JP2014193882A - 腫瘍崩壊ワクシニアウイルス癌療法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】ウイルスの宿主感染能が高まり宿主細胞に対する毒性が少なくなり、および/または癌細胞感染能が高まるように、癌細胞の死滅においてさらに有効もしくは効率的になるように、非癌細胞に対する毒性もしくは損傷が少なくなるように、遺伝子産物が変異または改変された、チミジンキナーゼ欠損、GM-CSF発現性の複製能を有するワクシニアウイルスベクター、及び腫瘍を有する被験体において腫瘍崩壊または腫瘍脈管構造の崩壊を誘導するための、該ワクシニアウイルスベクターを高ウイルス濃度(少なくとも1x108ウイルス粒子)で投与する工程を提供する。
【選択図】図5
Description
本発明は、概して、腫瘍学およびウイルス学の分野に関する。特に、本発明は、ポックスウイルス、具体的には、癌治療に適した腫瘍崩壊ワクシニアウイルスを含むポックスウイルスに関する。
正常な組織恒常性は、細胞増殖および細胞死の高度に調節されたプロセスである。細胞増殖または細胞死の不均衡は癌状態に進展することがある(Solyanik et al., 1995; Stokke et al., 1997; Mumby and Walter, 1991; Natoli et al., 1998; Magi-Galluzzi et al., 1998)。例えば、子宮頚部癌、腎臓癌、肺癌、膵臓癌、結腸直腸癌、および脳癌は、結果となって現れる多くの癌の数例にしかすぎない(Erlandsson, 1998; Kolmel, 1998; Mangray and King, 1998; Mougin et al., 1998)。実際に、癌の発生率は非常に高いために、米国のみで毎年500,000人以上が癌で死亡している。
本発明は、癌を治療するための腫瘍崩壊性ポックスウイルスの使用に関する。特に、GM-CSFを発現するワクシニアウイルスを用いて、ある特定の程度の腫瘍崩壊が達成されることが説明される。別の態様において、GM-CSF発現ポックスウイルスは、ウイルスの宿主感染能が高まり、宿主細胞に対する毒性が少なくなり、および/または癌細胞感染能が高まるように遺伝子産物を変異または改変することによって、癌細胞の死滅においてさらに有効もしくは効率的になるように、および/または非癌細胞に対する毒性もしくは損傷が少なくなるように操作することができる。ある特定の改変は、ウイルスのチミジンキナーゼ(TK)機能を欠損させることである。
ポックスウイルスは、何世紀もわたって、この科の名前の由来となった痘瘡ウイルス(天然痘)が作り出す特徴的な痘痕で知られている。天然痘は、2000年以上前に中国および極東において最初に出現したらしい。幸運にも、命にかかわることが多いこのウイルスは現在、根絶されており、最後の自然大発生は1977年にソマリアで起こった。
ワクシニアウイルスは、約190Kbpの直鎖二本鎖DNAゲノムを有し、約250の遺伝子をコードする、大きく複雑なエンベロープウイルスである。ワクシニアは、天然痘を根絶したワクチンとして役割を果たしたことがよく知られている。天然痘が根絶された後に、科学者らは、遺伝子を生物組織に送達するための道具(遺伝子療法および遺伝子工学)としてワクシニアを用いることを研究してきた。ワクシニアウイルスは、宿主細胞の細胞質でしか複製しないためにDNAウイルスの中では独特のウイルスである。従って、この大きなゲノムは、ウイルスDNA複製に必要な様々な酵素およびタンパク質をコードする必要がある。複製中に、ワクシニアは、外膜が異なる数種類の感染型:細胞内成熟ビリオン(IMV)、細胞内エンベロープビリオン(IEV)、細胞結合性エンベロープビリオン(CEV)、および細胞外エンベロープビリオン(EEV)を産生する。IMVは最も豊富な感染型であり、宿主間の伝播を担っていると考えられている。他方で、CEVは細胞間の伝播において役割を果たしていると考えられおり、EEVは、宿主生物内での広範囲の播種に重要だと考えられている。
ウイルスは、免疫調節分子、例えば、インターフェロン(α、β、γ)および腫瘍壊死因子α(TNFα)によって頻繁に不活化、阻害、または一掃される(Moss, 1996)。宿主組織および炎症細胞/免疫細胞は、ウイルス感染に応答して、これらの分子を頻繁に分泌する。これらの分子は、直接的な抗ウイルス作用ならびに/または炎症細胞およびリンパ球の動員および/もしくは活性化を介した間接的な作用を有し得る。これらの免疫によるクリアランス機構は重要であるので、ウイルスは、これらのサイトカイン/ケモカインおよびインターフェロンの誘導および/または機能を阻害する遺伝子産物を発現するように進化してきた。例えば、ワクシニアウイルス(VV、および他のいくつかのポックスウイルス)は、CCケモカイン(例えば、RANTES、エオタキシン、MIP-1-α)に結合し、阻害する分泌型タンパク質vCKBP(B29R)をコードする(Alcami et al., 1998)。VV株の中には、TNFに結合し、不活化する分泌型ウイルスタンパク質(例えば、Lister A53R)を発現するものもある(Alcami et al., 1999)。ほとんどのポックスウイルス株には、インターフェロンα/βに結合し、その機能を阻害する分泌型タンパク質(例えば、B18R)、またはインターフェロンに結合し、その機能を阻害する分泌型タンパク質(B8R)をコードする遺伝子がある。vC12Lは、IL-18がIFN-γおよびNK細胞/細胞傷害性T細胞の活性化を誘導しないようにするIL-18結合タンパク質である。
1.インターフェロン調節ポリペプチド
インターフェロンα/βは、いくつかの機構によってウイルス複製をブロックする。インターフェロンγの直接的なウイルス阻害作用は弱いが、インターフェロンγは、いくつかの機構を介する細胞性免疫の強力な誘導物質である。ウイルスは、インターフェロンの抗ウイルス作用を打ち消すことができる分泌型遺伝子産物を発現するように進化してきた。例えば、ワクシニアウイルス(および他のポックスウイルス)は、インターフェロンγに結合する分泌型タンパク質B8R、およびインターフェロンα/βに結合する分泌型タンパク質B18Rをコードする(Smith et al., 1997; Symons et al., 1995; Alcami et al., 2000)。インターフェロン誘導を低下させるワクシニア遺伝子産物のさらなる例は、インターフェロンγ誘導因子であるIL-18の活性化を阻害するカスパーゼ-1阻害剤B13Rである。インターフェロン調節ポリペプチドには、B18R、他のウイルス株、例えば、ワクシニアウイルスのコペンハーゲン(Copenhagen)株ではB19Rと呼ばれることがある;B8R;B13R;vC12L;A53R;E3L、および類似の活性または特性を有する他のウイルスポリペプチドが含まれるが、これに限定されない。IFN調節ポリペプチドは、IFNα経路および/またはβ経路を優先的に調節するもの(例えば、B18R、B8R、B13R、またはvC12L)と、IFNγ経路を調節するもの(例えばB8R、B13R、またはvC12L)の包括的なカテゴリーに分けることができる。
ウイルス病原体クリアランスの主な機構は、補体依存性機構による宿主内の感染細胞または生物内のビリオンの死滅である。感染細胞は死ぬので、感染性ウイルスを産生し続けることができない。さらに、アポトーシスの間に、DNAを分解する細胞内酵素が放出される。これらの酵素は、ウイルスDNAを分解し、ウイルスを不活化することができる。アポトーシスは、活性化補体および補体膜侵襲複合体の結合を含む非常に多くの機構によって誘導され得る。ワクシニアなどのポックスウイルスは、補体を介した、ウイルスおよび/またはウイルス感染細胞のクリアランスを打ち消すことができる遺伝子産物を発現するように進化してきた。それによって、これらの遺伝子はアポトーシスを阻止し、補体依存性機構によるウイルスクリアランスを阻害し、従って、ウイルス感染の進行およびウイルスビルレンスの増加が可能になる。例えば、ワクシニアウイルス補体制御タンパク質(VCP;例えば、C21L)は、補体を介した細胞死滅および/またはウイルス不活化の阻止において役割を有する(Isaacs et al., 1992)。VCPは発現するとウイルス感染組織への白血球浸潤が減少するので、抗炎症作用も有する。補体制御ポリペプチドには、C3LまたはC21Lとも知られるVCPが含まれるが、これに限定されない。
ウイルス病原体クリアランスの様々な機構の1つが、前記のようなアポトーシス誘導による宿主内の感染細胞の死滅である。アポトーシスは、細胞内シグナル伝達カスケードを誘発する、細胞TNF受容体へのTNFおよびリンホトキシンα(LTα)の結合を含む非常に多くの機構によって誘導され得る。TNF受容体の活性化は、免疫応答および炎症応答の調節ならびにアポトーシス細胞死の誘導において機能する(Wallach et al., 1999)。
ウイルス病原体クリアランスの主な機構は、宿主内の感染細胞におけるアポトーシス誘導である。感染細胞は死ぬので、感染性ウイルスを産生し続けることができない。さらに、アポトーシスの間に、DNAを分解する細胞内酵素が放出される。これらの酵素は、ウイルスDNAを分解し、ウイルスを不活化することができる。アポトーシスは、サイトカイン(例えば、腫瘍壊死因子)の結合、細胞傷害性Tリンパ球によるグランザイム産生またはfas-リガンド結合を含む、非常に多くの機構によって誘導され得る。カスパーゼ活性化は、最後の共通するアポトーシス経路の重要な部分である。ウイルスは、fas-リガンドまたは腫瘍壊死因子(TNF)/TNF関連分子を含む、このような分子により誘導された細胞内シグナル伝達カスケードを打ち消すことができる遺伝子産物(例えば、アデノウイルスのE3 10.4/14.5、14.7遺伝子(Wold et al., 1994);アデノウイルスのE1B-19kD(Boyd et al., 1994);牛痘ウイルスに由来するcrmA;ワクシニアウイルスに由来するB13R)(Dobbelstein et al., 1996; Kettle et al., 1997))を発現するように進化してきた。これらの遺伝子産物は、アポトーシス誘導分子によるアポトーシスを阻止し、従って、抗ウイルス性のアポトーシス誘導サイトカイン、fas、グランザイムまたは他のアポトーシス刺激物質が存在するのにもかかわらずウイルス複製が進行するのを可能にする。
IL-1βは、局部に作用し、全身にも作用する生物学的に活性な因子である。IL-1βとIL-1αの間には機能上の差異がわずかしかないことが述べられている。IL-1βの非常に多くの生物学的活性は、IL-1を表している多くの異なる頭字語によって例示される。IL-1は、ブタ細胞において不活性なヒトIL-1βを除いて種特異性を示さない。IL-1の生物学的活性の一部は、ACTH(コルチコトロピン)、PGE2(プロスタグランジンE2)、PF4(血小板因子4)、CSF(コロニー刺激因子)、IL-6、およびIL-8を含む他のメディエーターの合成を誘導することによって間接的に媒介される。IL-1の合成は、TNF-α、IFN-α、IFN-β、およびIFN-γを含む他のサイトカインによって誘導されることがあり、細菌エンドトキシン、ウイルス、マイトジェン、および抗原によっても誘導されることがある。IL-1の主な生物学的活性はTヘルパー細胞の刺激であり、Tヘルパー細胞は、IL-2を分泌し、IL-2受容体を発現するために誘導される。ウイルス感染マクロファージは多量のIL-1阻害剤を産生する。IL-1阻害剤は、T細胞成熟血管を有する患者において日和見感染および細胞トランスフォーメーションを助け得る。IL-1はB細胞に直接作用して、B細胞の増殖および免疫グロブリン合成を促進する。IL-1はまた、B細胞をIL-5応答性にするプライミング因子(priming factor)の1つとして機能する。IL-1は、NK細胞および線維芽細胞、胸腺細胞、グリア芽細胞腫細胞の増殖および活性化を刺激する。
転移性腫瘍部位へのウイルス伝播は概して非効率的であり、感染固形腫瘍塊内での伝播でも概して非効率的である(Heise et al., 1999)。ウイルスは静脈内投与されても、典型的には、抗体(例えば、アデノウイルス)(Kay et al., 1997)および/または補体系(例えば、HSV)(Ikeda et al., 1999)によってクリアランスまたは不活化される。これらの免疫を介した機構に加えて、これらのウイルスの体内分布によって、大多数の静脈内ウイルスは腫瘍塊ではなく正常組織に沈着する。例えば、静脈内アデノウイルスは、最後は、主に肝臓および脾臓にある。腫瘍内に沈着した投入ウイルスは免疫不全マウスでさえ0.1%未満である(Heise et al., 1999)。従って、免疫不全マウス腫瘍モデルにおいて極めて高い相対用量を用いると中程度の抗腫瘍有効性が証明できるが、静脈内送達は極めて非効率的であり、有効性を大きく制限する。
