JP2010528285A - 免疫組織化学およびinsituハイブリダーゼーションのためのポリマー担体 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2007年5月23日に出願された米国仮出願第60/931,546号の先の出願日の利益を請求するものであり、参照することによって本明細書に組み込まれる。
適切な溶媒において、結果として得られたPAHを、チオール−dPEG−NHSエステル(Quanta Biodesign,Powell,OH)またはTraut試薬等のチオール化剤と反応させて、使用可能なヒドラジド(z=5〜40)の一部(例えば、約50〜75%)をチオール化し、開示される方法において使用できるポリマー多機能ヒドラジドチオールリンカーを提供する。
Ab−抗体
(Ab−AP)−抗体−アルカリホスファターゼ共役体
ABS−緩衝酢酸生理食塩水
AP−アルカリホスファターゼ
BSA−ウシ血清アルブミン
CMV−サイトメガロウイルス
dPEG−4つのエーテル酸素原子を有する離散的サイズのPEG化合物を示すdPEG4等の離散的なポリエチレングリコール
EBER−エプスタイン−バーウイルス早期RNA
DL−検出可能な標識
Fc−結晶化可能フラグメント
HRP−西洋ワサビペルオキシダーゼ
IHC−免疫組織化学
ISH−in situハイブリダイゼーション
MAL−マレイミド
MBCH−メルカプトブチル酸カルボヒドラジド
MBH−メルカプトブチル酸ヒドラジド
NHS−N−ヒドロキシスクシニミド
SBM−特異的結合分子
SEC−サイズ排除クロマトグラフィー
SISH−銀in situハイブリダイゼーション
特に断りのない限り、専門用語は、従来の用法に従って使用される。分子生物学における一般用語の定義は、Oxford University Press発行のBenjamin Lewin,Genes VII,2000(ISBN 019879276X)、Blackwell Publishers発行、Kendrew et al.(編)のThe Encyclopedia of Molecular Biology,1994(ISBN 0632021829)、およびWiley,John&Sons,Inc.発行、Robert A.Meyers(編)のMolecular Biology and Biotechnology:a Comprehensive Desk Reference,1995(ISBN 0471186341)、および他の類似参考文献において見出され得る。
SISH色原体B:ヒドロキノン溶液
SISH色原体C:過酸化水素溶液
所定の開示される実施形態は、2つ以上の分子の共役体を作製するための方法、および該方法によって作製される共役体に関する。当業者は、開示される方法が、ヒドラジド官能基等のポリマー担体上の反応性官能基と反応し得る官能基を有する分子の任意の組み合わせを作製するために有用であることを認識するであろう。本発明を例証するために開示される特定の共役体は、本発明の範囲を制限するものではない。例えば、所定の開示される共役体は、抗体−ポリマーハプテン担体共役体であるが、他の生分子と他の検出可能な標識との間の共役体(例えば、ハプテン、フルオロフォア、ルミノホル、蛍光標識、蛍光ナノ粒子、および緑色蛍光タンパク質等の蛍光タンパク質)も開示の範囲内である。
開示される発明の実施形態は、ポリマー材料をハプテン担体等の担体として使用することに関する。本発明に概して最も有用であると考えられるポリマー材料は、2つの特徴:特定のポリマーに特徴的な1つまたは複数の反復モノマー単位、および複数の反応性官能基を有し、反応性官能基は、反復性ポリマー単位と関連して同一または異なり得る。
当業者は、ポリアクリルアミド以外のポリマー材料を使用して、開示される本発明の実施形態を実施できることを理解するであろう。単なる一例として、これらの追加ポリマー骨格材料は、以下を含むが、これらに限定されない。
1.ポリアクリル酸[例えば(CH2CHCO2H)n]、
2.ポリエチレンイミン[例えばH(NHCH2CH2)nNH2]、
3.典型的には以下の化学式を有するポリスチレンスルホン酸、
5.ポリエチレン−alt−マレイン酸、
6.ポリ(アルギニン)、ポリ(アスパラギン)、ポリ(アスパラギン酸)、ポリ(グルタミン酸)、ポリ(グルタミン)、およびポリ(リシン)、および
7.典型的には以下の化学式を有するポリビニルピロリドン(PVP)、
本明細書で開示される構成要素を結合するために使用できる任意の反応性官能基は、本発明を実施するために有用であり得る。所定の実施形態は、少なくとも2つの隣接するヘテロ原子が存在する場合の反応性官能基に関する。かかる官能基を選択するための1つの目的は、それらの高い求核性を利用することであり、例えば、本発明を動作の理論に限定することなく、1つ以上のヘテロ原子を含むが、2つの隣接するヘテロ原子を有しない官能基を有し得る化合物に関連して、α効果をもたらし得る。所定のかかる例示的な官能基は、譲受人の先行出願「Molecular Conjugate」、米国特許出願第11/603,425号に開示されるように、ヒドラジン、ヒドラジド、ヒドロキシルアミン(−RNOH)、ヒドラジドチオールである。
ポリマー担体の開示される実施形態は、概して購入することができるか、または当該技術分野において知られる方法を使用して作製することができる。いくつかの実際の実施形態は、ポリアクリルアミドヒドラジドに関連して、ポリマー骨格がアクリルアミドに基づく場合のポリマー担体について説明し、該担体は、複数の反応性ヒドラジド官能基をさらに含み得る。ポリアクリルアミドは、実施例1に開示されるように作製することができる。
開示される実施形態の主な使用の1つは、ハプテンのポリマー担体である。ハプテンは、免疫応答を惹起することができる小分子であるが、典型的には、タンパク質等の大きい担体に結合される場合に限られる。現在知られているか、または今後発見される可能性のある任意のハプテンは、本発明と使用することができる。周知の例示的なハプテンは、ジニトロフェノール、ビオチン、ジゴキシゲニン、フルオレセイン、ローダミン、ブロモデオキシウリジン、およびマウス免疫グロブリンを含む。
本発明のハプテンの第1の一般的なクラスはアゾールであり、典型的にはオキサゾールおよびピラゾール、より典型的には、以下の一般式を有するニトロオキサゾールおよびニトロピラゾールである。
本発明のハプテンの第2の一般的なクラスは、ニトロアリール化合物である。例示的なニトロアリール化合物は、ニトロフェニル、ニトロビフェニル、ニトロトリフェニル等、および以下の一般式を有する任意およびすべてのヘテロアリール対照物を含むが、それらに限定されない。
ベンゾフラザンおよびそれらの誘導体は、本発明の範囲内のハプテンの別のクラスである。ベンゾフラザン型化合物の一般式は、以下に提供される。
トリテルペンは、本発明の範囲内の別のクラスのハプテンである。環状トリテルペンに共通する塩基環構造は、以下に示すように、A〜Dの4つの6員融合環を有する。
尿素およびチオ尿素、特にアリールおよびヘテロアリール尿素およびチオ尿素は、本発明の範囲内の別のクラスのハプテンである。本発明の尿素ベースのハプテンの一般式は、以下に提供される。
まとめてロテノイドと称されるロテノンおよびロテノンベースのハプテンは、本発明の範囲内の別のクラスのハプテンを提供する。ロテノンの第1の一般式およびロテノンベースのハプテンは、以下に提供される。
オキサゾールおよびチアゾールスルホンアミドは、本発明の範囲内の別のクラスのハプテンを提供する。オキサゾールおよびチアゾールスルホンアミドの一般式は、以下に提供される。
