JP2012224613A - ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学的組成物(CompositioncontainingextractofJerusalemartichokefermentedbyLactobacillussp.forpreventingandtreatingdiabetesmellitus) - Google Patents
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Abstract
【解決手段】ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学組成物および健康食品組成物。該組成物は発酵させていない菊芋抽出物よりも抗糖尿効果がはるかに優れている。
【選択図】図6
Description
本発明の他の目的はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用健康食品組成物を提供することである。
本発明の他の目的を達成するために、本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用機能性食品組成物を提供する。
本発明はラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学的組成物に関する。
本発明の菊芋ラクトバシルス属微生物で発酵物させた菊芋発酵物は、それ自体または薬学的に許容可能な塩の形態で使用できる。前記薬学的に許容されるとは、生理学的に許容されヒトに投与された時、通常的にアレルギー反応またはこれと類似した反応を起こさないことを意味し、前記塩では薬学的に許容可能な遊離酸(free acid)により、形成された酸付加塩が好ましい。前記遊離酸は有機酸と無機酸を使用できる。前記有機酸はこれに制限はされないが、クエン酸、酢酸、乳酸、酒石酸、マレイン酸、フマル酸、ギ酸、プロピオン酸、シュウ酸、トリフルオロ酢酸、ベンゾ酸、グルコン酸、メタスルホン酸、グリコール酸、琥珀酸、4-トルエンスルホン酸、グルタミン酸及びアスパラギン酸を含む。前記無機酸はこれに制限はされないが、塩酸、臭素酸、硫酸及びリン酸を含む。
経口投与用製剤の場合に、本発明の組成物は粉末、顆粒、錠剤、丸剤、糖衣錠剤、カプセル剤、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー剤、懸濁液などで当業界に広く知られた方法を利用して剤形化することができる。例えば、経口用製剤は活性成分を固体賦形剤と配合してこれを粉砕し、適切な補助剤を添加して顆粒混合物に加工することにより、錠剤または糖衣錠剤を得ることができる。適切な賦形剤の例にはラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール及びマルチトールなどを含む糖類と、トウモロコシ澱粉、小麦澱粉、お米澱粉及ぼすジャガ芋澱粉などを含む澱粉類、セルロース、メチルセルロース、ナトリウムカルボキシメチルセルロース及びヒドロキシプロピルメチルセルロースなどを含むセルロース類、ゼラチン、ポリビニルピロリドンなどのような充填剤を含むことができる。場合によっては、架橋結合ポリビニルピロリドン、寒天、アルギン酸またはナトリウムアルギネートなどを崩解剤として添加することができる。本発明の薬学組成物は抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、香料、乳化剤などを含むことができる。
ただし、下記実施例は本発明を例示するのみで本発明の内容が下記実施例に限定されるものではない。
菊芋発酵物の製造
(1)各乳酸菌種類別発酵物の製造
実験材料は紫色の菊芋粉末10乃至20g、または15kgに蒸留水90乃至180mLまたは、150Lを添加し、アスペルギルスオリザ(Aspergillus oryzae)、バシルスリチェニフォミス(Bacillus licheniformis)、ラクトバシルスプランタルーム(Lactobacillus Plantarum,KCTC3130)、バシルスサブチリス(Bacillus subtillis,KCTC1666)を2乃至3%添加して12乃至60時間発酵した。発酵後80℃乃至 125℃で10乃至20分間殺菌、凍結乾燥して粉末を得た。
発酵して得た粉末と発酵しない原材料5%に蒸留水500mLを加えて45℃で1時間ソニケーター(Sonicator)を利用して抽出した後、4℃、10,000rpmで15分間遠心分離して得た上澄液を凍結乾燥して下記表1のような粉末試料を得た。発酵していない菊芋抽出物と発酵物の抽出物間の収率には殆ど差がなかった。
