JP2007535485A

JP2007535485A - 抗体を作製するための方法

Info

Publication number: JP2007535485A
Application number: JP2006530532A
Authority: JP
Inventors: デビッドグリフィススローソン、アラステイル; ジョンライトウッド、ダニエル
Original assignee: セルテックアールアンドディリミテッド
Priority date: 2003-05-30
Filing date: 2004-05-24
Publication date: 2007-12-06
Anticipated expiration: 2024-05-24
Also published as: GB0312481D0; JP4624357B2; US20070009959A1; CA2526546A1; EP1633787A1; ES2341544T3; WO2004106377A1; US7790414B2; AU2004242823A1; ATE459652T1; DE602004025805D1; EP1633787B1

Abstract

本発明は、ａ）Ｂ細胞集団を捕捉剤に接触させるステップと、ｂ）捕捉されたＢ細胞を捕捉されていないＢ細胞から分離するステップと、ｃ）捕捉された複数のＢ細胞を培養するステップであって、前記Ｂ細胞は培養の直前に一様なＢ細胞に選別されていないステップと、ｄ）複数の培養細胞をスクリーニングして、所望の機能を有する抗体を産生することができる細胞を同定するステップと、ｅ）それらから所望の抗体を得るステップとを含む、所望の機能を有する抗体を得る方法に関する。

Description

本発明は、一般に、所望の機能を有する高親和性抗体を作製するための改良方法に関する。本発明は又、本発明の方法によって作製した抗体、並びに本発明の方法によって同定及び作製した抗体産生細胞にも関する。

本明細書で引用するすべての文書は、その全体を参照により本明細書に組み込む。

モノクローナル抗体を単離するためのハイブリドーマ技術は、一般にげっ歯類のｍＡｂの生成に限られており、免疫動物で利用可能な特異的抗体形成細胞のごく一部しか不死化しない。細菌発現ライブラリーから得た抗体は、ライブラリーのサイズと抗体が細菌中で適切に折り畳まれ発現される必要とに対する実用面での限界により制限されている。さらに、これら両方の方法によって生成される抗体は、治療用途に十分な高さの親和性を有する抗体を得るために、親和性を増強することをしばしば必要とする。ｉｎｖｉｖｏの免疫応答の間に産生される高親和性抗体を任意の種から単離することを可能にする、いくつかの代替方法が考案されている（Ｂａｂｃｏｏｋ他、１９９６年、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ、９３、７８４３〜７８４８頁；ＷＯ９２／０２５５１；ｄｅＷｉｌｄｔ他（１９９７年）ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ、２０７：６１〜６７頁、及びＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他（１９９５年）ＢｉｏＴｅｃｈｉｑｕｅｓ１８（５）：８６２〜８６９頁）。

考案された第１の代替方法は、選択したリンパ球抗体による方法（ＳＬＡＭ）であった。この方法は、所望の特異性を有する抗体を産生する単一のリンパ球をリンパ球の大集団内で同定することを可能にし、その抗体の特異性をコードする遺伝情報をそのリンパ球から取り出すことを可能にする。選択した抗原に結合する抗体を産生する抗体産生細胞は、溶血プラーク検定法の変法を用いて検出される（Ｊｅｒｎｅ及びＮｏｒｄｉｎ、１９６３年、Ｓｃｉｅｎｃｅ、１４０、４０５頁）。この検定では、赤血球を選択した抗原で被覆して、抗体産生細胞の集団及び補体供給源と共にインキュベートする。単一の抗体産生細胞が、溶血プラークの形成により確認される。溶解された赤血球のプラークは倒立顕微鏡を用いて確認され、プラークの中央にある目的の単一の抗体産生細胞は、顕微操作技術を用いて取り出される。この細胞から得た抗体遺伝子は、逆転写ＰＣＲによってクローン化される。これらの細胞の物理的単離は、検出及び単離することができるＢ細胞の数を制限する。その結果、単離される抗体の多くは、その親和性がナノモルの範囲にすぎないことがあるため、さらに親和性の増強を必要とする。例えば、わずか１．７６ナノモル（１．７６×１０^９Ｍ^−１）の親和性が記載されている上記のＢａｂｃｏｏｋ他の文献を参照のこと。

前述の溶血プラーク検定法では、赤血球は通常、ビオチン／ストレプトアビジンのカップリング系を介して抗原で被覆され、抗原をビオチン化する必要がある。したがって、この方法は、純粋な形態で利用可能な抗原、及び抗原決定基の提示に影響を及ぼさずにビオチン化できる抗原に限定されている。この方法は、ある種のタイプの抗原に対する抗体の単離を明らかに妨げる。例えば、多くのタンパク質、特にＩＩＩ型タンパク質など細胞表面で発現されるタンパク質は精製が困難である。多くのタンパク質、例えば、活性部位にリジン基を含むタンパク質は、ビオチン化すると、その構造及び望ましい抗原決定基の提示を変更する。

腫瘍細胞や活性化Ｔ細胞などの細胞の表面で発現されるタンパク質のような未知の抗原に対する抗体を作製することが望ましい場合もある。プラーク検定法において抗原で被覆された赤血球の代わりに腫瘍細胞を直接使用することは、抗体産生細胞を含むプラークを同定するために細胞溶解を必要とするので、実現するのは困難である。細胞溶解は、細胞型、抗原、及び抗体濃度に依存する。所望の抗原で被覆された赤血球は、大量の使用可能な抗体を結合し、補体の存在下で容易に溶解する。腫瘍細胞などの他の細胞型は、特に、表面抗原の利用可能性が非常に低いために抗体結合が少なくなるときには、それほど容易には溶解しない。

ｄｅＷｉｌｄｔ他の方法では、自己免疫疾患の全身性エリテマトーデス（この疾患の患者はＵ１Ａタンパク質に対する自己抗体をしばしば産生する）を罹患している患者から得たＢ細胞が、Ｕ１Ａで被覆した培養プレートを用いるパンニング（ｐａｎｎｉｎｇ）にかけられた。Ｕ１Ａに結合しなかった細胞は、洗浄により除去された。次いで、付着している細胞は、トリプシン処理によりプレートから回収され、個々のＵ１Ａ−特異的Ｂ細胞を選択するためにフローサイトメーターを用いる単一細胞選別にかけられた。次に、単一Ｂ細胞は９６ウェルプレートで培養され、クローンとして増殖させられた。次に、培養上清を抗体産生に関して試験し、Ｕ１Ａ−特異的Ｂ細胞クローンを同定した。次に、全ＲＮＡが陽性のウェルから抽出され、Ｂ細胞由来のＶ_Ｈ／Ｖ_Ｌ領域がクローン化された。

ＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他（１９９５年）の文献では、破傷風トキソイド（ＴＴ）を結合した、破傷風免疫患者由来のＰＢＭＣが、ＴＴで被覆した磁性ビーズを使用して単離された。単一のＴＴ特異的Ｂ細胞が、自動ピペットを用いて単離された。次に、ウェル当たり０．３個のＢ細胞が９６ウェルマイクロプレート中に播種され、クローンとして増殖させられた。次に、ＴＴ特異的抗体の有無に関して、ウェルを試験した。次に、陽性のウェルから得られた抗体の可変領域遺伝子をクローン化した。

ｄｅＷｉｌｄｔ他の方法及びＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他の方法のどちらも、クローン増殖の前に目的抗原を認識する個々のＢ細胞を単離することを必要とし、この単離は煩わしく且つ時間がかかることがある。又、各マイクロタイターウェルに１個以下のＢ細胞しか播種されないため、多数のマイクロプレートが必要とされ、目的抗原を特異的に認識するＢ細胞を同定するためにスクリーニングされなければならない。

したがって、所望の機能を有する抗体を単離するための労働集約性のより低い方法が要求されている。また、その後の親和性増強を必要としないより親和性の高い抗体も要求されている。

本発明は、所望の機能を有する高親和性抗体を単離するための方法を提供する。

本発明によれば、
ａ）Ｂ細胞集団を捕捉剤に接触させるステップと、
ｂ）捕捉されたＢ細胞を捕捉されていないＢ細胞から分離するステップと、
ｃ）捕捉された複数のＢ細胞であって、培養の直前に一様なＢ細胞に選別されていない複数のＢ細胞を培養するステップと、
ｄ）複数の培養細胞をスクリーニングして、所望の機能を有する抗体を産生することができる細胞を同定するステップと、
ｅ）それらから所望の抗体を得るステップ
とを含む、所望の機能を有する抗体を得る方法が提供される。

本発明によって様々な利点がもたらされる。

例えば、この方法は驚くべきことに、ファージ及びハイブリドーマに由来する抗体での場合のように、続いて、突然変異誘発などの方法を用いてｉｎｖｉｔｒｏでそれらの抗体の親和性を成熟させる必要無しに、ピコモル（又はそれ以上）の抗体を直接単離することを可能にする。本発明の方法は、実質的に無制限の数の、所望の機能を有する著しく親和性の高い抗体を同定することを可能にする。これらの高親和性抗体は、通常、２００ｐＭ未満、１００ｐＭ未満、７５ｐＭ未満、５０ｐＭ未満、２５ｐＭ未満、又は１ｐＭ未満の親和性を有するものなど、ピコモルの範囲の親和性を有している。本発明の方法は、前記抗体のうちの１種又は複数、通常２種以上を直接得ることを可能にし、これは、本発明者らの考えるところでは、以前には実現されていない。

本発明の方法は又、未知の抗原、細胞表面抗原、及びビオチン化できない抗原を含む、任意の抗原に結合する抗体を、望ましい抗原決定基の提示を変更せずに同定することも可能にする。その結果、従来のプラーク検定法によってはこれまで達成できていない、結合特異性を有する抗体をここに産生することができる。さらに、本発明の方法は、クローニング前に個々の抗体産生細胞を単離することも、細胞を別々の単位容器中で個別に培養することも必要としない。その結果、様々な従来技術の方法と比べて、播種及びスクリーニングのための時間が短縮されるため、より迅速に抗体を同定することができる。

本明細書では、「核酸」という用語は、ＲＮＡ（例えばｍＲＮＡ）並びにＤＮＡ（例えばｃＤＮＡ及びゲノムＤＮＡ）を含む。ＤＮＡ又はＲＮＡは、二本鎖でも一本鎖でもよい。一本鎖ＤＮＡ又はＲＮＡは、センス鎖としても知られているコード鎖でもよく、又は、アンチセンス鎖とも呼ばれている非コード鎖でもよい。

