JP2011511103A - 殺菌性アルコール可溶性第四級アンモニウムポリマー - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 本組成物は、(1)少なくとも1つのグリコールまたは少なくとも1つのグリコールとアルコールとの混合物、および(2)金属若しくは金属含有化合物を使用せずに表面へ抗菌特性を付与することのできる抗菌ポリマーを含む。本組成物は、表面に塗布され、前記基質上に抗菌ポリマーのコーティングを残して蒸発させられる。または、本組成物は、前記基質中若しくは内側に組み込まれる。
【選択図】 なし
Description
本発明は、皮膚を含む様々な表面を殺菌するため、および持続性のある抗菌特性を提供するのに適した、グリコール若しくはアルコール可溶性、水不溶性の抗菌ポリマーを含む殺菌用組成物を提供する。
本願明細書で用いられる以下の用語は、以下の意味を有する。
以下の実施例は、本発明を図示し、当業者に対象物の作製方法および使用方法を教示するために提供される。これらの実施例は、本発明の範囲を限定するものとして判断すべきではない。
(2−(メタクリロイルオキシ)エチル)トリメチルアンモニウムクロライドおよびブチルメタクリレートの共重合
2.5gの第四級ビニルモノマーである(2−(メタクリロイルオキシ)エチル)トリメチルアンモニウムクロライドの75%水溶液(Aldrich Chemical社)、7.5gのブチルメタクリレート(Aldrich Chemical社)、および0.1gのAIBN(2,2'−アゾビス(2−メチルプロピオニトリル)(Aldrich Chemical社)を10gのエタノール中に溶解させることによって溶液を作製した。この溶液にアルゴンガスを60秒間噴霧し、溶存酸素を放出させ、アルゴン雰囲気下でガラスバイアルに密閉した。このバイアルを70℃の乾燥器に24時間入れた。次にコポリマー含有溶液をエタノール中で希釈した(1:25)。
皮膚への組成物の塗布
実施例A1で生成した溶液約1mLをヒトボランティアの手の甲の皮膚に塗布し、乾くまで手袋をはめた指で伸ばして擦り込んだ。乾いた後、目立たない膜が残ったが、粘性でも粘着性でもなく、実質的に、ボランティアには感知できなかった。ブロモチモールブルー(BTB)指示染料は、第四級アンモニウム化合物へ強度に結合することが知られている。ポリマーコーティングの存在を可視化するために、ポリマー含有溶液が塗布された手の領域を、pH10に調整したBTB指示染料の0.5%水溶液ですすぎ洗いした。手をぬるめの流水で30秒間、指先を軽く用いてすすぎ洗いし、過剰なBTB指示染料溶液を除去した。コポリマー溶液で処理した皮膚の領域は青/緑色を示したが、周辺の皮膚は青/緑色を示さず、塗布されたポリマーの存在を示していた。コーティングは、洗剤溶液で強力にスクラブ洗浄した後にのみ、BTB指示染料検査がポリマーコーティングの存在をもはや示さない程度まで減少させられた。
(ビニルベンジル)トリメチルアンモニウムクロライドおよびブチルメタクリレート(H−1)の共重合
2.5gの第四級ビニルモノマーである(ビニルベンジル)トリメチルアンモニウムクロライド(Aldrich Chemical社)、7.5gのブチルメタクリレート(Aldrich Chemical社)、および0.1gのAIBN(2,2'−アゾビス(2−メチルプロピオニトリル)(Aldrich Chemical社)を20gのメタノール中に溶解させて溶液を作製した。この溶液にアルゴンガスを60秒間噴霧し、溶存酸素を放出させ、アルゴン雰囲気下でガラスバイアルに密閉した。このバイアルを70℃の乾燥器に24時間入れた。次にコポリマー含有溶液をエタノール中で希釈した(1:2)。この組成物を「H−1」と指名し、この後の実施例ではそのように称する。
ポリプロピレンへの組成物の塗布
実施例A3で生成した溶液を使用して、溶液を充填し、一晩充填したまま放置することにより、数本の15mLポリプロピレン遠心分離管の内面をコーティングした。次に溶液を破棄し、50℃に設定した低温乾燥器でアルコールを完全に蒸発させた。遠心分離管内面にポリマーコーティングが存在することを可視化するため、BTB指示染料の0.5%水溶液約5mLを遠心分離管の1本に添加した後、管を振とうして内面全体をコーティングした。遠心分離管を蒸留水で数回すすぎ洗いした後、遠心分離管の内面は濃い青色のままであったため、遠心分離管の内面が水不溶性のポリマーでコーティングされたことを示していた。
ポリマー組成物の抗菌活性
黄色ブドウ球菌の一晩培養液の10−4希釈液(約1×108CFU/mL)の2mLアリコートを、実施例A4で処理したポリプロピレン遠心分離管1本(サンプル)および未処理のポリプロピレン遠心分離管1本(コントロール)に添加した。37℃での一晩のインキュベーション中に、細菌培養液と遠心分離管の内面とが確実に接触するように、遠心分離管を緩徐に回転させた。翌日、各遠心分離管から採取された細菌培養液の段階希釈液を、細菌培養プレート上に画線培養した。非処理コントロール遠心管から採取された培養液は2.5×104CFUとなったが、処理されたサンプル管から採取された培養液で画線培養されたプレート上ではコロニーが全く観察されなかった。計数されたコロニー数の差は、細菌集団における少なくとも4.4対数の減少と言い換えられる。
アルコールに可溶性であるが水に不溶性である第四級アンモニウムポリウレタン(H3−C)の合成
50gのEthoquad(商標)C/12−75DK(Akzo Nobel社)を丸底フラスコに入れ、これをロータリーエバポレータに取り付け、乾燥するまで蒸発させた。残渣(約37.5g)は、約50℃で攪拌しながら70mLのテトラヒドロフラン(THF)中に再溶解させた。40gのトリレン−2,4−ジイソシアネート(TDI)を添加し,この溶液を約50℃で維持した水浴に浸しながら、1時間混合した。溶液の粘度はこの時間の間に上昇し、溶液は室温に冷却した場合に透明なままであった。この溶液を一晩室温で保管すると、粘性の追加の上昇が観察された。9gのジプロピレングリコールを添加し、この溶液を4時間にわたり50℃で混合した。次に、混合物をロータリーエバポレータに入れ、約50℃での真空ストリッピング(stripping)により全揮発性溶媒(主にTHF)を除去した。次に、この混合物を100mLのイソプロパノール中に溶解させ、真空ストリッピングを繰り返した。次に、この混合物を100mLのイソプロパノール中に再び溶解させ、真空ストリッピングを再び繰り返した。この混合物を100mLのイソプロパノール中に再溶解させると、約56重量%の固体ポリマー含有量を備える透明な粘性の黄色がかった溶液が得られた。その後、このポリマー溶液を固体1%〜10%の範囲の様々な濃度に希釈し、これらの溶液を使用して、スライドガラスおよびポリプロピレン試験管など様々な物体をコーティングした。コーティングは、乾燥すると透明から僅かに不透明で、非粘着性であり、基質に付着した。さらに、コーティングは水または食塩水ですすぎ洗いしても除去されなかった。生成物のポリマーは、ポリマーの主鎖構造内に第四級アンモニウム単位を備える直鎖状ポリウレタンを含むと考えられる。この実施例の生成物は「H3−C」とコード化し、以下の実施例の一部において抗菌コーティングとして用いた。
アルコールに可溶性であるが水に不溶性である、共有結合したフルオレセイン部分を含有する第四級アンモニウムポリウレタン(H3−F)の合成
50mgのフルオレセイン色素(天然分子)を3mLのTHF中に溶解させ、次に8gのトリレン−2,4−ジイソシアネート(TDI)と混合した。この溶液を約50℃で1時間混合した後、室温で一晩保管してから、事前に真空ストリッピングによりイソプロパノール溶媒が除去されて、約50℃で攪拌しながら14gのテトラヒドロフラン(THF)に再溶解させておいた10gのEthoquad(商標)C/12−75DK(Akzo Nobel社)と混合した。この混合物を数時間にわたり約50℃で混合し、その後に真空ストリッピングにかけた。次に、この混合物をイソプロパノール中に溶解させ、真空ストリッピングした。溶解/ストリッピングをさらにもう1回繰り返し、生成物を約50mLのイソプロパノール中に溶解させた。この溶液は17.4重量%の固体含有量を有することが見いだされた。この反応の生成物は、ポリマー主鎖構造内に第四級アンモニウム部分を含有する、フルオレセイン標識直鎖状ポリウレタンであると予想される。さらに、このポリマーは、ポリマー主鎖構造内にフルオレセイン部分を含有すると予想される。フルオレセイン部分は、ポリマーの存在、分散、持続性、および移動を測定するために有用な診断ツールを提供する。コーティングは、前述の実施例で説明したように様々な基質上で調製したが、これらのコーティングは上述したコーティングと類似の特性を有していた。コーティングしたガラス製顕微鏡用スライドは、15mLの脱イオン水または15mLのリン酸緩衝食塩水いずれかを含有する50mLの培養管に入れ、37℃で数時間にわたり振とう培養器に入れた。この溶液を次に495nmでの可視分光法(Spectronic 20)によって分析した。フルオレセインの浸出は検出できず、これは色素がポリマー構造内に完全に組み込まれたことを示していた。
