JP2004527210A - 内皮細胞発現パターンの評価法 - Google Patents

Abstract

腫瘍血管形成をより良く理解するために、内皮細胞（ＥＣ）を単離し、遺伝子発現パターンを評価するための新しい技術が開発された。正常結腸直腸組織および悪性結腸直腸組織に由来するＥＣにからの転写物と、非内皮細胞からの転写物を比較すると、内皮において優勢に発現する１７０個を超える遺伝子が同定された。正常な内皮と腫瘍由来内皮との比較によって、腫瘍関連内皮において特異的に増加していた４６個の遺伝子を含む、７９個の差次的に発現する遺伝子が明らかになった。このグループからの代表的な遺伝子を用いた実験によって、大部分が、原発性の肺癌、乳癌、脳癌、および膵臓癌の内皮、ならびに肝臓の転移病巣において同様に発現していることが証明された。これらの結果は、ヒトにおける新生物内皮および正常内皮が分子レベルで異なり、将来の抗血管新生治療の開発にとって重大な意味があることを証明している。

Description

【０００１】
本願は、２０００年８月２日に出願された米国特許仮出願第６０／２２２，５９９号、２０００年８月１１日に出願された同第６０／２２４，３６０号、および２００１年４月１１日に出願された同第６０／２８２，８５０号の利益を請求する。これらの開示は本明細書にはっきりと組み入れられる。
【０００２】
米国政府は、本研究を支援した米国立衛生研究所助成金番号ＣＡ５７３４５およびＣＡ４３４６０の規定によって本発明において一定の権利を保持する。
【０００３】
発明の技術分野
本発明は血管形成および抗血管形成の分野に関する。特に、本発明は、腫瘍内皮細胞および正常内皮細胞において特徴的に発現する遺伝子に関する。
【０００４】
発明の背景
腫瘍が広範囲に増殖するために血液の供給を必要とすることは、現在、広く認められている。この認識は、腫瘍の脈管構造が潜在的な治療標的になるという考えに基づいて、腫瘍血管形成に関する多くの研究を刺激した。しかしながら、腫瘍内皮についてのいくつかの基本的な問題の答えが依然として出ていない。例えば、腫瘍の血管は同じ組織の正常な血管と質的に異なるのか？腫瘍内皮と、治癒過程にある創傷または血管形成の他の生理学的もしくは病理学的な形態とはどのような関係があるのか？これらの問題の答えは、特異的に血管形成を阻害する新しい治療法の可能性に重大な影響を与える。
【０００５】
治療上および診断上の利益のためにどんな違いでも用いることができるように、正常な脈管構造と比較して腫瘍の脈管構造を特徴付けることが当技術分野において引き続き必要とされている。
【０００６】
遺伝子発現、より正確には遺伝子転写を特徴付けるために使用することができる技術の１つは遺伝子発現の連続的解析（ｓｅｒｉａｌ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）（ＳＡＧＥ）と呼ばれる。簡単に述べると、ＳＡＧＥ法は、発現された遺伝子に対応する短い定義された配列タグ（ＳＡＧＥタグ）の単離および解析に基づいてｍＲＮＡ転写物を迅速に定量的および定性的に解析する方法である。各タグは、転写物の定義された位置からの短いヌクレオチド配列（長さが９〜１７塩基対）である。ＳＡＧＥ法において、タグは、クローニングまたは増幅反応につきものの偏りを小さくするために二量体化される（米国特許第５，６９５，９３７号を参照のこと）。ＳＡＧＥは、稀な配列を検出することができ、それにより多数の配列が一度に評価されるので、脈管構造の刺激または阻害に関連する遺伝子の特徴付けに特に適しており、以前には知られていなかった遺伝子を同定する基礎をもたらすのに特に適している。
【０００７】
発明の概要
本発明の１つの態様は、１、３、９、１７、１９、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む単離された分子を提供する。分子は、例えば、無傷の抗体分子、単鎖可変領域（ＳｃＦｖ）、モノクローナル抗体、ヒト化抗体、またはヒト抗体でもよい。分子は、選択的に、細胞毒性部分に結合していてもよく、治療部分に結合していてもよく、検出可能な部分に結合していてもよく、抗腫瘍剤に結合していてもよい。
【０００８】
本発明の別の態様によれば、血管新生を阻害する方法が提供される。１、３、９、１７、１９、２２、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、２３２、２３８、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む有効量の単離された分子が、血管新生の阻害を必要とする被検体に投与される。その結果、血管新生が阻害される。被検体は、例えば、血管が新生した腫瘍を有してもよく、多発性嚢胞腎を有してもよく、糖尿病性網膜症を有してもよく、慢性関節リウマチを有してもよく、乾癬を有してもよい。
【０００９】
本発明の別の局面は、腫瘍増殖を阻害する方法である。１、３、９、１７、１９、２２、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、２３２、２３８、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む有効量の単離された分子が、腫瘍を有するヒト被検体に投与される。その結果、腫瘍増殖が阻害される。
【００１０】
本発明のさらに別の局面は、３、９、１７、１９、および４４（それぞれ、配列番号：２００、２１２、２３０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む単離された分子を提供する。分子は、例えば、無傷の抗体分子、単鎖可変領域（ＳｃＦｖ）、モノクローナル抗体、ヒト化抗体、またはヒト抗体でもよい。分子は、選択的に、細胞毒性部分に結合していてもよく、治療部分に結合していてもよく、検出可能な部分に結合していてもよく、抗腫瘍剤に結合していてもよい。
【００１１】
本発明のさらに別の局面によれば、単離および精製されたヒト膜貫通タンパク質が提供される。このタンパク質は、ＴＥＭ３、９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２００、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択される。
【００１２】
本発明のさらに別の局面は、ＴＥＭ３、９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２００、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択される膜貫通ＴＥＭのコード配列を含む単離および精製された核酸分子である。単離および精製された核酸分子は、選択的に、配列番号：１９９、２１１、２２９、および２３１に示されるコード配列から選択されるコード配列を含んでもよい。
【００１３】
本発明のさらに別の局面は、核酸分子を含む組換え宿主細胞である。核酸分子は、ＴＥＭ３、９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２００、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択される膜貫通ＴＥＭのコード配列を含む。組換え宿主細胞は、選択的に、配列番号：１９９、２１１、２２９、および２３１に示されるコード配列から選択されるコード配列を含む。
【００１４】
本発明の１つの態様によれば、哺乳動物において免疫応答を誘導する方法が提供される。ＴＥＭ１、３、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通タンパク質のコード配列を含む核酸分子が哺乳動物に投与される。それにより、ヒト膜貫通タンパク質に対する免疫応答が哺乳動物において誘導される。選択的に、コード配列は、配列番号：１９６、２００、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される。
【００１５】
本発明のさらに別の態様によれば、哺乳動物において免疫応答を誘導する方法が提供される。ＴＥＭ１、３、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択される精製されたヒト膜貫通タンパク質が哺乳動物に投与される。それにより、ヒト膜貫通タンパク質に対する免疫応答が哺乳動物において誘導される。
【００１６】
本発明の別の局面は、内皮細胞の調節に関与するリガンドを同定する方法である。試験化合物が、１、３、９、１３、１７、３０、１９、および４４（配列番号：１９６、２００、２１２、２２０、２３０、２３２、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択される単離および精製されたヒト膜貫通タンパク質と接触される。単離および精製されたヒト膜貫通タンパク質はまた、１、３、９、１３、１７、３０、１９、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２２０、２３０、２３２、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子とも接触される。抗体可変領域を含む分子とヒト膜貫通タンパク質との結合が測定される。抗体可変領域を含む分子とヒト膜貫通タンパク質との結合を減少させる試験化合物が、内皮細胞の調節に関与するリガンドとして同定される。
【００１７】
本発明のさらに別の局面は、内皮細胞の調節に関与するリガンドを同定する方法である。試験化合物が、１、３、９、１７、および１９（配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通タンパク質を含む細胞と接触される。この細胞はまた、１、３、９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子とも接触される。抗体可変領域を含む分子と細胞との結合が測定される。抗体可変領域を含む分子と細胞との結合を減少させる試験化合物が、内皮細胞の調節に関与するリガンドとして同定される。
【００１８】
本発明のさらに別の局面は、内皮細胞の調節に関与するリガンドを同定する方法である。試験化合物は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（配列番号：１９６、１９８、２００、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通タンパク質と接触される。試験化合物とヒト膜貫通タンパク質との結合が測定される。タンパク質に結合する試験化合物は、内皮細胞の調節に関与するリガンドとして同定される。
【００１９】
本発明の別の態様は、ＴＥＭ１、３、９、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通タンパク質の可溶型である。可溶型には膜貫通ドメインが無い。可溶型は、ヒト膜貫通タンパク質の細胞外ドメインからなってもよい。
【００２０】
患者における血管新生を阻害する方法も本発明によって提供される。ヒト膜貫通タンパク質の可溶型が患者に投与される。その結果、患者における血管新生が阻害される。患者は、例えば、血管が新生した腫瘍を有してもよく、多発性嚢胞腎を有してもよく、糖尿病性網膜症を有してもよく、慢性関節リウマチを有してもよく、乾癬を有してもよい。
【００２１】
本発明の別の態様は、患者における血管新生を阻害する方法を提供する。ヒト膜貫通タンパク質の可溶型が患者に投与される。その結果、患者における血管新生が阻害される。患者は、例えば、血管が新生した腫瘍を有してもよく、多発性嚢胞腎を有してもよく、糖尿病性網膜症を有してもよく、慢性関節リウマチを有してもよく、乾癬を有してもよい。
【００２２】
本発明のさらに別の局面によれば、患者における血管新生の領域を特定する方法が提供される。１、３、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子が患者に投与される。分子は検出可能な部分に結合している。患者の中で検出可能な部分が検出され、それにより血管新生が特定される。
【００２３】
