JP2010011860A - アミノ酸41〜46に結合するモノクローナル抗体を用いたproBNPの検出方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】DSMZに寄託されたハイブリドーマ細胞株MAB 1.21.3(DSM ACC2650)と、該細胞株の産生するモノクローナル抗体、さらに該抗体を用いた免疫測定法による、N末端proBNPの測定のための、および/またはN末端proBNPの臨床的に関連のある断片または亜集団のための、より特異的なアッセイ方法。
【選択図】なし
Description
〔1〕DSMZに寄託されたハイブリドーマ細胞株MAB 1.21.3(DSM ACC2650)、
〔2〕〔1〕記載のハイブリドーマ細胞株により産生されるモノクローナル抗体、
〔3〕proBNPを含むことが推測されるか、またはわかっている試料を、〔2〕記載のモノクローナル抗体と、該モノクローナル抗体−非修飾proBNP複合体の形成を可能にする条件下で接触させる工程、および形成された複合体を検出する工程を含む、非修飾proBNPの特異的検出のための方法、
〔4〕該検出が、競合免疫測定法により行なわれる、〔3〕記載の方法、
〔5〕該検出がサンドイッチ免疫測定法により行なわれ、proBNPに対する第2の抗体もまた使用され、proBNPに対する該第2の抗体および該モノクローナル抗体が、ともに非修飾proBNPに結合し、したがって第2の抗proBNP抗体−非修飾proBNP−該モノクローナル抗体複合体が形成される、〔3〕記載の方法、
〔6〕〔3〕〜〔5〕いずれか記載の方法による非修飾proBNPの特異的検出、および非修飾proBNPのレベルを心不全に相関させることを含む、心不全の検査方法
に関する。
a)試料と、固相に結合するのに適した基を保有するネイティブproBNPに特異的な一次抗体との混合、または試料と、既に固相に結合しているネイティブproBNPに特異的な一次抗体との混合、
b)当該溶液と、ネイティブproBNPのエピトープの外側に存在するエピトープ(ネイティブproBNP及びトータルproBNPの両方に存在し、一次抗体-ネイティブproBNP-二次抗体複合体が形成される条件の下で標識を保有する)に結合するトータルproBNPに対する二次抗体との混合、
c)固相への形成された免疫性複合体の結合、
d)液相からの固相の分離、
e)一方または両方の相における標識の検出
を含む。
組換え型N末端proBNP(1-76)の生産方法
1.組換え型N末端proBNPのクローニング
N末端proBNP(アミノ酸配列1-76)のヌクレオチドを、遺伝子合成によって合成した。大腸菌で遺伝子の最適な発現を得るために、DNA配列を大腸菌で最も頻繁に使用されるコドンに合わせた。遺伝子の合成に使用したオリゴヌクレオチドの配列は、以下の通りである:
Pro5' (配列番号: 1):
Pro1hum (配列番号: 2):
Pro2hum (配列番号: 3):
Pro3hum (配列番号: 4):
Pro4hum (配列番号: 5):
Pro3' (配列番号: 6):
大腸菌中で遺伝子を発現させるために、組換え型大腸菌のオーバーナイト培養物は、ルリアブロス(100μg/mlアンピシリン及び50μg/mlカナマイシンを含む)中に、60倍希釈でトランスフェクションして、OD 550で1の時にIPTG(イソプロピルチオガラクトシド; 最終濃度 1mM)を用いて誘導した。誘導後、培養物を37℃で4時間さらに培養した。培養物を遠心分離し、細胞ペレットを50 mMのリン酸ナトリウム緩衝溶液(pH 8.0; 300 mMの塩化カルシウムを含む)で回収した。超音波による細胞懸濁法で分解した後、懸濁液は遠心分離されて、Ni-NTA(ニトリロ-トリアセテート)カラム上に載せた。50 mMのリン酸ナトリウム緩衝溶液(pH 8.0; 300 mM NaCl; 20 mM イミダゾールを含む)で洗浄した後、ヒスチジン標識されたN末端proBNPは、50 mMのリン酸ナトリウム緩衝液(pH 8.0; 300 mM NaCl; 300 mM イミダゾールを含む)で溶出した。溶出分画を回収し、50 mMのトリス(pH 8.0)で透析した。不純物を分離するため、透析物をQ-セファロースカラムに載せた。精製したN末端proBNPの質量を、MALDI-TOFにより決定した。この精製物(=組換え型proBNP)は、proBNP1-76及びproBNP1-66(後者はおそらく分解産物を意味する)を含んでいることが分かった。
