JP2014508916A - コア物質とシェル物質との間にナノギャップを有する単一ナノ粒子およびその調製方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、ナノギャップによるプラズモンカップリング（ｐｌａｓｏｍｏｎｉｃ ｃｏｕｐｌｉｎｇ）による非常に高い信号の増幅効果および高い再現性を有しており、ラマン分析に有用に使用可能な、コア（ｃｏｒｅ）および前記コアを取り囲むシェル（ｓｈｅｌｌ）を含み、前記コアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子およびその製造方法を提供する。また、前記ナノ粒子を用いた分析物を検出する方法および前記ナノ粒子を含む分析物検出用キットを提供するためのものである。
【選択図】 図２a

Description

本発明は、単一ナノ粒子内のコア物質と皮を形成するシェル物質との間におけるナノギャップの形成による強いプラズモンカップリング（ｐｌａｓｏｍｏｎｉｃ ｃｏｕｐｌｉｎｇ）によって非常に高い電磁信号の増幅が可能で、また、コア物質の表面に信号物質の均一な塗布および量的調整が可能で、均一な信号の強度と粒子濃度対比で定量的な信号を示す単一ナノ粒子およびその製造方法に関するものである。

生物学的サンプルおよびその他のサンプルからの単一分子に対する高感度の正確な検出は、医学診断学、病理学、毒物学、環境サンプリング、化学的分析およびその他の多い分野で広く使用可能であり、このために、ここ数年、生物−化学分野では、少量の合成物質および生体分子の代謝、分布および結合などを研究するのに特定物質で標識されたナノ粒子および化学物質を広く使用してきた。代表的には、放射性同位元素を用いた方法、有機蛍光物質を用いた方法、無機物質の量子ドット（Ｑｕａｎｔｕｍ ｄｏｔｓ）を用いた方法がある。

放射性同位元素を用いた方法において、放射性標識物質（Ｒａｄｉｏａｃｔｉｖｅ ｉｓｏｔｏｐｅ）としては、生体内で広く発見される^１Ｈ、^１２Ｃ、^３１Ｐ、^３２Ｓ、^１２７Ｉなどの放射性同位体である^３Ｈ、^１４Ｃ、^３２Ｐ、^３５Ｓ、^１２５Ｉなどが広く使用される。放射性同位元素は、非放射性の同位体と化学的性質がほぼ類似して任意に置換が可能で、放出エネルギーが比較的大きく、少量の検出も可能であるという利点があるため、長い間使用されてきた。しかし、人体に有害な放射線のため取り扱いが容易でなく、一部の同位元素の放射性は、放出エネルギーが大きい代わりに半減期が短く、長時間の保管や実験に不都合であるという欠点もあった。

放射性同位元素の対案として広く使用されるのは有機蛍光物質（Ｏｒｇａｎｉｃ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｄｙｅｓ）である。蛍光物質は、特定波長によって活性化されると、固有の波長を有する光を発光する。特に、検索法が小型化されるにつれ、放射性物質も検出限界を現し、検索に長い時間が要求される。これに対し、蛍光物質の場合、適切な条件で分子あたり数千個の光子を放出することができ、単一分子水準の検出までも理論的に可能である。しかし、放射性同位元素のように活性リガンドの元素を直接置換することはできず、構造の活性関係を通じて比較的活性に影響を与えない部分を変形して蛍光物質を連結しなければならないという制限があった。また、このような蛍光標識物質は、時間の経過に伴って蛍光強度が弱くなり（ｐｈｏｔｏｂｌｅａｃｈｉｎｇ）、活性化させる光の波長が非常に狭く、発光する光の波長が非常に広く、互いに異なる蛍光物質の間に干渉があるという欠点があった。さらに、使用可能な蛍光物質の数が極めて制限されている。

また、半導体ナノ物質の量子ドットは、ＣｄＳｅ、ＣｄＳ、ＺｎＳ、ＺｎＳｅなどで構成されており、大きさおよび種類に応じてそれぞれ異なる色の光を発光する。有機蛍光物質に比べて広い活性波長を有しており、狭い発光波長を示すため、異なる色を発光する数が有機蛍光物質より多い。このため、最近、有機蛍光物質の欠点を克服するための方法として量子ドットが多く用いられている。しかし、毒性が強く、大量生産が難しいという欠点があった。さらに、理論的にその数は多様であるが、実際に使用されている数は極めて制限されている。

これらの問題を解決するための方法として、最近では、ラマン分光学および／または表面プラズモン共鳴を利用した標識物質を用いている。

なかでも、表面増強ラマン散乱法（Ｓｕｒｆａｃｅ Ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ＳＥＲＳ）は、金、銀などの金属ナノ構造の粗い（ｒｏｕｇｈｅｎｅｄ）表面に分子が吸着する時、ラマン散乱の強度が１０^６〜１０^８倍以上急激に増加する現象を利用した分光法である。光を有形媒質に通過させる場合、ある程度の量は固有方向から外れるが、このような現象はラマン散乱として知られている。散乱された光の一部が光の吸収および電子の高いエネルギー準位に励起することにより、固有の刺激された光と振動数が異なり、ラマン放出スペクトルの波長はサンプル内の光吸収分子の化学組成および構造特性を示すため、ラマン分光法は、現在非常に速い速度で発展しているナノ技術と結合し、たった１つの分子を直接測定できる高感度の技術に発展可能であり、特に、メディカルセンサとして極めて重要に使用できるものと大きな期待が寄せられている。この表面増強ラマン分光法（ＳＥＲＳ）効果は、プラズモン共鳴の現象に関連付けられ、ここで、金属ナノ粒子は、金属内の伝導電子の集団カップリングによって入射電磁放射線に応答して顕著な光学的共鳴を示すため、本質的に、金、銀、銅および他の特定金属のナノ粒子は、電磁放射線の集中化効果を向上させる小型アンテナとして作用することができる。このような粒子の近傍に位置する分子は、ラマン分光法の分析に対してはるかに大きな感度を示す。

したがって、ＳＥＲＳセンサを用いて多様な疾病に関連する遺伝子、タンパク質（バイオマーカー）の早期診断を行おうとする研究が盛んになっている。ラマン分光法は、他の分析法（赤外線分光法）とは異なって様々な利点がある。赤外線分光法は、分子の双極子モーメントの変化がある分子の場合に強い信号を得ることができるのに対し、ラマン分光法は、分子の誘導偏極率に変化がある非極性分子の場合にも強い信号を得ることができるため、ほぼすべての有機分子が固有のラマンシフト（Ｒａｍａｎ Ｓｈｉｆｔ、ｃｍ^−１）を有している。また、水分子による干渉に影響されないため、タンパク質、遺伝子などの生体分子（ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）の検出により好適である。しかし、低い信号強度により、長い研究期間にもかかわらず実用化される水準には至らなかった。

前記表面増強ラマン散乱法の発見以来地道な研究を重ね、蛍光分子が吸着したナノ粒子の無秩序な凝集体において単一分子水準の信号の検出が可能な表面増強ラマン散乱（Ｓｕｒｆａｃｅ−Ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ＳＥＲＳ）が報告されて以降（Ｓｃｉｅｎｃｅ １９９７、２７５（５３０３）、１１０２；Ｐｈｙｓｒｅｖ ｌｅｔｔ １９９７、７８（９）、１６６７）、多様なナノ構造（ナノ粒子、ナノシェル、ナノ線）を利用したＳＥＲＳ増強現象に関する研究が報告された。このような高感度のＳＥＲＳ現象をバイオセンサの開発に利用するために、Ｍｉｒｋｉｎ研究チームは、最近、ＤＮＡと結合された金ナノ粒子を用いた高感度ＤＮＡの分析に成功し、このフォーマットの検出限界は２０ｆＭであった（２００２、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２９７、１５３６）。しかし、ラマン活性分子（例えば、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ ６Ｇ）を有する銀（Ａｇ）ナノ粒子の塩誘導凝集（ｓａｌｔ ｉｎｄｕｃｅｄ ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ）に基づいた単一分子ＳＥＲＳ活性基質を製造する方法は、最初の研究以来ほとんど進んでいない。不均一に（ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｅｏｕｓ）凝集されたコロイドは、単にその分画（１％未満）だけが単一分子ＳＥＲＳ活性を有することが報告された（Ｊ Ｐｈｙｓ Ｃｈｅｍ Ｂ ２００２、１０６（２）、３１１）。このようにランダムに不均一になった（粗くなった）表面は、ＳＥＲＳに関連する多量の興味深く必須のデータを提供するが、表面形態学上の小さい変化によっても増強（ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ）の変化が大きく変化するため、このような戦略は本質的に再現が不可能である。最近では、ＦａｎｇらがＳＥＲＳにおける増強部位の分布の定量的な測定に関して報告した。最も密集した部位（ＥＦ＞１０^９）は計１，０００，０００部位のうち６４部位であったが、これらは全体のＳＥＲＳ強度に２４％を寄与することが報告された（Ｓｃｉｅｎｃｅ、２００８、３２１、３８８）。このようなＳＥＲＳ信号が極大化可能な構造体を再現性あるように確保できれば、非常に信頼度の高い有用な超高感度の生体分子分析法となり得、体外診断法のほか、生体内イメージング技術としても非常に有用であると判断される。

しかし、前の多様な分析物のＳＥＲＳ検出に関する方法では、典型的に基板および／または支持体上にコーティングされるコロイド金属粒子、例えば、凝集された銀ナノ粒子を使用し、このような配列は、時には１０^６〜１０^８だけ増加した感度でＳＥＲＳ検出を可能とするのに対し、ヌクレオチドなどの小さい分析物の単一分子の検出はできなかった。また、ＳＥＲＳの利点にもかかわらず、ＳＥＲＳ現象は、メカニズムが完璧に理解されていないだけでなく、正確に構造的に定義されているナノ物質の合成および制御の困難さと、スペクトルの測定時に用いられる光の波長、偏光方向に応じた増強効率の変化などにより、再現性および信頼性の面で解決すべき問題が多く、これは、ナノバイオセンサの開発および商品化を含むＳＥＲＳ現象の応用において大きな課題として残されている。このような問題を解決するために、構造的に正確に定義されているナノ物質（ｗｅｌｌ−ｄｅｆｉｎｅｄ ｎａｎｏｓｔｒｕｃｔｕｒｅ）の光学的性質に対する理解とこれを用いてＳＥＲＳ現象を正確に制御するための研究の必要性が要求されているのが現状である。
そこで、Ｌ．Ｂｒｕｓら（ＪＡＣＳ．２００２）は、金属粒子二量体（ｄｉｍｅｒ）の場合、２つ以上のナノ粒子の間に非常に強い電磁場のホットスポット（ｈｏｔ ｓｐｏｔまたはｉｎｔｅｒｓｔｉｔｉａｌ ｆｉｅｌｄ）が形成され、ＳＥＲＳ信号が増強されると報告し、電磁気的な理論計算によれば、前記ホットスポット（ｈｏｔ ｓｐｏｔ）によって１０^１２程度のＳＥＲＳの増強が予測される。

このように、ラマン検出の増強された感度は、コロイド粒子凝集体の内部で明らかに均一でないが、ホットスポットの存在の有無によって異なる。しかし、このようなホットスポットの物理的構造、増強された感度のナノ粒子からの距離範囲、および感度を増強させる分析物と凝集体ナノ粒子との間の空間的関係性は、その特性が提示されていない。また、凝集されたナノ粒子は、溶液中において本質的に不安定で、単一粒子分析物の検出の再現性に逆効果をもたらす。

このような光学信号の増幅は、２つ以上のナノ構造体の外部の接合部分（ｊｕｎｃｔｉｏｎ）における電磁信号の増幅によって、ギャップに位置する光学信号を発する分子の特性的な増幅された信号（ｅ．ｇ．、ラマン、蛍光、ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ｅｔｃ）の検出が可能である。しかし、このような構造体を用いてラマン信号（ｓｕｒｆａｃｅ−ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ＳＥＲＳ）を得る場合、依然として、信号の定量性、結果の再現性、合成の便宜性および簡便性、費用、プローブの安定性などが問題として残っている。すなわち、２つ以上のナノ粒子がナノギャップによって結合される場合、増幅された光学信号を検出することができるが、このようなナノ粒子のナノギャップの大きさを調整することが難しく、これにより、物質合成の容易性、安定性、信号の再現性、定量性などが確保されなくなる。