本発明の別の局面によれば、患者において腫瘍内皮細胞に対する免疫応答を誘導する方法が提供される。１、２、３、９、１３、１７、１９、２２、および３０（配列番号：２９１、２９３、２９９、２９５、３０３、２９７、３０１、３０５、および３０７に示される）からなる群より選択されるマウスＴＥＭタンパク質が、腫瘍内皮細胞に対する免疫応答の誘導を必要とする患者に投与される。その結果、ヒトＴＥＭタンパク質に対する免疫応答が誘導される。
【００２４】
本発明のさらに別の態様は、患者における血管新生をスクリーニングする方法である。患者から集められた体液が、１、３、９、１７、１９、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２００、２１２、２３０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子と接触される。分子を用いた、体液中の交差反応物質の検出が、患者における血管新生を示す。
【００２５】
本発明のさらに別の態様は、患者における血管新生を阻害する方法を提供する。４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む分子が患者に投与される。その結果、患者における血管新生が阻害される。
【００２６】
本発明のさらに別の局面は、患者における血管新生をスクリーニングする方法である。患者から集められた体液が、４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（それぞれ、配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む分子と接触される。分子を用いた、体液中の交差反応物質の検出が、患者における血管新生を示す。
【００２７】
患者における血管新生を促進する方法も本発明によって提供される。４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質が、血管新生を必要とする患者に投与される。その結果、患者における血管新生が刺激される。
【００２８】
本発明の１つの態様は、患者における血管新生を促進する方法を提供する。４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（配列番号：２０１、２０５、２０７、２１３、２１７、２２１および２２２、２３３、２４１、２４３、２５１、２５６、２５８、２６０、２６２、ならびに２６４に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質をコードする核酸分子が、血管新生を必要とする患者に投与される。その結果、ＴＥＭタンパク質が発現され、患者における血管新生が刺激される。
【００２９】
本発明の別の態様は、患者における血管新生をスクリーニングする方法を提供する。４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（それぞれ、配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質が、患者から集められた体液において検出される。ＴＥＭタンパク質の検出は患者における血管新生を示す。
【００３０】
本発明の別の局面は、患者における血管新生をスクリーニングする方法である。４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質をコードする核酸が、患者から集められた体液において検出される。核酸は、配列番号：２０１、２０５、２０７、２１３、２１７、２２１および２２２、２３３、２４１、２４３、２５１、２５６、２５８、２６０、２６２、ならびに２６４に示される核酸からなる群より選択される。ＴＥＭタンパク質の検出は患者における血管新生を示す。
【００３１】
本発明のさらに別の態様は、１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択されるＮＥＭタンパク質をコードする単離および精製された核酸分子である。核酸分子は、選択的に、配列番号：２７８、２８２、２８４、および２８８に示されるコード配列を含む。核酸は、組換え宿主細胞において維持されてもよい。
【００３２】
本発明はまた、１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される単離および精製されたＮＥＭタンパク質を提供する。
【００３３】
本発明は、さらに、１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択されるＮＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む単離された分子を提供する。
【００３４】
本発明のさらなる態様は、血管新生を阻害する方法である。１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される有効量のＮＥＭタンパク質が、血管新生の阻害を必要とする被検体に投与される。それにより、血管新生が阻害される。
【００３５】
本発明のなおさらなる方法は、腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法である。１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９５、１９７、１９９、２０１、２０３、２０５、２０７、２０９、２１１、２１３、２１５、２１７、２２１および２２２、２２５、２２７、２２９、２３１、２３３、２３５、２３７、２３９、２４１、２４３、２４５、２４７、２４９、２５１、２５３、２５５、２５６、２５８、２６０、２６２、２６６、２６８、２７０、２７２、ならびに２７４に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭ遺伝子を発現する細胞が、試験化合物と接触される。１つまたはそれ以上のＴＥＭ遺伝子の発現は、細胞のｍＲＮＡと、ｍＲＮＡに相補的な核酸プローブとのハイブリダイゼーションによって測定される。試験化合物が、１つまたはそれ以上のＴＥＭ遺伝子の発現を減少させれば、腫瘍を治療するための候補薬物として同定される。選択的に、細胞は内皮細胞である。または、もしくはさらに、細胞は、１つまたはそれ以上のＴＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞である。発現を増加させる試験化合物は、創傷治癒を促進するための候補として同定することができる。
【００３６】
本発明のさらに別の態様は、腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法である。１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９６、１９８、２００、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質を発現する細胞が、試験化合物と接触される。細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の量が測定される。試験化合物は、細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の量を減少させれば、腫瘍を治療するための候補薬物として同定される。選択的に、細胞は内皮細胞である。または、もしくはさらに、細胞は、１つまたはそれ以上のＴＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞である。または、細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の量を増加させる試験化合物は、創傷治癒を治療するための候補として同定される。
【００３７】
本発明の別の局面によれば、腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法が提供される。１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９６、１９８、２００、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質を発現する細胞が、試験化合物と接触される。細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の活性が測定される。試験化合物は、細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の活性を減少させれば、腫瘍を治療するための候補薬物として同定される。選択的に、細胞は内皮細胞である。または、もしくはさらに、細胞は、１つまたはそれ以上のＴＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞である。選択的に、細胞は内皮細胞である。試験化合物が、細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の活性を増加させれば、創傷治癒を治療するための候補として同定することができる。
【００３８】
本発明のさらなる局面は、腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物を同定する方法である。試験化合物が、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９８、２００、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質をコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞と接触される。細胞の増殖が測定される。細胞の増殖を阻害する試験化合物が、腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物として同定される。細胞の増殖を刺激する試験化合物が、血管新生を促進するための（例えば、創傷治癒において使用するための）候補薬物として同定される。
【００３９】
本発明の別の態様は、腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法を提供する。１４、２２、２３、および３３（それぞれ、配列番号：２７８、２８２、２８４、および２８８に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭ遺伝子を発現する細胞が、試験化合物と接触される。１つまたはそれ以上のＮＥＭ遺伝子の発現は、細胞のｍＲＮＡと、ｍＲＮＡに相補的な核酸プローブとのハイブリダイゼーションによって測定される。試験化合物が、１つまたはそれ以上のＮＥＭ遺伝子の発現を増加させれば、腫瘍を治療するための候補薬物として同定される。選択的に、細胞は内皮細胞である。または、もしくはさらに、細胞は、１つまたはそれ以上のＮＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞である。
【００４０】
本発明の別の局面によれば、腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法が提供される。１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質を発現する細胞が、試験化合物と接触される。細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の量が測定される。試験化合物が、細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の量を増加させれば、腫瘍を治療するための候補薬物として同定される。選択的に、細胞は内皮細胞である。または、もしくはさらに、細胞は、１つまたはそれ以上のＮＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞である。
【００４１】
本発明のさらなる局面は、腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法である。１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質を発現する細胞が、試験化合物と接触される。細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の活性が測定される。試験化合物が、細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の活性を増加させれば、腫瘍を治療するための候補薬物として同定される。選択的に、細胞は内皮細胞である。または、もしくはさらに、細胞は、１つまたはそれ以上のＮＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞である。
