JP2013137299A - タンパク質固定ゲルマイクロアレイ - Google Patents

Abstract

【課題】
生体試料中の微量タンパク質を感度よく検出するマイクロアレイを提供すること。
【解決手段】
複数の貫通孔を有し、当該貫通孔内にタンパク質又は当該タンパク質のエピトープが固定化されたゲルを有するマイクロアレイ。タンパク質がアレルゲンタンパク質であるマイクロアレイ。マイクロアレイと検体とを接触させることにより、マイクロアレイに固定化されたタンパク質と検体中の標的物質とを結合させる工程、及び、当該タンパク質に結合している標的物質の量を定量する工程を含む、生体関連物質の検出方法。
【選択図】 図１

Description

本発明は、タンパク質を検出するためのマイクロアレイに関する。

近年、ライフサイエンスの研究分野において、多数の生体情報を一括して解析する分析手法として、マイクロアレイ法が開発されている。

マイクロアレイとは、マイクロチップのような微小な基板上に、キャプチャープローブとして調べたい物質（標的物質）と結合する物質をアレイ状に複数配置させたものである。

検体をマイクロアレイの基板に配置したプローブに接触させて、標的物質とプローブを反応させた後、結合したものを検出することで、検体中に多数存在する標的物質の有無もしくはその存在量を一括して調べることができる。

既に様々な形態のマイクロアレイが開発されており、基板の２次元表面上でフォトリソグラフィーによりキャプチャープローブ（ＤＮＡ（デオキシリボ核酸）、ペプチドなど）が逐次的に合成されたマイクロアレイ（特許文献１）、予め合成しておいたキャプチャープローブが基板の２次元表面上にスポッティングされたマイクロアレイ（特許文献２）などがある。

他の例として、複数の区画を有し、各区画が孔や中空繊維により形成されており、キャプチャープローブを含むゲル状物が各区画に保持されている生体関連物質検出用マイクロアレイが提案されている（特許文献３及び特許文献４参照）。この製造方法は、フォトリソグラフィー法やスポッティング法と比較して、高価な製造設備を必要とせず、安定した品質のマイクロアレイが大量に生産できるという利点を有する。

また、この方法で製造されたマイクロアレイは、キャプチャープローブを含むゲル状物を中空繊維の中空部に保持するため、単に平面基板にキャプチャープローブを保持するマイクロアレイと比較して、一区画により多くの量のキャプチャープローブを保持することができる。さらには電気泳動によるハイブリダイゼーション反応を行うことができるので、検査時間の短縮も可能である。

このようなマイクロアレイの内、ＤＮＡをプローブとして配置したものは、特にＤＮＡマイクロアレイと呼ばれる。ＤＮＡの他にも、タンパク質、ペプチド、糖鎖、その他の化合物などを標的物質としてそれらが結合する物質を配置させた様々な生体関連物質検出用マイクロアレイが製造され、基礎研究分野を中心に利用されている。

このようなマイクロアレイ法を臨床診断分野に応用として、既存の臨床診断をマイクロアレイで行う試みもなされている。例えば、マイクロアレイを使って癌マーカーを検出する方法が報告されている。血中タンパク質である膵臓癌マーカータンパク質を、マイクロアレイ基板上に配置したキャプチャープローブと反応させた後、プローブに結合した膵臓癌マーカータンパク質を質量分析により分析する方法が開示されている（特許文献５）。肺癌患者の検体中に存在する自己抗体のエピトープとなるペプチドを配置したマイクロアレイを使って肺癌マーカーを検出する方法が開示されている（特許文献６）。

癌マーカー検出の他に、アレルギー検査を、マイクロアレイを使って行う方法も報告されている。具体的には、アレルギー反応を起こすアレルゲンタンパク質を配置したマイクロアレイを作製し、血清中に存在するアレルギーに特異的なＩｇＥの量を調べる方法が開示されている（特許文献７）。

アレルギー判定を行う検査は、血液中に存在するアレルゲンタンパク質に特異的に結合する抗体、即ち種々のアレルゲンに対する特異的ＩｇＥの量を調べる検査であるが、現在行われている方法では、１検査キットに対して、１種類のアレルギー項目しか検査できない。

米国特許第５４０５７８３号明細書 米国特許第５６０１９８０号明細書 国際公開第００／４０９４２号パンフレット 国際公開第０１／９８７８１号パンフレット 国際公開第０６／９８０８７号パンフレット 特表２０１０−５０７０６９号公報 特開２０１０−２６６４４８号公報 特開２００１−１３３４５３号公報 特開平１１−１０８９２８号公報 特開２０１０−２０４１３０号公報

「タンパク質精製と取り扱いのコツ」森山達哉編 羊土社 H. Tanaka, et al., Macromolecular Rapid Communication , 31(14), 1267-1271 (2010) U.K.Laemmli. Nature,1970,227,680

しかしながら、臨床診断に供される生体試料は、標的物質の他に多くの夾雑物を含んでおり、その中から極微量の標的物質を精度よく検出することは既存のマイクロアレイ技術では容易なことではない。従って、実際には臨床診断の場ではマイクロアレイ法は使われず、従来からある生化学的手法を使った単項目毎の検査（ＣＡＰ＿ＲＡＳＴ法）がまだ主流となっているのが実情である。

そこで、本発明の主な目的は、極微量の生体試料から数百種類の標的物質を同時に且つ安定的に検出する診断用途に用いるマイクロアレイを提供することである。

本発明者らは、上記の課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、貫通孔を有する基板の各貫通孔に保持させたゲルに標的物質（標的タンパク質）を捕捉する物質を固定化ことにより上記課題を達成することを見出し、本発明を完成させるに至った。

すなわち、本発明は、複数の貫通孔を有し、当該貫通孔内にタンパク質又は当該タンパク質のエピトープが固定化されたゲルを有するマイクロアレイに関する。

本発明によれば、検体中に存在する複数の微量な標的物質（標的タンパク質）を、感度よく検出するマイクロアレイを提供すること。

配列固定器具の概念図である。 本発明の実施例において、種々の検体液、洗浄液等を使用した際の結果を示す図である。

本発明のマイクロアレイは、複数の貫通孔を有し、当該貫通孔内にタンパク質又は当該タンパク質のエピトープが固定化されたゲルを有するマイクロアレイである。

当該マイクロアレイは、薄片プレートに貫通孔を形成して得ることもできるが、複数の線条体又は貫通穴を含むブロックを、線条体又は貫通穴の長手方向と交差する方向で切断して得るのが好ましい。安定した品質のマイクロアレイを大量生産することができるからである。