NTproBNP(1-76)アミドの合成
NTproBNP(1-76)アミド(swissprot:アクセッション番号 P16860; aa27〜aa134)を、ABI 433ペプチド合成機において、最適化した固相ペプチド合成プロトコル(Merrifield (1962) Fed. Proc. Fed. Amer. Soc Exp. Biol. 21, 412)によって合成した。要するに、側鎖の機能に応じて、一過性のピペリジン不安定Fmoc-および永続性の酸不安定tBu-、 BOC-、 OtBu-、 Trt-またはPmc-基により各々保護されたアミノ酸の8倍過剰を繰り返し結合させることにより、Rink-Linker修飾ポリスチレン固相上にペプチドを組み立てた。酸化安定物質を得るために、10位のメチオニンを、等価のアミノ酸であるノルロイシンで置換した。さらにタンパク分解に対して安定化させるために、リンクリンケージを使用してC末端をアミド化した。構築後、充分に保護したペプチドを固相から取り外し、適切なカチオンスカベンジャーの混合物中の三フッ化酢酸の処理によって恒久的に保護した基を放出して、最終的に分離用逆相HPLCによる精製で単離した。3回の125 μmolスケールの合成によって、それぞれ16.0、17.1及び18.0 mgのRP-HPLCでの単一ピークの純物質(凍結乾燥)が生じた。同一性はMALDI-及びESI-質量分析[8439.4]によって立証した。
トータルまたはネイティブproBNPそれぞれに対するモノクローナル抗体の産生及びスクリーニング
1.N末端proBNPに対するモノクローナル抗体の入手
8-12週齢のBalb/cマウスを、完全フロイントアジュバンドを伴う100μg N末端proBNP抗原での腹膜内免疫に供した。組換え型およびペプチド合成によって産生したproBNP(1-76)のそれぞれを、マウスにおける抗原として使用した。6週後から、さらに3回の免疫を4週毎に行う。最後の免疫から1週間後に、血液を採取し、試験動物の血清中での抗体力価を決定した。陽性マウスの脾臓からB-リンパ球を得て、恒久的なミエローマ細胞株と融合する。融合は、Koehler及びMillstein(Nature 256, 1975, p. 495-497)の公知の方法に従い行う。陽性ハイブリドーマの一次培養は、例えば市販のセルソーターの使用または「限界希釈法」による通常の方法でクローン化する。
ハイブリドーマ細胞の培養上清中のproBNPに対する抗体の存在を同定するために、上清を3つのスクリーニングアッセイ様式により評価した。
室温で1時間、攪拌の下で、微量滴定プレート(Nunc, Maxisorb)に、充填バッファー(コーティングバッファー, Cat.No.0726 559, Scil Diagnostics, GmbH)100 μl/ウェル中の、抗原としての2.5 μg/mlの合成NT-proBNPを結合させる。二次充填を、PBSバッファー(リン酸緩衝化生理食塩水,Oxid,Code-BR 14a)及び1% Byco C中で30分間行う。続けて、洗浄を洗浄バッファー(0.9 塩化ナトリウム溶液、0.05% Tween 20)で行う。室温で1時間、攪拌の下で、抗体試料のインキュベーションを100 μl/ウェルで行う。洗浄バッファーによる更なる洗浄を、計2回行う。その後、室温で1時間、攪拌の下で、検出用の抗体PAB<M-Fcy>ヤギ-F(ab')2-ペルオキシダーゼコンジュゲート(Chemicon,Cat.No. AQ127P)100mU/ml、100μl/ウェルで、更なるインキュベーションを行う。洗浄バッファーによる洗浄工程後、ペルオキシダーゼ活性を通常の方法(例えばABTS(登録商標)を用いて、室温で30分間、ELISAリーダーにより405nmで消光の差をmUとして読み取る)で確認する。