【００４２】
本発明のさらに別の態様は、腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物を同定する方法を提供する。試験化合物が、１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質をコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞と接触される。細胞の増殖が測定される。細胞の増殖を刺激する試験化合物は、腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物として同定される。
【００４３】
本発明の別の局面は、内皮細胞を特定する方法である。ＴＥＭ２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、３０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（配列番号：１９８、２００、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）ならびにＮＥＭ１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質またはＮＥＭタンパク質に特異的に結合する１つまたはそれ以上の抗体が、細胞の集団と接触される。抗体に結合した集団内の細胞が検出される。抗体に結合した細胞は内皮細胞として特定される。選択的に、抗体に結合した細胞は、結合しなかった細胞から単離される。
【００４４】
本発明のさらに別の局面は、内皮細胞を特定する方法である。ＴＥＭ２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、３０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（配列番号：１９８、２００、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）ならびにＮＥＭ１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択されるＴＥＭ遺伝子またはＮＥＭ遺伝子核酸配列に相補的な１つまたはそれ以上の核酸ハイブリダイゼーションプローブが、細胞の集団の核酸と接触される。核酸ハイブリダイゼーションプローブに特異的にハイブリダイズした核酸が検出される。核酸が特異的にハイブリダイズした細胞は、内皮細胞として特定される。
【００４５】
本発明のさらに別の態様は、血管新生を阻害する方法である。１、２、３、９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２９１、２９３、２９９、２９５、２９７、および３０１に示される）からなる群より選択されるマウスＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む有効量の単離された分子が、血管新生の阻害を必要とする被検体に投与される。それにより、血管新生が阻害される。被検体は、例えば、マウスでもよく、血管が新生した腫瘍を有してもよく、多発性嚢胞腎を有してもよく、糖尿病性網膜症を有してもよく、慢性関節リウマチを有してもよく、乾癬を有してもよい。
【００４６】
これらの態様および他の態様は本明細書を読めば当業者に明らかであり、血管新生および血管新生を伴う病理学的プロセスまたは血管新生を必要とする病理学的プロセスに関連する検出、診断、治療、および薬物スクリーニングのための試薬および方法を当技術分野にもたらす。
【００４７】
発明の詳細な説明
本発明者らは、正常内皮より腫瘍内皮において非常に高い（１０倍を超える）レベルで発現している４６個のヒト遺伝子、および正常内皮と比較してヒト腫瘍において非常に低いレベルで発現している３３個の遺伝子を同定した。それぞれ、表２および表４を参照のこと。これらの遺伝子の大部分は、培養状態で維持されている内皮細胞（ＥＣ）において発現していないか、または比較的低いレベルで発現していた。さらに、本発明者らは、正常ヒト内皮および腫瘍ヒト内皮の両方で発現している９３個の遺伝子を同定した。興味深いことに、腫瘍内皮遺伝子は、組織起源または器官起源に関係なく試験された全ての腫瘍において発現していた。大部分の腫瘍内皮遺伝子は黄体および創傷でも発現していた。
【００４８】
研究が進むにつれて、本発明者らは、本発明者らの４６個の最初の腫瘍内皮マーカー（ｔｕｍｏｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｍａｒｋｅｒ）を精緻なものにし、分類した。本発明者らはこれらのマーカーをＴＥＭと名付け、本発明者らのＳＡＧＥ解析におけるタグの優勢（ｐｒｅｖａｌｅｎｃｅ）によって通し番号を付け直した。当初、本発明者らは通し番号方式を使用していなかった。本発明者らの通し番号でない方式はＢＳＣ−ＴＥＭと付け直された。本発明者らは、現在、４６個の最初のＳＡＧＥタグの大部分について完全長核酸配列およびタンパク質配列を提供する。公的データベースを通じて配列が得られた場合もあるし、クローニングおよび遺伝子予測ツールの使用によって配列が得られた場合もある。場合によっては、本発明者らは、異なるスプライス異型または既知の多型を有する遺伝子に対応するＳＡＧＥタグを発見した。例えば、一例では、ＳＡＧＥタグＢＳＣ−ＴＥＭ３は、ＢＳＣ−ＴＥＭ７をコードする転写物の選択的スプライシングされた形態にハイブリダイズすることが判明している。これらの２つの転写物によってコードされるタンパク質は同じである。従って、これらは累積的にＴＥＭ７と呼ばれる。相同性検索によって高度に関連する配列ＢＳＣ−ＴＥＭ７Ｒが発見された。現在、このパラログ配列はＴＥＭ３と呼ばれている。優勢の順序によって（ＴＥＭ３を除く）腫瘍内皮マーカーを示す、以下の表２を参照のこと。縦列１は優勢番号を示す。縦列２は最初の名称を示す。縦列３は短いタグを示す。縦列４は長いタグを示す。縦列５はゲンバンクのアクセッション番号を示す。縦列６は、短いタグ、長いタグ、完全長核酸、およびタンパク質の配列識別名を示す。縦列７は機能を説明し、機能は本文中、以下で説明される。

【００４９】
以下に記載の研究は、公平かつ一般的に、ＥＣの最初の最も信頼のおける分子的特徴付けをもたらす。これらの研究は、血管形成についての長年にわたる仮説と直接的な関係がある、いくつかの重要な結論を導いた。第１に、正常内皮よび腫瘍内皮は高度に関連しており、多くの内皮細胞特異的マーカーを共有していることは明らかである。第２に、腫瘍に由来する内皮は同じタイプの正常組織に由来する内皮と質的に異なり、初代内皮培養物とも異なることは同様に明らかである。第３に、これらの遺伝子は、いくつかの異なる組織タイプに由来する腫瘍において特徴的に発現しており、このことは、腫瘍内皮が、概して、正常内皮とは異なることを証明している。第４に、腫瘍内皮において差次的に発現している遺伝子はまた、黄体形成および創傷治癒などの他の血管形成プロセス中にも発現している。従って、腫瘍における新しい血管の形成を「腫瘍の血管形成」ではなく「血管新生」それ自体とみなすことがより適している。この区別は様々な観点から重要であり、腫瘍が、他の生理学的または病理学的なプロセスの間に生成されるシグナルの多く、または基本的に同じシグナルを用いて脈管構造を回復させるという考えと一致している。腫瘍が「治癒していない創傷」に相当するというのは、癌生物学における最も古い考えの１つである。
【００５０】
本明細書で同定された腫瘍内皮マーカー（ＴＥＭ）の多くの性質および正確な生物学的機能は未知である。表２に示した以前に特徴付けられた遺伝子のうち、いくつかの遺伝子が細胞外マトリックス形成または再構築に関与するタンパク質をコードすることは興味深い（ＴＥＭ６、ＴＥＭ６、ＴＥＭ１０、ＴＥＭ７、ＴＥＭ１１、ＴＥＭ１２、ＴＥＭ１４、ＴＥＭ２０、ＴＥＭ２４、ＴＥＭ２５、ＴＥＭ２７、ＴＥＭ３７、ＴＥＭ３８、およびＴＥＭ４０）。細胞外マトリックスの沈着は新しい血管の成長に重要である可能性が高い。最後に、本明細書で同定された内皮特異的転写物の大多数が、新生脈管構造でしか発現していなくても概して内皮にしか発現していなくても、以前に特徴付けられておらず、一部がＥＳＴデータベースにさえ表示されないことは、恐らく、驚くべきことではない。これは、１つには、ＥＳＴデータベースがある特定の組織にかなり偏っていることが原因である可能性があるが、さらに、高度に脈管化した組織でさえも、内皮細胞が依然として集団の中で比較的少ないことが原因である可能性がある。従って、ＳＡＧＥ法の感度は特に適したツールである。
【００５１】
配列および文献の研究によって、ＴＥＭタンパク質ファミリー間で以下の同定を行うことができた。膜貫通領域を含むＴＥＭタンパク質が同定された。これらの膜貫通領域を含むＴＥＭタンパク質として、ＴＥＭ１、ＴＥＭ３、ＴＥＭ９、ＴＥＭ１３、ＴＥＭ１７、ＴＥＭ１９、ＴＥＭ２２、ＴＥＭ３０、およびＴＥＭ４４が挙げられる。分泌型タンパク質であるＴＥＭタンパク質が同定された。これらの分泌型タンパク質として、ＴＥＭ４、ＴＥＭ６、ＴＥＭ７、ＴＥＭ１０、ＴＥＭ１２、ＴＥＭ１４、ＴＥＭ２０、ＴＥＭ２５、ＴＥＭ２７、ＴＥＭ３１、ＴＥＭ３６、ＴＥＭ３７、ＴＥＭ３８、およびＴＥＭ３９が挙げられる。ＨｅｙＬ（ＴＥＭ８）は、１つまたはそれ以上のグループとしてのＴＥＭの調節に関与する可能性のある転写因子である。ＴＥＭ４４のタグに対応するタンパク質は公的データベースにおいて発見されたが、その生物学的機能はまだ割り当てられていない。
【００５２】
ＴＥＭ１は文献においてエンドシアリンと名付けられていた。これは、アミノ酸１−１７にシグナル配列およびアミノ酸６８６−７０８に膜貫通ドメインを有する。従って、ＴＥＭ１は細胞表面タンパク質である。その細胞外ドメインは残基１−６８５にある。エンドシアリンはエンドサイトーシスに関与している可能性がある。このマウスオルソログは、残基１−２１にシグナルペプチドを有すると予測された。
【００５３】
ＴＥＭ２は２６６アミノ酸のデキサメタゾン誘導性ｒａｓ関連タンパク質相同体である。これにはシグナル配列も膜貫通ドメインもない。従って、ＴＥＭ２は細胞表面タンパク質でも分泌型タンパク質でもない。ＴＥＭ２はシグナル伝達において役割を果たす。ＴＥＭ２は、細胞形態形成の変化、増殖、および細胞と細胞外マトリックスとの相互作用を調節する。
【００５４】
ＴＥＭ３（当初、ＴＥＭ７Ｒと名付けられていた）はシグナル配列（残基１−２４または１−３０）および膜貫通ドメイン（残基４５６−４７７）の両方を有する。従って、ＴＥＭ３は細胞表面タンパク質である。このタンパク質の細胞外部分はアミノ酸１−４５５である。ＴＥＭ３は、インテグリン、プレキシン、および接着分子と相同性を有するドメインを有する。ＴＥＭ３は、原形質膜受容体とアクチン細胞骨格をつなぐシグナル伝達経路を制御するＧＴＰアーゼを調節する可能性がある。マウスオルソログにおいて、シグナルペプチドは残基１−３０であると予測された。
【００５５】
ＴＥＭ４はＤＫＫ−３としても知られている。ＴＥＭ４にはシグナル配列（残基１−１６）があり、このことは、ＴＥＭ４が分泌型タンパク質であることを示唆している。ＴＥＭ４はｗｎｔシグナル伝達を調節し、内皮成長のための脈管形成およびｗｎｔ依存性シグナル伝達に関与している可能性がある。ＴＥＭ４はＷｎｔ癌遺伝子阻害因子であり、このような阻害はアッセイ法によって測定することができる。ツジ（Ｔｓｕｊｉ）ら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍ．２６８：２０−４、２０００。
【００５６】
ＴＥＭ５は分泌型タンパク質でも細胞表面タンパク質でもないように思われる。ＴＥＭ５は、Ｇタンパク質−ＧＴＰアーゼシグナル伝達経路の一成分であるように思われる。
【００５７】