クマリンおよびクマリン誘導体は、本発明の範囲内の別のクラスのハプテンを提供する。クマリンおよびクマリン誘導体の一般式は、以下に提供される。
リグニンベースの化合物、特にポドフィロトキシンおよびその誘導体等のシクロリグナンは、本発明の範囲内の別のクラスのハプテンを提供する。これらのシクロリグニンベースの誘導体の第1の一般式は、以下に提供される。
本発明の別の一般的なクラスのハプテンは、ヘテロビアリール化合物、典型的にはフェニルキノリンおよびキノキサリンである。開示されるヘテロビアリール化合物は、以下のような第1の一般式を有する。
本発明の別の一般的なクラスのハプテンは、以下のような第1の一般式を有するアゾベンゼン等のアゾアリール化合物である。
本発明に従う別のクラスのハプテンは、以下に示されるような第1の一般式を有する、ベンゾジアゼピンハプテンである。
1.一般
一般式によって示されるように、本出願のハプテン−任意のリンカー−担体共役体は、リンカーを含み得る。この目的で現在知られている、または今後開発される任意のリンカーは、本明細書に開示されるハプテンに結合することによって、本発明の共役体を作製するために使用できる。有用なリンカーは、ホモ−またはヘテロ二官能性のいずれかであり得るが、より典型的にはヘテロ二官能基である。
単なる一例として、開示されるハプテン共役体を作製するために適したリンカーの第1のクラスは、1つ以上の不飽和部位またはアルキル鎖を有する脂肪族炭化水素鎖等の脂肪族化合物であるが、それらに限定されない。脂肪族鎖は、典型的には末端官能基を含み、一例としてカルボニル反応基、アミン反応基、チオール反応基、またはハプテンおよび他の所望の化合物に対する結合を促進する、特定の結合部分等の光反応基を含むが、それらに限定されない。鎖の長さは異なり得るが、典型的には、約30炭素原子という実際の上限がある。約30炭素原子を超える鎖結合は、より小さい鎖結合を有する化合物よりも効果的でないことが分かっている。したがって、脂肪族鎖リンカーは、典型的には、約1炭素原子〜約30炭素原子の鎖長を有する。しかしながら、当業者は、特定のリンカーが30を超える原子を有し、依然として効率的に作動してハプテンを担体分子結合単位に結合しても依然として共役体が所望されるように機能する場合は、次いで、かかる鎖結合は依然として本発明の範囲である。
本発明を実施するために有用な第2のクラスのリンカーは、アルキレンオキシドである。アルキレンオキシドは、本明細書において、エチレングリコール等のグリコールを参照することによって表わされる。本発明のハプテン共役体は、リンカーの親水性がそれらの炭化水素鎖に関連して増加する場合に特に有用であることが分かっている。その結果、グリコール等のアルキレンオキシドは、本発明を実施するために有用であることが分かった。当業者は、酸素原子の数が増加するにつれて、化合物の親水性も増加し得ることを理解するであろう。したがって、本発明のリンカーは、概して(−OCH2CH2O−)nという化学式を有し、式中、nは約2〜約25であるが、より典型的にはnは約2〜約12である。
ポリマー担体は、所望の化合物または官能基が共役体に組み込まれ得る複数の官能基を有する。例えば、所定の開示される実施形態は共役体に関し、これによって、一部の反応性官能基、例えば、隣接するヘテロ原子を有する窒素担持官能基は1つまたは複数のハプテン、またはハプテンリンカーに結合するために使用可能となり、反応性官能基の残りの部分は、第2のクラスの所望の分子との反応に使用できる。一例として、第2のクラスの化合物は、生体分子(ペプチド、タンパク質、酵素、砂糖、多糖類、脂質、糖タンパク質、および脂肪タンパク質を含む)、検出可能な標識(ポリマー材料に結合される第1の末端および所望の分子に結合される、または結合するために使用可能な第2の末端を有するリンカー)を含むが、これらに限定されない。
A.一般
ポリアクリルアミドヒドラジドの詳細な合成は、米国特許出願第11/018,897号に記載されており、参照することによって本明細書に組み込まれ、実施例1において以下に提供される。簡潔に述べると、Sigma Aldrichから市販のポリアクリルアミドの水性混合物、およびヒドラジン一水和物(Sigma Aldrich)は、マイクロ波加熱の影響を受けやすい。この合成は、概して、以下のスキーム1に示される。
本発明は、種々のポリマー担体を使用して実施できるが、以下の議論は、ポリアクリルアミドヒドラジドをポリマー担体として参照する本発明を例証する。ポリアクリルアミドヒドラジドは、図2に示されるように、抗体等の特異的結合分子に結合される。ヒドラジド反応部分を含む化合物の場合、次いで、化合物の活性化は必要ない。あるいは、必要または所望される場合は、ポリマー担体を結合するために抗体を活性化することができる。例えば、1つの活性化技術は、抗体上でヒドラジド反応性官能基を提供または産生することを伴う。特に有用な本発明の実施形態は、ポリマーハプテン担体等のポリマー担体を抗体のFc部分に結合することである。この反応が生じたことを保証するため、実際の実施形態は、典型的には抗体のFc部分に関連する酸化糖質部分を有して、ヒドラジド反応性官能基、典型的には、アルデヒド、または反応性ケトン、酸またはエステル等のカルボニルを担持する化合物、最も典型的には過ヨウ素酸等の適切な酸化剤を使用して、アルデヒドを作製する。実際の実施形態の場合、過剰な過ヨウ素酸ナトリウムを使用してタンパク質を酸化した。
所定の例示的な本発明の実施形態は、開示されるポリマーハプテン担体共役体の種々の実施形態で実施され得るin situでのハイブリダイゼーション技術に関する。タンパク質等の標的を有する試料を選択する。抗体等の標的を検出するために有用なプローブも選択される。少なくとも1つのポリマーハプテン担体は、プローブに共役される。標的は、ポリマーハプテン担体に結合されるプローブを用いて、プローブ−ポリマーハプテン担体共役体で複合化された標的を、結果として生じた複合体を可視化するために適した酵素等の検出可能な標識、フルオロフォア等の有機クロモフォル、蛍光量子ドット等のクロモフォルナノ粒子、を有する抗ハプテン抗体で処理する等によって、任意の適切な手段を使用して可視化され得る複合体の作製に有効な方法で処理する。例えば、検出可能な標識が酵素である場合、酵素の置換基が提供され、それによって着色された沈殿物等の固有に同定可能な沈殿物を産生する。
開示される本発明の実施形態は、一部分において、本発明の方法の種々の実施形態を実行するためのキットを提供する。かかるキットの例は、コレステロール解析に有用なキット、妊娠キット、癌診断キット等を含む。本発明の試験キットは、典型的には、少なくとも1つのポリマーハプテン担体−特異的結合分子共役体等の本発明に従うポリマーハプテン担体共役体を有し、ポリマーハプテン担体−抗体共役体および抗ハプテン抗体、特に検出可能な標識に共役される抗ハプテン抗体を含む。
当業者は、ハプテン共役体を使用するために本明細書で開示される方法の実施形態は、自動化できることを理解するであろう。Ventana Medical System,Inc.は、自動解析を行うためのシステムおよび方法を開示するいくつかの米国特許の譲受人であり、米国特許第5,650,327号、第5,654,200号、第6,296,809号、第6,352,861号、第6,827,901号、および第6,943,029号、および米国公開出願第20030211630号および第20040052685号を含み、それぞれ参照することによって本明細書に組み込まれる。ポリマーハプテン染色手順の特定の実施形態は、種々の自動化プロセスを使用して実行することができる。
