いて、核酸溶出処理及び熱サイクル処理を行うものである。

以下のＰＣＲ装置５０の説明では、図に示すように、上下、前後、左右を定義する。すなわち、ＰＣＲ装置５０のベース５１を水平に設置したときの鉛直方向を「上下方向」とし、重力方向に従って「上」と「下」とを定義する。また、カートリッジ１の回転軸の軸方向を「左右方向」とし、上下方向及び左右方向に垂直な方向を「前後方向」とする。カートリッジ１の回転軸からみてカートリッジ挿入口５３Ａの側を「後」とし、逆側を「前」とする。前側からみたときの左右方向の右側を「右」、左側を「左」とする。

ＰＣＲ装置５０は、回転機構６０と、磁石移動機構７０と、押圧機構８０と、蛍光測定器５５と、コントローラー９０とを有する。

（１）回転機構６０
回転機構６０は、カートリッジ１及びヒーターを回転させる機構である。回転機構６０がカートリッジ１及びヒーターを上下反転させることによって、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５内において液滴状の溶出液４７が移動し、熱サイクル処理が行われることになる。

回転機構６０は、回転体６１と、回転用モーター６６とを有する。図８Ａは、回転体６１の説明図である。図８Ｂは、回転体６１の装着部６２にカートリッジ１を装着した状態の説明図である。

回転体６１は、回転軸を中心に回転可能な部材である。回転体６１の回転軸は、ベース５１に固定された支持台５２に支持されている。回転体６１には、カートリッジ１を装着する装着部６２と、ヒーター（溶出用ヒーター６５Ａ、高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃ）が設けられている。回転体６１が回転すると、カートリッジ１とヒーターとの位置関係を維持したまま、カートリッジ１を上下反転させることができる。回転用モーター６６は、回転体６１を回転させる動力源である。回転用モーター６６は、コントローラー９０からの指示に従って、所定の位置に回転体６１を回転させる。回転用モーター６６と回転体６１との間にギヤなどの伝達機構が介在しても良い。

なお、回転体６１の回転軸は、カートリッジ１のＰＣＲ容器３０よりもチューブ２０の近くに位置している。言い換えると、回転体６１の回転軸の高さは、装着部６２に装着されたカートリッジ１のチューブ２０の高さに位置している。チューブ２０がＰＣＲ容器３０よりも長いため、仮にＰＣＲ容器３０の中心を回転軸にすると（仮に回転体６１の回転軸の高さがＰＣＲ容器の高さに位置していると）、回転体６１が大型化してしまうからである。

装着部６２は、カートリッジ１を装着する部位である。装着部６２は、ノッチの形成された固定部６３を有する。また、ヒーター（溶出用ヒーター６５Ａ、高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃ）に形成された挿入穴６４Ａも装着部６２として機能する。挿入穴６４ＡにＰＣＲ容器３０が挿入された状態で固定部６３のノッチにカートリッジ１の固定爪２５が引っ掛かることによって、カートリッジ１が回転体６１に装着される（図４参照）。ここでは、ヒーターの一部が装着部６２を兼ねていることになるが、装着部６２とヒーターが別々であっても良い。また、装着部６２は、溶出用ヒーター６５Ａを介して回転体６１に間接的に固定されているが、回転体６１に直接設けられても良い。また、装着部６２が装着可能なカートリッジ１の数は、１つに限られず、複数でも良い。

なお、装着部６２の固定部６３は、カートリッジ１のチューブ２０を固定するチューブ固定部として機能し、挿入穴６４Ａは、ＰＣＲ容器３０を固定するＰＣＲ容器固定部として機能する。これにより、チューブ２０及びＰＣＲ容器３０からなる長尺なカートリッジ１が、装着部６２に安定して固定される。

固定部６３には、上下方向に沿ってガイドレール６３Ａが形成されている（図４参照）。ガイドレール６３Ａは、カートリッジ１のガイド板２６を前後方向に拘束しながら挿入方向に案内する。ガイドレール６３Ａによってガイド板２６が案内されながらカートリッジ１が装着部６２に挿入されるため、カートリッジ１のＰＣＲ容器３０が挿入穴６４Ａに誘導され、カートリッジ１が装着部６２に対して正常な位置に固定される。

ＰＣＲ装置５０は、溶出用ヒーター６５Ａと、ＰＣＲ用ヒーターとして高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃとを備えている。各ヒーターは、不図示の発熱源と、ヒートブロックとから構成されている。発熱源は、例えばカートリッジヒーターであり、ヒートブロックに挿入されている。ヒートブロックは、例えば熱伝導率の高いアルミニウムなどの金属であり、熱ムラを抑制して発熱源からの熱でカートリッジ１内の液体を加熱する。また、ヒートブロックは、磁気ビーズ７を移動させる磁石７１が吸着しないように、非磁性体であることが望ましい。

溶出用ヒーター６５Ａは、カートリッジ１の溶出液プラグ４７を加熱するヒーターである。溶出用ヒーター６５Ａは、カートリッジ１が正常な位置に固定されると、チューブ２０の溶出液プラグ４７と対向する。例えば、溶出用ヒーター６５Ａが溶出液プラグ４７を約５０℃に加熱することによって、核酸の磁気ビーズからの遊離が促進される。

高温側ヒーター６５Ｂは、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の上流側を加熱するヒーターである。高温側ヒーター６５Ｂは、カートリッジ１が正常な位置に固定されると、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の上流側（高温領域３６Ａ）と対向する。例えば、高温側ヒーター６５Ｂは、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の上流側の液体を約９０〜１００℃に加熱する。

低温側ヒーター６５Ｃは、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の底３５Ａを加熱するヒーターである。低温側ヒーター６５Ｃは、カートリッジ１が正常な位置に固定されると、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の下流側（低温領域３６Ｂ）と対向する。例えば、低温側ヒーター６５Ｃは、ＰＣＲ容器３０の低温領域３６Ｂの液体を約５０〜７５℃に加熱する。

高温側ヒーター６５Ｂと低温側ヒーター６５Ｃとの間にはスペーサー６５Ｄが配置されている。スペーサー６５Ｄは、高温側ヒーター６５Ｂと低温側ヒーター６５Ｃとの間の熱伝導を抑制する。また、スペーサー６５Ｄは、高温側ヒーター６５Ｂと低温側ヒーター６５Ｃとの間の距離を正確に定めるのにも用いられている。これにより、高温側ヒーター６５Ｂと低温側ヒーター６５Ｃによって、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５内の液体に温度勾配が形成される。

溶出用ヒーター６５Ａ、高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃをそれぞれ構成するヒートブロックには、挿入穴６４Ａを構成する貫通穴がそれぞれ形成されている。低温側ヒーター６５Ｃの挿入穴６４Ａの下側開口からＰＣＲ容器３０の底３５Ａの外壁が露出する。蛍光測定器５５は、挿入穴６４Ａの下側の開口から溶出液４７の輝度を測定することになる。

なお、高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃには、それぞれ温度制御装置が設けられ、それぞれのポリメラーゼ反応に適した温度に設定できる。

（２）磁石移動機構７０
磁石移動機構７０は、磁石７１を移動させる機構である。磁石移動機構７０は、カートリッジ１内の磁気ビーズ７を磁石７１に引き寄せるとともに、磁石７１を移動させることによって磁気ビーズ７をカートリッジ１内で移動させる。磁石移動機構７０は、一対の磁石７１と、昇降機構７３と、揺動機構７５とを有する。

磁石７１は、磁気ビーズ７を引き寄せる部材である。磁石７１として永久磁石、電磁石などを用いることができるが、ここでは発熱等を生じない永久磁石を用いている。一対の磁石７１は、前後方向に対向するように、上下方向の位置がほぼ同じになるように、アーム７２に保持されている。各磁石７１は、装着部６２に装着されたカートリッジ１の前側又は後側から対向することができる。一対の磁石７１は、装着部６２に装着されたカートリッジ１を前後方向から挟むことができる。カートリッジ１の固定爪２５又はガイド板２６の設けられた方向（ここでは左右方向）と直交する方向（ここでは前後方向）から磁石７１を対向させることによって、カートリッジ１内の磁気ビーズ７と磁石７１との距離を近接させることができる。

昇降機構７３は、磁石７１を上下方向に移動させる機構である。磁石７１が磁気ビーズ７を引き寄せるため、磁気ビーズ７の移動に合わせて磁石７１を上下方向に移動させれば、カートリッジ１内の磁気ビーズ７を上下方向に誘引することができる。