各構成について、以下に詳細に説明する。

（１）複数の線条体又は貫通孔を含むブロックの形成
線条体又は貫通孔を含むブロックとは、同軸方向に配向した線条体又は貫通孔を有するブロックである。貫通孔を形成する方法に特に限定はなく、例えば、特許文献８に記載されたような中空繊維を同軸方向に配列させた後、樹脂で固める方法を利用することができる。

（１−１）中空繊維
中空繊維は、種々の材料を用いることができるが、有機材料が好ましい。

有機材料からなる中空繊維としては、例えば、ナイロン６、ナイロン６６、芳香族ポリアミド等のポリアミド系中空繊維、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリカーボネート等のポリエステル系中空繊維、ポリアクリロニトリル等のアクリル系中空繊維、ポリエチレンやポリプロピレン等のポリオレフィン系中空繊維、ポリメタクリル酸メチル等のポリメタクリレート系中空繊維、ポリビニルアルコール系中空繊維、ポリ塩化ビニリデン系中空繊維、ポリ塩化ビニル系中空繊維、ポリウレタン系中空繊維、フェノール系中空繊維、ポリフッ化ビニリデンやポリテトラフルオロエチレン等からなるフッ素系中空繊維、ポリアルキレンパラオキシベンゾエート系中空繊維等が挙げられる。

当該中空繊維の製造方法は限定されず、特許文献９に記載されたような公知の方法で製造することができる。例えば、溶融紡糸法が好ましく、ノズルとしては馬蹄型やＣ型ノズル、２重管ノズルなどを使用することができる。本発明においては、連続した均一な中空部を形成させることができる点で２重管ノズルを用いるのが好ましい。

本発明で使用する中空繊維は多孔質であってもよく、溶融紡糸法又は溶液紡糸法に延伸法、ミクロ相分離法、抽出法などの公知の多孔化技術を組み合わせることにより得ることができる。多孔度は特に限定されるものではないが、繊維材料単位長さ辺りに固定化される生体高分子の密度を高めるという観点から、比表面積が大きくなるように高い多孔度であることが望ましい。

中空繊維の内径は任意に設定できる。好ましくは１０〜２０００μｍ、より好ましくは１５０〜１０００μｍとすることができる。

また、必要に応じて、中空繊維にはカーボンブラック等の黒色顔料を適量含有させたものを用いることもできる。黒色顔料を含有することにより、検出する際にゴミ等の夾雑物由来の光学的ノイズを軽減することができたり、樹脂の強度を上げたりすることができる。顔料の含有量は限定されず、中空繊維のサイズやマイクロアレイの使用目的等に応じて適宜選択することができる。例えば、０．１〜１０質量％、好ましくは０．５〜５質量％、より好ましくは１〜３質量％とすることができる。

（１−２）ブロック
ブロックに貫通孔を形成させるには、上記中空繊維の複数本を、中空繊維の各繊維軸が同一方向となるように３次元に配列し、その配列が乱れないように接着剤等の樹脂で固定する方法が利用できる。

例えば、粘着シート等のシート状物に複数本の中空繊維を所定の間隔をもって平行に配置し、シート状とした後、このシートを螺旋状に巻き取る方法（特許文献９）が挙げられる。

また、複数の孔が所定の間隔をもって設けられた多孔板２枚を孔部が一致するように重ねあわせ、それらの孔部に、中空繊維を通過させ、２枚の多孔板の間隔を開き、２枚の多孔板間の、中空繊維の周辺に硬化性樹脂原料を充満させ硬化させる方法（特許文献８）が挙げられる。

硬化性樹脂原料としては、ポリウレタン樹脂、エポキシ樹脂等の有機材料からなるものが好ましい。具体的には、有機高分子等から構成される１種類以上の材料から形成されているものが好ましい。

有機高分子としては、ポリウレタン、シリコン樹脂、エポキシ樹脂などのゴム材料や、ナイロン６、ナイロン６６、芳香族ポリアミド等のポリアミド系樹脂、ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリカーボネート等のポリエステル系樹脂、ポリアクリロニトリル等のアクリル系樹脂、ポリエチレンやポリプロピレン等のポリオレフィン系樹脂、ポリメタクリル酸メチル等のポリメタクリレート系樹脂、ポリビニルアルコール系樹脂、ポリ塩化ビニリデン系樹脂、ポリ塩化ビニル系樹脂、フェノール系樹脂、ポリフッ化ビニリデンやポリテトラフルオロエチレン等からなるフッ素系樹脂、ポリアルキレンパラオキシベンゾエート系樹脂等が挙げられる。

有機高分子にはカーボンブラック等の黒色顔料を適量含有させることもできる。黒色顔料を添加することにより、検出する際にゴミ等の夾雑物由来の光学的ノイズを軽減することができたり、また、樹脂の強度を上げたりすることができる。顔料の含有量は限定されず、中空繊維のサイズやマイクロアレイの使用目的等に応じて適宜選択することができる。例えば、０．１〜１０質量％、好ましくは０．５〜５質量％、より好ましくは１〜３質量％とすることができる。

また、有機系のブロックを使用することもでき、有機系ブロックにレーザー等により複数の貫通孔を形成させることもできる。各貫通孔は有機系のブロックに互いに平行に配置され、所定の間隔をもって形成されることが好ましい。貫通孔の形状は、正方形、長方形、円形等である。円形の場合、その直径は１０〜２０００μｍ程度である。また貫通孔の配置は、同心円状、らせん状等である。貫通孔は１０〜１０，０００孔／ｃｍ^２の密度でブロックに形成される。

更に、隣接する中空繊維の外表面を相互に融着することによって中空繊維束を製造することもできる。

配列の固定は、配列した中空繊維の全長又は所定部分に対して行う。配列した中空繊維の少なくとも一方の端部から適当な長さの部分は固定しない状態とすることもできる。

本発明で配列する中空繊維の数、すなわちスポットの数は限定されず、目的とする実験等に応じて適宜選択することができる。従って、中空繊維同士の距離も、マイクロアレイの面積と配列する中空繊維の数等に応じて適宜選択することができる。