以下の実施例は、実際の実施形態の所定の特徴を説明するために提供する。当業者は、本発明の範囲がこれらの実施例によって例証される特定の特徴に限定されないことを理解するであろう。
この実施例は、本来米国特許出願第11/018,897号に開示されるように、ポリアクリルアミドヒドラジドを作製するための方法の一実施形態を説明し、参照することによって本明細書に組み込まれる、ポリアクリルアミド(1mmol、20mL、50重量%溶液、Sigma−Aldrich)は、コンデンサに取り付けられた100mL丸底フラスコ中の蒸留水(10mL)およびヒドラジン一水和物(20mL、420mmol、Sigma−Aldrich)と混合した。反応混合物は、CEM Discoveryユニットにおいて、60分間レンジ加熱した。室温に冷却した後、等容積のメタノールを反応混合物に添加して沈殿物を誘導した。結果として生じた混合物を遠心分離にかけ、上澄み液を移した。残渣を脱イオン化水(50mL)中で取り込み、沈殿プロセスを合計3回繰り返した。最終残渣を脱イオン化水に溶解および凍結乾燥して、細かい白色吸湿性の粉末を得た。
この実施例は、図1に示されるように、Fc特異的ハプテン化抗体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ポリクローナル抗体の溶液(1.5ml、3.0mg/ml)に、最終過ヨウ素酸濃度が11.7mMとなるよう過ヨウ素酸ナトリウム(0.5ml、脱イオン化水中10mg/ml)を添加した。PD−10カラム(0.1M酢酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH=5.5)で脱塩する前に、反応溶液を2時間回転させて、未反応の過ヨウ素酸を除去した。500倍モル過剰のハプテン−dPEGX−ヒドラジドを酸化抗体、次にシアノ水素化ホウ素ナトリウム(3.14mg、50μmol)に添加し、反応物を18時間インキュベートした。サイズ排除クロマトグラフィー(0.1M Na3PO4、0.15M NaCl、pH=7.5)は、精製されたハプテニル化抗体を得た。抗体当たりのDNPの数(ε360=18,200M−1cm−1:ε280=6,500M−1cm−1)は、UV−Vis測定値を使用して計算し、抗体当たりのアクセス可能なビオチンの数は、Sigma−Aldrichから入手可能なHABAアッセイを使用して測定した。
図2に示されるように、実施例は、ポリハプテニル化IgG共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。
ポリクローナル抗体の溶液(1.5ml、3.0mg/ml)に、最終過ヨウ素酸濃度が11.7mMとなるよう過ヨウ素酸ナトリウム(0.5ml、脱イオン化水中10mg/ml)を添加した。PD−10カラム(0.1M酢酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH=7.5)で脱塩する前に、反応溶液を2時間回転させて、未反応の過ヨウ素酸を除去した。50倍モル過剰のポリアクリルアミドヒドラジドリンカーを、シアノ水素化ホウ素ナトリウム(3.14mg、50μmol)に沿って抗体に添加し、反応物を18時間インキュベートした。SEC(0.1M 酢酸ナトリウム、pH5.0)は、精製された抗体−PAH共役体を得た。
PAH−IgGの溶液(2.0ml、0.53mg/ml)に、NHS−dPEGx−ハプテン(50倍過剰)を添加し、反応物を18時間インキュベートした。SEC(0.1M リン酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH=7.5)は、精製されたポリハプテニル化抗体を得た。抗体当たりのハプテンの数は、UV−Vis測定値を使用して計算し、抗体当たりのアクセス可能なビオチンの数は、Sigma−Aldrichから入手可能なHABAアッセイを使用して測定した。
この実施例は、概して図2に示されるように、化学選択的Fc特異的ポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ポリクローナル抗体の溶液(0.8ml、1.0mg/ml)を、過ヨウ素酸ナトリウム(0.2ml)の100mM水溶液を用いて、室温で2時間インキュベートした。ABS(0.10M 酢酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH5.5)を使用し、G−25(GE Lifesciences、PD−10カラム)のカラムを通して、溶液を緩衝液交換した。PAHを50倍モル過剰で酸化Abに添加し、室温で1時間インキュベートした。シアノ水素化ホウ素ナトリウム(50モル過剰)を添加し、室温で18時間インキュベートした。ABS(0.10M酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用し、サイズ排除カラム上でPAH−Abを精製した。NHS−dPEGx−ハプテン(10−100×モル過剰)を添加し、反応物を18時間インキュベートした。SEC(0.1Mリン酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH=7.5)は、精製したポリハプテニル化抗体を得た。抗体当たりのハプテンの数は、UV−Vis測定値を使用して計算し、抗体当たりのアクセス可能なビオチンの数は、Sigma−Aldrichから入手可能なHABAアッセイを使用して測定した。ハプテンの数は、実施例3における共役体よりも少なかったが、実施例2よりも多かった。
この実施例は、概して図2に示されるように、ニトロピラゾール標識化ポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ABS(0.10M 酢酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH5.5)中の精製したポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を、20倍モル過剰のニトロピラゾール−dPEG8−NHSで18時間インキュベートした。混合物は、PBS(0.10M リン酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH7.2)を使用して、サイズ排除クロマトグラフィーによって精製し、ポリ−ニトロピラゾール−PAH−Abを得た。PAH−Ab当たりのニトロピラゾールの数は、UV−Vis測定値によって決定した。
この実施例は、概して図2に示されるように、ベンゾフラザン標識化ポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)中の精製されたポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を、20倍モル過剰のベンゾフラザン−dPEG8−NHSで18時間インキュベートした。混合物は、PBS(0.10M リン酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH7.2)を使用して、サイズ排除クロマトグラフィーによって精製し、ポリ−ベンゾフラザン−PAH−Abを得た。PAH−Ab当たりのベンゾフラザンの数は、UV−Vis測定値によって決定した。