本明細書では、「抗体」という用語は、ＩｇＧクラスのメンバー、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、若しくはＩｇＧ４など任意の抗体クラスから得られる任意の組み換え型又は天然に存在する免疫グロブリン分子を含み、又、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２断片など任意の抗原結合性の免疫グロブリン断片、及び、一本鎖Ｆｖ断片などそれらの任意の誘導体も含む。組換え抗体は、いくつかの異なる形態をとることができ、免疫グロブリン全体、キメラ抗体、ヒト化抗体、並びに、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２断片など抗原結合性の断片、及び一本鎖Ｆｖ断片などそれらの任意の誘導体が含まれる。これらの抗体分子を作製し製造するための方法は、当技術分野で公知である（例えば、Ｂｏｓｓ他、ＵＳ４８１６３９７；Ｃａｂｉｌｌｙ他、ＵＳ６３３１４１５；Ｓｈｒａｄｅｒ他、ＷＯ９２／０２５５１；Ｗａｒｄ他、１９８９年、Ｎａｔｕｒｅ、３４１、５４４頁；Ｏｒｌａｎｄｉ他、１９８９年、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８６、３８３３頁；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ他、１９８８年、Ｎａｔｕｒｅ、３２２、３２３頁；Ｂｉｒｄ他、１９８８年、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４２、４２３頁；Ｑｕｅｅｎ他、ＵＳ５５８５０８９；Ａｄａｉｒ、ＷＯ９１／０９９６７；Ｍｏｕｎｔａｉｎ及びＡｄａｉｒ、１９９２年、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．Ｅｎｇ．Ｒｅｖ、１０、１〜１４２頁；Ｖｅｒｍａ他、１９９８年、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ、２１６、１６５〜１８１頁を参照のこと）。

本明細書では、「抗原」という用語は、タンパク質、糖タンパク質、及び炭水化物を含めて、抗体によって認識することができる任意の既知又は未知の物質を意味する。好ましくは、これらの抗原には、ホルモン、サイトカイン、及びそれらの細胞表面受容体などの生物活性タンパク質、細菌若しくは寄生生物の細胞膜又はその精製成分、並びに、ウイルス性抗原が含まれる。

一の例では、天然供給源からの直接精製により、又は前記抗原の組換え発現及び精製により得られる純粋形態の抗原が利用可能である。

別の例では、抗原は、精製が困難な抗原である。このような抗原には、それだけには限らないが、受容体、特にＩＩＩ型タンパク質など細胞表面で発現されるタンパク質が含まれる。

別の例では、抗原は、ビオチン化すると抗原上の望ましい抗原決定基の提示が変更される抗原である。これには、それだけには限らないが、その活性部位領域にリジンを含むタンパク質が含まれる。

別の例では、抗原は、天然に又は組換えにより、細胞表面で発現されてよい。これらの細胞には、それだけには限らないが、哺乳動物細胞、免疫調節細胞、リンパ球、単核白血球、多核白血球、Ｔ細胞、腫瘍細胞、酵母細胞、細菌細胞、感染体、寄生生物、植物細胞、及びＮＳ０、ＣＨＯ、ＣＯＳ、２９３細胞などのトランスフェクト細胞が含まれてよい。

一の例では、前記細胞の表面で発現される抗原は、精製が困難である抗原、又は前述の抗原のようにビオチン化すると所望の抗原決定基を失う抗原である。

別の実施例では、抗原は未知のものであり、抗原となり得る物質の供給源を与える任意の物質である。この物質は、動物、例えば哺乳動物、又は、植物、酵母、細菌、ウイルス由来であることが好ましい。この物質は、哺乳動物細胞、免疫調節細胞、リンパ球、単核白血球、多核白血球、Ｔ細胞、腫瘍細胞、酵母細胞、細菌細胞、感染体、寄生生物、植物細胞など、それに対する抗体を単離することが望ましい細胞又は細胞集団でよい。一実施形態では、この細胞は腫瘍細胞である。

本明細書では、「Ｂ細胞」という用語は、任意のＢ細胞、又は、Ｂリンパ球、形質細胞、形質芽球、活性化Ｂ細胞、記憶Ｂ細胞など抗体を産生するその誘導体を含む。これらの細胞は、抗体を分泌し、且つ／又は細胞表面上で抗体を維持してよい。

本発明で使用するＢ細胞集団は、所望の機能を有する抗体を産生できる少なくとも１種のＢ細胞を含むと考えられる任意の集団である。

本発明で使用するＢ細胞は、様々な供給源から得ることができる。例えば、Ｂ細胞は、抗原で免疫化された又は疾患の結果として抗原に対する免疫応答を発現した動物から得ることができる。或いは、Ｂ細胞は、例えば、過去に目的抗原に曝露されたことがない未処置の動物（又は、目的抗原に曝露されたことが分かっていない、又は目的抗原に曝露されたと考えられていない動物）を免疫化して得ることもできる。

免疫応答を生じさせるのに適した当技術分野で公知の技術のいずれかを用いて、選択した抗原で動物を免疫化してよい（ＨａｎｄｂｏｏｋｏｆＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｄ．Ｍ．Ｗｅｉｒ（編）、４巻、ＢｌａｃｋｗｅｌｌＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＰｕｂｌｉｓｈｅｒｓ、Ｏｘｆｏｒｄ、Ｅｎｇｌａｎｄ、１９８６年を参照のこと）。Ｂ細胞を得るために、ウサギ、マウス、ラット、ヒツジ、ウシ、ブタなど多くの温血動物を免疫化してよい。しかし、マウス、ウサギ、ブタ、及びラットが、一般に好ましい。

免疫動物の末梢の脾臓及びリンパ節中で、多数のＢ細胞を発見することができる。免疫応答を起こさせ、動物を屠殺した後、脾臓及びリンパ節を取り出す。当技術分野で公知の技術を用いて、抗体産生細胞の単一細胞懸濁液を調製する。

Ｂ細胞は、疾患の経過中にその細胞を生じた動物から得ることもできる。例えば、癌など原因不明の疾患を罹患しているヒトから抗体産生細胞を得、疾患プロセスに影響を及ぼし、又は疾患の原因に関与している病原因子若しくは体成分の同定につながる可能性がある抗体の同定を助けるのにそれらを使用してよい。同様に、Ｂ細胞は、マラリアやエイズなど原因が分かっている疾患の患者から得てもよい。これらの抗体産生細胞は、血液又はリンパ節に由来するものでも、又、他の患部組織又は正常組織に由来するものでもよい。

Ｂ細胞は、ｉｎｖｉｔｒｏ免疫法などの培養技術によって得てもよい。このような方法の例は、ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ１２１：１８〜３３頁（Ｊ．Ｊ．Ｌａｎｇｏｎｅ、Ｈ．Ｈ．ｖａｎＶｕｎａｋｉｓ（編）、ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓＩｎｃ．、Ｎ．Ｙ．）でＣ．Ｒ．Ｒｅａｄｉｎｇによって記載されている。

本発明の方法は、ステップ（ａ）で捕捉剤を使用する。本明細書では、「捕捉剤」という用語は、Ｂ細胞を捕捉するのに適した任意の物質を含み、好ましくは、抗体に結合する任意のタンパク質又はペプチドである。捕捉剤は、溶液中で遊離状態であり又は支持体上で固定化される、本明細書で先に定義したような抗原であることが好ましい。具体的な支持体には、プレート又はビーズ、例えば、マイクロタイタープレート又は磁性ビーズが含まれる。Ｂ細胞及び捕捉剤を適切な時間接触させて結合させた後、未結合の細胞は、プロセスの（ｂ）の部分で分離し除くことができる。

本発明者らは、「捕捉されていないＢ細胞から捕捉されたＢ細胞を分離する」という表現により、捕捉剤に結合しないＢ細胞から捕捉剤に結合するＢ細胞を分離することを意味する。

分離は、パンニング（例えば、図１０を参照のこと）によって、抗原で被覆したビーズ（例えば、磁性ビーズ又はストレプトアビジンで被覆したビーズ）を使用することによって、又、ＦＡＣＳ選別によってなど、捕捉剤の性質に応じて様々な技術の助けを借りて行うことができる。Ｗｅｉｔｋａｍｐ他（２００３年）、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ２７５、２２３〜２３７頁では、特異的Ｂ細胞を単離するためのＦＡＣＳによる選別方法を記載している。

好ましくは、捕捉剤は、固相（例えば、パンニングを使用する場合はマイクロタイタープレート、又はビーズを使用する場合はビーズ）に結合され、Ｂ細胞を十分な時間固相に接触させて結合させる。次に、固相に結合しないＢ細胞を除去して、固相に結合されているＢ細胞を残すことができる。捕捉剤は、純粋形態で固相に結合される抗原であることが好ましい。或いは、捕捉剤は、その集団の表面抗原のうちの少なくとも一部に対する抗体を単離することが望まれる同種の又は異種の細胞集団である。或いは、捕捉剤は、その表面で抗原を発現するトランスフェクト細胞の集団である。

したがって、例えば、捕捉剤が固相に結合されている場合は、パンニングを使用してよい。パンニングでは、抗体産生細胞を固定化した捕捉剤に十分な時間接触させて結合させた後、次に、その混合物を媒地で洗浄して、捕捉剤からの非付着細胞の除去を促進し、その一方でＢ細胞の表面の抗体を介して固相に付着している捕捉剤に結合している細胞を保持する。適切な培地は、当業者なら分かり、又は、当業者なら経験に基づいて容易に決定できる。任意の培養培地、例えばロズウェルパーク記念研究所の培地（ＲＰＭＩ）又はダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）を使用してよい。非付着細胞を除去するために、多数回の洗浄、例えば、１０回以上の洗浄を行うことが好ましい。

パンニングは、一連の単位容器を用いて実施することが好ましい。本発明者らは、単位容器という用語により、小体積の液体を維持するのに適した容器、例えばマイクロタイタープレートのウェルを意味する。この単位容器は、標準の９６ウェルマイクロタイタープレートのウェルと同様の（例えば±１０％）体積保持力及び／又は内表面積をそれぞれ有していることが好ましい。

