JP2012136518A - 黄色ブドウ球菌(Staphylococcusaureus)抗原の安定な免疫原性組成物 - Google Patents
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- A61K2039/6037—Bacterial toxins, e.g. diphteria toxoid [DT], tetanus toxoid [TT]
Abstract
【解決手段】(a)単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子A(ClfA)ポリペプチド、単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子B(ClfB)ポリペプチド、5型莢膜多糖(CP5)−タンパク質のコンジュゲート、8型莢膜多糖(CP8)−タンパク質のコンジュゲート、および単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)MntCポリペプチドからなる群から選択される少なくとも3つの構成要素、(b)6.0±0.6のpKaを有する緩衝液、ならびに(c)充填剤を含み、前記ClfAポリペプチドが、少なくとも1カ月間、37℃で実質的に分解されずに保たれる、凍結乾燥した免疫原性組成物。
【選択図】なし
Description
本発明は、ブドウ球菌生物、たとえば黄色ブドウ球菌(S.aureus)からの抗原を含む、凍結乾燥した免疫原性組成物に関する。一部の実施形態では、凍結乾燥した免疫原性組成物はClfAを含む。一部の実施形態では、凍結乾燥した免疫原性組成物は少なくとも3つの抗原を含む。一部の実施形態では、凍結乾燥した免疫原性組成物は少なくとも4つの抗原を含む。抗原は、生化学的単離手順を用いて生物から単離し得るか、合成もしくは組換え手段によって生成し得る。抗原は、ポリペプチド、もしくは多糖、またはその組合せであり得る。これらの免疫原性組成物は、対象をブドウ球菌生物によって引き起こされる感染症に対して免疫化するためのワクチンの製造に使用し得る。これらの組成物中での使用に適した構成要素を、以下にさらに詳述する。
黄色ブドウ球菌(S.aureus)は、表在性の皮膚感染症から肺炎、敗血症および心内膜炎などの生命を脅かす状態までの範囲の多様多種のヒト疾患の原因物質である。Lowy、N.Eng.J.Med.、339:580〜532(1998)を参照されたい。侵襲性疾患の場合、血液、脳脊髄液CSF、胸膜液、心膜液、腹膜液、関節/潤滑液、骨、身体内部部位(リンパ節、脳、心臓、肝臓、脾臓、硝子体液、腎臓、膵臓、卵巣)、または他の正常では無菌的な部位を含めた、正常では無菌的な身体部位から黄色ブドウ球菌(S.aureus)を単離することができる。これは、菌血症、肺炎、蜂窩織炎、骨髄炎、心内膜炎、および敗血症性ショックなどの、生命を脅かす臨床的状態をもたらす場合がある。成人、高齢者および小児患者が、黄色ブドウ球菌(S.aureus)感染症の危険性が最も高い。
また、特定の実施形態では、本明細書中に記載した凍結乾燥した免疫原性組成物は、1つまたは複数のアジュバントも含む。一部の実施形態では、アジュバントは、乾燥した凍結乾燥組成物の構成要素である。他の実施形態では、アジュバントは、組成物を患者に投与する前に、再構成した凍結乾燥組成物に加えることができる。アジュバントとは、免疫原または抗原と一緒に投与した場合に免疫応答を増強させる物質である。いくつかのサイトカインまたはリンホカインが免疫変調活性を有し、したがってアジュバントとして有用であることが示されており、それだけには限定されないが、インターロイキン1−α、1−β、2、4、5、6、7、8、10、12(たとえば米国特許第5,723,127号を参照)、13、14、15、16、17や18(およびその突然変異体)、インターフェロン−α、βおよびγ、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)(たとえば、米国特許第5,078,996号およびATCC受託番号39900を参照)、マクロファージコロニー刺激因子(M−CSF)、顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)、ならびに腫瘍壊死因子αおよびβが含まれる。本明細書中に記載の免疫原性組成物で有用なさらに他のアジュバントには、それだけには限定されないがMCP−1、MIP−1α、MIP−1β、およびRANTESを含めたケモカイン、接着分子、たとえばセレクチン、たとえば、L−セレクチン、P−セレクチンおよびE−セレクチン、ムチン様分子、たとえば、CD34、GlyCAM−1およびMadCAM−1、インテグリンファミリーのメンバー、たとえば、LFA−1、VLA−1、Mac−1およびp150.95、免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバー、たとえば、PECAM、ICAM、たとえば、ICAM−1、ICAM−2やICAM−3、CD2およびLFA−3、共刺激分子、たとえば、B7−1、B7−2、CD40およびCD40L、血管成長因子、神経成長因子、線維芽細胞成長因子、表皮成長因子、PDGF、BL−1、および血管内皮成長因子を含めた成長因子、Fas、TNF受容体、Flt、Apo−1、p55、WSL−1、DR3、TRAMP、Apo−3、AIR、LARD、NGRF、DR4、DR5、KILLER、TRAIL−R2、TRICK2、およびDR6を含めた受容体分子、ならびにカスパーゼ(ICE)が含まれる。
ClfA:ドメインの編成
クランピング因子A(ClfA)は、フィブリノーゲン結合部位を介した宿主基質タンパク質との結合に関連している黄色ブドウ球菌(S.aureus)表面タンパク質である。ClfAは、タンパク質が細胞表面と共有結合されることを可能にするカルボキシル末端LPXTG(配列番号125)モチーフを含有するタンパク質ファミリーのメンバーである。また、ClfAは、フィブリノーゲン(ClfAによって結合)、フィブロネクチン結合タンパク質(FnbAおよびFnbB)、コラーゲン結合タンパク質(Cna)などの宿主タンパク質との結合に関連している別のタンパク質ファミリー(微生物表面構成要素認識接着性基質分子、またはMSCRAMM)にも属する。これらのタンパク質はすべて、細胞表面への輸送を媒介するアミノ末端シグナル配列を共有している。また、MSCRAMMには、リガンド結合の活性部位を含有する機能的領域であるAドメインも含まれる(たとえば、フィブリノーゲン、フィブロネクチン、エラスチン、ケラチン)。Aドメインに次いで、ペプチドグリカン層にまたがると考えられているセリンアスパラギン酸の反復(SD反復)から構成される領域が存在する。SD反復に次いで、タンパク質とペプチドグリカンとの共有結合のためのLPXTG(配列番号125)モチーフが含まれる膜貫通領域が存在する。ClfAは、米国特許第6,008,341号に記載されている。