この実施例は、概して図2に示されるように、ジニトロフェニル標識化ポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)中の精製されたポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を、100倍モル過剰のジニトロフェニル−dPEG8−NHSで18時間インキュベートした。混合物は、PBS(0.10M リン酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH7.2)を使用して、サイズ排除クロマトグラフィーによって精製し、ポリ−ジニトロフェニル−PAH−Abを得た。PAH−Ab当たりのベンゾフラザンの数は、UV−Vis測定値によって決定した。
この実施例は、概して図2に示されるように、チアゾールスルホンアミド標識化ポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ABS(0.10M 酢酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH5.5)中の精製されたポリアクリルアミドヒドラジド−抗体共役体を、20倍モル過剰のチアゾールスルホンアミド−dPEG8−NHSで18時間インキュベートした。混合物は、PBS(0.10M リン酸ナトリウム、0.15M NaCl、pH7.2)を使用して、サイズ排除クロマトグラフィーによって精製し、ポリ−チアゾールスルホンアミド−PAH−Abを得た。PAH−Ab当たりのベンゾフラザンの数は、UV−Vis測定値によって決定した。
この実施例は、量子ドットを使用して組織エピトープ、特に扁桃腺上のKi−67を検出して、ポリハプテニル化ポリマーと共役される二次抗体を認識することに関する。以下は、Ventana Benchmark Instrumentからの適応手順である。EZPrep容積調整剤とともに液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで4分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で4分後、スライドを洗浄し、液体カバースリップとともにEZPrep容積調整剤を添加して、76℃で4分間組織を脱パラフィン化した。スライドを40℃まで冷却し、3回洗浄した後、マウス抗Ki67(100μL、VMSI)抗体、次に液体カバースリップを添加し、40℃で16分間インキュベートした。スライドを洗浄した後、ヤギ抗マウスPAHビオチニル化抗体(100μL)、次に液体カバースリップで処理し、40℃で8分間インキュベートした。スライドを緩衝液で2回洗浄した後、液体カバースリップを適用し、655nm QDot−SA共役体(100μL、20nmol)を添加し、37℃で16分間インキュベートした。スライドを緩衝液で3回洗浄し、洗剤洗浄で処理した後、カバースリップを手動でスライドに適用し、その後、顕微鏡を通してスライドを見た。図3−6は、この実施例に従って得られる染色結果を示し、図5および6は、一次抗体の10倍希釈を使用して得られる染色結果を示す。
この実施例は、概して図7に示されるように、二次抗ハプテン抗体に直接共役される量子ドットを使用する扁桃腺上の抗λの評価を説明する。手順は、Ventana Benchmark Instrumentからの自動染色プロトコルの適応である。液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで8分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で8分間2回インキュベートした後、スライドを洗浄し、EZPrep容積調整剤、次に液体カバースリップを添加して、組織を脱パラフィン化した。スライドを37℃に冷却し、2分間インキュベートして、反応緩衝液で1回洗浄した。次いで、スライドを細胞調整剤で2回、次いで液体カバースリップで処理した。スライド、次にカバースリップを95℃まで8分間加熱し、次いで、スライド、カバースリップを100℃まで4分間加熱した。「細胞調整剤を適用し、4分間インキュベートして、カバースリップを適用する」という、細胞調整剤を用いるこのインキュベートプロセスを9回100℃で繰り返した。スライドを8分間冷却し、反応緩衝液、容積調整剤、次に液体カバースリップと反応させた。スライドを37℃まで2分間加熱し、2回洗浄した後、一次共役体(抗λ−PAH−dPEG8−ハプテン、100μL、VMSI)を添加し、次に液体カバースリップを適用して、37℃で32分間インキュベートした。スライドを反応緩衝液で2回洗浄した後、液体カバースリップを適用し、適切な抗ハプテンAb量子ドット共役体(100μL、20−50nmol)を添加して、37℃で32分間インキュベートした。スライドを緩衝液、次に液体カバースリップで2回洗浄した。スライドを装置から取り外し、洗剤洗浄で処理した後、カバースリップを手動で適用した。スライドイメージは、蛍光顕微鏡上でロングパスフィルタおよびイメージ強化ソフトウェア(Acquity)を用いて、CRIイメージングカメラを使用することによって撮影した。図8〜11は、この実施例に従って得られた染色結果を示す。
この実施例は、図12に示されるように、Fc−ヒドラジド−dPEGx−ハプテン共役体、次にAP−IgG検出を使用する、アルカリホスファターゼ−抗体多重体共役、特に異なる組織におけるHPVの評価に関する。以下は、Ventana Benchmark Instrumentからの自動染色プロトコルの適応である。EZPrep容積調整剤とともに液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで4分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で4分後、スライドを洗浄し、液体カバースリップとともにEZPrep容積調整剤を添加して、76℃で4分間組織を脱パラフィン化した。細胞調整剤#2(VMSI)を添加し、スライドを90℃まで加温して、8分間インキュベートした。この後に細胞調整剤#2を再度適用し、90℃で12分間インキュベートした。スライドを反応緩衝液(VMSI)で洗浄し、37℃に冷却して、ISHプロテアーゼ3(100μL、VMSI)を添加した。4分間インキュベートした後、スライドを3回洗浄し、iView+HybReady(200μL、VMSI)を適用して、4分間インキュベートした。HPV HRプローブ(200μL VMSI)を添加した後、37℃で4分間、95℃で12分間、および52℃で124分間インキュベートした。次いで、スライドを2回洗浄し、72℃まで加熱した。この最終ステップを2回繰り返した後、スライドを37℃に冷却し、iView+抗DNP(100μL、VMSI)を添加した。一次抗体を20分間インキュベートし、次いで、スライドを2回洗浄した後、ポリアクリルアミドヒドラジドビオチニル化二次物(ヤギ抗ウサギ、100μL、10μg/ml)を手動で添加した。2次的インキュベートを20分間行い、スライドを2回洗浄した。次いで、抗ハプテン抗体を適用し(100μL)、さらに20分インキュベートを行った。さらに2回の洗浄ステップの後、ヤギ抗ウサギAP共役体を適用し(100μL、6μg/ml)、8分インキュベートした。さらに4回の洗浄ステップに続いて、iView+Enhancer(100μL、VMSI)を適用し後、4分間インキュベートし、iView+NBT(100μL、VMSI)およびiView+BCIP(100μL、VMSI)の両方を適用した。次いで、スライドを24分間インキュベートし、3回洗浄して、対比染色NFR(100μL、VMSI)を添加した。対比染色を用いた4分間のインキュベート後、スライドを3回以上洗浄し、装置から取り外した。スライドを洗剤洗浄で処理した後、エタノール、アセトン、およびキシレンで脱水し、続いてカバースリップをスライドに適用し、その後、顕微鏡を通してスライドを見た。