したがって、強い信号の増幅が可能なナノ構造体は、単一ナノ粒子の内部にナノ間隔が存在する粒子であり、このような内部のナノギャップには、多様な信号物質を位置させ、安定した信号の形成が可能であると予想されるが、これまで報告されたことはない。
一方、ＤＮＡは、多様なナノ構造の合成および組立などについてつっ込んだ研究がなされてきたが、ＤＮＡの他の役割についてはほとんど研究されていない。そこで、本発明者は、ＤＮＡを用いて、２つ以上のナノ粒子を用いてナノギャップを形成する概念から脱し、コアとシェルとを含み、コアとシェルとの間にナノギャップが形成されている単一ナノ粒子を製造した。前記ナノ粒子は、特に、ＤＮＡをコアの表面に改質する場合には、コアとシェルとの間の一部分がナノブリッジを通して連結されており、コアとシェルとの間にナノギャップが形成するように調整することができ、ＤＮＡの塩基配列を調整してラマン活性分子の数、位置などを自由に調整することができ、合成が非常に簡単であり、特に、内部のナノギャップによるプラズモンカップリング（ｐｌａｓｏｍｏｎｉｃ ｃｏｕｐｌｉｎｇ）による非常に高い信号増幅効果を示すだけでなく、高い再現性によって商品化の極めて重要な前提条件である信号の再現性と定量性の問題を克服できることを確認し、本発明に至った。
また、金ナノ粒子の表面と安定的な結合が可能な有機分子（高分子、一例として、正電荷性高分子のｐｏｌｙ−ａｌｌｙｌ ａｍｉｎｅ、ｐｏｌｙ−Ｌ−ｌｙｓｉｎｅや、負電荷を有するｐｏｌｙ−ｓｔｙｒｅｎｅ−ｓｕｌｆｏｎａｔｅなどのｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒに形成された高分子層）を形成し、追加的な金属シェルを形成することで、コアとシェルとの間にナノブリッジのないナノギャップを形成することも可能であることを確認した。

単一ナノ粒子の内部にナノギャップが形成され、プラズモンカップリング（ｐｌａｓｏｍｏｎｉｃ ｃｏｕｐｌｉｎｇ）による非常に高い電磁信号の増幅効果および高い再現性を有しており、これに基づいた光学信号の分析に有用に使用可能な、コア（ｃｏｒｅ）および前記コアを取り囲むシェル（ｓｈｅｌｌ）を含み、前記コアとシェルとの間にナノギャップが形成され、前記コアとシェルとがナノブリッジで連結されるか、またはナノブリッジのないナノ粒子およびその製造方法を提供するためのものである。

また、前記ナノ粒子を用いた分析物を検出する方法および前記ナノ粒子を含む分析物検出用キットを提供するためのものである。

上記の課題を解決するために、本発明は、コア（ｃｏｒｅ）および前記コアを取り囲むシェル（ｓｈｅｌｌ）を含み、前記コアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子を提供する。前記コアとシェルは、ナノブリッジで連結されるか、または連結されていないナノ粒子であり得る。

本発明で使われる用語「コア」は、表面プラズモン共鳴を示す金属からなり、直径が１ｎｍ〜９００ｎｍの球形または球形と類似する形態の粒子を意味する。表面プラズモン共鳴を示す金属として、金、銀または銅を用いることができる。

本発明で使われる用語「シェル」は、前記コアを取り囲んでいる表面プラズモン共鳴を示す金属からなるコーティング層を意味する。前記シェルの厚さは０．１〜９００ｎｍであり、好ましくは１ｎｍ〜１００ｎｍである。前記シェルとコアとの間にはナノギャップが形成されているため、コアとシェルとの間には空間が形成されているという特徴がある。表面プラズモン共鳴を示す金属として、金、銀または銅を用いることができる。

本発明で使われる用語「ナノギャップ」は、前記コアとシェルとの間に形成されている空間を意味する。ナノギャップの厚さは０．０１ｎｍ〜１００ｎｍであることが好ましい。前記ナノギャップ空間によってコアとシェルとが区分され得、前記ナノギャップによってコアとシェルとが完全に接触しなくてもよく、一部領域ではコアとシェルとがナノブリッジによって接触していてもよい。したがって、本発明で使われる「ナノギャップ」が、必ずしもコアとシェルとの間を完全に分離する空間を意味するものではない。

本発明で使われる用語「ナノブリッジ」は、直径が０．５ｎｍ〜２０ｎｍの、前記コアとシェルとを連結するナノギャップに存在するブリッジを意味する。本発明のナノ粒子は、コアとシェルとの間に「ナノブリッジされたナノギャップ」または「ナノブリッジのないナノギャップ」を含むことができる。

したがって、好ましい態様として、本発明は、ｉ）金コアおよび銀シェルからなり、金コアと銀シェルとの間にナノギャップが形成されているナノ粒子、ｉｉ）銀コアおよび金シェルからなり、銀コアと金シェルとの間にナノギャップが形成されているナノ粒子、ｉｉｉ）金コアおよび金シェルからなり、金コアと金シェルとの間にナノギャップが形成されているナノ粒子、ｉｖ）銀コアおよび銀シェルからなり、銀コアと銀シェルとの間にナノギャップが形成されているナノ粒子からなる群より選択されるナノ粒子に関するものである。最も好ましくは、本発明のナノ粒子は、金コアおよび金シェルからなり、金コアと金シェルとの間にナノギャップが形成されているナノ粒子である。また、コアをなす粒子の形状には制限がない。

特に、前記コアとシェルとが一部領域で接触している場合には、ナノブリッジを通して接触する。すなわち、コア上にシェルが形成される場合、コアの表面全体からシェルの間にナノギャップが形成されるが、一部領域でシェルを形成する物質の一部が内部にナノブリッジを形成してコアと接触する構造を有することができる。その代表的な構造を図１および図２（ａの４）に示した。図１および図２（ａの４）に示されるように、シェルが形成される過程において一部がコア側に形成され得、これによってナノブリッジが形成され得る。ナノブリッジの個数は、１つ以上からナノギャップを形成可能な限度内で制限されない。直径が０．５ｎｍ〜２０ｎｍであることが好ましい。ナノブリッジは、コアとシェルの構造をより安定的に維持できるようにし、ＳＥＲＳの信号をより増加させる１つの要素となり得る。

前記ナノギャップによってコアとシェルとの間に空間が形成されており、このようなナノギャップによってラマン信号の増幅が可能であり、これにより、本発明にかかるナノ粒子を用いて増幅された光学信号の検出が可能である。特に、ナノギャップの再現性が非常に高いだけでなく、ラマン信号（ｓｕｒｆａｃｅ−ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、ＳＥＲＳ）を得る場合、信号の定量性、結果の再現性、合成の便宜性および簡便性、費用、プローブの安定性などが画期的に改善できる。

これをより明確に説明するために、図１を参照して説明する。従来用いられていた多重ナノ構造（ｍｕｌｔｉｍｅｒｉｃ ｎａｎｏｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ；図１の左側構造）は、プラズモンカップリングおよびＳＥＲＳのための多重ポイントギャップ（ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｐｏｉｎｔ ｇａｐ）を有しているが、非常に狭い表面積と不規則なポイントギャップを有している問題があった。特に、再現性が高く、定量的なＳＥＲＳ信号を放出させるためのギャップを有する特定のナノ構造を合成することが非常に難しいだけでなく、事実上不可能である。

反面、本発明にかかるナノブリッジされたナノギャップのナノ粒子は、広い表面積を有する固定的で均一なギャップを提供する（図１の右側構造）。このような単一の内部ギャップ構造において、コアの表面全体がＳＥＲＳ強化のために使用可能であり、染料の位置も正確に構造の内部に位置させることができる。さらに、実際の使用においても、合成収率が高いだけでなく、簡単な方法で合成することができる。また、一部領域ではナノブリッジが形成され、コアとシェルとが連結されていることから、ナノ粒子全体の構造をより安定的に維持することができる。

本発明にかかるナノギャップは、コア上に高分子が結合され、高分子が結合されたコア上にシェルが形成されることによって形成できる。すなわち、コアとシェルとの間に高分子が存在し、コアとシェルとの完全な接触を遮断することができ、これにより、遮断された空間がナノギャップとして形成できる。前記高分子は、オリゴヌクレオチドまたはｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法に使用可能な高分子を用いることができ、以下に詳細に説明する。

オリゴヌクレオチドを使用する場合、前記ナノ粒子のコアの表面には、オリゴヌクレオチドが静電気的引力または共有結合で付着しているという特徴がある。特に、本発明にかかるナノ粒子のコアの表面にはオリゴヌクレオチドの一方の末端が改質され、前記オリゴヌクレオチドの一部は前記シェルに挿入されたことを特徴とする。

本発明で使われる用語「オリゴヌクレオチド」は、少数のヌクレオチドで構成された重合体で、一般に化学的合成が可能な短いヌクレオチド鎖を意味し、本発明にかかるナノ粒子を合成するのに重要な役割を果たす。具体的には、コアの表面に改質されたオリゴヌクレオチドのポリアデニン（ｐｏｌｙ Ａ）がコアの表面に位置することが好ましいが、この時、コアの周囲にシェルを形成する場合、オリゴヌクレオチドによってシェルが完全にコアと接触せずにナノギャップを形成することができる。反面、オリゴヌクレオチドを改質せず、例えば、シトレートやＢＳＰＰ（ｂｉｓ（ｐ−ｓｕｌｆｏｎａｔｏｐｈｅｎｙｌ）ｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈａｎｅ ｄｅｈｙｄｒａｔｅ）が改質される場合には、ナノギャップが形成できない。

また、コアの表面に改質されたオリゴヌクレオチドは、ラマン活性分子などの光学信号物質が位置する光学信号物質−改質プラットフォームの役割を果たすことができる。すなわち、ラマン活性分子などの光学信号物質をオリゴヌクレオチドに結合させることにより、コアの表面、ナノギャップ、またはシェルの内部に位置させることができ、その位置および個数も正確に調整することが可能である。

前記オリゴヌクレオチドは、３’末端または５’末端がリンカー化合物で改質され、リンカー化合物を通してコア粒子の表面に付着することができる。本発明で使われる用語「リンカー化合物」は、オリゴヌクレオチドをコア粒子の表面に付着させるために、各オリゴヌクレオチドの３’または５’末端に連結させた化合物を意味する。リンカー化合物を通してナノ粒子を架橋−結合させる方法は、当該分野で公知となっている（Ｆｅｌｄｈｅｉｍ、Ｔｈｅ Ｅｌｅｃｔｒｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ、Ｆａｌｌ、２００１、ｐｐ．２２−２５）。リンカー化合物の一末端はコアの表面に付着する反応基を保有するが、好ましくは、硫黄含有基、例えば、チオール基またはスルフヒドリル基（ｓｕｌｆｈｙｄｒｙｌ、ＨＳ）である。前記反応基は、アルコールおよびフェノールの誘導体であって、酸素サイトに硫黄が含まれたＲＳＨの式を有する化合物であり得る。あるいは、前記反応基はそれぞれ、ＲＳＳＲ’またはＲＳＲ’の式を有するチオールエステル（ｔｈｉｏｌ ｅｓｔｅｒ）またはジチオールエステル（ｄｉｔｈｉｏｌ ｅｓｔｅｒ）であり得る。あるいは、前記反応基は、アミノ基（−ＮＨ_２）であり得る。

本発明では、前記オリゴヌクレオチドの例として、３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’を用いたが、これに限定されるものではない。

また、ｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法に使用可能な高分子を用いる場合、前記ナノ粒子のコアの表面が高分子でコーティングされ、コーティングされたコア上にシェルが形成されてナノギャップを形成することができ、この場合、ナノブリッジは形成されない。高分子のコーティング方法は、共有結合または静電気的引力で可能であり、静電気的引力を応用する場合、ｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法が可能である。前記「Ｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法」は、正電荷および負電荷を帯びる高分子電解質をそれぞれ交互に積層して多層を製造する方法を意味する。したがって、１つの層だけでコーティングしてナノギャップの厚さを最小化するか、または多層の数を調整してナノギャップの厚さを調整することができる。前記高分子は、「Ｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法」に用いられる物質であれば制限されず、一例として、正電荷性高分子のｐｏｌｙ−ａｌｌｙｌ ａｍｉｎｅおよびｐｏｌｙ−Ｌ−ｌｙｓｉｎｅなどと、負電荷を有するｐｏｌｙ−ｓｔｙｒｅｎｅ−ｓｕｌｆｏｎａｔｅなどを使用することができる。

さらに、本発明にかかるナノ粒子は、ナノギャップの内部に信号物質を含むことができるという特徴がある。特に、ラマン信号を測定するための信号物質の光学活性分子は、Ｃ、Ｈ、Ｏ、Ｎ、Ｓおよびこれらの組み合わせからなる群より選択される原子で構成された分子であれば制限されず、また、金属イオン、金属イオンのキレート、または金属ナノ粒子を使用することもできる。具体的には、本発明で使われる信号物質は、蛍光有機分子、非蛍光有機分子、無機ナノ粒子、ラマン活性分子を包括する広義の概念で、発色が可能な標識物質を制限なく含むことができ、好ましくは、ラマン活性分子である。本発明で使われる用語「ラマン活性分子」は、本発明のナノ粒子が１つ以上の分析物に付着した時、ラマン検出装置による分析物の検出および測定を容易にする物質を意味する。ラマン分光法に利用可能なラマン活性分子は、有機原子、分子、または無機原子、分子などを含む。具体的には、ラマン活性分子の例として、ＦＡＭ、Ｄａｂｃｙｌ、ＴＲＩＴＣ（テトラメチルローダミン−５−イソチオシアネート）、ＭＧＩＴＣ（マラカイトグリーンイソチオシアネート）、ＸＲＩＴＣ（Ｘ−ローダミン−５−イソチオシアネート）、ＤＴＤＣ（３，３−ジエチルチアジカルボシアニンアイオダイド）、ＴＲＩＴ（テトラメチルローダミンイソチオール）、ＮＢＤ（７−ニトロベンズ−２−１，３−ジアゾール）、フタル酸、テレフタル酸、イソフタル酸、パラ−アミノ安息香酸、エリトロシン、ビオチン、ジゴキシゲニン（ｄｉｇｏｘｉｇｅｎｉｎ）、５−カルボキシ−４’，５’−ジクロロ−２’，７’−ジメトキシ、フルオレセイン、５−カルボキシ−２’，４’，５’，７’−テトラクロロフルオレセイン、５−カルボキシフルオレセイン、５−カルボキシローダミン、６−カルボキシローダミン、６−カルボキシテトラメチルアミノフタロシアニン、アゾメチン、シアニン（Ｃｙ３、Ｃｙ３．５、Ｃｙ５）、キサンチン、スクシニルフルオレセイン、アミノアクリジン、量子ドット、炭素同素体、シアニド、チオール、クローリン、ブロム、メチル、リンまたは硫黄などがあるが、これに制限されず、使用されたラマン活性分子が顕著なラマンスペクトルを示さなければならず、特に、互いに異なる類型の分析物と結合したり関連付けられなければならない。好ましくは、ラマン分析時に用いる励起レーザ波長と共鳴してより高いラマン信号強度を示す分子である。

