JP2009108028A - イオウ含有化合物、その調製方法および薬学的使用 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】式1
(式中、R1はH、R5、またはR5C(=O)を示し、R2はSまたは(O=)S(=O)を示し、R3はH、CH3等を示し、R4はR5、OR5、等を示し、R5はアルキル基等を示す)のイオウ含有化合物、その調製および誘導性酸化窒素シンターゼ、シクロオキシゲナーゼ−2と関連付けられている疾患を治療する上での使用。
【選択図】なし
Description
1.発明の分野
本発明は新規なイオウ含有化合物に関する。前記イオウ含有化合物は、誘導性酸化窒素シンターゼ(iNOS)および/またはシクロオキシゲナーゼ−2(COX−2)の機能を阻害する能力を有する。
文明の進歩に伴って、我々人類は長寿を手にしたのみならず、日々の生活の質を重視するようになった。しかし現在、癌、慢性疼痛およびアテローム性動脈硬化などの多くの疾患に対する特異的かつ効果的薬剤はいまだに存在しない。
よびシクロオキシゲナーゼ−2阻害剤を投与することは、運動およびニューロンに影響しない。したがってこれは、薬剤開発にとって重要な側面である。
本発明の1つの目的は、新規なイオウ含有化合物を提供することである。前記イオウ含有化合物は化学的に合成でき、生体外で炎症性タンパク質の機能を顕著に阻害できる。さらにイオウ含有化合物は、誘導性酸化窒素シンターゼおよび/またはシクロオキシゲナーゼ−2と関連付けられている疾患を治療できることが示される。
本発明に係るイオウ含有化合物は、一般式1、
R1はH、R5およびR5C(=O)からなる群から選択され、
R2はSおよび(O=)S(=O)からなる群から選択され、
R3はH、CH3およびCH2CH2C(=O)OR5からなる群から選択され、
R4はR5、OR5、
N(R5)2、NH2、NHR5、およびOHからなる群から選択され、
R5は1〜6個の炭素原子を有するアルキル基および非置換または置換フェニル基から選択され、
好ましくはR5はメチル、エチル、および非置換フェニルからなる群から選択されるが、
ただしR3がCH2CH2C(=O)OR5であるとき、R4はOR5であり、
R1がHで、R2がSで、R3がHであるとき、R4はCH3ではない)
によって表される。
(I)R1がHで、R2がSであるとき、一般式23、
式24、
(II)R1がR5C(=O)であるとき、一般式25で表される化合物をエステル化するステップと、
(III)R1がR5であるとき、一般式25で表される化合物をアルキル化するステップと、
(IV)R2が(O=)S(=O)であるとき、一般式25で表される化合物を酸化するステップと、
(V)R1がR5C(=O)で、R2が(O=)S(=O)であるとき、一般式25で表される化合物をエステル化して酸化するステップと、
(VI)R1がR5で、R2が(O=)S(=O)であるとき、一般式25で表される化合物をアルキル化して酸化するステップと、
(VII)R1がHで、R2がSで、R3がHで、R4がCH3であるとき、式27、
を含んでなる、一般式2、
R1はH、R5およびR5C(=O)からなる群から選択され、
R2はSおよび(O=)S(=O)からなる群から選択され、
R3はH、CH3およびCH2CH2C(=O)OR5からなる群から選択され、
R4はR5、OR5、
N(R5)2、NH2、NHR5、およびOHからなる群から選択され、
R5は1〜6個の炭素原子を有するアルキル基および非置換または置換フェニル基から選択されるが、
ただしR3がCH2CH2C(=O)OR5であるとき、R4はOR5である)
で表される化合物を調製する方法も提供する。
22mLのアセトンを含有する丸底フラスコに、2−メルカプトエタノール(1.80g、98%、27.14mmole)およびトリエチルアミン(0.53mL、3.77mmole)を入れた。0℃氷浴内での撹拌に続き、4mLアセトン中のメチルビニルケトン溶液(2.31mL、27.14mmole)をフラスコ内に徐々に滴下した。添加後、反応の温度を室温に上昇させて、反応を16時間継続した。溶媒を含まない生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーに供して、式26、