ＴＥＭ６はストロメリシン−３／マトリックスメタロプロテイナーゼ１１（ＭＭＰ−１１）としても知られている。ＴＥＭ６には残基１−３１にシグナル配列があるが、膜貫通ドメインはない。ＴＥＭ６は、残基１０８−１０９にシグナルペプチドの選択的スプライス部位を有する。従って、ＴＥＭ６は分泌型タンパク質であるように思われる。ＴＥＭ６は、マトリキシンサブファミリーとしても知られる亜鉛メタロプロテアーゼファミリーに属する。ＴＥＭ６は、ほとんどの浸潤癌において発現している。α１−プロテアーゼ阻害因子はＭＭＰ１１の天然基質である。ＴＥＭ６はコラーゲンなどの細胞外マトリックスタンパク質を分解し、細胞外マトリックスの再構築および細胞移動に関与している。ストロメリシンは、例えば、カゼイン−リソルフィン基質を用いてアッセイすることができる。トルトレラ（Ｔｏｒｔｏｒｅｌｌａ）およびアルナー（Ａｒｎｅｒ）、Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ４６ Ｓｕｐｐ．２：Ｓ１２２−３、１９９７を参照のこと。
【００５８】
ＴＥＭ７は、多くの名前のタンパク質であり、マトリックスメタロプロテイナーゼ２、ゼラチナーゼＡ、および７２ＫＤ ＩＶ型コラゲナーゼとしても知られている。ＴＥＭ７は残基１−２６にシグナル配列を有し、分泌型タンパク質である。ＴＥＭ６と同様に、ＴＥＭ７はマトリキシンサブファミリー（亜鉛メタロプロテイナーゼ）に属する。ＴＥＭ７は、ゼラチンＩ型、コラーゲンＩ、ＩＶ、Ｖ、ＶＩＩ、およびＸ型を切断する。ＴＥＭ７は内皮細胞表面上のインテグリンと結合し、血管浸潤を促進する。ＴＥＭ７は組織再構築に関与する。ＴＥＭ７は、例えば、ザイモグラフィーまたは消光蛍光基質加水分解（ｑｕｅｎｃｈｅｄ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ）を用いてアッセイすることができる。ガルベット（Ｇａｒｂｅｔｔ）、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ ５３：９９−１０６、２０００。α２（Ｉ）コラーゲン切断部位のセプタペプチド類似体を含むメトキシクマリンを用いる、マトリックスメタロプロテイナーゼ蛍光原基質アッセイ法も使用することができる。ブハイド（Ｂｈｉｄｅ）ら、Ｊ．Ｐｅｒｉｏｄｏｎｔｏｌｏｇｙ ７１：６９０−７００、２０００を参照のこと。
【００５９】
ＴＥＭ８はＨＥＹＬタンパク質である。ＴＥＭ８にはシグナル配列も膜貫通ドメインもない。ＴＥＭ８は、ヘアリー（ｈａｉｒｙ）／エンハンサーオブスプリット（Ｅｎｈａｎｃｅｒ ｏｆ ｓｐｌｉｔ）遺伝子に関連している。ＴＥＭ８は、転写因子としての役割を有する核タンパク質である可能性が高い。ＴＥＭ８はノッチ（Ｎｏｔｃｈ）シグナル伝達物質の新しいクラスに属し、血管発生、体形成、および神経発生などの様々な発生プロセスにおいて重要な役割を果たしている。残基６１５および２２０１のＳＮＰにはシトシン塩基がある。ノッチ３の変異はＣＡＤＡＳＩＬ血管障害の根底をなしている。Ｍｅｔｈ Ｄｅｖ ２０００ Ｎｏｖ；９８（１−２）：１７５を参照のこと。
【００６０】
ＴＥＭ９はＧタンパク質共役受容体相同体であり、残基１−２６のシグナル配列および７つの膜貫通ドメインを両方とも有する。従って、ＴＥＭ９は細胞表面タンパク質である。その細胞外領域はアミノ酸１−７６９に存在する。その膜貫通ドメインは残基８１７−８２９（ＴＭ２およびＴＭ３）、残基８９９−９２９（ＴＭ４およびＴＭ５）、ならびに残基１０３４−１０４０（ＴＭ６およびＴＭ７）にある。ＴＥＭ９は、細胞接着タンパク質に特有の細胞外ドメインを有するＧタンパク質共役受容体として働く。そのスプライス異型の１つは可溶性受容体として機能する可能性がある。ＴＥＭ９は、細胞極性および細胞移動を調節する可能性がある。ＴＥＭ９は、ラトロフィリン機能に基づいてエキソサイトーシスに関与する可能性がある。マウスオルソログには、残基１−２９に予測シグナルペプチドがある。
【００６１】
ＴＥＭ１０は、残基１−２２にシグナル配列を有するコラーゲンＩ型α２（ＣＯＬ１Ａ２）である。ＴＥＭ１０は、合成の後に分泌される細胞外マトリックス（ＥＣＭ）タンパク質である。ＴＥＭ１０は、他のＥＣＭタンパク質、ある特定の増殖因子、およびマトリックスメタロプロテアーゼを含む多数のタンパク質と相互作用する。ＴＥＭ１０は内皮管形成の誘導に必要とされ、組織再構築に関与している。Ａで置換するヌクレオチド３２３３での変異は骨形成不全症ＩＶ型と関連している。Ａで置換するヌクレオチド４３２１での変異は野生型表現型を維持する。ヌクレオチド７１５は多型部位である。エーレルス−ダンロー症候群においてヌクレオチド６９５−７４８は欠失されている。他の変異は、特発性骨粗鬆症および非定型マルファン症候群に関連している。ヌクレオチド

での変異が知られている。ポリＡ部位はヌクレオチド４４５０、４５５０、４８８５、および５０８２に位置する。ポリＡシグナルは４４２０−４４２４、４５１５−４５２０、４５２９−４５３４、４８６６−４８７１、５０３２−５０３７、５０５３−５０５８に位置する。ＴＥＭ１０、２０、および４０は同じ遺伝子に由来するが、異なる長さを有する異なるアイソフォームである。
【００６２】
ＴＥＭ１１はナイドジェン／エンタクチンである。ＴＥＭ１１は、残基１−２８にシグナル配列を有する分泌型タンパク質である。ＴＥＭ１１は、基底膜の一成分である細胞外マトリックスタンパク質である。ＴＥＭ１１は、ラミニンおよびコラーゲンＩＶおよび他の細胞外マトリックスタンパク質に結合する。ＴＥＭ１１は毛細血管形成を調節し、組織再構築に関与している。ヌクレオチド４２６５（Ｔ、Ｃ）、４２６７（Ｇ、Ｃ、Ｔ）、および４７３８（Ｔ、Ｇ）に変異が観察されている。ナイドジェンは、星状細胞の形態に及ぼす影響によってアッセイすることができる。グリンプ（Ｇｒｉｍｐｅ）ら、ＧＬＩＡ ２８：１３８−４９、１９９９を参照のこと。
【００６３】
ＴＥＭ１２はコラーゲンＶＩ型α３鎖である。ＴＥＭ１２は残基１−２５にシグナル配列を有する。分泌型タンパク質ＴＥＭ１２は細胞外マトリックスタンパク質である。ＴＥＭ１２はスプライス異型を有する。ＴＥＭ１２は血管内皮下層の主成分であり、組織再構築に関与している。ＴＥＭ１２は血小板の活性化および凝集を調節する。または、スプライシングされるドメインは、ヌクレオチド３４７−９６４、９６５−１５６７、２１５３−３７５２、および４５４１−５０４１に位置する。
【００６４】
ＴＥＭ１３はＴｈｙ−１糖タンパク質としても知られている。ＴＥＭ１３は、シグナル配列（残基１−１９）および膜貫通ドメイン（残基１４３−１５９）を両方とも有する。このタンパク質の変異形態では残基１３１−１６１は除去される。タンパク質の細胞外領域は残基１−１４２または残基１−１３０である。ＴＥＭ１３は、残基１３０に、ＴＥＭ１３を膜に固定するグリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカーを有する。ＴＥＭ１３は、ヒト血清中で可溶型で検出することができる。ＴＥＭ１３は、活性化内皮細胞のマーカー（成人血管形成のマーカーであるが、胚血管形成のマーカーではない）であることが報告されている。血管内皮細胞上のＴＥＭ１３は、可能性のある血管透過モジュレーターとして機能する可能性がある。Ｔｈｙ１に対する抗体は、ＣＤ４＋ＣＤ４５＋細胞およびＣＤ８＋ＣＤ４５＋細胞の分裂促進シグナルであるが、ＣＤ４５−Ｔ細胞では増殖を誘導しない。ピンゲル（Ｐｉｎｇｅｌ）ら、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ６：１６９−７８、１９９４。Ｔｈｙ−１は、このようなシグナルの阻害因子としてアッセイすることができる。
【００６５】
ＴＥＭ１４はシスタチンＳとしても知られている。ＴＥＭ１４は、残基１−２０にシグナル配列および残基１−１４１に細胞外領域を有する分泌型タンパク質である。ＴＥＭ１４はシステインプロテアーゼ阻害因子である。ＴＥＭ１４は、血管形成および組織再構築に関与するシステインプロテアーゼ機能を調節する可能性がある。ＴＥＭ１４はパパイン活性の阻害因子であり、このような阻害はアッセイすることができる。ヒルトケ（Ｈｉｌｔｋｅ）ら、Ｊ．Ｄｅｎｔａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ７８：１４０１−９、１９９９。
【００６６】
ＴＥＭ１５はコラーゲンＩＩＩ型α１（ＣＯＬ３Ａ１）である。ＴＥＭ１５はシグナル配列（残基１−２３）を有し、分泌される。ＩＩＩ型コラーゲンはフォン・ウィルブランド因子に結合する。ＴＥＭ１５は、細胞間接着、増殖、および移動活性に関与している。ヌクレオチド

での変異が観察されている。
【００６７】
ＴＥＭ１６はテンシン相同体であり、これは見かけ上、細胞内タンパク質である。ＴＥＭ１６はスプライス異型またはアイソフォームを有する可能性がある。１７０４アミノ酸を有する一形態には、腫瘍サプレッサータンパク質、ホスファターゼ、およびテンシン相同体（ＰＴＥＮ）に似たＮ末端ドメイン領域がある。テンシンは、アクチンおよびリン酸化タンパク質に結合する焦点結合分子である。これは、シグナル伝達経路と細胞骨格をつなぐ細胞移動に関与している。ＰＴＥＮは腫瘍誘導性の血管形成を調節する。
【００６８】
ＴＥＭ１７（ＢＳＣ−ＴＥＭ７）は、残基１−１８を含むシグナル配列および残基４２７−４４５の膜貫通ドメインを有する。ＴＥＭ１７は、残基１−４２６を含む細胞外領域を有する細胞表面マーカーである。ＴＥＭ１７は、マウスおよび線虫（Ｃ．ｅｌｅｇａｎｓ）の両方において相同体を有する。残基１３７−２４４はナイドジェンと弱い相同性を有する。残基２８０−３４４は、プレキシン、セマフォリン、およびインテグリンβサブユニットに見出されるＰＳＩドメインと相同性を有する。ヌクレオチド１８９３（Ａ、Ｇ）、１９５０（Ｃ、Ｇ）、２０４２（Ａ、Ｇ）、および２２２０（Ｇ、Ａ）に変異が観察されている。マウスＴＥＭ１７において、シグナル配列は残基１−１９を含む。
【００６９】
ＴＥＭ１９は、当初、腫瘍内皮マーカー８（すなわち、ＢＳＣ−ＴＥＭ８）であると報告された。ＴＥＭ１９は、残基１−２７にシグナル配列および残基３２２−３４３に膜貫通ドメインを有する。ＴＥＭ１９は、残基１−３２１に細胞外領域を有する細胞表面タンパク質である。ＴＥＭ１９は、残基４４−２１６にフォン・ウィルブランド因子（ｖＷＦ）Ａドメイン、残基３４−２５３にロイコインテグリンαＤ鎖に見出されるドメイン、および残基４０８−５６０にビンキュリンファミリーのＰＲＡＭ−１またはアダプター分子−１に見出されるドメインを有する。ＴＥＭ１９の機能は接着に関連している。フォン・ウィルブランド因子ドメインは、一般的に、血管プロセスを含む様々な機能に関与している。ＴＥＭ１９は、血管内皮細胞の移動において役割を果たしている可能性がある。マウスオルソログには残基１−２７に予測シグナルペプチドがある。
【００７０】
ＴＥＭ２０はコラーゲンＩ型α２（ＣＯＬ１Ａ２）である。ＴＥＭ２０は残基１−２２にシグナル配列を有し、分泌型細胞外マトリックスタンパク質である。ＴＥＭ２０はインビトロで内皮管形成を誘導し、組織再構築に関与している。ヌクレオチド

に変異が観察されている。
【００７１】
ＴＥＭ２１は、細胞内タンパク質であるフォルミン様タンパク質相同体である。フォルミン関連タンパク質は、Ｒｈｏファミリー低分子量ＧＴＰアーゼ、プロフィリン、および他のアクチン関連タンパク質と相互作用する。フォルミン結合タンパク質は、そのＷＷドメインを用いてＦＨ１ドメインに結合する。ＴＥＭ２１は、残基２２１−４４９にプロリンリッチＦＨ１ドメインを有する。フォルミン関連タンパク質は、形態形成、細胞極性、細胞質分裂、およびアクチン細胞骨格の認識において重要な役割を果たしている。フォルミン関連タンパク質はまた、アポトーシス、細胞接着、および移動を調節する可能性がある。
【００７２】
ＴＥＭ２２は、マクロファージマンノース受容体ファミリーのエンドサイトーシス受容体である。ＴＥＭ２２は、残基１−３０にシグナル配列および残基１４１５−１４３５に膜貫通ドメインを両方とも有し、細胞表面上に存在する。その細胞外ドメインはアミノ酸１−１４１４である。ＴＥＭ２２は可溶型（分泌型）として存在し、阻害因子として作用する可能性がある。ＴＥＭ２２は分泌型ホスホリパーゼＡ２（ｓＰＬＡ２）を結合し、ｓＰＬＡ２によって誘発される生物学的応答を媒介する可能性がある。ＴＥＭ２２はｓＰＬＡ２のエンドサイトーシス特性を有し、内皮関連タンパク質のエンドサイトーシスを媒介する可能性がある。ＴＥＭ２２は細胞接着を促進し、細胞間伝達に関与する可能性がある。ヌクレオチド５３８９（Ａ、Ｇ）に変異が観察されている。ＴＥＭ２２は、微生物および宿主由来糖タンパク質の取り込みを媒介する。グロガー（Ｇｒｏｇｅｒ）ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６５：５４２８−３４、２０００。