前記信号物質は、ナノギャップに含まれ得るが、オリゴヌクレオチドに共有結合または静電気的引力で改質されて内部ナノギャップに位置するか、またはオリゴヌクレオチドとは別個でコア粒子の表面にラマン活性分子を共有結合、または静電気的引力で結合させることができる。オリゴヌクレオチドにラマン活性分子を改質させる場合、ラマン活性分子の位置を調整できるという特徴がある。すなわち、コアに改質されるオリゴヌクレオチドの末端に近い位置にラマン活性分子を改質する場合、ナノ粒子においてラマン活性分子はコアに近づいて位置することができ、これを調整してラマン活性分子をナノギャップに位置させることが可能である。例えば、ラマン活性分子の位置に応じてラマン信号が異なり得、内部ギャップに位置する場合、ラマン信号が最も強く検出され得、高い均一性と再現性のある信号を発生させることができる。

オリゴヌクレオチドとは別個でラマン活性分子をコアの表面に結合させる場合、ラマン活性分子の付着量を極大化できるという特徴がある。

本発明にかかるナノ粒子全体の直径は１ｎｍ〜９９０ｎｍであることが好ましく、２０ｎｍ〜５００ｎｍであることがより好ましい。

また、本発明にかかるナノ粒子のシェル上に再度ナノ粒子およびシェルを形成することができ、これにより、ナノ粒子の内部にナノギャップが複数の層として存在するナノ粒子の形成が可能であり、その形成方法は、前記ナノギャップおよびシェルの形成方法を繰り返すことによって可能である。

さらに、本発明にかかるナノ粒子のシェルの表面は、多様な物質を結合させ、ナノ粒子の特性を向上させることができる。例えば、生体内でナノ粒子を使用する場合、生体適合性高分子を表面に改質することができる。また、本発明にかかるナノ粒子のシェルの表面にバイオ分子を機能化することができる。本発明にかかるナノ粒子の表面がバイオ分子として機能化する場合、ナノ粒子が測定対象にのみ結合することができ、ナノ粒子を用いた分析能力をより向上させることができる。前記ナノ粒子に機能化するバイオ分子の例として、抗体、抗体断片、遺伝子組換え抗体、単一鎖抗体、受容体タンパク質、結合タンパク質、酵素、抑制剤タンパク質、レクチン、細胞癒着タンパク質、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、核酸またはアプタマーが挙げられる。

また、本発明は、コアにオリゴヌクレオチドを改質させるステップと、前記オリゴヌクレオチドが改質されたコアにシェルを形成するステップとを含む、本発明にかかるコアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子の製造方法を提供する。

前記第１ステップは、コアにオリゴヌクレオチドを改質させるステップであって、公知の文献に従って当業界で知られた方法で実施可能であり、本発明の実施例では、「Ｓ．Ｊ．Ｈｕｒｓｔ、Ａ．Ｋ．Ｒ．Ｌｙｔｔｏｎ−Ｊｅａｎ、Ｃ．Ａ．Ｍｉｒｋｉｎ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７８、８３１３（２００６）」の文献を参照した。

前記第２ステップは、シェルを形成するステップであって、金属前駆体（例えば、ｇｏｌｄ ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ；ＨＡｕＣｌ_４）、還元剤（ＮＨ_２ＯＨ−ＨＣｌ）およびポリ−Ｎ−ビニル−２−ピロリドン（ｐｏｌｙ−Ｎ−ｖｉｎｙｌ−２−ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ；ＰＶＰ）とホスフェートバッファー溶液（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓｏｌｕｔｉｏｎ）を用いて反応させることができる。

前記ナノ粒子の製造方法によってコア−ナノギャップ−シェルのナノ粒子を高い収率で製造することができ（約９５％以上）、特に、ナノギャップの再現性に非常に優れるという特徴がある。また、前記第１ステップで信号物質が結合されたオリゴヌクレオチドを使用する場合、信号物質が含まれたナノ粒子を製造することができ、これにより、ナノ粒子内の信号物質の位置および信号物質の個数などを容易に調整することができる。

さらに、本発明は、コアに高分子をコーティングするステップと、前記コーティングされたコアにシェルを形成するステップとを含む、本発明にかかるコアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子の製造方法を提供する。前記高分子のコーティングは、ｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法で可能であり、前記高分子は、「Ｌａｙｅｒ−ｂｙ−ｌａｙｅｒ多層組立方法」に用いられる物質であれば制限されず、一例として、正電荷性高分子のｐｏｌｙ−ａｌｌｙｌ ａｍｉｎｅおよびｐｏｌｙ−Ｌ−ｌｙｓｉｎｅなどと、負電荷を有するｐｏｌｙ−ｓｔｙｒｅｎｅ−ｓｕｌｆｏｎａｔｅなどを使用することができる。

また、本発明は、本発明にかかるナノ粒子を製造するステップと、前記ナノ粒子のシェルの表面に検出しようとする分析物を認識可能なバイオ分子を機能化するステップと、前記ナノ粒子を１つ以上の分析物を含むサンプルに露出させるステップと、レーザ励起（ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ）およびラマン分光法を利用して１つ以上の分析物を検出および確認するステップとを含む、分析物を検出する方法を提供する。

前記分析物の例として、アミノ酸、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、グリコプロテイン、リポプロテイン、ヌクレオシド、ヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、核酸、糖、炭水化物、オリゴサッカライド、ポリサッカライド、脂肪酸、脂質、ホルモン、代謝産物、サイトカイン、ケモカイン、受容体、神経伝達物質、抗原、アレルゲン、抗体、基質、代謝産物、補助因子、抑制剤、薬物、薬学物、栄養物、プリオン、毒素、毒物、爆発物、殺虫剤、化学無機剤、生体有害性製剤、放射性同位元素、ビタミン、ヘテロ環芳香族化合物、発癌物質、突然変異誘発要因、麻酔剤、アンフェタミン、バルビツレート、幻覚剤、廃棄物または汚染物であり得る。また、分析物が核酸の場合、前記核酸は、遺伝子、ウイルスＲＮＡおよびＤＮＡ、バクテリアＤＮＡ、カビＤＮＡ、哺乳動物ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ＲＮＡおよびＤＮＡ断片、オリゴヌクレオチド、合成オリゴヌクレオチド、改質されたオリゴヌクレオチド、単一鎖および二重鎖核酸、自然的および合成核酸が挙げられる。

さらに、前記ナノ粒子に機能化するバイオ分子の例として、抗体、抗体断片、遺伝子組換え抗体、単一鎖抗体、受容体タンパク質、結合タンパク質、酵素、抑制剤タンパク質、レクチン、細胞癒着タンパク質、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、核酸またはアプタマーが挙げられる。機能化は、ナノ粒子の表面にバイオ分子を静電気的引力で付着させるか、直接結合させるか、またはリンカーを通して官能基化することができ、このような機能化方法は特に制限されない。

好ましくは、本発明の分析物は、任意の公知のラマン分光法によって検出または確認可能であり、好ましくは、表面増強ラマン分光法（ＳＥＲＳ、Ｓｕｒｆａｃｅ Ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ）、表面増強共鳴ラマン分光法（ＳＥＲＲＳ、Ｓｕｒｆａｃｅ ｅｎｈａｎｃｅｄ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ Ｒａｍａｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）、ハイパーラマンおよび／または非干渉性反ストークスラマン分光法（ＣＡＲＳ、ｃｏｈｅｒｅｎｔ ａｎｔｉ−Ｓｔｏｋｅｓ Ｒａｍａｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）を用いることができる。

本発明において、用語「表面増強ラマン散乱法（ＳＥＲＳ）」とは、粗処理された特定金属表面に吸着していたり、数百ナノメートル以内の距離に位置している時に発生するラマン散乱の一種で、この時、ラマン散乱の強度は、一般的なラマンの強度に比べて１０^６〜１０^８倍以上増加する現象を利用した分光法をいう。用語「表面増強共鳴ラマン分光法（ＳＥＲＲＳ）」とは、ＳＥＲＳ活性表面での吸着物に対するレーザ励起波長の共鳴現象を利用した分光法をいう。用語「非干渉性反ストークスラマン分光法（ＣＡＲＳ）」とは、ラマン活性媒質に固定可変の２つのレーザ光を入射させ、これらの結合によって得られる反ストークス放射のスペクトルを測定する分光法をいう。

このような実施態様において、ラマン活性基板は、１つ以上のラマン検出単位装置と作動可能に結合できる。ラマン分光法による分析物の検出のための様々な方法は当該分野で公知となっている（例えば、米国特許第６，００２，４７１号、第６，０４０，１９１号、第６，１４９，８６８号、第６，１７４，６７７号、第６，３１３，９１４号）。ＳＥＲＳおよびＳＥＲＲＳにおいて、ラマン検出の感度は、粗い金属表面、例えば、銀、金、白金、銅またはアルミニウム表面上に吸収された分子に対して１０^６以上に増強される。

ラマン検出装置の非制限的な例は、米国特許第６，００２，４７１号に開示されている。励起ビームは、５３２ｎｍの波長における周波数重畳したＮｄ：ＹＡＧレーザ、または３６５ｎｍの波長における周波数重畳したＴｉ：サファイアレーザによって生成される。パルスレーザビームまたは連続レーザビームが使用可能である。励起ビームは、共焦点の光学器および顕微鏡レンズを通過して１つ以上の分析物を含有するラマン活性基板上に焦点が集められる。分析物からのラマン放出光は、顕微鏡レンズおよび共焦点光学器によって集められ、スペクトル分離のために単色光装置と結合される。共焦点光学器としては、背景信号を減少させるためのダイクロイックフィルタ（ｄｉｃｈｒｏｉｃ ｆｉｌｔｅｒ）、遮断フィルタ、共焦点ピンホール、対物レンズおよび鏡の組み合わせを含む。共焦点光学器だけでなく、標準フルフィールド（ｆｕｌｌ ｆｉｅｌｄ）光学器も使用可能である。ラマン放出信号は、信号をカウンティングしてデジタル化するコンピュータとインタフェースで接続されたアバランシェフォトダイオードを含むラマン検出器によって検出される。

検出装置の他の例は、米国特許第５，３０６，４０３号に開示されており、これは、単光子カウンティング方式で作動するガリウム−砒素光電子増倍管（ＲＣＡ Ｍｏｄｅｌ Ｃ３１０３４またはＢｕｒｌｅ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ Ｍｏｄｅｌ Ｃ３１０３４０２）が備えられたスペックスモデル（Ｓｐｅｘ Ｍｏｄｅｌ）１４０３の二重格子分光計が挙げられる。励起化供給源は、ＳｐｅｃｔｒａＰｈｙｓｉｃｓ、モデル１６６からの５１４．５ｎｍ線のアルゴン−イオンレーザ、およびクリプトン（ｋｒｙｐｔｏｎ）−イオンレーザ（Ｉｎｎｏｖａ７０、非干渉性）の６４７．１ｎｍ線を含む。

他の励起化供給源としては、３３７ｎｍでの窒素レーザ（Ｌａｓｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｉｎｃ．）および３２５ｎｍでのヘリウム−カドミウムレーザ（Ｌｉｃｏｎｏｘ（米国特許第６，１７４，６７７号）、発光ダイオード、Ｎｄ：ＹＬＦレーザ、および／または多様なイオンレーザおよび／または染料レーザを含む。励起ビームは、バンドパスフィルタ（Ｃｏｒｉｏｎ）によってスペクトルで精製され、６Ｘ対物レンズ（Ｎｅｗｐｏｒｔ、Ｍｏｄｅｌ Ｌ６Ｘ）を用いるラマン活性基板上に焦点化できる。対物レンズは、ホログラフィックビームスプリッタ（Ｋａｉｓｅｒ Ｏｐｔｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｉｎｃ．、Ｍｏｄｅｌ ＨＢ ６４７−２６Ｎ１８）を用いて分析物を励起させ、ラマン信号を収集し、励起ビームおよび放出されたラマン信号に対する直角形態を作るのにすべて使用可能である。ホログラフィックノッチフィルタ（Ｋａｉｓｅｒ Ｏｐｔｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｉｎｃ．）は、レイリー（Ｒａｙｌｅｉｇｈ）散乱放射線を減少させるのに使用可能である。他のラマン検出器としては、赤色増強された高感度の電荷結合素子（ＲＥ−ＩＣＣＤ）検出システム（Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）が装着されたＩＳＡ ＨＲ−３２０分光器を含む。フーリエ変換分光器（マイケルソン干渉計に基づく）、荷電された注入装置、光ダイオードアレイ、ＩｎＣａＡｓ検出器、電子増倍ＣＣＤ、高感度ＣＣＤおよび／または光トランジスタアレイなど、他の類型の検出器が使用可能である。