ClfAと命名されたクランピング因子タンパク質Aの遺伝子は、クローニングされ、配列決定され、分子レベルで詳細に分析されている(McDevittら、Mol.Microbiol.、11:237〜248(1994)、McDevittら、Mol.Microbiol.、16:895〜907(1995))。111個の黄色ブドウ球菌(S.aureus)疾患を引き起こす単離物とClfAのアミノ酸配列との配列の識別要素は、表1に示されている。黄色ブドウ球菌(S.aureus)PFESA0237株からの完全長(シグナル配列が含まれる)野生型ClfAのアミノ酸配列は、配列番号130に示されている。この配列は位置338にチロシンを示し、これは、ClfAの変異型ではアラニンに変化している。N123領域、反復領域およびアンカー領域を含む、黄色ブドウ球菌(S.aureus)PFESA0237株からの野生型ClfAをコードしている完全長遺伝子は、配列番号131に示されている。ClfAのY338A変異型のアミノ酸配列は、配列番号123に示されている。しかし、野生型ClfAにおいて配列番号130の位置338で起こり、Y338Aと命名されている、チロシンからアラニンへの変化は、ClfAの変異型において、配列番号123中の位置310に示されていることに注目されたい。さらに、配列番号123のアミノ酸配列に示されているClfAの変異型は、シグナル配列を有さないClfAの成熟形態であり、したがって、配列番号130と配列番号123との間のこの突然変異の位置の相違を説明している。
ClfBは、フィブリノーゲン結合活性を有し、黄色ブドウ球菌(S.aureus)が血漿の存在下でクランプを形成することを始動する、黄色ブドウ球菌(S.aureus)タンパク質である。ClfBはMSCRAMMタンパク質であり、リガンド結合の活性部位を含有する機能的領域であるAドメインを含めた、特徴的なMSCRAMMドメインの編成を表示する(たとえば、フィブリノーゲン、フィブロネクチン、エラスチン、ケラチン)。Aドメインに次いで、ペプチドグリカン層にまたがると考えられているセリンアスパラギン酸の反復(SD反復)から構成される領域が存在する。SD反復に次いで、タンパク質とペプチドグリカンとの共有結合のためのLPXTG(配列番号125)モチーフが含まれる膜貫通領域が存在する。ClfBは、WO99/27109号および米国特許第6,680,195号に記載されている。
ClfBをコードしている遺伝子は、コア接着遺伝子として分類される。複数の病状に関連している92個の黄色ブドウ球菌(S.aureus)の株からのClfB配列を図42中に要約する。付加配列はGenBankから入手した。
他のMSCRAMMを、本発明の免疫原性組成物中で使用するために検討し得る。たとえば、セリン−アスパラギン酸反復(Sdr)タンパク質、SdrC、SdrD、およびSdrEは、一次配列および構造編成がClfAおよびClfBタンパク質に関連しており、細胞表面上に局在している。SdrC、SdrDおよびSdrEタンパク質は細胞壁関連タンパク質であり、N末端にシグナル配列を有し、C末端にLPXTG(配列番号125)モチーフ、疎水性ドメインおよび正荷電残基を有する。また、それぞれは、Bモチーフと共に、細胞表面上でのリガンド結合ドメイン領域Aの効率的な発現を可能にする、十分な長さの領域Rを含有するSD反復を有する。SdrC、SdrDおよびSdrEタンパク質のA領域が細胞表面上に位置しているため、このタンパク質は、血漿中のタンパク質、細胞外基質または宿主細胞の表面上の分子と相互作用することができる。Sdrタンパク質は、ClfAおよびClfBと一部の限定的なアミノ酸配列の類似度を共有する。ClfAおよびClfBと同様、SdrC、SdrDおよびSdrEも、細胞外基質タンパク質の陽イオン依存性リガンド結合を示す。
侵襲性疾患を引き起こすことができるブドウ球菌微生物は、一般に、細菌をカプセル封入し、宿主の生得的な免疫系によるクリアランスに対するその耐性を増強させる、莢膜多糖(CP)を生じることもできる。CPは、細菌細胞を、細菌を貪食および細胞内死滅に耐性とする保護カプセル中に覆う役割を果たす。カプセルを欠く細菌は、貪食に対してより感受性がある。莢膜多糖はしばしば、インフルエンザ菌(Haemophilus influenzae)、肺炎連鎖球菌(Streptococcus pneumoniae)およびB群連鎖球菌を含めた多くの細菌病原体の重要な病原性因子である。
特定のカプセル血清型と疾患との関連づけは、臨床単離物の監視によって可能である。同定されている黄色ブドウ球菌(S.aureus)の8つの異なる血清型のうち(KarakawaおよびVann(1982))、血清型1および2のみが重度にカプセル封入されており、これらが単離されることは稀である。黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)の莢膜多糖、頁285〜293、J.B.Robbins、J.C.HillおよびJ.C.Sadoff(編)、Seminars in infectious disease、第4巻、Bacterial Vaccines.、Thieme Stratton,Inc.、New Yorkを参照されたい。調査により、黄色ブドウ球菌(S.aureus)臨床単離物のおよそ85〜90%がCP5またはCP8を発現することが示されている(Arbeit RDら、Diagn.Microbiol.Infect.Dis.(1984)4月、2(2):85〜91、Karakawa WWら、J.Clin.Microbiol.(1985)9月、22(3):445〜7、Essawi Tら、Trop.Med.Int.Health.(1998)7月、3(7):576〜83、Na’was Tら、J.Clin.Microbiol.(1998)36(2):414〜20)。CP5およびCP8の型決定できない株のほとんどは、遺伝子的に、cap5/8座位に突然変異を含有する5型または8型である(Cocchiaro、Gomezら、(2006)、Mol.Microbiol.、2月、59(3):948〜960)。一部の株のカプセル封入は、in vitroで数継代以内に迅速に失われ、これは、カプセル産生の臨床診断で使用される培地中の高いリン酸濃度の抑制効果が原因である。また、カプセル封入されていない単離物は、ウシを通した後にカプセル発現を回復することも報告された。Opdebeck,J.P.ら、J.Med.Microbiol.、19:275〜278(1985)を参照されたい。一部の型決定できない株は、適切な成長条件下でカプセル陽性となる。
CP5およびCP8のどちらの反復単位も、2−アセトアミド−2−デオキシ−D−マンヌロン酸、2−アセトアミド−2−デオキシ−L−フコースおよび2−アセトアミド−2−デオキシ−D−フコースから構成される。C.Jonesら、Carbohydr.Res.、340:1097〜1106(2005)を参照されたい。CP5およびCP8は同じ糖組成を有するが、これらは免疫学的に明確に異なることが実証されている。これらは、ウロン酸のグリコシド結合およびO−アセチル化部位が異なる。FucNAc残基のうちの1つの、株依存性の不完全なN−アセチル化が観察された。Tzianabosら、PNAS、V98:9365(2001)を参照されたい。