他のウイルス免疫調節ポリペプチドは、免疫応答の他のメディエーターに結合するポリペプチド、および/または免疫応答に関連する分子経路を調節するポリペプチド、例えば、ケモカイン結合ポリペプチド、例えば、B29R(このタンパク質はワクシニアウイルスのコペンハーゲン株に存在するが、不活性な場合がある)、C23L、vCKBP、A41L、および類似の活性または特性を有するポリペプチドを含んでもよい。他のワクシニアウイルスタンパク質、例えば、ウイルスのEGF様増殖因子であるワクシニアウイルス増殖因子(例えば、C11L)もまた、本発明のある態様において変化の標的であり得る。ウイルス免疫調節因子として分類することができる他のポリペプチドには、B7R、N1L、またはポックスウイルスのビルレンスを高める活性もしくは特性を有する他のポリペプチドが含まれるが、これに限定されない。
本発明のある特定の態様において、A56RまたはK2Lをコードする核遺伝子の変化、欠失、または変異は、VV感染により誘導される細胞間融合または合胞体形成につながることがある。ワクシニアウイルスにより誘導される細胞融合は、典型的には、腫瘍内ウイルスを蔓延させるのでVVの抗腫瘍有効性を増加させる。腫瘍内ウイルスが細胞融合により蔓延すると、典型的には、中和抗体および免疫応答を回避することができる。これらの遺伝子の一方または両方において変異を有するVVでは、隣接する非感染細胞の死滅および隣接する非感染細胞への感染(すなわち、「バイスタンダー効果」)がより効率的になるので、局部抗腫瘍作用が改善され得る。
ワクシニアウイルスは、ポックスウイルス科(Poxviridae)、チョルドポックスウイルス亜科(Chordopoxvirinae)、オルトポックスウイルス属(Orthopoxvirus)のメンバーである。オルトポックスウイルス属は、チョルドポックスウイルス亜科の他のメンバーより比較的均一であり、11の異なるが近縁の種を含み、ワクシニアウイルス、痘瘡ウイルス(天然痘の原因作用物質)、牛痘ウイルス、バッファロー痘ウイルス、サル痘ウイルス、マウス痘ウイルス、および馬痘ウイルス種、ならびに他の種を含む(Moss, 1996を参照されたい)。本発明のある特定の態様は、本明細書に記載のように、オルトポックスウイルス属ならびにパラポックスウイルス属(Parapoxvirus)、アビポックスウイルス属(Avipoxvirus)、カプリポックスウイルス属(Capripoxvirus)、レポリポックスウイルス属(Leporipoxvirus)、スイポックスウイルス属(Suipoxvirus)、モルシポックスウイルス属(Molluscipoxvirus)、およびヤタポックスウイルス属(Yatapoxvirus)の他のメンバーまで及んでもよい。ポックスウイルス科の属は、概して、実験動物における中和および交差反応性を含む血清学的手段によって規定される。オルトポックスウイルス属の様々なメンバーならびにチョルドポックスウイルス亜科の他のメンバーは、宿主生物の免疫応答に対抗するために免疫調節分子を利用する。免疫調節分子の例は本明細書において提供される。従って、本明細書に記載の発明はワクシニアウイルスに限定されず、多数のウイルスに適用することができる。
ワクシニアウイルスは、参照により本明細書に組み入れられるAusubel et al., 1994の中でEarl and Mossによって述べられた方法を用いて増殖させることができる。
本発明はポックスウイルスに関する。ポックスウイルスには、ウイルスが癌細胞に対して使用するのに望ましい特性を有すると同時に、非癌細胞に対して低毒性または無毒になるように、野生型と比較して1つまたは複数の変異を持つように構築されたポックスウイルスが含まれる。下記の開示は、例として、本発明の方法および組成物を実施する様々なプロトコール、例えば、組換えDNA技術を用いて変異ウイルスを作製する方法を提供する。
本願が、ウイルスタンパク質またはウイルスポリペプチドの機能または活性について言及している場合、特に定めのない限り、生理学的条件下でのウイルスタンパク質またはウイルスポリペプチドの活性または機能について言及していると意図される。例えば、インターフェロン調節ポリペプチドは、少なくとも1種類のインターフェロンおよびその活性に直接的にまたは間接的な影響を及ぼすポリペプチドを指す。ポリペプチドは、インターフェロンの活性を、直接的にまたは間接的に、誘導、増強、上昇、増加、減弱、弱体化、低下、誘導、阻害、または遮蔽してもよい。インターフェロンに直接影響を及ぼす一例は、ある態様では、インターフェロンに特異的に結合するインターフェロン調節ポリペプチドを伴う。どの分子がこの活性を有するかは、当業者によく知られているアッセイ法を用いて確かめることができる。例えば、インターフェロンを調節する産物をコードする遺伝子またはその変異体を、インターフェロン活性が誘導されている細胞に導入し、このように遺伝子が導入された細胞と、インターフェロン活性が誘導されている細胞を比較すると、異なるインターフェロン応答レベルによって、インターフェロン調節機能を有する分子を特定することができる。
本発明のポリペプチドのアミノ酸配列変異体は、置換変異体、挿入変異体、または欠失変異体でもよい。ウイルスポリペプチドをコードする遺伝子の変異は、野生型と比較して、ポリペプチドの1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、110、120、130、140、150、160、170、180、190、200、210、220、230、240、250、275、300、325、350、375、400、425、450、475、500、またはそれ以上の非連続アミノ酸または連続アミノ酸に影響を及ぼしてもよい。ワクシニアウイルスがコードする様々なポリペプチドは、Rosel et al., 1986、Goebel et al., 1990、およびGenBankアクセッション番号NC001559を参照することによって同定することができる。これらはそれぞれ参照により本明細書に組み入れられる。
A.ネイティブタンパク質または改変タンパク質をコードするポリヌクレオチド
本発明は、タンパク質またはポリペプチドの全てまたは一部を発現することができる、細胞から単離可能なポリヌクレオチドに関する。本発明のある態様において、本発明は、ある特定の機能的なウイルスポリペプチドを欠くウイルスを生じるように特異的に変異されたウイルスゲノムに関する。このポリヌクレオチドは、ウイルスアミノ酸配列の全てまたは一部を含有するペプチドまたはポリペプチドをコードしてもよく、このようなウイルスポリペプチドをコードしないように操作されてもよく、または少なくとも1つの機能または活性が低下した、減弱した、または存在しないウイルスポリペプチドをコードするように操作されてもよい。組換えタンパク質を発現細胞から精製して、活性タンパク質を得ることができる。ワクシニアウイルスのゲノムならびにコード領域の定義は、Rosel et al., 1986; Goebel et al., 1990;および/またはGenBankアクセッション番号NC 001559に見られる。これらはそれぞれ参照により本明細書に組み入れられる。
様々な態様において、ポックスウイルスポリヌクレオチドは変化または変異誘発されてもよい。変化または変異は挿入、欠失、点変異、逆位などを含んでもよく、ある特定の経路または分子機構の調節、活性化、および/または不活化をもたらしてもよく、遺伝子産物の機能、位置、または発現の変化をもたらしてもよく、特に、遺伝子産物を機能しないようにしてもよい。ポックスウイルスの全てまたは一部をコードするポリヌクレオチドの変異誘発が用いられる場合、様々な標準的な変異誘発手段によって達成することができる(Sambrook et al., 1989)。変異は、生物の量または構造の変化をもたらすプロセスである。変異は、単一遺伝子のヌクレオチド配列、ひとまとまりの遺伝子、または染色体全体の改変を伴ってもよい。単一遺伝子の変化は、DNA配列内の1個のヌクレオチド塩基の除去、付加、または置換を伴う点変異の結果でもよく、多数のヌクレオチドの挿入または欠失を伴う変化の結果でもよい。
ポックスウイルスゲノムにおいて変異を生じさせるために、ネイティブポリペプチドおよび改変ポリペプチドは、ベクター内に含まれる核酸分子によってコードされてもよい。「ベクター」という用語は、外因性核酸配列を、複製可能な細胞に導入するために挿入することができる担体核酸分子を指すために用いられる。核酸配列は「外因性」でもよい。「外因性」は、核酸配列が、ベクターが導入される細胞にとって外来のものであること、または細胞内の配列と相同であるが、通常見られない宿主細胞核酸内の位置にあることを意味する。ベクターには、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルス、および植物ウイルス)、ならびに人工染色体(例えば、YACs)が含まれる。当業者であれば、Sambrook et al., (1989)およびAusubel et al., 1994に記載の標準的な組換え技法によってベクターを構築するのに十分な装備を持っているだろう。Sambrook et al., (1989)およびAusubel et al., 1994は両方とも参照により本明細書に組み入れられる。ベクターは、改変ゲロニンなどの改変ポリペプチドをコードすることに加えて、タグまたは標的化分子などの非改変ポリペプチド配列をコードしてもよい。このような融合タンパク質をコードする有用なベクターには、pINベクター(Inouye et al., 1985)、ヒスチジン配列をコードするベクター、ならびに後の精製および分離または切断のためのグルタチオンS-トランスフェラーゼ(GST)可溶性融合タンパク質の作製において用いられるpGEXベクターが含まれる。標的化分子は、改変ポリペプチドを、ある特定の器官、組織、細胞、または被験体内にある他の位置に向ける分子である。
「プロモーター」は、転写の開始および速度を制御する核酸配列の領域である制御配列である。プロモーターは、RNAポリメラーゼおよび他の転写因子などの調節タンパク質および調節分子が結合し得る遺伝因子を含有してもよい。「機能的に配置された」「機能的に連結された」、「制御下にある」、および「転写制御下にある」という句は、プロモーターが、核酸配列の転写開始および/または発現を制御するために、核酸配列に対して正しい機能的な位置および/または方向にあることを意味する。プロモーターは「エンハンサー」と共に用いられてもよく、用いられなくてもよい。エンハンサーは、核酸配列の転写活性化に関与するシス作用調節配列を指す。
コード配列が効率的に翻訳されるには、ある特定の開始シグナルも必要とされる場合がある。これらのシグナルには、ATG開始コドンまたは隣接配列が含まれる。ATG開始コドンを含む外因性翻訳制御シグナルを設けることが必要な場合がある。当業者であれば、このことを容易に決定し、必要なシグナルを設けることができるだろう。インサート全体の翻訳を確実にするために、開始コドンが望ましいコード配列の読み枠と「インフレーム」でなければならないことは周知である。外因性の翻訳制御シグナルおよび開始コドンは天然のものでもよく、合成のものでもよい。発現の効率は、適切な転写エンハンサーエレメントの含有によって増強することができる。
ベクターは、マルチクローニングサイト(NCS)を含んでもよい。マルチクローニングサイトは、複数の制限酵素部位を含有する核酸領域であり、どの制限酵素部位も、ベクターを消化するために標準的な組換え技術と共に使用することができる(参照により本明細書に組み入れられる、Carbonelli et al., 1999, Levenson et al., 1998、およびCocea, 1997を参照されたい)。「制限酵素消化」は、核酸分子の特定の位置でしか機能しない酵素による核酸分子の触媒的切断を指す。これらの制限酵素の多くは市販されている。このような酵素の使用は当業者に広く理解されている。往々にして、外因性配列がベクターに連結できるように、MCS内で切断する制限酵素を用いて、ベクターは直線化または断片化される。「連結」は、2つの核酸断片間でホスホジエステル結合を形成するプロセスを指す。2つの核酸断片は互いに連続してもよく、連続してなくてもよい。制限酵素および連結反応を伴う技法は組換え技術の当業者に周知である。
ほとんどの転写された真核生物RNA分子は、一次転写物からイントロンを除去するRNAスプライシングを受ける。転写物を適切にプロセシングして、タンパク質を発現するために、ゲノム真核生物配列を含有するベクターはドナースプライシング部位および/またはアクセプタースプライシング部位と必要とする場合がある(参照により本明細書に組み入れられる、Chandler et al., 1997を参照されたい)。
本発明のベクターまたは構築物は、一般的に、少なくとも1つの終結シグナルを含む。「終結シグナル」または「ターミネーター」は、RNAポリメラーゼによるRNA転写の特異的な終結に関与するDNA配列からなる。従って、ある特定の態様において、RNA転写物の生成を終わらせる終結シグナルが意図される。望ましいメッセージレベルを得るために、ターミネーターがインビボで必要な場合がある。