この実施例は、西洋ワサビペルオキシダーゼ抗体多重体共役体の評価、特に図13に示されるように、SISH検出のためにFc共役ビオチンヒドラジドまたはビオチニル化ポリアクリルアミドヒドラジドを使用する異なる組織におけるHPVの評価に関する。以下は、Ventana Benchmark Instrumentからの適応手順である。EZPrep容積調整剤とともに液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで4分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で4分後、スライドを洗浄し、液体カバースリップとともにEZPrep容積調整剤を添加して、76℃で4分間組織を脱パラフィン化した。細胞調整剤#2(VMSI)を添加し、スライドを90℃まで加温して、8分間インキュベートした。この後に細胞調整剤#2を再度適用し、90℃で12分間インキュベートした。スライドを反応緩衝液(VMSI)で洗浄し、37℃に冷却して、ISHプロテアーゼ3(100μL、VMSI)を添加した。4分間インキュベートした後、スライドを3回洗浄し、iView+HybReady(100μL、VMSI)を適用して、4分間インキュベートした。HPV HRプローブ(200μL VMSI)を添加した後、37℃で4分間、95℃で12分間、および52℃で124分間インキュベートした。次いで、スライドを2回洗浄し、72℃まで加熱した。この最終ステップをさらに2回繰り返した後、スライドを37℃に冷却し、iView+抗DNP(100μL、VMSI)を添加した。一次抗体を20分間インキュベートし、次いで、スライドを2回洗浄した後、ポリアクリルアミドヒドラジドビオチニル化二次物(ヤギ抗ウサギ、100μL、10μg/ml)を手動で添加した。2次的インキュベートを8分間行い、スライドを2回洗浄した。次いで、ウサギ抗ビオチン抗体を適用し(100μL)、さらに20分間インキュベートを行った。さらに2回の洗浄ステップの後、HRP多重体を適用し(100μL、10μg/ml)、8分間インキュベートした。さらに4回の洗浄ステップの後、SISH Chromagen A(100μL VMSI)を適用して4分間インキュベートし、SISH Chromagen B(100μL、VMSI)を適用して4分間インキュベートし、SISH Chromagen C(100μL、VMSI)を適用して4分間インキュベートした。スライドを3回洗浄し、ヘマトキシリンII(100μL、VMSI)を添加した。対比染色で4分間インキュベートした後、スライドを洗浄し、青味試薬(100μL、VMSI)を適用し、4分間インキュベートした。次いで、スライドをさらに3回洗浄し、装置から取り外した。スライドを洗剤洗浄で処理した後、エタノールアセトン、およびキシレンで脱水し、続いてカバースリップをスライドに適用し、その後、顕微鏡を通してスライドを見た。図14〜21は、この実施例に従って得られる染色結果を示す。
この実施例は、概して図22に示されるような、量子ドットを用いた扁桃腺上の抗κ、CD34、CD45、およびKi−67の多重検出を説明する。手順は、Ventana Benchmark Instrumentからの自動染色プロトコルの適用である。EZPrep容積調整剤を用いて液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで8分間加熱し、EZPrep(VMSI)で2回処理して、75℃で容積調整した。75℃で2回8分間インキュベートした後、スライドを洗浄し、EZPrep容積調整、次に液体カバースリップを適用して組織を脱パラフィン化した。スライドを37℃に冷却し、2分間インキュベートして、反応緩衝液で1回洗浄した。次いで、スライドを細胞調整剤で2回処理した後、液体カバースリップを適用した。スライドを95℃まで8分間加熱し、カバースリップを適用し、次いで、100℃まで4分間加熱した後、カバースリップを適用した。「細胞調整剤の適用、4分間インキュベート、カバースリップの適用」という、細胞調整剤を用いるこのインキュベートプロセスは、100℃で9回繰り返した。スライドを8分間冷却し、反応鑑賞剤で洗浄し、容積調整した後、液体カバースリップを適用した。スライドを37℃に2分間加熱し、2回洗浄した後、一次共役体(抗κ−PAH−dPEG8−ジニトロフェニル、−CD34−PAH−dPEG8−ニトロピラゾール、−CD45−PAH−dPEG8−チオスルホンアミドおよびKi−67−PAH−dPEG8−ベンゾフラン、それぞれ100μL、VMSI)を添加し、液体カバースリップを適用して、37℃で32分間インキュベートした。スライドを反応緩衝液で2回洗浄し、抗ハプテンAb−量子ドット共役体の適切な混合物(それぞれ100μL、20−50nmol)、続いて液体カバースリップを適用して、37℃で32分間インキュベートする。スライドを緩衝液で2回洗浄した後、液体カバースリップを適用した。スライドを装置から取り外し、洗剤洗浄で処理した後、カバースリップを手動で適用した。スライドイメージは、蛍光顕微鏡上でロングパスフィルタおよびイメージ強化ソフトウェア(Acquity)を用いて、CRIイメージングカメラを使用することによって撮影した。図23〜26は、この実施例に従って得られた染色結果を示す。
この実施例は、デキストランヒドラジド、デキストランヒドラジン、デキストランアミン、およびデキストラングアニジンに関する。10〜200アルデヒドを含有するデキストランアルデヒド(Pierce)平均分子量10,000、20,000または40,000をpH7.0のリン酸緩衝液に溶解する。
この実施例は、ポリビニルピロリドンヒドラジド(PVPH)を作製するための方法の一実施形態を説明する。ポリビニルピロリドン(1mmol、20mL、50重量%溶液、Sigma−Aldrich)を、コンデンサに取り付けられた100mLの丸底フラスコ中でヒドラジン一水和物(50mL、1.0mol、Sigma−Aldrich)と混合する。反応混合物は、CEM Discoveryユニットにおいて、種々の電力(100W、200W、300W)で60分間、120℃でレンジ加熱した。反応物を真空でオフホワイトの泡になるまで減容した。残渣を最小量のDI水中に取り込み、大容量のテトラヒドロフラン(THF)と混合して沈殿を誘発した。結果として生じた混合物を遠心分離し、上澄みを移した。残渣を最小量の脱イオン水中に取り込み、THFを用いた沈殿プロセスを合計3回繰り返した。最終残渣を脱イオン水に溶解し、凍結乾燥させて、細かいオフホワイトの吸湿性粉末を得た。
この実施例は、ポリイソブチレン−co−マレイン酸ヒドラジド(PIBMH)を作製するための方法の一実施形態を説明する。ポリイソブチレン−co−マレイン酸無水物(7.1mmol、1.09g、Sigma−Aldrich)は、10mL CEMマイクロ波チューブにおいてヒドラジン一水和物と混合した(7.0mL、144mmol、Sigma−Aldrich)。反応混合物は、CEM Discoveryユニットにおいて、300Wで60分間、120℃でレンジ加熱した。反応物を真空でオフホワイトの泡になるまで減容した。残渣を最小量のDI水中に取り込み、大容量のエタノールと混合して沈殿を誘発した。結果として生じた混合物を遠心分離し、上澄みを移した。残渣を最小量の脱イオン水中に取り込み、エタノールを用いた沈殿プロセスを合計3回繰り返した。最終残渣を脱イオン水に溶解し、凍結乾燥させて、細かいオフホワイトの吸湿性粉末を得た。