黄色ブドウ球菌(S.aureus)莢膜多糖の分子量は、免疫原性組成物中で使用するための重要な検討事項である。高分子量莢膜多糖は、抗原表面上に存在するより高いエピトープ結合価が原因で、特定の抗体免疫応答を誘導できる。本明細書中に記載の方法は、以前に可能であったよりもはるかに高い分子量の莢膜多糖5型および8型の単離および精製をもたらす。
MntC/SitC/唾液結合タンパク質はABCトランスポータータンパク質であり、表皮ブドウ球菌(S.epidermidis)および黄色ブドウ球菌(S.aureus)に相同体を有する。これは本発明においてMntCと呼ぶ。このタンパク質は32kDaのリポタンパク質であり、細菌細胞壁中に位置する。Sellmanら、およびCockayneら、Infect.Immun.、66:3767(1998)を参照されたい。表皮ブドウ球菌(S.epidermidis)中では、これは鉄に調整されるオペロンの構成要素である。これは、エス・パラサンギス(S.parasanguis)のFimAを含めた付着因子、および証明されたまたは推定上の金属鉄輸送機能を有するABCトランスポーターファミリーのリポタンパク質のどちらに対しても、相当の相同性を示す。(黄色ブドウ球菌(S.aureus)の株および配列には、表2を参照されたい。)
MntCの黄色ブドウ球菌(S.aureus)相同体は唾液結合タンパク質として知られており、米国特許第5,801,234号に開示されており、本発明の免疫原性組成物中に含めることができる。MntC/SitC/唾液結合タンパク質の黄色ブドウ球菌(S.aureus)相同体のタンパク質配列は、Mu50株ではGenBank受託番号NP_371155中に見つかる(SAV0631としても知られる)。配列識別要素は配列番号134である。Mu50株の完全ゲノムのヌクレオチド配列の受託番号は、NC_002758.2である。GenBank受託番号NP_371155中に見つかるタンパク質配列の、コードDNA配列の座標は、704988〜705917である(配列番号135)。特定の実施形態では、MntCのN末端は、配列番号119(ポリペプチド配列)および配列番号136(ポリペプチドをコードしているヌクレオチド配列)に示されるように切断されている。黄色ブドウ球菌(S.aureus)の様々な株からのMntC配列は、図43に要約されている。
MntC/SitC/唾液結合タンパク質の表皮ブドウ球菌(S.epidermidis)相同体はSitCとして知られており、Sellmanら(Sellmanら、Infect.Immun.、2005年10月、73(10):6591〜6600)に開示されていた。MntC/SitC/唾液結合タンパク質の表皮ブドウ球菌(S.epidermidis)相同体のタンパク質配列は、GenBank受託番号YP_187886.1中に見つかる(SERP0290としても知られる)。配列識別要素は配列番号132である。
本発明の免疫原性組成物中で使用するために考慮する別の潜在的な候補抗原には、黄色ブドウ球菌(S.aureus)表面タンパク質鉄表面決定因子B(IsdB)が含まれる。このMSCRAMMは、Mazmanianら(Mazmanian,SKら、Proc.Natl.Acad.Sci.,USA、99:2293〜2298(2002))によって記載され、続いて、Kuklinら(Kuklin,NAら、Infection and Immunity、第74巻、第4号、2215〜2223(2006))によって、感染症のネズミモデルおよびアカゲザル免疫原性研究においてワクチン候補として試験され、有効であることが示されている。このIsdB分子は、MRSA252株(タンパク質受託番号CAG40104.1)、Newman株(タンパク質受託番号BAF67312.1)、MSSA476株(タンパク質受託番号CAG42837.1)、Mu3株(タンパク質受託番号BAF78003.1)、RF122株(タンパク質受託番号CAI80681.1)を含めた、黄色ブドウ球菌(S.aureus)の様々な株中に存在する。
また、本発明の免疫原性組成物には、以下の抗原のうちの1つまたは複数も含まれ得る:Opp3a、DltD、HtsA、LtaS、IsdA、IsdC、SdrF、SdrG、SdrH、SrtA、SpA、Sbi、アルファ−溶血素(hla)、ベータ−溶血素、フィブロネクチン結合タンパク質A(fnbA)、フィブロネクチン結合タンパク質B(fnbB)、コアグラーゼ、Fig、map、パントン−バレンタインロイコシジン(pvl)、アルファ−毒素およびその変異体、ガンマ−毒素(hlg)および変異体、ica、免疫優性ABCトランスポーター、Mg2+トランスポーター、Ni ABCトランスポーター、RAP、自己溶菌酵素、ラミニン受容体、IsaA/PisA、IsaB/PisB、SPOIIIE、SsaA、EbpS、SasA、SasF、SasH、EFB(FIB)、SBI、Npase、EBP、骨シアロ結合タンパク質II、オーレオリシン前駆体(AUR)/Sepp1、Cna、およびその断片、たとえばM55、TSST−1、mecA、ポリ−N−アセチルグルコサミン(PNAG/dPNAG)菌体外多糖、GehD、EbhA、EbhB、SSP−1、SSP−2、HBP、ビトロネクチン結合タンパク質、HarA、EsxA、EsxB、エンテロトキシンA、エンテロトキシンB、エンテロトキシンC1、ならびに新規自己溶菌酵素。本発明の特定の実施形態では、免疫原性組成物が特定の形態のCP5および/またはCP8を含む場合は、これはPNAGをさらに含み得ない。
一実施形態では、本発明の凍結乾燥した免疫原性組成物は、アジュバント、緩衝液、凍結保護剤、塩、二価陽イオン、非イオン性洗剤、フリーラジカル酸化阻害剤、充填剤、または担体のうちの少なくとも1つをさらに含む。
本発明の免疫原性組成物は、単位用量または多用量の形態(たとえば2回用量、4回用量、もしくはそれ以上)で梱包し得る。特定の実施形態では、用量は、凍結乾燥した免疫原性組成物を再構成した後に0.5mLの用量である。たとえば、本明細書中に参考として組み込まれている国際特許出願WO2007/127668号を参照されたい。
一実施形態では、本発明は、黄色ブドウ球菌(S.aureus)生物からの少なくとも1つの抗原を含む免疫原性組成物を提供する。一実施形態では、本発明は、黄色ブドウ球菌(S.aureus)生物からの少なくとも3つの抗原を含む免疫原性組成物を提供する。一実施形態では、本発明は、黄色ブドウ球菌(S.aureus)生物からの少なくとも4つの抗原を含む免疫原性組成物を提供する。