当該分野で公知の任意の適切な形態または構成のラマン分光法または関連手法が分析物の検出に使用可能であり、これは、ノーマルラマンスキャッタリング、共鳴ラマンスキャッタリング、表面増強ラマンスキャッタリング、表面増強共鳴ラマンスキャッタリング、非干渉性反ストークスラマン分光法（ＣＡＲＳ）、刺激ラマンスキャッタリング、逆ラマン分光法、刺激ゲインラマン分光法、ハイパーラマンスキャッタリング、分子光学レーザ試験器（ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｏｐｔｉｃａｌ ｌａｓｅｒ ｅｘａｍｉｎｅｒ、ＭＯＬＥ）またはラマンマイクロプローブまたはラマン顕微鏡法または共焦点ラマンマイクロ分光器、３次元またはスキャニングラマン、ラマン飽和分光法、時間分解共鳴ラマン、ラマン解離分光法またはＵＶ−ラマン顕微鏡法を含むが、これに限定されない。

本発明の特定の実施態様において、ラマン検出装置は、コンピュータと作動可能に結合できる。検出装置からのデータはプロセッサによって処理され、データは主記憶装置に格納できる。標準分析物に対する放出プロファイル上のデータはさらに、主記憶装置またはＲＯＭに格納できる。プロセッサは、ラマン活性基板での分析物からの放出スペクトルを比較し、サンプルの分析物の類型を確認することができる。プロセッサは、検出装置からのデータを分析し、様々な分析物の正体および／または濃度を測定することができる。互いに異なって備えられたコンピュータは、特定の履行に使用可能である。したがって、システムの構造は、本発明の他の実施態様で異なり得る。データ収集作業以降、典型的に、データはデータ分析作業に送られる。分析作業を容易にするために、検出装置によって得られたデータは、前記のようにデジタルコンピュータを用いて典型的に分析する。典型的に、コンピュータは、検出装置からのデータの受け入れおよび格納だけでなく、収集されたデータの分析および報告のために適切にプログラミングされる。

また、本発明は、本発明にかかるナノ粒子を含む分析物検出用キットを提供する。このような検出キットには、当該分野で一般に用いられる道具、試薬などが含まれる。このような道具／試薬としては、好適な担体、検出可能な信号を生成できる標識物質、溶解剤、洗浄剤、緩衝剤、安定化剤などが含まれるが、これに制限されない。標識物質が酵素の場合には、酵素の活性を測定可能な基質および反応停止剤を含むことができる。好適な担体としては、これに限定されないが、可溶性担体、例えば、当該分野で公知の生理学的に許容される緩衝液、例えば、ＰＢＳ、不溶性担体、例えば、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリエステル、ポリアクリロニトリル、フッ素樹脂、架橋デキストラン、ポリサッカライド、ラテックスに金属をめっきした磁性微粒子のような高分子、その他、紙、ガラス、金属、アガロースおよびこれらの組み合わせであり得る。

本発明にかかるナノ粒子は、従来検出のために用いられていた分子診断チップ分野、または従来映像診断に用いられていたナノ粒子を代替することができる。そこで、本発明にかかるナノ粒子は、ＤＮＡチップ、タンパク質チップなどの分子診断チップ分野において応用が可能であり、検出しようとする分析物は、遺伝子、ウイルスＲＮＡおよびＤＮＡ、バクテリアＤＮＡ、カビＤＮＡ、哺乳動物ＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ＲＮＡ、ＤＮＡ断片、オリゴヌクレオチド、合成オリゴヌクレオチド、改質されたオリゴヌクレオチド、単一および二重鎖核酸、自然的および合成核酸、アミノ酸、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、グリコプロテイン、リポプロテイン、ヌクレオシド、ヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、核酸、糖、炭水化物、オリゴサッカライド、ポリサッカライド、脂肪酸、脂質、ホルモン、代謝産物、サイトカイン、ケモカイン、受容体、神経伝達物質、抗原、アレルゲン、抗体、基質、代謝産物、補助因子、抑制剤、薬物、薬学物、栄養物、プリオン、毒素、毒物、爆発物、殺虫剤、化学無機剤、生体有害性製剤、放射性同位元素、ビタミン、ヘテロ環芳香族化合物、発癌物質、突然変異誘発要因、麻酔剤、アンフェタミン、バルビツレート、幻覚剤、廃棄物、汚染物などに適用可能である。

また、ＤＮＡ、特定疾病の発病および進行に関係のあるタンパク質（バイオマーカー）などの分析物の検出に高度に適用可能であり、大規模ゲノム配列分析、単一塩基多形成（ＳＮＰ）の検出、配列比較、遺伝子型別分析、疾病相関および薬剤開発などの分子診断方法および分子映像分野において応用が可能である。

さらに、本発明にかかるナノ粒子の表面には、他の信号を示す物質をナノ粒子の内部または外部に含むことができ、例えば、ＣＴ造影剤、ＭＲＩ造影剤、光学造影剤、超音波造影剤またはこれらの組み合わせを追加的に含むことができる。これにより、ナノ粒子によるラマン分析とともに、ＣＴ、ＭＲＩ、光学または超音波分析を同時に行うことができるという特徴がある。

なお、本発明にかかるナノ粒子は、遺伝子、抗体または薬物などを含むことができ、これにより、ナノ粒子を薬物の伝達体（ｃａｒｒｉｅｒ）として疾病の治療に使用することができる。

本発明にかかるナノギャップ粒子のナノ構造は、信号物質に対する広い表面積を有し、再現性が高く、厚さが均一なナノギャップを提供する。これにより、コアの表面全体がＳＥＲＳ強化のために使用可能であり、信号物質の位置も正確にナノギャップの内部に位置させることができる。さらに、実際の使用においても、合成収率が高いだけでなく、簡単な方法で合成することができる。したがって、非常に高い信号の増幅効果を示すだけでなく、高い再現性によって商用化の極めて重要な前提条件である信号の再現性と定量性の問題を克服することができる。

従来用いられていた多重ナノ構造と本発明の一実施例によるＮＮＰナノ構造を示すものである。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造方法およびその分析結果を示しており、図２ａは、シェルが形成される過程を示す 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造方法およびその分析結果を示しており、 図２ｂは、中間体１、２、３およびナノ粒子（４、５）の可視光線分光計グラフを示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造方法およびその分析結果を示しており、 図２ｃの６は、ナノ粒子の元素マッピングの結果を示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造過程において、各使用溶液の濃度に応じて観察されたＴＥＭイメージを示すものである。 本発明の一実施例によって製造されたＮＮＰｓ（２００個）の粒子の大きさおよび内部ナノギャップの大きさの分布を示すものである。 シトレート安定化された２０ｎｍの金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用いた場合に製造されるナノ粒子の可視光線分光計グラフおよびＴＥＭイメージを示すものである。 ＳＰＰ（ｂｉｓ（ｐ−ｓｕｌｆｏｎａｔｏｐｈｅｎｙｌ）ｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈａｎｅ ｄｅｈｙｄｒａｔｅ）が金コアに改質された場合に製造されるナノ粒子の可視光線分光計グラフおよびＴＥＭイメージを示すものである。 ｍＰＥＧ−チオールが改質された金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用いた場合に製造されるナノ粒子のＴＥＭイメージを示すものである。 Ｔ_１０−オリゴヌクレオチドが改質された金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用いた場合に製造されるナノ粒子のＴＥＭイメージを示すものである。 ＮＮＰとシリカで取り囲むナノ粒子の３Ｄ−ＦＥＭに基づいた計算結果を示しており、ａは、ＮＮＰの電磁場（ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｆｉｅｌｄ）分布を計算した結果（ギャップはＤＮＡとラマンレポーター分子で充填されており、粒子の周辺が水で満たされたと仮定）を示し、ｂは、ＮＮＰと同じ大きさのシリカで取り囲む金−金コア−ギャップ−シェルナノ粒子の電磁場分布を計算した結果を示す。また、ｃは、６３２．８ｎｍにおいて中心線に応じた電磁場分布を比較した結果を示し、ｄは、ＮＮＰの入射光線に対する依存性を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、図１０ａは、異なる波長におけるラマン信号を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、 図１０ｂは染料がナノギャップに位置するナノ粒子のラマン結果を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、図１０ｃは染料がシェルの内部に位置するナノ粒子のラマン結果を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、 図１０ｄはシェルの外部に位置するナノ粒子のラマン結果を示す。 図１１はラマン蛍光物質の個数を調整する方法を示すものである。 図１２は本発明の一実施例によるナノ粒子のラマン信号の結果を示すものである。図１１ａは、染料の数に応じたラマン信号の強度を示す。 図１２は本発明の一実施例によるナノ粒子のラマン信号の結果を示すものである。図１１ｂは染料の数に応じたラマン信号の強度をしめす。 図１２は本発明の一実施例によるナノ粒子のラマン信号の結果を示すものである。 図１１ｃは、シェルの厚さに応じたラマン信号の強度を示す。 他の蛍光染料および非蛍光ラマンレポーターを有するＮＮＰに対するＳＥＲＳスペクトルを示すものである。 図１４は本発明の一実施例によるナノ粒子の濃度に応じたラマン信号の強度および増強因子を示しており、図１４ａは、Ｃｙ３を有するナノ粒子に対するラマン信号の強度を示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の濃度に応じたラマン信号の強度および増強因子を示しており、 図１４ｂは、４，４’−ジピリジルを有するナノ粒子に対するラマン信号の強度を示す。 ナノ−ラマン測定（ＡＦＭ−ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｎａｎｏ−Ｒａｍａｎ ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔ）を行う方法を図式的に示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 異なる波長における増強因子をグラフで示すものである 異なる波長における増強因子をグラフで示すものである 異なる波長における増強因子をグラフで示すものである

以下、本発明の理解のために好ましい実施例を提示する。しかし、下記の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものであって、実施例によって本発明の内容が限定されるものではない。

使用物質
金ナノ粒子はＴｅｄ Ｐｅｌｌａ社（Ｒｅｄｄｉｎｇ、ＣＡ、ＵＳＡ）から購入した。すべての他の化学物質（ＨＡｕＣｌ_４・３Ｈ_２Ｏ、Ｐｏｌｙｖｉｎｙｌｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ（Ｋ ｖａｌｕｅ：２９−３２）、ＮＨ_２ＯＨ・ＨＣｌ、Ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ、ＢＳＰＰ）はＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ、ＵＳＡ）から購入し、追加の精製なしに使用した。ＨＰＬＣで精製された染料がコーティングされたチオール化オリゴヌクレオチドはＩＤＴ社（Ｃｏｒａｌｖｉｌｌｅ、ＩＡ、ＵＳＡ）から購入し、ホスフェートバッファー（０．１７Ｍ、ｐＨ＝８．０）でｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ（ＤＴＴ、０．１Ｍ）を用いて還元した。還元したオリゴヌクレオチドは、ｄｅｓａｌｔｉｎｇ ＮＡＰ−５ ｃｏｌｕｍｎ（Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５ ｍｅｄｉｕｍ、ＤＮＡ ｇｒａｄｅ）で精製した。超純水ウォーター（ｎａｎｏｐｕｒｅ Ｈ_２Ｏ；＞１８．０ＭＯ）は、Ｍｉｌｌｉ−Ｑ ｗａｔｅｒ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎシステムで精製し、すべての実験に使用した。ＴＥＭ分析では、ＥＤＳユニット（Ｌｉｎｋ ｏｘｆｏｒｄ ＩＳＩＳ ３１０）を備えたｆｏｒｍｖａｒ／ｃａｒｂｏｎがコーティングされたｃｏｐｐｅｒ ｇｒｉｄ（Ｔｅｄ Ｐｅｌｌａ社；Ｒｅｄｄｉｎｇ、ＣＡ、ＵＳＡ）およびＨＲ−ＴＥＭ（ＪＥＯＬ、Ｊａｐａｎ、３００ｋＶ）を使用した。

ＮＮＰおよびシリカで取り囲むナノ粒子に対する光学計算方法
Ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｗａｖｅとブリッジされたＡｕコア−ギャップ−シェルの関連性を理解するために、所与の境界条件でｔｉｍｅ−ｈａｒｍｏｎｉｃ Ｍａｘｗｅｌｌ ｅｑｕａｔｉｏｎを計算できる商業的に利用可能なＦＥＭ ｓｏｆｔｗａｒｅ ＣＯＭＳＯＬを用いて３Ｄ ｆｉｎｉｔｅ ｅｌｅｍｅｎｔ ｍｏｄｅｌを研究した。線形（ｘ）偏光された偏波（λ＝６３２ｎｍ）を、ブリッジされたＡｕコア−ギャップ−シェル粒子に入射させた。ＪｏｈｎｓｏｎおよびＣｈｒｉｓｔｙの金の実験誘電定数（ｅｍｐｉｒｉｃａｌ ｄｉｅｌｅｃｔｒｉｃ ｃｏｎｓｔａｎｔｓ）を補間法（ｉｎｔｅｒｐｏｌａｔｉｏｎ）とともに用いた（（１）Ｐ．Ｂ．Ｊｏｈｎｓｏｎ、Ｒ．Ｗ．Ｃｈｒｉｓｔｙ、Ｐｈｙｓ．Ｒｅｖ．Ｂ．６、４３７０−４３７９（１９７２）；（２）Ｐ．Ｇ．Ｅｔｃｈｅｇｏｉｎ、Ｅ．Ｃ．Ｌｅ Ｒｕ、Ｍ．Ｍｅｙｅｒ、Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｐｈｙｓ．１２５、１６４７０５（２００６））。

