JP2012500809A - 免疫調節活性 - Google Patents
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Abstract
【化1】
Description
R1は、ヒドロキシ、アルコキシ、ハロ、又はOC(O)R9であり、
R2及びR3は、独立して、水素、ヒドロキシ、アルコキシ、アルキル、ハロ、又はOC(O)R9であり、
Aは、水素、又は任意で置換された次の式のフェニルであり、
R7及びR8は、独立して、水素、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、又はハロであり、
R9は、水素、アルキル、アリール、アリールアルキル、又はアミノであり、かつ
「---」の描画は、単結合又は二重結合を表す化合物、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグの、免疫調節剤としての使用が提供される。
次に、添付図面を参照して、本発明を、あくまでも非限定的な例として説明する。
R1は、ヒドロキシ、アルコキシ、ハロ、又はOC(O)R9であり、
R2及びR3は、独立して、水素、ヒドロキシ、アルコキシ、アルキル、ハロ、又はOC(O)R9であり、
Aは、水素又は任意で置換された次の式のフェニルであり、
R7及びR8は、独立して、水素、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、又はハロであり、
R9は、水素、アルキル、アリール、アリールアルキル、又はアミノであり、かつ
「---」の描画は、単結合又は二重結合を表す化合物、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
R1が、ヒドロキシ、C1-4-アルコキシ、又はOC(O)R9であり、
R2及びR3の一方が、水素、ヒドロキシ、C1-4-アルコキシ、ハロ、又はOC(O)R9であり、R2及びR3の他方が、ヒドロキシ、C1-4-アルコキシ、ハロ、又はOC(O)R9であり、
R7が、水素であり、
R8が、水素、ヒドロキシ、C1-4-アルキル、又はハロであり、かつ
R9が、C1-4-アルキル、フェニル、又はベンジルであり、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
R1が、ヒドロキシ、メトキシ、又はアセチルオキシであり、
R2及びR3の一方が、水素、ヒドロキシ、メトキシ、ブロモ、クロロ、又はアセチルオキシであり、R2及びR3の他方が、ヒドロキシ、メトキシ、ブロモ、クロロ、又はアセチルオキシであり、かつ
R8が、水素、ヒドロキシ、メチル、メトキシ、ブロモ、又はクロロであり、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
R1が、ヒドロキシであり、
R2及びR3の一方が、水素、ヒドロキシ、又はメトキシであり、R2及びR3の他方が、ヒドロキシ又はメトキシであり、かつ
R8が、水素又はメチルであり、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
イソフラブ-3-エン-4',7-ジオール (Cpd.1)、
4'-メトキシイソフラブ-3-エン-7,8-ジオール (Cpd.2)、
8-メチルイソフラブ-3-エン-4',7-ジオール (Cpd.3)、
イソフラブ-3-エン-7-オール (Cpd.4)、
イソフラブ-3-エン-3',7-ジオール (Cpd.5)、
イソフラブ-3-エン-4',7,8-トリオール (Cpd.6)、
8-メチルイソフラブ-3-エン-3',7-ジオール (Cpd.7)、
3'-メトキシ-8-メチルイソフラブ-3-エン-4',7-ジオール (Cpd.8)、
3'-メトキシイソフラブ-3-エン-4',7-ジオール (Cpd.9)、
3'-メトキシイソフラブ-3-エン-7-オール (Cpd.10)、
8-メチルイソフラブ-3-エン-7-オール (Cpd.11)、
3',4'-ジメトキシイソフラブ-3-エン-7-オール (Cpd.12)、
3',4'-ジメトキシ-8-メチルイソフラブ-3-エン-7-オール (Cpd.13)、
8-ブロモイソフラブ-3-エン-4',7-ジオール (Cpd.14)、
イソフラブ-3-エン-4',5,7-トリオール (Cpd.15)、及び
4'-ブロモイソフラブ-3-エン-7-オール (Cpd.16)。
R4、R5、及びR6が、独立して、水素、ヒドロキシ、C1-4-アルコキシ、C1-4-アルキル、アミノ、OC(O)R9であり、かつ
R9が、C1-4-アルキル、フェニル、又はベンジルであり、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
R4が、水素、ヒドロキシ、メトキシ、アミノ、又はアセチルオキシであり、
R5及びR6が、独立して、水素、ヒドロキシ、メトキシ、アミノ、又はアセチルオキシであり、かつ
R4、R5、及びR6の少なくとも1つが、水素ではなく、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
R4及びR5の一方が、水素、ヒドロキシ、メトキシ、又はアミノであり、R4及びR5の他方が、ヒドロキシ、メトキシ、又はアミノであり、かつ
R6が、水素であり、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