（２）ブロックの薄片化
上記の方法で得られた貫通孔を有するブロックの各貫通孔中に、標的物質と結合するタンパク質を、ゲルを介して保持させた後、貫通孔が配向する方向と垂直方向に切断することにより、基板に貫通孔が配列されたマイクロアレイを得ることができる。

切断方法は、薄片化することができれば限定されない。例えば、ミクロトーム、レーザー等により行うことができる。得られる薄片の厚みは限定されず、実験の目的等に応じて適宜選択することができる。例えば、５ｍｍ以下、好ましくは０．１〜１ｍｍとすることができる。

（３）タンパク質又は当該タンパク質のエピトープの固定化
（３−１）タンパク質又は当該タンパク質のエピトープ
本発明のマイクロアレイでは、標的物質と結合する（標的物質を捕捉するための）タンパク質又は当該タンパク質のエピトープを、ゲルを介して貫通孔に保持させる。

標的物質とは、検体に含まれる、本発明のマイクロアレイにおいて検出対象となる生体から採取された生体関連物質を意味し、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ペプチド、タンパク質、ポリサッカライドなどの生体高分子、ヌクレオチド、ヌクレオシド、糖、アミノ酸、ビタミン、脂質などの生体内に存在する低分子有機化合物、無機化合物などを含む。なお、ここでいうタンパク質は、酵素、抗体、抗原の他、糖鎖が結合した糖タンパク質なども含まれる。これらの中でも、本発明ではアレルギー反応に関与する生体関連物質を標的物質として検出することが好ましい。

本発明のマイクロアレイの貫通孔に保持させるタンパク質又は当該タンパク質のエピトープの種類については特に限定されず、標的物質の種類に応じて適宜選択することができる。標的物質と結合する認識部位を有するタンパク質だけでなく、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体などの抗体タンパク質、抗体と特異的に結合する抗原タンパク質の他、レクチンタンパク質などがある。また、標的物質と結合する特異的な認識部位、すなわちエピトープでもよい。

タンパク質又は当該タンパク質のエピトープを調製する方法は、非特許文献１に記載されているような一般的手法を用いることができる。例えば、天然物から抽出したものを精製してもよく、また蚕などの昆虫、大腸菌から生産したものでもよい。また、自動合成装置で人工合成してもよい。

一例として、大豆からタンパク質を抽出し・精製する方法を以下に挙げる。まず大豆を超純水中に３時間浸水させる。次にこの大豆をミルにかけてすり潰した後、ガーゼで包んで圧搾し、この圧搾液をカラム（ＰＤ１０）で処理して、タンパク質抽出液を得る。得られた抽出液中のタンパク質量をＢｒａｄｆｏｒｄ法で定量化することにより、濃度既知のタンパク質抽出液を調製することができる。

本発明では、アレルギー反応に関与する生体関連物質を標的物質として検出することが好ましいので、ゲルに固定化するタンパク質又は当該タンパク質のエピトープとしては、アレルゲンタンパク質又は当該アレルゲンタンパク質のエピトープが好ましい。アレルゲンタンパク質の種類は特に限定されず、検出目的等に応じて適宜選択することができる。例えば、ハウスダスト、コナヒョウダニダニ、ヤケヒョウダニ、アシブトコナダニ、サヤアシニクダニ、ケナガコナダニ等のダニ、スギ、ヒノキ、ビャクシン（属）、ハンノキ（属）、カバ（シラカンバ属）、コナラ（属）、ブナ（属）、マツ（属）、ニレ（属）、ヤナギ（属）、カエデ（属）、クルミ（属）、クワ（属）、アカシア（属）、オリーブ、カモガヤ、オオアワガエリ、ハルガヤ、ギョウギシバ、ナガハグサ、オオスズメノテッポウ、セイバンモロコシ、ホソムギ、ヒロハウシノケグサ、アシ、コムギ（属）、オオブタクサ、スズメノヒエ（属）、コヌカグサ（属）、ヨモギ、ブタクサモドキ、ブタクサ、タンポポ（属）、ニガヨモギ、アキノキリンソウ、シロザ、カナムグラ、フランスギク、イラクサ（属）、ヘラオオバコ、カンジダ、アスペルギルス、ペニシリウム、ムコール、ヒメスイバ、ヘルミントスポリウム、マラセチア（属）、アルテルナアリア、黄色ブドウ球菌エンテロトキシンＡ、ピティロスポリウム（マラセチア）、クラドスポリウム、ネコ（上皮）、ネコ（フケ）、モルモット（上皮）、黄色ブドウ球菌エンテロトキシンＢ、トリコフィトン、ハムスター（上皮）、イヌ（上皮）、イヌ（フケ）、家兎（上皮）、ヤギ（上皮）、マウス、ラット、ブタ（上皮）、セキセイインコのふん、ウマ（フケ）、ウシ（フケ）、セキセイインコ（羽毛）、ガチョウ（羽毛）、ヒツジ（上皮）、アヒル（羽毛）、ユスリカ（成虫）、ニワトリ（羽毛）、ゴキブリ、スズメバチ、ヤブカ（属）、ハトのふん、ミツバチ、回虫、アシナガバチ、ガ、綿、包虫、アニサキス、オオバコ種子、イソシアネートＴＤＩ、イソシアネートＭＤＩ、イソシアネートＨＤＩ、無水フタル酸、エチレンオキサイド、ホルマリン、絹、ラテックス、卵黄、牛乳、卵白、ソバ、オボムコイド（耐熱性卵蛋白）、米、オオムギ、コムギ、ω−５、アワ、オートムギ、ライムギ、ヒエ、ピーナッツ、クルミ、アーモンド、キビ、トウモロコシ、インゲン、カシューナッツ、ココナッツ、エンドウ、ハシバミ、イチゴ、大豆、オレンジ、モモ、ブラジルナッツ、トマト、マンゴ、リンゴ、玉ネギ、セロリ、バナナ、メロン、ヤマイモ、スイカ、グレープフルーツ、ニンニク、カボチャ、キウイ、チーズ、ゴマ、アボガド、洋ナシ、β-ラクトグロブリン、麦芽、パセリ、牛肉、モールドチーズ、ニンジン、羊肉、カゼイン、グルテン、ジャガイモ、カニ、豚肉、サツマイモ、アワビ、カキ（牡蠣）、エビ、ホウレンソウ、タケノコ、タコ、ホタテ、マスタード、イワシ、サバ、ビール酵母、カカオ、サケ、イクラ、マグロ、α-ラクトアルブミン、タラコ、鶏肉、ロブスター、アサリ、ムラサキイガイ、イカ、アジ、タラ、カレイ、マツタケ、ヒトインスリン、ゼラチンを使用することができる。これらの中でも、エビ、カニ、コムギ、ソバ、卵黄、白卵、牛乳、ピーナッツ、アワビ、イカ、イクラ、オレンジ、キウイ、牛肉、クルミ、サケ、サバ、大豆、鶏肉、バナナ、豚肉、マツタケ、モモ、ヤマイモ、リンゴ、ゼラチンが好ましい。