昇降機構７３は、上下方向に移動するキャリッジ７３Ａと、昇降用モーター７３Ｂとを有する。キャリッジ７３Ａは、上下方向に移動可能な部材であり、カートリッジ挿入口５３Ａのある側壁５３に設けられたキャリッジガイド７３Ｃによって上下方向に移動可能に案内されている。キャリッジ７３Ａには、一対の磁石７１を保持するアーム７２が取り付けられているので、キャリッジ７３Ａが上下方向に移動すると、磁石７１が上下方向に移動することになる。昇降用モーター７３Ｂは、キャリッジ７３Ａを上下方向に移動させる動力源である。昇降用モーター７３Ｂは、コントローラー９０からの指示に従って、上下方向の所定の位置にキャリッジ７３Ａを移動させる。昇降用モーター７３Ｂは、ベルト７３Ｄ及びプーリー７３Ｅを用いてキャリッジ７３Ａを上下方向に移動させているが、他の伝達機構によってキャリッジ７３Ａを上下方向に移動させても良い。

キャリッジ７３Ａが一番上の位置（退避位置）にあるとき、磁石７１はカートリッジ１よりも上側に位置する。キャリッジ７３Ａが退避位置にあるときには、カートリッジ１が回転しても、昇降機構７３はカートリッジ１と接触しない。また、昇降機構７３は、磁石７１が反応プラグと対向する位置までキャリッジ７３Ａの位置を下げることができる。これにより、昇降機構７３は、タンク３内の磁気ビーズ７を反応プラグの位置まで移動させるように、磁石７１を移動させることが可能になる。

揺動機構７５は、一対の磁石７１を前後方向に揺動させる機構である。一対の磁石７１を前後方向に揺動させると、各磁石７１とカートリッジ１との間隔が互い違いに変化する。距離の近い磁石７１の方に磁気ビーズ７が引き寄せられるため、一対の磁石７１を前後方向に揺動させることによって、カートリッジ１内の磁気ビーズ７が前後方向に移動する。

揺動機構７５は、揺動用モーター７５Ａ及びギヤを有する。揺動用モーター７５Ａ及びギヤは、キャリッジ７３Ａに設けられており、キャリッジ７３Ａとともに上下方向に移動可能である。揺動用モーター７５Ａの動力がギヤを介してアーム７２に伝達されることによって、磁石７１を保持するアーム７２が、キャリッジ７３Ａに対して、揺動回転軸７５Ｂを中心に回転する。揺動機構７５は、磁石７１がカートリッジ１に接触してカートリッジ１を損傷させることを防止するため、磁石７１とカートリッジ１が接触しない範囲で磁石７１を揺動させる。

揺動回転軸７５Ｂは、アーム７２の回転軸である。揺動回転軸７５Ｂは、磁石７１を前後方向に揺動できるように、左右方向に平行である。揺動回転軸７５Ｂを右又は左から見たとき、揺動回転軸７５Ｂは、カートリッジ１よりも前側又は後側にずれて配置されている。これにより、キャリッジ７３Ａが下に移動したときに、カートリッジ１とアーム７２との接触を回避できる。なお、磁石７１を前後方向に揺動できるのであれば、揺動回転軸７５Ｂが上下方向に平行な軸でも良い。

（３）押圧機構８０
押圧機構８０は、カートリッジ１のプランジャー１０を押す機構である。プランジャー１０が押圧機構８０によって押されることによって、カートリッジ１の溶出液プラグ４７及びオイルプラグがＰＣＲ容器３０に押し出され、ＰＣＲ容器３０のオイル中に液滴状の溶出液４７が形成される。

押圧機構８０は、プランジャー用モーター８１と、ロッド８２とを有する。プランジャー用モーター８１は、ロッド８２を移動させる動力源である。ロッド８２は、カートリッジ１のプランジャー１０の取付台１１Ａを押す部材である。カートリッジ１のタンク３ではなく取付台１１Ａを押す理由は、タンク３が膨張可能に可撓性のある樹脂で構成されているためである。タンク３が変形しない場合には、押圧機構８０がタンク３を押すことによってプランジャー１０を押しても良い。

ロッド８２がプランジャー１０を押す方向は、上下方向ではなく、上下方向に対して４５度傾いている。このため、押圧機構８０によってプランジャー１０を押すとき、ＰＣＲ装置５０は、回転体６１を４５度回転させて、カートリッジ１の長手方向をロッド８２の移動方向に合わせてから、ロッド８２を移動させることになる。ロッド８２がプランジャー１０を押す方向が上下方向に対して４５度傾いているため、昇降機構７３と干渉しないように押圧機構８０を配置することが容易になる。また、ロッド８２がプランジャー１０を押す方向が上下方向に対して４５度傾いているため、ＰＣＲ装置５０の上下方向の寸法を小さくできる。

（４）蛍光測定器５５
蛍光測定器５５は、ＰＣＲ容器３０の溶出液４７に励起光を照射する励起光源と、溶出液４７から放出される蛍光の強度を測定する蛍光光度計を有する。蛍光測定器５５は、カートリッジ１のＰＣＲ容器３０の底３５Ａと対向するように、回転体６１よりも下側に配置されている。蛍光測定器５５は、低温側ヒーター６５Ｃの挿入穴６４Ａの下側開口から、ＰＣＲ容器３０の底３５Ａにある溶出液４７から放出される蛍光の強度を測定することになる。

（５）コントローラー９０
コントローラー９０は、ＰＣＲ装置５０の制御を行う制御装置である。コントローラー９０は、例えばＣＰＵなどのプロセッサーと、ＲＯＭやＲＡＭなどの記憶装置とを有する。記憶装置には各種プログラム及びデータが記憶されている。また、記憶装置は、プログラムを展開する領域を提供する。プロセッサーが記憶装置に記憶されたプログラムを実行することによって、各種の処理が実現される。

例えば、コントローラー９０は、回転用モーター６６を制御して、回転体６１を所定の回転位置まで回転させる。回転機構６０には不図示の回転位置センサーが設けられており、コントローラー９０は、回転位置センサーの検出結果に応じて回転用モーター６６を駆動・停止させる。

また、コントローラー９０は、ヒーター（溶出用ヒーター６５Ａ、高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃ）を制御して、各ヒーターを発熱させる。ヒーターを構成するヒートブロックには不図示の温度センサーが設けられており、コントローラー９０は、温度センサーの検出結果に応じて、カートリッジヒーターのオン・オフを制御する。

また、コントローラー９０は、昇降用モーター７３Ｂを制御して、磁石７１を上下方向に移動させる。ＰＣＲ装置５０にはキャリッジ７３Ａの位置を検出する不図示の位置センサーが設けられており、コントローラー９０は、位置センサーの検出結果に応じて昇降用モーター７３Ｂを駆動・停止させる。

また、コントローラー９０は、揺動用モーター７５Ａを制御して、磁石７１を前後方向に揺動させる。ＰＣＲ装置５０には、磁石７１を保持するアーム７２の位置を検出する位置センサーが設けられており、コントローラー９０は、位置センサーの検出結果に応じて揺動用モーター７５Ａを駆動・停止させる。

また、コントローラー９０は、蛍光測定器５５を制御して、ＰＣＲ容器３０の溶出液４７の蛍光強度を測定する。コントローラー９０は、蛍光測定器５５がカートリッジ１のＰＣＲ容器３０の底３５Ａと対向しているときに、蛍光測定器５５に測定を行わせる。測定結果は、記憶装置に保存される。

＜動作説明＞
（１）カートリッジ１の装着動作
図９Ａ〜図９Ｄは、カートリッジ１の装着時のＰＣＲ装置５０の状態の説明図である。図９Ａは、カートリッジ１の装着前の初期状態の説明図である。図９Ｂは、待機状態の説明図である。図９Ｃは、カートリッジ１の装着直後の説明図である。図９Ｄは、カートリッジ１の装着状態での初期状態の説明図である。

図９Ａに示すように、カートリッジ１の装着前の初期状態では、装着部６２の装着方向が上下方向になっている。以下の説明では、この状態の回転体６１の回転位置を基準（０度）とし、右から見て反時計回りを正の方向として回転体６１の回転位置を示すものとする。