金の相対的透磁率（ｒｅｌａｔｉｖｅ ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ）はμ_ｒ＝１とし、複素屈折率（ｃｏｍｐｌｅｘ ｒｅｆｒａｃｔｉｖｅ ｉｎｄｅｘ）は

で計算した。水、空気、およびシリカの誘電定数は、それぞれｅ_{ｗａｔｅｒ}＝１．３３^２、ｅ_ａｉｒ＝１、ｅ_ＳｉＯ２＝１．４６^２である。ギャップ部分内の空気とＤＮＡとの混合物の有効誘電率（ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｄｉｅｌｅｃｔｒｉｃ ｃｏｎｓｔａｎｔ）は下記のＭａｘｗｅｌｌ−Ｇａｒｎｅｔｔ式で決定した：

式中、ｅ_ｅｆｆは水（または空気）とＤＮＡとの混合物の有効誘電率であり、ｅ_０は水（または空気）の誘電率であり、ｅ_ＤＮＡはＤＮＡの誘電率であり（Ｇ．Ｒｏｎｇ、Ａ．Ｎａｊｍａｉｅ、Ｊ．Ｅ．Ｓｉｐｅ、Ｓ．Ｍ．Ｗｅｉｓｓ、Ｂｉｏｓｅｎｓｏｒｓ ａｎｄ Ｂｉｏｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ ２３、１５７２−１５７６（２００８））（ｅ_ＤＮＡ〜１．５）、ｆはギャップ部分内のＤＮＡの体積分率（ｖｏｌｕｍｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ）を示す。３００ヌクレオチドがギャップ部分内に存在すると仮定し、これにより、ギャップ部分内のＤＮＡの体積分率は約０．００４８である。

ナノ−ラマン実験装置のセットアップ
ラマンスペクトルは、反転した光学顕微鏡（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｏｐｔｉｃａｌ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ）を備えたナノ−ラマン分光器（ｎａｎｏ−Ｒａｍａｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｅ；Ａｘｉｏｖｅｒｔ ２００、Ｚｅｉｓｓ）および独立に調整される圧電器ｘ、ｙサンプルスキャナ（ｐｉｅｚｏｅｌｅｃｔｒｉｃ ｘ、ｙ ｓａｍｐｌｅ ｓｃａｎｎｅｒ、Ｐｈｙｓｉｋ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｅ）で測定した。５１４．５ｎｍラインのアルゴンイオンレーザ（ａｒｇｏｎ ｉｏｎ ｌａｓｅｒ；Ｍｅｌｌｅｓ Ｇｒｉｏｔ、ＵＳＡ）、６３２．８ｎｍラインのヘリウム−ネオンレーザ（Ｈｅ−Ｎｅ ｌａｓｅｒ；ＪＤＳＵ、ＵＳＡ）、および７８５ｎｍラインのダイオードレーザ（ｄｉｏｄｅ ｌａｓｅｒ；Ｂ＆Ｗ ＴＥＫ ＩＮＣ．）を単一モードの光ファイバ（ｓｉｎｇｌｅ−ｍｏｄｅ ｏｐｔｉｃａｌ ｆｉｂｅｒ）と結合された励起ソース（ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ ｓｏｕｒｃｅ）として用いた。ダイクロイックミラー（ｄｉｃｈｒｏｉｃ ｍｉｒｒｏｒ；Ｃｈｒｏｍａ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐ．）で５０ｎＷから１ｍＷの励起レーザビームを油浸顕微鏡対物レンズ（ｏｉｌ−ｉｍｍｅｒｓｉｏｎ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ（×１００、１．３ｎｕｍｅｒｉｃａｌ ａｐｅｒｔｕｒｅ；×５０、０．５ｎｕｍｅｒｉｃａｌ ａｐｅｒｔｕｒｅ；Ｚｅｉｓｓ）に反射させ、カバーガラススリップの上部面の回折限界スポット（ｄｉｆｆｒａｃｔｉｏｎ−ｌｉｍｉｔｅｄ ｓｐｏｔ（＜３００ｎｍ、６３２．８ｎｍのレーザ使用時×１００、×５０対物レンズのそれぞれに対して＜３μｍ）に集中させた。Ｎａｎｏｓｃｏｐｅ ＩＶ ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｒを備えたＡＦＭ（Ｂｉｏｓｃｏｐｅ、Ｄｉｇｉｔａｌ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ、Ｖｅｅｃｏ Ｍｅｔｒｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ）をマイクロメカニカルステージ上に装着させた。背景ラマン信号は、液化窒素で冷凍された（−１２５℃）ＣＣＤ（ｃｈａｒｇｅ−ｃｏｕｐｌｅｄ ｄｅｖｉｃｅ）に収集した。閉鎖型（Ｃｌｏｓｅｄ−ｌｏｏｐ）ｐｉｅｚｏｅｌｅｃｔｒｉｃ ｆｌｅｘｕｒｅ ｓａｍｐｌｅ ｓｔａｇｅ上のタッピングモード（ｔａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅ）の閉鎖型（ｃｌｏｓｅｄ−ｌｏｏｐ）ＡＦＭスキャナをラマンまたはレイリースキャッタリング信号と＜５０ｎｍのオーバーラップ正確度（ｏｖｅｒｌａｐ ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ）を有するＡＦＭ表面形状イメージ（ｔｏｐｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ｉｍａｇｅ）およびサンプルイメージに関連付けるために使用した。レーザの焦点をＡＦＭ ｔｉｐと一致させ、ＡＦＭ ｔｉｐに対して対称的に分散できるようにした。スキャッタリングスペクトル（ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ ｓｐｅｃｔｒａ）は、５００〜２０００ｃｍ^−１の範囲で単一および１０秒で測定した。すべてのデータは、Ｓｉからの背景信号を除去して訂正（ｂａｓｅｌｉｎｅ−ｃｏｒｒｅｃｔｉｏｎ）した。ラマン分析に用いられたすべての溶液は、３８４ ｗｅｌｌ ｏｐｔｉｃａｌ ｂｏｔｔｏｍ ｐｌａｔｅ（ＮｕｎｃＴＭ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、ＵＳＡ）を用いた。ＡＦＭ−ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｎａｎｏＲａｍａｎ ａｎａｌｙｓｉｓでは、Ｐｌｏｙ−Ｌ−ｌｙｓｉｎｅがコーティングされたカバーガラス（ｐｉｒａｎｈａ−ｅｔｃｈｅｄ）を用いた。

実施例１：Ｃｏｒｅ−ｇａｐ−ｓｈｅｌｌナノ粒子の製造
非常に正確な位置調整能力を有するラマン染料改質プラットフォーム（Ｒａｍａｎ−ｄｙｅ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｌａｔｆｏｒｍ）としてＤＮＡストランド（ｓｔｒａｎｄ）を用いて、内部ナノギャップを有する単一のＮＮＰナノ粒子を下記の方法で製造した。また、下記の方法を図式的に図２ａに示した。

典型的な製造方法として、ＤＮＡが改質された金ナノ粒子（２０ｎｍ粒子；ＤＮＡ配列：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’）を、「Ｓ．Ｊ．Ｈｕｒｓｔ、Ａ．Ｋ．Ｒ．Ｌｙｔｔｏｎ−Ｊｅａｎ、Ｃ．Ａ．Ｍｉｒｋｉｎ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７８、８３１３（２００６）」の文献に従って製造した。前記ＤＮＡが改質された金ナノ粒子のコアを取り囲むシェル（Ａｕ）を形成するために、前記ＤＮＡが改質された金ナノ粒子を金前駆体（ｇｏｌｄ ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ；ＨＡｕＣｌ_４）、還元剤（ＮＨ_２ＯＨ−ＨＣｌ）および１％のポリ−Ｎ−ビニル−２−ピロリドン（ｐｏｌｙ−Ｎ−ｖｉｎｙｌ−２−ｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ；ＰＶＰ；ＭＷ４０，０００）とホスフェートバッファー溶液（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓｏｌｕｔｉｏｎ；０．３Ｍ ＮａＣｌ；１０ｍＭ ＰＢ；ｐＨ７．４）で反応させ、常温で３０分間ｇｅｎｔｌｅ ｖｏｒｔｅｘｉｎｇした。シェルの形成過程に応じたナノ粒子の形態変化を確認するために、シード（ｓｅｅｄｓ；ＤＮＡが改質された金ナノ粒子、１ｎＭ）の量を基準として、金前駆体（ｇｏｌｄ ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ；ＨＡｕＣｌ_４）、還元剤（ＮＨ_２ＯＨ−ＨＣｌ）の量を調整した。

具体的には、ＤＮＡが改質された金ナノ粒子溶液（１００μＬ；０．３Ｍ ＰＢＳで１ｎＭ濃度）は、５０μＬの１％ＰＶＰ溶液と混合した。前記溶液をそれぞれ１．５μＬ、５．２μＬ、１０．３μＬまたは３０．４μＬのヒドロキシアミンヒドロクロリド溶液（ｈｙｄｒｏｘｙｌａｍｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ ｓｏｌｕｔｉｏｎ；１０ｍＭ）と混合させた後、それぞれ１．５μＬ、５．２μＬ、１０．３μＬまたは３０．４μＬのクロロ金酸溶液（ｃｈｌｏｒｏａｕｒｉｃ ａｃｉｄ ｓｏｌｕｔｉｏｎ；５ｍＭ）と混合させた。反応物の量に応じて、多様なナノ構造が形成された（図２ｂおよび図２ｃ；中間体（１、２および３）および生成物（４、５））。また、各溶液に対して製造されるナノ構造のパターンは図３のように観察された。

前記製造過程において、粒子溶液の色が桃色（ＤＮＡが改質された金ナノ粒子）から淡桃色（中間体１；突起構造（ｂｕｄｄｉｎｇ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ））、青色（中間体２）、紫色（中間体３；中間シェル構造）に変化し、最終的に、図２ｂに示されるように、レッド−ワイン色（ＮＮＰ構造）に変化した。これは、それぞれ図２ｂおよび図２ｃに示されたＵＶ−ＶｉｓスペクトルおよびＨＲ−ＴＥＭイメージと一致するものである。

面白いことに、より多くの反応物が添加されるほど、より小さい突起（ｂｕｄｄｉｎｇ ｓｐｈｅｒｅ）が現れ始め、ＤＮＡが改質された金表面の横に形成された。漸進的にシェルのような構造が形成され、この過程でナノギャップが観察された（図２ｂ、図２ｃ、図３）。ＵＶ−Ｖｉｓスペクトルは、溶液の色変化およびＨＲ−ＴＥＭイメージと密接な関連性があることを示した（図２ｂ）。中間体１のＵＶ−Ｖｉｓスペクトル（図２ｂの１）は、約６８０ｎｍのプラズモン共鳴ピーク（ｐｌａｓｍｏｎｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ｐｅａｋ）が合成された突出構造（ｂｕｄｄｉｎｇ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ；図２ｃの１）の長い軸に沿ったｔｒａｎｓｖｅｒｓｅ ｍｏｄｅに起因することを示し、このようなピークは、シェルが形成されるにつれて漸進的に消えた（図２ｂの４）。最終生成物（Ａｕ−ＮＮＰｓ（金コア−ナノブリッジされたナノギャップ−金シェル形態のナノ粒子）；約２０ｎｍのコア、約１．２ｎｍのギャップ、および約１１ｎｍのシェル）において、プラズモン共鳴ピークは、完璧なナノシェル構造に起因するより広いピーク形態（図２ｂの４）とともに、標本粒子（ｔｅｍｐｌａｔｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ；ＤＮＡが改質された金ナノ粒子（ＤＮＡ−Ａｕ−ＮＮＰｓ）に対して約５２０ｎｍ）に近接したが、ＵＶ吸光度は、ＤＮＡ−Ａｕ−ＮＮＰｓ（図２ｂの４のＵＶ−スペクトルは２倍に希釈された溶液から得られた）より４倍以上強化された。計算された生成物の吸光係数（ｅｘｔｉｎｃｔｉｏｎ ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ）は約７．２×１０^９Ｍ^−１ｃｍ^−１であった。

重要なことに、中間体２、３、および最終生成物（４、５）のＨＲＴＥＭイメージは、シェルが部分的にコアの表面に接触してナノブリッジを形成しており、ナノブリッジされたナノギャップがコアの表面に沿って形成されていることを示す（平均ギャップの大きさは約１．２ｎｍ；図２ｃの４、５、６）。最終生成物（Ａｕ−ＮＮＰｓ）は高い収率（約９５％）で合成され、すべての粒子は、図２ｃの４および５に示されたＴＥＭイメージのように均一な内部ナノブリッジされたナノギャップを有していた。ＴＥＭイメージで測定された平均直径は４２±５ｎｍ（図４）であった。図２ｃの６に示されたＡｕ−ＮＮＰの元素マッピング（ｅｌｅｍｅｎｔ ｌｉｎｅ ｍａｐｐｉｎｇ）は、減少する金原子の領域（約１．２ｎｍ）を示すが、これは、図２ｃの５で観察されたナノギャップと一致するものである。製造されたＮＮＰは、溶液内で待機条件（常温および０．３Ｍ ＰＢＳ）で６ヶ月以上実質的に安定した。