ゲルに固定化するタンパク質や当該タンパク質のエピトープの量は、当該タンパク質の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、標的タンパク質を捕捉する機能を維持しつつ、安定的にゲルに固定できる点で０．２５〜２５０ｐｍｏｌ／μＬの濃度範囲で保持させることが好ましい。濃度範囲は、１〜１５０ｐｍｏｌ／μＬがより好ましく、２．５〜１００ｐｍｏｌ／μＬが更に好ましく、５〜５０ｐｍｏｌ／μＬが特に好ましい。

タンパク質や当該タンパク質のエピトープをゲルに固定化させる方法としては、そのままゲルに包埋させる方法の他、タンパク質をゲル中に分散させた後、加熱してタンパク質の熱変性による構造変化を利用してゲル中に絡ませて固定する方法でもよい。また、タンパク質中の複数の官能基を利用してポリマー結合させてもよい（非特許文献２）。また、タンパク質にゲルと結合性のある官能基を導入して、ゲルと共有結合させてもよい。例えば、タンパク質にビニル基を導入して、ゲル形成性重合性モノマーと共重合させる方法が利用できる（後頁の実施例参照のこと）。

（３−２）ゲル
本発明に用いるゲルの種類は、特に限定されず、天然物から得られるゲルであれば、アガロース、アルギン酸ナトリウムなどの多糖類の他、ゼラチン、ポリリジン等のタンパク質などが利用できる。

好ましい合成高分子としては、例えば、ポリアクロイルスクシンイミドなど反応性官能基を有するポリマーと、反応性を示す架橋剤を反応させて得られるゲルが利用できる。他には、アクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアクリルアミド、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド、Ｎ−アクリロイルアミノエトキシエタノール、Ｎ−アクリロイルアミノプロパノール、Ｎ−メチロールアクリルアミド、Ｎ−ビニルピロリドン、ヒドロキシエチルメタクリレート、（メタ）アクリル酸及びアリルデキストリン等の重合性モノマーを単量体として、多官能性単量体、例えば、メチレンビス（メタ）アクリルアミド、ポリエチレングリコールジ（メタ）アクリレート等との共重合により得られる合成高分子ゲルが好ましい。

本発明のマイクロアレイに用いるゲルの濃度は特には限定されず、使用するタンパク質等の種類や量、標的物質の種類等に応じて適宜選択することができる。例えば、単量体成分の濃度に換算して、２質量％以上が好ましく、より好ましくは２〜１０質量％、更により好ましくは３〜７質量％、特に好ましくは、３．５〜５質量％である。２質量％以上で、タンパク質等を確実に固定化することができ、標的物質の検出を効率良く行うことができる。また、該濃度を１０質量％以上としても飛躍的な効果が得られにくい傾向がある。

合成高分子ゲルを前記の貫通孔基板のマイクロアレイに保持させる場合は、前記ブロックに合成高分子のゲル前駆体溶液を充填させた後、ブロック内でゲル化させて保持させることができる。その後、ブロックの貫通孔の配向方向に対し、垂直な方向に薄片化することで、貫通孔基板にゲルを保持させたマイクロアレイを得ることができる。ここでゲル前駆体溶液とは、架橋構造を形成してゲル化をもたらす化学物質を含む溶液をいう。例えば、単量体、多官能性単量体、重合開始剤及び水等を含む溶液と定義することができる。

ゲル前駆体溶液をブロックの貫通孔内に充填する方法は、例えば、微細な針を有するシリンジに前記溶液を吸引し、各中空繊維の中空部に針を差し込むことにより導入することができる。

また、中空繊維束を樹脂で固めて製造するブロックを用いる場合において、中空繊維束の一方の端部が固定されていない場合は、次の方法によりゲル前駆体溶液を中空繊維内へ導入することもできる。まず中空繊維束の固定されている端部の中空部を封止し、もう一方の固定されていない端部の中空部を開放しておく。次に標的物質と結合する前記タンパク質、又はエピトープとなる該タンパク質のアミノ酸配列断片を含むゲル前駆体溶液を調製し、該ゲル前駆体溶液及び前記中空繊維束をデシゲーター内に設置し、次いで中空繊維束の中空繊維が固定されていない端部を、この溶液中に浸し、デシゲーター内を減圧状態にした後、常圧に戻すことにより、中空繊維の溶液に浸した端部より、この溶液を中空繊維中空部へ導入することができる。

中空繊維の中空部に導入されたゲル前駆体溶液を重合（反応）させることにより、タンパク質又は当該タンパク質のエピトープを含むゲル状物を中空繊維の中空部に保持させる。重合条件は特には限定されず、使用したゲル前駆体の種類等により適宜選択することができる。例えば、アクリルアミド系の単量体であれば、ラジカル開始剤を使用して重合することができ、好ましくは、アゾ系開始剤を利用した熱重合反応により重合させることができる。

（４）本発明マイクロアレイの使用
本発明のマイクロアレイの使用方法は、検体中の標的物質が検出できれば特には限定されない。

（４−１）マイクロアレイと検体との接触（反応）
例えば、まず、マイクロアレイと検体とを接触させる。このとき、マイクロアレイに検体を滴下するなどしてマイクロアレイに検体を接触させても良いし、検体にマイクロアレイを浸漬することにより検体をマイクロアレイに接触させても良い。