【００７３】
ＴＥＭ２４は、細胞内タンパク質であるテンシンである。ＴＥＭ２４はアクチンフィラメントに結合する焦点結合分子であり、ホスホチロシン含有タンパク質と相互作用する。ＴＥＭ２４はキナーゼシグナル伝達活性を媒介し、細胞の形質転換を調節する可能性がある。ヌクレオチド２５０２（Ａ、Ｇ）、２６２２（Ａ、Ｇ）、６０２７（Ａ、Ｇ）に変異が観察されている。ＴＥＭ２４はアクチンフィラメントに結合し、ホスホチロシン含有タンパク質と相互作用する。チェン（Ｃｈｅｎ）ら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．３５１ Ｐｔ２：４０３−１１、２０００。ＴＥＭ２４はホスホイノシチド３−キナーゼにも結合する。アウガー（Ａｕｇｅｒ）ら、Ｊ．Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．２７１：２３４５２−７、１９９６。ＴＥＭ２４は核タンパク質ｐ１３０にも結合する。ロー（Ｌｏ）ら、Ｂｉｏｅｓｓａｙｓ １６：８１７−２３、１９９４。
【００７４】
ＴＥＭ２５は、残基１−２２にシグナル配列を有する骨形成タンパク質１（ＢＭＰ−１）である。ＴＥＭ２５は分泌型タンパク質である。少なくとも６つのＢＭＰ−１アイソフォームならびにカルボキシ末端ＣＵＢドメインおよびさらなるＥＧＦドメインを付加するスプライス異型が存在する。ＴＥＭ２５はメタロプロテアーゼ酵素である。ＴＥＭ２５は、コラーゲンＩ、ＩＩ、およびＩＩＩ型ならびに血管プロセスに重要なタンパク質であるラミニン５γ２のＣ末端ペプチドを切断する。ＴＥＭ２５は軟骨形成に関与する。ヌクレオチド３１０６（Ｃ、Ｔ）、３２４８（Ｇ、Ａ）、３３６９（Ｇ、Ａ）に変異が観察されている。ＴＥＭ２５はプロバイグリカンを一箇所切断し、プロペプチドを除去し、組織において見出される成熟形態と同じＮＨ（２）末端を有するバイグリカン分子を生成する。スクット（Ｓｃｔｔ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７５：３０５０４−１１、２０００。ラミニンα３およびγ２短鎖はＴＥＭ２５の基質である。アマノ（Ａｍａｎｏ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７５：２２７２８−３５、２０００。
【００７５】
ＴＥＭ２７は、残基１−２７にシグナル配列を有する分泌型タンパク質Ｓｌｉｔ相同体３として知られている。ＴＥＭ２７は、移動、反発、およびパターン形成に関与する分泌型ガイドタンパク質である。ＴＥＭ２７は「ラウンドアバウト（ｒｏｕｎｄ ａｂｏｕｔ）」受容体（Ｒｏｂｏ受容体）と相互作用する。ＴＥＭ２７は細胞外マトリックス（ＥＣＭ）タンパク質と相互作用し、細胞接着に関与する可能性がある。ヌクレオチド４７７２（Ｃ、Ｔ）に変異が観察されている。
【００７６】
ＴＥＭ２８はマウスナドリン （ニューロン特異的ＧＴＰアーゼ活性化タンパク質）に似ている。ＴＥＭ２８は、ＲｈｏＧＡＰドメインを有する細胞内タンパク質である。ＲｈｏＧＡＰドメインは、ＲｈｏＡ、Ｒａｃ１、およびＣｄｃ４２ ＧＴＰアーゼを活性化する。ＴＥＭ２８は、アクチンフィラメントの再編成およびエキソサイトーシスの促進に関与している。ＴＥＭ２８は細胞シグナル伝達にも関与する可能性がある。ヌクレオチド３９６９（Ａ、Ｃ）に変異が観察されている。
【００７７】
ＴＥＭ２９は、細胞内タンパク質であるプロテインチロシンホスファターゼＩＶＡ型、メンバー３、アイソフォーム１である。ＴＥＭ２９には選択的スプライス異型がある。ＴＥＭ２９はプレニル化プロテインチロシンホスファターゼ（ＰＴＰ）の小さなクラスに属する。ＴＥＭ２９は、プレニル化によって膜に結合することができる。ＰＴＰは細胞シグナル伝達分子であり、様々な細胞プロセスにおいて調節的な役割を果たし、細胞増殖を促進する。ＰＴＰ ＰＲＬ−３はアンギオテンシンＩＩ誘導性シグナル伝達現象を調節する。
【００７８】
ＴＥＭ３０は、シグナル配列（残基１−２８）および膜貫通ドメイン（残基１１４２−１１６４）を両方とも有する細胞表面タンパク質インテグリンα１である。その細胞外領域はアミノ酸１−１１４１を含む。ＴＥＭ３０はラミニンおよびコラーゲンの受容体である。ＴＥＭ３０は様々な接着相互作用を媒介する。ＴＥＭ３０は、微小血管内皮細胞において豊富に発現している。ＴＥＭ３０は内皮細胞増殖および血管新生を刺激する。ＴＥＭ３０はアンギオスタチン産生を調節する可能性がある。ヌクレオチド４１８（Ｃ、Ｔ）に変異が観察されている。ＴＥＭ３０は、線維芽細胞の細胞増殖を促進するＲａｓ／Ｓｈｃ／分裂促進因子活性化プロテインキナーゼ経路を活性化する。ＴＥＭ３０はまた、コラーゲンおよびメタロプロテイナーゼ合成を阻害するように働く。ポジ（Ｐｏｚｚｉ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７：２２０２−７、２０００。
【００７９】
ＴＥＭ３１は、分泌型タンパク質コラーゲンＩＶα１（ＣＯＬ４Ａ１）（残基１−２７）である。ＴＥＭ３１は基底膜の一成分である。ＴＥＭ３１はα３β１インテグリンに結合し、インテグリンを介した細胞接着を促進する。ＩＶ型サブユニットの非コラーゲンドメインは腫瘍の血管形成に関与している。ＴＥＭ３１は組織再構築に関与する。ヌクレオチド４４７０（Ｃ、Ｔ）に変異が観察されている。
【００８０】
ＴＥＭ３３は、ミトコンドリアマトリックスに局在するタンパク質であるメチルマロニルＣｏ−Ａムターゼである。ＴＥＭ３３は、いくつかのアミノ酸、奇数酸の脂肪酸、およびコレステロールを分解してトリカルボン酸回路に向ける。ＴＥＭ３３欠損は、メチルマロン酸尿症（ｍｅｔｈｙｌｍａｌｏｎｉｃ ａｃｉｄｕｒｅａ）と呼ばれる致死性の有機酸代謝障害を引き起こす。ヌクレオチド

に変異が観察されている。ＴＥＭ３３はＬ−メチルマロニルＣｏＡをスクシニルＣｏＡに変換する。この反応は、当技術分野において周知のようにアッセイすることができる。例えば、Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．４１（８ Ｐｔ １）：１１６４−７０、１９９５を参照のこと。
【００８１】
ＴＥＭ３６は、残基１−２３または２４にシグナル配列を有する細胞外マトリックスタンパク質コラーゲンＸＩＩ型α１（ＣＯＬ１２Ａ１）である。ＴＥＭ３６は、フォン・ウィルブランド因子（ｖＷＦ）Ａ型ドメイン、フィブロネクチンＩＩＩ型ドメイン、およびトロンボスポンジンＮ末端様ドメインを有する。ＴＥＭ３６はストレス環境に反応して発現される。ＴＥＭ３６は細胞外マトリックス構造を組織化し、マトリックスの再構築に関与する可能性がある。このタンパク質の２つのアイソフォーム（長い形態および短い形態）が存在する。短い形態にはアミノ酸２５−１１８８、従って、ヌクレオチド７３−３５６４が無い。両形態ともシグナル配列を共有し、従って、分泌される。
【００８２】
ＴＥＭ３７は、残基１−１８にシグナル配列を有する細胞外マトリックス硫酸化プロテオグリカンであるルミカンである。ルミカンは、マトリックス集合に関与するタンパク質（例えば、コラーゲンＩ型およびＶＩ型）と相互作用し、細胞増殖および組織形態形成に関与する。ルミカンは、コラーゲン繊維集合の調節に重要な役割を果たしている。ヌクレオチド１０２１（Ｇ、Ｔ）、１０３５（Ａ、Ｇ）、１２０９（Ａ、Ｇ）、１２５９（Ａ、Ｃ）、１４１８（Ｃ、Ａ）、１５１９（Ｔ、Ａ）に変異が観察されている。ＴＥＭ３７はＴＧＦ−βの結合パートナーである。ＦＡＳＥＢ Ｊ．１５：５５９−６１、２０００を参照のこと。ＴＥＭ３７活性を測定するのに使用することができる１つのアッセイ法は、コラーゲン原繊維形成／沈降アッセイ法である。スベンソン（Ｓｖｅｎｓｓｏｎ）ら、ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ ４７０：１７８−８２、２０００。
【００８３】
ＴＥＭ３８は、残基１−２２にシグナル配列を有する細胞外マトリックスタンパク質コラーゲンＩ型α１（ＣＯＬ１Ａ１）である。Ｉ型コラーゲンは内皮細胞移動および血管新生を促進し、管形成を誘導し、組織再構築に関与する。テロペプチド誘導体が、ある特定の癌タイプの悪性度および浸潤のマーカーとして用いられる。ヌクレオチド

に変異が観察されている。
【００８４】
ＴＥＭ３９はトランスフォーミング成長因子β−３（ＴＧＦ−β３）である。ＴＥＭ３９は残基１−２３にシグナル配列を有する。ＴＥＭ３９は分泌型タンパク質である。ＴＥＭ３９は細胞増殖および分化を調節する。ＴＧＦ−βアイソフォームは血管修復プロセスおよび再構築において主要な役割を果たしている。ヌクレオチド２０２０（Ｇ、Ｔ）に変異が観察されている。
【００８５】
ＴＥＭ４１はオルファクトメジン様タンパク質に似ている。ＴＥＭ４１は、明らかな予測シグナル配列がないので細胞内タンパク質であるように思われる。オルファクトメジンは、嗅覚上皮の細胞外粘性マトリックスの主要な糖タンパク質である。ＴＥＭ４１は、細胞接着型ドメインを有するラトロフィリン （細胞外領域）と相同性を有する。ＴＥＭ４１は接着機能に関与する可能性がある。
【００８６】
ＴＥＭ４２は、残基４２−６１に膜貫通ドメインを有する細胞表面タンパク質ＭＳＴＰ０３２タンパク質である。ＴＥＭ４２は、その機能が未知であり、他のタンパク質とほとんど相同性を有さない。ヌクレオチド４１８（Ａ、Ｔ）、７２４（Ｃ、Ａ）に変異が観察されている。
【００８７】
ＴＥＭ４４は、残基１２１−１４３および１７６−１９７に２つの予測膜貫通ドメインを有する推定タンパク質ＦＬＪ１１１９０（ＮＭ ０１８３５４）である。残基１４４−１７５は細胞外領域を形成する可能性がある。ＴＥＭ４４の機能は未知であり、他の既知のタンパク質と相同性を有さない。
【００８８】
ＴＥＭ４５は細胞内タンパク質トロポミオシン１（α）である。ＴＥＭ４５はβサブユニットと二量体を形成する。ＴＥＭ４５はアクチン機能に影響を及ぼす。ＴＥＭ４５は、内皮細胞の細胞骨格再編成に関与する可能性がある。ヌクレオチド５０９（Ａ、Ｃ）、６２１（Ａ、Ｃ）、６３５（Ｔ、Ｇ）、６４２（Ｃ、Ｇ）、１０５９（Ｇ、Ｔ）に変異が観察されている。
【００８９】
ＴＥＭ４６は、セプチンファミリーに属するピーナッツ様１タンパク質／セプチン５である。セプチンファミリーのタンパク質は、ＧＴＰおよびホスファチジルイノシトール４，５二リン酸に結合する。セプチンファミリーのタンパク質は、細胞質分裂および細胞分裂を制御するシグナル伝達カスケードに関与する。
【００９０】
ＮＥＭ４は、低分子誘導性サイトカインサブファミリー（ｓｍａｌｌ ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ ｃｙｔｏｋｉｎｅ ｓｕｂｆａｍｉｌｙ）Ａ（ｃｙｓ−ｃｙｓ）の一員であるメンバー１４（ＳＣＹＡ１４）である。ＮＥＭ４は、２つの隣接するシステイン残基を特徴とする分泌型タンパク質である。あるアイソフォームには、アイソフォーム２と比較して内部１６アミノ酸が無い。
【００９１】
ＮＥＭ２２はグアニル酸キナーゼ相互作用タンパク質１（マグイン−１）と相同性を有する。ＮＥＭ２２は膜結合タンパク質である。
【００９２】
ＮＥＭ２３はヒトシグナル伝達リンパ球活性化分子（ＳＬＡＭ）である。ＮＥＭ２３は残基１−２０にシグナル配列を有する。細胞外ドメインは残基２１−２３７に存在する可能性がある。このタンパク質の分泌型アイソフォームが存在する。
【００９３】
ＮＥＭ３３はネトリン４である。ＮＥＭ３３は軸索突起の成長を誘導し、血管発生を促進する。高濃度では、軸索突起の成長は阻害される。
【００９４】
ＥＣは正常組織または腫瘍組織の総細胞のわずかな部分しか相当せず、未分画組織から構築されたライブラリーでは、最も高いレベルで発現されたＥＣ転写物しか表されないと予想される。従って、本研究で説明した遺伝子は、将来、ヒト血管形成の基礎研究および臨床研究のための価値のある手段を提供するはずである。腫瘍内皮マーカー（ＴＥＭ）として同定された遺伝子は、配列番号：９４−１３９、１７３−１７６、１８０−１８６に示されるタグに対応する。正常内皮マーカー（ＮＥＭ）として同定された遺伝子は、配列番号：１４０−１７２に示されるタグに対応する。全内皮マーカー（ＰＥＭ）として同定された（すなわち、腫瘍内皮細胞および正常内皮細胞の両方で発現する）遺伝子は、配列番号：１−９３に示されるタグに対応する。内皮において優勢に発現していると以前に同定された遺伝子は、配列番号：１−６、８、１０−１５に示されるＰＥＭタグに対応する。各クラスのマーカーは、何らかの目的のために区別なく使用することができる。