また、ブドウ球菌感染症を予防するために宿主を免疫化する方法も提供される。好ましい実施形態では、宿主はヒトである。したがって、宿主または対象に、免疫原性量の、本明細書中に記載の免疫原性組成物を投与する。免疫原性量の免疫原性組成物は、対象を徐々に増加する量の免疫原性組成物で免疫化し、免疫応答を分析して最適な用量を決定する、用量応答研究を行うことによって決定することができる。研究の開始点は動物モデルの免疫化データから推測することができる。投薬量は、個体の具体的な状態に応じて変動する場合がある。量は、当業者に知られている手段によるルーチン的な試行において決定することができる。一部の実施形態では、ブドウ球菌感染症、疾患または状態を予防するために宿主を免疫化する方法は、ヒト、獣医学的、動物、または農業的な処置を含む。別の実施形態は、対象においてブドウ球菌(Staphylococcus)sp.に関連するブドウ球菌感染症、疾患または状態を予防するために宿主を免疫化する方法を提供し、この方法は、ポリクローナルまたはモノクローナル抗体調製物を本明細書中に記載の免疫原性組成物から作製し、前記抗体調製物を用いて対象に受動免疫を与えることを含む。
本明細書中に記載の免疫原性組成物のうちの任意の1つの有効性を評価する際に使用するために、いくつかの動物モデルを以下に記載する。
受動免疫化モデル
マウスを、免疫IgGまたはモノクローナル抗体を用いて腹腔内(i.p.)で受動免疫化する。続いて、マウスを24時間後に致死的用量の黄色ブドウ球菌(S.aureus)で免疫誘発する。すべての生存が抗体と細菌との特異的なin vivo相互作用に起因すると考えることができることを確実にするために、細菌の免疫誘発は静脈内投与(i.v.)またはi.p.である。細菌の免疫誘発の用量は、免疫化していない対照マウスのおよそ20%で致死的な敗血症が達成されるために必要な用量であると決定されている。生存研究の統計的評価は、カプラン−マイヤー分析によって実施することができる。
このモデルでは、マウス(たとえばスイスウェブスターマウス)を、腹腔内(i.p.)または皮下(s.c.)で、標的抗原を用いて、0、3および6週間(または他の同様の適切な間隔を空けたワクチン接種スケジュール)に能動免疫化し、続いて、黄色ブドウ球菌(S.aureus)を用いて8週間目に静脈内経路によって免疫誘発する。細菌の免疫誘発の用量は、10〜14日間の期間にわたって対照群においておよそ20%の生存が達成されるように較正されている。生存研究の統計的評価は、カプラン−マイヤー分析によって実施することができる。
黄色ブドウ球菌(S.aureus)によって引き起こされる感染性心内膜炎(IE)の受動免疫化モデルを以前に使用して、ClfAが保護免疫を誘導できることが示されている。Vernachioら、Antmicro.Agents&Chemo.、50:511〜518(2006)を参照されたい。このIEモデルでは、ウサギまたはラットを用いて、臨床的感染症を刺激し、これには中心静脈カテーテル、菌血症、および遠位臓器への血行性播種が含まれる。無菌的な大動脈弁の疣形成を有するカテーテル挿入したウサギまたはラットに、単一または複数の、標的抗原に特異的なモノクローナルまたはポリクローナル抗体の静脈内注射を投与する。続いて、動物を、i.v.で黄色ブドウ球菌(S.aureus)または表皮ブドウ球菌(S.epidermidis)株を用いて免疫誘発する。その後、免疫誘発後、心臓、心臓疣形成、および腎臓を含めた追加の組織、ならびに血液を採取し、培養する。その後、心臓組織、腎臓、および血液中のブドウ球菌感染症の頻度を測定する。1つの研究では、動物をMRSE ATCC35984またはMRSA67−0のどちらかで免疫誘発した際、ClfAに対するポリクローナル抗体調製物またはモノクローナル抗体のどちらを用いても、感染率の有意な低下が示された。Vernachioら、Antmicro.Agents&Chemo.、50:511〜518(2006)を参照されたい。
腎盂腎炎モデルでは、マウスを、0、3および6週目に(または他の適切な間隔を空けた免疫化スケジュールで)、標的抗原を用いて免疫化する。続いて、動物をi.p.またはi.v.で黄色ブドウ球菌(S.aureus)PFESA0266を用いて免疫誘発する。48時間後、腎臓を採取し、細菌CFUを数える。
本発明はさらに、本発明の免疫原性組成物の1つまたは複数の抗原に特異的かつ選択的に結合する抗体および抗体組成物を提供する。一部の実施形態では、抗体は、対象に本発明の免疫原性組成物を投与した際に産生される。一部の実施形態では、本発明は、本発明の免疫原性組成物の抗原のうちの1つまたは複数に向けられた、精製または単離した抗体を提供する。一部の実施形態では、本発明の抗体は、動物有効性モデルまたはオプソニン化貪食作用死滅アッセイのどちらかにおいて細菌を死滅させることによって測定して、機能的である。一部の実施形態では、本発明の抗体は対象に受動免疫を与える。本発明はさらに、本発明の抗体または抗体断片をコードしているポリヌクレオチド分子、および細胞または細胞系(抗体を組換え産生するのためのハイブリドーマ細胞または他の操作した細胞系など)、ならびに当業者に周知の技法を用いて本発明の抗体または抗体組成物を産生するトランスジェニック動物を提供する。
以下の実施例は、本発明の一部の実施形態を実証する。しかし、これらの実施例は例示目的のためのみであり、本発明の条件および範囲に関して完全に決定的であることを主張または意図しないことを理解されたい。典型的な反応条件(たとえば、温度、反応時間など)を与えた場合、指定した範囲を超えるまたは下回る条件をどちらも、一般には利便性が低下するが、使用できることを理解されたい。別段に指定しない限りは、本明細書中で言及するすべての部およびパーセントは重量に基づいており、すべての温度は摂氏で表現している。
様々な生物物理学的ツール(微分UV吸光分光分析、蛍光分光分析、円二色性(CD)および示差走査熱量(DSC))を使用して、構造的安定性のコンテキストにおける黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子A(ClfA)タンパク質の固有の特徴を検査した。温度およびpHが、ClfAタンパク質の固有の構造的挙動の特徴づけを助けるためにタンパク質にストレスを与えるために使用した可変パラメータであった。その後、このデータを使用して、タンパク質に追加の安定性をもたらし得る賦形剤についてスクリーニングした。さらに、AlPO4およびAl(OH)3に対するClfAの用量およびpH依存性親和性を評価するための結合研究を行った。本明細書中に開示されているデータを使用して、たとえばワクチンまたは免疫原性組成物としてなどの生物医学的な応用で使用するためのClfAの配合物に到達した。
温度(10〜85℃)およびpH(4.0〜8.0)の薬学的に関連性のあるストレスを薬物製品(液体の配合したClfA)および原薬(液相中の配合していないClfAタンパク質)に与えて、その感受性を同定した。
ClfAは一般に不安定なタンパク質であるとみなされており、これは、これがN1ドメインおよびN2ドメインの間の加水分解または「クリッピング」を容易に受けて、1つがN1ドメインを含有し、別のものがN2N3ドメインを含有する、少なくとも2つの断片を生じることを意味する。安定性とは、たとえばN1およびN2N3ペプチド断片が含まれる分解生成物と比較して実質的に分解されていないClfAを含有する、加水分解されていないClfAの相対量を意味する。実質的に分解されていないClfAの相対量が多ければ多いほど、タンパク質はより安定である。