この実験は、Megazyme Fructan assay procedure kitを利用した。Sample Blankは溶媒200μlに0.1Mアセト酸ナトリウムバッファ(pH4.5)100μlを混合し、PAHBAH Working Reagentを5ml混合し、80℃で6分間反応後、18乃至20℃ので5分間冷まし、410nmで測定した。D−プラクトーススタンダード測定はD−プラクトーススタンダード(1.5mg/ml)200μlと、0.1Mアセト酸ナトリウムバッファ(pH 4.5)900μlを混合した。混合した試料の一部200μlに、0.1Mアセト酸ナトリウム(pH 4.5)100μlを混合した後、PAHBAH Working Reagent5mlを混合して80℃で6分間反応後18乃至20℃で5分間冷まし、410nmで測定した。4個の試料処理は200μlにスクラーゼ200μlを入れて40℃で30分間反応させ、水素化ホウ素ナトリウムバッファ(10mg/mL)200μlを入れて40℃で30分間反応させた。この反応中に生じた還元糖を糖アルコールに転換する。反応後0.2Mアセト酸を500μl添加し、この溶液200μlにフルクタナーゼ(Fructanase)100μlを入れ、0.1Mアセト酸ナトリウムバッファ(pH4.5)100μlを入れ、40℃で20分間反応すれば試料そのものの中に含まれているフラクタン(fructan)がD−プラクトースとD−グルコースで加水分解される。反応後前記物質にPAHBAH Working Reagentを5mlを混合して80℃で6分間反応後18乃至20℃で5分間冷まし、410nmで吸光度を測定した。
ΔA=サンプル吸光度ーサンプルブランク吸光度
F =D−Fructoseの吸光度変化因子(μg)
=(54.5μg D-Fructose)/(absorbance for 54.5μg D-Fructose)
V =使用した溶媒の嵩(mL)(50or100mL)
W =サンプル抽出物の重さ(mg)
動物の小腸粘膜から分泌される炭水化物消化酵素の一種であるアルファグルコシダーゼ(α-glucosidase)は基質としてp-ニトロフェニール−α−D−グルコピラノシド(p-nitrophenyl−α−D−glucopyranoside)を使用する。アルファグルコシダーゼを利用して溶媒のみを入れた対照群と一定濃度の試料抽出液を入れて反応させた処理区の吸光度変化を観察して試料の酵素阻害活性度を評価した。つまり、PBSに0,4mg/ml BSA(bovine serum albumin)、0.04mg/ml NaN3の濃度で溶解し、0.5U/mlのアルファグルコシダーゼ酵素を溶解させて酵素溶液を作り、p-ニトロフェニール−α−D−グルコピラノシドをPBSに2mM濃度で溶解して基質溶液を作って使用した。酵素液 300μlに試料50μlを入れ、水650μlを添加して405nmで試料の吸光度を測定した後、酵素液と試料を同量に、水500μlを添加して基質150μlを加えて室温で3分間反応させ、405nmで吸光度を測定した。酵素活性の阻害程度は下記の式により算出した。
酵素活性阻害度(%)=(1-(S/C))×100
S:試料添加後吸光度変化
C:試料を添加しない対照群の吸光度変化
菊芋発酵の際、成分を比較分析するため、発酵前及び乳酸菌発酵物それぞれの試料を対象にクロマトグラフィー(Thin Layer Chromatography)分析をした。乳酸菌未処理群、ラクトバシルスプランタルーム発酵群、バシルスサブチリスKCTC-1666発酵群及びバシルスサブチリスKFCC11492P発酵群の試料を10mg/mL濃度に10μlをTLCした。展開溶媒はAcetonitrileとH2 Oを9:1の比で混合した溶媒を利用した。発色試薬にはsolution A(0.2g each of aniline and diphenylamine per 20ml of 96% ethanol)20mlとsolution B(85% phosphoric acid)2mLを混合したものを利用した。硫酸発色には硫酸10%濃度のメタノールを噴射して高温で炭化させた。
発酵時間に伴う菊芋発酵物の製造
前記実施例1でアルファグルコシダーゼ抑制活性が優れたラクトバシルスプランタルームを利用して、菊芋を発酵時間に伴うアルファグルコシダーゼ抑制活性の変化を測定してその結果を下記表2に示した。
菊芋発酵物の糖尿病治療効果
<1−1>実験動物及び飼料管理
糖尿実験動物は(株)中央実験動物から6週令の雄C57BLKS/J-db/db mouse(30〜35g)19匹と、正常対照群C57BLKS/J-db/m+mouse5匹を分譲してもらい1週間適応させて実験に利用した。
動物実験の飼育環境は温度23℃、湿度60%、騒音60phone以下、臭気20ppm以下、照明150-300lux、照明時間12時間light/dark cycleを維持した。飼料(ピュリナー、韓国)と水を自由給与した。動物実験飼育管理はfor the Care and Use ofLaboratory Animals基準にして実験は翰林大学校実験動物倫理委員会の承認を得て行われた。