抗菌コーティング組成物の調製
適切な量の上述の第四級ポリウレタン(H3−C)およびグリセロールをイソプロパノール中に希釈すると、10重量%のH3−Cおよび5重量%のグリセロールを含有する組成物が得られた。この溶液は透明なままで、コーティングをスライドガラス上で調製した場合に、ポリマーのフィルム形成および付着特性は有害な影響を受けなかった。
皮膚軟化剤を含有する抗菌コーティング組成物(SS−1C)の調製
10重量%のH3−C、5重量%のプロピレングリコール、および5重量%のジプロピレングリコールを含有し、残りはイソプロパノール(80重量%)である最終組成物を得るために、適切な量の上述した第四級ポリウレタン(実施例A6のH3−C)およびグリセロールをイソプロパノール中に希釈した。この溶液は透明なままで、コーティングをスライドガラスまたはブタ皮膚上で調製した場合に、ポリマーのフィルム形成および付着特性、ならびに抗菌効力は有害な影響を受けなかった。プロピレングリコールおよびジプロピレングリコールは皮膚軟化特性を有することが知られ、ローションおよび化粧品などの局所皮膚製品に広く使用されている。
皮膚軟化剤を含有する抗菌コーティング組成物の調製
実施例A9の調製物(SS−1C)は、イソプロパノールを用いて、1部のSS−1C対1部のイソプロパノール、および1部のSS−1C対3部のイソプロパノールの比率で希釈した。
皮膚軟化剤および紫外線吸収剤を含有する抗菌コーティング組成物の調製
実施例A9の調製物(SS−1C)は、皮膚を紫外線の吸収から保護し、日焼けを防ぐために、紫外線吸収性若しくは紫外線遮断性日焼け防止成分を含むように修飾した。紫外線吸収性若しくは紫外線遮断性添加物は、パラ−アミノ安息香酸(PABA)、PABAエステル、桂皮酸塩、ベンゾフェン、サリチル酸塩、オクトクリレン、ジベンゾイル−メタン、アボベンゾン、オキシベンゾン、酸化亜鉛、および二酸化チタンを含むリストから選択した。
皮膚軟化剤およびビタミンEを含有する抗菌コーティング組成物の調製
実施例A9の調製物(SS−1C)は、1%のビタミンEを含むように修正した。ビタミンEは、水に実際に不溶性であるが、アルコールには溶け易い。
抗菌添加物を含有する抗菌コーティング組成物(SS1C−BAC3)の調製
抗菌コーティング組成物(SS1C−BAC3)は、1.1gの塩化ベンザルコニウムおよび35.5gの実施例A9の調製物(SS−1C)を混合することによって調製した。塩化ベンザルコニウムは完全に溶解し、この溶液は無色透明であった。この組成物の抗菌効力について、以下に記載するように、ASTM試験法番号E1874−97(「カップ・スクラブ(Cup Scrub)法による抗菌洗剤評価のための標準試験法(「Standard Test Method for Evaluation of Antibacterial Washes by Cup Scrub Technique」))の修正版を利用して試験した。生きているヒト被験者ではなく、食肉処理場から収集したブタ皮膚を用いるなどの変更を含んでいた。SS1C−BAC3物質に加えて、イソプロパノール中の5%プロピレングリコールと5%ジプロピレングリコールとから成るプラセボを調製した。結果は以下に示した。
1.ブタ皮膚サンプルの調製と滅菌
1.1 本方法では試験生成物3サンプル(SS1C−BAC3)、プラセボ3サンプル、および陰性コントロール3サンプルの合計9サンプルを使用した。これらのサンプルは、サンプルがペトリ皿の底部を完全に内張りするのに適切なサイズとなるように、1枚のブタ皮膚から、皮膚上にペトリ皿の底部をなぞって書き写し、円形ピースに切り取ることによって切り取った。皮膚1枚から各9サンプルを切り取り、角質層を上に向けて、各々固有のペトリ皿の底部に配置した。
1.2 ペトリ皿に入れたら、サンプル皮膚は70%アルコールを完全に染み込ませたタオルで拭い、次に約10分間にわたり乾燥するまでBSC(生物学的安全キャビネット)内で紫外線下に置いた。ペトリ皿の蓋もサンプルと一緒に紫外線下に(上向きで)配置した。
2.1 紫外線下で乾燥させた後、BSCは送風機のスイッチを入れて蛍光に切り替え、各皮膚の上にインクマーカで1×1の正方形を描いた。これを塗布部位として使用した。蓋は依然として上に向けたまま、皮膚をマーキングしながら汚染が発生しないことを保証するために、紫外線のスイッチを数分間にわたり再び入れた。
2.2 送風機のスイッチを入れながらBSCを蛍光に戻し、蓋はサンプルを含有するペトリ皿の上に戻した。
2.3 一度に1サンプルずつ、ペトリ皿から蓋を持ち上げ、最初の3サンプルには0.5mLずつの試験生成物を(指定した正方形の中に)塗布した。滅菌ピペットの先端は、1回の塗布毎に交換した。
2.4 プラセボを用いて工程2.2を3回繰り返し、残りの3サンプルの皮膚は陰性コントロールとして残した。
3.1 生成物とプラセボを塗布したら、9サンプルそれぞれにカバーをしてBSC内に残し、試験のために1回に1サンプルを取り出した。
3.2 カップ/皮膚の密着を形成するために、しっかりと圧力を加えながらカップ(直径約1.5cm、高さ1.5cm)をサンプルの塗布位置の中心に置いた。最初に95%アルコールでカップを消毒し、火力乾燥させた。カップ/皮膚の密着を保護するために、1人がカップに一定の圧力をかけ、もう1人がカップ内に0.25mLの接種菌を分注した。分注したら、接種菌を5分間曝露させた。
3.3 5分後、95%アルコールで消毒し、火力乾燥させたガラス棒を用いて、カップ内の皮膚の周囲を30秒間スクラブした。30秒後、滅菌ピペットを用いて0.5mLの中和剤中に流体を回収した。
3.4 サンプル流体を回収したら、第2回収のために中和剤0.25mLを同一試験部位に分注し、新しく火力乾燥させたガラス棒でさらに30秒間スクラブした。この流体を第1回のスクラブから同一溶液中に回収した。
3.5 残り8サンプルについて、工程3.2〜3.4を繰り返した。
結果は回収したスクラブ流体の標準段階希釈液を作製することにより定量し、次にスプレッド・プレート法を用いてプレーティングした。プレートを一晩インキュベートし、陰性コントロールとプラセボの両方について対数減少を計算した。
抗菌コーティング組成物(SS1C−BAC3)対大腸菌の試験では、2回連続の成績は完全殺菌を示し、これは生菌の場合における平均4.5対数の減少に相当した。
プラセボは、試験細菌への作用を全く示さなかった。
アルコールに可溶性であるが水に不溶性である、および分子構造内に組み込まれた柔軟性疎水性単位を有する第四級アンモニウムポリウレタン(SS50H)の合成
実質的には実施例A6の方法に従った;しかしEthoquad(商標)に代えて1,6−ヘキサンジオールとEthoquad(商標)の等モル(1:1)混合物を使用した。生じたポリマーは水不溶性であり、イソプロパノールと少なくとも一部には非混和性であることが見いだされた;しかし、エタノールには完全に可溶性であった。エタノール中のこのポリマーの溶液(40.6重量%ポリマー)を強力に攪拌しながら高度に過剰な蒸留水に滴下した。沈降したポリマーを濾過によって収集し、真空乾燥器内で乾燥させた。生じた乾燥ポリマーは、濾過、乾燥、および回収中に沈降した物質の相当に大きな消失が観察されたにもかかわらず、原料の85%を超える回収率を構成した。これは、このポリマーが水に高度に不溶性であることを示した。さらに、このタイプの再沈降処理は、存在する可能性があるあらゆる水溶性(浸出性)成分を除去するので、完全に非浸出性組成物が所望である場合に有用である。
アルコールに可溶性であるが水に不溶性であり、分子構造内に組み込まれた柔軟性疎水性単位を有し、および低分子量を有する第四級アンモニウムポリウレタン(SS25HL)の合成
実質的には実施例A14の方法に従った;しかし3:1のモル比のEthoquad(商標)対1,6−ヘキサンジオールを利用した。さらに、ヒドロキシル末端基を備える短鎖の形成を促進するために、等モル量未満のTDI(約65%)を使用した。そこでこの物質は、低分子量を有し、相当に高い比率の浸出性(水溶性)抗菌成分を含有すると予想された。このポリマーの正確な分子量は未知である;しかし、このポリマーと上述したポリマーの溶液の粘度の比較は、このポリマーの方が低い分子量を有することを示した。
本明細書に記載した様々な組成物の即効性抗菌効力の比較
実施例A6、A14、およびA15に記載した組成物を即効性(5分間)抗菌効力について以下の方法を用いて試験した。
抗菌組成物がコーティングされた縫合糸材料の調製