エピトープ解析のために、ストレプトアビジンを充填した微量滴定プレートを、proBNP(1-76)の配列に由来するぺプチドのビオチンコンジュゲートと共にインキュベートする。1アミノ酸ずつ配列をシフトさせた69種の8マーのペプチドつまり、1-8、2-9、3-10、4-11から66-73に至って、67-74、68-75及び69-76のそれぞれを適用することにより、完全なproBNP-配列をスキャンした。アミノ酸位置1-10、8-18、1-21、16-30、30-38、32-43、39-50、47-57、50-63、62-70及び64-76のそれぞれを含む、さらにビオチン化した配列を試験した。0.5% Byco Cを含むPBSバッファー(リン酸緩衝化生理食塩水,Oxid,Code-BR 14a)中に、250ng/mlの濃度で個々の抗原性ペプチドを溶解させる。ペプチドを被覆するために、室温で1時間、穏やかに攪拌した微量滴定プレートの個々のウェルに100μlの各溶液を振り分ける。続けて、洗浄バッファー(0.9m 塩化ナトリウム溶液、0.05% Tween 20)で洗浄を行った。抗体試料のインキュベーション及び反応の検出は、a)に記載したように行う。あるNT-proBNPペプチドとの反応により、モノ-またはポリクローナル抗体で認識されるエピトープの位置を、正確に決め得た。
室温で1時間、攪拌の下で、微量滴定プレートのウェル(Nunc、Maxisorb)を、100 μl/ウェルの充填バッファー中(コーティングバッファー、Cat.No.0726 559、Scil Diagnostics、GmbH)の5 μg/mlのPAB<ヒトproBNP>S-IgG(IS、(1-21)または(30-38)S-IgG)で被覆する。二次充填を、PBSバッファー(リン酸緩衝化生理食塩水、Oxid、Code-BR 14a)及び1% Byco Cで30分間行う。続けて、洗浄バッファー(0.9 塩化ナトリウム溶液、0.05% Tween 20)で洗浄を行う。PBSバッファーに希釈した患者の血漿中の天然抗原とのインキュベーションを、室温で1時間、攪拌の下で、100 μl/ウェルとして行う。さらなる洗浄工程後に、室温で1時間攪拌の下、100 μl/ウェルとしてハイブリドーマの上清インキュベーションを行う。続けて、洗浄バッファーで2回洗浄し、室温で1時間、攪拌の下で、100 mU/ml、100 μl/ウェルとして検出用の抗体PAB<M-Fcy>ヤギ-F(ab')2-ペルオキシダーゼコンジュゲート(Chemicon、Cat.No.AQ127P)との更なるインキュベーションを行う。洗浄バッファーでの更なる洗浄後に、ペルオキシダーゼの活性を通常の方法(例えばABTS(登録商標)を用いて、室温で30分間、ELISAリーダーにより405nmで消光の差をmUとして読み取る)。
で確認する。
N末端proBNPに対するヒツジのモノクローナル抗体の産生
1.N末端proBNPに対するモノクローナルなヒツジ抗体の入手
ヒツジを、完全フロイントアジュバンド中の組換え型N末端proBNPで免疫化した。量は1個体に付き0.1mgであった。免疫を、10ヶ月間、4週間毎に繰り返した。最初の免疫から6週間後及び以後1ヶ月毎に、血清試料を得て、その反応性及び力価を分析した。
ハイブリドーマ細胞の培養上清中のproBNPに対する抗体の存在を同定するために、上清を3つのスクリーニングアッセイ様式により評価した。
室温で1時間、攪拌の下で、微量滴定プレート(Nunc, Maxisorb)に、充填バッファー(コーティングバッファー, Cat.No.0726 559, Scil Diagnostics, GmbH)100 μl/ウェル中の、抗原としての2.5 μg/mlの合成NT-proBNPを結合させる。二次充填を、PBSバッファー(リン酸緩衝化生理食塩水,Oxid,Code-BR 14a)及び1% Byco C中で30分間行う。続けて、洗浄を洗浄バッファー(0.9 塩化ナトリウム溶液、0.05% Tween 20)で行う。室温で1時間、攪拌の下で、抗体試料のインキュベーションを100 μl/ウェルで行う。洗浄バッファーによる更なる洗浄を、計2回行う。その後、室温で1時間、攪拌の下で、PBSバッファー中に1:40 000に希釈した検出用の抗体ペルオキシダーゼコンジュゲートAffiniPureロバ抗-ヒツジIgG(Dianova Code Number 713-035-147)、100μl/ウェルと共に、更なるインキュベーションを行う。洗浄バッファーによる洗浄工程後、ペルオキシダーゼ活性を通常の方法(例えばABTS(登録商標)を用いて、室温で30分間、ELISAリーダーにより405nmで消光の差をmUとして読み取る)で確認する。