発現、特に、真核生物での発現において、典型的には、転写物の適切なポリアデニル化をもたらすためにポリアデニル化シグナルが組み込まれる。ポリアデニル化シグナルがどういったものであるかは本発明の実施の成功に重要だと考えられておらず、および/またはこのような任意の配列を使用することができる。好ましい態様には、便利な、および/または様々な標的細胞において良好に機能することが知られている、SV40ポリアデニル化シグナルおよび/またはウシ成長ホルモンポリアデニル化シグナルが含まれる。ポリアデニル化は転写の安定性を高めてもよく、細胞質への輸送を容易にしてもよい。
宿主細胞においてベクターを増殖させるために、ベクターは、1つまたは複数の複製起点部位(しばしば「ori」と呼ばれる)を含有してもよい。複製起点部位は、複製が開始する特定の核酸配列である。または、宿主細胞が酵母であれば、自己複製配列(ARS)を使用することができる。
本発明のある特定の態様において、本発明の核酸構築物を含有する細胞は、発現ベクター内にマーカーを含めることによってインビトロまたはインビボで同定することができる。このようなマーカーは同定可能な変化を細胞に付与し、それにより、発現ベクターを含有する細胞を容易に同定できるようになる。一般的に、選択マーカーは、選択を可能にする特性を付与するものである。正の選択マーカーは、マーカーが存在すると細胞の選択が可能になるものであるのに対して、負の選択マーカーは、マーカーが存在すると細胞の選択が妨げられるものである。正の選択マーカーの一例は薬物耐性マーカーである。
本明細書で使用する「細胞」、「細胞株」、および「細胞培養」という用語は同義に使用することができる。これらの全ての用語は、任意のおよび全ての次世代である子孫も含む。全ての子孫は、故意の変異または故意でない変異のために同一でなくてもよいことが理解される。異種核酸配列の発現という状況において、「宿主細胞」は原核細胞または真核細胞を指し、ベクターを複製することができる、および/またはベクターがコードする異種遺伝子を発現することができる任意の形質転換可能な生物を含む。宿主細胞は、ベクターまたはウイルスのレシピエントとして使用することができ、ベクターまたはウイルスのレシピエントとして用いられてきた(外因性ポリペプチドを発現しなければ、ベクターとしての資格がない)。宿主細胞には、改変タンパク質コード配列などの外因性核酸が宿主細胞に移動または導入されるプロセスを指す「トランスフェクト」または「形質転換」がなされてもよい。形質転換細胞は、初代対象細胞およびその子孫を含む。
本発明の組成物を発現させる適切な核酸送達法は、本明細書に記載または当業者に公知のように、核酸(例えば、ウイルスベクターおよび非ウイルスベクターを含むDNA)を細胞小器官、細胞、組織または生物に導入することができる実質的に任意の方法を含むと考えられている。このような方法には、DNAの直接送達、例えば、マイクロインジェクション(参照により本明細書に組み入れられる、Harland and Weintraub,1985;米国特許第5,789,215号)を含む、注入(米国特許第5,994,624号、同第5,981,274号、同第5,945,100号、同第5,780,448号、同第5,736,524号、同第5,702,932号、同第5,656,610号、同第5,589,466号、同第5,580,859号、それぞれ参照により本明細書に組み入れられる);エレクトロポレーション(参照により本明細書に組み入れられる、米国特許第5,384,253号);リン酸カルシウム沈殿(Graham and Van Der Eb, 1973; Chen and Okayama, 1987; Rippe et al., 1990);DEAE-デキストラン後のポリエチレングリコールの使用(Gopal, 1985);ダイレクトソニックローディング(direct sonic loading)(Fechheimer et al., 1987);リポソームを介したトランスフェクション(Nicolau and Sene, 1982; Fraley et al., 1979; Nicolau et al., 1987; Wong et al., 1980; Kaneda et al., 1989; Kato et al., 1991);微粒子銃(PCT出願WO94/09699およびWO95/06128;米国特許第5,610,042号;同第5,322,783号、同第5,563,055号、同第5,550,318号、同第5,538,877号、および同第5,538,880号。それぞれ参照により本明細書に組み入れられる);炭化ケイ素繊維を用いた攪拌(Kaeppler et al., 1990;米国特許第5,302,523号および同第5,464,765号。それぞれ参照により本明細書に組み入れられる);アグロバクテリウム(Agrobacterium)を介した形質転換(米国特許第5,591,616号および同第5,563,055号。それぞれ参照により本明細書に組み入れられる);またはPEGを介したプロトプラスト形質転換(Omirulleh et al., 1993;米国特許第4,684,611号および同第4,952,500号。それぞれ参照により本明細書に組み入れられる);乾燥/阻害を介したDNA取り込み(Potrykus et al., 1985)によるDNAの直接送達が含まれるが、これに限定されない。これらの方法などの技法を適用することによって、細胞小器官、細胞、組織、または生物を、安定してまたは一過的に形質転換することができる。
ある特定の態様において、本発明は、核酸、アミノ酸分子、例えば、ペプチド、または別の低分子化合物に関連する1種類または複数の種類の脂質を含む組成物に関する。本明細書において議論される任意の態様において、前記の分子は、ポックスウイルスポリペプチドまたはポックスウイルスポリペプチドモジュレーター、例えば、ポックスウイルスポリペプチドの全てもしくは一部をコードする核酸、またはポックスウイルスポリペプチドモジュレーターの全てもしくは一部をコードするアミノ酸分子でもよい。脂質は、特徴として、水不溶性であり、有機溶媒で抽出可能な物質である。本明細書に具体的に記載されたもの以外の化合物が当業者により脂質と理解されており、本発明の組成物および方法に包含される。脂質成分および非脂質は互いに共有結合により結合してもよく、非共有結合により結合してもよい。
本発明の一態様において、変化したポックスウイルス、例えば、ワクシニアウイルスを送達することによって、過剰増殖性疾患、例えば、癌を治療する方法が意図される。治療が意図される癌の例には、肝臓癌、肺癌、頭頚部癌、乳癌、膵臓癌、前立腺癌、腎臓癌、骨癌、精巣癌、子宮頚癌、胃腸癌、リンパ腫、肺の新生物発生前の病変、結腸癌、黒色腫、膀胱癌、および治療され得る他の任意の癌または腫瘍が含まれる。
本発明の方法および組成物を用いて腫瘍崩壊を誘導するために、腫瘍とGM-CSF発現ポックスウイルスを接触させる。当然、投与経路は、病変の位置および種類によって変わり、例えば、皮内投与、経皮投与、非経口投与、静脈内投与、筋肉内投与、鼻腔内投与、皮下投与、局所投与(例えば、腫瘍の近くへの投与、特に、腫瘍の脈管構造または腫瘍の隣接する脈管構造の近くへの投与)、経皮的投与、気管内投与、腹腔内投与、動脈内投与、膀胱内投与、腫瘍内投与、吸入、灌流、洗浄、ならびに経口投与および経口製剤を含む。
本発明においてポックスウイルスゲノムの全てまたは一部をコードする発現構築物またはウイルスを癌または腫瘍細胞に送達するのに好ましい方法は、腫瘍内注射による方法である。しかしながら、腫瘍内注射の代わりに、本明細書において開示される薬学的組成物を、米国特許第5,543,158号;米国特許第5,641,515号および米国特許第5,399,363号(それぞれ全体が参照により本明細書に特に組み入れられる)に記載のように非経口的投与、静脈内投与、皮内投与、筋肉内投与、経皮投与、さらには腹腔内投与することができる。
本発明の化合物および方法は、癌を含む過剰増殖性の疾患/状態の状況において使用することができる。GM-CSF発現ワクシニアウイルスなどの本発明の組成物を用いた治療の有効性を高めるために、これらの組成物と、前記の疾患および状態の治療において有効な他の薬剤を組み合わせることが望ましい場合がある。例えば、癌の治療は、本発明の治療用化合物および他の抗癌療法、例えば、抗癌剤または外科手術を用いて実施されてもよい。
癌療法は、化学物質に基づく治療および放射線に基づく両方の治療を用いた様々な併用療法も含む。併用化学療法には、例えば、シスプラチン(CDDP)、カルボプラチン、プロカルバジン、メクロレタミン、シクロホスファミド、カンプトテシン、イホスファミド、メルファラン、クロランブシル、ブスルファン、ニトロソ尿素、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ブレオマイシン、プリコマイシン(plicomycin)、マイトマイシン、エトポシド(VP16)、タモキシフェン、ラロキシフェン、エストロゲン受容体結合剤、タキソール、ゲムシタビエン(gemcitabien)、ナベルビン、ファルネシル-タンパク質トランスフェラーゼ阻害剤、トランスプラチン(transplatinum)、5-フルオロウラシル、ビンクリスチン、ビンブラスチンおよびメトトレキセート、テマゾロミド(Temazolomide)(DTICの水性型)、または前記の任意の類似体もしくは誘導変異体が含まれる。化学療法と生物学的療法の併用は生物化学療法として知られる。
DNA損傷を引き起こし、広範に用いられてきた他の因子には、γ線、X線、および/または腫瘍細胞への放射性同位体の指向性送達と一般に知られているものが含まれる。DNA損傷因子の他の形態は、マイクロ波および紫外線なども意図される。これらの因子は全て、DNA、DNA前駆体、DNAの複製および修復、ならびに染色体の集合および維持に広範囲の損傷をもたらす可能性が最も高い。X線の線量の範囲は、長期間(3〜4週間)では1日線量50〜200レントゲンから1回線量2000〜6000レントゲンに及ぶ。放射性同位体の線量の範囲は多種多様であり、同位体半減期、発せられる放射線の強度およびタイプ、ならびに新生細胞による取り込みに左右される。
免疫療法は、一般的に、癌細胞を標的化および破壊するために、免疫エフェクター細胞および分子を使用することに頼っている。免疫エフェクターは、例えば、腫瘍細胞表面上の、あるマーカーに特異的な抗体でよい。抗体は単独で療法のエフェクターとして役立ってもよく、細胞を実際に死滅させるように他の細胞を動員してもよい。抗体はまた、薬物または毒素(化学療法剤、放射性核種、リシンA鎖、コレラ毒素、百日咳毒素など)と結合され、単に、標的化薬剤として役立ってもよい。または、エフェクターは、腫瘍細胞標的と直接的または間接的に相互作用する表面分子を有するリンパ球でもよい。様々なエフェクター細胞には、細胞傷害性T細胞およびNK細胞が含まれる。治療モダリティーの組み合わせ、すなわち、直接的な細胞傷害性活性と、ある特定のポックスウイルスポリペプチドの阻害または低下を用いると、癌治療において治療上の利益が得られるだろう。
癌の受動的免疫療法のための多数の異なるアプローチが存在する。これらは、以下に大きく分けることができる:
抗体のみの注射;毒素または化学療法剤と結合した抗体の注射;放射性同位体と結合した抗体の注射;抗イディオタイプ抗体の注射;最後に、骨髄からの腫瘍細胞の一掃。
能動的免疫療法では、抗原性のペプチド、ポリペプチド、もしくはタンパク質、または自己由来もしくは同種異系の腫瘍細胞組成物、または「ワクチン」が、一般的に別個の細菌アジュバントと共に投与される(Ravindranath and Morton, 1991; Morton et al., 1992; Mitchell et al., 1990; Mitchell et al., 1993)。黒色腫免疫療法では、高IgM応答を誘発している患者は、IgM抗体を誘発していない患者または低IgM抗体を誘発している患者より長く生存することが多い(Morton et al., 1992)。IgM抗体は、多くの場合、一過的抗体であり、この規則に対する例外は、抗ガングリオシド抗体または抗炭水化物抗体であるように見られる。
養子免疫治療では、患者の循環リンパ球または腫瘍浸潤リンパ球がインビトロで単離され、リンホカイン、例えば、IL-2によって活性化されるか、または腫瘍壊死のための遺伝子が導入され、再投与される(Rosenberg et al., 1988; 1989)。これを達成するために、動物またはヒト患者には、免疫学的に有効量の活性化リンパ球と、アジュバントが組み込まれた本明細書に記載の抗原性ペプチド組成物が投与される。活性化リンパ球は、最も好ましくは、血液または腫瘍試料から前もって単離され、インビトロで活性化(または「増殖された」)患者自身の細胞である。この形の免疫療法は黒色腫および腎臓癌腫の後退のいくつかの症例をもたらしたが、奏功した者の割合は、奏功しなかった者と比較して少なかった。
さらに別の態様では、二次的治療は、弱毒化ポックスウイルスが投与される前、弱毒化ポックスウイルスが投与された後、または弱毒化ポックスウイルスが投与されると同時に、治療用ポリヌクレオチドが投与される遺伝子療法である。ポックスウイルスと、以下の遺伝子産物の1つをコードするベクターとの送達には、標的組織に対して、組み合わされた抗癌作用がある。または、ポックスウイルスは、治療用ポリヌクレオチドを含むウイルスベクターとして操作することができる。本発明には様々なタンパク質が包含され、一部を以下で説明する。表7は、本発明と組み合わせた、ある形の遺伝子療法の標的となり得る様々な遺伝子を示す。