実施例A6の方法によって調製したポリマーを使用して、どちらもEthicon社によって製造および販売されている多繊維ポリエステル縫合糸材料(Mersilene(登録商標)(未被覆)およびEthibond Excel(登録商標)(ポリブチレン被覆)をコーティングした。縫合糸(各々長さ約10cm)を5分間にわたり70%イソプロパノール中で洗浄し、脱イオン水で3回すすぎ洗いして表面の汚染を除去した。縫合糸を完全に乾燥させ、その後に抗菌ポリマーを塗布した。サンプルを50mLの円錐形遠心分離管に入れ、20mLの適切な処理液(0.5、2.0または10重量%いずれかの濃度でイソプロパノール中に溶解させた実施例A6のポリマー)で完全に被覆した。遠心分離管は、高度に親水性のポリエステル繊維に捕捉された空気を除去するために3〜5分間にわたり超音波処理した。これらのサンプルは、処理溶液から取り出し、60〜80℃で乾燥させた。均一な被覆を保証するためにコーティングプロセスを2回繰り返した(計3回のコーティング)。縫合糸は臨床的に重要な細菌:黄色ブドウ球菌、SA(ATCC番号6538);大腸菌、EC(ATCC番号15597);緑膿菌、PA(ATCC番号15442);およびメチシリン耐性黄色ブドウ球菌、MRSA(ATCC番号33593)に対して試験した。細菌懸濁液は、標準方法に従って調製した。懸濁液中の細菌の濃度は、分光光度計(Milton Roy Spectronic 20D分光光度計)を全細菌について580nmで使用して測定した。黄色ブドウ球菌の測定値は、約108の力価を生じさせた。ストック液中の細菌濃度は、PBSを用いた実験的試験のための標準接種菌(1×106cfu/mL)が得られるように調整した。最終濃度は、さらにまたコロニー形成単位(cfu)法によって確認した。処理およびコントロール縫合糸サンプルは無菌法により長さ4〜5cmにカットし、使用時まで室温で保管した。個別滅菌縫合糸区間を無菌の大ウエル培養プレートの隔離ウエル内に入れ、3時間にわたり4mLの細菌懸濁液に曝露させた。標準化接種菌は、段階的プレート計数によって確認した。縫合糸は、インキュベーション工程の期間中に120rpmに設定した攪拌器を用いて攪拌している間に、接種培地中で自由浮遊していた。試験菌株に曝露させた後、縫合糸区間は非付着性細胞を除去するためにPBS中で穏やかに(3回[3×])洗浄した。次に、縫合糸区間を0.25%のTriton−Xを含有するPBS中に入れ、3回[3×]ボルテックスにかけ、2〜5分間にわたり20kHzで同一溶液中で超音波処理した。縫合糸超音波処理物は、PBS中で段階希釈し、その後プレーティングし、37℃で24時間にわたりインキュベートした。1回の接種菌惹起毎に3つの縫合糸区間を評価した。細菌回収率は、log 10(対数)cfu/cm(縫合糸区間)として表示した。以下の結果が得られた[受領したまま[未被覆]縫合糸材料に比較した対数減少]。
紫外線硬化により抗菌組成物でコーティングされたプラスチックフィルムの調製
実施例A6に記載したポリマーを紫外線硬化型コーティング組成物と混合し、この混合物を使用して様々なプラスチック基質上のコーティングを調製した。「寒天スラリー法(Agar Slurry Method)(ASTM試験法E2180−01)を用いたその後の試験は、コーティングが黄色ブドウ球菌および大腸菌を含む様々な細菌微生物に対して有意な抗菌活性を有することを決定したが、この場合にコーティング中の抗菌ポリマーの含有量は乾燥コーティングの重量で10重量%〜30重量%であった。
抗菌特性を備える親水性ポリウレタンフォームの調製
この実施例は、創傷ドレッシング材料として有用な非浸出性抗菌親水性ポリウレタンフォームを調製するために使用される調製物中への実施例A6によって記載されたアルコール可溶性/水不溶性抗菌ポリマーの組み込みを例示している。水溶液は、90mgの四ナトリウムEDTAを12gの水に溶解させ、次に10gのPluronic(登録商標)F−88界面活性剤(BASF社)の0.25%溶液を加え、次に非イオン性分散剤(NanoShield(登録商標)ZN−3010、Alfa−Aesar社)を備える3gのZnO 50%懸濁液を加え、その後完全に混合した。25gのHypol(登録商標)−2000(Dow社)をイソプロパノール中の実施例6に記載したポリマー4gの40%溶液と、約1分間にわたり完全に混合した。次に「水溶液を」この混合物に加え、スチール製スパチュラを用いて一様に混合され、発泡の証拠が観察されるまで約20〜30秒間にわたり完全に攪拌した。この混合液を次に1枚のシリコン剥離紙上に注入し、所望の厚さ(約1/16''〜1/4'')のスペーサによって第1紙の表面の上方に保持した2枚目のシリコン剥離紙で迅速に被覆した。次に、この混合物を2枚の剥離紙間に一様な厚さへ広げるために、2枚目の剥離紙の上面を横断するようにストレートエッジのスプレッダ・バーを移動させた。この物質を数分間にわたり室温で硬化させた。次に上に乗っている剥離紙を取り除いた。下になっている剥離紙にまだ結合している、生じたフォームを次に15分間にわたり110℃の乾燥器内へ配置した。生じた黄色のフォームは、次に使用または試験するために剥離紙から取り除くことができよう。
アルコールに可溶性であるが水に不溶性である、および分子構造内に組み込まれた柔軟性疎水性および/または親水性単位を有する第四級アンモニウムポリウレタンの合成
ジエチレングリコール(ビス−(2−ヒドロキシエチル)エーテル)を1,6−ヘキサンジオールの全部または一部と置換することを除いて、実施例A14に記載した方法に従った。ポリマー生成物は、ジエチレングリコールの相対含有量が高いほど親水性になる。
浸出性抗菌剤(CHG)および安定剤/保存料(EDTA)もまた含有する、皮膚を消毒するための長期永続的効力を備える透明な、ゲルをベースとする抗菌剤(SSG2)の調製
以下の成分:10gのCHG(クロルヘキシジンジグルコネート、Aldrich社)の20%水溶液、水4.0gに溶解させた1.0gの四ナトリウムEDTA、イソプロパノール中の25gのSS−1C(実施例6)の40%溶液、および70/30(容量%)のイソプロパノール/水中に溶解させた60gのPEG[ポリ(エチレンオキシド)(MW=600,000)、Aldrich社]の2%溶液を結合し、しっかりと混合して100gの上述した調製物を作製した。PEGは、この調製物に粘性のゲル稠度を与えるために使用した。EDTAは、安定剤、および/または保存料として、および/または抗菌効力を強化するために加えた。上述の組成物はASTM試験法E1874−97(「カップ・スクラブ法による抗菌洗剤評価のための標準試験法」を使用して、ヒトボランティアを対象に試験した。試験菌は霊菌であり、「完全殺菌」は、非永続的コントロール消毒用組成物(Purell(登録商標)手の除菌用ローション)と比較した場合に、細菌負荷の3.5対数を超える平均減少を伴って得られた。抗菌効力の結果は、調製物を皮膚へ塗布した約5分後に試験した場合、および皮膚へ塗布した4時間後に試験した場合に類似であった。さらに、処理した皮膚を石鹸と水、またはアルコールを用いてすすぎ洗いした後でさえ、大きな抗菌活性が同様に検出された。
抗菌特性を備える医用接着剤の調製
実施例A14に記載したポリマーを低Tg(ガラス転移温度)アクリレートコポリマーと混合し、医用接着剤として使用するために適した組成物を得た。この混合物を使用して、プラスチック基質上にコーティングを調製した。これらのコーティングは、有用な接着特性を有することが見いだされた。「寒天スラリー法」(ASTM試験法E2180−01)を用いたその後の試験は、コーティングが黄色ブドウ球菌および大腸菌を含む様々な細菌微生物に対して有意な抗菌活性を有することを決定したが、この場合にコーティング中の抗菌ポリマーの含有量は乾燥コーティングの重量で10重量%〜30重量%であった。
分子構造内に組み込まれた柔軟性疎水性単位を有し、低分子量を有する、ヒトの皮膚へ塗布するための抗菌バリアフィルム(溶液「G11」)の調製
実質的には実施例A14の方法に従った;しかし20gのEthoquad(商標)溶液(75重量%)対7.5gの1,6−ヘキサンジオールを利用した。さらに、ヒドロキシル末端基を備える短鎖の形成を促進するために、等モル量未満(約65%)のTDIを使用した。この物質は、低分子量を有し、相当に高い比率の浸出性(水溶性)抗菌成分を含有すると予想された。このポリマーの正確な分子量は未知である;しかしこのポリマーと上述したポリマーの溶液の粘度の比較は、このポリマーの方が低い分子量を有することを示した。生じたポリマーは、以下の組成物:抗菌ポリマー(10重量%);PEG 600K増粘剤(1%);水(12%);イソプロパノール(27%);およびエタノール(50%)を備える溶液に調製した。この調製物は、以下の考察ではG−11と呼ぶ。
T=0 >99.98%*