図９Ｂに示すように、コントローラー９０は、回転用モーター６６を駆動して、回転体６１を−３０度に回転させる。この状態で、作業者は、カートリッジ１をカートリッジ挿入口５３Ａから装着部６２に挿入する。このとき、ガイドレール６３Ａによってガイド板２６が案内されながらカートリッジ１が装着部６２に挿入されるため、カートリッジ１のＰＣＲ容器３０が装着部６２の挿入穴６４Ａに誘導される。作業者は、カートリッジ１の固定爪２５が固定部６３のノッチに引っ掛かるまで、カートリッジ１を挿入する。これにより、カートリッジ１が装着部６２に対して正常な位置に固定される。仮にＰＣＲ容器３０が挿入穴６４Ａに挿入されず、カートリッジ１が装着部６２に対して異常な位置にある場合には、カートリッジ１の固定爪２５が固定部６３のノッチに引っ掛からないため、カートリッジ１が異常な位置にあることを作業者が認識できる。

図９Ｃに示すように、カートリッジ１が装着部６２に対して正常な位置に固定されると、チューブ２０の溶出液プラグ４７が溶出用ヒーター６５Ａと対向し、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の上流側（高温領域３６Ａ）が高温側ヒーター６５Ｂと対向し、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の下流側（低温領域３６Ｂ）が低温側ヒーター６５Ｃと対向する。回転体６１に装着部６２及びヒーターが設けられているので、回転体６１が回転しても、カートリッジ１とヒーターとの位置関係はこのまま維持されることになる。

カートリッジ１が装着部６２に装着された後、図９Ｄに示すように、コントローラー９０は、回転体６１を３０度回転させて、回転体６１の位置を基準に戻す。なお、コントローラー９０は、カートリッジ１が装着部６２に装着されたことを、不図示のセンサーによって検出しても良いし、作業者からの入力操作によって検出しても良い。

（２）核酸溶出処理
・磁石７１の上下動
図１０は、磁石７１を下方向に移動させたときの磁気ビーズ７の挙動の概念図である。カートリッジ１内の磁気ビーズ７は、磁石７１に引き寄せられる。このため、カートリッジ１の外部で磁石７１が移動すると、カートリッジ１内の磁気ビーズ７が磁石７１とともに移動する。

図１１Ａ〜図１１Ｃは、核酸溶出処理の説明図である。図１１Ａは、核酸溶出処理前のＰＣＲ装置５０の状態の説明図である。図１１Ｂは、磁石７１を溶出液プラグ４７まで移動させたときのＰＣＲ装置５０の状態の説明図である。図１１Ｃは、磁石７１を引き上げたときのＰＣＲ装置５０の状態の説明図である。

図１１Ａに示すように、初期状態のカートリッジ１は、タンク３を上側にして、長手方向が鉛直方向と平行になる。この状態では、図２Ａに示すように、カートリッジ１は、上から順に、磁気ビーズ７を含む溶解液４１（タンク３）、オイル４２（プランジャー１０）、洗浄液４３（チューブ２０の上流側）、第１オイルプラグ４４（キャピラリー２３）、洗浄液プラグ４５（キャピラリー２３）、第２オイルプラグ４６（キャピラリー２３）、溶出液プラグ４７（キャピラリー２３）、第３オイルプラグ４８（キャピラリー２３）、オイル（ＰＣＲ容器３０）を備えている。

図１１Ａに示すように、初期状態では、キャリッジ７３Ａが一番上の位置（退避位置）にあり、磁石７１がカートリッジ１よりも上側に位置している。この状態から、コントローラー９０は、昇降用モーター７３Ｂを駆動させて、キャリッジ７３Ａを徐々に下方向に移動させ、磁石７１を徐々に下方向に移動させる。なお、カートリッジ１の長手方向が鉛直方向と平行なので、磁石７１はカートリッジ１に沿って移動することになる。

磁石７１が下方向に移動すると、磁石７１がタンク３と対向するようになり、タンク３内の磁気ビーズ７が磁石７１に引き寄せられる。コントローラー９０は、磁気ビーズ７が磁石７１とともに移動できる程度の速度で、キャリッジ７３Ａを下方向に移動させる。

磁石７１がタンク３と対向する位置（タンク３の高さ）からプランジャー１０と対向する位置（プランジャー１０の高さ）まで移動すると、磁気ビーズ７が、プランジャー１０の筒状部１１の上流側の開口を通過し、タンク３内の溶解液４１とカートリッジ本体９の上流側のオイル４２との界面を通過する。これにより、核酸の結合した磁気ビーズ７がカートリッジ本体９に導入される。磁気ビーズ７がオイル４２との界面を通過するとき、オイル４２によって溶解液４１がぬぐわれるため、溶解液４１の成分はオイル４２に持ち込まれにくい。これにより、溶解液４１の成分が洗浄液や溶出液４７に混入することを抑制できる。

磁石７１がプランジャー１０に対向した状態で下方向に移動すると、磁気ビーズ７は、筒状部１１の内部を通り、リブ１３の表裏を抜けて筒状部１１の下流側の開口から出て、チューブ２０の上シリンジ２１に導入される。この間に、磁気ビーズ７は、プランジャー１０内でオイル４２と洗浄液４３との界面を通過する。磁気ビーズ７が洗浄液４３に導入されると、磁気ビーズ７に結合した核酸が洗浄液４３によって洗浄される。

この段階ではプランジャー１０の棒状部１２がチューブ２０の下シリンジ２２に挿入されていないため、磁石７１が上シリンジ２１と対向する位置（上シリンジ２１の高さ）からキャピラリー２３と対向する位置（キャピラリー２３の高さ）まで移動すると、磁気ビーズ７が上シリンジ２１から下シリンジ２２へ移動し、下シリンジ２２からキャピラリー２３に移動する。キャピラリー２３の上流側には第１オイルプラグ４４があり、磁気ビーズ７が下シリンジ２２からキャピラリー２３に移動するときに、磁気ビーズ７が洗浄液４３とオイルとの界面を通過する。このとき、オイルによって洗浄液４３がぬぐわれるため、洗浄液４３の成分はオイルに持ち込まれにくい。これにより、洗浄液４３の成分が、洗浄液プラグ４５や溶出液プラグ４７に混入することを抑制できる。

磁石７１が第１オイルプラグ４４と対向する位置（第１オイルプラグ４４の高さ）から洗浄液プラグ４５と対向する位置（洗浄液プラグ４５の高さ）まで移動すると、磁気ビーズ７が、オイルと洗浄液との界面を通過する。磁気ビーズ７が洗浄液プラグ４５に導入されると、磁気ビーズ７に結合している核酸が洗浄液によって洗浄される。

磁石７１が洗浄液プラグ４５と対向する位置（洗浄液プラグ４５の高さ）から第２オイルプラグ４６と対向する位置（第２オイルプラグ４６の高さ）まで移動すると、磁気ビーズ７が、洗浄液と磁気ビーズ７が洗浄液とオイルとの界面を通過する。このとき、オイルによって洗浄液がぬぐわれるため、洗浄液の成分はオイルに持ち込まれにくい。これにより、洗浄液の成分が、溶出液プラグ４７に混入することを抑制できる。

磁石７１が第２オイルプラグ４６と対向する位置（第２オイルプラグ４６の高さ）から溶出液プラグ４７と対向する位置（溶出液プラグ４７の高さ）まで移動すると、磁気ビーズ７が、オイルと溶出液４７との界面を通過する。

コントローラー９０は、磁気ビーズ７が溶出液プラグ４７に導入される前に、溶出用ヒーター６５Ａを制御して溶出液プラグ４７を約５０℃に加熱しておく。また、磁気ビーズ７が導入される前に溶出液４７を加熱しておくことで、磁気ビーズ７が溶出液４７に導入されてから核酸の溶出が終了するまでの時間を短縮できる。

図１１Ｂに示すように、磁石７１が溶出液プラグ４７と対向する位置（溶出液プラグ４７の高さ）まで移動した後、コントローラー９０は、昇降用モーター７３Ｂを停止させて、磁石７１の上下方向の移動を停止させ、３０秒間、５０℃で処理すると、磁気ビーズ７に結合した核酸が溶出液プラグ４７の液中に遊離し、逆転写反応が進行する。溶出液４７を加熱することによって、磁気ビーズ７からの核酸の溶出及び逆転写反応が促進される。

溶出液プラグ４７で核酸を溶出させた後、コントローラー９０は、昇降用モーター７３Ｂをこれまでとは逆方向に駆動させて、キャリッジ７３Ａを徐々に上方向に移動させ、磁石７１を徐々に上方向に移動させる。コントローラー９０は、磁気ビーズ７が磁石７１とともに移動できる程度の速度で、キャリッジ７３Ａを上方向に移動させる。