500mL丸底フラスコ(フラスコA)内で、調製品1として調製された式26で表されるチオエーテル化合物(1.00g、6.76mmole)およびMnSO4・H2O(23mg、0.14mmole)と、アセトニトリル(156mL)とを混合して、混合物を室温で激しく撹拌した。ナトリウム水素炭酸塩緩衝液(115mL、0.2M、pH=8.0)および30%過酸化水素溶液(3.38mL)の水溶液を250mLフラスコ内に入れて、0℃で良く撹拌して次に徐々にフラスコAに添加した。2時間反応させた後、酢酸エチル/イソプロピルアルコール(3:1)を抽出物に添加した(200mL×6)。合わせた有機抽出物を減圧下で濃縮し、式3で表される化合物を得るために残留物をシリカゲルカラム上で精製した(ヘキサン/EtOAc=1:3での溶出)(1.03g、収率84%)。
125mL丸底フラスコ内で、ジクロロメタン(64mL)中の調製品1として調製された式26で表されるチオエーテル化合物溶液(1.00g、6.76mmole)を撹拌しながら、m−クロロペルオキシ安息香酸(2.92g、16.90mmole)をバッチで徐々に添加した。添加後、チオエーテル化合物が完全に消費されるまで反応をTLCでモニターした。次にジクロロメタンを除去して、得られた混合物に100mL飽和ナトリウム水素炭酸塩溶液を添加して激しく撹拌した。得られた粗生成物を酢酸エチル(100mL×10)で抽出し、合わせた抽出物を減圧下で濃縮した。得られた生成物をシリカゲルカラムで精製し(ヘキサン/EtOAc=1:3での溶出)、式3で表される化合物を得た(1.00g、収率82%)。
ジクロロメタン(2mL)中の式3で表される化合物(20.0mg、0.114mmole)およびトリエチルアミン(25μL)の撹拌される溶液に、無水酢酸(40μL)を室温で徐々に添加した。反応を16時間継続し、溶媒を含まない生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン/EtOAc=2:3での溶出)に供して、式4で表される化合物を得た(25.0mg、収率98%)。
ジクロロメタン(2mL)中の式3で表される化合物(20.0mg、0.114mmole)およびトリエチルアミン(25μL)の撹拌される溶液に、塩化ベンゾイル(50μL)を室温で緩慢に添加した。反応を5時間継続し、溶媒を含まない生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン/EtOAc=5:3での溶出)に供して、式5で表される化合物を得た(29.8mg、収率92%)。
調製品1と同様に、エチルビニルケトン、エチルアクリレート、N,N−ジメチルアクリルアミド、4−アクリロイルモルホリン、およびアクリルアミドをはじめとするα,β−不飽和カルボニル化合物を独立して2−メルカプトエタノールと反応させ、それぞれ式6(収率100%)、8(収率100%)、10(収率100%)、12(収率100%)、および14(収率90%)で表される対応するチオエーテル化合物を得た。アクリルアミドの溶解性が十分でないためにより極性の溶媒(メタノール/アセトン=1:1)の存在を必要とした式14で表される化合物の調製を除いて、上の反応はアセトン存在下で実施した。調製品2と同様に、式6、8、10、12、および14の中間体を過酸化水素で酸化して、それぞれ式7(収率87%)、9(収率85%)、11(収率87%)、13(収率83%)、および15(収率84%)で表される化合物を得た。さらに溶媒の存在なしで進行するエチルアクリレートおよび2−メルカプトエタノールの反応は、式8(収率45%)および式16(収率22%)で表される両方の化合物を与えた。式16で表される化合物を過酸化水素で酸化して、式17で表される化合物を調製した(収率84%)。