R4が、メトキシであり、かつ
R5が、水素であり、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグである。
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.17)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-フェニルクロマン-7-オール (Cpd.18)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(3-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.19)、
3-(3,4-ジメトキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.20)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メチルフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.21)、
3-(4-メトキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-7-メトキシクロマン (Cpd.22)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(2,6-ジメトキシ-4-ヒドロキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.23)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(2-ヒドロキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.24)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(3-アシル-2-ヒドロキシ-4-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.25)、
3-(3-ヒドロキシフェニル)-4-(3-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.26)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-ヒドロキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.27)、
3-(4-ブロモフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.28)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(3-メトキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.29)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(3-アミノフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.30)、及び
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-フェノキシフェニル)クロマン-7-オール (Cpd.31)、
或いは、その薬学的に許容可能な塩。
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オール (Cpd.32)、
3-(4-メトキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-7-メトキシ-8-メチルクロマン (Cpd.33)、
3-(3,4-ジメトキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オール (Cpd.34)、
3-(4-メトキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オール(Cpd.35)、
3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-7-メトキシ-8-メチルクロマン (Cpd.36)、
3-(3-メトキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オール(Cpd.37)、
3-(3,4-ジヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-7-メトキシ-8-メチルクロマン (Cpd.38)、
3-(3-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オール (Cpd.39)、及び
3-(3,4-ジヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オール (Cpd.40)、
或いは、その薬学的に許容可能な塩。
材料