比較例１：オリゴヌクレオチド以外の物質で表面改質したナノ粒子の製造
表面改質されたオリゴヌクレオチドの役割を理解するために、下記のように比較例を製造した。
シトレート安定化された２０ｎｍの金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用い、１０ｍＭのホスフェートバッファーまたは脱イオン化された水を使用することを除き、実施例１と同様の方法でナノ粒子を製造した。この場合、枝分かれした形態（ｂｒａｎｃｈｅｄ）またはナノシェルが金コア上に形成されたが、内部ナノギャップは形成されなかった（図５）。

また、ＢＳＰＰ（ｂｉｓ（ｐ−ｓｕｌｆｏｎａｔｏｐｈｅｎｙｌ）ｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈａｎｅ ｄｅｈｙｄｒａｔｅ）が金ナノ粒子の表面に改質され、このようなＢＳＰＰが改質された金ナノ粒子をシードとして用いることを除き、実施例１と同様の方法でナノ粒子を製造した。この場合にも、シェルの成長はやや不規則であり、高い多分散型のナノ構造（ｐｏｌｙｄｉｓｐｅｒｓｅ ｎａｎｏｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ）となり、内部ナノギャップが形成されなかった（図６）。

前記両者の場合とも、表面電荷（シトレート−金ナノ粒子およびＢＳＰＰ−金ナノ粒子のゼータポテンシャルはそれぞれ−３５±３ｍＶおよび−４５±３ｍＶである）は、ＤＮＡ−ＡｕＮＰｓ（−２５±１ｍＶ）とさほど変わらなかったが、シェルの成長パターンは完全に相違している。

また、ｍＰＥＧ（分子量５，０００）チオール改質された金ナノ粒子をシードとして用いることを除き、実施例１と同様の方法でナノ粒子を製造した。この場合にも、内部ナノギャップが形成されていない、やや潰れた五角形構造または球形態のナノ粒子が製造された（図７）。

前記結果により、ＤＮＡが本発明にかかるコア−ナノギャップ−シェル構造のナノ粒子を合成する上で極めて重要であることを確認することができた。

比較例２：Ａ１０ ｓｐａｃｅｒの代わりにＴ１０ ｓｐａｃｅｒを用いたナノ粒子の製造
Ａ_１０ ｓｐａｃｅｒの代わりにＴ_１０ ｓｐａｃｅｒを用いることを除き、実施例１と同様の方法でナノ粒子を製造した。この場合、単一核化（ｓｉｎｇｌｅ−ｎｕｃｌｅａｔｅｄ）ナノ構造（中間体１）は、少量の前駆体の存在下でほとんど観察されなかった（図８）。より多量の前駆体を用いる場合、多重核化（ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｎｕｃｌｅａｔｉｏｎ ｓｉｔｅｓ）が金コアの表面に形成され、最終ナノ構造において内部ナノギャップは形成されなかった。

金の表面に対するチミンよりアデニンの高い親和力に起因して、チミンがｓｐａｃｅｒとして用いられる場合、アデニンがｓｐａｃｅｒとして用いられる場合よりも約４０％高いＤＮＡ ｌｏａｄｉｎｇ能力を示すと判断される（（１）Ｓ．Ｊ．Ｈｕｒｓｔ、Ａ．Ｋ．Ｒ．Ｌｙｔｔｏｎ−Ｊｅａｎ、Ｃ．Ａ．Ｍｉｒｋｉｎ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７８、８３１３（２００６）；（２）Ｚ．Ｗａｎｇ、Ｊ．Ｚｈａｎｇ、Ｊ．Ｍ．Ｅｋｍａｎ、Ｐ．Ｊ．Ａ．Ｋｅｎｉｓ、Ｙ．Ｌｕ、Ｎａｎｏ Ｌｅｔｔ．ＤＯＩ：１０．１０２１／ｎｌ１００６７５ｐ（２０１０））。前記結果は、ＮＮＰナノ構造の合成において適切なＤＮＡ配列の必要性を示し、内部ナノブリッジおよびナノギャップの形成は、チオール化ＤＮＡが改質された金コアの表面、ヌクレオチド塩基のＡｕＣｌ_４−イオンキャプチャー効果（グアニンのアミン基）（（１）Ａ．Ｓｃｈｉｍａｎｓｋｉ、Ｅ．Ｆｒｅｉｓｉｎｇｅｒ、Ａ．Ｅｒｘｌｅｂｅｎ、Ｂ．Ｌｉｐｐｅｒｔ、Ｉｎｏｒｇａｎｉｃａ Ｃｈｉｍｉｃａ Ａｃｔａ ２８３、２２３（１９９８）；（２）Ｋ．Ｒ．Ｂｒｏｗｎ、Ｍ．Ｊ．Ｎａｔａｎ、Ｌａｎｇｍｕｉｒ １４、７２６（１９９８）；（３）Ｚ．Ｍａ、Ｓ．Ｓｕｉ、Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．４１、２１７６（２００２））、ＰＶＰなどに起因すると判断される。

実施例２：金ナノ粒子、ブリッジのないナノギャップ粒子およびシリカで取り囲むコア−シェル粒子のＦＥＭ計算
Ａｕ−ＮＮＰとＥＭ波長（ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｗａｖｅ）の関連性を理解するために、ＦＥＭ（３Ｄ ｆｉｎｉｔｅ−ｅｌｅｍｅｎｔ−ｍｅｔｈｏｄ）を計算に適用し（Ｗｕｓｔｈｏｌｚ、Ｋ．Ｌ．ｅｔ ａｌ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ−ａｃｔｉｖｉｔｙ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｉｎ ｇｏｌｄ ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｄｉｍｅｒｓ ａｎｄ ｔｒｉｍｅｒｓ ｆｏｒ ｓｕｒｆａｃｅ−ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ．Ｊ．ＡＭ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１３２、１０９０３−１０９１０（２０１０））、前記結果を、ｓｉｌｉｃａが取り囲むＡｕ−Ａｕコア−シェルナノ粒子と比較した（図９）。すべての計算では、４つの内部ナノブリッジがＡｕコアとＡｕシェルとの間に形成されたものとして設定した。コアの半径は２０ｎｍであり、ナノブリッジはシリンダ形態の２．５ｎｍ×１．２ｎｍ、ギャップの大きさまたはシリカの厚さは１．２ｎｍ、およびシェルの厚さは１１ｎｍである。Ｘ軸に入射した線形偏光された偏波（ｌｉｎｅａｒｌｙ ｐｏｌａｒｉｚｅｄ ｐｌａｎｅ ｗａｖｅ ｉｎｃｉｄｅｎｔ ａｌｏｎｇ ｔｈｅ ｘ−ａｘｉｓ）がプラズモン励起（ｐｌａｓｍｏｎ ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ）のために用いられた。ＥＭ強化に対する強度の結果は図９ａに示した。前記結果は、ＥＭ強化がＮＮＰの内部ギャップに集中的に位置することを示し、入射した光りより最大３３倍程度効果が強化されていることを示す。反面、シリカで取り囲むＡｕ−Ａｕコア−シェルの構造では、同じ領域で単に３．２倍だけ強化されたことを確認することができた。ＮＮＰとシリカで取り囲む粒子のＥＦ値はそれぞれ１．２×１０^６、１．０×１０^２であった。前記計算されたＥＦ値（１．２×１０^６）は、３つの１００ｎｍの金コアおよびシリカコーティングで構成された「Ｌ」形態のトリマーナノアンテナ構造（１．１×１０^６）と比較できる（Ｗｕｓｔｈｏｌｚ、Ｋ．Ｌ．ｅｔ ａｌ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ−ａｃｔｉｖｉｔｙ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｉｎ ｇｏｌｄ ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｄｉｍｅｒｓ ａｎｄ ｔｒｉｍｅｒｓ ｆｏｒ ｓｕｒｆａｃｅ−ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒａｍａｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ．Ｊ．ＡＭ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１３２、１０９０３−１０９１０（２０１０））。前記計算では、表面の粗さと化学的強化（ｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ）は考慮されておらず、前記２つの要素はＳＥＲＳ全体の強化を増加させることが予想される。前記結果は、ＮＮＰでの高いＥＭ強化は、コアとシェルのナノギャップ（〜１．２ｎｍ）に起因するものであることを示す。重要なことに、内部ナノブリッジも強化要素に影響を及ぼす。ブリッジのないＡｕ−ナノギャップ粒子に対する計算結果がＮＮＰと比較された（図９ｃの黒色ライン）。計算結果は、このようなナノブリッジの追加が１０^２倍以上の強化を誘導することを示す。Ｓｙｍｍｅｔｒｙ ｂｒｅａｋｉｎｇ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ａ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｏｒｉｇｉｎ ｏｆ ｔｈｉｓ ａｄｄｉｔｉｏｎａｌ ｆｉｅｌｄ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ４１．（Ｓｏｎｎｅｆｒａｕｄ、Ｙ．ｅｔ ａｌ．Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｒｅａｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｕｂｒａｄｉａｎｔ、ｓｕｐｅｒｒａｄｉａｎｔ、ａｎｄ ｆａｎｏ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ｉｎ ｒｉｎｇ／ｄｉｓｋ ｐｌａｓｍｏｎｉｃ ｎａｎｏｃａｖｉｔｉｅｓ．ＡＣＳ Ｎａｎｏ ４、１６６４−１６７０（２０１０））。ＮＮＰ構造の入射波長に対する依存性を３つの種類の波長（５１４ｎｍ、６３２ｎｍ、および７８５ｎｍ；図９ｄ）で調べた。ここで、６３２ｎｍの入射波長は最も高い信号強度を示した。このような強い波長依存性は実験結果（図１０ａ）とよく一致した。

実施例３：ラマン染料の位置が調整されたナノ粒子の製造
ＤＮＡストランドを、内部ナノギャップの形成だけでなく、ラマン染料改質のためのプラットフォームの形成のために用いた。

３つの種類の異なる染料の位置で改質された、還元されたチオール化オリゴヌクレオチド（ＲＯＸ_ｇａｐ（７６０μＬ、４．３μＭ）：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−（ＲＯＸ）−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’、ＲＯＸ_{ｓｈｅｌｌ}（１３１μＬ、２４．９μＭ）：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−（ＲＯＸ）−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’、およびＲＯＸ_{ｏｕｔｅｒ}（４５６μＬ、７．１μＭ）：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−（ＲＯＸ）−５’）を、シトレート−金ナノ粒子（１ｍｌ、１．０ｎＭ）とそれぞれ混合した後、２０分間常温で反応させた。１０ｍＭ（ｐＨ７．４）の最終ホスフェート濃度として得るために、前記溶液を１００ｍＭのホスフェートバッファー（ＲＯＸ_ｇａｐ、ＲＯＸ_{ｓｈｅｌｌ}、ＲＯＸ_{ｏｕｔｅｒ}に対して、それぞれ１７６μＬ、１１３μＬ、１４６μＬ添加）でそれぞれ調整し、１０％ＳＤＳ溶液（ＲＯＸ_ｇａｐ、ＲＯＸ_{ｓｈｅｌｌ}、ＲＯＸ_{ｏｕｔｅｒ}に対して、それぞれ１．９μＬ、１．２μＬ、１．６μＬ添加）で０．１％（ｗｔ／ｖｏｌ）ＳＤＳの最終濃度に調整した。前記溶液を２０分間オービタルシェーカ（ｏｒｂｉｔａｌ ｓｈａｋｅｒ）で追加的に反応させた後、２０分ごとに２ＭのＮａＣｌ（１０ｍＭ ＰＢ、０．１％ＳＤＳ）溶液を４回に分けて添加（０．０５Ｍ２回、０．１Ｍ２回）して０．３ＭのＮａＣｌに合わせた（ＲＯＸ_ｇａｐに対して、それぞれ４８．５μＬ、４８．５μＬ、９７μＬ、９７μＬ添加；ＲＯＸ_{ｓｈｅｌｌ}に対してそれぞれ３１．１μＬ、３１．１μＬ、６２．３μＬ、６２．３μＬ添加；ＲＯＸ_{ｏｕｔｅｒ}に対してそれぞれ４０μＬ、４０μＬ、８０μＬ、８０μＬ添加）。ただし、ＲＯＸ_{ｏｕｔｅｒ}配列が添加された溶液の場合にのみ、ＲＯＸ分子と金表面の非特異的な相互反応を最小化するために、ウォーターバス（ｗａｔｅｒ ｂａｔｈ；６０℃）で約５分間加熱した。前記溶液（コロイド）を１日間常温でｖｏｒｔｅｘした。