検体溶液の調製方法は特には限定されず、一般的に使用されている方法（公知の方法）を用いることができる。当業者であれば、マイクロアレイに適した検体溶液を調製することができる。検体溶液は、必要に応じて、塩や界面活性剤等の添加物を含むことができる。塩の種類は限定されず、実験の目的等に応じて適宜選択することができる。

塩としては、例えば、塩化ナトリウム、クエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウムなどが好ましい。検体溶液中の塩濃度は、０．００１〜０．１Ｍが好ましく、０．００５〜０．０８Ｍがより好ましく、０．０１〜０．０５Ｍがさらに好ましい。検体溶液中の塩濃度を０．００１Ｍ以上とすることにより、マイクロアレイと生体関連物質との非特異的な相互作用が形成されにくい。また０．１Ｍ以下とすることにより、生体関連物質とプローブとの特異的な相互作用による結合が形成されやすい。

界面活性剤の種類は、起泡性や標準物質の検体溶液への溶解度などを考慮して選択するが、検体溶液が種々の緩衝液を含むことから、陽イオン系界面活性剤又は非イオン系界面活性剤から選択することが好ましい。界面活性剤濃度は０．０１〜０．０４質量％が好ましく、０．０１５〜０．０３８質量％がより好ましく、０．０２〜０．０３５質量％がさらに好ましい。

接触させる際の検体の温度は限定されず、４〜３５℃、好ましくは２０〜３０℃程度とすることができる。また、接触させる時間も限定されず、標的物質などの種類に応じて適宜選択することができる。例えば、６０秒〜１８時間、好ましくは１〜８時間、より好ましくは２〜４時間とすることができる。

（４−２）マイクロアレイの洗浄
その後、必要に応じて、マイクロアレイを洗浄すればよい。洗浄することにより、マイクロアレイ中のゲルやタンパク質等に非特異的に結合した検体中の標的物質以外の物質が洗い流され、プローブに特異的に結合している標的物質だけを検出することができる。

当該洗浄に使用する洗浄液の種類は、マイクロアレイや貫通孔内に非特異的に結合した生態関連物質を効率良く洗い流すことができれば、特には限定されない。例えば、塩化ナトリウム、クエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウムなどの塩を含むことが好ましい。洗浄液中の塩濃度は０．１２〜０．４Ｍが好ましく、０．１３〜０．３Ｍがより好ましく、０．１５〜０．２５Ｍがさらに好ましい。０．１Ｍ以上とすることにより、効率良く非特異的に結合した物質を除去することができる。また、０．４Ｍ以下とすることにより、特異的に結合した生体関連物質が除去されるのを避けることができる。

洗浄の方法は限定されない。例えば、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０を含む０．１２ＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１２Ｍ塩化ナトリウム溶液中に浸漬させ、２０〜３０℃の室温下で、１０〜２０分間振とうさせる操作を、１〜３回程度繰り返すなどの方法により洗浄することができる。

（４−３）検出
洗浄後、マイクロアレイに結合した標的物質を種々の標識剤で標識する。例えば、標識剤の水溶液を調整し、標識剤溶液中に洗浄後のマイクロアレイを１０分間から３０分間浸漬させることで標識することができる。標識剤溶液の濃度は任意に決めることができる。標識剤は限定されず、例えば一般に市販されている西洋ワサビペルオキシダーゼのような発光性の標識剤、Ｃｙ３、Ｃｙ５、アレクサ６８０などの蛍光標識剤を利用することができる。また蛍光や発光を検出することができる機器、例えば蛍光顕微鏡または蛍光スキャナーなどが利用できる。ただし、検出する場合は、検出環境を暗室にするなど遮光することが好ましい。外部からの光が検出環境に照射されると、それがノイズとなり、標識剤の光量を正確に検出できないことがあるからである。

＜実施例１：ＢＳＡ固定化マイクロアレイ＞
本実施例では、タンパク質としてＢＳＡ（牛血清アルブミン、分子量約６６ｋＤａ）をゲルに固定化したマイクロアレイを製造した。

（１）ビニル化ＢＳＡの製造
ＢＳＡをゲルに固定するためにＢＳＡへのビニル基の導入を以下の方法で行った。

ビニル化剤の調製
和光純薬製特級試薬ジメチルスルホキシド（９９８．５μＬ）をマイクロピペットで１ｃｃ容量のマイクロチューブに計り取り、そこにアルドリッチ社製メタクリル酸無水物（無水メタ酸）を同じくマイクロピペットで１．５μＬ加えて、無水メタ酸のジメチルスルホキシド溶液（１０ｍＭ）を調製した（ビニル化剤）。

ＢＳＡのビニル化
次にアルドリッチ社製ＢＳＡの結晶を０．０１０３５ｇ秤量し、マイクロチューブに入れ、超純水（ミリＱ水）１．５ｍＬに溶解させた。

当該ＢＳＡ溶液（２０μＬ）をマイクロピペットで反応用の容量１００μＬマイクロチューブに投入し、次いでナカライテクス社製炭酸塩緩衝液（１０μＬ）及び上で調製したビニル化剤（１０μＬ）を順次添加した。混合液が均一になるようにボルテックスミキサーで攪拌した後、チューブ壁面に付着した液を遠心分離機でチューブの底部に集めた。その後、室温にて３０分間静置させ、反応させた。

ビニル化ＢＳＡの単離・精製
このようにして得られた反応液４０μＬをスピンカラム（ミリポア社製ＭＩＣＲＯＣＯＮ（登録商標）、ＹＭ−３０）に移し、超純水６０μＬを添加して総量を１００μＬにした。次に、反応液を入れたスピンカラムを遠心分離機にセットし、１００００Ｇで１０分間処理した。その後、スピンカラムの濃縮部に超純水１００μＬ添加して、更に１００００Ｇで１０分間遠心分離する処理を５回繰り返した。

スピンカラムを取り出し、スピンカラムの濃縮部で濃縮されているビニル化ＢＳＡ溶液を超純水２０μＬで希釈した。スピンカラムの濃縮部を一旦チューブ本体から取り外し、逆さにして再度本体に取り付け、１００００Ｇで１０分間遠心分離処理を行った。チューブに集められたビニル化ＢＳＡ溶液を遠心エバポレーターで常温乾燥させて、ビニル化ＢＳＡ約１６μｇを得た。