この実施例は、ポリアクリル酸ヒドラジド(PAAH)を作製するための方法の一実施形態を説明する。ポリアクリル酸(水中9.57mmol、2.00g、45重量%溶液、Sigma−Aldrich)を40mL DI水で希釈し、t−ブチルカルバミン酸(9.57mmol、1.24g、Sigma−Aldrich)およびEDAC(19.1mmol、3.66g)を室温で14時間反応させた。反応混合物pHは、IM HClの滴下添加によって3未満に下げ、ポリマーの沈殿を誘発した。ポリマー沈殿物をろ過し、DI水で洗浄し、真空乾燥させて846mgの材料を産生した。BOC保護ポリマーを、トリフルオロ酢酸(8mL)で、完全に溶解するまで1時間以上撹拌し、TFAを真空で除去した。残渣TFAは、トルエン、次に塩化メチレンを用いた共沸蒸留によって除去し、低圧力下でさらに乾燥させて720mgの白色固体を得た。
この実施例は、蛍光によって、ポリマー当たりの反応性ヒドラジド基のモル当量を決定するための方法の一実施形態を説明する。標準曲線は、6つの濃度(0.1〜0.8mM)のアセチルヒドラジドをpH7.5のPBS中のフルオレスカミンと反応させて、蛍光(A360/E460)対濃度をプロットすることによって生成した。R2値は、標準曲線の場合0.994である。
この実施例は、概して図2に示されるような化学選択的Fc特異的ポリビニルピロリドンヒドラジド−抗体(PVPH−Ab)共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ポリクローナル抗体の溶液(1.0mg/mLの0.8mL)を、過ヨウ素酸ナトリウム(0.2mL)の100mM水溶液と、2時間室温でインキュベートした。溶液は、ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用して、G−25(GE Lifesciences、PD−10カラム)のカラムを通すことによって緩衝液交換した。Abに対して50倍モル過剰を使用してPVPHを酸化Abに添加し、室温で一晩インキュベートした。ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用し、サイズ排除カラム上でPVPH−Abを精製した。NHS−dPEG8−DNP(50×モル過剰)を添加し、反応物を18時間インキュベートした。SEC(0.1M リン酸、0.15M NaCl、pH=7.5)は、精製されたポリハプテニル化抗体を得た。抗体当たりのハプテンの数は、UV−Vis測定値を使用して計算した。
この実施例は、概して図2に示されるような化学選択的Fc特異的イソブチレン−co−マレイン酸ヒドラジド−抗体(PIBM−Ab)共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ポリクローナル抗体の溶液(1.0mg/mLの0.8mL)を、過ヨウ素酸ナトリウム(0.2mL)の100mM水溶液と、2時間室温でインキュベートした。溶液は、ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用して、G−25(GE Lifesciences、PD−10カラム)のカラムを通すことによって緩衝液交換した。Abに対して50倍モル過剰を使用してPVPHを酸化Abに添加し、室温で一晩インキュベートした。ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用し、サイズ排除カラム上でPIBMH−Abを精製した。NHS−dPEG8−DNP(50×モル過剰)を添加し、反応物を18時間インキュベートした。SEC(0.1M リン酸、0.15M NaCl、pH=7.5)は、精製されたポリハプテニル化抗体を得た。抗体当たりのハプテンの数は、UV−Vis測定値を使用して計算した。
この実施例は、概して図2に示されるような化学選択的Fc特異的ポリアクリル酸ヒドラジド−抗体(PAAH−Ab)共役体を合成するための方法の一実施形態を説明する。ポリクローナル抗体の溶液(1.0mg/mLの0.8mL)を、過ヨウ素酸ナトリウム(0.2mL)の100mM水溶液と、2時間室温でインキュベートした。溶液は、ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用して、G−25(GE Lifesciences、PD−10カラム)のカラムを通すことによって緩衝液交換した。Abに対して50倍モル過剰を使用してPAAHを酸化Abに添加し、室温で一晩インキュベートした。ABS(0.10M 酢酸、0.15M NaCl、pH5.5)を使用し、サイズ排除カラム上でPAAH−Abを精製した。NHS−dPEG8−DNP(50×モル過剰)を添加し、反応物を18時間インキュベートした。SEC(0.1M リン酸、0.15M NaCl、pH=7.5)は、精製されたポリハプテニル化抗体を得た。抗体当たりのハプテンの数は、UV−Vis測定値を使用して計算した。
この実施例は、発色染色(すなわちDABのHRP媒介沈着)または量子ドットのいずれかを使用して、扁桃腺上の組織エピトープ、特にKi−67を検出して、ポリハプテニル化ポリマーと共役された抗体を認識することに関する。以下は、Ventana Benchmark Instrumentからの適応手順である。EZPrep容積調整剤とともに液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで4分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で4分後、スライドを洗浄し、液体カバースリップとともにEZPrep容積調整剤を添加して、76℃で4分間組織を脱パラフィン化した。スライドを40℃まで冷却し、3回洗浄した後、マウス抗Ki67(100μL、VMSI)抗体を添加し、次に液体カバースリップを適用して、40℃で16分間インキュベートした。スライドを洗浄した後、ヤギ抗マウスPVPH−DNP抗体(100μL)、次に液体カバースリップで処理し、40℃で8分間インキュベートした。スライドを緩衝液で2回洗浄した後、液体カバースリップを適用し、655nm QDot:抗DNP MAb共役体(100μL、20nmol)を添加し、37℃で16分間インキュベートした。スライドを緩衝液で3回洗浄し、洗剤洗浄で処理した後、カバースリップを手動でスライドに適用し、その後、顕微鏡を通してスライドを見た。図27および28は、この実施例に従って得られる染色結果を示す。
この実施例は、発色染色(すなわちDABのHRP媒介沈着)または量子ドットのいずれかを使用して、扁桃腺上の組織エピトープ、特にKi−67を検出して、ポリハプテニル化ポリマーと共役された抗体を認識することに関する。以下は、Ventana Benchmark Instrumentからの適応手順である。EZPrep容積調整剤とともに液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで4分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で4分後、スライドを洗浄し、液体カバースリップとともにEZPrep容積調整剤を添加して、76℃で4分間組織を脱パラフィン化した。スライドを40℃まで冷却し、3回洗浄した後、マウス抗Ki67(100μL、VMSI)抗体、次に液体カバースリップを添加し、40℃で16分間インキュベートした。スライドを洗浄した後、ヤギ抗マウスPIBMH−DNP抗体(100μL)、次に液体カバースリップで処理し、40℃で8分間インキュベートした。スライドを緩衝液で2回洗浄した後、液体カバースリップを適用し、655nm QDot:抗DNP MAb共役体(100μL、20nmol)を添加し、37℃で16分間インキュベートした。スライドを緩衝液で3回洗浄し、洗剤洗浄で処理した後、カバースリップを手動でスライドに適用し、その後、顕微鏡を通してスライドを見た。図29および30は、この実施例に従って得られる染色結果を示す。