次に、前記溶液を遠心分離し（１２，０００ｒｐｍ、１５分）、上澄液を除去した後、沈殿物を再度１０ｍＭのＰＢ溶液（ｐＨ７．４）に分散させ、この過程を２回繰り返した。最終的に、溶液を０．３ＭのＰＢＳ（１ｍｌ）に再分散させた後、粒子濃度を紫外線−可視光線分光計（ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ ｖｉｓｉｂｌｅ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ；Ａｇｉｌｅｎｔ ８４５３ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ、ＵＳＡ）で測定した。１日間、０．１ＤＴＴによって放出された上澄液の蛍光光度を用いてＤＮＡ ｌｏａｄｉｎｇ数を定量化した後（Ｓ．Ｊ．Ｈｕｒｓｔ、Ａ．Ｋ．Ｒ．Ｌｙｔｔｏｎ−Ｊｅａｎ、Ｃ．Ａ．Ｍｉｒｋｉｎ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７８、８３１３（２００６））、約１００個のＤＮＡ−改質された金ナノ粒子を下記で用いた。

すべてのラマン実験は、反転した光学顕微鏡（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｏｐｔｉｃａｌ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ）を備えたナノ−ラマン分光器（ｎａｎｏ−Ｒａｍａｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｅ；Ａｘｉｏｖｅｒｔ ２００、Ｚｅｉｓｓ）で行った（Ｄ．Ｋ．Ｌｉｍ、Ｋ．Ｓ．Ｊｅｏｎ、Ｈ．Ｍ．Ｋｉｍ、Ｊ．Ｍ．Ｎａｍ、Ｙ．Ｄ．Ｓｕｈ、Ｎａｔｕｒｅ Ｍａｔｅｒ．９、６０（２０１０））。典型的に、５０倍の対物レンズ（ＮＡ０．５）および３００μＷのｌａｓｅｒ ｐｏｗｅｒを分析全般に用いた。

サンプル溶液それぞれ（２０μＬ）を３８４ ｗｅｌｌ ｏｐｔｉｃａｌ ｂｏｔｔｏｍ ｐｌａｔｅ（Ｎｕｎｃ^ＴＭ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、ＵＳＡ）に置いた。まず、入射波長依存度（ｉｎｃｉｄｅｎｔ ｗａｖｅｌｅｎｇｔｈ ｄｅｐｅｎｄｅｎｃｅ）を、図４Ａに示されたＡｕ−ｇ（ＲＯＸ_ｇａｐ）−ＡｕＮＰプローブ（０．５ｎｍ）で分析した。ＳＥＲＳ信号は５１４．５および７８５ｎｍの励起波長（ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ ｗａｖｅｌｅｎｇｔｈｓ）では観察されなかったが、ＲＯＸの１５０４および１６４５ｃｍ^−１でラマンシフトを有する強いＳＥＲＳ信号が観察され、これは、先に報告された文献と一致するものである（（１）Ｐ．Ｚｈａｎｇ、Ｙ．Ｇｕｏ、Ｊ．ＡＭ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１３１、３８０８（２００９）；（２）Ｃ．Ｌ．Ｚａｖａｌｅｔａ、ｅｔ ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １１６、１３５１１（２００９）；（３）Ｋ．Ｆａｕｌｄｓ、Ｗ．Ｅ．Ｓｍｉｔｈ、Ｄ．Ｇｒａｈａｍ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７６、４１２（２００４））。金シェルのないＲＯＸ−改質された金ナノ粒子の場合、ＳＥＲＳスペクトルは６３２．８ｎｍの励起波長では観察されなかった。

次に、３つの種類の異なる染料−改質されたＮＮＰナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果は、信号がＮＮＰ構造内の染料の位置と密接な関連性があることを意味する（図１０ｂ、図１０ｃおよび図１０ｄ）。最も強く、再現性に優れた信号がＡｕ−ＮＮＰ（ＲＯＸ_ｇａｐ）で観察された。染料が内部ギャップから遠く位置するほど、ラマン信号は弱くなり、再現性が低下した（Ａｕ−ＮＮＰ（ＲＯＸ_ｇａｐ）＞Ａｕ−ＮＮＰ（ＲＯＸ_{ｓｈｅｌｌ}）＞Ａｕ−ＮＮＰ（ＲＯＸ_{ｏｕｔｅｒ}））。

このような実験結果から、強いＳＥＲＳ信号は、ラマン染料が内部ナノギャップに位置するＡｕ−ＮＮＰ（ＲＯＸ_ｇａｐ）から再現性あるように得られることを確認することができた。また、高い均一性と再現性のある信号の発生は、金コアの表面に均一に分布して定量的に調整された染料分子によると判断される。金コアとチオール化オリゴヌクレオチドとの間のＡｕ−Ｓ結合および前記オリゴヌクレオチドを内部に含む金シェルが、非常に安定したプローブの形成を可能とし、ラマン染料を均一に非常に狭い内部ナノギャップに限らせることが分かる。また、前記ナノ粒子は、同じ光学特性を常温で６ヶ月以上維持した。

実施例４：染料の量が調整されたナノ粒子の製造
内部ナノギャップ内のラマン染料の数を下記のような方法で調整し、これによる特性を確認し、全体的な過程を図式的に図１１ａに示した。
ポリＡ ｓｐａｃｅｒが０．３ＭのＰＢＳ条件で用いられる場合、ナノ粒子の大きさおよびＤＮＡｓｐａｃｅｒのＤＮＡ ｌｏａｄｉｎｇ特性に応じて、２０ｎｍの金ナノ粒子上のオリゴヌクレオチドのｌｏａｄｉｎｇ数が約１００個となり得ることが知られている（Ｓ．Ｊ．Ｈｕｒｓｔ、Ａ．Ｋ．Ｒ．Ｌｙｔｔｏｎ−Ｊｅａｎ、Ｃ．Ａ．Ｍｉｒｋｉｎ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７８、８３１３（２００６））。そこで、表面保護（ｓｕｒｆａｃｅ ｐｒｏｔｅｃｔｉｎｇ）配列およびＲＯＸ_ｇａｐ−改質された配列混合物（表面保護配列：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’、ＲＯＸ_ｇａｐ−改質された配列：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−（ＲＯＸ）−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’）に対して、４つの種類の異なる割合（９９：１（２５９μＬ、１２．６μＭ：２．４μＬ、１３．８μＭ）、９０：１０（２３５μＬ、１２．６μＭ：２４μＬ、１３．８μＭ）、５０：５０（１３１μＬ、１２．６μＭ：１２０μＬ、１３．８μＭ）および０：１００（０：７６０μＬ、４．３μＭ））でシトレート−金ナノ粒子（ｃｉｔｒａｔｅ−ＡｕＮＰｓ；１ｍｌ、１．０ｎＭ）にそれぞれ接合させ、２０分間、常温で反応させた。前記溶液を１０ｍＭ（ｐＨ７．４）の最終ホスフェート濃度として得るために、１００ｍＭのホスフェートバッファー（９９：１、９０：１０、５０：５０、０：１００に対して、それぞれ１２６．１μＬ、１２５．９μＬ、１２５．１μＬ、１７６μＬ添加）でそれぞれ調整し、１０％ＳＤＳ溶液（９９：１、９０：１０、５０：５０、０：１００に対して、それぞれ１．３μＬ、１．３μＬ、１．３μＬ、１．９μＬ添加）で０．１％（ｗｔ／ｖｏｌ）ＳＤＳの最終濃度に調整した。前記溶液を２０分間オービタルシェーカ（ｏｒｂｉｔａｌ ｓｈａｋｅｒ）でさらに反応させた後、２０分ごとに２ＭのＮａＣｌ（１０ｍＭ ＰＢ、０．１％ＳＤＳ）溶液を４回に分けて添加（０．０５Ｍ２回、０．１Ｍ２回）して０．３ＭのＮａＣｌに合わせた（９９：１に対してそれぞれ３４．７μＬ、３４．７μＬ、６９．４μＬ、６９．４μＬ添加；９０：１０に対してそれぞれ３４．６μＬ、３４．６μＬ、６９．３μＬ、６９．３μＬ添加；５０：５０に対してそれぞれ３４．４μＬ、３４．４μＬ、６８．８μＬ、６８．８μＬ添加；０：１００に対してそれぞれ４８．５μＬ、４８．５μＬ、９７μＬ、９７μＬ添加）。前記溶液（コロイド）を１日間常温でｖｏｒｔｅｘした。
次に、前記溶液を遠心分離し（１２，０００ｒｐｍ、１５分）、上澄液を除去した後、沈殿物を再度１０ｍＭのＰＢ溶液（ｐＨ７．４）に分散させ、この過程を２回繰り返した。最終的に、溶液を０．３ＭのＰＢＳ（１ｍｌ）に再分散させた後、粒子濃度を紫外線−可視光線分光計（ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ ｖｉｓｉｂｌｅ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ；Ａｇｉｌｅｎｔ ８４５３ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ、ＵＳＡ）で測定した。１日間、０．１ＤＴＴによって放出された上澄液の蛍光光度を用いてＤＮＡ ｌｏａｄｉｎｇ数を定量化した後（Ｓ．Ｊ．Ｈｕｒｓｔ、Ａ．Ｋ．Ｒ．Ｌｙｔｔｏｎ−Ｊｅａｎ、Ｃ．Ａ．Ｍｉｒｋｉｎ、Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．７８、８３１３（２００６））、その結果を図１１ｂに示した。図１１ｂに示されるように、意図したとおりに染料の量を調整できることを確認することができた。前記製造されたＤＮＡ−改質された金ナノ粒子を下記で用いた。

４つの種類全体の割合に対して、オリゴヌクレオチド組成物とは無関係に、高い収率（＞９５％）でＡｕ−ＮＮＰ（ＲＯＸ_ｇａｐ）ｎを製造し、すべてのＮＮＰプローブの濃度は、超純水ウォーター（ｎａｎｏｐｕｒｅ ｗａｔｅｒ；＞１８ＭＯ）で０．５ｎＭに調整した。

次に、溶液に基づいたラマン研究が前記ＮＮＰプローブに対して行われた（図１２）。染料がプローブに改質されていない場合、ラマン信号は検出されなかった。１つの染料だけがプローブに改質された場合には、小さいものの検出可能なラマン信号が観察された（図１２ａ、ｎ＝１）。プローブあたりの染料の数が増加するにつれ（ｎ＝１からｎ＝１００）、全体のスペクトル強度は定量的に増加した。特徴的なスペクトルピーク（１５０４および１６４５ｃｍ^−１）は、プローブあたりのＲＯＸ−改質されたヌクレオチドの数に比例し、これは、プローブあたりのＲＯＸ染料の数がラマン信号の強度に比例することを示す（図１２ｂ）。

前記結果により、コアとシェルとの間のプラズモンカップリング（ｐｌａｓｍｏｎｉｃ ｃｏｕｐｌｉｎｇ）による強い電磁気的強化（ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ）およびＳＥＲＳ強度は、本発明によってプローブあたりの改質された染料の数を調整することによって定量的に調整可能であることを確認することができる。

実施例５：シェルの厚さが調整されたナノ粒子の製造
ナノシェルの構造を変化させると、金属ナノ粒子のプラズモン（ｐｌａｓｍｏｎｉｃ）特性を変化させ得ることが知られている。これにより、コア−ナノギャップ−シェル構造において、シェルの厚さに応じたＳＥＲＳ信号の変化を確認するために、１２、１５、２０、２５、３０および３５ｎｍのシェルの厚さを有する粒子を次のように製造した。ＤＮＡ−改質された金ナノ粒子コア（ＲＯＸ_ｇａｐ−改質された配列：３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−（ＲＯＸ）−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’、ＤＮＡ ｌｏａｄｉｎｇ数＝１００）の周囲に金シェルを形成するために、前記ＤＮＡ−改質された金ナノ粒子（１００μＬ、０．３Ｍ ＰＢＳで１ｎＭ）を５０μＬ ｏｆ １％ＰＶＰ溶液と混合した。前記溶液を３３．６μＬ、５３μＬ、１２４．８μＬ、３０２μＬまたは４３２μＬのヒドロキシアミンヒドロクロリド（ｈｙｄｒｏｘｙｌａｍｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ）溶液（１０ｍＭ）と混合させ、それぞれ３３．６μＬ、５３μＬ、１２４．８μＬ、３０２μＬまたは４３２μＬのクロロ金酸（ｃｈｌｏｒｏａｕｒｉｃ ａｃｉｄ）溶液（５ｍＭ）と混合させた。前記反応混合物を３０分間常温でｖｏｒｔｅｘした。遠心分離後、濃度を超純水ウォーター（１８ＭＯ）で０．５ｎｍに調整した。

前記製造されたナノ粒子を用いてそれぞれ１５０４および１６４５ｃｍ^−１で分析した。１２ｎｍから２５ｎｍへとシェルの厚さが増加するにつれ、ＳＥＲＳ信号の強度は急激に増減することが分かった。しかし、シェルの厚さが＞２５ｎｍの場合、ＳＥＲＳ信号は急激に減少し始め、シェルの厚さが３５ｎｍの場合、ほぼ０に近く減少した（図１２ｃ）。

前記結果は、より大きいナノ粒子はある程度ＳＥＲＳで強い電磁気的強化（ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ）を示すとの事実と一致するものであり、＞２５ｎｍのシェルの厚さにおける電磁気的強化（ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ）の減少は、ギャップでの検出可能なラマン染料のラマン放出信号の減少に起因するもので、このような信号は検出されるために金属シェルを通過することが必要であるからである。重要なことに、シェルの厚さに応じた全体的なラマン信号変化の傾向（図１２ｃの黒色ラインおよび赤色ライン）は、計算された領域強化結果の傾向（図１２ｃの青色ライン）に沿った。