細胞増殖を誘導するタンパク質は、機能に応じて様々なカテゴリーにさらに分類される。これらのタンパク質の全ての共通点は、細胞増殖を調節する能力である。例えば、PDGF の一形態であるsis癌遺伝子は分泌型増殖因子である。癌遺伝子は、増殖因子をコードする遺伝子から稀にしか生じず、現在、sisは、唯一知られている天然の発癌性増殖因子である。本発明の1つの態様において、ある特定の細胞増殖誘導物質の発現を阻止するために、細胞増殖誘導物質に対するアンチセンスmRNAが用いられると意図される。
腫瘍サプレッサー癌遺伝子は過剰な細胞増殖を阻害するように機能する。これらの遺伝子が不活化すると、その阻害活性が破壊され、無秩序な増殖が起こる。腫瘍サプレッサーp53、p16、およびC-CAMを以下で説明する。
アポトーシスすなわちプログラム細胞死は、正常な胚発生、成人組織における恒常性の維持、および発癌の抑制に必須のプロセスである(Kerr et al., 1972)。Bcl-2タンパク質ファミリーおよびICE様プロテアーゼが、他の系におけるアポトーシスの重要な制御因子およびエフェクターであることが証明されている。Bcl-2タンパク質は濾胞性リンパ腫に関連して発見され、多様なアポトーシス刺激に応答したアポトーシスの制御および細胞生存の上昇において顕著な役割を果たしている(Bakhshi et al., 1985; Cleary and Sklar, 1985; Cleary et al., 1986; Tsujimoto et al., 1985; Tsujimoto and Croce, 1986)。進化上保存されたBcl-2タンパク質は、現在、デスアゴニストまたはデスアンタゴニストとして分類することができる、関連タンパク質ファミリーのメンバーであると認識されている。
癌を有する人の約60%が何らかのタイプの外科手術を受ける。外科手術には、予防的手術、診断的手術または進行期分類のための手術、治癒的手術、および待期的手術が含まれる。治癒的手術は、本発明の治療、化学療法、放射線療法、ホルモン療法、遺伝子治療、免疫療法、および/または代替治療などの他の治療と併用することができる癌治療である。
治療の治療的有効性を改善するために、他の薬剤を本発明と併用できることが意図される。これらのさらなる薬剤には、免疫調節剤、細胞表面受容体およびGAP結合のアップレギュレーションに影響を及ぼす薬剤、細胞分裂阻害剤および分化剤、細胞接着阻害剤、アポトーシス誘導物質に対する過剰増殖細胞の感受性を増加させる薬剤、または他の生物学的薬剤が含まれる。免疫調節剤には、腫瘍壊死因子;インターフェロンα、β、およびγ;IL-2および他のサイトカイン;F42Kおよび他のサイトカイン類似体;またはMIP-1、MIP-1.β、MCP-1、RANTES、および他のケモカインが含まれる。Fas/Fasリガンド、DR4またはDR5/TRAIL(Apo-2リガンド)などの細胞表面受容体またはそのリガンドのアップレギュレーションは、過剰増殖細胞に対するオートクライン効果またはパラクライン効果を確立することによって本発明のアポトーシス誘導能を増強することがさらに意図される。GAP結合の数を増やすことによって細胞内シグナル伝達を増加させると、隣接する過剰増殖細胞集団に対する抗過剰増殖作用が高まるだろう。他の態様では、治療の抗過剰増殖有効性を改善するために、本発明と細胞分裂阻害剤または分化剤を併用することができる。細胞接着阻害剤は、本発明の有効性を改善すると意図される。細胞接着阻害剤の例は、局所接着キナーゼ(FAKs)阻害剤およびロバスタチンである。治療の有効性を改善するために、本発明と、抗体c225などのアポトーシスに対する過剰増殖細胞の感受性を増加させる他の薬剤を併用できることがさらに意図される。
表-US-00007 表 6 癌遺伝子 遺伝子 起源 ヒト疾患 機能 増殖因子 HST/KS トランスフェクション FGFファミリーメンバー INT-2 MMTVプロモーターFGFファミリー挿入メンバー INTI/WNTI MMTVプロモーター因子様 挿入SIS サル肉腫PDGF Bウイルス 受容体型チロシンキナーゼ ERBB/HER トリ増幅、EGF/TGF-α/赤血球の欠失した扁平上皮癌 アンフィレギュリン/赤芽球症細胞癌;ヘタセルリンウイルス;ALV神経膠芽腫受容体プロモーター挿入;増幅されたヒト腫瘍ERBB-2/NEU/トランスフェクトされ増幅された乳癌、ラット由来HER-2により制御 卵巣癌、胃癌 NDF/神経膠芽腫の癌 ヘレグリンおよびEGF関連因子 FMS SMネコCSF-1受容体肉腫ウイルス KIT HZネコMGF/スチール肉腫ウイルス受容体 造血 TRK トランスフェクション NGF(ヒト由来神経成長因子) 結腸癌受容体 MET トランスフェクション スキャッター因子/ヒトHGF受容体から骨肉腫から RET 転座 散発性甲状腺 オーファン(Orphan)受容体および点 癌;家族性 チロシン突然変異 髄様甲状腺 キナーゼ 癌;多発性内分泌新生物2Aおよび2B ROS URII トリ オーファン受容体肉腫ウイルス チロシンキナーゼ PDGF受容体 転座 慢性 TEL(ETS様 骨髄単球性 転写 白血病 因子)/PDGF受容体遺伝子融合体
以下の実施例は、本発明の様々な態様を例示する目的で示され、本発明を限定するものであると、いかようにも意図されない。当業者であれば、目的を実施し、述べられた目標および利点、ならびに本明細書に内在する目的、目標、および利点を得るために、本発明は良好に適合されることを容易に理解するだろう。本実施例は、本明細書に記載の方法と共に、好ましい態様を現在代表するものであり、例示であり、本発明の範囲を限定するものと意図されない。当業者であれば、特許請求の範囲によって定義される、本発明の範囲内の変更および本発明の精神に包含される他の使用を考え付くだろう。
肝癌の治療
A.目的
(1)腫瘍内(IT)注射によって投与されたJX-594の最大耐用量(MTD)および/または最大投与可能用量(MFD)を求めること。(2)I.T.注射によって投与されたJX-594の安全性を評価すること。(3)I.T.注射によって投与されたJX-594の複製/薬物動態を評価すること。(4)I.T.注射後のJX-594および腫瘍関連抗原に対する免疫応答(注射部位および非注射部位での炎症性浸潤の増加;中和抗体形成;サイトカイン応答;ならびに腫瘍およびウイルスに特異的なTリンパ球誘導)を評価すること。(5)注射部位および非注射部位へのI.T.注射によって投与されたJX-594の抗腫瘍有効性を評価すること。
これは、イメージガイド下で注射可能な表在性腫瘍結節を有する肝癌患者における第1相非盲検用量漸増試験である。難治性腫瘍を有する患者は、用量が連続して漸増する案で、以下の4種類の用量レベルの1治療を受ける:
コホート1:1x108pfu、コホート2:3x108pfu、コホート3:1x109pfu、コホート4:3x109pfu。
1. 任意の期間のグレード4毒性、
2. 5日超続く、グレード3毒性(インフルエンザ様症状:疲労、悪心、筋肉痛、発熱を除く)。
この試験において起こる毒性の重篤度の割り当てには、米国立癌研究所の共通毒性基準が用いられる。
サイクル1の間に、治験医師(investigator)は対照腫瘍部位を決定する。対照腫瘍は、標的腫瘍の肝葉以外の肝葉に位置する明瞭な腫瘍結節で、かつ標的腫瘍のリンパドレナージ(lymphatic drainage)の外でなければならない。従って、対照腫瘍は、肝臓の左葉および右葉に別々に位置する。しかしながら、腫瘍結節が肝臓の片側の範囲内に存在するのであれば、対照腫瘍は、JX-594が注射されていない腫瘍結節でもよい。しかしながら、腫瘍が広範囲にわたる単一の結節を有するのであれば、対照腫瘍は設けられなくてもよい。この対照腫瘍は、JX-594を用いて治療された腫瘍と同じように評価される。これにより、腫瘍成長および局部毒性/活性に対する対照の影響の評価が可能になる。
この試験では非注射腫瘍に対して奏功が認められることがある。この現象は、このような患者による以前のJX-594第1相試験において報告されている。この作用の機構を理解する必要がある。可能性として、注射腫瘍からのウイルスの伝播および/または腫瘍特異的な細胞傷害性の誘導(Tリンパ球(CTL)の腫瘍浸潤およびそれに続く細胞傷害性Tリンパ球を介した腫瘍破壊)が挙げられる。この作用の機構をさらに深く理解するために、治験医師は以下のことを行う。非注射腫瘍に対して臨床的な奏功が認められるのであれば、注射腫瘍と同じ採取時点でコア生検または穿刺吸引が行われる(付録Aを参照されたい;非標的腫瘍の全生検は2つの部位を超えない)。非注射腫瘍からの標本は、注射腫瘍から得られた材料に用いられるものと同じ方法で分析される。
1.選択基準
典型的には、患者は全員、以下の基準:(1)年齢18歳以上、(2)イメージガイド下で注射可能な表在性腫瘍(<10cm最大直径)を有する、臨床的または組織学的に確認された(原発性または転移性)肝癌患者。腫瘍は、標準的な療法にもかかわらず進行している(すなわち、標準的な療法に対して難治性である)、(3)標準的な治療、例えば、外科的切除、動脈内化学塞栓術、化学療法、および放射線療法にもかかわらず腫瘍が進行している、(4)患者のカルノフスキー・パフォーマンス・ステータス(KPS)が>70、(5)患者の生存期間が少なくとも16週間と予測されている、(6)患者が性的に活発であれば、患者には、JX-594による治療後3ヶ月間、避妊法を使う意思がある、(7)患者には、書面によるインフォームドコンセントを理解する能力および書面によるインフォームドコンセントに署名する意思がある、(8)患者には、試験手順およびフォローアップ検査を遵守する能力がある、(9)患者には、十分な骨髄機能:WBC>3,000細胞/mm3、ANC>1,500細胞/mm3、ヘモグロビン>10g/dL、および血小板数>75,000細胞/mm3がある、(10)患者には、十分な腎機能:血清クレアチニン<1.5mg/dLがある、(11)患者には、十分な肝機能:血清AST(<2.5のULN)、ALT(<2.5のULN)、総ビリルビン(<2.0mg/dL)がある、を全て満たしている。原発性肺癌の場合、患者は、チャイルドピュー(Child-Pugh)分類でAまたはBに分類されていなければならない。
患者は、以下の除外基準:(1)妊娠中または授乳中、(2)HIV患者、(3)患者がチャイルドピュー分類でCに分類されている;AまたはBに分類された患者のうち(原発性肝臓癌の場合)、患者の総ビリルビンが>2mg/dLである、(4)患者には、新しい治験薬による治療には高リスクと思われる、臨床的に意義のある活動性感染症または管理されていない医学的状態(例えば、呼吸器、神経、心血管、胃腸、泌尿生殖器系)がある、(5)患者には基礎疾患および/または服薬により重大な免疫不全症があるか、重大な免疫不全症になった家族がいる、(6)患者には、全身療法を必要とする湿疹になった病歴がある、(7)患者には、患者が試験に登録する前、6ヶ月以内に、MI、不安定狭心症、うっ血性心不全、心筋炎、不整脈を含む不安定心疾患と診断され、薬を必要としていたか、または心臓の状態で他の任意の臨床的に意義のある状態がある、(8)試験薬による治療の前、4週以内に、患者には、全身コルチコステロイドまたは他の任意の免疫抑制薬が与えられた、(9)患者が試験に登録する前、4週以内に、患者に、他の任意の治験薬試験、放射線療法、化学療法または外科手術が行われた、(10)書面によるインフォームドコンセントを与えることができない、または書面によるインフォームドコンセントを与える意思が無い、(11)患者には、試験薬の成分に対する過敏性がある、をいずれも満たしてはならない。
試験手順をまとめた表を、観察および試験のスケジュールに示した。通常、予定日から+1/-1日の開きが許されることがある。週末および休日は数に入れない。
これはウイルスを用いた臨床試験であり、患者と話し合いをしながら、試験が進む。参加を希望するどの患者も、書面によるインフォームドコンセントを与えなければならない。インフォームドコンセントに署名した後に、各患者は、試験開始前、14日以内に以下の評価を行う。
臨床での評価:身体検査(全身)、体重およびバイタルサイン(温度、脈拍数、および血圧)、カルノフスキー・パフォーマンス・スコア、併用療法の特定、標的腫瘍の検査および評価、標的腫瘍の測定(n=1〜3);さらなる非注射腫瘍の測定(n=1〜3)、標的腫瘍の生検。
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)、2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.サイトカイン(GM-CSFを含む)、5.中和抗体価、6.ウイルスゲノム(Q-PCR)。
1.pfuについての尿検査、2.pfuについて咽頭スワブ
1.8章に記載のJX-594の投与