American Type Culture Collectionから購入されたマウスマクロファージ細胞系であるRAW264.7(ATCC,NoTIB−71)を生体外モデルにおいて選択した。37℃および5%CO2において、10%ウシ胎仔血清(FBS)およびペニシリンG(100U/ml)およびストレプトマイシン(100μg/ml)を含有するDMEM(Dulcbecco/s Modified Eagle medium)中で細胞を培養した。80%の集密に達したら、細胞をトリプシンと共に継代培養した。36時間継代培養した後に、細胞に抗炎症アッセイを施した。10cm培養皿内で3×106個のRAW264.7細胞を培養し、リポ多糖類(LPS、0.01μg/ml;Sigma L2654)を投与した。16時間後、細胞を収集した。実験群では、式3で表される化合物を培養皿に添加した10分以内にLPSが続いた。
収集されたRAW264.7細胞を200μLの4℃溶解緩衝液(50mMトリス[pH7.5]、150mM NaCl、1% TritonX-100、0.1mM EDTA、0.1mM EGTA、10μg PMSF、1μg/mLアプロチニン、20mM NaF、および0.2mM Na3VO4)に溶解した。4℃において25,000gで30分間サンプルを遠心分離してペレットを除去した。米国カリフォルニア州ハーキュリーズのBio-Rad LaboratoriesからのBio-RadDCタンパク質アッセイキットで上清をアッセイし、タンパク質含量を推定するために、米国のThermo Electron CorporationからのELISAリーダーで吸光度を読み取った。等容積に較正したサンプルを同一容積のサンプル緩衝液(2%SDS、10%グリセロール、0.1%ブロモフェノールブルー、10%2−メルカプトエタノール、および50mMトリス)と共に入れた。タンパク質を10%SDS−PAGEで分離して、米国マサチューセッツ州ベッドフォードのMilliporeからのPVDF膜(0.45mm、Immobilon-P)に転写した(1.5A、4℃、2.5時間)。5%スキムミルクを含有するTTBS(トリス−HCl 20mM、NaCl 137mM、pH7.4、および0.1% Tween 20)で、転写PVDF膜を室温で1時間ブロックして、米国ケンタッキー州レキシントンのTransduction Laboratoriesからのポリクローナル抗誘導性酸化窒素シンターゼ抗体、または米国ミシガン州アナーバーのCaymanからのポリクローナル抗シクロオキシゲナーゼ−2抗体と室温で3時間反応させた。TTBSで3回洗浄した後、サンプルをHRP−コンジュゲート抗ウサギIgG抗体(1:2000)と室温で1時間反応させた。TTBSで3回洗浄した後、高感度化学ルミネッセンス検出キットを使用してPVDF膜と反応させ、タンパク質発現を検出するために米国ニューヨーク州ロチェスターのKodakからのX−線フィルム(Kodak X-OMAT LS)を露光した。米国シルバースプリングのMedia CyberneticsからのImage-Pro plus 4.5ソフトウェアで相対量を計算した。LPSのみを添加した群を100%とした。米国ミズーリ州セントルイスのSigmaからのβ−アクチン(モノクローナル抗体)を内部対照とした。
くも膜下腔内カテーテル手術
Wen et al, Brain Res 963:1-7, 2003の記述に従って手術を実施した。オスのウィスター系ラットの硬膜を大後頭孔近くで切開し、8.5cmのPE管(外径:0.014インチ、内径:0.008インチ)を移植した。薬剤は腰椎近くで作用し、注射の末端を頭部に固定した。くも膜下腔内カテーテルにおいて運動または血液に欠陥がある動物は除外した。
Bennett and Xie (Pain 33:87-107, 1988)によって確立された座骨神経絞扼性神経損傷(CCI)に類似したモデルを確立した。4個のOキャットカットライン(O cat cut line)を使用して、座骨神経上に4個の結び目を作った。1週間後、熱痛覚過敏動態を刺激した。神経障害性疼痛緩和に対する式3で表される化合物の効果を評価するために、Hargreaves et al (Pain 32:77-88, 1988)によって確立されたのと類似した方法で熱痛覚過敏動態をアッセイし、米国カリフォルニア州ウッドランドヒルズのIITC Inc.からの無痛覚計(analgesiometer)で記録した。