【００９５】
本発明による単離および精製された核酸は、これらの核酸がヒトゲノムにおいて連結している遺伝子と連結していない核酸である。さらに、単離および精製された核酸は、混合物（例えば、別個の遺伝子に由来する多数の別個の配列を含むライブラリー）に存在しない。しかしながら、単離および精製された核酸は、これらの核酸が天然では隣接していない他の遺伝子（例えば、ベクター配列または他の遺伝子の配列）に連結していてもよい。本明細書で開示されたタグは、タグが作成された方法のために、ＳＡＧＥタグを作成するのに用いられたタギング酵素の最も３’側の制限酵素認識部位の３’配列である。この場合、タグは、ｍＲＮＡに対応するｃＤＮＡ分子における最も３’側のＮｌａＩＩＩ部位の３’である。タグに対応する核酸は、例えば、ＲＮＡ、ｃＤＮＡ、またはゲノムＤＮＡでもよい。このような対応する核酸は、配列同一性を確かめるための配列データベースとの比較によって決定することができる。配列比較は、任意の入手可能な技術（例えば、米国立医学図書館の米国立生物工学情報センターから入手可能なＢＬＡＳＴ）を用いて行うことができる。タグは、タグが得られた遺伝子を同定するために、ゲノムライブラリーまたはｃＤＮＡライブラリーに対するハイブリダイゼーションプローブとして使用することもできる。従って、配列比較もしくはクローニングまたはこれらの方法の組み合わせを用いて、当業者は完全長核酸配列を入手することができる。タグに対応する遺伝子は、コード配列の３’末端または３’非翻訳領域（ＵＴＲ）のタグ配列（タグを作成するのに用いられた制限エンドヌクレアーゼの、ｃＤＮＡにおいて最も３’側の認識部位の３’）を含む。核酸はセンス鎖でもアンチセンス鎖でもよい。核酸およびタンパク質は、配列の詳細な内容と共に本明細書で開示されているが、単一の個体に由来するものでもよい。ヒト集団において生じる対立遺伝子変異体は、このような核酸およびタンパク質の範囲内に含まれる。当業者は、同じ遺伝子またはタンパク質のように対立遺伝子変異体を同定することができる。核酸があれば、当業者は、存在するオープンリーディングフレームを容易に決定し、その結果、オープンリーディングフレームによりコードされるポリペプチドの配列を容易に決定し、当技術分野において周知の技術を用いて、このようなタンパク質を適切な宿主において発現させることができる。このようなポリペプチドを含むタンパク質は、天然に生じるタンパク質、ヒトまたは他の種に由来する他の遺伝子からの外因性配列を含む融合タンパク質、エピトープタグを付けられたポリペプチドなどでもよい。単離および精製されたタンパク質は細胞内にはなく、核酸、脂質などの通常の細胞成分から分離されている。一般的に、タンパク質は、組成物中で最も優勢なタンパク質種を構成する（例えば、存在するタンパク質の５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、または９５％さえも超える）程度まで精製される。
【００９６】
本発明によるタンパク質を用いて、当業者は、そのタンパク質に特異的に結合する抗体を容易に作成することができる。このような抗体はモノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でもよい。抗体は、キメラ抗体、ヒト化抗体、または全てヒトの抗体でもよい。Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆａｂ２、Ｆａｂ’２、および単鎖可変領域を含む、抗体の任意の機能的な断片または誘導体を使用することができる。断片または誘導体は内皮マーカータンパク質に対する結合特異性を保持する限り、使用することができる。ある特定の条件セット下での適切な抗原との結合と無関係の抗原または抗原混合物との結合を比較することによって、抗体の結合特異性を試験することができる。抗体が、無関係の抗原または抗原混合物より少なくとも２倍、５倍、７倍、好ましくは１０倍以上、適切な抗原に結合すれば、特異的であるとみなされる。
【００９７】
このような部分的にヒトの抗体から完全にヒトの抗体を作成する技術は当技術分野において周知であり、任意のこのような技術を使用することができる。１つの特に好ましい態様によれば、完全にヒトの抗体の配列は、ヒト重鎖および軽鎖抗体遺伝子を発現するように操作されたトランスジェニックマウスにおいて作成される。異なるクラスの抗体を産生することができる、このようなトランスジェニックマウスの複数の系統が作成されている。所望の抗体の連続産生用のハイブリドーマ細胞系を作成するために、所望の抗体を産生するトランスジェニックマウスからのＢ細胞を融合することができる。例えば、ニナＤ．ラッセル（Ｎｉｎａ Ｄ．Ｒｕｓｓｅｌ）、ホセＲ．Ｆ．カルバラン（Ｊｏｓｅ Ｒ．Ｆ．Ｃｏｒｖａｌａｎ）、ミカエルＬ．ガロ（Ｍｉｃｈａｅｌ Ｌ．Ｇａｌｌｏ）、Ｃ．ゲオフィレイ・デイビス（Ｃ．Ｇｅｏｆｆｒｅｙ Ｄａｖｉｓ）、リーズアン・ピロフスキー（Ｌｉｉｓｅ−Ａｎｎｅ Ｐｉｒｏｆｓｋｉ）「ヒト免疫グロブリン遺伝子座を有するトランスジェニックマウスによるヒト抗肺炎球菌防御抗体の産生（Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｐｎｅｕｍｏｃｏｃｃａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｂｙ Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ Ｍｉｃｅ ｗｉｔｈ Ｈｕｍａｎ Ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ Ｌｏｃｉ）」Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ Ａｐｒｉｌ ２０００、１８２０−１８２６頁；ミカエルＬ．ガロ、バラジミルＥ．イワノフ（Ｖｌａｄｉｍｉｒ Ｅ．Ｉｖａｎｏｖ）、アヤ・ヤコボビッツ（Ａｙａ Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓ）、およびＣ．ゲオフィレイ・デイビス、「マウスに導入されたヒト免疫グロブリン遺伝子座：ヒト成人に似たＶ（Ｄ）およびＪ遺伝子セグメントの有用性（Ｔｈｅ ｈｕｍａｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｌｏｃｉ ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ ｉｎｔｏ ｍｉｃｅ：Ｖ（Ｄ） ａｎｄ Ｊ ｇｅｎｅ ｓｅｇｍｅｎｔ ｕｓａｇｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈａｔ ｏｆ ａｄｕｌｔ ｈｕｍａｎｓ）」Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ３０：５３４−５４０、２０００；ラリーＬ．グリーン（Ｌａｒｒｙ Ｌ．Ｇｒｅｅｎ）「マウス遺伝子操作を介した抗体操作：異種マウス系統は、治療用ヒトモノクローナル抗体を容易に作成するための媒体である（Ａｎｔｉｂｏｄｙ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｖｉａ ｇｅｎｅｔｉｃ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ｍｏｕｓｅ： ＸｅｎｏＭｏｕｓｅ ｓｔｒａｉｎｓ ａｒｅ ａ ｖｅｈｉｃｌｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｆａｃｉｌｅ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｈｕｍａｎ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）」Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ ２３１ １１−２３、１９９９；ヤンＸ−Ｄ（Ｙａｎｇ Ｘ−Ｄ）、コルバランＪＲＦ（Ｃｏｒｖａｌａｎ ＪＲＦ）、ワンＰ（Ｗａｎｇ Ｐ）、ロイＣＭ−Ｎ（Ｒｏｙ ＣＭ−Ｎ）、およびデイビスＣＧ（Ｄａｖｉｓ ＣＧ）「完全にヒトの抗インターロイキン−８モノクローナル抗体：炎症性疾患状態を治療するための可能性のある治療法（Ｆｕｌｌｙ Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉ−ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−８ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ Ｄｉｓｅａｓｅ Ｓｔａｔｅｓ）」Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ Ｂｉｏｌｏｇｙ ６６巻、４０１−４１０頁（１９９９）；ヤンＸ−Ｄ、ジアＸ−Ｃ（Ｊｉａ Ｘ−Ｃ）、コルバランＪＲＦ、ワンＰ、ＣＧデイビス、およびヤコボビツＡ（Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓ Ａ）「併用化学療法を用いない、上皮増殖因子受容体に対する完全にヒトのモノクローナル抗体による確立された腫瘍の根絶（Ｅｒａｄｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ Ｔｕｍｏｒｓ ｂｙ ａ Ｆｕｌｌｙ Ｈｕｍａｎ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ ｔｏ ｔｈｅ Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｗｉｔｈｏｕｔ Ｃｏｎｃｏｍｉｔａｎｔ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ）」Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ５９巻、６号、ｌ２３６−１２４３頁（１９９９）；ヤコボビツＡ、「ヒトＩｇ遺伝子座を用いて遺伝子操作されたマウス由来の完全にヒトの抗原特異的なモノクローナル抗体の作成および選択（Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ａｎｔｉｇｅｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｆｕｌｌｙ ｈｕｍａｎ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｒｏｍ ｍｉｃｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｗｉｔｈ ｈｕｍａｎ Ｉｇ ｌｏｃｉ）」Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ ３１巻、３３−４２頁（１９９８）；グリーンＬおよびヤコボビツＡ、「ヒト免疫グロブリン酵母人工染色体を用いて再構成されたマウスにおける可変遺伝子複雑性によるＢ細胞発達の調節（Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂ ｃｅｌｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｂｙ ｖａｒｉａｂｌｅ ｇｅｎｅ ｃｏｍｐｌｅｘｉｔｙ ｉｎ ｍｉｃｅ ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅｄ ｗｉｔｈ ｈｕｍａｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｙｅａｓｔ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ）」Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８８巻、３号、４８３−４９５頁（１９９８）；ヤコボビツＡ、「待望の特効薬：トランスジェニックマウス由来の治療用ヒトモノクローナル抗体（Ｔｈｅ ｌｏｎｇ−ａｗａｉｔｅｄ ｍａｇｉｃ ｂｕｌｌｅｔｓ： ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｈｕｍａｎ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｒｏｍ ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ ｍｉｃｅ）」Ｅｘｐ．Ｏｐｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｒｕｇｓ ７（４）巻、６０７−６１４頁（１９９８）；ツダＨ（Ｔｓｕｄａ Ｈ）、メイナードクリーＫ（Ｍａｙｎａｒｄ−Ｃｕｒｒｉｅ Ｋ）、レイドＬ（Ｒｅｉｄ Ｌ）、ヨシダＴ（Ｙｏｓｈｉｄａ Ｔ）、エダムラＫ（Ｅｄａｍｕｒａ Ｋ）、マエダＮ（Ｍａｅｄａ Ｎ）、スミシーズＯ（Ｓｍｉｔｈｉｅｓ Ｏ）、ヤコボビツＡ、「２０３ｂｐレトロトランスポゾン挿入および５５ｋｂ遺伝子標的化欠失によるマウスＨＰＲＴ遺伝子座の不活化：新たなＨＰＲＴ欠損マウス胚性幹細胞系の樹立（Ｉｎａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｏｕｓｅ ＨＰＲＴ ｌｏｃｕｓ ｂｙ ａ ２０３−ｂｐ ｒｅｔｒｏｔｒａｎｓｐｏｓｏｎ ｉｎｓｅｒｔｉｏｎ ａｎｄ ａ ５５−ｋｂ ｇｅｎｅ−ｔａｒｇｅｔｅｄ ｄｅｌｅｔｉｏｎ： ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ｏｆ ｎｅｗ ＨＰＲＴ−Ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ ｍｏｕｓｅ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅｓ）」Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ４２巻、４１３−４２１頁（１９９７）；シェルマンゴールド、Ｒ（Ｓｈｅｒｍａｎ−Ｇｏｌｄ，Ｒ）「モノクローナル抗体：臨床治療薬としての成熟した主流の用途に対する８０年代の特効薬からの進展（Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ｔｈｅ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｆｒｏｍ’８０ｓ Ｍａｇｉｃ Ｂｕｌｌｅｔｓ Ｔｏ Ｍａｔｕｒｅ Ｍａｉｎｓｔｒｅａｍ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ａｓ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）」Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ Ｎｅｗｓ １７巻、１４号（Ａｕｇｕｓｔ １９９７）；メンデツ（Ｍｅｎｄｅｚ Ｍ）、グリーンＬ、コルバランＪ、ジアＸ−Ｃ、メイナードクリーＣ、ヤンＸ−ｄ、ガロＭ、ルイＤ（Ｌｏｕｉｅ Ｄ）、リーＤ（Ｌｅｅ Ｄ）、エリクソンＫ（Ｅｒｉｃｋｓｏｎ Ｋ）、ルナＪ（Ｌｕｎａ Ｊ）、ロイＣ（Ｒｏｙ Ｃ）、アブデラヒムＨ（Ａｂｄｅｒｒａｈｉｍ Ｈ）、キルシェンバウムＦ（Ｋｉｒｓｃｈｅｎｂａｕｍ Ｆ）、ノグチＭ（Ｎｏｇｕｃｈｉ Ｍ）、スミスＤ（Ｓｍｉｔｈ Ｄ）、フクシマＡ（Ｆｕｋｕｓｈｉｍａ Ａ）、ホールズＪ（Ｈａｌｅｓ Ｊ）、フィナーＭ（Ｆｉｎｅｒ Ｍ）、デイビスＣ（Ｄａｖｉｓ Ｃ）、セボＫ（Ｚｓｅｂｏ Ｋ）、ヤコボビツＡ、「メガ塩基のヒト免疫グロブリン遺伝子座の機能的な移植はマウスにおいてヒト抗体反応を繰り返す（Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ ｏｆ ｍｅｇａｂａｓｅ ｈｕｍａｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｌｏｃｉ ｒｅｃａｐｉｔｕｌａｔｅｓ ｈｕｍａｎ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｉｎ ｍｉｃｅ）」Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １５巻、１４６−１５６頁（１９９７）；ヤコボビツＡ、「ヒト免疫グロブリンＹＡＣで遺伝子操作されたマウス：自己免疫治療用の完全にヒトの抗体を作成するための新技術（Ｍｉｃｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｗｉｔｈ ｈｕｍａｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ＹＡＣｓ ： Ａ ｎｅｗ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｆｏｒ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｌｌｙ ｈｕｍａｎ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｏｒ ａｕｔｏｉｍｍｕｎｉｔｙ ｔｈｅｒａｐｙ）」ウェアの実験免疫学ハンドブック、統合免疫系（Ｗｅｉｒ’ｓ Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｎａｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｔｈｅ Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ Ｉｍｍｕｎｅ Ｓｙｓｔｅｍ）」ＩＶ巻、１９４．１−１９４．７頁（１９９６）；ヤコボビツＡ、「トランスジェニックマウスによる完全にヒトの抗体の作成（Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｌｌｙ ｈｕｍａｎ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｂｙ ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ ｍｉｃｅ）」Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ６巻、５号、５６１−５６６頁（１９９５）；メンデツＭ、アブデラヒムＨ、ノグチＭ（Ｎｏｇｕｃｈｉ Ｍ）、デイビッドＮ（Ｄａｖｉｄ Ｎ）、ハーディＭ（Ｈａｒｄｙ Ｍ）、グリーンＬ、ツダＨ（Ｔｓｕｄａ Ｈ）、ヨーストＳ（Ｙｏａｓｔ Ｓ）、メイナードクリーＣ、ガルザＤ（Ｇａｒｚａ Ｄ）、ジェミルＲ（Ｇｅｍｍｉｌｌ Ｒ）、ヤコボビツＡ、クラポルツＳ（Ｋｌａｐｈｏｌｚ Ｓ）「酵母および胚性幹細胞におけるヒト免疫グロブリン遺伝子を含むＹＡＣｓの構造完全性の解析（Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ｏｆ ＹＡＣｓ ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ ｈｕｍａｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｇｅｎｅｓ ｉｎ ｙｅａｓｔ ａｎｄ ｉｎ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）」Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ２６巻、２９４−３０７頁（１９９５）； ヤコボビツＡ、「ＹＡＣベクター：マウスゲノムのヒト化（ＹＡＣ Ｖｅｃｔｏｒｓ： Ｈｕｍａｎｉｚｉｎｇ ｔｈｅ ｍｏｕｓｅ ｇｅｎｏｍｅ）」Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ ４巻、８号、７６１−７６３頁（１９９４）；アルボネスＭ（Ａｒｂｏｎｅｓ Ｍ）、オルドＤ（Ｏｒｄ Ｄ）、レイＫ（Ｌｅｙ Ｋ）、ラテシュＨ（Ｒａｔｅｃｈ Ｈ）、メイナードクリーＫ、オッテンＧ（Ｏｔｔｅｎ Ｇ）、カポンＤ（Ｃａｐｏｎ Ｄ）、テダーＴ（Ｔｅｄｄｅｒ Ｔ）、「リンパ球ホーミングならびにリンパ球ローリングおよび移動がＬ−セレクチン欠損マウスにおいて損なわれている（Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ ｈｏｍｉｎｇ ａｎｄ ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ ｒｏｌｌｉｎｇ ａｎｄ ｍｉｇｒａｔｉｏｎ ａｒｅ ｉｍｐａｉｒｅｄ ｉｎ Ｌ−ｓｅｌｅｃｔｉｎ−ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ ｍｉｃｅ）」Ｉｍｍｕｎｉｔｙ １巻、４号、２４７−２６０頁（１９９４）；グリーンＬ、ハーディＭ、メイナードクリーＫ、ツダＨ、ルイＤ、メンデツＭ、アブデラヒムＨ、ノグチＭ、スミスＤ、ゼン（Ｚｅｎｇ Ｙ）ら、「ヒトＩｇ重鎖および軽鎖ＹＡＣｓで遺伝子操作されたマウスからの抗原特異的ヒトモノクローナル抗体（Ａｎｔｉｇｅｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｈｕｍａｎ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｒｏｍ ｍｉｃｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｗｉｔｈ ｈｕｍａｎ Ｉｇ ｈｅａｖｙ ａｎｄ ｌｉｇｈｔ ｃｈａｉｎ ＹＡＣｓ）」Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ７巻、１号、１３−２１頁（１９９４）；ヤコボビツＡ、ムーアＡ（Ｍｏｏｒｅ Ａ）、グリーンＬ、ベルガラＧ（Ｖｅｒｇａｒａ Ｇ）、メイナードクリーＫ、オースチンＨ（Ａｕｓｔｉｎ Ｈ）、クラポルツＳ、「ヒト由来酵母人工染色体の生殖系列伝達および発現（Ｇｅｒｍ−ｌｉｎｅ ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ａ ｈｕｍａｎ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｙｅａｓｔ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ）」Ｎａｔｕｒｅ ３６２巻、６４１７号、２５５−２５８頁（１９９３）；ヤコボビツＡ、ベルガラＧ、ケネディＪ（Ｋｅｎｎｅｄｙ Ｊ）、ホールズＪ、マクギネスＲ（ＭｃＧｕｉｎｎｅｓｓ Ｒ）、カセンチニボロクツＤ（Ｃａｓｅｎｔｉｎｉ−Ｂｏｒｏｃｚ Ｄ）、ブレナーＤ（Ｂｒｅｎｎｅｒ Ｄ）、オッテンＧ（Ｏｔｔｅｎ Ｇ）、「ホモ接合変異体キメラマウスの解析：免疫グロブリン重鎖結合領域の欠失はＢ細胞発達および抗体産生をブロックする（Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｈｏｍｏｚｙｇｏｕｓ ｍｕｔａｎｔ ｃｈｉｍｅｒｉｃ ｍｉｃｅ： ｄｅｌｅｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｈｅａｖｙ−ｃｈａｉｎ ｊｏｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ ｂｌｏｃｋｓ Ｂ−ｃｅｌｌ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ａｎｄ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ）」Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ＵＳＡ ９０巻、６号、２５５１−２５５５頁（１９９３）；クチェルラパティ（Ｋｕｃｈｅｒｌａｐａｔｉ）ら、米国特許第６，１０７５，１８１号を参照のこと。
【００９８】
抗体はまた、ファージディスプレイ技術を使用して作成することができる。このような技術は、最初の抗体を単離するために、または特異性またはアビディティ特性が変化した異型を作成するために使用することができる。単鎖Ｆｖもまた、使いやすいように使用することができる。抗体は、所望であれば、ワクチン接種されたトランスジェニックマウスから作成することができる。抗体は、細胞培養、ファージ、またはウシ、ウサギ、ヤギ、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ヒツジ、イヌ、ネコ、サル、チンパンジー、類人猿を含むが、これに限定されない様々な動物において生成することができる。