Red Cross Blood Bank(オーストラリア、メルボルン)から、健康な志願者からの濃縮血液バッグ(50mL)の提供を受けた。骨髄試料は、Peter MacCallum Tissue Research Management Committeeから倫理承認を取得後(プロジェクト番号07/14)、Peter MacCallum Cancer Instituteの組織バンクから入手した。
PBMCは、フィコール勾配を使用して、健康な志願者からの血液バッグのバフィーコートより単離した。PBMCは、10%(v/v)FCSを補充したRPMI-1640培地(GIBCO-BRL、ニューヨーク州グランドアイランド)に再懸濁し、生存細胞をトリパンブルー色素排除法により計数した。PBMCは、1.5mLの90% FCS+10% DMSO中、20乃至30×106細胞/バイアルで、液体窒素中において保存した。これらの実験に使用したPBMC試料中の様々な細胞型の頻度は、FACS分析により次のように決定した:CD3+(Tリンパ球)70乃至80%、CD19+(Bリンパ球)5乃至15%、CD14+(単球)10乃至20%、CD56+(NK細胞)5乃至10%、CD15+(好中球)5%未満。CD3+細胞集団は、30乃至40%のCD8+T細胞及び60乃至70%のCD4+T細胞により構成されていた。
実験の直前に、凍結PBMCを解凍し、Multifuge 3s(Heraeus)において4分間、1400rpmで遠心分離し、RPMI+10% FCSで洗浄し、T細胞培地(RPMI+10% FCS+10μmの2-メルカプトエタノール(Sigma)、1×グルタミン、1×非必須アミノ酸(Gibco))において、2×106細胞/mLで再懸濁した。細胞(2×105)は、10μg/mLの抗CD3抗体及び5μg/mLの抗CD28抗体及び20U/mLのIL-2を各ウェルに追加することで活性化した。細胞は、5% CO2に維持した加湿インキュベータにおいて、リンパ球の多数の大きな球状凝集体又は「バースト("bursts")」が観察されるまで、37℃で4乃至5日間インキュベートした。活性化した増殖T細胞は、その後の実験用にウェルからプールした。静止T細胞は、同じ長さの時間に渡ってインキュベートしたが、但し20U/mLのIL-2のみが存在する状態とした。
混合リンパ球反応は、互いに関係のないHLA不一致の健康なドナーの血液試料をドナー/レシピエントペアとして使用して、達成した。刺激PBMCは、以前に説明されているように30Gyでγ線照射した(Zenhausenら、2007)。応答PBMCは、PBS中で2回洗浄し、5,6-カルボキシ-サクシニミジル-フルオレセイン-エステル(CSFE)標識(1.25μM、Sigma)を室温で5分間行い、PBS/10% FCS中で2回洗浄した。96 U-ウェルプレートにおいて、ウェル当たり20万個の刺激及び応答細胞をT細胞培地中において1:1の比率で追加した。刺激及び応答細胞は、単独での追加も行い、全ての細胞を5%CO2、37℃の加湿インキュベータにおいて培養した。生存率、CFSE蛍光、及び細胞表面抗原発現を、フローサイトメトリにより判定した。細胞をFACSバッファ(PBS、2% FCS)中で2回洗浄し、50μL/5×105細胞で再懸濁し、FlowJo(TreeStar)ソフトウェアを使用したBecton Dickinson LSRII FACSアナライザにおいて分析した。
80%以上の芽球を含有するAML(n=22)及びALL(n=8)患者からの骨髄試料を、組織バンクから選択した。骨髄試料は、解凍し、Multifuge 3s(Heraeus)において4分間、1400rpmで遠心分離し、RPMIにおいて2回洗浄し、RPMI+10%FCS中に再懸濁させた。アリコートを、0.1% DMSO(コントロール)又は10μMのPXDの存在下で24時間インキュベートし、形態及び生存率について検査した。アポトーシスのパーセンテージを、AV/PI染色により、[PXD処置後の生存芽球の%]/[コントロール試料における生存芽球の%]として決定した。
WST-1/PMS還元率を、以前に説明されているマイクロプレート形式において測定した(Berridge及びTan、1998)。簡潔に言えば、指数関数的増殖期細胞をMultifuge 3s(Heraeus)において4分間、1400rpmで遠心分離し、HBSSバッファ中で洗浄及び再懸濁した。各アッセイにおいて、50μLの阻害剤/バッファ溶液を含む平底マイクロプレートに、50μLの2×106細胞/mL細胞懸濁液をピペットで入れ、最終濃度を1×106細胞/mLとした。ミリQ水中のWST-1/PMSの10×ストック溶液10μLを追加して、色素還元を開始した(最終濃度500μM WST-1及び20μM PMS)。WST-1還元は、BMG FLUOstar OPTIMAプレートリーダにおいて450nmで30乃至60分間、リアルタイムで測定した。
MTT還元は、以前に説明されているように(Berridgeら、1996)マイクロプレート形式で次の通り測定した:指数関数的増殖期細胞をMultifuge 3s(Heraeus)において4分間、1400rpmで遠心分離し、HBSSバッファ中で洗浄及び再懸濁した。各アッセイにおいて、50μLの阻害剤/バッファ溶液を含む平底マイクロプレートに、50μLの2×106細胞/mL細胞懸濁液をピペットで入れ、最終濃度を1×106細胞/mLとした。48時間のインキュベーションに続いて、各ウェルに5mg/mLのMTTを10μL追加して、色素還元を開始した。2時間後、溶解バッファ100μLを追加して、マルチチャネルピペットを用いた手動ピペット操作によりホルマザン結晶を溶解し、その後、BMG FLUOstar OPTIMAプレートリーダにおいてA570を測定した。