凍結乾燥前に、バイアルを650μlの液体配合物で充填した。凍結乾燥後、分注体積にシリンジ内のデッドスペースが考慮されるように、シリンジを用いた再構成体積を決定することが必要であった。この実験では、シリンジに0.55、0.60、0.65、および0.70mLの希釈剤を充填した。希釈剤を凍結乾燥したバイアル内に押し出し、再構成された液体をシリンジ内に引いて戻した。その後、液体を分注して秤で秤量した。液体の密度がおよそ1g/mLであると仮定し、およそ0.5mLのワクチンを患者に送達するために、バイアルはおよそ0.65mLのワクチンを含有していなければならないと決定された。0.5mLを超える体積は許容されるが、およそ0.5mL未満の体積は好ましくない。
MICROCAL VP−示差走査熱量計(DSC)を使用して、ClfAの固有の熱安定性を特徴づけた。10℃〜100℃の熱勾配により、タンパク質が融解する温度(Tm)および展開(融解)現象に必要なエンタルピーの変化(ΔH)が明らかとなった。これにより、タンパク質の折畳み特徴(すなわち二次および三次構造)ならびにコンホメーションが凍結乾燥後に変化されたかどうかに関する情報が提供される。
円二色性(CD)を用いて、凍結乾燥の前および後のそれぞれの配合物中のタンパク質の二次構造を評価した。すべての実験はJasco J−810分光旋光計で行った。CD走査の実験パラメータには、190nm〜260nmの波長範囲、20nm/分の走査速度、2秒間の応答時間、1nmの帯域、および3回の蓄積が含まれていた。コハク酸塩、スクロースおよびNaClを含有する同一の緩衝液基質をバックグラウンドの減算に使用した。
二次微分UV吸光分光分析を、凍結乾燥の前および後の固有のタンパク質安定性を評価するための抗原の三次構造の検査の別の方法として使用した。Agilent8453 UV可視ダイオードアレイ分光計を用いて、多波長UV可視吸収スペクトルが200nm〜400nmで得られた。100μLの体積を有する1cmの経路長の石英キュベットをすべての実験で使用した。
サイズ排除HPLCを用いて、安定性研究のために一定期間にわたって様々な温度に保持した、凍結乾燥前の薬物製品、再構成した凍結乾燥後の薬物製品、および再構成した薬物製品の初期品質を評価した。この方法では、単量体、二量体、オリゴマー(二量体より大きい)および分解生成物(N1とN2N3ドメインとの間の切断による)を含めた様々な大きさのClfA種を検出することができ、したがって、これを、凍結乾燥前の液体配合物およびその凍結乾燥した対応物の安定性を比較するための主な技法のうちの1つとして使用した。
逆相HPLCは、タンパク質の品質および完全性の特徴づけを提供するためにしばしば使用される分析方法である。分析物の分離は、タンパク質間でわずかに変動し得る、様々な種の疎水性の相違に基づいている。その結果、逆相HPLCアッセイは、典型的には、対象のタンパク質と、たとえば、タンパク質分解生成物、配列修飾(脱アミド化や酸化など)を有するタンパク質、および残留宿主細胞タンパク質不純物、ならびに切断物との間の良好な分離を提供することができる。このアッセイを用いて、安定性研究においてタンパク質の品質に関するデータを経時的に提供した。
in vitro効力アッセイを用いて、安定性研究中の選択された時点でのClfAタンパク質の機能的エピトープの持続性を評価した。BIOVERISプラットフォームをこの目的に使用した。このアッセイでは、1つのモノクローナル抗体(mAb12−9)を使用して抗原を捕捉し、異なるエピトープに対して産生させた別のモノクローナル抗体(mAb15EC6)を使用して抗原の存在をECL検出で検出した、サンドイッチ様式を用いた。モノクローナル抗体12−9は、ClfAのN3ドメインを認識してそれと結合する抗体であり、一方で、mAb15EC6は、ClfAのN2ドメインを認識してそれと結合する。
ClfAの安定性が確立された後、(1)配合物の構成要素の規格を設定するため、(2)ケークの化粧性を最適化するための賦形剤をスクリーニングするため、(3)プロセス設計のコンテキストにおいて配合手順を理解するため、ならびに(4)原薬および薬物製品の凍結融解耐容性を検査するために、さらなる研究を計画した。
凍結融解研究をいくつかのClfAタンパク質のロット(すなわち、L40184−63、−64および−65)で行った。配合物は、0.2mg/mlのClfA、10mMのコハク酸塩、pH6.0、4.5%のスクロースw/vおよび0.01%のポリソルベート80v/vを含んでいた。研究は3つの部門に分割した:(1)配合していないClfA(原薬)の3×凍結融解、(2)配合したClfA(薬物製品)の3×凍結融解、および(3)原薬を3回凍結融解し、それぞれの解凍後に薬物製品に配合した。分析はSE−HPLCを用いて行った。
凍結乾燥によるClfAの安定化の成功に基づいて、ClfAをCP5およびCP8ブドウ球菌(Staphylococcus)抗原ならびにCRMコンジュゲートと合わせることによって、さらなる薬物製品を配合した。液体配合物(凍結乾燥前または再構成後)の一部の実施形態は、0.5mlの生成物あたり200μgのrClfAmならびにそれぞれ100μgのCP5−CRM197およびCP8−CRM197コンジュゲートを含有する。一部の実施形態では、液体配合物は、0.5mlの生成物あたり100μgのrClfAmならびにそれぞれ50μgのCP5−CRM197およびCP8−CRM197コンジュゲートを含有する。
10mMのコハク酸塩、pH6.0、4.5%のスクロース、および0.01%のポリソルベート80を含む例示的な液体配合物を作製し、Milliporeの0.22μmのPVDF膜で濾過し、650μL/2mLのバイアルで分注し、以下に記載のサイクルを用いて凍結乾燥した。凍結乾燥したケークを、希釈剤として60mMのNaClで事前に充填されたシリンジを用いて再構成した。
安定性アッセイを6つの凍結乾燥した三抗原配合物のロットで行った。主要なアッセイの一部は、rClfAmの強度および純度のための逆相クロマトグラフィー(たとえばRP−HPLC)、ならびにCP5−CRM197およびCP8−CRM197の強度のための比濁分析であった。凍結乾燥したケークを2℃〜8℃、25℃および37℃に置き、選択された時点で分析した。ケークは試験の直前に再構成した。試験結果では、乾燥した形態で4週間後に、rClfAmの強度(濃度)または純度およびコンジュゲートの強度(抗原性)に変化は見られなかった(図8および9)。また、rClfAmの濃度および純度、ならびにCP5−CRM197/CP8−CRM197の濃度(抗原性)も、3カ月間もの期間の間、それぞれRP−HPLCおよび比濁分析によって決定した。2℃〜8℃で保管した試料で行った直線回帰分析により、試料が最低6カ月間は安定であることが示されている(図8および9)。試料は、高(L36686−3−1およびL36686−25)ならびに低(L36686−3−2およびL360510195−2)用量の両方で試験した(表19〜22)。