1.身体検査。バイタルサインを6時間にわたって1時間に2回(30分および60分)測定し、その後は日常的に測定する。2.以下の時点:治療の1時間後および3時後に、サイトカイン分析のために採血を行う。3.以下の時点:治療開始の10〜15分後、25〜35分後、および4〜6時間後に、循環JX-594ゲノムを測定するために採血を行う。4.治療の3〜4時間後に、ウイルス散布についての尿試料および咽頭スワブ試料を採取する。5.副作用および併発症の記録。
検査室での評価:血液-
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)、2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.サイトカイン(GM-CSFを含む)、5.中和抗体価、6.ウイルスゲノム(Q-PCR)。
1.pfuについての尿検査、2.pfuについて咽頭スワブ。
副作用および併発症の記録。
臨床での評価において副作用の疑いがある時には腹部CTスキャン。
臨床での評価-
副作用および併発症の記録。
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)、2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.ウイルスゲノム(Q-PCR)。
臨床での評価-
身体検査、CTスキャン;標的腫瘍の生検(生検は、炎症、壊死または収縮などを含む有意な変化を示した、1個または2個までの非注射腫瘍にも行う)。生検は、患者状態のPIの主観評価によって、サイクル1および2でのみ行う。副作用および併発症の記録。
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)、2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.サイトカイン(GM-CSFを含む)、5.中和抗体価、6.ウイルスゲノム(Q-PCR)。
1.pfuについての尿検査、2.pfuについて咽頭スワブ、3.壊死が起こった時には壊死の穿刺吸引(サイクル1および2でのみ行う)。
臨床での評価-
身体検査。
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.ウイルスゲノム(Q-PCR)。
1.pfuについての尿検査、2.pfuについて咽頭スワブ。
臨床での評価-
1.身体検査、2.画像に基づく評価:腹部CTスキャン(サイクル2および4でのみ行う)、3.標的腫瘍の測定(n=1〜3);さらなる非注射腫瘍の測定(n=1〜3)、4.標的腫瘍の生検(生検は、炎症、壊死または収縮などを含む有意な変化を示した、1個または2個までの非注射腫瘍にも行う)、5.副作用および併発症の記録、6.22日目は、次のサイクルの1日目の前の日として用いてもよい。22日目と次のサイクルの1日目の間には1週間まで間隔があいてもよい。
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)、2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.中和抗体、5.ウイルスゲノム(Q-PCR)、6.腫瘍タイプに応じて、スクリーニング検査において適切な腫瘍マーカー(CA125、CEA、AFP、PSA、CA19-9など)の検査;マーカーが高い場合には、この試験は各サイクルの22日目に行う。
1.pfuについての尿検査、2.pfuについて咽頭スワブ。
臨床での評価-
身体検査、ならびに副作用および併発症の記録。
1.日常的な血液検査(血小板数および白血球百分率を含む)、2.血清化学検査:ナトリウム、カリウム、BUN、クレアチニン、ALT、AST、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン、LDH、カルシウム、リン、マグネシウム、ランダムグルコース、総タンパク質、アルブミンおよび尿酸、3.凝固試験:プロトロンビン時間(PT)、部分トロンボプラスチン時間(PTT)、および国際標準比(INR);フィブリノゲン、4.ウイルスゲノム(Q-PCR)。
1.サイクル2の22日目に、注射部位腫瘍の最大直径が>25%増加しなかった患者はサイクル3〜4に進む。2.サイクル2の22日目に、注射部位腫瘍の最大直径が25〜50%増加した患者はサイクル3〜4に進む場合がある。3.サイクル2の22日目に、注射部位腫瘍の最大直径が>50%増加した患者は試験終了となる。
臨床試験が完了した患者は、試験のための来院の終了の後、1年間、日常的な肝臓癌患者フォローアップのやり方でフォローアップされる。臨床試験に関係なく、生存している患者は、来院のために病院に戻った時には、日常的な検査、例えば、ヘパトーム血清検査および画像に基づく評価を受け、3ヶ月ごとに検査を受けることができる。臨床試験が完了した後、顕著な臨床的有用性が確かめられた場合には、別の書面によるインフォームドコンセントを得た後に、さらなる注射が合計4回まで投与されてもよい。この時、全ての試験手順は、この試験の最初の4回の投与と同じやり方で進む。試験がサイクル4までに完了した後には、(安定した疾患より大きな)重大な臨床的有用性があるとPIが判断するまで、試験薬のさらなる注射が合計4回まで投与されてもよい。この場合、PIは、前もってスポンサーと話し合い、スポンサーから同意を得なければならない。全ての試験計画は、この臨床試験と同じやり方で進む。
1.血漿および尿のQ-PCRおよびプラーク形成単位アッセイ法(薬物動態学的試験)
血流へのウイルス伝播は、定量ポリメラーゼ連鎖反応(Q-PCR)試験によって評価する。ウイルスが尿および咽頭スワブに存在するかどうか検出するために、治療後に試料を集める。
腫瘍部位でのウイルス複製を発見するために、治療の前後に、(安全かつ簡単と思われたら)コア生検および穿刺吸引を行う。これらの生検は、ウイルス複製、炎症細胞および免疫細胞の浸潤、壊死およびアポトーシスの証拠があるかどうか分析される。
GM-CSF、IL-1、IL-4、IL-6、IL-10、IFN-δ、およびTNF-αの血清中濃度はELISAアッセイ法を用いて測定する。
患者の連続希釈血清中のJX-594中和抗体価の発生はプラークアッセイ法を用いて特定する。
薬物動態学的試験のための採血した3mLの血液はそれぞれ、ミニイエロートップバキュテナー(mini yellow top vacutainer)に入れる。
1.用量、投与、および治療スケジュール
用量
用量は典型的には以下の通りである:
コホート1:1x108pfu、コホート2:3x108pfu、コホート3:1x109pfu、コホート4:3x109pfu。
JX-594は腫瘍内注射によって投与することができる。説明するように、専門の医師が腫瘍内注射を投与する。21ゲージ針またはそれより細い針を用いて、注射しようとする腫瘍(1〜3個の腫瘍)の総体積の約25%に相当する体積を有するウイルス含有溶液を、腫瘍に直接注射する。典型的には、注射はイメージガイド(例えば、CT)の下で行う。1〜3個の腫瘍に注射することができる。それぞれの腫瘍には同量の溶液を与えなければならない。2〜3個の腫瘍に注射する場合、ある腫瘍に注射されるウイルス溶液の体積は、他の腫瘍と比べて、腫瘍の体積に比例する(すなわち、ある腫瘍の体積が他の腫瘍の2倍であれば、大きな方の腫瘍にはウイルス溶液の総体積の2/3を与える)。
JX-594は、(0.1mL送達用の)ウイルス製剤150μlを含有する凍結した(-60℃またはそれ以下の)使い捨てガラスバイアルに入れられて供給されている。体積100μlに1.9x108pfuのウイルスが含まれる。このバイアルは縦にして室温で解凍しなければならない。JX-594は温水浴に入れてはいけない。ピペットを用いて再懸濁する。希釈している間および患者に移している間は、ウイルスは4℃で保管してもよい。解凍したJX-594は、4時間経過したら注射してはならない。
コホート1の患者には、1個(1)のJX-594バイアルを使用する。滅菌食塩水に移された処方された体積のJX-594を、マイクロピペット/注射器を用いて吸い出す。
コホート2の患者には、2個(2)のJX-594バイアルを使用する。混合後に、1番目のバイアルの内容物を2番目のウイルスに移す。滅菌食塩水に移された処方された体積のJX-594を、マイクロピペット/注射器を用いて吸い出す。
コホート3または4の患者には、それぞれ、4個(4)または11個(11)のJX-594バイアルを投与する。全ての内容物を、小さな混合ポリプロピレンチューブに移す。滅菌食塩水に移された処方された体積のJX-594を、マイクロピペット/注射器を用いて吸い出す。
室温でチューブをアルミニウム箔で包むか、遮光性バックに入れる。投与前には10秒間、勢いよくボルテックスする。室温で曝露して30分間経過したら、または解凍して4時間経過したら、注射してはならない。
典型的には、登録患者には、1サイクルごとに1回の治療または1用量のJX-594を与える。JX-594が注射された標的腫瘍がサイクル終了時に進行していなかった患者には、次のサイクル(合計4サイクルまで)の治療を与える。標的腫瘍が進行していた患者は来院終了となる。1サイクルは3週間と定義する。1用量は、1〜3個の病変の中で均等に分けることができる。注射された病変の最大直径の合計は<10cmでなければならない。
臨床試験の用量漸増期では、各コホートごとに2〜6人の患者を登録する。最初の3人の患者のうち誰もDLTを経験しなければ、試験は次のコホートに進む。コホートの最初の3人の患者のうち1人にDLTが現れれば、合計6人の患者がコホートに登録されるまで、または最初の患者を含む2人の患者がDLTを経験するまで、試験は進む。
治療後、全身副作用:発熱、悪寒、筋肉痛、疲労/無力、悪心、および嘔吐が現れることがある。注射腫瘍部位での副作用、例えば、疼痛、壊死、潰瘍化および炎症が現れることがある。前臨床試験およびGM-CSF臨床試験を考慮すれば、リンパ球、単球、または白血球の一時的な増加と好中球の増加が現れることがある。注射腫瘍部位において以下が現れることがある:疼痛、壊死、潰瘍化および炎症。
DLTは、インフルエンザ様症状(例えば、疲労、悪心もしくは筋肉痛)を除く、JX-594に起因し、5日超続く、グレード3もしくはそれ以上の毒性、またはJX-594に起因する任意の期間のグレード4毒性と定義される。
生検は、合併症、例えば、腫瘍の破裂による腹腔内出血および/またはショックを引き起こすことがある。報告されている合併症の発生率は<0.1%であり、経カテーテル塞栓術を用いて治癒することができるが、患者の安全性は最優先に念頭に置かなければならない。従って、生検が患者に危険を引き起こす可能性が高いと、治療を行っている医師が判断したら、生検は行われなくてもよい。さらに、患者の安全性が必要とされれば、PIの自由裁量で、患者を入院させ、生検および/またはJX-594腫瘍内注射の前後5日まで観察してもよい。
このような試験の主目的は、臨床的有用性ではなく安全性についての第1相臨床試験である。にもかかわらず、この試験は、治療により誘導される、直接的なウイルス作用(すなわち、腫瘍崩壊作用)および/または免疫を介した腫瘍破壊のために、注射腫瘍および/または非注射腫瘍の収縮を引き起こすと予想される。
完全奏功(CR):全ての標的病変の消失。部分奏功(PR):ベースラインLD合計を基準とした時に、標的病変のLD合計の少なくとも30%の減少。進行(PD):治療が開始してから報告された最小のLD合計を基準とした時に、標的病変のLD合計の少なくとも20%の増加。安定した疾患(SD):治療が開始してからの最小のLD合計を基準とした時に、PRとするには縮小が不十分で、かつPDとするには増加が不十分である。
全ての測定は、サイクル2の最終日(22日目)およびサイクル4の最終日(22日目)に、CTまたはMRIによって行われ、定規またはカリパスを用いてメートル法で記録しなければならない。全てのベースライン評価は可能な限り治療開始と離れずに行い、治療開始前、4週間以上あけてはならない。
確認:
PRまたはCRの状況を割り当てるために、奏功の基準が最初に満たされた8週間後に行わなければならない反復評価によって、腫瘍測定値の変化を確認しなければならない。SDの場合、最低16週間隔のフォローアップ測定値が、SD基準を試験参加後少なくとも1回は満たしていなければならない。
全奏功の期間は、(どちらが最初に記録に残されていても)最初に記録に残されたCRまたはPRの日から、客観的に確認された再発または進行の最も早い日までの時間として定義される(治療開始から記録された最小測定値を進行の基準とする)。全完全奏功の期間は、最初に記録に残されたCRの日から、客観的に確認された再発の最も早い日までの時間として定義される。
SDは、治療後、最初に記録に残されたSDの日から、客観的に確認されたPDの最も早い日までの時間として定義される(治療開始から記録された最小測定値を基準とする)。
必要に応じて、この試験の外部の放射線科医が腫瘍に対する奏功を評価する。しかしながら、評価結果は試験目的にのみ用いられ、臨床上の結論に影響を及ぼさない。
1.サンプルサイズ