エピトープ解析のために、ストレプトアビジンを充填した微量滴定プレートを、proBNP(1-76)の配列に由来するぺプチドのビオチンコンジュゲートと共にインキュベートする。1アミノ酸ずつ配列をシフトさせた69種の8マーのペプチドつまり、1-8、2-9、3-10、4-11から66-73に至って、67-74、68-75及び69-76のそれぞれを適用することにより、完全なproBNP-配列をスキャンした。アミノ酸位置1-10、8-18、1-21、16-30、30-38、32-43、39-50、47-57、50-63、62-70及び64-76のそれぞれを含む、さらにビオチン化した配列を試験した。0.5% Byco Cを含むPBSバッファー(リン酸緩衝化生理食塩水,Oxid,Code-BR 14a)中に、250ng/mlの濃度で個々の抗原性ペプチドを溶解させる。ペプチドを被覆するために、室温で1時間、穏やかに攪拌した微量滴定プレートの個々のウェルに100μlの各溶液を振り分ける。続けて、洗浄バッファー(0.9m 塩化ナトリウム溶液、0.05% Tween 20)で洗浄を行った。抗体試料のインキュベーション及び反応の検出は、a)に記載したように行う。あるNT-proBNPペプチドとの反応により、モノ-またはポリクローナル抗体で認識されるエピトープの位置を、正確に決め得た。
室温で1時間、攪拌の下で、微量滴定プレートのウェル(Nunc、Maxisorb)を、100 μl/ウェルの充填バッファー中(コーティングバッファー、Cat.No.0726 559、Scil Diagnostics、GmbH)の5 μg/mlのMAB<ヒトproBNP>M-18.4.34-IgGで被覆する。二次充填を、PBSバッファー(リン酸緩衝化生理食塩水、Oxid、Code-BR 14a)及び1% Byco Cで30分間行う。続けて、洗浄バッファー(0.9 塩化ナトリウム溶液、0.05% Tween 20)で洗浄を行う。PBSバッファーに希釈した患者の血漿中の天然抗原とのインキュベーションを、室温で1時間、攪拌の下で、100 μl/ウェルとして行う。さらなる洗浄工程後に、室温で1時間攪拌の下、100 μl/ウェルとしてハイブリドーマの上清インキュベーションを行う。続けて、洗浄バッファーで2回洗浄し、室温で1時間、攪拌の下で、PBSバッファー中に1:40 000に希釈した検出用の抗体ペルオキシダーゼコンジュゲートAffiniPureロバ抗-ヒツジIgG(Dianova Code Number 713-035-147)100mU/ml, 100 μl/ウェルと共に、更なるインキュベーションを行う。洗浄バッファーでの更なる洗浄後に、ペルオキシダーゼの活性を通常の方法(例えばABTS(登録商標)を用いて、室温で30分間、ELISAリーダーにより405nmで消光の差をmUとして読み取る)。
で確認する。
N末端proBNPに対するポリクローナル抗体の産生
1.免疫化
ヒツジを、完全フロイントアジュバンド中の組換え型N末端proBNP(実施例1参照)で免疫化した。量は1個体に付き0.1mgであった。免疫を、10ヶ月間、4週間毎に繰り返した。最初の免疫から6週間後及び以後1ヶ月毎に、血清試料を得て、その反応性及び力価を分析した。
組換え型N末端proBNPで免疫化したヒツジの血清から開始して、脂質成分を, aerosil(登録商標)(1.5 %)による脱脂質化で除去した。その後、免疫グロブリンを、硫酸アンモニウム分画(2M)によって分離した。15 mM KPO4、50 mM NaCl pH7.0に対して、溶解沈殿物を透析し、DEAEセファロース上でクロマトグラフィーを行った。IgG分画(=PAB<NT-proBNP>S-IgG(DE))を、フロースルー中に得た。