増殖及び静止PBMCを、Multifuge 3s(Heraeus)において室温で4分間、1400rpmで遠心分離し、96 U-ウェルプレート内の新鮮なT細胞培地において、PXD又は0.1%DMSOの存在下で再懸濁(濃度2×106細胞/mLでウェル当たり200μL)し、5% CO2、37℃の加湿インキュベータ内でインキュベートした。トリパンブルー色素排除法により判定される生存細胞は、Neubauer血球計算器により、24時間毎に数日間計数した。
細胞を、Multifuge 3s(Heraeus)において室温で4分間、1400rpmで遠心分離し、pH7.3のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中で洗浄し、アネキシンV結合バッファ中で再懸濁した。少量のアリコート(0.5乃至1×106細胞)を1.5mLチューブに移し、Multifuge 3s(Heraeus)において4分間、1400rpmで回転させた。上清のほとんどを除去し、5μLのPI及び5μLのFITC標識AVを湿潤ペレットに加え、ボルテックスした。暗所において氷上に30分間置いた後、500μlのAV結合バッファを追加し、細胞を2分間、1400rpmで遠心分離し、AV結合バッファにより1回洗浄し、FACSチューブ内の300μLのAV結合バッファに再懸濁させた。染色は、FlowJo(TreeStar)ソフトウェアを使用したBecton Dickinson Canto II FACSアナライザを用いてフローサイトメトリにより分析した。
PXDは、急速に増殖するT細胞のPMET、細胞増殖、及び生存率を阻害する
PMETに対するPXDの影響(図1A)は、細胞非透過性のテトラゾリウム色素であるWST-1の還元を、必須の中間電子受容体である1mPMSの存在下で測定することにより調査した(WST-1/PMS還元)。PXDへの曝露は、増殖T細胞のPMETを阻害したが(46μMのIC50)、静止T細胞に対しては小さな阻害効果しか有しなかった(>200μM)。増殖に対するPXDの影響(図1B)は、テトラゾリウム塩、MTTの細胞内還元を測定することにより判定した。MTT還元は、増殖T細胞において、PXDの存在下で阻害されたが(IC50=5.4μM)、静止T細胞では阻害されなかった(IC50>200μM)。使用された実験条件下において、増殖T細胞は21時間のサイクル時間を有する一方、静止T細胞は、増殖しなかったが、10μMのPXDの存在にもかかわらず生存状態を維持した(図1C)。しかしながら、増殖T細胞の生存率は、10μMのPXDとのインキュベーションにより大幅に損なわれた。
静止及び増殖T細胞におけるアポトーシスの程度を、10μMのPXDに24時間曝露した後にAV/PI染色により判定した(図2)。散布図は、未処理の大きな増殖T細胞芽球(図2E)がPXDによる処理後にアポトーシス受けたことを示している(図2H)。静止T細胞は、影響されなかった(図2D)。生存増殖T細胞のパーセンテージは、10μMのPXDに対する24時間の曝露後に74%(図2F)から51%に低下し(図2H)、一方、生存静止T細胞のパーセンテージは、変化しなかった(図2B及び2D)。
PXDの効果の発現にはPXDに対する細胞の連続的曝露が必要かを調べるために、増殖T細胞を、様々な期間に渡って10μMのPXDに曝露し、細胞をRPMI中で2回洗浄し、新鮮なT細胞培地において更に24時間インキュベートした。10μMのPXDに対する1分間の短時間曝露により、増殖T細胞のアポトーシスは、PXDへの24時間曝露後に見られたものと同じ程度に誘導された。90% FCS又は90%ヒト血清中でのPXDの前インキュベーションは、PXDが増殖T細胞を死滅させる能力に影響しなかった(表1)。
PXDが増殖T細胞のアポトーシスを誘導する能力を、HLA不一致のMLRにおいて更に試験した。CFSE標識応答細胞を、0.1% DMSO(コントロール)及び10μMのPXDの存在下で、HLA不一致のγ線照射刺激細胞と0日目に混合した。増殖応答細胞を薬剤へ数日間曝露させるために、応答細胞は、増殖(CFSElo)及び生存率(AV-)について8日目に分析した。同種T細胞(CD3+CFSEloAV-集団)の強い活性化及び増殖がコントロールMLRにおいて見られたが(46.5%、図3D)、PXD処理MLRでは見られなかった(2%、図3B)。一方、静止応答細胞集団(CD3+CFSEhiAV-)は、コントロール及びPXD処理MLRの両方に存在した。
非刺激(unstimulated)T細胞はPXDへの一時的曝露後に異種抗原に応答する
発明者は、次に、PXDへの一時的曝露が、異種抗原に応答するという非刺激T細胞の正常な能力に影響するかを判定した。非刺激T細胞を10μMのPXDと共に24時間インキュベートし、二回洗浄し、HLA不一致のγ線照射刺激細胞を追加して刺激した。8日後のFACS分析では、同様のサイズのCD3+CFSEloAV-集団(コントロールMLRにおいて62.6%及びPXD処理MLRにおいて56.2%)(図4)で示されるように、非刺激応答T細胞によるPXDへの一時的曝露が、その後の活性化及び増殖に影響を与えないことが明らかとなった。