評価されるサンプルサイズは18人の患者であり、可能な範囲は2〜30人の患者である。この試験の主目的は、腫瘍内注射によるJX-594の安全性およびMTDまたはMFDを決定することである。この試験は、ヒトにおける2回目のJX-594臨床試験に相当する。意味ある統計計算に基づくヒトでの臨床試験は以前に無いので、この試験のサンプルサイズは、臨床安全性を考慮して選択される。この試験の結果は、将来の臨床試験のサンプルサイズの必要条件を決定するために、ばらつきを見積もるのに用いられてもよい。
集計しようとする集団は治療意図(ITT)集団である。治療意図(ITT)集団は、患者全員がJX-594による少なくとも1回の治療を受けていると定義される。さらに、評価可能な患者集団はまたITT集団の一部としても評価される。評価可能な患者は、少なくとも1サイクルの療法を受けたことがあり、治療前および治療後の適切な期間に適切な腫瘍測定が行われている、患者である。
切除不能な悪性黒色腫の治療
A.用量およびスケジュール
1.用量およびスケジュールの根本的理由
1回の治療につき全用量1x108pfuを与える。この用量は、外科手術により治癒しない皮膚黒色腫の治療のための最初のJX-594第1相試験において安全に投与された最大毎週用量である1.6x108pfuより少ない(Mastrangelo et al., 1998)。さらに、1x108pfuは、進行中のJX-594第1相腫瘍内(IT)試験において現在まで安全に投与された最大用量の1/10であり(n=2患者)、現在まで明らかになった最大用量レベルの1/3である。前記の試験では、1〜3個の肝臓腫瘍へのIT注射による治療が3週間ごとに投与された。この試験からの予備結果から、インフルエンザ様症状および血液学的パラメータが、典型的には、JX-594による治療後4日以内に(すなわち、5日目に)ベースラインレベルに戻ることが分かっている。
黒色腫は、注射可能な疾患が比較的高い割合あり、IL-2免疫療法を用いて見られる黒色腫のポジティブな応答があり、転移性黒色腫患者に対する有効で忍容性のある療法が無いので、JX-594免疫療法の最適な標的であるかもしれない。さらに、JX-594複製は、メラノサイトにおいて高発現しているEGFR経路を標的とすると考えられている。
JX-594は、一般的に用いられるWyethワクチン株(Dryvax(登録商標), Wyeth laboratories)に由来する、癌を標的とする複製選択性ワクシニアウイルスである。このウイルスは、チミジンキナーゼ(TK)遺伝子が不活化されたワクチン株に由来する。JX-594は、免疫応答に関与する強力なサイトカインであるhGM-CSFの遺伝子およびプロモーターを含有する。JX-594は、組織内のウイルスの追跡を可能にするlacZ遺伝子の挿入によってさらに改変されている。
目的には、(a)注射腫瘍に対する客観的奏功率、(b)IT注射によって投与されたJX-594の安全性および毒性、(c)IT注射によるJX-594投与後の全疾病負荷(entire disease burden)に対する客観的奏功率(RECIST基準)、(d)無増悪生存期間(PFS)、および(e)非注射腫瘍に対する奏功率の評価が含まれる。
1.試験の概要
これは、ステージ3またはステージ4の切除不能な悪性黒色腫を有する患者における第1相/第2相非盲検試験である。患者には、6週間にわたって、合計6回(6)のJX-594腫瘍内注射を与える。各治療には全用量1x108プラーク形成単位(pfu)が投与され、5個(5)までの腫瘍の中で均等に分けられる。6回の治療が完了した後に、JX-594 IT治療によって患者の注射腫瘍に対して部分奏功が認められれば、さらに3回の治療が毎週与えられてもよい。
臨床試験の一次エンドポイントは、典型的には、完全奏功率、部分奏功率、および奏功期間を含む、注射腫瘍の奏功率である。この試験の二次エンドポイントには、治療に関係する有害事象の発生率により求められる安全性、重篤な有害事象(SAE)、および完全奏功率、部分奏功率、奏功期間を含む、日常的な検査室パラメータのベースラインからの臨床的に有意義な変化、無増悪生存期間(PFS)、完全奏功率、部分奏功率、および奏功期間を含む非注射腫瘍に対する奏功率が含まれることがある。他のエンドポイントには、全生存期間、臨床的有用性(体重増加およびパフォーマンスステータスの改善を含む)、JX-594評価(例えば、血漿中および/または全血中のウイルスゲノム(Q-PCR);血漿中および/または全血中のウイルス感染性ウイルス、任意(プラークアッセイ法))、免疫学的評価(血清中のJX-594中和抗体;血漿中のGM-CSF測定(ELISAアッセイ法))、組織学的評価(組織内のウイルス遺伝子発現;GM-CSF発現;lac-Z発現;炎症細胞浸潤;壊死;アポトーシス;細胞質内のウイルス複製工場;EGFR経路状況;ならびに腫瘍チミジンキナーゼ状況)が含まれることがある。
典型的には、ウイルスは、本明細書に記載のように滅菌生理食塩水で希釈する。各治療には全用量1x108プラーク形成単位(pfu)が投与され、5個(5)までの腫瘍の中で均等に分けられる。
試験期間は、典型的には、スクリーニング、試験治療、および治療後フォローアップ評価のための患者来院からなる。
試験のための患者適格性は、JX-594による最初の治療前、14日以内に決められる。
適格性のある患者に6週間にわたって合計6回の治療を行い、1x108pfuの用量を毎週(1日目、8日目、15日目、22日目、29日目、および36日目)腫瘍内注射することによって治療する。患者は、再治療の前に全ての適格性基準を満たし続けなければならない。何らかの理由で治療が省略された場合、適格性基準が満たされ、来院スケジュールが調節され、患者が合計6回の治療を受けるように、それに応じて追跡されれば、省略された治療を翌週に行う。注射は、累計で最大4週間まで遅らせてもよい。治療が遅れた患者は全6回の治療を完了し、6回目の治療の1週間後に奏功について評価される。奏功の評価は、最後の用量が投与された1週間後(すなわち、43日目)に最初に行う。6回の治療が完了した後に、JX-594 IT治療によって患者の注射腫瘍に対して部分奏功が認められれば、さらに3回の治療が毎週与えられてもよい。
JX-594による最後の治療の28日後(すなわち、64日目)に、患者は全員、フォローアップ来院のために戻る。療法が完了した後6ヶ月間行うか、患者の注射部位が進行するまで行うか、患者が新たな癌療法を開始するまで行うか、または患者が死亡するまで行う。患者は、最後の注射の後3週間ごとに、身体検査(PE)による腫瘍測定(可能であれば)および奏功評価のために診療所に戻る。6週間ごとに、患者は、PEおよび/またはCT/MRIによる奏功評価も受ける。6ヶ月のフォローアップの後3ヶ月ごとに、患者は、注射部位が進行するまで、死亡するまで、または新たな癌療法を開始するまで、腫瘍測定および奏功評価(CT/MRIを含む)のために診療所に戻る。
注射部位が進行したか、または新たな癌療法を開始した後、患者は、現行のFDAガイドラインに従って、生存および遺伝子療法の潜在的な長期作用についてモニタリングされ続けてもよい。患者が治療または治療後フォローアップのために診療所にもはや戻らなければ、このデータは郵送または電話によって集められてもよい。
1.選択基準
患者は、典型的には、以下の基準を全て満たしている:
組織学的に確認された、ステージ3またはステージ4の悪性黒色腫;
CT/MRIおよび/または身体検査によって測定可能であり、直接可視化または超音波ガイダンスによって注射可能な少なくとも1個の腫瘍塊;
生存期間が少なくとも16週間と予測されている;
治癒のために癌が外科手術で切除不能である;
KPSスコア>70;年齢>18歳;
生殖能のある男性および女性は、治療中およびJX-594による最後の治療後3ヶ月間、一般に認められている避妊法に従うことに同意しなければならない;
治験審査委員会(IRB)/医療機関内倫理委員会(IEC)が認可したインフォームドコンセント書面を理解し、故意に署名している;
試験手順およびフォローアップ検査を遵守できる;
十分な肝機能(総ビリルビン<2.0×ULN;AST、ALT<2.0×ULN);
十分な骨髄機能(WBC>3,500細胞/mm3および<50,000細胞/mm3;ANC>1,500細胞/mm3、ヘモグロビン>10g/dL;血小板数>125,000plts/mm3);
許容可能な凝固状況(INR<(ULN+10%));および
許容可能な腎機能(血清クレアチニン<2.0mg/dL)。
典型的には、患者は、以下の除外基準:標的腫瘍が主要な血管構造(例えば、頚動脈)に付着および/または浸潤している;妊娠中または授乳中;HIVに感染していることが分かっている;JX-594による最初の治療の4週以内の全身コルチコステロイドまたは他の免疫抑制薬の使用;新しい治験薬による治療には高リスクと思われる、臨床的に意義のある活動性感染症または管理されていない医学的状態(例えば、肺、神経、心血管、胃腸、泌尿生殖器);基礎疾患および/または服薬(例えば、全身コルチコステロイド)による重大な免疫不全症;ある段階で全身療法が必要となったことがある湿疹の病歴;臨床的に意義のあるおよび/または急速に蓄積する腹水、心外膜滲出液、および/または胸水(例えば、症状管理のためにドレナージを必要とする);スクリーニング前6ヶ月以内に、心筋梗塞、不安定狭心症、うっ血性心不全、心筋炎、不整脈のいずれかを含むが、これに限定されない、重篤または不安定心疾患と診断され、薬を必要としていたか、または心臓の状態の臨床的に有意義な任意の変化;スクリーニングして4週間以内の、放射線療法、化学療法、外科手術、または治験薬による標的腫瘍の治療(マイトマイシンCまたはニトロソ尿素の場合は6週間以内);以前の天然痘ワクチン接種の結果として重篤な反応または副作用を経験したことがある;インフォームドコンセントを与えることができない、もしくはそうする意思が無い、またはこのプロトコールに必要な手順を遵守することができない、もしくはそうする意思が無い、をいずれも満たしてはならない。妊娠中もしくは授乳中の家族、5歳未満の小児、ある段階で全身療法が必要となったことがある湿疹の病歴を有する家族、または基礎疾患(例えば、HIV)および/もしくは服薬(例えば、全身コルチコステロイド)による重大な免疫不全症を有する家族と接触のある患者は、患者の有効な投与期間中および治験薬の最後の投与後3週間、代わりの生活環境を手配できなければ、除外する。
適格性基準からの逸脱
前記の選択基準/除外基準からのわずかな逸脱(例えば、予め決められた範囲の外にある検査値)を有する患者は、これらの逸脱が患者の安全性、試験の実施、または試験結果の解釈に影響を及ぼすと予想されなければ、試験への参加が許可されてもよい。わずかな逸脱のある患者が登録されるかどうかは、試験のスポンサーまたはスポンサーの代表者の書面による認可を求めなければならない。
治験医師がスクリーニング評価を行い、患者の適格性を確認したら、スポンサーは、典型的には、スクリーニングおよび適格性の情報を審査し、各患者の登録について治験医師に書面による確認を行う。登録が確認されたら、あらかじめ定義された患者ナンバリング法を用いて、患者に識別子が割り当てられる。患者の識別子は、試験番号の一部、治験施設の番号、患者番号および患者のイニシャルである。
JX-594は、Jennerex Biotherapeuticsによって供給される。典型的には、JX-594は液体として処方され、使い捨て用に設計されたガラスバイアルに入れて凍結された状態で保管される。それぞれのバイアルは0.15mLを含有する。ウイルス溶液は、無色からわずかに黄色で、透明からわずかに乳白色の溶液である。JX-594の濃度は1.9x109pfu/mLである。
解凍は、バイアルを垂直にして室温で行わなければならない。JX-594は温水浴に入れてはいけない。解凍したら、バイアルを円錐形の15mLポリプロピレン遠心チューブ(例えば、CorningまたはFalcon)に入れ、チューブに蓋をし、100xgで2分間遠心分離する。ピンセットまたは同等品を用いて、ポリプロピレンチューブからJX-594バイアルを取り出す。ウイルス製剤は希釈されるかまたは患者に送達されるまで、氷上で保管するか、または冷蔵(2〜8℃)しなければならない。ウイルス製剤を解凍して4時間超経過したら、注入を開始してはならない。
バイアルを遠心分離した後、マイクロピペッターを用いて穏やかに再懸濁する(200μLマイクロピペッターを、示唆された100μLに設定する)。製剤に泡を入れないように注意しなければならない。典型的には、約2.75mLのウイルス溶液(JX-594+食塩水)を調製し、5個の注射器にそれぞれ0.5mLずつ分配する。マイクロピペッターを用いて、滅菌生理食塩水2.64mLを、適切なサイズのポリプロピレンチューブ(例えば、5mL Falconチューブ)に移す。1個(1)のJX-594バイアルから116μL のJX-594を吸い上げ、食塩水を含有するFalconチューブに移す。Falconチューブの蓋を交換し、(箔を用いてまたは遮光容器に入れて)チューブを遮光し、すぐに、覆いをしたチューブを2〜8℃にする(冷蔵するか、または濡れた氷の上に置く)。