三抗原配合物中のClfAの安定化の成功は、黄色ブドウ球菌(S.aureus)MntCタンパク質をさらに含む配合物の開発に通じた。さらに、クランピング因子Aは、T7タグ付けした型(rClfAm)からタグを有さないもの(rmClfA)へと更新された。CP5−およびCP8−CRM197は、担体タンパク質および糖反復単位に関して同じに保たれた。
1.400/400/200/200μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197、および
2.200/200/100/100μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197。
加水分解を介した分解を受けやすいClfAとは異なり、MntCは脱アミド化によって分解される。したがって、一定範囲のpHにわたってMntCの安定性を決定することが重要であった。MntCを用いて行った固有のトリプトファン蛍光実験により2つの主要な現象が起こっていたことが示され、Tm1は40〜55℃であり、Tm2は65〜75℃であった(図18)。Tm1を追跡すると、pH5.0および6.0が最高であり、次いでpH7.0であった。データにより、5.0〜7.0の作業pH範囲が示された。また、代表的なMntCのロットを用いたDSCも行った。代表的な温度記録は2つの主な熱イベントを例示しており、これをさらに逆重畳することができる(図19)。第1の融解温度(Tm1)を追跡すると、pH5.0および6.0が最高の熱安定性を有しており、次いでpH7.0であることが明らかである(図19)。蛍光結果と一致して、これらのデータは5.0〜7.0の作業pH範囲を示唆している。OD350データもこれらの観察を支持している(図20)。IEX−HPLCによる脱アミド化の分析により、高いpHおよび高温がMntCの脱アミド化の速度を増加させたことが確認された。
上述の三抗原配合物中では、CP5およびCP8コンジュゲートの原薬はpH7.0のコハク酸塩中で提供した。しかし、コハク酸塩緩衝系は、より低いpHでは良好な緩衝能力を提供しなかった。したがって、CP5およびCP8コンジュゲートをpH6.7の10mMのヒスチジン中で再配合した実験を行った。コンジュゲートの原薬はpH<6.5で良好に濾過されず、遅い濾過およびコンジュゲートしたタンパク質の損失をもたらすため、6.5よりも高いpHが好ましかった。これが、ヒスチジン中のrmClfA、MntC、および薬物製品の配合物を均質性について評価するための駆動力となった。
400/400/200/200μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197を含み、1)4.5%のスクロース、2)4.5%のトレハロース、3)3%のマンニトール/1%のスクロース、4)3%のマンニトール/1%のトレハロース、5)3%のグリシン/1%のトレハロース、6)3%のグリシン/1%のトレハロースおよび7)4.5%のスクロース、PS80なしを含有する配合物を、安定性について試験した。すべての配合物は、10mMのヒスチジンおよび0.01%のポリソルベート80を含有しており(配合物7は例外)、配合物の測定pHは6.3であった。配合物をFlurotecでコーティングした4432/50共栓を備えたSchott1型2mLのバイアルに分注し、バイアルを6日間、室温で穏やかに遥動した。
1)ポリソルベート80の必要性を決定するため、および2)配合物の頑健性を確認するために、攪拌実験を設計した。表28に記載のように、一価およびSA4agの配合物を、0、0.01、および0.03%のPS80を用いて評価した。試料をflurotecでコーティングした4432/50共栓を備えたSchott1型2mLのバイアル内に分注し、24時間、室温で、VWR渦攪拌器(モデルDVX−2500、500RPMのパルスモード)を用いて攪拌した。攪拌した試料と並行して、攪拌していない対照を室温に24時間置いた。それぞれの配合物について複数のバイアルをプールして分析した。
TA Instrumentsの改変示差走査熱量計(mDSC)を用いて凍結乾燥前の液体配合物のガラス転移を得て、Tg’値を表29中に報告する。ロットL44130−39−1および39−2は、4.5%のスクロースを含有する高および低用量の標的配合物を表す。ロットL44130−45試料は標的スクロース濃度を一括し、3%または6%の賦形剤を含有する。これらの試料は、L44130−39−1の高および低用量(+30%および−30%)を一括したClfA/CP5−CRM197/CP8−CRM197/MntCの濃度を含有する。すべての配合物は−33〜−35℃のTg’値を与え、これは、文献に報告されているようにスクロースに典型的である。
1.4.5%のスクロース対4%のマンニトール/1%のスクロース、および
2.保守的な凍結乾燥サイクル対より速い積極的なサイクル。
試料を一価の薬物製品の配合物および四抗原配合物のどちらとしても評価した。すべての配合物には、10mMのヒスチジン、pH6.5、および0.01%のPS80が含まれていた。用量は、rmClfAおよびMntCでは400μg/mL、CP5−およびCP8−CRM197コンジュゲートでは200μg/mLであった。凍結乾燥の前および後の配合物を、以下のアッセイを用いて比較した:外見、pH、MntCの脱アミド化のためのCEX−HPLC、MntCおよびrmClfAの純度のためのRP−HPLC、コンジュゲートの回収率のための比濁分析、水分、沈殿物を検出するためのOD350、ならびに構造的評価のための示差走査熱量(DSC)。使用したサイクルは表32および表33に記載されている。
再構成希釈剤は、注射用水(WFI)中の60mMのNaClであることを選択した。図28は、この希釈剤で再構成した場合に、高用量(400/400/200/200μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197)および低用量(200/200/100/100μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197)がどちらも生理的な範囲の重量モル浸透圧濃度を示すことを実証している。選択した再構成体積は0.7mLであり、その結果、0.73mLの最終体積が生じる。
四抗原配合物の凍結乾燥プロセス後の回収率は、2組の研究(2つの高用量および2つの低用量)を用いて評価し、プロセスは、配合、濾過、充填、および凍結乾燥からなっていた。図31AおよびBは、凍結乾燥後に抗原のいかなる損失も存在しなかったことを示している。同様に、図31CおよびDは、凍結乾燥後の試料中のrmClfAまたはMntCの純度に変化が存在しなかったことを示している。
1)400/400/200/200μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197、