パンニングは、マイクロタイタープレートを用いて実施することが好ましい。例えば、６、２４、４８、９６、３８４、又は１５３６ウェルのマイクロタイタープレートを使用してよい。マイクロタイタープレートのウェルは、それぞれ標準寸法であることが好ましい。標準サイズのウェルを有する９６ウェルマイクロタイタープレートを使用することが好ましい。

パンニングのステップでは、捕捉剤が単位容器の表面を完全に覆うことが好ましい。当業者なら、単位容器（例えばウェル）当たりの保持されるＢ細胞の数を最適化するためにパンニングのステップのパラメータを容易に調整できるであろう。調整することができるパラメータには、単位容器の容積又は表面積、ウェルに結合される捕捉剤の濃度又は量、ウェルに投与されるＢ細胞の濃度又は量、Ｂ細胞の供給源（例えば、Ｂ細胞を低応答性若しくは未処置の個体から得る場合は、より多くのＢ細胞を使用する必要がある可能性がある）、非付着細胞を除去するための洗浄回数、及び単位容器の洗浄に使用される培地が含まれる。

代替方法では、捕捉剤（例えば抗原）をビーズ表面に塗り、そのビーズを使用して捕捉剤に結合する細胞を選択してよい。目的抗原に結合する細胞を選択するためのビーズの使用は、当技術分野で十分に記載されている。簡単に言うと、例えば、捕捉剤を磁性ビーズに結合する。次に、Ｂ細胞を磁性ビーズと混合すると、捕捉剤に結合するＢ細胞は、捕捉剤を介して磁性ビーズに結合する。次に、磁性ビーズに結合するＢ細胞を、磁気分離によって得ることができる。

磁性ビーズの使用は、ＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他、（１９９５年）ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ１８（５）：８６２〜８６９頁に記載されている。しかし、ＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他により示されている内容とは異なり、本発明の方法は、個々のＢ細胞の単離（これは、磁性ビーズが結合した個々のＢ細胞を自動ピペットで直接採取することにより、ＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他が実現した）を必要としない。

別の代替方法は、所望の機能を有する抗体を産生するＢ細胞を選択するのに使用できるＦＡＣＳ選別である（例えば、Ｗｅｉｔｋａｍｐ他、（２００３年）、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ２７５、２２３〜２３７頁を参照のこと）。この技術では、前記剤に結合するＢ細胞のＦＡＣＳ選別を容易にするために、捕捉剤（例えば抗原）を蛍光標識してよい。しかし、上記のＷｅｉｔｋａｍｐ他により示されている内容とは異なり、本発明は、個々のＢ細胞の単離を必要としない。

目的抗原に結合する抗体を産生する細胞を選択するとき、（例えば、パンニングで使用され得るマイクロタイタープレートなどの固相、ビーズを使用する場合はビーズ、又は、抗原を発現していない細胞に）非特異的に結合するＢ細胞が選択されないように確実にすることが望ましい場合がある。パンニングの場合は、これは、例えば捕捉剤が結合されていないマイクロタイタープレートにＢ細胞をまず曝露させ、次にウェルに非特異的に結合するＢ細胞を取り除くことによって実現することができる。同様に、ビーズを使用する場合は、まずＢ細胞を被覆されていないビーズと共にインキュベートし、次に、被覆されていないビーズに結合する細胞を除去した後で、捕捉剤で被覆したビーズと共にＢ細胞をインキュベートすることができる。或いは、捕捉剤に結合する細胞を選択した後に、非特異的に結合する細胞を除去することもできる。

捕捉剤に結合しない細胞を除去した後、次に、複数の残存細胞（一実施形態では、残存細胞のすべて）をステップ（ｃ）で培養する。これらの細胞は、培養の直前には単一の細胞に選別されていない。したがって、従来技術とは異なり、培養される細胞は、個別に単離されていることを必要としない。実際、本発明の第１態様の方法の全体は、捕捉剤に結合する抗体を産生する個々の細胞を単離せずに実施することができる。

分離ステップがパンニングであり、パンニングの直後に培養細胞を培養することが好ましい。

細胞は、一連の単位容器中で培養することが好ましい。捕捉剤に結合しない細胞を除去するためにパンニングを使用した場合、抗原の存在下、パンニングのステップによって保持されたのと同じ単位容器中で細胞を培養することが好ましい。

細胞を単位容器中で保持する場合（例えば、パンニングの結果として）、捕捉剤に結合しない細胞を除去する前に、ステップ（ａ）でウェル当たりのＢ細胞の数が、１００〜２０，０００／ウェルの範囲であることが好ましい。Ｂ細胞の数は、血清力価に応じて変わる。例えば、血清力価が１／１，０００〜１／１０，０００であれば、約２０，０００Ｂ細胞／ウェルが必要となるであろう。一方、力価が１／１００，０００〜１／１，０００，０００であれば、約１００Ｂ細胞／ウェルが必要となるであろう。当業者なら、単位容器（例えばウェル）当たりで保持されるＢ細胞の数を最適化するためにパンニングのステップのパラメータ（例えば、洗浄の回数及び厳密性）を容易に調整できるであろう。

上述したように、Ｂ細胞は、培養の直前に一様なＢ細胞に選別されていない。ＦＡＣＳなどの技術を使用する場合は、培養前にＢ細胞をプールし、そのＢ細胞の２個以上を単位容器に播種してよい。ＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｋｖｉｓｔ他の方法では、ウェル当たり０．３個のＢ細胞が播種されたことに留意されたい。それとは対照的に、本発明の方法では、単位容器当たり１個を超えるＢ細胞が存在してよい。

細胞を単位容器中に播種する場合（例えば、ＦＡＣＳ選別の結果として）、単位容器当たり、好ましくは２〜１００個のＢ細胞、より好ましくは２〜７５個のＢ細胞、より好ましくは５〜５０個のＢ細胞、より好ましくは５〜２５個のＢ細胞、より好ましくは５〜１５個のＢ細胞、より好ましくは８〜１２個のＢ細胞、さらに好ましくは約１０個のＢ細胞を単位容器に播種する。

好ましくは、本発明の第１態様の方法は、目的抗原への結合能を有する抗体を産生する個々の細胞を単離することを含まず、ステップ（ｃ）でプールする前に個々の細胞を単離することができるステップｂ）（例えば、ＦＡＣＳ又はビーズを使用する場合など）を任意選択で除外する。

ステップｃ）において、１日〜１ヶ月間、通常、約若しくは少なくとも４、５、６、７、８、９、若しくは１０日間、又は最大１ヶ月間、Ｂ細胞を培養することが好ましい。Ｂ細胞を約５〜１０日間培養することが好ましく、約６〜９日間又は６〜８日間培養することがより好ましい。

細胞は、Ｂ細胞のクローン増殖に適した条件下で培養することが好ましい。クローン増殖により、産生される抗体の量がより多くなり、ｍＲＮＡの発現レベルがより高くなる。クローン増殖は、所望の機能を有する抗体が結合する抗原の存在下で実施することが好ましく、これは、ｉｎｖｉｔｒｏの親和性成熟（ａｆｆｉｎｉｔｙｍａｔｕｒａｔｉｏｎ）を介してより親和性の高い抗体を単離する助けとなることができる。

Ｂ細胞のクローン増殖に適した条件は、当技術分野で公知である（例えば、上記のＣａｔｒｉｎＳｉｍｏｎｓｓｏｎＬａｇｅｒｖｉｓｔ他を参照のこと）。重要な条件には、培養培地、細胞を培養する時間、温度、及び大気中ＣＯ_２濃度が含まれる。

Ｂ細胞は、放射線照射したＥＬ−４細胞と共にＴ細胞の馴化培地で培養することが好ましい。Ｂ細胞は、増殖因子及び分化因子の供給源としてヒトＴ細胞／マクロファージ上清を加え、放射線照射したマウスＥＬ−４胸腺腫変異細胞、即ちＥＬ−４／Ｂ５細胞とともに培養することが好ましい。ＥＬ−４／Ｂ５細胞は、ＭＨＣ非拘束性の直接的細胞間相互作用を介して、Ｂ細胞を活性化する。活性化シグナル自体は分裂を促進しないが、Ｂ細胞を感作して、ヒトＴ細胞上清中に存在する１種（ＩＬ−２）又は複数のサイトカインに応答させる。

細胞を培養した後、所望の機能を有する抗体を産生できる細胞の有無を確かめるために、プロセスのステップ（ｄ）において、複数の培養細胞をスクリーニングすることができる。これは、前記複数の培養細胞の培養上清のスクリーニングを含むことが好ましい。

細胞を一連の単位容器中で培養した場合、（例えば、単位容器から培養上清を採取することによって）所望の機能を有する抗体を産生できる細胞の有無について単位容器を個々に検定して、それにより、所望の機能を有する抗体を産生できる細胞の有無に関して陽性である１つ又は複数の単位容器を特定することができる。次に、陽性の単位容器から所望の機能を有する抗体を得ることができる。この抗体は、この方法のステップ（ｅ）において、単位容器中に存在する細胞から直接又は間接的に合成することができる。

従来技術の方法では、抗体産生細胞を個々に単離し、次いで別々に（即ち、遺伝的に異なる細胞から離して）培養するのに対し、本発明は、遺伝的に異なるＢ細胞を一緒に（即ち、同じ容器中で）培養することを含んでよいことが理解されよう。

驚くべきことに、遺伝的に異なるＢ細胞集団を一緒に培養する場合、通常、培養期間の最終時点の培養細胞の培養上清では、１種の抗体をコードする１種の核酸のみが存在／検出可能（例えば、増幅、例えばＰＣＲによって）であることが分かった。したがって、本発明では同じ容器で数種のＢ細胞を培養することができるが、所望の機能を有する抗体を産生できる１種又は複数のＢ細胞を容器から同定及び単離することは一般に必要ではない。即ち、一般にＢ細胞はクローン性である。

上記に言及したように、本発明では、Ｂ細胞を培養した個々の単位容器から個々のＢ細胞を同定及び単離する必要はない。したがって、個々の単位容器の内容物をまとめてスクリーニングすることができる。例えば、一連の個々の単位容器から抽出した培養上清をそれぞれ個別にスクリーニングして、所望の機能を有する抗体を産生する細胞の有無に関して陽性である単位容器の特定を可能にすることができる。所望の機能を有する抗体を産生する個々の細胞は、単位容器から同定及び単離しないことが好ましい。したがって、本発明の一実施形態では、本発明の第１態様のステップｄ）は、所望の機能を有する抗体を産生する個々の細胞を単離することを含まない。