（２）中空繊維束の製造
図１に示す配列固定器具を利用して中空繊維束を製造した。なお、図中のｘ、ｙ、ｚは直交の３次元軸であり、ｘ軸は繊維の長手方向と一致する。

まず、直径０．３２ｍｍの孔が、孔の中心間距離を０．１２ｍｍとして、縦横各１６列で合計２５６個設けられた厚さ０．１ｍｍの多孔板２枚を準備した。これらの多孔板を重ね合わせて、そのすべての孔に、外径２８０μｍ、内径１８０μｍ、長さ１５０ｍｍのポリカーボネート中空繊維を１本づつ、通過させた。

Ｘ軸方向に各繊維に０．１Ｎの張力をかけた状態で２枚の多孔板の位置を移動させて、中空繊維の一方の端部から２０ｍｍの位置と１００ｍｍの位置の２ヶ所に固定した。即ち、２枚の多孔板の間隔を８０ｍｍとした。次いで、多孔板間の空間の周囲３面を板状物で囲った。このようにして上部のみが開口状態にある容器を得た。

次に、この容器の上部から容器内に樹脂原料を流し込んだ。樹脂としては、ポリウレタン樹脂接着剤（日本ポリウレタン工業（株）ニッポラン４２７６、コロネート４４０３）の総質量に対し、２．５質量％のカーボンブラックを添加したものを使用した。２５℃で１週間静置して樹脂を硬化させた。次いで多孔板と板状物を取り除き、中空繊維束を得た。得られた中空繊維束をデシケーター中に入れ内部を窒素置換した後、１６時間静置した。

（３）タンパク質の固定化
表１に示す通り、ビニル化ＢＳＡの濃度水準に応じてゲル前駆体溶液を４種類調製し、濃度水準毎に３０セットを準備し、ウェルプレートの各ウェルに８０μＬ分注した。当該ウェルプレートをデシゲーター内に設置し、端部から各ウェルに分注したゲル前駆体溶液を吸引し、中空繊維の中空部に導入した。

次いで、前記の中空繊維束を前記デシケーター内に設置し、デシケーター内を窒素雰囲気下、５５℃まで昇温して、５５℃で３時間、重合反応を実施した。

重合反応終了後、ミクロトームを用い、中空繊維束を中空繊維の長手方向に直角方向に厚さ２５０μｍで薄片化した。このようにして、２５６個のキャプチャープローブを含むゲルスポットを搭載した厚さ２５０μｍのマイクロアレイを１００枚作製した。

（４）マイクロアレイの評価
作製したＢＳＡ固定マイクロアレイを使って、抗ＢＳＡ抗体の検出を試みた。

検体の調製及び反応
ＡＢＣＡＭ社製ビオチン標識・抗ＢＳＡ抗体２０μＬに０．０１２ＭのＴＮＴ緩衝液（０．０１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．０１２Ｍ、ＮａＣｌ／０．０３％、Ｔｗｅｅｎ−２０）を１８０μＬ加えて、ピペッティングにより均一になるように混合して、総量２００μＬの検体溶液を調製した。

三菱レイヨン社製ジェノパール（登録商標）用ハイブリチャンバーに、この検体溶液を注入し、先に作製したＢＳＡ固定マイクロアレイを１枚ゆっくり挿入し、チャンバーの蓋を閉め、室温で２時間ほど静置反応させた。

反応後の洗浄
容量８ｍＬのチューブ（ＳＡＲＳＴＥＤＴ社製）に０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ／０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０溶液を６ｍＬ注入し、そこに反応後にチャンバーから取り出したＢＳＡ固定マイクロアレイを完全に液中に浸漬するように挿入した。

次に、チューブの蓋を閉めて室温で、２０分間ローテーターを使って回転させた（１０ｒｐｍ）。その後、マイクロアレイをチューブから取り出し、０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液の入ったチューブに入れ替えて、室温で１０分間ローテーターを使って回転させた（１０ｒｐｍ）。

反応後の標識
Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｉｅｓ，Ｉｎｃ．社製Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ５（１ｍｇ）にＮｕｃｌｅａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒを１ｍＬ加えて、溶解させた。１００００Ｇで３分間遠心処理して、沈殿物を除いた後、Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ５溶液１２μＬを調整した。

Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ５溶液１２μＬを、０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液６ｍＬで希釈して標識液とした。

先に洗浄したマイクロアレイを標識液中に浸漬させ、室温で３０分間静置した。標識処理後のマイクロアレイを０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ／０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０溶液に浸漬させ、室温下で２０分間ローテーターを用いて回転させた（１０ｒｐｍ）。その後、マイクロアレイを０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液に浸漬させた。

検出
レーザー式蛍光顕微鏡（横河電機社製 ＭＢ−０３）の試料台に、標識後のマイクロアレイを載せ、波長６３３ｎｍの励起光を露光させ、タンパク質マイクロアレイの各スポットの蛍光シグナルを検出した。露光時間は、０．１秒、１秒、４秒、４０秒の４条件で測定を行い、単位秒当りの蛍光シグナル強度を蛍光シグナル強度データとして採用した。測定したマイクロアレイの各スポットの蛍光シグナル強度を表２に示した。

表２に示すとおり、プローブ濃度の水準毎に蛍光シグナルの変動係数を算出すると、５ｐｍｏｌ／μＬから２５ｐｍｏｌ／μＬまで水準を上げるに従い、バラツキが小さくなっていることが確認できた。

＜実施例２：アレルゲンタンパク質固定化マイクロアレイ＞
アレルゲンタンパク質の調製
ゲルに固定化するアレルゲンタンパク質として、ソバ、小麦、ピーナッツ、ダイズ、コメ、エビ、カニ、ミルク、卵白を選択し、各タンパク質の抽出を以下の方法で行った。