図１１Ｂに示す状態から磁石７１が上方向に移動すると、磁気ビーズ７が溶出液プラグ４７から第２オイルプラグ４６に移動し、溶出液プラグ４７から磁気ビーズ７が除去される。

磁石７１が上シリンジ２１と対向する位置まで徐々に移動すると、磁気ビーズ７も上シリンジ２１まで移動し、磁気ビーズ７が下シリンジ２２よりも上側になる。この位置まで磁気ビーズ７を移動させれば、プランジャー１０を押したときに磁気ビーズ７がＰＣＲ容器３０に導入されることはない。このため、コントローラー９０は、この状態から図１１Ｃに示す状態までの間、磁気ビーズ７が磁石７１の移動に追従できない程度の速度でキャリッジ７３Ａを上方向に移動させても良い。なお、プランジャー１０を押したときに磁気ビーズ７がＰＣＲ容器３０に導入されないのであれば、もっと早い段階でキャリッジ７３Ａの移動速度を速くしても良い。

コントローラー９０の記憶装置には、磁石７１の移動速度に関する情報が記憶されており、コントローラー９０は、この情報に従って、上記の動作（磁石７１を上下移動させる動作）を実行する。

・磁石７１の揺動
磁石７１を上下方向に移動させている間、コントローラー９０は、揺動用モーター７５Ａを駆動させて、カートリッジ１を挟む一対の磁石７１を前後方向に揺動させても良い。

図１２は、磁石７１を揺動させたときの磁気ビーズ７の挙動の概念図である。

磁石７１が上下方向に移動する間、チューブ２０は、前後方向から一対の磁石７１に挟まれている。一対の磁石７１はアーム７２に保持されているため、一対の磁石７１の前後方向の距離はほぼ一定である。このため、一対の磁石７１のうちの一方がチューブ２０に接近すると、他方はチューブ２０から離間する。

磁気ビーズ７は、距離の近い磁石７１の方に引き寄せられるため、一方の磁石７１がチューブ２０に近接していると、その磁石７１の側に磁気ビーズ７が引き寄せられる。その後、その磁石７１がチューブ２０から離れ、逆側の磁石７１がチューブ２０に近接すると、今度は逆側の磁石７１に磁気ビーズ７が引き寄せられる。これにより、磁気ビーズ７が前後方向に移動する。一対の磁石７１を前後方向に揺動させると、磁気ビーズ７が前後方向に往復移動することになる。

磁気ビーズ７が前後方向に往復移動すると、磁気ビーズ７に液体が接しやすくなる。特に、キャピラリー２３内の液体は流動性をほとんど有していないので、キャピラリー２３内の液体を磁気ビーズ７にできるだけ接しさせたい場合には、磁気ビーズ７が前後方向に往復移動することは有効となる。

図１３は、磁石７１の揺動の有無を示す表である。

磁気ビーズ７がオイルプラグ（第１オイルプラグ４４又は第２オイルプラグ４６）を下方向に移動するとき、コントローラー９０は、揺動モーターを停止させて、磁石７１を揺動させない。このとき、コントローラー９０は、一対の磁石７１のうちの一方をチューブ２０に接近させた状態で、磁石７１を下方向に移動させる。これは、各磁石７１とチューブ２０との距離を均等にした場合と比べて、磁気ビーズ７が磁石７１の移動に追従しやすいからである。

磁気ビーズ７が洗浄液プラグ４５を下方向に移動するとき、コントローラー９０は、揺動モーターを駆動させて、磁石７１を前後方向に揺動させる。これにより、磁気ビーズ７が洗浄液プラグ４５内を前後方向に揺動しながら下方向に移動するため、磁気ビーズ７の洗浄効率を高めることができる。また、洗浄効率が高められるので、洗浄液プラグ４５の量を抑制でき、カートリッジ１の小型化を図ることができる。

磁気ビーズ７が洗浄液とオイル（第２オイルプラグ４６）の界面を通過するとき、コントローラー９０は、揺動モーターを停止させて、磁石７１を揺動させない。これにより、磁気ビーズ７が揺動せずに界面を通過するので、洗浄液の成分がオイルに持ち込まれにくくなる。なお、コントローラー９０は、一対の磁石７１のうちの一方をチューブ２０に接近させた状態で、磁石７１を下方向に移動させる。これにより、距離の近い磁石７１に磁気ビーズ７が引き寄せられて凝集し、磁気ビーズ７に付着した洗浄液が絞られるため、洗浄液の成分がオイルに持ち込まれにくくなる。

磁気ビーズ７が溶出液プラグ４７にあるとき、コントローラー９０は、揺動モーターを駆動させて、磁石７１を前後方向に揺動させる。これにより、磁気ビーズ７が溶出液プラグ４７内を前後方向に揺動するため、磁気ビーズ７に結合した核酸の溶出効率を高めることができる。また、溶出効率が高められるので、磁気ビーズ７が溶出液４７に導入されてから核酸の溶出を終了させるまでの時間を短縮できる。

なお、溶出液プラグ４７で核酸を溶出させた後、磁石７１を上方向に移動させて磁気ビーズ７を引き上げるとき、コントローラー９０は、揺動モーターを停止させて、磁石７１を揺動させない。このとき、コントローラー９０は、一対の磁石７１のうちの一方をチューブ２０に接近させた状態で、磁石７１を下方向に移動させる。これにより、磁気ビーズ７が磁石７１の移動に追従しやすくなり、磁石７１の移動速度を速くすることができる。

コントローラー９０の記憶装置には、キャピラリー２３の各プラグの位置に関する情報と、図１３に示すような揺動情報とが記憶されており、コントローラー９０は、この情報に従って、上記の動作（磁石７１を揺動させる動作）を実行する。

（３）液滴形成処理
図１４Ａ〜図１４Ｃは、液滴形成処理の説明図である。図１４Ａは、磁石７１を引き上げたときのＰＣＲ装置５０の状態の説明図である。図１４Ｂは、回転体６１を４５度回転させた状態の説明図である。図１４Ｃは、押圧機構８０のロッド８２がプランジャー１０を押した状態の説明図である。

図１４Ａに示すように、キャリッジ７３Ａが退避位置にあるときには、カートリッジ１が回転しても、昇降機構７３はカートリッジ１と接触しない。このような状態にしてから、コントローラー９０は、回転体６１を４５度回転させる。

図１４Ｂに示すように、回転体６１が４５度回転すると、カートリッジ１の長手方向が、押圧機構８０のロッド８２の移動方向と平行になる。コントローラー９０は、プランジャー用モーター８１を駆動し、ロッド８２を移動させる。ロッド８２がカートリッジ１のプランジャー１０の取付台１１Ａに接触してから更にロッド８２が移動すると、プランジャー１０がチューブ２０側に押し込まれる。コントローラー９０は、図１４Ｃに示す状態までロッド８２を移動させ、プランジャー１０の取付台１１Ａがチューブ２０の上縁に接触するまでプランジャー１０を押す。

プランジャー１０がチューブ２０側に押し込まれると、プランジャー１０の棒状部１２のシール１２Ａがチューブ２０の下シリンジ２２に嵌合する（図２Ｂ参照）。そして、更にプランジャー１０が押し込まれると、シール１２Ａが下シリンジ２２内をスライドする。これにより、シール１２Ａが下シリンジ２２内でスライドした体積相当分だけ、チューブ２０の下流側の液体（第３オイルプラグ４８、溶出液プラグ４７など）がＰＣＲ容器３０の流路形成部３５に押し出される。

まず、チューブ２０の第３オイルプラグ４８が流路形成部３５に流入する。流路形成部３５にはオイルが充填されているため、流入分のオイルが流路形成部３５からオイル受容空間３２Ａに流れ込み、オイル受容空間３２Ａのオイル界面が上昇する。このとき、下シール部３４Ｂでの圧力損失によって、流路形成部３５の液体の圧力は、外気圧（オイル受容空間３２Ａの圧力）よりも高くなる。第３オイルプラグ４８がチューブ２０から押し出された後、溶出液プラグ４７がチューブ２０から流路形成部３５に流入する。流路形成部３５の内径がキャピラリー２３の内径よりも大きいため、チューブ２０内でプラグ状だった溶出液４７は、流路形成部３５のオイル中で液滴状になる。