2)200/200/100/100μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197、または
3)40/40/20/20μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197
を用いた四抗原配合物を、2〜8℃、25℃、および37℃で安定性について試験した。配合物(1)および(2)は3つの温度で6カ月間安定であった。配合物(3)は2〜8℃で5カ月間の安定性を実証した(表35)。この研究に使用した原薬は、rmClfAはL40256−30(四抗原の代表的なロット)、MntCはL44124−64(四抗原の代表的なロット)、CP5−CRM197は7CP5C−1002(三抗原の代表的なロット)およびCP8−CRM197はG−C8−3−9(三抗原の代表的なロット)であった。
配合物の頑健性を実証するために高および低配合物の構成要素を一括するために、エッジ研究を設計した。表42に配合物を詳述する。活性構成要素は、高用量(400/400/200/200μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197)よりも30%高い、および低用量(200/200/100/100μg/mLのrmClfA/MntC/CP5−CRM197/CP8−CRM197)よりも30%低いとして変動させた。不活性構成要素は、pHは6.0〜7.0、ヒスチジンは5〜15mM、スクロースは3〜6%、およびPS80は0.005〜0.015%の範囲で変動させた。
四抗原の高用量(L44130−88−1)および低用量(L44130−88−2)の凍結乾燥前の液体配合物を、Schott1型バイアル中で4回のサイクルで凍結融解した。試料を毎回少なくとも24時間、−70℃で凍結し、その後、室温で解凍した。解凍サイクル中、解凍された液体配合物が室温で長時間放置されないように、バイアルを綿密に監視した。これは、配合物が室温でインキュベートされた結果としてのrmClfAおよびMntCの脱アミド化のいかなるクリッピングもデータに反映されないことを確実にするために、行った。それぞれの凍結融解の組(3つ組で行った)をプールし、rmClfAおよびMntCの純度にはRP−HPLC、rmClfAおよびMntCの濃度にはIEX−HPLC、MntCの純度にはIEX−HPLC、ならびにCP5およびCP8コンジュゲートの濃度には比濁分析によって分析した。4回の凍結融解サイクル後、RP−HPLCによるrmClfAおよびMntCの純度(図33A)ならびにIEX−HPLCによるMntCの純度(図33B)は変化しなかった。同様に、抗原の濃度(図33CおよびD)およびpH(図33E)は、4回の凍結融解サイクル後に一貫して保たれた。
攪拌後の安定性を測定する研究の目的は、0.01%のポリソルベート80を含有する四抗原配合物が、容器施栓系へのいかなる吸着の問題も示さないことを確実にすることであった。高用量の凍結乾燥前の四抗原配合物(L44130−100)を、0、0.01%、および0.03%のポリソルベート80を用いて調製し、試料を24時間、室温で、凍結乾燥バイアル/共栓容器施栓中で攪拌した。対照試料は、攪拌せずに同じ周囲温度に置いた。攪拌には、VWR DVX−2500マルチチューブ渦攪拌器を500RPMのパルスモードに設定した。ポリソルベート80の濃度は0〜0.03%の範囲にわたって一括した。
高用量の四抗原配合物(400/400/200/200μg/mLのrmClfA/rP305A/CP5−CRM197/CP8−CRM197)の安定性を、20単位/mLのISCOMATRIX(商標)を含む10mMのヒスチジン、pH6.5中で、60mMのNaClを用いてまたは用いずに再構成した後に分析した。安定性を2〜8℃および25℃で24時間にわたって監視した。MntCの純度をCEX−HPLCによって分析した。25℃では、NaClを含むISCOMATRIX(商標)および塩を含む対照NaClは類似の脱アミド化速度を示す(図35B)。塩を含まないISCOMATRIX(商標)は、より遅い脱アミド化速度を示した。5℃では、脱アミド化の速度が劇的に低下した(図35A)。ISCOMATRIX(商標)からの干渉が原因で、rmClfAの純度を直接定量することは可能でなかった(図35C)。代表的な時間経過オーバーレイの分析により、rmClfAの主ピークが変化していなかったことが示され、これは、25℃で24時間にわたる安定性を示している(図35D)。同様の結果がすべての試料について2〜8℃で見られた。2〜8℃(図35E)および25℃(図35F)で24時間後にRP−HPLC(図35C)によってMntCの純度の変化は検出されなかった。2〜8℃(図35G)および25℃(図35H)で24時間後にCP5−CRM197およびCP8−CRM197コンジュゲートの濃度の変化は観察されなかった。2〜8℃(図35I)および25℃(図35J)で24時間後にrmClfAまたはMntCの濃度の変化は観察されなかった。
四抗原配合物中の低、中、および高用量のMntCを用いて短期的安定性研究を実施して、希釈剤としての60mMのNaCl、水中の4.5%のスクロース、および水を比較した。それぞれの配合物は、4.5%のスクロース、0.01%のPS80、および表47中に提供した抗原の濃度をpH6.5で含有していた。
表57に示すように、四抗原薬物製品のいくつかの異なる配合物で安定性アッセイを行った。
ATCC 39900
ATCC 35984
Claims (28)
- (a)単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子A(ClfA)ポリペプチド、単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子B(ClfB)ポリペプチド、5型莢膜多糖(CP5)−タンパク質のコンジュゲート、8型莢膜多糖(CP8)−タンパク質のコンジュゲート、および単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)MntCポリペプチドからなる群から選択される少なくとも3つの構成要素、
(b)6.0±0.6のpKaを有する緩衝液、ならびに
(c)充填剤
を含み、前記ClfAポリペプチドが、少なくとも1カ月間、37℃で実質的に分解されずに保たれる、凍結乾燥した免疫原性組成物。 - (a)単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子A(ClfA)ポリペプチド、
(b)5型莢膜多糖(CP5)−タンパク質のコンジュゲート、
(c)8型莢膜多糖(CP8)−タンパク質のコンジュゲート、
(d)6.0±0.6のpKaを有する緩衝液、ならびに
(e)充填剤