＜ソバ＞そば粉２０ｇに蒸留水５０ｍＬを加え、均一になるまでスパテラで混ぜた。

＜小麦＞小麦粉２０ｇ（日清製粉社製）に蒸留水５０ｍＬを加え、均一になるまでスパテラで混ぜた。

＜ピーナッツ＞ピーナツ２０ｇに蒸留水５０ｍＬを加え、ミルにかけた後、ガーゼで包んで圧搾した。

＜ダイズ＞大豆５ｇに蒸留水５０ｍＬを加え、３．５時間浸水させミルにかけた後、ガーゼで包んで圧搾した。

＜コメ＞米７５ｇに蒸留水７５ｍＬを加え、３．５時間浸水させミルにかけた後、ガーゼで包んで圧搾した。

＜エビ＞エビ（ブラックタイガー）の可食部４０ｇに蒸留水５０ｍＬを加え、ミルにかけた。

＜カニ＞カニの可食部３０ｇに蒸留水５０ｍＬを加え、ミルにかけた。

＜ミルク＞市販の牛乳を用いた。

＜卵白＞卵白４ｍＬに蒸留水８ｍＬを加え、よく攪拌した。

これらの各液体について、Ｂｒａｄｆｏｒｄ法により濃度を求めた後、蒸留水で２０ｍｇ／ｍＬに調製し、表３に示す組成の抽出液と１：１の質量比で混合した後、３０００ｒｐｍで１０分間遠心した上清を各アレルゲンタンパク質抽出液とした。なお、これらの抽出液中のタンパク質量（濃度）は、２Ｄ Ｑｕａｎｔ Ｋｉｔ（ＧＥヘルスケア社製）を使用して求めた。

アレルゲンタンパク質へのビニル基導入
アレルゲンタンパク質のビニル化反応を行うにあたり、反応させるアレルゲンタンパク質とビニル化剤の反応量比をモル比で換算するために、まずアレルゲンタンパク質の分子量を以下の手順で決定した。

タンパク質の分子量は、最も一般的な手法である支持体にポリアクリルアミドゲルを使った電気泳動法（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）を用いて行った。有色分子量マーカー（ＧＥ社製；Ｆｕｌｌ−Ｒａｎｇｅ Ｒａｉｎｂｏｗ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｗｅｉｇｈｔ Ｍａｒｋｅｒｓ）をＬａｅｍｍｌｉ法（非特許文献３）に準じて、電気泳動により分離し、各マーカータンパク質の泳動距離と分子量との相関曲線を作成した。

次に、調製した各アレルゲンタンパク質抽出液を先と同様電気泳動により構成タンパク質を分離し、得られた構成タンパク質の各バンドをＳＹＰＲＯ−ＯＲＡＮＧＥで染色した。各バンドの蛍光強度を蛍光顕微鏡で測定し、その強度比から構成タンパク質の量比を決定した。

先に作成したマーカーの分子量−泳動距離の相関曲線を使って各バンドの分子量を決定した後、それぞれの求めた分子量の値に、構成タンパク質の量比を掛けたものを足し合わせた値を抽出物中に含まれるタンパク質の平均分子量とした。

ビニル化反応
ＢＳＡの代わりに各アレルゲンタンパク質を使用した以外は、実施例１と同様の方法で、ビニル化タンパク質約１００μｇを得た。

マイクロアレイの作製
ＢＳＡの代わりに各アレルゲンタンパク質を使用した以外は、実施例１と同様の方法で、表４の通りに重合溶液組成を調整して作製したマイクロアレイを１００枚作製した。

（４）マイクロアレイの評価
作製したマイクロアレイを使って、アレルゲン特異的ＩｇＥ抗体の検出を試みた。
検体の調製及び反応
ＭＡＳＴＩＩ検査により、表５に示すアレルギー判定結果が得られたＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｅｎｚｙｍｅｓ社製のヒト血清を三菱レイヨン社製ジェノパール（登録商標）用ハイブリチャンバーに２００μＬ注入し、先に作製したマイクロアレイを１枚挿入し、チャンバーの蓋を閉め、室温で２時間ほど静置反応させた。

反応後の洗浄
容量８ｍＬのチューブ（ＳＡＲＳＴＥＤＴ社製）に０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ／０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０溶液を６ｍＬ注入し、そこに反応後にチャンバーから取り出したマイクロアレイを完全に液中に浸漬するように挿入した。

次に、チューブの蓋を閉めて室温で、２０分間ローテーターを使って回転させた（１０ｒｐｍ）。その後、マイクロアレイをチューブから取り出し、０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液の入ったチューブに入れ替えて、室温で１０分間ローテーターを使って回転させた（１０ｒｐｍ）。
ビオチン標識抗体との反応
ＫＰＬ社製ビオチン標識・抗ヒトＩｇＥ抗体を０．０１２ＭのＴＮＴ緩衝液を加えて１００倍希釈し、ピペッティングにより均一になるように混合して、総量２００μＬの反応溶液を調製した。
三菱レイヨン社製ジェノパール（登録商標）用ハイブリチャンバーに、この反応溶液を注入し、先に作製したマイクロアレイを１枚ゆっくり挿入し、チャンバーの蓋を閉め、室温で２時間ほど静置反応させた。
反応後の洗浄
容量８ｍＬのチューブ（ＳＡＲＳＴＥＤＴ社製）に０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ／０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０溶液を６ｍＬ注入し、そこに反応後にチャンバーから取り出したマイクロアレイを完全に液中に浸漬するように挿入した。

次に、チューブの蓋を閉めて室温で、２０分間ローテーターを使って回転させた（１０ｒｐｍ）。その後、マイクロアレイをチューブから取り出し、０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液の入ったチューブに入れ替えて、室温で１０分間ローテーターを使って回転させた（１０ｒｐｍ）。
反応後の標識
Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｉｅｓ，Ｉｎｃ．社製Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ５（１ｍｇ）にＮｕｃｌｅａｓｅ−ｆｒｅｅ ｗａｔｅｒを１ｍＬ加えて、溶解させた。１００００Ｇで３分間遠心処理して、沈殿物を除いた後、Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ５溶液１２μＬを調整した。

Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−Ｃｙ５溶液１２μＬを、０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液６ｍＬで希釈して標識液とした。

先に洗浄したマイクロアレイを標識液中に浸漬させ、室温で３０分間静置した。標識処理後のマイクロアレイを０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ／０．０５％ Ｔｗｅｅｎ−２０溶液に浸漬させ、室温下で２０分間ローテーターを用いて回転させた（１０ｒｐｍ）。その後、マイクロアレイを０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ／０．１２Ｍ ＮａＣｌ溶液に浸漬させた。