本発明の別の実施形態では、本発明の第１態様のステップａ）〜ｄ）は、所望の機能を有する抗体を産生する個々の細胞を単離することを含まない。

本発明の抗体は、様々な方法により、所望の機能について検定することができる。所望の機能は、単に目的抗原に結合することでもよく、又は、さらに機能的な性質、例えば、高親和性、アンタゴニスト的性質、アゴニスト的性質、中和性などを望んでもよい。

所望の抗原への結合は、例えば、それだけには限らないが、競合及び非競合型の検定系が含まれるイムノアッセイを用い、いくつかの名前を挙げると、ウェスタンブロット法、ラジオイムノアッセイ、ＥＬＩＳＡ（固相酵素免疫検定法）、「サンドイッチ型」イムノアッセイ、免疫沈降法、沈降反応、ゲル拡散沈降反応、免疫拡散法、凝集検査、補体結合試験、イムノラジオメトリックアッセイ、蛍光免疫測定法、タンパク質Ａ免疫測定法などの技術を用いて検定することができる。これらの検定法は常法であり、当技術分野で公知である（例えば、その全体を参照により本明細書に組み込む、Ａｕｓｕｂｅｌ他編、１９９４年、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ、１巻、ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．、ＮｅｗＹｏｒｋを参照のこと）。

ＥＬＩＳＡを使用して所望の抗原に結合する抗体を検定することが好ましい。通常のＥＬＩＳＡプロトコルは、抗原を調製し、マイクロタイタープレートのウェルを抗原で被覆し、酵素（例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ又はアルカリホスファターゼ）など検出可能な化合物に結合された目的抗体をウェルに添加して、一定期間インキュベートし、その抗原の有無を検出することを含む。ＥＬＩＳＡでは、目的抗体が検出可能な化合物に結合されている必要はなく、その代わりに、検出可能な化合物に結合された第２抗体（目的抗体を認識する）をウェルに加えてもよい。さらに、抗原でウェルを被覆する代わりに、抗体でウェルを被覆してもよい。この場合、被覆したウェルに目的抗原を添加した後に、検出可能な化合物に結合された第２抗体を加えることができる。当業者なら、検出されるシグナルを増大させるために変更できるパラメータ、並びに当技術分野で既知のＥＬＩＳＡの他の変形法について精通しているはずである。ＥＬＩＳＡに関してさらに考察するには、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ他編、（１９９４年）、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ、１巻、ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ、Ｉｎｃ．、ＮｅｗＹｏｒｋ、セクション１１．２．１．を参照されたい。

或いは又はさらに、所望の結合親和性を有する抗体、即ち特異的な抗原決定基を認識する抗体、又は中和抗体、アンタゴニスト抗体、若しくはアゴニスト抗体など機能活性を有する抗体についてスクリーニングすることが望ましいこともある。これらの目的のための検定は当技術分野で公知であり、例えば、受容体／リガンド結合の機能スクリーニングが含まれる。

本発明の方法を一連の単位容器を使用して実施する場合、個々の単位容器から得た培養上清を検定して、所望の機能を有する抗体に関して陽性な容器を特定することが好ましい。１種又は複数の検定を単位容器の培養上清に対して実施してよい。例えば、まず検定を実施して、目的抗原に結合する抗体に関して陽性な単位容器を決定することが望ましい場合がある。次に、目的抗原に結合する抗体に関して陽性なこれらの単位容器を、所望の親和性を有する抗体の有無について、又は、中和抗体、アンタゴニスト抗体、若しくはアゴニスト抗体などの抗体の有無についてスクリーニングしてよい。

抗体の抗原に対する結合親和性及び抗体−抗原相互作用の解離速度は、「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」分析又は競合結合測定によって決定することができる。「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」は、分子の相互作用を測定するのに使用できる自動バイオセンサーシステムである（Ｋａｒｌｓｓｏｎ他、１９９１年、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ、１４５、２２９〜２４０頁）。競合結合測定の一例は、未標識抗原の量を漸増させその存在下で、目的抗体と共に放射標識抗原（例えば、^３Ｈ又は^１２５Ｉ）をインキュベーションすること、及び標識抗原に結合している抗体を検出することを含むラジオイムノアッセイである。特異的な抗原に対する目的抗体の親和性及び結合の解離速度は、スキャッチャードプロット分析によるデータから決定することができる。

第２抗体との競合も、ラジオイムノアッセイを用いて測定することができる。この場合、その量を漸増させた未標識第２抗体の存在下で、放射標識（例えば、^３Ｈ又は^１２５Ｉ）に結合した目的抗体と共に抗原をインキュベートする。

高親和性抗体（ピコモル範囲の親和性を有する抗体）の有無に関して陽性である単位容器を特定するために検定を実施することが好ましい。

所望の機能を有する抗体を産生できると同定される細胞は、所望の機能を有する抗体を産生する細胞を含む（好ましくは、これらの細胞からなる）。

抗体は、所望の機能を有する抗体を産生できプロセスのステップ（ｅ）で得られる細胞から、直接的又は間接的に合成することができる。本発明の一実施形態では、本発明の第１態様のステップｅ）は、所望の機能を有する抗体を産生する個々の細胞を単離することを含まない。

所望の抗体は、その内容物がクローンである単位容器から得ることが好ましい。所望の抗体は、その単位容器中に存在する細胞又はその子孫細胞から、直接的又は間接的に合成することができる。

直接合成は、Ｂ細胞（又はその子孫細胞）の少なくとも１つを適切な培地で培養することによって、実現することができる。好ましくは、所望の機能を有する抗体を産生できる細胞の有無に関して陽性と特定される１つの単位容器中に存在する細胞を培養し、任意選択で抗体を精製することによって、それらから抗体を得る。

間接合成は、抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を単離し、それら（又はそれらの改変型）を宿主細胞中で発現させることによって、実現することができる。遺伝子全体をクローン化してもよく、抗体の所望の機能を与えている可変領域又はその一部をクローン化し使用して組換え抗体を作製してもよい。Ｖ_Ｈ領域及び／又はＶ_Ｌ領域をコードする核酸、或いは少なくとも１つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む核酸を単離することが好ましい。

組換え抗体は、いくつかの異なる形態をとることができ、完全な免疫グロブリン、キメラ抗体、ヒト化抗体、及び、Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２断片など抗原結合性の断片、並びに、一本鎖Ｆｖ断片などそれらの任意の誘導体が含まれる。これらの抗体分子を作製するための方法は、当技術分野で公知である（例えば、Ｂｏｓｓ他、ＵＳ４８１６３９７；Ｃａｂｉｌｌｙ他、ＵＳ６３３１４１５；Ｓｈｒａｄｅｒ他、ＷＯ９２／０２５５１；Ｗａｒｄ他、１９８９年、Ｎａｔｕｒｅ、３４１、５４４頁；Ｏｒｌａｎｄｉ他、１９８９年、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８６、３８３３頁；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ他、１９８８年、Ｎａｔｕｒｅ、３２２、３２３頁；Ｂｉｒｄ他、１９８８年、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４２、４２３頁；Ｑｕｅｅｎ他、ＵＳ５５８５０８９；Ａｄａｉｒ、ＷＯ９１／０９９６７；Ｍｏｕｎｔａｉｎ及びＡｄａｉｒ、１９９２年、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．Ｅｎｇ．Ｒｅｖ、１０、１〜１４２頁；Ｖｅｒｍａ他、１９９８年、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ、２１６、１６５〜１８１頁を参照のこと）。

一実施形態では、培養細胞又はその子孫細胞から抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を増幅する。増幅は、培養細胞又はその子孫細胞に対し直接実施してもよく、増幅の前に核酸の回収ステップがあってもよい。単位容器を使用する場合は、陽性と特定される１つの単位容器から、抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を増幅する。

陽性と特定される１つの単位容器から得た培養上清（例えば細胞懸濁液の形態）を用いて、増殖を実施することが好ましい。従来技術の技術とは異なり、いくつかの遺伝的に異なる細胞が培養された単位容器から得た核酸を増幅できることをもう一度強調しておきたい。

プライマーを適切に選択して、抗体をコードする配列全体を増幅してもよく、或いは、抗体の所望の機能を与えている可変領域又はその構成部分を増幅してもよい。すべてのＶＨ及びＶＬの遺伝子部分を増幅するためのプライマーを設計するための方法は、ＷＯ９２／０２５５１、Ｂａｂｃｏｏｋ他の上記文献、Ｗｅｉｔｋａｍｐ他（２００３年）ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ２７５、２２３〜２３７頁に記載されている。

核酸増幅方法は、当技術分野で公知である。回収した核酸がＲＮＡである場合は、そのＲＮＡを逆転写してｃＤＮＡを得ることが好ましい。

ＰＣＲ、好ましくはＲＴ−ＰＣＲを増幅に使用することが好ましい。抗体をコードする核酸配列のＰＣＲ増幅についての詳細はＷＯ９２／０２５５１で発表されており、参照により本明細書に組み込む。

ＰＣＲの他に、他の増幅手順を使用してもよい。他の増幅手順には、Ｔ７及びＱ−レプリカーゼによる方法が含まれる。ＷＯ９２／０２５５１におけるこれらの方法に関する記載を、参照により本明細書に組み込む。

一般に、各単位容器の内容物はクローンであるが、時に一部の単位容器で、内容物がクローンではないことがある。即ち、複数種の抗体が単位容器中に存在しており、したがって、複数種の抗体に対応する核酸がその単位容器から単離されることがある。複数種の抗体に対応する核酸が単離される場合は、単離された配列のうちのどれが所望の機能を有する抗体に対応するかを確かめることが必要になる。後述の実施例１から分かるように、これは、増幅されたＶ_Ｈ配列及びＶ_Ｌ配列（又はその構成部分）の様々な組合せを試験して、目的抗原に結合できる抗体を生じる組合せを決定することを必要とする場合がある。或いは、複数種の抗体に対応する核酸が同じ単位容器から単離される場合は、同じ配列が複数回単離される場合があり得、実施例３のように、この優位な配列を優先的に試験してよい。同じ配列が複数の単位容器で発見されることもあり、この配列を実施例３で記述するように、優先的に試験してよい。

したがって、本発明の第１態様の方法は、複数種の抗体に対応する核酸を増幅する場合、増幅された核酸が所望の機能を有する抗体を生じる能力を決定するステップをさらに含むことがある。このようにして、所望の機能を有する抗体を生じることができる増幅核酸を同定し選択することができる。