を含み、前記ClfAポリペプチドが、少なくとも1カ月間、37℃で実質的に分解されずに保たれる、凍結乾燥した免疫原性組成物。 - 単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)MntCポリペプチドをさらに含む、請求項2に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 単離した黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)クランピング因子B(ClfB)をさらに含む、請求項2または請求項3に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- ClfAポリペプチドがNドメインを含む、請求項1から4のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- ClfAポリペプチドがフィブリノーゲン結合ドメインを含む、請求項1から5のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- フィブリノーゲン結合ドメインが、フィブリノーゲンとClfAのネイティブフィブリノーゲン結合ドメインとの観察された結合と比較して低下したレベルでフィブリノーゲンと結合するように変更されている、請求項1から6のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- フィブリノーゲン結合ドメインが、Tyr338、Tyr256、Pro336、Lys389、Ala254およびIle387のうちの1つまたは複数でのアミノ酸置換を有することによって、フィブリノーゲンとの低下した結合を示す、請求項1から7のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- Tyr338、Tyr256、Pro336、Lys389、Ala254およびIle387のうちの1つまたは複数でのアミノ酸置換が、AlaまたはSerへの置換である、請求項8に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- Tyr338がAlaに置換されている、請求項9に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- CP5−タンパク質のコンジュゲートが、CP5−CRM197、CP5−ニューモリシン、またはCP5−連鎖球菌C5aペプチダーゼ(SCP)である、請求項1から10のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- CP8−タンパク質のコンジュゲートが、CP8−CRM197、CP8−ニューモリシン、またはCP8−連鎖球菌C5aペプチダーゼ(SCP)である、請求項1から11のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 免疫原性組成物の全重量の3重量パーセント未満(%w/w)の水を含み、ClfAポリペプチドが0.09%±0.027%〜0.85%±0.26%w/wであり、CP5−タンパク質のコンジュゲートが0.04%±0.013%〜0.42±0.13%w/wであり、CP8−タンパク質のコンジュゲートが0.04%±0.013%〜0.42±0.13%w/wであり、緩衝液が2.54%±0.76%w/wである、請求項1から12のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 緩衝液がpH6.0±0.5のヒスチジンを含む、請求項1から13のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 充填剤が、スクロース、トレハロース、マンニトール、グリシン、およびソルビトールからなる群から選択される、請求項1から14のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 充填剤がスクロースである、請求項15に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 充填剤が96%±0.060%w/wのスクロースである、請求項16に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 界面活性剤をさらに含む、請求項1から17のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 界面活性剤が、ポロキサマー、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、およびポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルからなる群から選択される、請求項18に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルがポリソルベート80である、請求項19に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- ポリソルベート80が0.20%±0.041%w/wである、請求項20に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- アジュバントをさらに含む、請求項1から21のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- アジュバントがISCOMATRIX(商標)である、請求項22に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物。
- 請求項1から23のいずれか一項に記載の凍結乾燥した免疫原性組成物を水性希釈剤で再構成することによって調製される、6.0±0.5の最終pHを有する液体免疫原性組成物。
- 水性希釈剤が水である、請求項24に記載の液体免疫原性組成物。
- (a)40μg/ml±4μg/ml〜800μg/ml±80μg/mlの濃度のClfAポリペプチド、
(b)20μg/ml±2μg/ml〜400μg/ml±40μg/mlの濃度のCP5−タンパク質のコンジュゲート、
(c)20μg/ml±2μg/ml〜400μg/ml±40μg/mlの濃度のCP8−タンパク質のコンジュゲート、
(d)10mM±5mMの濃度のヒスチジン緩衝液、
(e)0.1%±0.05%重量対体積(w/v)の濃度のポリソルベート80、および
(f)9%±4.5%w/vの濃度のスクロース
を含む、請求項24または請求項25に記載の液体免疫原性組成物。 - 40μg/ml±4μg/ml〜800μg/ml±80μg/mlの濃度のMntCポリペプチドをさらに含む、請求項24から26のいずれか一項に記載の液体免疫原性組成物。
- 40μg/ml±4μg/ml〜800μg/ml±80μg/mlの濃度のClfBポリペプチドをさらに含む、請求項24から27のいずれか一項に記載の液体免疫原性組成物。
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