トータルproBNP(=PAB<NT-proBNP>S-IgG(IS,1-21)、または簡単にPAB<1-21>)に特異的に結合するポリクローナル抗体のアフィニティー精製のために、ペプチド HPLGSPGSASDLETSGLQEQR-C ((1-21)21-Cys, 配列番号: 7)を用いた。2 mlのマレイミドで活性化したEAH-セファロース4B(Amersham Biosciences, Product No 17-0569-01)に1 mg のペプチド(1-21)21-Cysを共有結合させて、アフィニティーマトリックスを作製した。
ネイティブproBNP(=PAB<NT-proBNP>S-IgG(IS,41-46)または簡単にPAB<41-46>)に対するポリクローナル抗体を、連続したアフィニティークロマトグラフィーで得た。上記と同様に、3つの個々のペプチド、CEUEU-SLEPLQE((37-43)37-Cys, 配列番号: 8)、CEUEU-SPRPTGVW((44-51)44-Cys, 配列番号: 9)及びC-EPLQESPRPTG((39-50)39-Cys, 配列番号: 10)(EUEUは、稀に後ろに続くペプチドの伸張リンカーとして機能する)を、3つの個々のアフィニティーマトリックスの作製に使用した。主にNT-proBNPの配列37-43に結合する全てのポリクローナル抗体を取り除くため、始めにPAB<NT-proBNP>S-IgG(DE)は、ペプチド(37-43)37-Cysを含むアフィニティーマトリックスに載せた。主にNT-proBNPの配列44-51に結合するポリクローナル抗体を捕捉するため、次にフロースルーは、ペプチド(44-51)44-Cysを含む第二のアフィニティーマトリックスに載せた。上記のように(=PAB<44-51>)、結合した抗体を溶出して回収した。最終的に、第二のアフィニティー精製のフロースルーは、ペプチド(39-50)39-Cysを含む第三のアフィニティーマトリックス中に通した。結合した抗体を上記のように溶出して回収した。公知でありpepscan解析と呼ばれるように、第三のアフィニティーマトリックスから溶出した抗体は、37-43と44-51との間のオーバーラップする配列の残余(remaining)のエピトープを表す、配列41-46(=PAB<41-46>)のエピトープに特異的である。
proBNPに対するモノクローナル及びポリクローナル抗体のBiacore解析
Biacore3000アナライザーの表面プラズモン共鳴により、ネイティブNT-proBNPに対するモノクローナル及びポリクローナル抗体の特異性を決定した。探索用CM5センサーチップを備えたBiacore3000を用いて、すべての表面プラズモン共鳴による測定を、25℃で行なった。ランニングバッファーはHBS(10 mM HEPES、150 mM NaCl、3.4 mM EDTA及びpH 7.4での0.005% P20(=Polysorbat)であった。
トータルNT-proBNPの捕捉抗体として用いたリガンドは、アミン結合化学作用で固定化した。結合前に、20μl/minの流速で0.1 % SDS、50 mM NaOH、10 mM HCl及び100 mMリン酸を10μlの注入により、センサーチップを予備調整した。20μl/minの流速の下で、0.1 M NHS(N-ヒドロキシサクシニミド)及び0.1 M EDC(3-(N,N-ジメチル-アミノ)プロピル-N-エチルカーボジイミド)の1:1の混合物を用いて、全てのフローセルの表面を5分間、活性化させた。10 mM酢酸ナトリウムpH 5.0中に30μg/mlの濃度でリガンドを、4つ全てのフローセルに5分間注入した。非共有結合リガンドを除去するために、1 Mのエタノールアミン、pH 8.0を5分間注入し、続いてHBS wash(100mM HEPES pH 7.4, 1.5M NaCl, 3.4mM EDTA, 0.05% P20(=Polysorbat),2 % DMSO)、100 mM HCl及び2 x 100 mM リン酸を30秒間注入して、表面をブロックした。リガンドの密度は、約16.000 RUであった。
Biacore3000で以下の方法を行うために、図2に付したようなプログラムを用いた。20 %ウマ血清(HBSで1:5に希釈したウマ血清+1mg/mlカルボキシメチルデキストラン)中での、0, 2.5, 5, 10, 20及び40 nMの濃度の合成NT-proBNP(1-76)アミドを、キャリブレーターとして用いた。センサーチップ表面への血清成分の非特異的結合を抑制するために、カルボキシメチルデキストランの添加を用いた。