JX-594は、6週間にわたって合計6回(6)、腫瘍内注射によって毎週投与される。投与は、1日目、8日目、15日目、22日目、29日目、および36日目に行われる。患者には、1回の治療につき1x108pfuの用量が5個以下の病変に分けて与えられる。経皮注射による治療が可能な病変(例えば、触診可能な皮膚結節もしくはリンパ節転移)または超音波(US)ガイド下注射による治療が可能な病変のみに治療適格性がある。
治療後には、以下の全身毒性:発熱、悪寒、食欲不振、筋肉痛、疲労/無力、および/または頭痛が予想される。好中球、リンパ球、血小板、およびヘマトクリットの一過的な減少が予想される。血液学的パラメータは、典型的には、5日目(典型的な期間2〜3日)までにベースラインレベルに戻った。サイクル1のみで、初回注射後、最初の4日以内に、白血球増加が起こり得る。投与後5〜8日以内に、コホート3の2人の患者において、24,000/μLおよび118,000/μLの白血球総数が報告された。治療後には好酸球の増加も予想され、典型的には、8日目まで高い状態が続く。注射部位では、以下の毒性:疼痛、壊死、潰瘍化、および炎症が起こる可能性が高い。他のウイルス複製部位(例えば、遠位腫瘍)では、疼痛、壊死、潰瘍化、および炎症が起こり得る。
1.転帰の定義
以下は、統計分析に関係する転帰の定義である。毒性コード化および進行、完全奏功、部分奏功、奏功期間、評価可能な患者、および治療関係の定義はこのプロトコールの他の場所で議論する。
JX-594による最初の治療から、治験医師により評価されるように進行が診断された日までの、または進行が認められずに死亡した日までの期間。進行が認められることなく生存していると最後に分かった患者は、進行が最後に評価された時に打ち切られる。進行が記録される前に非プロトコール療法を受けた患者もまた、統計分析が打ち切られると指定される。
JX-594による最初の治療から、死亡した日または生存していると最後に分かった日までの期間。生存していると最後に分かった患者は、統計分析が打ち切られると指定される。
JX-594が与えられた患者は全員、スクリーニング時に人口統計学的特徴について分析され、続いて、安全性、有効性、薬物動態学および薬力学について分析される。集計しようとする集団は治療意図(ITT)集団であり、治療意図(ITT)集団は、患者全員がJX-594による少なくとも1回の治療を受けていると定義される。さらに、評価可能な患者集団も評価される(ITT集団のサブセット)。患者は、JX-594による少なくとも1回の治療を受け、ベースライン時および治療後最初の適切な時点での適切な腫瘍測定値を有するのであれば、評価可能な患者とみなされる。
記述統計学(n、平均、標準偏差、中央値、最小値、および最大値)を用いて、連続変数を集計する。それぞれの分類内で、患者の数およびパーセント(n、%)を示すカテゴリー変数を集計する。評価可能な患者ならびに治療意図集団に基づいて分析を行う。全体分析を行う。さらに、安全性および有効性の分析を疾患の病期分類と相関付ける。
治験薬が与えられた患者を安全性分析に含める。有害事象、検査室での結果、毒性、バイタルサインおよび中止情報を含む、安全性データを経時的に集計する。患者の年齢、体重、および身長は記述統計学を用いて集計するのに対して、性別および人種は頻度作表を用いて集計する。病歴データは頻度作表を用いて集計する。
血中のゲノム濃度を追跡することによって、血液へのウイルス複製および散布を経時評価する。全ての患者において血中のJX-594濃度およびGM-CSFレベルを測定し、薬物動態学的パラメータを評価する。
RECIST基準に基づく治療奏功率を、以下について評価する:全奏功、注射腫瘍に対する奏功、および非注射腫瘍に対する奏功。完全奏功、部分奏功、安定した疾患、および進行の率を集計する。無増悪生存期間、無進行期間、奏功期間、および全生存期間も報告する。疾患の病期分類との相関関係を評価する。
治験施設には、選択された患者の全ての放射線学データのコピー(デジタルまたはCD-ROMが好ましい)を第三者の放射線学審査人(IPR)に提供することが求められることがある。皮膚病変を有する患者の場合、第三者審査のためにIRRに写真も送られる。治験施設およびIRRからの結果が報告される。読み手間で一致しない結果は評価されない。
難治性肝臓腫瘍の治療
JX-594第1相パイロット試験では、漸増用量を、7人の黒色腫患者の表在性皮膚転移に注射して与えた(Mastrangelo et al.,1999)。最大耐用量(MTD)は報告されず、腫瘍に対する奏功が報告された。本試験の目的は、(パイロット試験において行われたように)予備免疫無しでの、具体的には実質器官内での治療後の、極めて高い用量(100倍)の安全性およびMTD;3週間にわたる血液への複製依存性散布を含む薬物動態;広範囲の癌タイプに対する有効性を定義することであった。従って、この第1相試験では、本発明者らは、(原発性または転移性)肝臓腫瘍を有する患者を腫瘍内注射によって治療した。本発明者らは、MTDと、忍容性が良好な用量での高レベルのJX-594複製および全身GM-CSF発現、有効性、ならびに遠位腫瘍標的化を初めて報告する。本明細書において報告された結果は、JX-594およびこのクラスからの製品を用いた、将来のi.t.試験およびi.v.試験を裏付ける。
1.試験案
主目的は、JX-594の安全性およびMTDを決定することであった。第二目的には、薬物動態、複製および散布(尿、咽頭スワブ)、免疫応答(中和抗体、サイトカイン)、ならびに腫瘍に対する奏功が含まれた。患者には、用量漸増群逐次案で4種類の用量レベル(108、3x108、109、3x109プラーク形成単位、pfu)のうち1つを与えた(用量レベルあたり患者2〜6人)。MTDは、2回またはそれ以上の用量制限毒性(DLT)が観察された用量レベルのすぐ前の用量レベルと定義した。DLTは、任意のグレード4毒性、または5日以上続くグレード3毒性と定義した。第三者のデータ安全性モニタリング委員会(DSMB)が全ての用量漸増の決定および主な安全性評価を審査した。
患者は、優良臨床試験基準 (GCP)ガイドラインに従ってインフォームドコンセントに署名した。選択基準には、標準的な療法による治療にもかかわらず進行した、切除不能であり注射可能な肝臓内固形腫瘍、正常造血機能(白血球数>3,000mm3、ヘモグロビン>10g/dL、血小板数>75,000/mm3および臓器機能(クレアチニン<1.5mg/dL、AST/ALT<2・5のULN、チャイルドピュークラスAまたはBを含む)、平均余命>16週、およびカルノフスキー・パフォーマンス・ステータス(KPS)>70が含まれた。除外基準には、ワクチン接種合併症のリスクが高い(例えば、免疫抑制、湿疹)、4週間以内の免疫抑制剤もしくは癌治療剤を用いた治療、妊娠、または授乳が含まれた。
JX-594は、合成初期後期プロモーター制御下にあるヒトGM-CSF遺伝子およびp7・5プロモーター制御下にあるlacZ遺伝子をTK遺伝子領域に挿入することによって改変されたWyeth株ワクシニアである。臨床試験材料は、GMPガイドラインに従ってVero細胞において作製し、スクロース勾配遠心分離法によって精製した。ゲノム対pfuの比は約70:1であった。JX-594は、10%グリセロール、138mM塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝食塩水pH7・4に溶解して処方した。最終産物のQC放出試験には、無菌性、エンドトキシン、および効力についてのアッセイ法が含まれた。JX-594を、標的腫瘍の推定総体積の25%に相当する体積になるように、0.9%生理食塩水に溶解して希釈した。
JX-594は、21ゲージPEIT(経皮エタノール注射、マルチポア;HAKKO Medicals; Tokyo, Japan)針を用いて、イメージガイド下での腫瘍内注射によって投与した。3週間ごとに、腫瘍(n=1〜3)に、腫瘍から針を引き抜いている間、2箇所の針跡に沿って注射を行った。初回治療コースは2サイクルであった。腫瘍に対する奏功が生じれば、さらに6回までのサイクルを認めた。
表5に記載のように、患者をモニタリングした。病院内での治療後少なくとも48時間、および外来患者として4週間、患者をモニタリングした。
NAb価は、細胞変性効果阻害アッセイ法によって求めた。熱失活血清を、半対数(half log)希釈を用いて培地で連続希釈した。50μLの試料を1,000pfu JX-594と2時間インキュベートし、次いで、A2780細胞に接種した。3日後、Cell Counting Kit-8(Donjindo Laboratories, Kumamoto, Japan)を用いて、細胞生存率を求めた。NAb価は、>50%細胞生存率をもたらした最大血清希釈度の逆数と定義した。
定量PCR(Q-PCR)は、抗体および/または補体中和に関係なく産物を検出する再現性および能力があるために、血中のJX-594ゲノムを連続して測定するのに使用した。JX-594 DNAは、QIAamp DNA Blood Mini Kit(Qiagen GmbH, Hilden, Germany)を用いて試料から精製した。Q-PCRは、以前に述べられたように(Kulesh et al., 2004)行った。JX-594検出および定量の下限は、それぞれ、666コピー/mL血漿および3,333コピー/mL血漿であった。
プラーク形成アッセイ法は、感染性JX-594の環境への散布を検出するのに使用した。感染単位の散布は公衆衛生と関連があるだろう。尿および唾液試料を回転させ、10mM Tris(pH9・0)に再懸濁し、A2780細胞上でのプラークアッセイ法によって力価測定した。検出限界は20pfu/ml試料であった。
GM-CSFは、ELISAキット(BioSource International; Carlsbad, CA, USA)によってベンダーの説明書に従って検出した。LINCOplexキットを用いて、製造業者(LINCO; St. Charles, MO)により指示されたように、IL-1β、IL-6、IL-10、TNF-α、およびインターフェロン-γの血清中レベルを評価した。
ホルマリン固定し、パラフィン包埋した生検材料を、組織学的検査のためにヘマトキシリンおよびエオシンで染色した。免疫組織化学検査については、B5Rマウスモノクローナル抗体(Vac-14, α-B5R, 46μg/mL;Dr. Gary Cohen, University Pennsylvannia;1:50または1:100に希釈)を使用した後に、DAKO EnVision+(商標)抗マウスHRP標識ポリマー(DAKO, Carpinteria, CA)とインキュベートした後、DAB(Kirkegaard & Perry Laboratories; Gaithersburg, MD)を用いて発色させた。LacZ染色については、細胞を900rpmで1分間回転させ、リンスし、ガラススライド上で0.5%グルタルアルデヒドを用いて固定した。次いで、細胞を洗浄し、X-gal溶液を用いて4時間〜一晩染色した。
腫瘍に対する奏功は2サイクルごとに評価した。コントラスト増強CTスキャンが(禁忌でない限り)標準であった。腫瘍の最大直径およびハウンスフィールド単位(HU;密度推定値)を得た。奏功についてはRECIST基準およびChoi基準を適用した(Choi et al., 2007)。腫瘍マーカーがベースライン時に高ければ、腫瘍マーカーを追跡した。
試験サンプルサイズは安全上の問題によって決定した。治療意図集団(>1用量)および標準的な用量漸増案を用いた。用量漸増の可能性は、治療集団内に様々な真のDLT率があると仮定して、日常的な第1相用量漸増試験に従って計算した。
1.患者の特徴
14人の患者を登録した(特徴を表6に列挙した;試験の概要を図20に示した)。3人の患者をコホート1〜2において治療し、6人を3番目のコホートにおいて治療し、2人を最大のコホートにおいて治療した。腫瘍進行に起因する関係のない患者死亡があったために、DSMBの要望により、6人の患者をコホート3において治療した。2人の患者(コホート1、3)は、関係のない有害事象により1サイクル後に治療を中止し、最大用量の患者にはDLTのために1サイクルを行った(以下を参照されたい)。
a.有害事象(AE)
JX-594は、MTD(109pfu)まで忍容性が良好であった。治療に関係する死亡は試験時に起こらなかった。患者は全員、グレード1〜2のインフルエンザ様症状(治療後4〜16時間)を経験した。4〜12時間以内に用量に関係する低血圧(グレード2、臓器機能不全なし)が起こった。表7は、JX-594と関係する可能性のある最もよくみられるAEを示している。治療に関係しているとみなされた、重篤なAE症例(食欲不振および腹痛)は1つしかなかった。(PIにより)重篤かつ無関係な10のAEが報告され、腫瘍進行に関連した合併症によるものだとされた。4人の患者がAE報告期間中に腫瘍進行で死亡した。
最初の3日間、リンパ球、血小板、およびヘマトクリットが、治療に関係して一過的に減少することが認められた。最初の4日以内に、9人の患者の好中球絶対数(ANC)が有意に増加した(7人が100%超増加した;図2A)。ANC増加は用量に関係し、血中のGM-CSF検出と頻繁に関連した。コホート3および4の患者の75%においてANCは有意に増加した(>5,000/μL)(対コホート1、2の17%;図21A)。単球および好酸球の増加が観察された。血小板減少も用量依存性であったが(図22A)、サイクル非依存性であった(図22B)。ANC増加はサイクル1において最大であった(図22C)。リンパ球減少および白血球減少が2人の患者において現れた(表7)。MTDにおいて有意なトランスアミナーゼ上昇は現れなかった(図21B)。