T=4時間 >99.99999%*
T=6時間 >99.99999%*
すすぎ洗い試験: すすぎ洗い0回後の有効性 すすぎ洗い1回後の有効性**
G−11(被験者番号1) >99.9987%* >99.9987%*
G−11(被験者番号2) >99.973% >99.72%
G−11(被験者番号3) >99.9993%* >99.9993%*
*完全殺菌を示す。
**すすぎ洗い工程は、標準スプレーボトルからポンプを20回(各約1mL)押して脱イオン水を適用した。
ローン・スプレッド法によるG11対カンジダ・アルビカンスの評価
調製物G11は、ローン・スプレッド(lawn spread)法によってカンジダ・アルビカンスに対して評価した。C.アルビカンスATCC番号MYA−905、およびATCC番号10231の培養は、48時間にわたり酵母培養液中のグリセロールストックから増殖させた。これらの培養を次に希釈接種菌として機能させるために10−2の希釈率へ希釈した。無菌消毒綿に接種菌を十分に染み込ませ、酵母寒天培養液の全表面にわたって均一に塗り広げた。次に3本の30μL量のG11を均一に間隔をあけてピペットで寒天上に移した。寒天プレートを48時間にわたり培養器へ移し、その後結果を評価した。
C.アルビカンスATCC番号MYA−905、およびATCC番号10231の2種の菌株は、48時間にわたり酵母培養液中のグリセロールストックから増殖させた。これらの培養を次に希釈接種菌として機能させるために10−2の希釈率へ希釈した。250μLのG11をスライドガラスキャリア各々に分布させた。塗布後、スライドは10分間の乾燥時間にわたり生物学的安全キャビネット内に配置した。スライドの各々に100μLのC.アルビカンスを加え、無菌ループを用いて穏やかに分布させ、その後5分間の接触時間をおいた。細菌の各菌株に対して、3本の処理スライドおよび3本の陰性コントロールスライドを使用した。
溶媒としての水不溶性抗菌プロピレングリコール溶液の調製
アルコール溶媒を除去するために実施例A14に記載したポリマーを50℃の真空下で乾燥させ、引き続いてプロピレングリコール中に再溶解させて、プロピレングリコール中の40%ポリマー溶液を得た。この溶液は、室温で保存した場合に透明で安定性であることが観察された。
改良された物理的および審美的特性を有する、ヒト皮膚に塗布するための抗菌バリアフィルムの調製
実施例A23の組成物は、抗菌の目的には有効であったが、ヒトボランティアによって、皮膚へのこの溶液の塗布中または塗布後のいずれかで「ベタベタする」、「ネバネバする」、「ゴツゴツしている」、または「糸を引く」と感知された。これらの望ましくない物理的および/または審美的作用は、主としてこの調製物中に使用された増粘剤(1% PEG 600K)によって誘発されると決定された。この増粘剤は、高粘性を促進するために使用されるが、これは順に塗布中の生成物の「流出」を防止する。一般には、それでも所望レベルの増粘作用を提供する、できる限り小量の増粘剤を使用することが望ましい。さらに、増粘剤は、アルコール溶媒、および第四級抗菌ポリマーを含む本調製物の他の成分と適合性でなければならない。カルボマー(ポリアクリレートの1つ)は、皮膚調製物において使用される一般的増粘剤である。しかしカルボマーは第四級アンモニウムポリマーとは不適合である(沈降物形成)。本発明者らは、増粘剤としてヒドロキシエチルセルロース(HEC)を使用すると、優れた粘性特性を備え、望ましくない物理的若しくは審美的作用を生じさせない適合する調製物が得られることを見いだした。HECのグレードは、所望の物理的特性を最適化するために選択される。例えばメチルセルロース若しくはMethocel(Dow社)などのセルロースエーテルもまた、本発明を実施するために適切な増粘剤である。成分の添加順序は、有用な調製物を得るために重要である。
アルコール可溶性抗菌ポリマーおよび可塑剤を含有する自立型ポリマーフィルムの調製
25部のポリ(ビニルクロライド)(MW=47,000;Aldrich Chemical社、製品番号389323)、0.3部のCitroflex(登録商標)B−6可塑剤(Moreflex社)、テトラヒドロフラン(THF)中に溶解させた3.3部の25重量%の抗菌第四級アンモニウムポリマー、および20部のテトラヒドロフラン(THF)を、これらの構成成分が完全に溶解して混合物が一様になるまで混合することによって溶液を調製した。使用した抗菌第四級アンモニウムポリマーは、実施例A14に記載した抗菌第四級アンモニウムポリマーと実質的に類似であった。この溶液を平らなこびりつかないフライパンの上に注入し、一晩乾燥させた。フライパンは、一様なフィルム厚を促進するために水平面に配置した。乾燥したフィルムをフライパンから引き剥がした。コントロールフィルムを類似方法で調製した;しかし、このフィルムは抗菌ポリマーを含有していなかった。フィルムの抗菌効力について、ASTM「振とうフラスコ法」(ASTM番号E2149−抗菌表面試験「動的接触条件下で固定化された抗菌剤の抗菌活性を決定する(Determining the Antimicrobial Activity of Immobilized Antimicrobial Agents Under Dynamic Contact Conditions)」を用いて試験した。試験細菌はMRSA(ATCC番号BAA−44)であり、接触時間は30分間であった。抗菌内容物を備えるフィルムは、未処理フィルムに比較して、細菌の5.4対数減少(完全殺菌)を示した。両方のフィルムは、外観および物理的特性については類似であった。
抗菌ポリマーの溶液を用いたポリウレタンペレットの注入
350mLのTHFおよび50mLのエタノールの混合液中に溶解させた、実質的に実施例A15に記載したものに類似する10gの抗菌第四級アンモニウムポリマーを含有する溶液を調製した。この溶液に直径約3mmおよび長さ3mmのペレット形にあるポリウレタン樹脂100gを加えた。この懸濁液をロータリーミキサ上で一晩混合した。これらのペレットは、この時間中に全溶液を吸収した。ペレットは、僅かに加熱しながら減圧下で乾燥させた。乾燥したペレットの外観は、処理ペレットが僅かに黄色い色を有することを除いて、未処理ペレットと実質的に類似であった。残留抗菌ポリマーまたはコーティングの目に見える証拠はみられなかった。ペレットの抗菌効力について、ASTM「振とうフラスコ法」(ASTM試験法E2149−抗菌表面試験「動的接触条件下で固定化された抗菌剤の抗菌活性を決定する(Determining the Antimicrobial Activity of Immobilized Antimicrobial Agents Under Dynamic Contact Conditions)」を用いて試験した。試験細菌はMRSA(ATCC番号BAA−44)であり、接触時間は30分間であった。抗菌内容物を備えるペレットは未処理ペレットに比較して、細菌の2.5対数減少を示した。
抗菌ポリマーの溶液を用いた基質の処理
例えばポリ(ビニルクロライド)、ポリカーボネート、ポリアクリレート、若しくはポリスチレンを含む熱可塑性ポリマーである基質を、適切な溶媒中に溶解させた水不溶性第四級アンモニウム抗菌ポリマーを用いて処理した;このとき、適切な溶媒および/またはポリマー溶液は、基質の表面内に溶解する(全体に、若しくは部分的に)、吸収される、またはさもなければ浸透することができる。前記基質は、例えば刷毛塗り法、スプレー法、または浸漬法を含む任意のあらゆる適切な手段によって前記溶液で処理することができる。前記処理後、処理された基質は前記適切な溶媒を取り除いて、基質に注入、コーティング、接着、結合、または浸透させられた前記水不溶性第四級アンモニウム抗菌ポリマーを残し、基質に抗菌特性を与えるために乾燥させることができる。
概要:薄膜効力試験(TFET)は、[Bhende,S;Rothenburger,S;Spangler,D.J;In Vitro Assessment of Microbial Barrier Properties of Dermabond Topical Skin Adhesive.Surgical Infections 3(3),pp251−257(2002)]に基づいて、抗菌溶液の静菌活性を決定するために開発された。TFETの方法工程は、抗菌溶液を適当な増殖培地プレートに塗布する工程と、この溶液を完全に乾燥させる工程とから成る。プレートには次に所望の細菌約1×10−6CFU/mLを接種した後、接種菌が完全に吸収された後に一晩インキュベートした。その後、塗布領域の静菌活性を確認した。
MSA:MSA(マンニット食塩寒天培地)は、黄色ブドウ球菌とMRSAの選択的培地である。
EMB:エオシン・メチレンブルー寒天は、大腸菌の選択的培地である。
EA:エンテロコッカス寒天は、VREの選択的培地である。