この実施例は、発色染色(すなわちDABのHRP媒介沈着)または量子ドットのいずれかを使用して、扁桃腺上の組織エピトープ、特にKi−67を検出して、ポリハプテニル化ポリマーと共役された抗体を認識することに関する。以下は、Ventana Benchmark Instrumentからの適応手順である。EZPrep容積調整剤とともに液体カバースリップ(VMSI)を適用する前に、スライド上のパラフィンコーティングした組織を75℃まで4分間加熱し、EZPrep容積調整剤(VMSI)により75℃で2回処理した。75℃で4分後、スライドを洗浄し、液体カバースリップとともにEZPrep容積調整剤を添加して、76℃で4分間組織を脱パラフィン化した。スライドを40℃まで冷却し、3回洗浄した後、マウス抗Ki67(100μL、VMSI)抗体、次に液体カバースリップを添加し、40℃で16分間インキュベートした。スライドを洗浄した後、ヤギ抗マウスPAAH−DNP抗体(100μL)、次に液体カバースリップで処理し、40℃で8分間インキュベートした。スライドを緩衝液で2回洗浄した後、液体カバースリップを適用し、655nm QDot:抗DNP MAb共役体(100μL、20nmol)を添加し、37℃で16分間インキュベートした。スライドを緩衝液で3回洗浄し、洗剤洗浄で処理した後、カバースリップを手動でスライドに適用し、その後、顕微鏡を通してスライドを見た。図31および32は、この実施例に従って得られる染色結果を示す。
Claims (59)
- 分子共役体を作製するための方法であって、ポリマー担体によって提供される反応性官能基を介して、特異的結合分子を検出可能な標識に連結するステップを含み、前記反応性官能基は、ヒドラジン、ヒドラジド、ヒドラジン誘導体、ヒドラジド誘導体、グアニジン、アミノグアニジン、ヒドロキシルアミン、またはそれらの組み合わせから選択される、方法。
- 前記ポリマー担体は、ポリアクリルアミド、ポリアクリルアミド−N−ヒドロキシスクシニミド、ポリアクリル酸、ポリエチレンイミン、多糖類、ポリエチレン−alt−マレイン酸、ポリアミノ酸またはポリビニルピロリドンから選択されるポリマー部分を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記ポリマー担体は、ポリアクリルアミドヒドラジドまたはポリビニルピロリドンヒドラジドである、請求項1に記載の方法。
- 前記ポリマー担体は、平均分子量10,000以下のポリアクリルアミドヒドラジドである、請求項1に記載の方法。
- 前記ポリアクリルアミドヒドラジドは、非チオール化される、請求項3に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は、アビジン、抗体、核酸、ペプチド核酸(PNA)、またはアプタマーである、請求項1に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は抗体である、請求項1に記載の方法。
- 前記特異的結合分子を前記反応性官能基の少なくとも一部に連結することによって、第1の化合物を作製するステップと、
前記第1の化合物の残りの反応性官能基の少なくとも一部を前記検出可能な標識に連結するステップと、を含む、
請求項1に記載の方法。 - 前記検出可能な標識を前記反応性官能基の少なくとも一部に連結することによって、第1の化合物を作製するステップと、
前記第1の化合物の残りの反応性官能基の少なくとも一部を前記特異的結合分子に連結するステップと、を含む、
請求項1に記載の方法。 - 反応性ヒドラジド官能基を介して、前記ポリマー担体を前記抗体のFc部分に連結するステップを含む、請求項7に記載の方法。
- 反応性官能基との反応のために、前記抗体を活性化するステップをさらに含む、請求項10に記載の方法。
- 前記抗体のグリコシル化部分を化学的に修飾するステップを含む、請求項11に記載の方法。
- 前記検出可能な標識は、酵素、フルオロフォア、ルミノフォア、ハプテン、蛍光ナノ粒子、またはそれらの組み合わせである、請求項1に記載の方法。
- 前記ハプテンは、ジニトロフェニル、ビオチン、ジゴキシゲニン、フルオレセイン、ローダミン、ブロモデオキシウリジン、マウス免疫グロブリン、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項13に記載の方法。
- 前記ハプテンは、オキサゾール、ピラゾール、チアゾール、ベンゾフラザン、トリテルペン、尿素、チオ尿素、ジニトロフェニル以外のニトロアリール、ロテノイド、クマリン、シクロリグナン、ヘテロビアリール、アゾアリール、またはベンゾジアゼピン、またはそれらの組み合わせである、請求項13に記載の方法。
- 前記ハプテンは、NHS−PEGリンカーを使用して、前記反応性官能基を介して、前記特異的結合分子に連結される、請求項13に記載の方法。
- 前記検出可能な標識はハプテンである、請求項1に記載の方法。
- 複数の異なるハプテンは、前記ポリマー担体に連結される、請求項17に記載の方法。
- 第3の分子を前記反応性官能基のうちの少なくとも1つと反応させるステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 抗体のFc部分を酸化して、酸化Fc部分を作製するステップと、
少なくとも1つの反応性ヒドラジド官能基を介して、前記ポリマー担体を前記抗体の前記酸化Fc部分に連結して、第1の化合物を作製するステップと、
反応性ヒドラジド官能基を介して、前記第1の化合物を少なくとも1つのハプテンに連結して、第2の化合物を作製するステップと、を含む、
請求項1に記載の方法。 - 前記ハプテンは、NHS−PEGリンカーを使用して、反応性ヒドラジド官能基を介して前記特異的結合分子に連結される、請求項20に記載の方法。
- 前記第1の化合物を複数のハプテンに連結するステップを含む、請求項20に記載の方法。
- 前記第1の化合物を複数の異なるハプテンに連結するステップを含む、請求項20に記載の方法。
- 前記多糖類は、糖質、セルロース、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、アミドデキストラン、ヒドラジドデキストラン、ヒドラジンデキストラン、グリコーゲン、ポリヒアルロン酸、およびデンプンから選択される、請求項2に記載の方法。
- 前記ポリアミノ酸は、ポリ(アスパラギン)、ポリ(アスパラギン酸)、ポリ(グルタミン酸)、ポリ(リシン)、ポリ(グアニジン)、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項2に記載の共役体。
- 前記分子共役体は、ポリハプテニル化共役体である、請求項1に記載の方法。
- 請求項1に記載の方法に従って産生される共役体。
- ヒドラジン、ヒドラジド、ヒドラジン誘導体、ヒドラジド誘導体、グアニジン、アミノグアニジン、ヒドロキシルアミン、またはそれらの組み合わせから選択される、少なくとも1つの反応性官能基を含む、ポリマーリンカーによって提供される、反応性官能基を介して検出可能な標識に共有結合された特異的結合分子を含む、共役体。