実験動物は16時間絶食後、血糖測定器(Accucheck,Germany)で尻尾静脈から血糖を測定した。空腹血糖250mg/dL以上を示す動物を糖尿病が誘発されたものと見做して実験に使用した。試料の抗糖尿活性を調べるため試料を飼料に添加して給与した。糖尿が誘発された動物を無作為で4群の試験群に分けてC(diabetic control)3匹、ABアカボス(Acarbose)200mg/kg)6匹、LJA1(ラクトバシルスプランタルーム(KCTC3103))発酵菊芋1.5g/kgを含む食餌)7匹、LJA2(ラクトバシルスプランタルーム(KCTC3103))発酵菊芋3g/kgを含む食餌)7匹などに処理し、正常対照群にC57BLKS/J-db/m+mouse5匹(lean)を使用して10週間空腹血糖及び体重変化を測定した。ラクトバシルスプランタルーム発酵菊芋は前記実施例1でラクトバシルスプランタルームで36時間発酵させた菊芋発酵抽出物を使用した。
下記表3は各群間の日々の飼料摂取量と飼料効率を計算した結果を示したものである。図3に示した結果と同様に表4に示した通り、正常群と肥満糖尿誘発ねずみとの間の差があるのみで群間の差はなかった。
LJA1:糖尿+LJA1.5g/kgを含む食餌
LJA2:糖尿+LJP 3g/kgを含む食餌
試料の食後血糖降下効果を測定するため、実験8週目に6時間空腹後C群とLean群は可溶性澱粉(2g/kg、Sigma Co.,USA)を、アカボス投与群は可溶性澱粉とアカボス(20mg/kgを経口投与し、菊芋発酵物は低濃度(LJA1,200mg/kg)、高濃度(LJA2,400mg/kg)を経口投与した。投与前0分と投与後30,60,120分にそれぞれ尻尾静脈から血糖を測定した。
前記実験対象マウスの小腸を摘出し、氷の上で生理食塩水で洗滌して十二指腸部分を同じ長さに3等分してそれぞれをproximal, middle, distalに区分して生理食塩水で洗滌した後、均質化緩衝液(0.5M NaCl,0.5 M KCl,5mM EDTA,pH7.0)を添加して均質化後20000gで30分間遠心分離して得た沈殿物に生理食塩水を加え、3000rpmで40分間遠心分離して上澄液を酵素液として使用した。
実験終了後対象マウスの眼窩より採血した。血液から長期間維持血糖水準を確認するために、糖化血色素(HLCr-723GHbC7,Tosoh,Denmark)を利用してHbAlcを測定した。血中グルコース濃度を血液から4℃で3,000rpmで15分間遠心分離して得た血漿を血液生化学測定器(Thermo,USA)で測定した。血中インシュリン及びアジポネクチン(adiponectin)含量はそれぞれmouse insulin ELISA Kit(Shibay,Japan),mouse adiponectin/Acrp30 kit (R&D system,UK)を利用して測定した。
LJA1:糖尿+LJA1.5g/kgを含む食餌
LJA2:糖尿+LJP 3g/kgを含む食餌
(P<0.05);それぞれの数値
AB :糖尿+Acarbose 0.5g/kgを含む食餌
LJA1:糖尿+LJA1.5g/kgを含む食餌
LJA2:糖尿+LJP 3g/kgを含む食餌
(P<0.05);それぞれの数値;HTR(%)=(HDL-Choresterol/totalcholestew)100
Claims (5)
- ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び治療用薬学組成物。
- ラクトバシルス属微生物で発酵させた菊芋発酵抽出物を有効成分として含む糖尿病の予防及び改善用健康食品組成物。
- 前記ラクトバシルス属微生物はラクトバシルスラムノース(Lactobacillus rhamnosus、)、ラクトバシルスアシドフィルース(Lactobacillus acidophilus)、ラクトバシルスプランタルーム(Lactobacillus plantarum)、ラクトバシルスブルガリクス(Lactobacillus bulgaricus)、ラクトバシルスカセイ(Lactobacillus casei)、ラクトバシルスラクチス(Lactobacillus lactis)、ラクトバシルスンコンヒュース(Lactobacillus confusus)、ラクトバシルスルトリ(Lactobacillus reutri)、ラクトバシルスブレビス(Lactobacillus brevis)、ラクトバシルスデルブルキー(Lactobacillus delbruekii)、ラクトバシルスジョンスニー(Lactobacillus johnsonii)、ラクトバシルスラムノサス(Lactobacillus rhamnosus)、ラクトバシルスサケイ(Lactobacillus sakei)及びラクトバシルスブチネリ(Lactobacillus buchneri)からなる群より選ばれたことを特徴とする第1項記載の組成物。
- 前記ラクトバシルス属微生物はラクトバシラスプランタルームまたはラクトバシルスアシドフイルースであることを特徴とする第2項記載の組成物。
- 前記菊芋発酵抽出物は菊芋粉末に蒸留水及びラクトバシルス属微生物を添加して20℃乃至40℃で1乃至60時間発酵して製造することを特徴とする第2項記載の組成物。
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