コーティング:抗菌溶液100μLを各プレートに塗布し、接種前に生物学的安全キャビネット内で最低1時間風乾させた。
接種:他に規定されていない限り、試験菌は適切な増殖培地中で増殖させ、一晩インキュベートした。接種菌は、106CFU/mLの力価を達成するように作製した。次にコーティングしたプレートに1,000μLの細菌溶液を接種し、プレートを円運動で動かしながら、接種菌を均一に塗布した。
曝露:他に規定されていない限り、サンプルを37℃の高湿度チャンバ内でインキュベートし、曝露時間は一晩とした。
結果:インキュベーション後、各プレートを塗布領域上での静菌活性について検査した。結果は、合格/不合格として示した。増殖がない場合、プレートは合格と表示し、領域上で増殖がある場合、プレートは不合格と表示した。
TFET−結果:
薄膜効力試験(TEFT)を使用し、抗菌溶液の静菌能力を決定した。TEFTの方法工程は、担体として増殖培地プレートを用い、プレート中央に選択された抗菌溶液100μLを塗布する工程から成る。抗菌溶液は、接種前に少なくとも1時間にわたって風乾させた。コーティングしたプレートに力価106CFU/mLで1,000μLの接種菌を接種した。接種菌が完全にプレートの表面全体を被覆するまでプレートを回転させることによって、接種菌を均質に塗布した。次に接種したプレートを乾燥させた後、37℃で一晩インキュベートした。一晩インキュベートした後、抗菌溶液を塗布した領域を細菌増殖の抑制について検査し、結果を合格/不合格と表示した。細胞の抑制が観察されると、プレートは合格と見なした。細胞の抑制が観察されない場合は、プレートは不合格と見なした。黄色ブドウ球菌ATCC番号6538に使用した培地はマンニット食塩寒天培地(MSA)であり、使用した抗菌溶液は(実施例A6由来の)H3−Cであった。
黄色ブドウ球菌についての結果は以下の通りである。
5% H3−C 合格60/不合格0 合格60/不合格0
10% H3−C 合格60/不合格0 合格60/不合格0
実施例T2では、試験細菌としてメチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA、ATCC番号BAA−44)を使用し、増殖培地として再びMSAを使用した。
MRSAについての結果は以下の通りである。
5% H3−C 合格60/不合格0 合格60/不合格0
実施例T3では、試験細菌として大腸菌ATCC番号15597を使用し、さらにエオシン・メチレンブルー寒天を増殖培地として使用した。
大腸菌についての結果は以下の通りである。
5% H3−C 合格60/不合格0 合格60/不合格0
10% H3−C 合格60/不合格0 合格60/不合格0
実施例T4では、試験細菌としてバンコマイシン耐性エンテロコッカス(VRE、ATCC番号700221)、さらに増殖培地としてエンテロコッコセル寒天培地を使用した。
VREについての結果は以下の通りである。
5% H3−C 合格60/不合格0 合格60/不合格0
実施例T5では、抗菌溶液としてH−1調製物(実施例A3を参照)を使用した。
黄色ブドウ球菌についての結果は以下の通りである。
10% H−1 合格60/不合格0 合格60/不合格0
実施例T6でも、抗菌溶液としてH−1調製物を使用した。
大腸菌についての結果は以下の通りである。
10% H−1 合格60/不合格0 合格60/不合格0
本発明の組成物と比較するため、比較例T7では抗菌溶液としてZero(登録商標)手の除菌用ローション(Aquagen International社)を用いた。
黄色ブドウ球菌についての結果は以下の通りである。
Zero(登録商標) 合格8/不合格52 合格0/不合格60
本発明の組成物と比較するため、比較例T8では抗菌溶液としてZero(登録商標)手の除菌用ローションを用いた。
大腸菌についての結果は以下の通りである。
Zero(登録商標) 合格0/不合格60 合格0/不合格60
比較例T9
本発明の組成物と比較するため、比較例T9では、抗菌溶液としてPurell(登録商標)手の除菌用ローション(GOJO Industries社)を用いた。
黄色ブドウ球菌についての結果は以下の通りである。
Purell(登録商標) 合格0/不合格60 合格0/不合格60
本発明の組成物と比較するため、比較例T10では、抗菌溶液としてPurell(登録商標)手の除菌用ローション(GOJO Industries社)を用いた。
大腸菌についての結果は以下の通りである。
Purell(登録商標) 合格0/不合格60 合格0/不合格60
概要:この方法は、EPAの標準操作法である黄色ブドウ球菌、緑膿菌、およびウシ結核菌に対するスプレー殺菌剤の試験(Testing of Spray Disinfectants against Staphylococcus aureus,Pseudomonas aeruginosa,and Mycobacterium bovis)の修正版であり、EPAの標準操作法とは、ウシ結核菌(BCG)、緑膿菌、および黄色ブドウ球菌の3種類の検査菌に対する塗装面の殺菌剤としてのスプレー製剤の効果を判定するAOAC法を改訂したものである。
ホウケイ酸ガラス:ホウケイ酸スライドガラスはエタノールで洗浄し、風乾させた。乾燥後、ホウケイ酸スライドガラスをペトリ皿内に配置し、15分間加圧滅菌処理した。
Vitro−Skin(登録商標):Vitro−Skin(登録商標)は、製造業者の仕様書に従って調製した。Vitro−Skin(登録商標)が非無菌になった場合は、製造業者の仕様書に従って70%アルコールで滅菌し、乾燥させ、再水和させる必要がある。Vitro−Skin(登録商標)は、製造業者(IMS社、コネチカット州Orange)から直接購入した。Vitro−Skin(登録商標)は、ヒト皮膚の表面特性を効果的に模倣した先進試験基質である。Vitro−Skin(登録商標)は、最適化されたタンパク質および脂質成分の両方を含み、ヒト皮膚に類似したトポグラフィ、pH、臨界的表面張力、およびイオン強度を有するように設計されている。
ブタ皮膚:ブタ皮膚は、70%アルコールで滅菌した。この方法は、70%アルコールで担体を十分湿らせる工程と、生物学的安全キャビネット(BSC)内で担体を十分風乾させる工程を含んでいた。代わりに、ブタ皮膚を10分間紫外線に曝露させることもできる。新鮮ブタ皮膚は、地元の食肉処理場から購入した。
塗布:抗菌溶液は、担体が十分湿るまで各担体に塗布する。溶液の容量は、1,000μLを超えてはならず、20μL未満であってはならない。抗菌溶液は、その後BSC内で少なくとも1時間にわたり風乾させ、その後に接種した。
接種:他に特に記載されていない限り、試験細菌は適切な増殖培地中で、一晩37℃でインキュベートした。接種菌は、108CFU/mLの力価を生成するように修飾した。抗菌溶液を担持する担体には、次に10μL〜20μLの接種細菌を接種した。接種細菌は、接種細菌が十分に染み込ませた無菌綿棒を用いて分布させる。曝露時間は、接種直後に開始された。
曝露:他に特に記載されていない限り、曝露時間は一晩とし、サンプルは高湿度チャンバ内で37℃でインキュベートした。
中和:接種した担体は、抗菌溶液の抗菌活性を停止させるために、細菌を回収する前に中和した。他に特に記載されていない限り、すべての中和は、少なくとも10分間で、50mLの円錐形遠心分離管内でLetheen培養液20mLを用いて実施した。
回収:細菌の回収は中和用の遠心分離管内で開始した。中和した担体は1分間ボルテックスをかけた後、細菌は標準段階希釈法およびプレーティング法によって回収した。プレートを37℃で一晩インキュベートし、翌日コロニー形成単位を定量した。
コントロール:抗菌コーティングが塗布されていない担体基質は、ベースライン時細菌増殖を決定するための陰性コントロールとして使用した。コントロール基質は、各サンプルセット内の試験基質と同一組成物であった。コントロール基質についてのコロニー数を報告した。
計算:計算は、Microsoft Excel(登録商標)表計算ソフトを用いて行われる。表計算ソフトの電子コピーならびにハードコピーを保管する。
担体当たりのCFU/mLを計算するには、
[(10−wについての平均CFU)+(10−xについての平均CFU)+(10−yについての平均CFU)+(10−zについての平均CFU)]/(10−w+10−x+10−y+10−z)
(式中、10−w、10−x、10−y、および10−zは、プレーティングされた希釈率である)。1若しくはそれ以上の希釈率で計数が300超、または30未満のプレート計数を生じさせる場合、これらの計数および対応する希釈率は計算に使用されない。2枚のプレートのうち1枚のみで計数が300CFU以下となった場合は、そのプレートの計数と対応する希釈率は含められるが、平均は決定されない。
備考:プレート計数が0の場合は、すべての計算に含めなければならない。