検出
レーザー式蛍光顕微鏡（横河電機社製 ＭＢ−０３）の試料台に、標識後のマイクロアレイを載せ、波長６３３ｎｍの励起光を露光させ、マイクロアレイの各スポットの蛍光シグナルを検出した。露光時間は、０．１秒、１秒、４秒、４０秒の４条件で測定を行い、単位秒当りの蛍光シグナル強度を蛍光シグナル強度データとして採用した。測定したマイクロアレイの各スポットの蛍光シグナル強度を表６に示した。

アレルギー判定結果で抗体反応が高かったアレルゲン項目について、本マイクロアレイにおいても、表６に示すとおり、抗体特異的なシグナルを確認することができた。

＜実施例３：合成ペプチド固定化マイクロアレイ＞
マイクロアレイの製造
ＢＳＡの代わりに合成ペプチド（Ｃ末端側をビニル化したアミノ酸配列（配列（Ｎ末端→Ｃ末端）：ＤＹＫＤＤＤＤＫ）からなるペプチド）を使用した以外は、実施例１と同様にしてマイクロアレイを製造した。ゲル前駆体溶液は、表７に示す通りプローブの濃度水準に応じて１６種類調製した。

検体溶液の調製
ビオチン標識モノクローナル抗ＦＬＡＧ抗体（アルドリッチ社製：本発明で使用するプローブに特異的に結合する）、及びビオチン標識モノクローナル抗ＨＡ抗体（アルドリッチ社製）を表８に示す量を含む検体溶液（溶媒はＴＮＴ溶液）が、それぞれ２００μＬになるように調製した。また、表９に示すように、当該検体中に種々の濃度のＮａＣｌ（Ｍ）及びＴｗｅｅｎ−２０（質量％）を含むように調製し、９種類準備した。

検体溶液とマイクロアレイの接触
調製した検体溶液に対し、マイクロアレイを２時間浸漬した。浸漬させる際の検体溶液の温度は、表８に示される番号１、３、５は３０℃、番号２、４、６は室温とした。

洗浄
まず、検体溶液に浸漬させた後のマイクロアレイを、表９に示す９種類の洗浄液（表９の「検体溶液」の欄に記載のＮａＣｌ，Ｔｗｅｅｎ−２０及び０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌの水溶液）に浸漬し、室温で２０分間洗浄した。次いで、表９の右欄（洗浄液）に示す９種類の洗浄液（９種類のＮａＣｌと０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌの水溶液）にチップを浸漬させて、室温で１０分間洗浄した。

染色
Ｃｙ５ Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて染色を行った。すなわち、ストレプトアビジン−Ｃｙ５ １ｍｇを１ｍＬの滅菌水に溶解し、そのうちの１０μＬを０．１２Ｍ ＴＮＴ溶液（０．１２Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１２Ｍ ＮａＣｌ、０．５％Ｔｗｅｅｎ２０溶液）５ｍＬに混合し、染色液を作製した。作製した染色液に対し、マイクロアレイを室温で３０分間浸漬した。

洗浄
マイクロアレイを染色液中から取り出し、表９に示す番号１〜９の各濃度水準に基づいて調製した、塩と界面活性剤とを含む洗浄液にチップを浸漬させて、室温で２０分間洗浄した。

検出
レーザー式蛍光顕微鏡（横河電機社製 ＭＢ−０３）の試料台に、標識後のマイクロアレイを載せ、波長６３３ｎｍの励起光を露光させ、マイクロアレイの各スポットの蛍光シグナルを検出した。露光時間は、５０ｍｓｅｃ、１００ｍｓｅｃ、１ｓｅｃ、４ｓｅｃ、４０ｓｅｃの５条件で測定を行い、単位秒当りの蛍光シグナル強度を蛍光シグナル強度データとして採用した。

（３）結果
表８に示す番号１〜６の検体濃度水準に対して、表９に示す番号１〜９の条件での実験をそれぞれｎ＝３で実施し、マイクロアレイの各スポットの蛍光シグナル強度から、定量性の指標となるＳＮ比を算出した。ＳＮ比の算出は「入門パラメータ設計」を参考にした。

図表には示していないが、貫通孔内に固定されたプローブの濃度が１５ｐｍｏｌ／μＬ未満のマイクロアレイでは、１５ｐｍｏｌ／μＬ以上と比較してＳＮ比が低かった。

種々の検体溶液及び洗浄液を用いた際の結果を図２に示す。これは、貫通孔内に固定されたプローブの濃度が４０ｐｍｏｌ／μＬとしたときの、各制御因子の水準がＳＮ比に与える影響を示すグラフである。得られたＳＮ比は、検体溶液の塩濃度依存的に低くなり、検体溶液の界面活性剤濃度が０．０３質量％を越えると低くなる傾向にあり、また、洗浄液の塩濃度を０．１１Ｍより高くすることにより高くなる傾向が見られた。

１ 配列固定器具
１１ 孔部
２１ 多孔板
３１ 中空繊維
４１ 板状物

Claims (6)

1. 複数の貫通孔を有し、当該貫通孔内にタンパク質又は当該タンパク質のエピトープが固定化されたゲルを有するマイクロアレイ。
2. 固定化されたタンパク質又は当該タンパク質のエピトープの濃度が０．２５〜２５０ｐｍｏｌ／μＬである、請求項１記載のマイクロアレイ。
3. ゲルのモノマー濃度が２質量％以上である、請求項１又は２記載のマイクロアレイ。
4. タンパク質がアレルゲンタンパク質である請求項１〜３のいずれかに記載のマイクロアレイ。
5. 下記工程を含む、マイクロアレイの製造方法。
   （１）複数本の中空繊維を中空繊維の各繊維軸が同一方向となるように３次元に配列し、その配列を樹脂で固定することにより、中空繊維束を製造する工程
   （２）タンパク質又は当該タンパク質のエピトープを含むゲル前駆体溶液を中空繊維束の各中空繊維の中空部に導入する工程
   （３）中空繊維束の中空部に導入したゲル前駆体溶液を反応させ、タンパク質又は当該タンパク質のエピトープが固定化されたゲルを中空繊維の中空部に保持する工程
   （４）中空繊維束を繊維の長手方向に交叉する方向で切断して薄片化する工程
6. 請求項１〜４のいずれかに記載のマイクロアレイと検体とを接触させることにより、マイクロアレイに固定化されたタンパク質と検体中の標的物質とを結合させる工程、及び、当該タンパク質に結合している標的物質の量を定量する工程を含む、生体関連物質の検出方法。
   
   

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