シール１２Ａが下シリンジ２２内でスライドする体積（チューブ２０内の液体が下流側から押し出される量）は、チューブ２０内の溶出液プラグ４７及び第３オイルプラグ４８の合計よりも多いので、溶出液プラグ４７がチューブ２０から押し出された後に第２オイルプラグ４６の一部も流路形成部３５に押し出される。これにより、チューブ２０には溶出液４７は残らずに、溶出液プラグ４７の液量の全てが液滴状になる。また、第２オイルプラグ４６の一部がチューブ２０の下流側から押し出されることによって、液滴状の溶出液４７がチューブ２０から離れやすくなる（液滴状の溶出液４７がキャピラリー２３の開口に吸着しにくくなる）。

キャピラリー２３の末端の内径（キャピラリー２３の開口径）は比較的小さく設計されているため、ＰＣＲ容器３０内で液滴化した溶出液４７がキャピラリー２３の開口に吸着しにくくなっている。また、溶出液４７は、ＰＣＲ容器３０のオイルよりも比重が大きい。このため、液滴状の溶出液４７は、キャピラリー２３の末端から離れて、流路形成部３５を流路にして底３５Ａに向かって沈降する。そして、ＰＣＲ容器３０の底３５Ａに到達し、そこで沈降を終えて凍結乾燥した核酸増幅反応試薬に接触し、核酸増幅反応試薬を溶解させる。但し、この段階では、流路形成部３５の流路が４５度に傾いているため、液滴状の溶出液４７が流路形成部３５の内壁に付着しやすい。このため、流路形成部３５の流路を鉛直方向に戻す必要がある。

液滴状の溶出液４７が形成された後（プランジャー１０が押された後）、コントローラー９０は、プランジャー用モーター８１をそれまでとは逆方向に駆動し、ロッド８２を元の位置に戻す。この状態では、カートリッジ１が回転しても、押圧機構８０のロッド８２がカートリッジ１と接触しない。このような状態にしてから、コントローラー９０は、回転体６１を基準位置に戻す。回転体６１が基準位置になると、流路形成部３５の流路が鉛直方向になるため、液滴状の溶出液４７が流路形成部３５の内壁に付着しにくくなる。

（４）熱サイクル処理
図１５Ａ及び図１５Ｂは、熱サイクル処理の説明図である。図１５Ａは、溶出液４７に低温側の温度処理を施す状態の説明図である。図１５Ｂは、溶出液４７に高温側の温度処理を施す状態の説明図である。各図の左側にはＰＣＲ装置５０の状態が示されており、各図の右側にはＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の内部の状態が示されている。

カートリッジ１が装着部６２に対して正常な位置に固定されると、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の上流側（高温領域３６Ａ）が高温側ヒーター６５Ｂと対向し、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の下流側（低温領域３６Ｂ）が低温側ヒーター６５Ｃと対向する。熱サイクル処理の間、コントローラー９０は、回転体６１に設けられた高温側ヒーター６５Ｂにより、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５の上流側の高温領域３６Ａの液体を約９０〜１００℃に加熱する。また、コントローラー９０は、回転体６１に設けられた低温側ヒーター６５Ｃにより、流路形成部３５の下流側の低温領域３６Ｂの液体を約５０〜７５℃に加熱する。これにより、熱サイクル処理の間、ＰＣＲ容器３０の流路形成部３５内の液体に温度勾配が形成される。回転体６１に装着部６２及びヒーターが設けられているので、回転体６１が回転しても、カートリッジ１とヒーターとの位置関係はこのまま維持される。なお、ＰＣＲ容器３０内で、ＲＴ−ＰＣＲを行う場合は、熱サイクル処理の前に、核酸増幅反応試薬が溶解した溶出液４７に対して、低温側ヒーター６５Ｃによって、約４２〜５５℃で処理することにより、逆転写反応を行えばよい。

熱サイクル処理の間、ＰＣＲ容器３０内の液体が加熱されることになる。仮にＰＣＲ容器３０の液体が加熱されることによって気泡が発生すると、流路形成部３５内の液体の温度にばらつきが生じたり、流路形成部３５における液滴状の溶出液４７の移動（沈降）が阻害されたりするおそれがある。但し、本実施形態では、下シール部３４Ｂでの圧力損失によって流路形成部３５の液体の圧力が外気圧よりも高いため、ＰＣＲ容器３０の液体に気泡が発生しにくくなっている。

図１５Ａに示すように、回転体６１が基準位置にあるとき、低温側ヒーター６５Ｃが高温側ヒーター６５Ｂの下側に位置し、カートリッジ１のＰＣＲ容器３０の底３５Ａが下になる。液滴状の溶出液４７はオイルよりも比重が大きいため、液滴状の溶出液４７が流路形成部３５内を沈降する。液滴状の溶出液４７は、流路形成部３５内を沈降すると、ＰＣＲ容器３０の底３５Ａに到達し、そこで沈降を終えて低温領域３６Ｂに留まる。これにより、液滴状の溶出液４７が低温領域３６Ｂに移動する。コントローラー９０は、図１５Ａの状態を所定時間にて保持し、液滴状の溶出液４７を低温領域３６Ｂで約５０〜７５℃に加熱する（低温側の温度処理が施される）。この間に、ポリメラーゼ反応の伸張反応が起きる。

図１５Ａの状態からコントローラー９０が回転用モーター６６を駆動して回転体６１を１８０度回転させると、図１５Ｂに示す状態になる。回転体６１が基準位置から１８０度回転すると、カートリッジ１が上下反転するとともに、高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃも上下反転する。つまり、高温側ヒーター６５Ｂが低温側ヒーター６５Ｃの下側に位置し、カートリッジ１のＰＣＲ容器３０の底３５Ａが上になる。液滴状の溶出液４７は、流路形成部３５内を沈降すると、チューブ２０の末端（キャピラリー２３の末端）に到達し、そこで沈降を終えて高温領域３６Ａに留まる。これにより、液滴状の溶出液４７が高温領域３６Ａに移動する。コントローラー９０は、図１５Ｂの状態を所定時間にて保持し、液滴状の溶出液４７を高温領域３６Ａで約９０〜１００℃に加熱する（高温側の温度処理が施される）。この間に、ポリメラーゼ反応の変性反応が起きる。

図１５Ｂの状態からコントローラー９０が回転用モーター６６を駆動して回転体６１を−１８０度回転させると、図１５Ａの状態に戻る。この状態では、液滴状の溶出液４７が流路形成部３５内を沈降すると、液滴状の溶出液４７は、低温領域３６Ｂに移動し、低温領域３６Ｂで再び約５０〜７５℃に加熱される（低温側の温度処理が施される）。なお、キャピラリー２３の末端の内径（キャピラリー２３の開口径）は比較的小さく設計されているため、溶出液４７がキャピラリー２３の開口に吸着しにくくなっているので、図１５Ｂの状態から回転体６１が−１８０度回転すると、液滴状の溶出液４７は、キャピラリー２３の開口に吸着することなく、チューブ２０を離れてＰＣＲ容器３０の底３５Ａに向かって沈降する。

コントローラー９０は、回転用モーター６６を駆動して、回転体６１の回転位置を図１５Ａの状態にすることと図１５Ｂの状態にすることを、所定サイクル数にて繰り返す。これにより、ＰＣＲ装置５０が、溶出液４７に対してＰＣＲの熱サイクル処理を施すことができる。

コントローラー９０の記憶装置には、高温側ヒーター６５Ｂの温度、低温側ヒーター６５Ｃの温度、図１５Ａの状態で保持する時間、図１５Ｂの状態で保持する時間、サイクル数（図１５Ａの状態と図１５Ｂの状態の繰り返し回数）の熱サイクル情報が記憶されており、コントローラー９０は、この熱サイクル情報に従って、上記の処理を実行する。

（５）リアルタイムＰＣＲにおける蛍光測定
図１５Ａに示すように、回転体６１が基準位置にあるとき、蛍光測定器５５がカートリッジ１のＰＣＲ容器３０の底３５Ａと対向する。そのため、溶出液４７の蛍光測定時には、コントローラー９０は、回転体６１を基準位置にした状態で、低温側ヒーター６５Ｃの挿入穴６４Ａの下側開口からＰＣＲ容器３０の底３５Ａにある溶出液４７の蛍光強度を蛍光測定器５５に測定させる。