ある程度まで、「クローンの」単位容器のパーセンテージは、所望の機能を有する抗体に関して陽性である単位容器の許容される数と、「非クローン」単位容器の許容される数との間のつりあい（ｔｒａｄｅ−ｏｆｆ）である。陽性の単位容器のパーセンテージが高い値を示すほど、その容器の内容物がクローンである可能性は低くなる。「クローン」単位容器のパーセンテージは、使用する血清力価及びウェル当たりのＢ細胞の数を含む、いくつかの因子に応じて変わる。当業者なら、適切に検定条件を適合させることによって、「クローン」単位容器の適切なパーセンテージに到達することができるであろう。「クローン」単位容器のパーセンテージに影響を及ぼす因子には、パンニング前のウェル当たりで存在するＢ細胞の数が含まれる。パンニング前に１００〜２０，０００Ｂ細胞／ウェルである場合、一般に、１クローン／ウェルが得られる。パンニング前のウェル当たりＢ細胞数は、既に前述したように、使用する血清力価に応じて変わる。

一実施形態では、抗体（又はその構成部分）のアミノ酸配列を決定し、その配列から抗体又はその構成部分をコードする核酸配列を推定することによって、抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を単離する。単位容器を使用する場合は、陽性の単位容器中に存在する抗体の配列を決定する。遺伝コードの縮重があるため、抗体又はその構成部分をコードできる様々な多くの核酸配列が存在することになり、したがって、抗体又はその構成部分のアミノ酸配列から、いくつかの適切な核酸配列を推定することができる。

上記に論じたように、一部の場合では、単位容器１つにつき複数種の抗体が産生されることがある。このため、一実施形態では、本方法はアミノ酸配列が所望の機能を有する抗体に由来するものであるか確認することを含む。或いは、アミノ酸配列を決定する前に、配列決定する抗体が所望の機能を有する抗体であることを確実にするために、最初に、単位容器中に存在する抗体を精製してもよい。

一実施形態では、発現前に抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を改変する。核酸の改変方法は、当業者には公知であると思われ、例えば、部位特異的変異誘発が含まれる。核酸への改変は、１つの部位又は複数の部位で加えてよい。コードされているアミノ酸の所望の機能が増強されるように、例えば、得られる抗体がより高い結合親和性を有するように、核酸を改変することが好ましい。実行し得る他の改変には、核酸の安定性を増すための改変、及び、付加的な性質を有するコードされたポリペプチドを与える改変が含まれる。

抗体又はその構成部分（或いはその改変型）をコードする遺伝子を宿主細胞で発現させて、所望の機能を有する抗体を得ることができる。

宿主細胞中の１つ又は複数の発現ベクターに核酸を組み込むことが適切である。

本発明の抗体を生成するのに利用可能な様々な発現系が当技術分野で既知であり、細菌発現系、酵母発現系、昆虫発現系、及び哺乳動物発現系が含まれる（例えばＶｅｒｍａ他、１９９８年、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ、２１６、１６５〜１８１頁を参照のこと）。

上記に言及したように、本発明の方法は、一連の単位容器、好ましくはマイクロタイタープレートのウェルを使用することが好ましい。したがって、本発明の一実施形態は、
ａ）Ｂ細胞集団を捕捉剤に接触させるステップと、
ｂ）捕捉されたＢ細胞を捕捉されていないＢ細胞から分離するステップと、
ｃ）捕捉された複数のＢ細胞を培養するステップであって、前記Ｂ細胞は培養の直前には単一のＢ細胞に選別されておらず、且つ、前記Ｂ細胞が一連の単位容器で培養されるステップと、
ｄ）少なくとも１つの単位容器の内容物をスクリーニングして、それにより所望の機能を有する抗体を産生できる細胞の有無に関して陽性な少なくとも１つの単位容器を特定するステップと、
ｅ）前記単位容器内の細胞から直接的又は間接的に所望の抗体を得るステップ
とを含む、所望の機能を有する抗体を得る方法を提供する。

好ましくは、単位容器中に存在する細胞、又はその子孫細胞から、抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を単離し、抗体又はその構成部分をコードするその遺伝子を適切な宿主で発現させることによって、所望の抗体を単位容器から得る。

本発明の特に好ましい実施形態では、パンニングを行って、所望の機能を有する抗体を得る。したがって、好ましい実施形態では、
ａ）Ｂ細胞集団を捕捉剤が結合されている一連の単位容器に接触させるステップと、
ｂ）捕捉剤に結合しないＢ細胞を単位容器から除去する一方で、捕捉剤に結合しているＢ細胞を保持するステップと、
ｃ）好ましくはクローン増殖に適した条件下で、捕捉された複数のＢ細胞を、それらが保持されている単位容器中で培養するステップと、
ｄ）少なくとも１つの単位容器の内容物をスクリーニングして、それにより所望の機能を有する抗体を産生できる細胞の有無に関して陽性な少なくとも１つの単位容器を特定するステップと、
ｅ）前記単位容器から直接的又は間接的に所望の抗体を得るステップ
とを含む、所望の機能を有する抗体を得る方法が提供される。

本発明の第２態様は、本発明の第１態様によって得られる抗体を提供する。本発明の抗体は、様々な修飾を有することができる。例えば、何らかの適切な診断目的又は治療目的のために、１種又は複数のレポーター分子又はエフェクター分子に抗体を結合させてよい。

本発明の抗体は、通常、抗原に選択的に結合することができる。抗原は、任意の細胞結合抗原、例えば、細菌細胞、酵母細胞、Ｔ細胞、内皮細胞、腫瘍細胞などの細胞上の細胞表面抗原でもよく、又は、可溶抗原でもよい。抗原は、疾病又は感染期間中に上方調節される抗原、例えば受容体及び／又はそれらの対応するリガンドなど任意の疾患関連抗原であってもよい。細胞表面抗原の具体例には、接着分子、例えば、β１インテグリン、例えばＶＬＡ−４などのインテグリン、Ｅ−セレクチン、Ｐセレクチン、又はＬ−セレクチン、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ７、ＣＤ８、ＣＤ１１ａ、ＣＤ１１ｂ、ＣＤ１８、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ３３、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４５、ＣＤＷ５２、ＣＤ６９、癌胎児抗原（ＣＥＡ）、ヒト乳脂肪グロブリン（ＨＭＦＧ１及び２）、ＭＨＣクラスＩ抗原、ＭＨＣクラスＩＩ抗原、ＶＥＧＦ、並びに必要に応じてそれらの受容体が含まれる。可溶抗原には、ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１２、ＩＬ−１６、ＩＬ−１７などのインターロイキン；ウイルス抗原、例えば呼吸器合胞体ウイルス抗原又はサイトメガロウイルス抗原；ＩｇＥなどの免疫グロブリン；インターフェロンα、インターフェロンβ、インターフェロンγなどのインターフェロン；腫瘍壊死因子−α；腫瘍壊死因子−β；Ｇ−ＣＳＦやＧＭ−ＣＳＦなどのコロニー刺激因子；ＰＤＧＦ−αやＰＤＧＦ−βなどの血小板由来成長因子；並びに必要に応じてそれらの受容体が含まれる。

本発明の方法によって得られる抗体は、ＩＬ−１７に結合することが好ましい。ＩＬ−１７を認識する抗体を生成することが望まれる場合は、上述の検定で使用する目的抗原は、ＩＬ−１７、好ましくはヒトＩＬ−１７となる。

上記に言及したように、本発明の方法は、高親和性抗体、一般に、２００ｐＭ、１００ｐＭ、７５ｐＭ、５０ｐＭ、２５ｐＭ、又は１ｐＭ以下の親和性を有するものなどピコモル範囲の親和性を有する抗体の同定に特に適している。特に高親和性の抗体の場合は、「解離速度」の点からそれらを記述する方がより適切なことがある。本発明の一実施形態では、解離速度が１×１０^６ｓ^−１未満の抗体が提供される。その解離速度定数が「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」分析によって測定不能な場合は、抗体の解離速度は１×１０^６ｓ^−１未満であると考えられる。

本発明の特に好ましい実施形態では、ピコモル範囲の親和性を有するＩＬ−１７、好ましくはヒトＩＬ−１７に対する抗体が提供される。この抗体は、２００ｐＭ、１００ｐＭ、７５ｐＭ、５０ｐＭ、２５ｐＭ、又は１ｐＭ以下の親和性を有することが好ましい。

したがって、本発明の第１態様の一実施形態では、本方法は、ピコモル範囲の親和性を有する、ＩＬ−１７に対する抗体を得る方法である。この抗体は、２００ｐＭ、１００ｐＭ、７５ｐＭ、５０ｐＭ、２５ｐＭ、又は１ｐＭ以下の親和性を有することが好ましい。

本発明によって生成する抗体には、いくつかの治療的（治療と予防の双方）、診断的、及び研究的用途がある。例えば、病原微生物に対する抗体は、生物による感染症の治療に使用することができる。これらの抗体は、ｉｎｖｉｖｏ又はｉｎｖｉｔｒｏのいずれの診断にも使用できる。細胞の受容体に対する抗体は、受容体の機能に作用（ａｇｏｎｉｚｅ）又は拮抗（ａｎｔａｇｏｎｉｚｅ）するのに使用することができる。例えば、接着分子に対する抗体は、望ましくない免疫応答を低減させるのに使用することができる。これらの抗体は、炎症のｉｎｖｉｖｏの画像診断に使用することもできる。他の抗体は、腫瘍抗原に対するものでよく、腫瘍細胞を排除するために直接又はエフェクター分子と組み合わせて使用することができる。抗体は、ｉｎｖｉｖｏ又はｉｎｖｉｔｒｏのいずれの診断にも使用できる。

本発明の第３態様は、高親和性抗体の一団を提供する。本明細書では、「一団（ｐａｎｅｌ）」という用語は、同じ所望の機能を有する、例えば、同じ抗原を結合する抗体２種以上（例えば２、３、４、５、８、１０種又は１０種超）からなるグループを意味する。本発明による方法により、高親和性抗体の一団を簡単且つ直接的に得ることが可能になる。この方法は、２００ｐＭ、１００ｐＭ、７５ｐＭ、５０ｐＭ、２５ｐＭ、１０ｐＭ、又は１ｐＭ以下の親和性をそれぞれ有する抗体の一団を得るのに特に適している。特異的な抗原に対してこのくらいに高い親和性を有する個々の抗体は希少であり、今日まで生成が困難であった。本発明により提供される高親和性抗体の一団は、偏りのある抗体ライブラリーを提供し、これから、例えばさらにスクリーニングすることによって、有用な抗体を得ることができる。