a.血清中GM-CSF
13人の患者はベースライン時に血清中GM-CSF陰性であった。MTD時の3人の患者のGM-CSFは、JX-594注射後>48時間、検出可能であった(46〜16,000pg/mL)(図21A)。この濃度は、GM-CSFタンパクを患者に皮下注射した後に報告された濃度(Cebon et al., 1992)より高かった。GM-CSF濃度はWBC誘導と相関関係があった(図21A)。
ベースライン時には、患者の79%において低い(<10)、または検出不可能な抗JX-594抗体(NAb)レベルが認められた。患者は全員、22日以内にNAbを発生した。NAb価は、初回投与後に患者の45%においてピークに達し、55%においてさらに増加した。
1最初の番号は用量レベルを表す(例えば、103は用量レベル1であった)。
2RECIST基準:部分奏功(PR)は最大直径の>30%の減少である。進行(PD)は>20%の増加である。安定した疾患は、PRおよびPDのこれらの2つの限度間での直径の変化である。
3Choi基準:最大直径の>10%減少または密度の>15%減少;+は奏功を示す。
4腫瘍マーカー応答の定義:>50%減少:PR;>25%増加:PD;<50%減少または25%増加:SD;マーカーは、患者201、301、402ではα-フェトプロテイン(AFP)、401ではPIVKA2、302、305、306では癌胎児抗原(CEA)であった。
5生存:+は癌に関係する死亡が無いことを示す;m:月;d:日
6今なお生存
7HU:ハウンスフィールド単位
83週目で行ったCTスキャンは腫瘍進行を示した。
インターロイキン-6、IL-10、およびTNF-αが3時間でピークに達した。それより後のピーク(3〜22日目)も観察された。サイトカイン誘導は、サイクル1よりサイクル2〜8において高かった。インターロイキン-6誘導は血清中のGM-CSFと相関関係があった。IL-1βおよびIL-4の誘導は認められなかった。
患者は全員、注射直後にJX-594ゲノムが検出された(50サイクルのうち49)。濃度は用量と相関関係があり、15分以内に約50%、4〜6時間以内に約90%減少した(図23Aおよび図23B)。クリアランス初速度は用量依存性でもなく抗体価依存性でもなかった。血中に注射されたJX-594の初回放出およびクリアランスの後、循環JX-594の遅れた再出現が複製と一致して、頻繁に検出された。3〜22日目に、15人の患者のうち12人(80%)に、検出可能なゲノム(血液または血漿)があった。二次ピーク濃度は用量と大まかな相関関係があり、薬物動態が似ていた(図23B)。サイクル2〜7での反復投与後に、さらに低い二次濃度ピークが検出された(11人の患者のうち4人)。代表的な薬物動態を図23Cに示す。
JX-594は非注射腫瘍組織において検出された。このことは、遠位腫瘍選択的な感染および複製を示している(図23D〜F)。例えば、ある患者の悪性腹水および胸水のゲノム濃度は同じ時点の血液より高く(それぞれ、17倍および12倍)、GM-CSF濃度も高かった(それぞれ、24倍および13倍) (図3D)。胸水中のLacZ(+)細胞からJX-594感染が確かめられた(図23E)。別の患者は遠位頚部腫瘍が生検により採取され、複製JX-594が組織学的に証明された(図23F)。
感染性JX-594は咽頭試料でも尿試料でも検出されなかった。
標的腫瘍に対する奏功について10人の患者が評価可能であった。評価不可能な患者は、コントラストに対して禁忌を示したか(2)、または治療後のスキャンが無かった(2)。9人(90%)に、CT RECIST基準による客観的奏功(30%)または安定した疾患(60%)が認められた。8人(80%)に、Choi基準による客観的奏功が認められた(表8)。RECIST基準およびChoi基準の両方により奏功が認められた患者には、非小細胞肺癌(図24A)、HCC、および黒色腫(表8)があった。客観的奏功は永続性があり、奏功が認められた腫瘍部位の再成長は起こらなかった(4〜18ヶ月のフォローアップ)。肝臓における先の4サイクルの後に、2人の患者において、以前に注射されたことがない頚部腫瘍に直接注射が行われると、高レベルのJX-594中和抗体にもかかわらず、Choiおよび/またはRECISTによる奏功が認められた(表8、図24B)。従って、再治療による有効性は実現可能であった。
1最初の番号は、用量レベルを表す(例えば、103は用量レベル1であった)。
2CT RECISTによる;+は癌に関係する死亡が無いことを示す
HU:ハウンスフィールド単位;LN:リンパ節;SC:鎖骨上;PA:耳介前;CR:完全奏功;PR:部分奏功;SD:安定した疾患;PD:進行
[本発明1001]
以下の工程を含む、腫瘍を有する被験体において腫瘍崩壊を誘導する方法:
該被験体に、腫瘍内の細胞の腫瘍崩壊を誘導するのに十分な少なくとも1x10 8 ウイルス粒子の、TK欠損性、GM-CSF発現性の複製能を有するワクシニアウイルスベクターを投与する工程。
[本発明1002]
被験体に少なくとも1x10 9 ウイルス粒子が投与される、本発明1001の方法。
[本発明1003]
ワクシニアウイルスベクターが、2回、3回、4回、5回、またはそれ以上投与される、本発明1001の方法。
[本発明1004]
ワクシニアウイルスが、1日、2日、3日、4日、5日、6日、7日もしくはそれ以上、または1週間、2週間、3週間、4週間、5週間、6週間、7週間もしくはそれ以上にわたって投与される、本発明1003の方法。
[本発明1005]
被験体がヒトである、本発明1001の方法。
[本発明1006]
腫瘍が、脳癌腫瘍、頭頚部癌腫瘍、食道癌腫瘍、皮膚癌腫瘍、肺癌腫瘍、胸腺癌腫瘍、胃癌腫瘍、結腸癌腫瘍、肝癌腫瘍、卵巣癌腫瘍、子宮癌腫瘍、膀胱癌腫瘍、精巣癌腫瘍、直腸癌腫瘍、乳癌腫瘍、または膵臓癌腫瘍である、本発明1001の方法。
[本発明1007]
腫瘍が肝細胞癌または黒色腫である、本発明1006の方法。
[本発明1008]
量が、腫瘍内の細胞の少なくとも20%、腫瘍内の細胞の少なくとも30%、腫瘍内の細胞の少なくとも30%、腫瘍内の細胞の少なくとも40%、腫瘍内の細胞の少なくとも50%、腫瘍内の細胞の少なくとも60%、腫瘍内の細胞の少なくとも70%、腫瘍内の細胞の少なくとも80%、または腫瘍内の細胞の少なくとも90%において腫瘍崩壊を誘導するのに十分な量である、本発明1001の方法。
[本発明1009]
腫瘍が再発性である、本発明1001の方法。
[本発明1010]
腫瘍が原発性である、本発明1001の方法。
[本発明1011]
腫瘍が転移性である、本発明1001の方法。
[本発明1012]
腫瘍が多剤耐性である、本発明1001の方法。
[本発明1013]
被験体に第2の癌療法を投与する工程をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1014]
化学療法、生物学的療法、放射線療法、免疫療法、ホルモン療法、抗血管療法、寒冷療法、毒素療法、または外科手術より選択される第2の癌療法をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1015]
ワクシニアウイルスベクターの第2の投与をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1016]
被験体が免疫無防備状態である、本発明1001の方法。
[本発明1017]
腫瘍が、治療前に切除不能であり、かつ治療後に切除可能である、本発明1001の方法。
[本発明1018]
治療後に腫瘍細胞の生存を評価する工程をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1019]
投与する工程が、腫瘍塊への注射を含む、本発明1001の方法。
[本発明1020]
投与する工程が、腫瘍脈管構造への注射を含む、本発明1001の方法。
[本発明1021]
投与する工程が、腫瘍の領域のリンパ系または脈管構造系への注射を含む、本発明1001の方法。
[本発明1022]
投与前に腫瘍を画像化する工程をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1023]
ワクシニアウイルスが、1つまたは複数の改変ウイルス遺伝子を含む、本発明1001の方法。
[本発明1024]
1つまたは複数の改変ウイルス遺伝子が、以下の1つまたは複数を含んでもよい、本発明1024の方法:
(a)インターフェロン調節ポリペプチド;
(b)補体制御ポリペプチド;
(c)TNF調節ポリペプチドまたはケモカイン調節ポリペプチド;
(d)セリンプロテアーゼ阻害剤;
(e)IL-1β調節ポリペプチド;
(f)非感染性EEV型ポリペプチド;または
(g)細胞からの感染性ウイルスの放出を阻害するように働くウイルスポリペプチド(抗感染性ウイルス型ポリペプチド)。
Claims (24)
- 以下の工程を含む、腫瘍を有する被験体において腫瘍崩壊を誘導する方法:
該被験体に、腫瘍内の細胞の腫瘍崩壊を誘導するのに十分な少なくとも1x108ウイルス粒子の、TK欠損性、GM-CSF発現性の複製能を有するワクシニアウイルスベクターを投与する工程。 - 被験体に少なくとも1x109ウイルス粒子が投与される、請求項1記載の方法。
- ワクシニアウイルスベクターが、2回、3回、4回、5回、またはそれ以上投与される、請求項1記載の方法。
- ワクシニアウイルスが、1日、2日、3日、4日、5日、6日、7日もしくはそれ以上、または1週間、2週間、3週間、4週間、5週間、6週間、7週間もしくはそれ以上にわたって投与される、請求項3記載の方法。
- 被験体がヒトである、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が、脳癌腫瘍、頭頚部癌腫瘍、食道癌腫瘍、皮膚癌腫瘍、肺癌腫瘍、胸腺癌腫瘍、胃癌腫瘍、結腸癌腫瘍、肝癌腫瘍、卵巣癌腫瘍、子宮癌腫瘍、膀胱癌腫瘍、精巣癌腫瘍、直腸癌腫瘍、乳癌腫瘍、または膵臓癌腫瘍である、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が肝細胞癌または黒色腫である、請求項6記載の方法。
- 量が、腫瘍内の細胞の少なくとも20%、腫瘍内の細胞の少なくとも30%、腫瘍内の細胞の少なくとも30%、腫瘍内の細胞の少なくとも40%、腫瘍内の細胞の少なくとも50%、腫瘍内の細胞の少なくとも60%、腫瘍内の細胞の少なくとも70%、腫瘍内の細胞の少なくとも80%、または腫瘍内の細胞の少なくとも90%において腫瘍崩壊を誘導するのに十分な量である、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が再発性である、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が原発性である、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が転移性である、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が多剤耐性である、請求項1記載の方法。
- 被験体に第2の癌療法を投与する工程をさらに含む、請求項1記載の方法。
- 化学療法、生物学的療法、放射線療法、免疫療法、ホルモン療法、抗血管療法、寒冷療法、毒素療法、または外科手術より選択される第2の癌療法をさらに含む、請求項1記載の方法。
- ワクシニアウイルスベクターの第2の投与をさらに含む、請求項1記載の方法。
- 被験体が免疫無防備状態である、請求項1記載の方法。
- 腫瘍が、治療前に切除不能であり、かつ治療後に切除可能である、請求項1記載の方法。
- 治療後に腫瘍細胞の生存を評価する工程をさらに含む、請求項1記載の方法。
- 投与する工程が、腫瘍塊への注射を含む、請求項1記載の方法。
- 投与する工程が、腫瘍脈管構造への注射を含む、請求項1記載の方法。
- 投与する工程が、腫瘍の領域のリンパ系または脈管構造系への注射を含む、請求項1記載の方法。
- 投与前に腫瘍を画像化する工程をさらに含む、請求項1記載の方法。
- ワクシニアウイルスが、1つまたは複数の改変ウイルス遺伝子を含む、請求項1記載の方法。
- 1つまたは複数の改変ウイルス遺伝子が、以下の1つまたは複数を含んでもよい、請求項24記載の方法:
(a)インターフェロン調節ポリペプチド;
(b)補体制御ポリペプチド;
(c)TNF調節ポリペプチドまたはケモカイン調節ポリペプチド;
(d)セリンプロテアーゼ阻害剤;
(e)IL-1β調節ポリペプチド;
(f)非感染性EEV型ポリペプチド;または
(g)細胞からの感染性ウイルスの放出を阻害するように働くウイルスポリペプチド(抗感染性ウイルス型ポリペプチド)。
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