回転体６１が１８０度回転して基準位置になった直後では、液滴状の溶出液４７がＰＣＲ容器３０の流路形成部３５を沈降しており、液滴状の溶出液４７がＰＣＲ容器３０の底３５Ａに到達していないことがある。このため、コントローラー９０は、回転体６１の回転位置が図１５Ａの状態になってから所定時間経過した後（図１５Ａの状態から回転体６１を回転させる直前）に、蛍光強度を測定するのが望ましい。若しくは、コントローラー９０は、回転体６１を基準位置にしたときから所定時間の間、蛍光測定器５５に蛍光強度を測定させて、蛍光強度の時間履歴を記憶するようにしても良い。
＝＝＝その他＝＝＝
上記の実施形態は、本発明の理解を容易にするためのものであり、本発明を限定して解釈するためのものではない。本発明は、その趣旨を逸脱することなく、変更、改良され得ると共に、本発明にはその等価物が含まれることは言うまでもない。

＜ＰＣＲ装置について＞
前述のＰＣＲ装置５０は、熱サイクル処理として所定サイクル数にてカートリッジ１の姿勢を変化させて、ＰＣＲ容器３０を上下反転させていた。但し、カートリッジ１の姿勢を変化させる回数は、複数回に限られるものではなく、１回でも良い。

前述のＰＣＲ装置では、回転体の回転軸がＰＣＲ容器よりもチューブの近くに位置しているが、回転体を回転させてカートリッジの姿勢が変化したときにＰＣＲ容器の内部において液滴が移動できるのであれば、回転体の回転軸の位置は、これに限られるものではない。

前述のＰＣＲ装置では、ノッチの形成された固定部６３と、挿入穴６４Ａをカートリッジの装着部としているが、カートリッジを回転体に装着できれば、この構成に限られるものではない。また、装着部が、チューブ側のみを固定することによってカートリッジを回転体に固定する構造であっても良いし、ＰＣＲ容器側のみを固定することによってカートリッジを回転体に固定する構造であっても良い。但し、装着部は、回転体が回転してカートリッジの姿勢が変化しても、カートリッジが回転体に安定して固定される構造である必要がある。

前述のＰＣＲ装置５０は、ＰＣＲ用ヒーターとして高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃを備えているが、核酸増幅反応用容器であるＰＣＲ容器の内部に温度勾配を形成できるのであれば、この構成に限られるものではない。例えば、高温側のみにヒーターを設けても良い。若しくは、高温側にヒーターを設け、低温側に冷却器を設けても良い。

また、前述のＰＣＲ装置５０は、回転体にＰＣＲ用ヒーター（高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃ）が設けられているが、核酸増幅反応用容器であるＰＣＲ容器の内部に温度勾配を形成できるのであれば、回転体の外部にＰＣＲ用ヒーターを設けても良い。例えば、ＰＣＲ装置が、図１５Ａに示すように回転体６１が基準位置にあるときにＰＣＲ容器と対向する第１のＰＣＲ用ヒーターと、図１５Ｂに示すように回転体を１８０度回転させたときにＰＣＲ容器と対向する第２のＰＣＲ用ヒーターとを、回転体の外部に備えていても良い。このようにしても、核酸増幅反応用容器であるＰＣＲ容器の内部に温度勾配を形成可能である。但し、ＰＣＲ用ヒーターが回転体に設けられていれば、回転体の回転位置に関わらず、カートリッジのＰＣＲ容器とヒーターとの位置関係を維持されるので、望ましい。

ＰＣＲ装置５０は、溶出用ヒーター６５Ａを備えずに、ＰＣＲ用ヒーター（例えば高温側ヒーター６５Ｂ及び低温側ヒーター６５Ｃ）を備えるだけでも良い。但し、ＰＣＲ装置５０が溶出用ヒーター６５Ａを備えていれば、核酸の磁気ビーズからの遊離が促進されるので望ましい。

ＰＣＲ装置５０は、チューブに沿って磁石を移動させる磁石移動機構を備えていなくても良い。この場合、例えば、作業者が磁石を持ち、チューブに沿って磁石を移動させると良い。但し、作業者によって核酸結合性固相担体である磁気ビーズの移動速度等が異なるおそれがあるため、ＰＣＲ装置５０が磁石移動機構を備えることが望ましい。

また、ＰＣＲ装置５０の磁石移動機構７０が揺動機構７５を備えていなくても良い。この場合、磁石を揺動させることはできないものの、チューブに沿って磁石を移動させることはできるので、核酸の結合した磁気ビーズを、溶出液を含むプラグまで移動させることができる。

ＰＣＲ装置５０は、押圧機構８０を備えていなくても、代わりの押出手段を備えていれば良い。この場合、例えば、プランジャーやタンクが、押出手段となりうる。すなわち、作業者がカートリッジのプランジャーを手で押すと良い。カートリッジにプランジャーが設けられていない場合には、上述のような変形可能な材質で作ったタンクを作業者が変形させることにより、タンクの内部を加圧して、チューブからＰＣＲ容器に液体を押し出しても良い。

＝＝＝第３実施形態＝＝＝
本発明の第３実施形態は、上述の第２実施形態において凍結乾燥した核酸増幅反応試薬３００を、核酸増幅反応用容器に配置するのではなく、チューブ３０１の溶出液プラグ４７の下流側に設けられた第３オイルプラグ３１１中に配置したものである。
核酸増幅反応試薬３００の形状は特に限定されないが、チューブ３０１に栓をするようなプラグ形の場合、溶出液を押出す圧力によって、核酸増幅反応試薬３００がオイルプラグとともに移動し、核酸増幅反応試薬が溶出液４７に溶解するのを妨げることがある。そこで、チューブ３０１の核酸増幅反応試薬３００が保持されている領域には、オイルが自由に流動できるための空間が存在すること、具体的には、核酸増幅反応試薬をチューブ３０１の内壁に沿って中空状に配置されることが好ましい（図１９Ａ）。すなわち、核酸増幅反応試薬３００が中空状に配置した場合、図２０に模式図を示したように、プランジャーによる核酸増幅反応用容器への液体の押し出し動作によって、オイル３１１は核酸増幅試薬３００を避けてチューブ３０１の中央部を通過し、核酸増幅試薬に到達した溶出液４７は、核酸増幅反応試薬３００を溶解する。その後、核酸増幅試薬３００を溶解した溶出液４７は、チューブから核酸増幅反応用容器へ押出される。このプランジャーは、溶出液４７が核酸増幅反応試薬３００に接触したとき、一定時間停止してもよい。これによって、核酸増幅反応試薬３００が溶出液４７に溶けるまで、核酸増幅反応試薬３００を溶出液４７に浸漬しておくことができる。また、溶出液４７が核酸増幅反応試薬３００に接触したとき、引き動作が可能であってもよい。これによって、プランジャーを押したり引いたりすることで、核酸増幅反応試薬３００が溶出液４７に溶解しやすくなる。また、溶出液４７が核酸増幅反応試薬３００に接触したとき、溶出液４７が加熱される加熱手段を有してもよい。それによって、核酸増幅反応試薬３００が溶出液４７に溶解しやすくなる。この加熱手段は、例えば、高温側ヒーター６５Ｂまたは低温側ヒーター６５Ｃであってもよい。なお、このようなプランジャーの動作は、コンピュータなどの制御装置によって調節してもよい。さらに、核酸増幅反応試薬３００の移動を防ぐため、核酸増幅反応試薬３００の下流で、チューブ３０１に肉厚部３０２を設け、チューブ３０１の内径を狭くしてもよい（図１９Ｂ）。核酸増幅反応試薬をプラグ形にする場合は、膨張によって溶液に負担がかかるのを避けるため、凍結乾燥した核酸増幅反応試薬３００に泡３０３を入れておいてもよい（図１９Ｃ）。また、複数の核酸増幅反応試薬３００を、壁面に配置してもよい（図１９Ｄ）。