本発明の別の態様は、
ｉ）前述した、所望の機能を有する抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を単離する方法と、
ｉｉ）所望の機能を有する抗体又はその構成部分をコードする遺伝子を含むベクターであって、その方法は前述されているベクターと、
ｉｉｉ）所望の機能を有する抗体又はその構成部分をコードする遺伝子で形質転換させた宿主細胞及びその子孫細胞であって、その方法は前述されている宿主細胞及びその子孫細胞と、
ｉｖ）ｉｉｉ）に記載の宿主細胞を培養するステップと宿主細胞により産生された抗体を得るステップとを含む、所望の機能を有する抗体を得る方法
とを含む。

ここでは、本発明は単なる例として図面を参照しながら記述する。

（実施例１）
固相化精製マウス共刺激分子上でのパンニング
ウサギにマウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質を３週間間隔で４回皮下注射して免疫化し、末梢血液Ｂ細胞をＬｙｍｐｈｏｃｙｔｅ−ＲａｂｂｉｔＣＬ−５０５０（ＣｅｄａｒｌａｎｅＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）の単核球画分中で調製した。

ＥＬＩＳＡプレートを７０％エタノールで滅菌し、滅菌ＰＢＳで３回洗浄し、４℃で一晩風乾してから２μｇ／ｍｌのマウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質で被覆した。プレートを滅菌ＰＢＳで３回洗浄し、ＰＢＳ−１０％ＦＣＳで１時間ブロックし、次にＰＢＳで１回洗浄した。免疫動物の末梢血液単核球画分から得た細胞を、０．２ｍｌ血液／プレート（３００細胞／ウェル）及び１ｍｌ血液／プレート（１５００細胞／ウェル）と等価な量で加え、３７℃で１時間、結合させた。培地で多数回洗浄（１０回）して、無関係の抗体を発現している単核球及びＢ細胞を除去した後、特異的抗体を発現している残存Ｂ細胞を、被覆抗原、Ｔ細胞馴化培地（３％）、及びＥＬ−４細胞（５×１０^４／ウェル）の存在下で７日間培養した。

６００ｎｍでのＯＤを測定することにより結合された抗体の有無を明らかにするため、ヤギ抗ラットＦｃ−ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合体を用いて、固相化マウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質に対する結合について培養上清中に分泌された抗体をＥＬＩＳＡで試験した。ブロックしたウェルでのみパンニングを実施した培養物から採取した上清は、抗原を結合しなかった（７〜１２列）。ウェルの約３９％では、プレート当たり０．２ｍｌの血液の等価物から得たＢ細胞により特異的濃縮が起こり、特異的抗体を含有し（図１）、ウェルの約８９％では、プレート当たり１ｍｌの血液の等価物から、陽性であった（図２）。

マウス共刺激分子固相でのパンニングから得たウェルのＰＣＲ
以下のウェルを、さらに処理するために選択した。即ち、０．２ｍｌに等価な血液プレートから得たＡ２、Ｅ３、Ｆ２、及びＧ６、並びに、１．０ｍｌに等価な血液プレートから得たＤ６、Ｆ４、Ｇ３、及びＨ６（それぞれ１〜８の番号を付与した）。細胞培養プレートを−８０℃のフリーザーから取り出し、１００μｌの温かい培地（１〜６％Ｔ細胞馴化培地を含むＤＭＥＭ又はＲＰＭＩ）を数回変え、穏やかに上下にピペッティングすることによってウェルを解凍した。細胞懸濁液を滅菌エッペンドルフ管に加え、次に、卓上型遠心分離機において２０００ｒｐｍで１分間遠心し、１８０°回転させ、もう一度遠心した（これは、堅い沈殿物の形成に役立つ）。上清を取り除き、１０μｌの新鮮な培地（１〜６％Ｔ細胞馴化培地を含むＤＭＥＭ又はＲＰＭＩ）に沈殿物を再懸濁した。次に、ＰＣＲ用にこれを２．５μｌの分量４つに分割した。次に、ＭＪＲｅｓｅａｒｃｈＲｏｂｕｓＴＲＴ−ＰＣＲキット（カタログＮｏ．Ｆ−５８０Ｌ）により、抗体の可変領域の遺伝子を単離するために試験管１本につき以下の混合物を使用して、１回目のＲＴ−ＰＣＲを実施した。
μｌ
ＤＥＰＣ水３５．５
１０倍緩衝液５
ｄＮＴＰＳ１
１０％ＮＰ−４０２．５
ＲＮＡａｓｉｎ（Ｐｒｏｍｅｇａ社カタログ＃Ｎ２５１１）０．５
ＲＴ１
ポリメラーゼ２
１回目用プライマーミックス（各プライマー１０μＭ）１
プライマーは、共通リーダー配列及び定常領域配列に基づいた。
ＭｇＣｌ_２１．５
合計体積：５０

ＰＣＲプログラム：
１．５０℃ ３０分
２．９４℃ ２分
３．９４℃ １分
４．５５℃ １分
５．７２℃ １分
６．ステップ３に戻り合計４０サイクル
７．７２℃ ５分
８．４℃ 保管
次に、この反応物の１μｌを用いて、ＫＯＤＨｉＦｉｈｏｔｓｔａｒｔｋｉｔ（Ｎｏｖａｇｅｎ社、カタログＮｏ．７１０８６−３）、及び可変領域を増幅するための特有の制限部位を含むネスティッドプライマーを用いる２回目のＰＣＲ反応に、分離したＶＨ及びＶ_κを供給した。試験管１本につき以下の混合物を調製した。
μｌ
滅菌Ｈ_２Ｏ１７．７５
１０倍ＫＯＤＰＣＲ緩衝液２．５
ＫＯＤＨｉＦｉｈｏｔｓｔａｒｔ０．５
ＮＴＰｓ（２ｍＭ）２．５μｌ
２回目用ＰｒｉｍｅｒＭｉｘ、Ｖｋ又はＶＨ（各プライマー１０ｕＭ）
０．７５
ＭｇＳＯ_４（２５ｍＭ）１
合計体積：２５

ＰＣＲプログラム
ＶＨＶ_κ
１．９６℃ ２分１．９６℃ ２分
２．９６℃ １５秒２．９６℃ １５秒
３．６８℃ ２０秒３．６８℃ ５秒
４．ステップ２に戻る合計４０サイクル４．ステップ２に戻る合計４０サイクル
５．４℃ 保管５．４℃ 保管

２回目のＰＣＲの後、アガロースゲル電気泳動によって断片を調べた（図３）。このゲル写真は、ＰＣＲ産物が処理した８ウェルすべてから生成されたことを示唆した。

ＰＣＲ断片のクローニング
ＱｉａｇｅｎＱｉａｑｕｉｃｋ８ＰＣＲ精製キット（カタログＮｏ．２８１４４）を用いてＰＣＲ断片を精製し、６０μｌの溶出緩衝液中に溶出させた。ＶＨ断片をＸｈｏＩ及びＨｉｎｄＩＩＩで消化し、発現ベクターｐＭＲＲ１４（ヒトγ４ＣＨ１、２及び３を含む哺乳動物の発現構築物）中にクローニングした。Ｖ_κ断片をＢｓｉＷＩ及びＨｉｎｄＩＩＩで消化し、ｐＭＲＲ１０．１（ヒトＣ_κを含む哺乳動物の発現構築物）中にクローニングした。どちらの発現ベクターもＷＯ／０３０９３３２０に記載されている。これにより、ウサギ−ヒトキメラ抗体の重鎖及び軽鎖の遺伝子が形成される。８個のウェルのそれぞれから得た８倍量のＶＨクローン及び８倍量のＶＬクローン（形質転換された個々のコロニーから得たプラスミドＤＮＡ）を配列決定し、ウェル内でアライメントを行った。

ウェル１〜５、７及び８から得たすべての配列は、いくつかの小さなＰＣＲエラーはあったが、同じ抗体の可変領域の遺伝子を示した。即ち、各ウェルはクローンであった。しかし、ウェル６は、どちらの場合も顕著な配列があったが（ＶＨ６．１及びＶ_κ６．１）、３種の異なるＶＨ配列及び３種の異なるＶＬ配列を示した。共通配列を特定し、又、関連クローンの対を、トランスフェクション試薬Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社、カタログＮｏ．１１６６８−０１９）を製造業者のガイドラインに従って使用してＣＨＯ細胞中でウサギ−ヒトキメラＩｇＧを一時発現するのに使用した。ウェル６のＶＨ及びＶＬの対には９つの組合せ（６．１〜６．９）があったことに留意されたい（表１を参照のこと）。

発現された組換えＩｇＧの分析
５日発現させた後、ＣＨＯ培養上清を回収し、ＩｇＧの有無及びマウス共刺激分子を結合するそれらの能力について検定した。

ＩｇＧＥＬＩＳＡのために、２μｇ／ｍ１の抗ヒトＦｃ抗体でプレートを被覆し、次に、室温で１時間、ＰＥＧブロッカー中でブロックした。プレートを３回洗浄した後で、ＩｇＧを含むＣＨＯ培養上清をウェルに加え、室温で１時間インキュベートした。

プレートを再び３回洗浄し、続いてＰＥＧブロッカー中で１：５０００希釈した抗ヒトＦ（ａｂ）_２−ＨＲＰをウェルに加え、室温で１時間インキュベートした。洗浄後、テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）中でプレートを発色させ、６３０ｎｍでの吸光度を測定した（図４を参照のこと）。

マウス共刺激分子ＥＬＩＳＡのために、２μｇ／ｍ１のマウス共刺激分子でプレートを被覆し、次に、室温で１時間、ＰＥＧブロッカー中でブロックした。プレートを３回洗浄した後で、ＩｇＧを含むＣＨＯ培養上清をウェルに加え、室温で１時間インキュベートした。

プレートを再び３回洗浄し、続いてＰＥＧブロッカー中で１：５０００希釈した抗ヒトＦｃ−ＨＲＰをウェルに加え、室温で１時間インキュベートした。洗浄後、ＴＭＢ中でプレートを発色させ、６３０ｎｍでの吸光度を測定した（図５を参照のこと）。