ヒト血清のネイティブまたはトータルNT-proBNPに抗体が結合するか決定するために、問題の抗体で測定したNT-proBNPの濃度(y-軸)を、参照抗体MAB 1.21.3で測定した試料に相当する濃度(x-軸)に対してプロットした。y=ax+b型の直線回帰曲線を、MS-Excelを用いてフィットさせ、相関係数rおよび傾きを計算した。
+は、合成proBNPで得た値と比較して、患者試料中のproBNPでは15%の範囲の反応であることを示す
ネイティブ及びトータルproBNPそれぞれに対するアッセイの臨床比較
臨床研究において、ネイティブproBNPまたはトータルproBNPそれぞれに対するサンドイッチイムノアッセイによって、NYHAステータスに従って分類した246人の患者試料を解析した。この研究の結果は表2に示す。
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[1]ネイティブproBNPに特異的に結合する抗体であって、該ネイティブproBNPに特異的に結合する抗体は、患者試料において測定したproBNPの値に関して少なくともr=0.95またはそれより大きいr値でMAB 1.21.3と相関する、抗体。
[2]該抗体がモノクローナル抗体である、[1]記載の抗体。
[3]該モノクローナル抗体が、ハイブリドーマ細胞株MAB 1.21.3により産生される、[2]記載の抗体。
[4]該抗体が、単離されたポリクローナル抗体である、[1]記載の抗体。
[5]proBNPを含むことが推測されるか、またはわかっている試料を、[1]〜[4]いずれか記載のネイティブproBNPに対する抗体と、ネイティブproBNPに対する抗体−ネイティブproBNP複合体の形成を可能にする条件下で接触させる工程、および形成された複合体を検出する工程を含む、ネイティブproBNPの特異的検出のための方法。
[6]該検出が、競合免疫測定法により行なわれる、[5]記載の方法。
[7]該検出がサンドイッチ免疫測定法により行なわれ、proBNPに対する第2の抗体もまた使用され、proBNPに対する該第2の抗体およびネイティブproBNPに対する抗体が、ともにネイティブproBNPに結合し、したがって第2の抗proBNP抗体−ネイティブproBNP−抗ネイティブproBNP抗体複合体が形成される、[5]記載の方法。
[8]ネイティブproBNPの特異的検出、およびネイティブproBNPのレベルを心不全に相関させることを含む、心不全の診断方法。
[9][1]〜[4]いずれか記載の抗体、およびネイティブproBNPの検出用補助試薬を含んでなる、ネイティブproBNPの測定のためのキット。
[10]DSMZに寄託されたハイブリドーマ細胞株MAB 1.21.3。
Claims (6)
- DSMZに寄託されたハイブリドーマ細胞株MAB 1.21.3(DSM ACC2650)。
- 請求項1記載のハイブリドーマ細胞株により産生されるモノクローナル抗体。
- proBNPを含むことが推測されるか、またはわかっている試料を、請求項2記載のモノクローナル抗体と、該モノクローナル抗体−非修飾proBNP複合体の形成を可能にする条件下で接触させる工程、および形成された複合体を検出する工程を含む、非修飾proBNPの特異的検出のための方法。
- 該検出が、競合免疫測定法により行なわれる、請求項3記載の方法。
- 該検出がサンドイッチ免疫測定法により行なわれ、proBNPに対する第2の抗体もまた使用され、proBNPに対する該第2の抗体および該モノクローナル抗体が、ともに非修飾proBNPに結合し、したがって第2の抗proBNP抗体−非修飾proBNP−該モノクローナル抗体複合体が形成される、請求項3記載の方法。
- 請求項3〜5いずれか記載の方法による非修飾proBNPの特異的検出、および非修飾proBNPのレベルを心不全に相関させることを含む、心不全の検査方法。
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