対数減少を計算するためには、
LR=Log[(処理担体についてのCFU/mL)/(コントロール担体についてのCFU/mL)]
担体持続性検査−結果:
H−1抗菌ポリマーの10%溶液(実施例A3を参照)は、ホウケイ酸スライドガラス担体に塗布した。ピペットの先端を用いて、250μLのNimbuDerm H−1をスライドガラス担体表面25cm2の上方へ均一に塗布した。スライドガラス担体は、接種前に少なくとも1時間にわたり乾燥させた。担体に、106CFU/mLの目標負荷を保証するために、10μLの108CFU/mLの接種菌を接種した。使用した細菌は黄色ブドウ球菌ATCC番号6538であり、曝露時間は30分間であった。曝露後、接種したスライドガラス担体は、適切に中和するために10分間以上にわたり20mLのLetheen培養液の中和溶液中に入れた。Letheen培養液は使用前に4℃に冷却した。中和後、担体は、細菌の回収を促進するために1分間にわたり中和培養液中で1分間ボルテックスにかけた。生菌の回収は、標準段階希釈およびプレーティング法により行った。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:30分間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% H−1 6.51*
2 10% H−1 6.51*
3 10% H−1 6.51*
4 10% H−1 6.51*
(*=完全殺菌)
実施例C2は、曝露時間を除いて実施例C1と同一であった。実施例C2で使用した曝露時間は16時間(一晩曝露)であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% H−1 7.36*
2 10% H−1 7.36*
3 10% H−1 7.36*
4 10% H−1 7.36*
5 10% H−1 7.36*
6 10% H−1 7.36*
(*=完全殺菌)
実施例C3は、細菌を除いて実施例C2と同一であった。使用した細菌は、大腸菌ATCC番号15597であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% H−1 5.03*
2 10% H−1 5.03*
3 10% H−1 5.03*
4 10% H−1 5.03*
5 10% H−1 5.03*
6 10% H−1 5.03*
(*=完全殺菌)
実施例C4は、担体を除いて実施例C3と同一であった。使用した担体は、Vitro−Skin(登録商標)であった。
結果は以下の通りであった。
担体:Vitro−Skin(登録商標):
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% H−1 6.46*
2 10% H−1 6.46*
3 10% H−1 6.46*
4 10% H−1 6.46*
5 10% H−1 6.46*
6 10% H−1 6.46*
(*=完全殺菌)
H−3抗菌ポリマーの10%溶液(実施例A6を参照)は、ホウケイ酸スライドガラス担体に塗布した。ピペットの先端を用いて、250μLのH−3(10%ポリマー含有量)をスライドガラス担体表面25cm2の上方へ均一に塗布した。スライドガラス担体は、接種前に少なくとも1時間にわたり乾燥させた。担体に、106CFU/mLの目標負荷を保証するために、10μLの108CFU/mLの接種菌を接種した。使用した細菌は黄色ブドウ球菌ATCC番号6538であり、曝露時間は30分間であった。曝露後、接種したスライドガラス担体は、適切に中和するために10分間以上にわたり20mLのLetheen培養液の中和溶液中に入れた。Letheen培養液は使用に先行して4℃に冷却した。中和後、担体は、細菌の回収を促進するために1分間にわたり中和培養液中で1分間ボルテックスにかけた。生菌の回収は、標準段階希釈法およびプレーティング法によって実施した。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% H−3 5.03*
2 10% H−3 5.03*
3 10% H−3 5.03*
4 10% H−3 5.03*
5 10% H−3 5.03*
6 10% H−3 5.03*
(*=完全殺菌)
実施例C6は、担体を除いて実施例C5と同一であった。使用した担体は、Vitro−Skin(登録商標)であった。
結果は以下の通りであった。
担体:Vitro−Skin(登録商標):
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% H−3 6.46*
2 10% H−3 6.46*
3 10% H−3 6.46*
4 10% H−3 6.46*
5 10% H−3 6.46*
6 10% H−3 6.46*
(*=完全殺菌)
実施例C7は、皮膚消毒剤溶液の濃度を除いて実施例C5と同一であった。H3−C皮膚消毒剤の濃度は、今度は7%に減少させた。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 7% H3−C 6.40*
2 7% H3−C 6.40*
3 7% H3−C 6.40*
4 7% H3−C 6.40*
5 7% H3−C 6.40*
6 7% H3−C 6.40*
(*=完全殺菌)
実施例C8は、担体を除いて実施例C7と同一であった。使用した担体は、Vitro−Skin(登録商標)であった。
結果は以下の通りであった。
担体:Vitro−Skin(登録商標):
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 7% H3−C 6.32*
2 7% H3−C 6.32*
3 7% H3−C 6.32*
4 7% H3−C 6.32*
5 7% H3−C 6.32*
6 7% H3−C 6.32*
(*=完全殺菌)
実施例C9は、皮膚消毒剤溶液の濃度を除いて実施例C7と同一であった。H3−C皮膚消毒剤の濃度は、今度はさらに1%に減少させた。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 1% H3−C 4.44*
2 1% H3−C 4.44*
3 1% H3−C 4.44*
4 1% H3−C 4.44*
5 1% H3−C 4.44*
6 1% H3−C 4.44*
(*=完全殺菌)
実施例C10は、細菌を除いて実施例C9と同一であった。使用した細菌は、黄色ブドウ球菌ATCC番号6538であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 1% H3−C 3.10*
2 1% H3−C 3.10*
3 1% H3−C 3.10*
4 1% H3−C 3.10*
5 1% H3−C 3.10*
6 1% H3−C 3.10*
実施例C11は、細菌を除いて実施例C10と同一であった。使用した細菌は、緑膿菌ATCC番号15442であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 1% H3−C 6.59*
2 1% H3−C 6.59*
3 1% H3−C 6.59*
4 1% H3−C 6.59*
5 1% H3−C 6.59*
6 1% H3−C 6.59*
(*=完全殺菌)
H3−C抗菌ポリマーの1%溶液は、ホウケイ酸スライドガラス担体に塗布した。除菌用ローション液を染み込ませた不織布材料(ポリエステル/綿)で25cm2のスライド表面を2回通過させ、除菌用ローション液を塗布した。この段階でコーティングされたスライドガラス担体は、接種前に1時間以上乾燥させた。コーティングされたスライドガラスには、目標負荷量の106CFU/mLを保証するために108CFU/mLの接種菌を接種した。使用した細菌は大腸菌ATCC番号15597であり、曝露時間は16時間であった。曝露後、接種したスライドガラス担体は、適切に中和するために10分間以上にわたり20mLのLetheen培養液の中和溶液中に入れた。Letheen培養液は使用に先行して4℃に冷却した。中和後、担体は、細菌の回収を促進するために1分間にわたり中和培養液中で1分間ボルテックスにかけた。生菌の回収は、標準段階希釈法およびプレーティング法によって実施した。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 1% H3−C 6.19*
2 1% H3−C 6.19*
3 1% H3−C 6.19*
4 1% H3−C 6.19*
5 1% H3−C 6.19*
6 1% H3−C 6.19*
(*=完全殺菌)
実施例C13は、細菌を除いて実施例C12と同一であった。使用した細菌は、緑膿菌ATCC番号15442であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:16時間