MLRにおいて以前に曝露済みだが活性化されなかった応答T細胞に対するPXD曝露の影響を判定することにより、上述した実験を拡張した。連続する二組のMLRを設定して、応答T細胞とγ線照射刺激細胞とを0日目に混合し、10μMのPXD又は0.1%DMSOを5日目に追加し、応答T細胞の増殖及び生存率を8日目に分析した。生存静止細胞集団(CD3+CFSEhiAV-)を、その後、FACSにより選別し、PXDの非存在下、後続の組の第三者MLRで刺激した。第2のMLRにおいて刺激したT細胞は増殖したが(図5DのCD3+CSFElo集団)、非刺激T細胞は増殖せず(図5B)、PXDが非増殖T細胞の生存率にも機能性にも影響しないことを示した。
PXDは多数の細胞株においてアポトーシスを引き起こすことが分かっているが、臨床試験は、これまでのところ、卵巣癌、乳癌、前立腺癌、及び黒色腫を含む固形癌が中心となってきた。発明者は、以前に、PXDがAML由来HL60細胞を死滅させることを明らかにしており、ここでは、この発見を、一群の血液癌と、ALL及びAML患者の骨髄試料からのいくつかの一次白血病芽球とに発展させた(図6)。これらの臨床試料の具体的な特性を表2に記載する。PXDに対する感受性は、細胞株と一次細胞とで異なっていた。興味深いことに、ALL芽球は、AML芽球と比較して、PXDに対する応答の一貫性及び感受性が有意により高く(p=0.0002)、後者はPXDに対する感受性において広範囲に渡る変動性を示した (図6)。
Claims (19)
- 式Iの化合物であって、
R1は、ヒドロキシ、アルコキシ、ハロ、又はOC(O)R9であり、
R2及びR3は、独立して、水素、ヒドロキシ、アルコキシ、アルキル、ハロ、又はOC(O)R9であり、
Aは、水素又は任意で置換された次の式のフェニルであり、
R7及びR8は、独立して、水素、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、又はハロであり、
R9は、水素、アルキル、アリール、アリールアルキル、又はアミノであり、かつ
「---」の描画は、単結合又は二重結合を表す化合物、
或いは、その薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグの、
免疫調節剤としての使用。 - 前記化合物が、イソフラブ-3-エン-4',7-ジオール、3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)クロマン-7-オール、及び3-(4-ヒドロキシフェニル)-4-(4-メトキシフェニル)-8-メチルクロマン-7-オールから選択される、請求項1記載の使用。
- 前記化合物が、イソフラブ-3-エン-4',7-ジオールである、請求項2記載の使用。
- 式Iの化合物の免疫調節活性が、増殖T細胞の増殖及び/又は活性の阻害を含む、請求項1乃至3の何れかに記載の使用。
- 前記化合物が、増殖T細胞のアポトーシスを誘導又は促進する、請求項4記載の使用。
- 活性の阻害が、増殖T細胞の原形質膜電子伝達の阻害を含む、請求項4記載の使用。
- 前記増殖T細胞が、急速に又は異常に増殖するT細胞である、請求項4乃至6の何れかに記載の使用。
- 前記T細胞が、応答T細胞である、請求項4乃至7の何れかに記載の使用。
- 前記化合物が、免疫調節剤として、必要とする哺乳動物に対して免疫調節有効量にて投与される、請求項1乃至8の何れかに記載の使用。
- 前記哺乳動物が、T細胞の異常な増殖又は刺激に関連する疾患又は状態を生じているか、或いは生じやすくなっている、請求項9記載の使用。
- 前記化合物の免疫調節有効量が、前記化合物が疾患又は状態に対して治療活性を有する治療有効量よりも少ない、請求項1乃至10の何れかに記載の使用。
- 増殖T細胞の増殖及び/又は活性を阻害する方法であって、前記増殖T細胞を、上記の式Iの化合物の有効量に曝露するステップを備える、方法。
- 前記増殖T細胞が、T細胞の異常な増殖又は刺激に関連する疾患又は状態を生じているか又は生じやすくなっている被験者に存在又は由来する、請求項12記載の方法。
- 哺乳動物内の免疫系を調節する方法であって、式Iの少なくとも1つの化合物或いはその薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグの免疫調節有効量を、哺乳動物に投与するステップを備える、方法。
- 前記化合物が、増殖T細胞の増殖及び/又は活性を阻害する、請求項14記載の方法。
- 前記増殖T細胞が、異常に又は急速に増殖するT細胞である、請求項15記載の方法。
- T細胞の異常な増殖又は刺激に関連する疾患又は状態の治療又は予防のための方法であって、上記の式Iの化合物或いはその薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグの免疫調節有効量を、必要とする哺乳動物に投与するステップを備える、方法。
- T細胞の異常な増殖又は刺激に関連する疾患又は状態の治療又は予防用の医薬の製造のための、上記の式Iの化合物或いはその薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグの使用。
- T細胞の異常な増殖又は刺激に関連する疾患又は状態を生じている被験者に対する治療レジメンを増強する方法であって、上記の式Iの化合物或いはその薬学的に許容可能な塩又はプロドラッグの免疫調節有効量を被験者に投与するステップを備える、方法。
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