［実験例１］
本実験例では、図１６に示すように、上述の核酸抽出用キットのうち、チューブ２００の内部に、第１プラグ２１０から第７プラグ２７０を有する構成を使用した。
まず、容量３ｍＬのポリエチレン製容器１３０に、３７５μＬの溶解液、及び１μＬの磁性ビーズ分散液を収容した。溶解液は、７６質量％のグアニジン塩酸塩、１．７質量％のエチレンジアミン四酢酸二水素二ナトリウム二水和物、及び１０質量％のポリオキシエチレンソルビタンモノラウレートの水溶液（東洋紡製、ＭａｇＥｘｔｒａｃｔｏｒ−Ｇｅｎｏｍｅ−、ＮＰＫ−１）を用いた。また、磁性ビーズ原液としては、５０体積％の磁性シリカ粒子及び２０質量％の塩化リチウムが含有されたものを用いた。
ヒトから採取した血液を、ピペットを用いて容器１３０の口１２１から５０μＬ入れ、容器１３０に蓋１２２をして手で３０秒間振って撹拌した。その後、容器１３０の蓋１２２を外してチューブ２００に接続した。なお、チューブ２００には両端に栓１１０が為されており、第１プラグ２１０側の栓１１０を外してチューブ２００に容器１３０を接続した。
ここで、第１プラグ２１０、第３プラグ２３０、第７プラグ２７０、第５プラグ２５０は、シリコーンオイルとした。第２プラグ２２０の第１洗浄液は、７６質量％のグアニジン塩酸塩の水溶液とした。また、第４プラグ２４０の第２洗浄液は、ｐＨが８．０のトリス−塩酸緩衝液（溶質濃度５ｍＭ）とした。第６プラグ２６０の溶出液は、滅菌水とした。
そして、永久磁石４１０を動かして、容器１３０内の磁性ビーズ１２５をチューブ２００内に導入した。そして、磁性ビーズ１２５を第６プラグ２６０まで移動させた。磁性ビーズ１２５がチューブ２００内の各プラグに存在した時間はおよそ以下の通りであった。第１、３、７プラグ：各３秒、第２プラグ：２０秒、第４プラグ：２０秒、第６プラグ：３０秒。なお、第２プラグ２２０及び第４プラグ２４０においては、磁性ビーズを振動させる等の操作は行わなかった。また、第２プラグ２２０、第４プラグ２４０、及び第６プラグ２６０の体積は、それぞれ、２５μＬ、２５μＬ、及び１μＬとした。
次いで、チューブの第７プラグ側の栓１１０を取り外し、容器１２０を手で変形させて、第７プラグ２７０及び第６プラグ２６０をＰＣＲの反応容器に吐出させた。この操作は、磁性ビーズを永久磁石によって動かして、第２プラグ２２０まで退避させた上でおこなった。
そして、その抽出液に１９μＬのＰＣＲの反応試薬を加え、リアルタイムＰＣＲを定法に従って行った。ＰＣＲの反応試薬の内訳は、ライトサイクラー４８０ジェノタイピングマスター（ロシュ・ダイアグノスティックス社製４ ７０７ ５２４）４μＬ、滅菌水で１０００倍希釈したＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉ（ライフテクノロジーズ社製Ｓ７５６３）０．４μＬ、１００μＭのβアクチン検出用プライマー（Ｆ／Ｒ）各０．０６μＬ、滅菌水１４．４８μＬである。実験例１のＰＣＲの増幅曲線を図２０に示す。なお、図１７の縦軸は、蛍光強度であり、横軸はＰＣＲのサイクル数である。

［実験例２］
実験例２では、一般的な核酸抽出法により核酸の抽出を行った。
まず、容量１．５ｍＬのポリエチレン製容器（エッペンドルフチューブ）に、３７５μＬの溶解液、及び２０μＬの磁性ビーズ分散液を収容した。溶解液、磁性ビーズ分散液の組成としては、上記実験例と同様である。
次にヒトから採取した血液を容器の口からピペットを用いて５０μＬ導入し、容器に蓋をして、ボルテックスミキサーで１０分間撹拌し、磁気スタンド及びピペットを操作してＢ／Ｆ分離操作を行った。この状態では、容器内には磁性ビーズ及び少量の溶解液が残存していた。
次いで容器に実験例１と同じ組成の第１洗浄液を４５０μＬ導入し、蓋をして５秒間ボルテックスミキサーにより撹拌し、磁気スタンド及びピペットを操作して第１洗浄液を除去した。この操作を２回繰り返した。この状態では、容器内には磁性ビーズ及び少量の第１洗浄液が残存していた。
次いで容器に実験例１と同じ組成の第２洗浄液を４５０μＬ導入し、蓋をして５秒間ボルテックスミキサーにより撹拌し、磁気スタンド及びピペットを操作して第１洗浄液を除去した。この操作を２回繰り返した。この状態では、容器内には磁性ビーズ及び少量の第２洗浄液が残存していた。
そして、滅菌水（溶出液）５０μＬを容器に加え、蓋をして１０分間ボルテックスミキサーにより撹拌し、磁気スタンド及びピペットを操作して上澄み液を回収した。この上澄み液が標的核酸を含んでいる。
そしてその抽出液から１μＬを分注し、さらに１９μＬのＰＣＲの反応試薬を加え、リアルタイムＰＣＲを定法に従って行った。ＰＣＲの反応試薬の内訳は、ライトサイクラー４８０ジェノタイピングマスター（ロシュ・ダイアグノスティックス社製４ ７０７ ５２４）４μＬ、滅菌水で１０００倍希釈したＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉ（ライフテクノロジーズ社製Ｓ７５６３）０．４μＬ、１００μＭのβアクチン検出用プライマー（Ｆ／Ｒ）各０．０６μＬ、滅菌水１４．４８μＬである。このときの増幅曲線を図１７に示す。

［実験結果］
上記実験例から、以下のことが理解できる。

（１）ＰＣＲの前処理である核酸の抽出処理に要した時間を比較すると、検体を容器に挿入してから、ＰＣＲの反応容器に標的核酸を導入するまでの時間は、実験例１ではおよそ２分であった。実験例２ではおよそ３０分であった。これにより実験例１の核酸抽出方法は、実験例２の核酸抽出方法よりも、核酸抽出に要する時間が大幅に短い。

（２）各洗浄液は、実験例１では実験例２の約１８分の１の量であった。さらに、溶出液の量も実験例１は実験例２の約５０分の１であった。従って、実験例１では、洗浄液と溶出液の量が実験例２に対して非常に少量で十分である。

（３）溶出液における標的核酸の濃度を、溶解液及び溶出液の量において比較すると、理想的には実験例１のほうが、実験例２よりも５０倍の濃度となると考えられる。但し、今回の実験例では、血液サンプルに含まれる核酸量が多く、１μＬの磁性ビーズの吸着可能量を超えており、血液サンプルに含まれる核酸を全量回収することができないため、実験例１では実験例２の５０倍濃度が得られていない。核酸含有量が少なく１μＬの磁性ビーズの吸着可能量を超えない検体の場合には、実験例１では実験例２の５０倍濃度が得られる。

（４）図１７のグラフをみると、核酸の含有量が多い全血サンプルにおいても、核酸の増幅率の立ち上がりが、実験例１のほうが実験例２よりも約０．６サイクル早い。すなわち、実験例１で用いたＰＣＲの反応液は、実験例２で用いたＰＣＲの反応液よりも、標的核酸の濃度が高い。すなわち、溶出液における標的核酸の濃度は、実験例１のほうが、実験例２よりも高い。

［実験例３］
本実施例では、核酸増幅用試薬が溶液の状態のときと、凍結乾燥のときとでの保存安定性能の比較を行った。
まず、２００μＬのエッペンドルフＰＣＲチューブ（核酸増幅反応用容器）内に調整した核酸増幅溶液を１０μＬ入れ、一方は溶液のまま、もう一方は凍結乾燥にかけた。なお、核酸増幅溶液は、以下の通りである。
０．８μＭ Primer F：GAC CAA TCC TGT CAC CTC TGA C
０．８μＭ Primer R：AGG GCA TTT TGG ACA AAG CGT CTA
０．２μＭプローブ
TaqMan probe: FAM- TGC AGT CCT CGC TCA CTG GGC ACG -TAMRA
１ｘＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩＩ ＲＴ／Ｐｌａｔｉｍｕｎ Ｔａｑ Ｍｉｘ
１ｘＰＣＲ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ
凍結乾燥した核酸増幅用試薬は、オイルを重層し、それぞれ室温（２５℃）で保存し、数日〜１ヵ月後のＲＴ−ＰＣＲの反応を調べた。なお、ＲＴ−ＰＣＲの条件は、以下の通りである。
逆転写 ５０℃ ６０秒
酵素不活性化 ９５℃ １０秒
変性 ９５℃ ５秒
アニーリング・伸張 ５７℃ ２０秒
（５０サイクル）
図１８（Ａ）に示すように、溶液状態では、一日の保存もできない。一方、図１８（Ｂ）に示すように、凍結乾燥状態では、1ヶ月以上保存可能であった。
このように、核酸増幅用試薬が凍結乾燥状態であれば、室温で１ヶ月以上保存後のサンプルでも、調製直後と変わらず反応が起きる。さらに、凍結乾燥物がオイルで覆われていても、オイルからの阻害を受けることなく反応が起きる。