MPE(%)=(薬剤投与後の経過時間−基礎時間)/(30秒間−基礎時間)[]×100%
Berger et al (Atherosclerosis 175:229-234, 2004)およびChen et al (Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 368:127-133, 2003)の参考文献に従って、手術を実施した。2Fプローブバルーンカテーテルを用いて2.5%イソフルラン(空気および酸素の1:1の混合)で動物に麻酔をかけた。カテーテルを食塩水で予備充填し、右頚の外頸動脈から右総頸動脈内へ配置した。カテーテルが右総頸動脈に約1.5cm入ったら、バルーンを膨張させて前後に3回擦った。次にカテーテルを除去して、外頸動脈を結紮して切開を縫合した。3週間後に動物を屠殺して、両側からの総頸動脈を採取して、4%パラホルムアルデヒドで1日固定して薄く(3μm)切り、H & E染色を施した。光学的鏡検法下でサンプルを観察し撮影した。新生内膜増殖の厚さを判定した。各ラットの右側を実験群とし、左側を対照群とした。
体重280〜300gのメスのLewisラットを多発性硬化症(MS、脳脊髄炎、EAEとも称される)モデルで使用した(Boulerne et al, J Neurosci. 2002;22:123-32, 2004)。動物に2.5%イソフルランで麻酔をかけ、100%の免疫を与えるために1mgの不活性化結核菌(Mycobacterium tuberculosis)H37Raと50μgのモルモットミエリン塩基性タンパク質(MBP)とを含有する50μLの完全フロイントアジュバント(Sigma)を後脚から皮下注射した。対照群では、ラットに不活性化結核菌(Mycobacterium tuberculosis)H37Raを含有するがモルモットミエリン塩基性タンパク質なしの完全フロイントアジュバントを注射した。免疫化後11〜12日目に病気が観察され、14〜15日目にピークに達した。
対照群:不活性化結核菌(Mycobacterium tuberculosis)H37Raを含有するが、モルモットミエリン塩基性タンパク質なしの完全フロイントアジュバントをラットに後脚から皮下注射した。くも膜下腔内カテーテルを通じて20μLの生理食塩水を日に2回、7日目から5日間にわたり投与した。
多発性硬化症群:不活性化結核菌(Mycobacterium tuberculosis)H37Raとモルモットミエリン塩基性タンパク質とを含有する完全フロイントアジュバントをラットに後脚から皮下注射した。くも膜下腔内カテーテルを通じて20μLの生理食塩水を日に2回、7日目から5日間にわたり投与した。
処置を伴う多発性硬化症群:不活性化結核菌(Mycobacterium tuberculosis)H37Raとモルモットミエリン塩基性タンパク質とを含有する完全フロイントアジュバントをラットに後脚から皮下注射した。くも膜下腔内カテーテルを通じて10μg/20μLの式3で表される化合物を日に2回、7日目から5日間にわたり投与した。
処置を伴う正常ラット群:くも膜下腔内カテーテルを通じて10μg/20μLの式3で表される化合物を日に2回、7日目から5日間にわたり投与した。
全てのデータは平均±標準偏差S.E.M.で示し、一元配置分散分析(ANOVA)およびダネット検定で分析した。P<0.05は有意差を示す。生体外抗炎症アッセイでは、LPSのみの投与を100%とした。動物モデルでは、各群を4〜8回反復した。
Claims (24)
- 下記一般式1、
R1はH、R5、およびR5C(=O)からなる群から選択され、
R2はSおよび(O=)S(=O)からなる群から選択され、
R3はH、CH3およびCH2CH2C(=O)OR5からなる群から選択され、
R4はR5、OR5、
N(R5)2、NH2、NHR5、およびOHからなる群から選択され、