サンプル 溶液 対数減少
1 1% H3−C 6.67*
2 1% H3−C 6.67*
3 1% H3−C 6.67*
4 1% H3−C 6.67*
5 1% H3−C 6.67*
6 1% H3−C 6.67*
(*=完全殺菌)
Purell(登録商標)手の瞬間除菌用ローション液(GOJO Industries社)をホウケイ酸スライドガラス担体に塗布した。ピペットの先端を用いて、250μLのPruell(登録商標)をスライドガラス担体表面25cm2の上方へ均一に塗布した。スライドガラス担体は、接種前に少なくとも1時間にわたり乾燥させた。担体に、目標負荷量の106CFU/mLを保証するために、10μLの108CFU/mLの接種菌を接種した。使用した細菌は黄色ブドウ球菌ATCC番号6538であり、曝露時間は30分間であった。曝露後、接種したスライドガラス担体は、適切に中和するために10分間以上にわたり20mLのLetheen培養液の中和溶液中に入れた。Letheen培養液は、使用前に4℃に冷却した。中和後、担体は、細菌の回収を促進するために1分間にわたり中和培養液中で1分間ボルテックスにかけた。生菌の回収は、標準段階希釈法およびプレーティング法によって実施した。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:30分間
サンプル 溶液 対数減少
1 Purell 1.07
2 Purell 1.22
3 Purell 1.17
4 Purell 1.07
5 Purell 1.19
6 Purell 1.14
実施例C15は、細菌を除いて実施例C14と同一であった。使用した細菌は、大腸菌ATCC番号15597であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:30分間
サンプル 溶液 対数減少
1 Purell 0.89
2 Purell 0.50
3 Purell −1.46
4 Purell −4.95
5 Purell 0.75
実施例C16は、細菌を除いて実施例C14と同一であった。使用した細菌は、緑膿菌ATCC番号15442であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ホウケイ酸スライドガラス
曝露時間:30分間
サンプル 溶液 対数減少
1 Purell 0.37
2 Purell 0.33
3 Purell 0.37
実施例A9の物質(SS−1C)をブタ皮膚担体に塗布した。ピペットの先端を用いて、1,000μLのSS−1Cをブタ皮膚担体表面25cm2の上方へ均一に塗布した。ブタ皮膚担体は、接種前に少なくとも1時間にわたり乾燥させた。担体に、106CFU/mLの目標負荷を保証するために、20μLの108CFU/mLの接種菌を接種した。使用した細菌は、霊菌ATCC番号13380であった。曝露時間は4時間であった。曝露後、接種したブタ皮膚担体は、適切に中和するために10分間以上にわたり20mLのLetheen培養液の中和溶液中に入れた。Letheen培養液は使用前に4℃に冷却した。中和後、担体は、細菌の回収を促進するために1分間にわたり中和培養液中で1分間ボルテックスにかけた。生菌の回収は、標準段階希釈およびプレーティング法により行った。
結果は以下の通りであった。
担体:ブタ皮膚
曝露時間:4時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% SS−C 7.07
2 10% SS−C 7.07
3 10% SS−C 7.07
実施例C18は、細菌を除いて実施例C17と同一であった。使用した細菌は、大腸菌ATCC番号8739であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ブタ皮膚
曝露時間:4時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% SS−C 7.19
2 10% SS−C 7.19
3 10% SS−C 7.19
実施例C19は、細菌を除いて実施例C17と同一であった。使用した細菌は、MRSA(メタシリン耐性黄色ブドウ球菌)であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ブタ皮膚
曝露時間:4時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% SS−C 7.42
2 10% SS−C 7.42
3 10% SS−C 7.42
実施例C20は、細菌を除いて実施例C17と同一であった。使用した細菌は、VRE(バンコマイシン耐性エンテロコッカス)であった。
結果は以下の通りであった。
担体:ブタ皮膚
曝露時間:4時間
サンプル 溶液 対数減少
1 10% SS−C 6.51
2 10% SS−C 6.51
3 10% SS−C 6.51
Claims (52)
- 永続的抗菌活性を基質に付与する組成物であって、(1)実質的にグリコールから成る溶媒、若しくは実質的に少なくとも1つのグリコールと少なくとも1つのアルコールとの混合物から成る溶媒と、(2)抗菌ポリマーとを含み、前記抗菌ポリマーは前記ポリマーの分子構造に共有結合したモノマー部分を含み、前記モノマー部分は少なくとも1つの第四級アンモニウム基を有し、前記抗菌ポリマーは前記溶媒中に易溶性であるが水に不溶性であり、前記溶媒は前記抗菌ポリマーを前記基質と結合するための担体として機能し、さらに前記抗菌活性は抗菌性金属材料によっては提供されない組成物。
- 請求項1記載の組成物において、前記抗菌ポリマーは、第1種のモノマー部分と第2種のモノマー部分とを含み、前記種の少なくとも1つは少なくとも1つの第四級アンモニウム基を有するものである。
- 請求項2記載の組成物において、前記第1モノマー部分はアリル若しくはビニル含有モノマー部分であり、前記第2モノマー部分はアリル若しくはビニル含有モノマー部分である。
- 請求項1記載の組成物において、前記モノマー部分はアリル若しくはビニル含有モノマー部分である。
- 請求項1記載の組成物において、前記抗菌ポリマーは、逐次重合を使用して合成されるものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記抗菌ポリマーは、少なくとも1つの第四級アンモニウム基を有するモノマー部分を含むポリウレタンポリマーであり、それにより前記組成物は基質に塗布された、若しくは基質内に組み込まれた場合に永続的抗菌活性を提供するものである。
- 請求項6記載の組成物において、前記ポリウレタンポリマー350g当たり第四級アンモニウム基を有する少なくとも1モルの前記モノマー部分は、前記ポリマーの分子構造に共有結合しているものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記抗菌ポリマーは、5〜25,000の平均重合度を有するものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記溶媒は、グリセロール、エチレングリコール、プロピレングリコール、ブチレングリコール、ペンタングリコール、それらの異性体および誘導体から成る群から選択される1つ若しくはそれ以上のグリコールから実質的に成るものである。
- 請求項9記載の組成物において、前記グリコールは前記組成物の60〜95重量%を含むものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記溶媒は、少なくとも1つのグリコールと少なくとも1つのアルコールとを含む混合物から基本的になり、前記アルコールはメタノール、エタノール、およびイソプロパノールから成る群から選択され、前記グリコールはグリセロール、エチレングリコール、プロピレングリコール、ブチレングリコール、ペンタングリコール、ならびにそれらの異性体および誘導体から成る群から選択されるものである。
- 請求項11記載の組成物において、前記混合物は、前記組成物の60〜95重量%を含むものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記抗菌ポリマーは、前記基質から接触する流体内へ流体殺菌を生じさせるレベルでは浸出、溶出、または放出しないものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記抗菌ポリマーは、無色、無臭、またはその両方である。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、5〜9のpHを有するものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、液体、ゲル、フォーム、およびエアロゾルから成る群から選択される形態にあるものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、浸出性抗菌剤をさらに含むものである。