実施例６：ナノ粒子の多重検知能力の測定
本発明にかかるＮＮＰナノ構造の多重検知能力（ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｉｎｇ ｃａｐａｂｉｌｉｔｙ）を確認するために、２つの種類のラマン染料（Ｒ６Ｇ−ｇｒｅｅｎおよびＣｙ３ｄｙｅｓ）を用い、オリゴヌクレオチドに前記染料を改質させて染料をナノギャップに位置させた。

前記すべての粒子に対して、同じシェルの厚さ（〜１１ｎｍ）を用い、ＲＯＸ染料プローブに対する条件と同じ条件（濃度、実験器具など）で分析した。指紋ピーク（ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔ ｐｅａｋｓ）をＲ６Ｇ−ｇｒｅｅｎおよびＣｙ３染料のプローブに対して明確に確認し、両者の場合とも均一な時間依存スペクトルパターンを確認した。ＲＯＸ染料を含む前記３つの種類の染料の中で、ギャップ（Ａｕ−ＮＮＰ（Ｃｙ３）ｎプローブ（ｎ＝１００））内にＣｙ３染料を有するＮＮＰが最も強いＳＥＲＳ信号を示した（図１３）。

前記結果は、他の染料と比較して、ナノギャップ内のＣｙ３染料の相対的に広いラマンクロス−セクション（Ｒａｍａｎ ｃｒｏｓｓ−ｓｅｃｔｉｏｎ）および分子流動性（ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｆｌｅｘｉｂｉｌｉｔｙ）、およびＲ６Ｇ−ｇｒｅｅｎのｏｆｆ−ｒｅｓｏｎａｎｃｅ効果（Ａｂｍａｘ＝５０４ｎｍ）に起因する。内部ナノギャップ内の広い表面を利用できるため、より多くの染料が化学的または物理的に前記ギャップに改質され得（図１４ｂ）、これは、感度とともに多重検知能力を増加させることができる。

実施例７：ナノ粒子の濃度に応じたラマン信号の測定および蛍光に基づいた検出方法との比較
粒子の濃度とＳＥＲＳ強度との関係を確認するために、Ａｕ−ＮＮＰ（Ｃｙ３）_１００ ｐｒｏｂｅｓを用いて下記の実験を行った。まず、ナノ粒子を超純水ウォーター（１８ＭＯ）で複数回洗浄し、粒子濃度分布（１．９ｐＭ−２５０ｐＭ）を６５０μＷのｌａｓｅｒ ｐｏｗｅｒで分析して図１４ａに示した。１１９０、１４６０および１５８０ｃｍ^−１で現れたラマンシフトの結果は、粒子濃度とＳＥＲＳ強度との非常に優れた関連性（Ｒ２＝０．９８６２）を示した（図１４ａ）。溶液での前記検出限界（１．９ｐＭ）は、より強いｌａｓｅｒ ｐｏｗｅｒを用いるか、またはナノギャップに位置するレポーター分子の数を増加させることによって改善できる。従来制限されていた数のラマン染料が不規則的に位置し得るナノ粒子間の外部連結部分に形成されたホットスポットとは異なり、本発明にかかるＡｕ−ＮＮＰは、化学的または物理的にラマン染料分子を飽和させることができる。溶液状態でＡｕ−ＮＮＰを用いてより高い感度を達成するために、非共鳴ラマンレポーター分子（４，４’−ジピリジル）で飽和されたＡｕ−ＮＮＰを用いた。４，４’−ジピリジルで飽和されたＡｕ−ＮＮＰを製造するために、まず、オリゴヌクレオチド（３’−ＨＳ−（ＣＨ_２）_３−Ａ_１０−ＰＥＧ_１８−ＡＡＡＣＴＣＴＴＴＧＣＧＣＡＣ−５’）をＡｕＮＰコアの表面に改質させた。ＤＮＡ−ＡｕＮＰｓ（５００μＬ ｏｆ １．０ｎＭ）を１００μＬの４，４□−ジピリジル溶液（０．１Ｍ、超純水ウォーター）と混合し、混合溶液を常温で徐々に振とうしながら（ｇｅｎｔｌｅ ｓｈａｋｉｎｇ）、３日間インキュベーションした。４，４’−ジピリジルの超過分は繰り返し遠心分離（１５分、１２，０００ｒｐｍ）および０．３ＭのＰＢＳに再分散によって除去し、Ａｕシェルの形成に成功した。４，４’−ジピリジル分子がＡｕシェルの形成前に、ＡｕＮＰのコアの表面に物理吸着して飽和された。Ｃｙ３より分子の大きさが小さく高い付着量に起因して、より高い感度を提供することができる（図１０）。プローブの濃度とラマン強度との間の線形関係が観察された。極めて重要な結果として、１０ｆＭの溶液でもラマン信号が測定された（４，４’−ジピリジルの指紋ピークは１２９２ｃｍ^−１、１２３０ｃｍ^−１、および１０２２ｃｍ^−１で明確に確認された）。このような結果から、前記粒子が安定的なＳＥＲＳ信号を示し、非常に高い感度および定量的なＳＥＲＳスペクトルを示すことを確認することができる。

従来用いられていた多重ナノ構造と本発明の一実施例によるＮＮＰナノ構造を示すものである。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造方法およびその分析結果を示しており、図２ａは、シェルが形成される過程を示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造方法およびその分析結果を示しており、図２ｂは、中間体１、２、３およびナノ粒子（４、５）の可視光線分光計グラフを示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造方法およびその分析結果を示しており、図２ｃの６は、ナノ粒子の元素マッピングの結果を示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の製造過程において、各使用溶液の濃度に応じて観察されたＴＥＭイメージを示すものである。 本発明の一実施例によって製造されたＮＮＰｓ（２００個）の粒子の大きさおよび内部ナノギャップの大きさの分布を示すものである。 シトレート安定化された２０ｎｍの金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用いた場合に製造されるナノ粒子の可視光線分光計グラフおよびＴＥＭイメージを示すものである。 ＳＰＰ（ｂｉｓ（ｐ−ｓｕｌｆｏｎａｔｏｐｈｅｎｙｌ）ｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈａｎｅ ｄｅｈｙｄｒａｔｅ）が金コアに改質された場合に製造されるナノ粒子の可視光線分光計グラフおよびＴＥＭイメージを示すものである。 ｍＰＥＧ−チオールが改質された金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用いた場合に製造されるナノ粒子のＴＥＭイメージを示すものである。 Ｔ_１０−オリゴヌクレオチドが改質された金ナノ粒子をシード（ｓｅｅｄｓ）として用いた場合に製造されるナノ粒子のＴＥＭイメージを示すものである。 ＮＮＰとシリカで取り囲むナノ粒子の３Ｄ−ＦＥＭに基づいた計算結果を示しており、ａは、ＮＮＰの電磁場（ｅｌｅｃｔｒｏｍａｇｎｅｔｉｃ ｆｉｅｌｄ）分布を計算した結果（ギャップはＤＮＡとラマンレポーター分子で充填されており、粒子の周辺が水で満たされたと仮定）を示し、ｂは、ＮＮＰと同じ大きさのシリカで取り囲む金−金コア−ギャップ−シェルナノ粒子の電磁場分布を計算した結果を示す。また、ｃは、６３２．８ｎｍにおいて中心線に応じた電磁場分布を比較した結果を示し、ｄは、ＮＮＰの入射光線に対する依存性を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、図１０ａは、異なる波長におけるラマン信号を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、図１０ｂは染料がナノギャップに位置するナノ粒子のラマン結果を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、図１０ｃは染料がシェルの内部に位置するナノ粒子のラマン結果を示す。 図１０は、本発明の一実施例による、３つの種類の異なる染料で改質されたナノ粒子に対する時間依存的ラマン結果を示しており、図１０ｄはシェルの外部に位置するナノ粒子のラマン結果を示す。 図１１はラマン蛍光物質の個数を調整する方法を示すものである。 図１２は本発明の一実施例によるナノ粒子のラマン信号の結果を示すものである。図１２ａは、染料の数に応じたラマン信号の強度を示す。 図１２は本発明の一実施例によるナノ粒子のラマン信号の結果を示すものである。図１２ｂは染料の数に応じたラマン信号の強度をしめす。 図１２は本発明の一実施例によるナノ粒子のラマン信号の結果を示すものである。図１２ｃは、シェルの厚さに応じたラマン信号の強度を示す。 他の蛍光染料および非蛍光ラマンレポーターを有するＮＮＰに対するＳＥＲＳスペクトルを示すものである。 図１４は本発明の一実施例によるナノ粒子の濃度に応じたラマン信号の強度および増強因子を示しており、図１４ａは、Ｃｙ３を有するナノ粒子に対するラマン信号の強度を示す。 本発明の一実施例によるナノ粒子の濃度に応じたラマン信号の強度および増強因子を示しており、図１４ｂは、４，４’−ジピリジルを有するナノ粒子に対するラマン信号の強度を示す。 ナノ−ラマン測定（ＡＦＭ−ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｎａｎｏ−Ｒａｍａｎ ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔ）を行う方法を図式的に示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 ナノ粒子のＴａｐｐｉｎｇ−ｍｏｄｅのＡＦＭイメージを示すものである。 異なる波長における増強因子をグラフで示すものである。 異なる波長における増強因子をグラフで示すものである。 異なる波長における増強因子をグラフで示すものである。

Claims (24)

1. コア（ｃｏｒｅ）および前記コアを取り囲むシェル（ｓｈｅｌｌ）を含み、前記コアとシェルとの間にナノギャップが形成された、ナノ粒子。
2. 前記コアとシェルとがナノブリッジで連結されたことを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
3. 前記コアの直径は１ｎｍ〜９００ｎｍであることを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
4. 前記ナノギャップは０．０１ｎｍ〜１００ｎｍであることを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
5. 前記シェルの厚さは１ｎｍ〜９００ｎｍであることを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
6. 前記コアは表面プラズモン共鳴を示す金属からなることを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
7. 前記シェルは表面プラズモン共鳴を示す金属からなることを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
8. 前記コアの表面に高分子が結合されたことを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
9. 前記高分子はオリゴヌクレオチドであることを特徴とする、請求項８記載のナノ粒子。
10. 前記コアの表面にオリゴヌクレオチドが静電気的引力で付着したことを特徴とする、請求項９記載のナノ粒子。
11. 前記コアの表面に前記オリゴヌクレオチドの一方の末端が共有結合で付着し、前記オリゴヌクレオチドの一部は前記シェルに挿入されたことを特徴とする、請求項９記載のナノ粒子。
12. 前記オリゴヌクレオチドに光学活性分子が静電気的引力、共有結合で付着していることを特徴とする、請求項９記載のナノ粒子。
13. 前記光学活性分子はＣ、Ｈ、Ｏ、Ｎ、Ｓおよびこれらの組み合わせからなる群より選択される原子で構成された分子であることを特徴とする、請求項１２記載のナノ粒子。
14. 前記ナノ粒子の直径は１ｎｍ〜９９０ｎｍであることを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
15. 前記シェルの表面に有機分子、無機分子または生体分子からなる物質が共有結合または静電気的引力で結合されたことを特徴とする、請求項１記載のナノ粒子。
16. コアにオリゴヌクレオチドを改質させるステップと、
    前記オリゴヌクレオチドが改質されたコアにシェルを形成するステップとを含む、コアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子の製造方法。
17. コアに高分子をコーティングするステップと、
    前記コーティングされたコアにシェルを形成するステップとを含む、コアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子の製造方法。
18. コアにＣ、Ｈ、Ｏ、Ｎ、Ｓおよびこれらの組み合わせからなる群より選択される原子で構成された分子を改質させるステップと、
    前記分子が改質されたコアにシェルを形成するステップとを含む、コアとシェルとの間にナノギャップが形成されたナノ粒子の製造方法。
19. 請求項１ないし１４のいずれか１項記載のナノ粒子を製造するステップと、
    前記ナノ粒子のシェルの表面に検出しようとする分析物を認識可能なバイオ分子を機能化するステップと、
    前記ナノ粒子を１つ以上の分析物を含むサンプルに露出させるステップと、
    レーザ励起（ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ）およびラマン分光法を利用して１つ以上の分析物を検出および確認するステップとを含む、分析物を検出する方法。
20. 前記ラマン分光法が表面増強ラマン分光法（ＳＥＲＳ）、表面増強共鳴ラマン分光法（ＳＥＲＲＳ）ハイパーラマンおよび／または非干渉性反ストークスラマン分光法（ＣＡＲＳ）であることを特徴とする、請求項１９記載の方法。
21. 請求項１ないし１５のいずれか１項記載のナノ粒子を含む、分析物検出用キット。
22. 請求項１ないし１５のいずれか１項記載のナノ粒子を含む、分子診断チップまたは映像診断用組成物。
23. 請求項１ないし１５のいずれか１項記載のナノ粒子と、前記ナノ粒子の内部または外部にＣＴ造影剤、ＭＲＩ造影剤、光学造影剤および超音波造影剤からなる群より選択されるいずれか１つとをさらに含む、ナノ粒子。
24. 請求項１ないし１５のいずれか１項記載のナノ粒子と、遺伝子、抗体および薬物からなる群より選択されるいずれか１つとをさらに含む、ナノ粒子。

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