R5は1〜6個の炭素原子を有するアルキル基および非置換または置換フェニル基から選択されるが、
ただしR3がCH2CH2C(=O)OR5であるとき、R4はOR5であり、
R1がHであるとき、R2はSであり、R3がHであるとき、R4はCH3ではない)
で表される化合物。 - R5がメチル、エチル、および非置換フェニルからなる群から選択される、請求項1に記載の化合物。
- 下記式3〜22、
- (I)R1がHで、R2がSであるとき、下記一般式23、
下記一般式24、
(II)R1がR5C(=O)であるとき、一般式25で表される化合物をエステル化するステップと、
(III)R1がR5であるとき、一般式25で表される化合物をアルキル化するステップと、
(IV)R2が(O=)S(=O)であるとき、一般式25で表される化合物を酸化するステップと、
(V)R1がR5C(=O)で、R2が(O=)S(=O)であるとき、一般式25で表される化合物をエステル化して酸化するステップと、
(VI)R1がR5で、R2が(O=)S(=O)であるとき、一般式25で表される化合物をアルキル化して酸化するステップと、
(VII)R1がHで、R2がSで、R3がHで、R4がCH3であるとき、下記式27、
を含んでなる、一般式2、
R1はH、R5およびR5C(=O)からなる群から選択され、
R2はSおよび(O=)S(=O)からなる群から選択され、
R3はH、CH3およびCH2CH2C(=O)OR5からなる群から選択され、
R4はR5、OR5、
N(R5)2、NH2、NHR5、およびOHからなる群から選択され、
R5は1〜6個の炭素原子を有するアルキル基および非置換または置換フェニル基から選択されるが、
ただしR3がCH2CH2C(=O)OR5であるとき、R4はOR5である)
で表される化合物を調製する方法。 - R6がHである、請求項4に記載の方法。
- 式23および24で表される化合物をトリエチルアミンの存在下で反応させる、請求項4に記載の方法。
- 式23および24で表される化合物をアセトン中に溶解させる、請求項4に記載の方法。
- R3がCH2CH2C(=O)OR5であるとき、式23および24で表される化合物を溶媒の不存在下で反応させる、請求項4に記載の方法。
- エステル化がトリエチルアミンの存在下で実施される、請求項4に記載の方法。
- エステル化反応物質をジクロロメタン中に溶解させる、請求項4に記載の方法。
- R1がCH3C(=O)であるとき、エステル化が一般式25で表される化合物と無水酢酸とを反応させるステップを含んでなる、請求項4に記載の方法。
- R1がC6H5C(=O)であるとき、エステル化が一般式25で表される化合物と塩化ベンゾイルとを反応させるステップを含んでなる、請求項4に記載の方法。
- R1がCH3であるとき、アルキル化が一般式25で表される化合物とCH3Iとを反応させるステップを含んでなる、請求項4に記載の方法。
- 酸化が過酸化水素を用いて実施される、請求項4に記載の方法。
- 酸化がMnSO4・H2Oによって触媒される、請求項14に記載の方法。
- 酸化反応物質をアセトニトリル中に溶解させる、請求項14に記載の方法。
- 酸化がm−クロロペルオキシ安息香酸を用いて実施される、請求項4に記載の方法。
- 酸化反応物質をジクロロメタン中に溶解させる、請求項17に記載の方法。
- 請求項1に記載の化合物を対象に投与するステップを含んでなる、誘導性酸化窒素シンターゼおよび/またはシクロオキシゲナーゼ−2を阻害する方法。
- 化合物が、下記式3、
- 請求項1に記載の化合物を対象に投与するステップを含んでなる、誘導性酸化窒素シンターゼおよび/またはシクロオキシゲナーゼ−2と関連付けられている疾患を治療する方法。
- 疾患が、炎症、アテローム性動脈硬化、神経障害性疼痛、炎症性新生内膜増殖、関節炎、多発性硬化症、炎症性疼痛、および脊髄損傷からなる群から選択される、請求項21に記載の方法。
- 化合物が注射によって投与される、請求項21に記載の方法。
- 化合物が、下記式3、
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