- 請求項17記載の組成物において、前記抗菌剤は、第四級アンモニウム塩、ビグアニド、およびフェノール化合物から成る群から選択されるものである。
- 請求項18記載の組成物において、前記抗菌剤は、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、ジメチルジデシルアンモニウムクロライド、またはそれらの混合物から成る群から選択されるものである。
- 請求項18記載の組成物において、前記抗菌剤は、クロルヘキシジンおよびポリ(ヘキサメチレンビグアニド)から成る群から選択されるものである。
- 請求項18記載の組成物において、前記抗菌剤は、フェノールおよびトリクロサンから成る群から選択されるものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、皮膚軟化剤をさらに含むものである。
- 請求項22記載の組成物において、前記皮膚軟化剤は、グリセロール、エチレングリコール、プロピレングリコール、ブチレングリコール、ペンタングリコール、ジプロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、鉱油、脂肪アルコール、ラノリン、シリコン、イソプロピルパルミテート、スクアラン、グリセリン、それらの異性体若しくは誘導体、および上記のいずれかの混合物から成る群から選択されるものである。
- 請求項23記載の組成物において、前記ラノリンは、ラノリンのエトキシル化アセチル化アルコール誘導体またはラノリンの界面活性アルコール誘導体であり、前記シリコンはジメチコン、シクロメチコン、若しくはシメチコンであるものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、薬物、抗菌剤、防腐剤、増粘剤、保湿剤、皮膚軟化剤、ビタミン、一時的色素、持続的色素、および紫外線吸収剤から成る群から選択される少なくとも1つの添加物をさらに含み、これにより前記組成物はヒトまたは動物の皮膚に使用するために適合するものである。
- 請求項25記載の組成物において、前記一時的色素若しくは持続的色素は、共有化学結合によって前記抗菌ポリマーに結合しており、これにより前記ポリマーからの前記色素の移動を防止するものである。
- 請求項26記載の組成物において、前記色素は、フルオレセインである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、増粘剤をさらに含むものである。
- 請求項28記載の組成物において、前記増粘剤は、ヒドロキシエチルセルロースまたはセルロースエーテルを含むものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、CPT試験法を用いると、黄色ブドウ球菌の少なくとも3対数減少を生じさせるものである。
- 請求項1記載の組成物において、前記組成物は、前記CPT試験法を用いると、緑膿菌の少なくとも3対数減少を生じさせるものである。
- 基質を殺菌する方法であって、
a.前記基質に組成物を塗布する工程であって、前記組成物は、(1)基本的にグリコールから成る溶媒、若しくは基本的に少なくとも1つのグリコールと少なくとも1つのアルコールとの混合物から成る溶媒と、(2)抗菌ポリマーとを含み、前記抗菌ポリマーは前記ポリマーの前記分子構造に共有結合したモノマー部分を含み、前記モノマー部分は少なくとも1つの第四級アンモニウム基を有し、前記抗菌ポリマーは前記溶媒中に易溶性であるが水不溶性であり、前記溶媒は前記抗菌ポリマーを前記基質と結合するための担体として機能し、および前記抗菌活性は抗菌性金属材料によっては提供されない工程と、
b.前記溶媒を除去するために前記基質を乾燥させる工程と、
c.前記抗菌ポリマーを前記基質の表面上に残し、それにより永続的抗菌活性が前記基質に付与されるものである工程と
を含む方法。 - 請求項32記載の方法において、前記基質は、ヒトまたは動物の皮膚である。
- 請求項33記載の方法において、前記溶媒は、グリコールである。
- 請求項33に記載の方法において、前記工程a、b、およびcの適用は、医学的手術または獣医学的手術の前に行われるものである。
- 請求項33記載の方法において、前記基質は、医療器具および家庭用品から成る群から選択されるポリマー器具である。
- 請求項33記載の方法において、前記基質は、布地、木材または紙である。
- 抗菌製品を作製する方法であって、
a.組成物を調製する工程であって、前記組成物は、(1)基本的にアセトン、メチルエチルケトン、テトラヒドロフラン、エチルアセテート、エーテル、エステル、ベンゼン、トルエン、カーボネート、炭化水素、塩素化炭化水素、アルコール、グリコール、またはそれらの混合物から成る溶媒と、(2)抗菌ポリマーとを含み、前記抗菌ポリマーは前記ポリマーの前記分子構造に共有結合したモノマー部分を含み、前記モノマー部分は少なくとも1つの第四級アンモニウム基を有し、前記抗菌ポリマーは前記溶媒中に易溶性であるが水不溶性であり、および前記抗菌活性は抗菌性金属材料によっては提供されない工程と、
b.前記組成物を前記基質に塗布する工程であって、前記組成物は前記基質内に全体的に、若しくは部分的に、注入させる、吸収させる、穿通させる、さもなければ組み込ませ、それにより前記抗菌ポリマーを前記基質に、含浸する、注入する、コーティングする、接着させる、結合させる、若しくは浸透させ、それにより前記抗菌ポリマーは前記製品に抗菌特性を付与する工程と
を含む方法。 - 請求項38に記載の方法において、前記溶媒は、基本的にエーテル、アルコール、およびグリコールから成る、または前記溶媒は少なくとも1つのグリコールと少なくとも1つのアルコールとの混合物から基本的に成るものである。
- 請求項38に記載の方法において、紫外線硬化型コーティング組成物は、工程a.において前記抗菌組成物と結合させられ、工程b.の前記基質はポリマーシート若しくはフィルムである。
- 請求項38記載の方法において、前記基質は、前記抗菌ポリマーを含む化粧品調製物である。
- 請求項38記載の方法において、前記方法は、
c.前記溶媒を除去するために前記基質を乾燥させる工程であって、それにより前記抗菌ポリマーは、液体に曝露しても前記基質上に残留する工程を含む方法。 - 請求項42記載の方法において、前記基質は、ポリマー、布地、木材または紙である。
- 請求項42記載の方法において、前記基質は、縫合糸または創傷ドレッシングである。
- 請求項38記載の方法において、前記方法は、
c.前記基質から、フィルム、繊維、ゲル、フォーム、接着剤、シーラント、コーク、チューブ、シート、ロッド、コーティング、または粉末から成る群から選択される製品を形成する工程であって、前記製品はその中に前記抗菌ポリマーを含む工程をさらに含む方法。 - 請求項45記載の方法において、前記製品は、抗菌ポリマーを含む創傷ドレッシングである。
- 請求項45記載の方法において、前記製品は、抗菌ポリマーを含む縫合糸である。
- 請求項45記載の方法において、前記製品は、抗菌ポリマーを含む接着剤である。
- 即効性および永続的抗菌活性を基質に提供する抗菌ポリマーを含む組成物の有効性を改良する方法であって、前記抗菌ポリマーは、前記ポリマーの前記分子構造に共有結合したモノマー部分を含み、前記モノマー部分は少なくとも1つの第四級アンモニウム基を有し、前記抗菌ポリマーは、基本的にアルコール、グリコール、若しくはそれらの混合物から成る溶媒をさらに含む組成物の1つの成分であり、前記抗菌ポリマーは、前記溶媒中に易溶性であり、前記抗菌活性は抗菌性金属材料によっては提供されず、前記水溶性を前記抗菌ポリマーの全ポリマー重量の50重量%まで強化する工程を含む方法。
- 請求項49に記載の方法において、前記強化する工程は親水性単位を前記抗菌ポリマー内に組み込む工程を含み、それにより前記親水性単位は水性媒体中での前記抗菌ポリマーの可溶性を増加させるものである。
- 請求項49に記載の方法において、前記親水性単位はビス(2−ヒドロキシエチル)エーテルおよびトリレン−2,4−ジイソシアネート(TDI)の反応によって生成される−CH2−CH2−O−CH2−CH2−単位である。
- 請求項49に記載の方法において、前記強化する工程は、100までの平均重合度を備える抗菌ポリマーを製造する工程を含み、それにより水性媒体中での前記抗菌ポリマーの前記可溶性は、より高い平均重合度を有するポリマーの前記可溶性より高くなるものである。
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