- 前記ポリマーリンカーは、ポリアクリルアミド、ポリアクリルアミド−N−ヒドロキシスクシニミド、ポリアクリル酸、ポリエチレンイミン、多糖類、ポリエチレン−alt−マレイン酸、ポリアミノ酸またはポリビニルピロリドンから選択されるポリマー部分を含み、前記ポリマー部分は、ヒドラジン、ヒドラジド、ヒドラジン誘導体、ヒドラジド誘導体、グアニジン、アミノグアニジン、ヒドロキシルアミン、またはそれらの組み合わせから選択される複数の反応性官能基を含む、請求項28に記載の共役体。
- 前記ポリマーリンカーは、ポリアクリルアミドまたはポリビニルピロリドン部分を含む、請求項28に記載の共役体。
- 前記特異的結合分子は、アビジン、抗体、核酸、ペプチド核酸(PNA)、またはアプタマーである、請求項28に記載の共役体。
- 前記特異的結合分子は抗体である、請求項28に記載の共役体。
- 前記ポリマーリンカーは、PEGベースのヒドラジドリンカーである、請求項28に記載の共役体。
- 前記検出可能な標識は、酵素、フルオロフォア、ルミノホル、ハプテン、蛍光ナノ粒子、またはそれらの組み合わせである、請求項28に記載の共役体。
- 前記検出可能な標識は、ジニトロフェニル、ビオチン、ジゴキシゲニン、フルオレセイン、ローダミン、ブロモデオキシウリジン、マウス免疫グロブリン、またはそれらの組み合わせから選択されるハプテンである、請求項28に記載の共役体。
- 前記検出可能な標識は、オキサゾール、ピラゾール、チアゾール、ベンゾフラザン、トリテルペン、尿素、チオ尿素、ジニトロフェニル以外のニトロアリール、ロテノイド、クマリン、シクロリグナン、ヘテロビアリール、アゾアリール、ベンゾジアゼピン、またはそれらの組み合わせから選択されるハプテンである、請求項28に記載の共役体。
- 前記ポリマーリンカーは、複数のヒドラジド官能基を有する、すなわち、ヒドラジド基を介して、抗体の酸化Fc部分および少なくとも1つの検出可能な標識に連結される、ポリアクリルアミドヒドラジドである、請求項28に記載の共役体。
- ポリハプテニル化共役体を含む、請求項28に記載の共役体。
- 前記多糖類は、糖質、セルロース、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、アミドデキストラン、ヒドラジドデキストラン、ヒドラジンデキストラン、グリコーゲン、ポリヒアルロン酸およびデンプンから選択される、請求項29に記載の共役体。
- 前記ポリアミノ酸は、ポリ(アスパラギン)、ポリ(アスパラギン酸)、ポリ(グルタミン酸)、ポリ(グルタミン)、ポリ(リシン)、ポリ(グアニジン)、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項29に記載の共役体。
- 前記分子共役体は、ポリハプテニル化共役体である、請求項28に記載の方法。
- 試料における標的に対して診断分析を行うための方法であって、
前記試料を、標的に特異的に結合する特異的結合分子と接触させるステップであって、前記特異的結合分子は、ヒドラジン、ヒドラジド、ヒドラジン誘導体、ヒドラジド誘導体、グアニジン、アミノグアニジン、ヒドロキシルアミン、またはそれらの組み合わせから選択される複数の反応性官能基を含むポリマーリンカーを介して、検出可能な標識に共役されるステップと、
前記検出可能な標識を使用する前記標識に結合される前記特異的結合分子を検出するステップと、
を含む、方法。 - 前記ポリマーリンカーは、ポリアクリルアミド、ポリアクリルアミド−N−ヒドロキシスクシニミド、ポリアクリル酸、ポリエチレンイミン、多糖類、ポリエチレン−alt−マレイン酸、ポリアミノ酸、またはポリビニルピロリドンから選択されるポリマー部分を含む、請求項42に記載の方法。
- 前記ポリマーリンカーは、ポリアクリルアミドヒドラジドまたはポリビニルピロリドンヒドラジドである、請求項42に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は、アビジン、抗体、核酸、ペプチド核酸(PNA)、またはアプタマーである、請求項42に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は抗体である、請求項42に記載の方法。
- 前記検出可能な標識は、酵素、フルオロフォア、ルミノホル、ハプテン、蛍光ナノ粒子、またはそれらの組み合わせである、請求項42に記載の方法。
- 前記検出可能な標識はハプテンであり、前記方法は、前記試料を抗ハプテンと接触させるステップをさらに含む、請求項42に記載の方法。
- 前記ハプテンは、ジニトロフェニル、ビオチン、ジゴキシゲニン、フルオレセイン、ローダミン、ブロモデオキシウリジン、マウス免疫グロブリン、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項48に記載の方法。
- 前記ハプテンは、オキサゾール、ピラゾール、チアゾール、ベンゾフラザン、トリテルペン、尿素、チオ尿素、ジニトロフェニル以外のニトロアリール、ロテノイド、クマリン、シクロリグナン、ヘテロビアリール、アゾアリール、ベンゾジアゼピン、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項48に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は、分子量10,000以下であって、複数の反応性ヒドラジド官能基を含む非チオール化ポリアクリルアミドヒドラジド担体によって、検出可能な標識に共役される、請求項42に記載の方法。
- 前記分析は、試料における2つ以上の異なる標的に対する多重診断分析であって、
前記試料を、2つ以上の異なる標的に特異的に結合する2つ以上の特異的結合分子と接触させるステップであって、前記2つ以上の特異的結合分子は、前記ポリマーリンカーの反応性官能基を介して、異なるハプテンに共役されるステップと、
前記試料を、個別に検出され得る2つ以上の異なる抗ハプテンと接触させるステップと、を含む、
請求項42に記載の方法。 - 前記試料を抗抗体抗体と接触させるステップをさらに含む、請求項52に記載の方法。
- 前記多糖類は、糖質、セルロース、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、アミドデキストラン、ヒドラジドデキストラン、ヒドラジンデキストラン、グリコーゲン、ポリヒアルロン酸およびデンプンから選択される、
請求項43に記載の方法。 - 前記ポリアミノ酸は、ポリ(アルギニン)、ポリ(アスパラギン)、ポリ(アスパラギン酸)、ポリ(グルタミン酸)、ポリ(グルタミン)、およびポリ(リシン)、またはそれらの組み合わせから選択される、請求項43に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は、酸化Fc部分を含む抗体であり、前記ポリマーリンカーは、反応性官能基を介して、前記酸化Fc部分に連結される、請求項42に記載の方法。
- 前記ハプテンは、NHS−PEGリンカーを使用して、前記ポリマー担体の反応性官能基を介して、前記特異的結合分子に連結される、請求項47に記載の方法。
- 複数の異なるハプテンは、前記ポリマーリンカーに連結される、請求項42に記載の方法。
- 前記特異的結合分子は抗体であり、前記方法は、
前記試料を、2つ以上の一次抗体と接触させるステップであって、前記一次抗体のそれぞれは、異なるハプテンに共役されるステップと、
前記試料を、2つ以上の二次抗ハプテン抗体と接触させるステップであって、前記二次抗ハプテン抗体のそれぞれは、異なる量子ドットに共役されるステップと、を含む、
請求項42に記載の方法。
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