〔実験例４〕
実験例３と同じ条件で、図１９Ａのように作製した凍結乾燥した核酸増幅用試薬３００を用い、図２０のようにして核酸増幅用試薬３００を溶出液４７に溶解させ、押出して得られた溶出液４７を用いて、ＲＴ−ＰＣＲを行った（図２１では点線）。コントロールとして、実験直前に調整した核酸増幅用試薬を用い、同様にＲＴ−ＰＣＲを行った（図２１では実線）。
図２１に示すように、増幅に関し、両者はほとんど同様だった。このように、凍結乾燥した核酸増幅用試薬をチューブに固着させても、ＲＴ−ＰＣＲは、凍結乾燥しない核酸増幅用試薬と同様の効率で、核酸を増やすことができた。

１ カートリッジ、
３ タンク、３Ａ 蓋、３Ｂ 変形部、
５ アダプター、５Ａ蓋、７ 磁気ビーズ、
９ カートリッジ本体、
１０ プランジャー、１１ 筒状部、１１Ａ 取付台、
１２ 棒状部、１２Ａ シール、１３ リブ、
２０ チューブ、２１ 上シリンジ、２２ 下シリンジ、
２３ キャピラリー、２５ 固定爪、２６ ガイド板、
３０ ＰＣＲ容器、３１ シール形成部、
３２ オイル受容部、３２Ａ オイル受容空間、
３３ 段差部、３４Ａ 上シール部、３４Ｂ 下シール部、
３５ 流路形成部、３５Ａ 底、
３６Ａ 高温領域、３６Ｂ 低温領域、
４１ 溶解液、４２ オイル、４３ 洗浄液、
４４ 第１オイルプラグ、４５ 洗浄液プラグ、４６ 第２オイルプラグ、
４７ 溶出液（ＰＣＲ溶液）、
４７Ａ 溶解液、４７Ｂ オイルプラグ、４７Ｃ 核酸増幅反応液、
４８ 第３オイルプラグ、
５０ ＰＣＲ装置、５１ ベース、５２ 支持台、５３ 側壁、
５３Ａ カートリッジ挿入口、５５ 蛍光測定器、
６０ 回転機構、６１ 回転体、
６２ 装着部、６３ 固定部、
６３Ａ ガイドレール、６４Ａ 挿入穴、
６５ ヒーター、６５Ａ 溶出用ヒーター、
６５Ｂ 高温側ヒーター、６５Ｃ 低温側ヒーター、
６５Ｄ スペーサー、６６ 回転用モーター、
７０ 磁石移動機構、７１ 磁石、７２ アーム、
７３ 昇降機構、７３Ａ キャリッジ、
７３Ｂ 昇降用モーター、７３Ｃ キャリッジガイド、
７３Ｄ ベルト、７３Ｅ プーリー、
７５ 揺動機構、７５Ａ 揺動用モーター、７５Ｂ 揺動回転軸、
８０ 押圧機構、８１ プランジャー用モーター、８２ ロッド、
９０ コントローラー
１１０ 栓
１２０ （装着後の）タンク
１２１ 開口部
１２２ 蓋
１２３ 空間
１２４ 溶解液
１２５ 磁気ビーズ
１３０ （装着前の）タンク
２００ キャピラリー
２１０〜２７０ 第１〜第７プラグ
３００ 凍結乾燥した核酸増幅用試薬
３０１ チューブ
３０２ 肉厚部
３０３ 泡
３１１ オイル

Claims (26)

1. 凍結乾燥された核酸増幅反応試薬と、
   オイルと、
   前記核酸増幅反応試薬及び前記オイルを収容する容器と、
   を含み、前記核酸増幅反応試薬が前記オイル中に保持されている、核酸増幅反応用容器。
2. 前記オイルが脱水処理されている、請求項１に記載の核酸増幅反応用容器。
3. 前記凍結乾燥された核酸増幅反応試薬がケーキ状であること、を特徴とする請求項１または２に記載の核酸増幅反応用容器。
4. 前記凍結乾燥された核酸増幅反応試薬は、直径２０μｍ以下の孔を有する多孔質であること、を特徴とする請求項１〜３のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用容器。
5. 前記核酸増幅反応試薬が、ＤＮＡポリメラーゼ及びｄＮＴＰを含む、請求項１〜４のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用容器。
6. 前記核酸増幅反応試薬が、核酸増幅反応用プライマーを含む、請求項５に記載の核酸増幅反応用容器。
7. 前記核酸増幅反応試薬が、逆転写酵素を含む、請求項５または６に記載の核酸増幅反応用容器。
8. 前記核酸増幅反応試薬と前記核酸増幅反応用オイルとが、固形ワックスで隔てられている、請求項１〜７のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用容器。
9. 長手方向を有し、
   オイルからなる第１プラグ、
   オイルと相分離し、核酸が結合した微粒子を洗浄する第１洗浄液からなる第２プラグ、
   オイルからなる第３プラグ、
   オイルと相分離し、前記核酸が結合した微粒子から前記核酸を溶出する溶出液からなる第４プラグ、
   オイルからなる第５プラグ、
   を、順に内部に備えたチューブと、
   前記チューブの前記第５プラグの配置された側に連通し、オイルを含む核酸増幅反応用容器と、を備え
   凍結乾燥された核酸増幅反応試薬が前記核酸増幅反応用容器に含まれる前記オイル中に保持されている、核酸増幅反応用カートリッジ。
10. 前記核酸増幅反応試薬は、前記核酸増幅反応用容器の前記チューブに連通する側とは反対側の端部に配置されていること、を特徴とする、請求項９に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
11. 前記核酸反応用容器の前記チューブに連通する側とは反対側の端部はテーパー状であることを特徴とする、請求項１０に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
12. 前記核酸増幅反応用容器に含まれる前記オイルの比重が前記溶出液の比重より小さいこと、を特徴とする、請求項１０または１１に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
13. 前記核酸増幅反応用容器に含まれる前記オイルの粘度が５０ｃｓ以下であること、を特徴とする、請求項９〜１２のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
14. 前記チューブの第１プラグの配置された側の開口部に取り付けられ、前記溶出液を、前記チューブの第５プラグの配置された側から前記核酸増幅反応用容器へ押し出すための押出手段を備える、請求項９〜１３のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
15. 前記チューブの第５プラグの配置された側の先端は、前記核酸増幅反応用容器中に保持されたオイルに接していることを特徴とする、請求項９〜１４のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
16. 前記核酸増幅反応用容器中のオイルが脱水処理されている、請求項９〜１５のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
17. 前記核酸増幅反応試薬が、ＤＮＡポリメラーゼ及びｄＮＴＰを含む、請求項９〜１６のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
18. 前記核酸増幅反応試薬が、核酸増幅反応用プライマーを含む、請求項１７に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
19. 前記溶出液が、核酸増幅反応用プライマーを含む、請求項１７に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
20. 前記核酸増幅反応試薬が、逆転写酵素を含む、請求項１７〜１９のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
21. 前記核酸増幅反応試薬とオイルとが、固形ワックスで隔てられている、請求項９〜２０のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
22. 前記核酸増幅反応試薬を凍結乾燥させるための核酸増幅反応試薬溶液の量は、前記溶出液の溶液量より少ない、請求項９〜２１のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジ。
23. 請求項９〜２２に記載の核酸増幅反応用カートリッジと、前記チューブに前記核酸結合性固相担体を導入するためのタンクと、を備えた核酸増幅反応用カートリッジキット。
24. 前記タンクは、核酸を抽出するための溶解液と前記核酸結合性固相担体を含む、請求項２３に記載の核酸増幅反応用カートリッジキット。
25. 前記タンクは開口部を有し、前記開口部には、取り外し可能な蓋を有する、請求項２３または２４に記載の核酸増幅反応用カートリッジキット。
26. 前記タンクの開口部は、前記チューブの第１プラグ側の開口部に取り付け可能であるように構成されている、請求項２３〜２５のいずれか一項に記載の核酸増幅反応用カートリッジキット。