ウェル１、２、３、５、７、及び８はすべて、マウス共刺激分子に結合する能力を保持した組換えキメラ抗体を産生した。ウェル４は、正確に組み立てられたＩｇＧを全く生じなかった。ウェル６から得たＩｇＧの考え得る９通りの組合せ（３ＶＨ×３ＶＬ）のうち、６通りの組合せが、適切に組み立てられた抗体を産生した。しかし、これらのうちの１組、即ち６．１のみが、マウス共刺激分子に結合できる抗体を産生した。興味深いことに、この組合せは、配列分析で最も顕著であるＶＨ遺伝子及びＶ_κ遺伝子から構成された抗体を生じた。要約すると、固相抗原上のＢ細胞でパンニングした後、８個のウェルのうち７個のウェルからマウス共刺激分子に結合する組換え抗体を単離した。ウェル６の場合でも、クローンではないが、機能性の抗原結合ＩｇＧを回収することができた。

組換えＩｇＧのＢＩＡｃｏｒｅによる親和性測定
抗ヒトＦｃ抗体で被覆した「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」チップ上で、ＣＨＯ培養上清から得た組換えＩｇＧを捕捉した。次に、マウス共刺激分子をチップに加え、親和性を測定した（表２）。この結果から、本発明の方法を使用すると、僅か２枚のマイクロタイタープレートをスクリーニングすることにより、高親和性抗体の一団を直接単離できることが明らかである。

（実施例２）
固相化精製ヒトＩＬ−１７上でのパンニング
ラットにヒトＩＬ−１７を３週間間隔で４回腹腔内注射して免疫化し、脾臓から単一の細胞懸濁液を調製した。

ＥＬＩＳＡプレートを７０％エタノールで滅菌し、滅菌ＰＢＳで３回洗浄し、４℃で一晩風乾してから１．２５μｇ／ｍｌのヒトＩＬ−１７タンパク質で被覆した。プレートを滅菌ＰＢＳで３回洗浄し、ＰＢＳ−１０％ＦＣＳで１時間ブロックし、次にＰＢＳで１回洗浄した。免疫動物から得た脾臓細胞を、ウェル当たり５０，０００個の割合で４枚のプレートに加え、３７℃で１時間、結合させた。培地で多数回洗浄（１０回）して、無関係の抗体を発現している単核球及びＢ細胞を除去した後、特異的抗体を発現している残存Ｂ細胞を、被覆抗原、Ｔ細胞馴化培地（３％）、及びＥＬ−４細胞（５×１０^４／ウェル）の存在下で６日間培養した。

固相化ヒトＩＬ−１７タンパク質に結合する能力について、培養上清中で分泌された抗体を４枚のマイクロタイタープレートにおいてＥＬＩＳＡで試験した（図６Ａ〜Ｄ）。結合されたラット抗体の有無を、ホースラディッシュペルオキシダーゼに結合させたヤギ抗ラットＦｃポリクローナル抗体を用いて明らかにした。ブロックしたウェルでのみパンニングを実施した培養物から採取した上清は、抗原を結合しなかった（プレート４、図６Ｄ、７〜１２列）。ＩＬ−１７の誘導によるＩＬ−６放出の阻害を測定するｉｎｖｉｔｒｏの機能検定で、プレート２（図６Ｂ）から得た培養上清をさらにスクリーニングした。混入物の無い培養上清６０μｌを、ｈＴＮＦ（２．５ｎｇ／ｍｌ−１）を加えたｈＩＬ−１７（２５ｎｇ／ｍｌ−１）６０μｌと共にインキュベートした。これらを共に３０分間インキュベーションし、次に、混合物１００μｌを１００μｌの細胞（検定の２４時間前に０．７５×１０^４細胞／ウェルの密度で播種した３Ｔ３−ＮＩＨ細胞。検定前に新鮮な培地で１回洗浄した）に加えた。これにより、最終希釈倍数は、１：４となる。上清１００μｌを採取した時点から１８時間（３７℃で）プレートをインキュベートし、ｍＩＬ−６の有無についてＥＬＩＳＡにより試験した。標準曲線を用いてｍＩＬ−６の濃度を確認し、所与のウェルの阻害率を計算した。

表３に示す数値は、３Ｔ３繊維芽細胞におけるＩＬ−１７の誘導によるＩＬ−６産生の阻害率である。行Ａ、Ｇ、及びＨは、培養上清が無かったため削除した。７５％以上の阻害物質には表上で色をつけている。

さらに分析し可変領域を単離するために、上位２つのウェル、即ちＣ９及びＤ２を選択した。

逆転写及びＰＣＲ増幅
ＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔＩＩＩ逆転写酵素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）、並びにＣ_Ｈ１、Ｃ_κ、及びＣ_λに特異的なアンチセンスプライマーを用いて、選択した２つのウェルから得た細胞から相補ＤＮＡを直接合成した。反応混合物にＮＰ−４０（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ社）及びＲＮａｓｉｎ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を補充し、５０℃で６０分間合成を行った後、７０℃で１５分間、変性ステップを行った。

次に、Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社のＴａｑＰｌｕｓＰｒｅｃｉｓｉｏｎＰＣＲシステムを使用し、５０μＭの各ｄＮＴＰ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）、並びに各抗体鎖の既知の可変領域ファミリー及び定常領域に対して特異的なプライマーを補充して、ｃＤＮＡを増幅した（９４℃ ３分、９４℃ ３０秒、５０℃ ３０秒、７２℃ １分を４０サイクル；最終伸長ステップ７２℃ ５分）。Ｖ_Ｈ、Ｖ_κ及びＶ_λ鎖の増幅には別々の試験管を使用し、各試験管は、各ウェルから得たパンニング済みのリンパ球細胞から生成されたｃＤＮＡの１０分の１を含んでいた。

ＰＣＲ産物をさらに増幅し、又、後続のクローニングのための制限酵素部位を導入するために、セミネスティッドＰＣＲを実施した。１回目のＰＣＲ反応物５０μｌのそれぞれから１μｌを、適切な制限酵素部位を加えた以外は１回目のプライマーと同種のプライマーを含む試験管に移した。再度、ＴａｑＰｌｕｓＰｒｅｃｉｓｉｏｎＰＣＲシステムを使用した。ただし、サイクルの条件は変更した（９４℃ ３分、９４℃ ３０秒、５５℃ ３０秒、７２℃ １分を４０サイクル；最終伸長ステップ７２℃ ５分）。

ＰＣＲ産物を２％アガロースゲル中で電気泳動させ、予測サイズのバンドを分離させた。次に、断片を消化し（Ｖ_Ｈ−ＨｉｎｄＩＩＩ−ＸｈｏＩ；Ｖ_κ及びＶ_λ−ＨｉｎｄＩＩＩ−ＢｓｉＷＩ）、精製し、発現ベクターｐＭＲＲ１４（Ｖ_Ｈ）及びｐＭＲＲ１０．ｌ（Ｖ_κ及びＶ_λ）中の対応する部位に連結した。

クローン化したＶ_Ｈ及びＶ_κの分析により、双方のウェルから得られた配列がクローンであることが示された。実施例１で記述したように、ＣＨＯ細胞において双方のクローンの一時発現を行った。Ｄ２から得られた組換え抗体は、初期のヒト線維芽細胞からのＩＬ−１７の媒介によるＩＬ−６産生を阻害することが示された（図７）。

「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」データ
抗Ｆａｂ抗体で被覆した「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」チップ上で、ＣＨＯ培養上清から得た組換えＩｇＧを捕捉し、ＩＬ−１７を液相に移し、親和性を測定した（表４）。どちらのクローンも高い親和性を示した。この実施例はさらに、本発明の方法を使用することにより、この場合ではただ１枚のマイクロタイタープレートから、高親和性抗体の一団を直接且つ簡単に得ることができることを実証している。

（実施例３）
細胞で発現される抗原（マウス共刺激分子）上でのパンニング
ウサギにマウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質を３週間間隔で４回皮下注射して免疫化し、末梢血液Ｂ細胞をＬｙｍｐｈｏｃｙｔｅ−ＲａｂｂｉｔＣＬ−５０５０（ＣｅｄａｒｌａｎｅＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）の単核球画分中で調製した。

標的細胞（親チャイニーズハムスター卵巣細胞又はマウス共刺激分子を発現するように遺伝子でトランスフェクトされている細胞のいずれか）を、３×１０^４細胞／ウェルでマイクロタイタープレートのウェル中に播種し一晩培養して、７０％コンフルエントな単層を生成させた。次に、この細胞を８０％メタノールで固定し、ＰＢＳ中１０％ウシ胎児血清でプレートをブロックした。免疫化したウサギから得たＰＢＭＣを、１枚のプレートに血液３ｍｌに等価な量で、別のプレートに血液０．３ｍｌに等価な量で加え、３７℃で２時間放置して結合させた後、多数回洗浄（１０×２００μｌ／ウェル）して、無関係の抗体を発現している単核球及びＢ細胞を除去した。最終回の洗浄後、実施例１のように、ＴＳＮ（３％）及びＥＬ４．Ｂ５細胞（５×１０^４／ウェル）と共に、２００μｌの培地を、特異的抗体を発現している残存Ｂ細胞に加え、細胞を７日間培養した。培養上清中で分泌された抗体を、固相の精製抗原−ＣＤ４融合タンパク質に結合する能力についてＥＬＩＳＡでスクリーニングした。３ｍｌの血液に等価なプレートから得たウェルのうち５０％は陽性であり、０．３ｍｌの血液に等価なプレートからは６％が陽性であった（図８及び９）。トランスフェクトしていないＣＨＯ細胞上でパンニングを実施した培養物から採取した上清は、唯一の例外を除いて、一般に抗原を結合しなかった（７〜１２列）。

８個の陽性ウェルを選択し、抗体の可変領域配列を得るために、実施例１で記述したようにＰＣＲを行った。８個のウェルから得たデータにより、１つのウェルでクローンが得られたことが示された。混合した配列が回収された他のウェルでは、混合物中で顕著な配列を示している配列、及び複数のウェルから得られた同一若しくは極めて類似した配列を、さらに研究を進めるために得た。実施例１で記載したようにして、ＣＨＯ細胞におけるクローンの一時発現及びＥＬＩＳＡを実施した。ＩｇＧ発現を確認した（図１０）。重鎖及び軽鎖の４つの対が、組換え生成物として抗原に結合できることが分かった（図１１）。

「ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）」分析により、クローン３及びクローン７の抗原に対する高親和性が示された。これらの解離速度定数は測定不能で記録されておらず、解離速度が１×１０^６ｓ^−１未満であることを示唆している。クローン２の親和性（Ｋ_Ｄ）は２５４ｐＭ、クローン９の親和性は７ｎＭと測定された。この実施例はさらに、本発明の方法を使用することにより、高親和性抗体の一団を直接且つ簡単に得ることができ、この場合、抗体のうちの２種の解離速度が１×１０^６ｓ^−１未満であることを実証している。

本発明を記述してきたが、これらは単なる例に過ぎず、本発明の範囲及び趣旨の範囲内で改変を行ってよいことが理解されよう。

固相化マウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質に対する、培養上清中に分泌された抗体の結合を示すグラフである。培養物から採取した上清のうち、ブロックしたウェルでのみパンニングを実施したものが、抗原を結合しなかった（列７〜１２）。ウェルの約３９％では、プレート当たり０．２ｍｌの血液の等価物から得たＢ細胞で特異的濃縮が起こっており、特異的抗体を含有していた。固相化マウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質に対する、培養上清中に分泌された抗体の結合を示すグラフである。培養物から採取した上清のうち、ブロックしたウェルでのみパンニングを実施したものが、抗原を結合しなかった（列７〜１２）。ウェルの約８９％では、プレート当たり１ｍｌの血液の等価物から得たＢ細胞で特異的濃縮が起こっており、特異的抗体を含有していた。２回目のＰＣＲ産物のアガロースゲルの写真である。８つの選択した各ウェルについて４種の産物が示された。サンプル１１、３、５、７レーン；サンプル２９、１１、１３、１５レーン；サンプル３２、４、６、８レーン；サンプル４１０、１２、１４、１６レーン；サンプル５１７、１９、２１、２３レーン；サンプル６２５、２７、２９、３１レーン；サンプル７１８、２０、２２、２４レーン；サンプル８２６、２８、３０、３２レーン；ＶＨ（上の列）、Ｖ_κ（下の列）ＣＨＯ上清のＩｇＧＥＬＩＳＡによる結果を示すグラフである。ＣＨＯ上清のマウス共刺激分子ＥＬＩＳＡによる結果を示すグラフである。固相化ヒトＩＬ−１７タンパク質に対する、培養上清中に分泌されていた抗体の結合を、４枚のマイクロタイタープレート（６Ａ〜Ｄ）においてＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すグラフである。ホースラディッシュペルオキシダーゼに結合させたヤギ抗ラットＦｃポリクローナル抗体を用いて、結合されたラット抗体の有無を明らかにした。ブロックしたウェルでのみパンニングを実施した培養物から採取した上清は、抗原を結合しなかった（６Ｄ、列７〜１２）。固相化ヒトＩＬ−１７タンパク質に対する、培養上清中に分泌されていた抗体の結合を、４枚のマイクロタイタープレート（６Ａ〜Ｄ）においてＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すグラフである。ホースラディッシュペルオキシダーゼに結合させたヤギ抗ラットＦｃポリクローナル抗体を用いて、結合されたラット抗体の有無を明らかにした。ブロックしたウェルでのみパンニングを実施した培養物から採取した上清は、抗原を結合しなかった（６Ｄ、列７〜１２）。固相化ヒトＩＬ−１７タンパク質に対する、培養上清中に分泌されていた抗体の結合を、４枚のマイクロタイタープレート（６Ａ〜Ｄ）においてＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すグラフである。ホースラディッシュペルオキシダーゼに結合させたヤギ抗ラットＦｃポリクローナル抗体を用いて、結合されたラット抗体の有無を明らかにした。ブロックしたウェルでのみパンニングを実施した培養物から採取した上清は、抗原を結合しなかった（６Ｄ、列７〜１２）。固相化ヒトＩＬ−１７タンパク質に対する、培養上清中に分泌されていた抗体の結合を、４枚のマイクロタイタープレート（６Ａ〜Ｄ）においてＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すグラフである。ホースラディッシュペルオキシダーゼに結合させたヤギ抗ラットＦｃポリクローナル抗体を用いて、結合されたラット抗体の有無を明らかにした。ブロックしたウェルでのみパンニングを実施した培養物から採取した上清は、抗原を結合しなかった（６Ｄ、列７〜１２）。パンニングにより得たラット抗ヒトＩＬ−１７抗体を組換えカニクイザルＩＬ−１７バイオアッセイした結果を示すグラフである。パンニングにより得たラット抗ヒトＩＬ−１７抗体を組換えヒトＩＬ−１７バイオアッセイした結果を示すグラフである。固相化マウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質に対する、３ｍｌの血液の等価物から得た細胞を加えたプレートの培養上清から得た抗体の結合をＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すグラフである。列７〜１２は、トランスフェクトされていないＣＨＯ細胞を使用していたウェルから得た上清に対応する。固相化マウス共刺激分子−ラットＣＤ４融合タンパク質に対する、０．３ｍｌの血液の等価物から得た細胞を加えたプレートの培養上清から得た抗体の結合をＥＬＩＳＡにより測定した結果を示すグラフである。列７〜１２は、トランスフェクトされていないＣＨＯ細胞を使用していたウェルから得た上清に対応する。ＩｇＧ発現を示すＣＨＯ細胞でのクローンの一時発現をＥＬＩＳＡにより分析した結果を示すグラフである。マウス共刺激分子への結合を示すＣＨＯ細胞でのクローンの一時発現をＥＬＩＳＡにより分析した結果を示すグラフである。本発明に記載のパンニングのプロトコルを示す図である。

Claims

ａ）Ｂ細胞集団を捕捉剤に接触させるステップと、
ｂ）捕捉されたＢ細胞を捕捉されていないＢ細胞から分離するステップと、
ｃ）捕捉された複数のＢ細胞であって、培養の直前には一様なＢ細胞に選別されていない複数のＢ細胞を培養するステップと、
ｄ）複数の培養細胞をスクリーニングして、所望の機能を有する抗体を産生することができる細胞を同定するステップと、
ｅ）それらから所望の抗体を得るステップ
とを含む、所望の機能を有する抗体を得る方法。
前記分離ステップがパンニングであり、前記捕捉された細胞をパンニング後に直接培養する、請求項１に記載の方法。
前記分離ステップがＦＡＣＳによる細胞選別であり、前記細胞を培養前にプールする、請求項１に記載の方法。
前記Ｂ細胞を捕捉するのにビーズを使用し、前記捕捉された細胞を培養前にプールする、請求項１に記載の方法。
前記捕捉剤が抗原である、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
一連の単位容器を用いてパンニングを実施することにより、前記捕捉された細胞を前記単位容器中に保持し、続いてその中で培養する請求項２に記載の方法。
一連の単位容器中に前記細胞を播種し、その中で培養する方法であって、少なくとも２個の細胞を各単位容器中に播種する、請求項３又は４に記載の方法。
前記単位容器にそれぞれ５〜５０個の細胞を播種する、請求項７に記載の方法。
ステップｃ）が、目的抗原の存在下で細胞を培養することを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
ステップｃ）が、クローン増殖に適した条件下で細胞を培養することを含む、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
単位容器中で前記捕捉された細胞を培養し、ステップｄ）が、単位容器（複数を含む）中に存在する培養上清をスクリーニングすることにより、所望の機能を有する抗体を産生する細胞の存在について少なくとも１つの前記単位容器を検定することを含むことを要求する、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
検定を実施して、目的抗原に対して高親和性の抗体を産生する細胞の存在に関して陽性である単位容器を特定する、請求項１１に記載の方法。
単位容器中で前記捕捉された細胞を培養し、ステップｅ）において、その内容物がクローンである１つの単位容器から所望の抗体を得ることを要求する、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
単位容器中で前記捕捉された細胞を培養し、ステップｅ）において、所望の機能を有する抗体を産生する細胞の存在に関して陽性と特定される単位容器から、前記単位容器中に存在する細胞又はその子孫細胞を培養することによって、前記抗体を得ることを要求する、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
単位容器中で前記捕捉された細胞を培養し、ステップｅ）において、所望の機能を有する抗体を産生する細胞の存在に関して陽性と特定される１つの単位容器から、抗体又はその構成部分をコードする遺伝子（複数）を単離し、それら（又はそれらの改変型）を宿主細胞中で発現させることによって、前記抗体を得ることを要求する、請求項１から１３までのいずれか一項に記載の方法。
前記抗体又はその構成部分をコードする遺伝子（複数）の単離が、前記抗体又はその構成部分をコードする遺伝子（複数）を増幅することを含む、請求項１５に記載の方法。
増幅を、前記所望の機能を有する抗体を産生する細胞の有無に関して陽性と特定される１つの単位容器中に存在している、細胞又はその子孫細胞に対して直接行う、請求項１６に記載の方法。
増幅の前に核酸の回収ステップがある、請求項１６に記載の方法。
前記所望の機能を有する抗体を産生する細胞の存在に関して陽性と特定される単位容器から得た培養上清を使用して増幅を行う、請求項１６、１７、又は１８に記載の方法。
前記抗体（又はその構成部分）のアミノ酸配列を決定し、それから前記抗体又はその構成部分をコードする核酸配列を推定することによって、前記抗体又はその構成部分をコードする前記遺伝子（複数）を単離する、請求項１５に記載の方法。
前記抗体又はその構成部分をコードする前記遺伝子（複数）を発現前に改変する、請求項１５から２０までのいずれか一項に記載の方法。
前記捕捉剤がＩＬ−１７である、前記請求項のいずれか一項に記載の方法。
前記請求項のいずれか一項に記載の方法によって得られる抗体。
前記抗体が２００ｐＭ、１００ｐＭ、７５ｐＭ、５０ｐＭ、２５ｐＭ、又は１ｐｍｏｌ以下の親和性を有する、請求項２３に記載の抗体。
前記抗体の解離速度（ｏｆｆｒａｔｅ）が１×１０^６ｓ^−１未満である、請求項２４に記載の抗体。
前記抗体が細胞表面で発現される抗原に対する抗体である、請求項２３から２５までのいずれか一項に記載の抗体。
疾患関連抗原に対する抗体である、請求項２３から２６までのいずれか一項に記載の抗体。
請求項２３から２７までのいずれか一項に記載の２種以上の抗体を含む一団。