【００９９】
抗体は、放射性原子、発色団、発蛍光団などの検出可能な部分で標識することができる。このような標識された抗体は、インビボでの、または単離された試験試料中での診断技術のために使用することができる。抗体を、例えば、化学療法薬または毒素などの医薬品に結合することもできる。抗体を、サイトカイン、リガンド、別の抗体に連結することができる。抗腫瘍効果を達成するために抗体と結合するのに適した薬剤として、サイトカイン（例えば、インターロイキン２（ＩＬ−２））および腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）；光線力学的療法に使用するための光増感剤（アルミニウム（ＩＩＩ）フタロシアニンテトラスルホネート、ヘマトポルフィリン、およびフタロシアニンを含む）；放射性核種（例えば、ヨウ素−１３１（^１３１Ｉ）、イットリウム−９０（^９０Ｙ）、ビスマス−２１２（^２１２Ｂｉ）、ビスマス−２１３（^２１３Ｂｉ）、テクネチウム−９９ｍ（^９９ｍＴｃ）、レニウム−１８６（^１８６Ｒｅ）、およびレニウム−１８８（^１８８Ｒｅ））；抗生物質（例えば、ドキソルビシン、アドリアマイシン、ダウノルビシン、メトトレキセート、ダウノマイシン、ネオカルチノスタチン、およびカルボプラチン）；細菌毒素、植物毒素、および他の毒素（例えば、ジフテリア毒素、シュードモナスエキソトキシンＡ、ブドウ球菌エンテロトキシンＡ、アブリンＡ毒素、リシンＡ（脱グリコシル化リシンＡおよび未変性のリシンＡ）、ＴＧＦ−α毒素、タイワンコブラ（ｎａｊａ ｎａｊａ ａｔｒａ）細胞毒素、およびゲロニン（植物毒素））；植物、細菌、および菌類に由来するリボソーム不活化タンパク質（例えば、レストリクトシン（アスペルギルス−レストリクツス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｒｅｓｔｒｉｃｔｕｓ）により産生されるリボソーム不活化タンパク質）、サポリン（サボンソウ（Ｓａｐｏｎａｒｉａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ）に由来するリボソーム不活化タンパク質）、およびＲＮアーゼ）；チロシンキナーゼ阻害因子；ｌｙ２０７７０２（二フッ化プリンヌクレオシド）；抗腫瘍剤（例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチド、毒素をコードするプラスミド、メトトレキセートなど）を含むリポソーム；ならびに他の抗体または抗体断片（例えば、Ｆ（ａｂ））が挙げられる。
【０１００】
当業者は、このような抗体誘導体が当技術分野において周知なように、このような抗体誘導体を容易に理解し、作成することができるであろう。抗体は、それ自体で細胞毒性があってもよく、細胞毒性薬剤を体内の特定の位置に送達するのに使用してもよい。抗体は、受動免疫の形として抗体を必要とする個体に投与することができる。
【０１０１】
タンパク質配列から細胞表面タンパク質の細胞外領域および分泌型タンパク質を特徴付けることは、シグナル配列、膜貫通ドメイン、および機能ドメインの予測に基づいている。好ましくは、抗体は、膜結合タンパク質（特に、このようなタンパク質の細胞外ドメイン）または分泌型タンパク質に特異的に免疫反応する。このような標的は抗体に容易に接近することができ、抗体は、一般的に、細胞の内部または核に接近しない。しかしながら、用途によっては、細胞内タンパク質に対する抗体も有用な場合がある。さらに、診断目的のために、全細胞アッセイ法の代わりに細胞溶解産物を使用することがあるので、細胞内タンパク質は同様に優れた標的である場合がある。
【０１０２】
配列が既知のタンパク質の細胞外ドメインを特定するために、コンピュータプログラムを使用することができる。このようなプログラムとして、ＳＭＡＲＴソフトウェア（シュルツ（Ｓｃｈｕｌｔｚ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９５：５８５７−５８６４、１９９８）およびＰｆａｍソフトウェア（ベイトマン（Ｂａｔｅｍａｎ）ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２８：２６３−２６６、２０００）、ならびにＰＳＯＲＴＩＩが挙げられる。一般的に、このようなプログラムは膜貫通ドメインを特定する。細胞外ドメインは膜貫通ドメインのすぐ近くに隣接しているとして特定される。細胞外領域およびシグナル切断部位の予測は概算でしかない。この予測には±５残基の誤差範囲があることがある。高い精度のために３つの異なる方法（ニールセン（Ｎｉｅｌｓｅｎ）ら、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ １０：１−６、１９９７、ジャグラ（Ｊａｇｌａ）ら、Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ １６：２４５−２５０、２０００、ナカイ（Ｎａｋａｉ）、Ｋおよびホルトン（Ｈｏｒｔｏｎ， Ｐ．）Ｔｒｅｎｄｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．２４：３４−３５、１９９９）を用いて、シグナル配列を予測することができる。同様に、複数の予測法によって膜貫通（ＴＭ）ドメインを特定することができる（パスキュール（Ｐａｓｑｕｉｅｒ）ら、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．１２：３８１−３８５、１９９９、ソンハマー（Ｓｏｎｎｈａｍｍｅｒ）ら、Ｉｎ Ｐｒｏｃ． ｏｆ Ｓｉｘｔｈ Ｉｎｔ． Ｃｏｎｆ． ｏｎ Ｉｎｔｅｌｌｉｇｅｎｔ Ｓｙｓｔｅｍｓ ｆｏｒ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、１７５−１８２頁、Ｊ．グラスゴー（Ｊ．Ｇｌａｓｇｏｗ）、Ｔ．リトルジョン（Ｔ．Ｌｉｔｔｌｅｊｏｈｎ）、Ｆ．メジャー（Ｆ．Ｍａｊｏｒ）、Ｒ．ラスロップ（Ｒ．Ｌａｔｈｒｏｐ）、Ｄ．サンコフ（Ｄ．Ｓａｎｋｏｆｆ）、およびＣ．センセン（Ｃ．Ｓｅｎｓｅｎ）編、Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ、ＣＡ：ＡＡＡＩ Ｐｒｅｓｓ、１９９８、クレイン（Ｋｌｅｉｎ）ら、Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ、８１５：４６８、１９８５、ナカイ（Ｎａｋａｉ）およびカネヒサ（Ｋａｎｅｈｉｓａ）Ｇｅｎｏｍｉｃｓ、１４：８９７−９１１、１９９２）。不明瞭な場合、十分に特徴付けられたタンパク質における機能ドメインの位置が、細胞局在を指定するための指標として用いられる。
【０１０３】
新規タンパク質の推定機能または機能ドメインを、ＢＬＡＳＴ検索（アルツシュル（Ａｌｔｓｃｈｕｌ）ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２５：３３８９−３４０２、１９９７）によって特定されたデータベース内の相同領域から、ならびに／または保存ドメインデータベース（例えば、Ｐｆａｍ（ベイトマンら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２７：２６０−２６２、１９９９）、ＢＬＯＣＫＳ（ハインホフ（Ｈｅｎｉｋｏｆｆ）ら、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２８：２２８−２３０、２０００）、およびＳＭＡＲＴ（ポンティング（Ｐｏｎｔｉｎｇ）ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．２７、２２９−２３２、１９９９））から推測することができる。１回膜貫通ドメインタンパク質（アウトインまたはＩ型クラス）では、細胞外ドメインは１つの膜貫通ドメインに隣接した領域を含む。複数回膜貫通ドメインタンパク質の場合は、細胞外ドメインは２つの隣接する膜貫通ドメイン間の領域（インアウトおよびアウトイン）も含む。Ｎ末端領域が細胞質にあるＩＩ型膜貫通ドメインタンパク質の場合は、膜貫通ドメインの後ろの領域は一般的に細胞外にある。他方、分泌型タンパク質には膜貫通ドメインがなく、従って、タンパク質全体が細胞外にあると考えられる。
【０１０４】
膜貫通ドメインを欠失させ、従って、リガンドに結合できる細胞外部分を残すように、膜結合タンパク質を操作することができる。膜貫通受容体タンパク質のこのような可溶型は、リガンドとの結合について天然型と競合させるために使用することができる。従って、このような可溶型は阻害因子として作用し、抗血管形成剤として治療に、天然リガンドを定量するための診断ツールとして、およびＴＥＭ：リガンド複合体活性を調節または模倣する低分子を特定するためのアッセイ法において使用することができる。
【０１０５】
または、内皮マーカーそれ自体が、ワクチン接種される動物またはヒトにおいて免疫応答を惹起するためのワクチンとして使用することができる。このような用途のために、関心対象の細胞内ＴＥＭ、細胞外ＴＥＭ、または分泌型ＴＥＭに対応する、タンパク質またはこのようなタンパク質の免疫原性断片が被検体に投与される。この免疫原性薬剤は精製された調製物として供給されてもよく、適切に発現する細胞内に入った状態で供給されてもよい。投与は、被検体に免疫原性薬剤を送達することによって直接的に行われてもよく、被検体において関心対象の免疫原性薬剤の発現をもたらす条件下で、免疫原性薬剤をコードする核酸を送達することによって間接的に行われてもよい。関心対象のＴＥＭは、発現細胞（例えば、精製された腫瘍内皮細胞集団または融合した腫瘍内皮細胞および樹状細胞の集団）に入った状態で送達されてもよい。関心対象のＴＥＭをコードする核酸は、ウイルス性または非ウイルス性の送達ベクターまたはビヒクルに入った状態で送達されてもよい。ヒト被検体において所望の免疫応答を誘導するために、関心対象のヒトＴＥＭをコードする非ヒト配列または他の哺乳動物相同体を使用することができる。本発明のＴＥＭのいくつかのマウス、ラット、または他のオルソログ配列が本明細書で述べられている。または、オルソログ配列は文献から、もしくは当技術の範囲内の技術を用いて入手することができる。
【０１０６】
内皮細胞特異的であると本明細書で開示されたマーカーを用いて、内皮細胞を特定することができる。これらのマーカーとして、配列番号：１−１７２によって特定されるヒトマーカー（すなわち、正常内皮マーカー、全内皮マーカー、および腫瘍内皮マーカー）が挙げられる。相同なマウスマーカーとして、配列番号：１８２−１８６および１９０−１９４の腫瘍内皮マーカーが挙げられる。このようなマーカーに特異的な抗体と、内皮細胞を含む細胞集団を接触させることによって、このような細胞を特定するために、このような抗体を使用することができる。抗体と交差反応する物質が存在することによって特定の細胞が内皮細胞と特定される。同様に、細胞溶解産物を、交差反応物質が存在するかどうかについて試験することができる。イムノブロット、ラジオイムノアッセイ法、ＥＬＩＳＡ、免疫沈降、および免疫組織化学を含む、交差反応物質を検出するための任意の既知の形式または技術を使用することができる。さらに、内皮細胞を特定するために、これらのマーカーの核酸プローブも使用することができる。ノザンブロッティング、ＲＴ−ＰＣＲ、マイクロアレイハイブリダイゼーション、およびインサイチューハイブリダイゼーションを含む、当技術分野において周知の任意のハイブリダイゼーション技術を使用することができる。
【０１０７】
１つまたはそれ以上のＴＥＭを含むと思われる細胞を試験することによって、診断目的で、腫瘍内皮細胞を特定することができる。被検体の組織および体液を試験することができる。例えば、細胞内ＴＥＭおよび膜結合ＴＥＭならびに分泌型ＴＥＭの証拠があるかどうか患者の血液を試験することができる。細胞内ＴＥＭおよび／または膜結合ＴＥＭは、これらの因子の高レベル発現の結果として、および／またはＴＥＭを発現する細胞の溶解によって体液中に存在してもよい。
【０１０８】
本発明の内皮マーカーに対する抗体を用いて、様々なタイプの内皮細胞の集団を作成することもできる。当技術分野において周知の任意の技術に従って、細胞集団を精製するのに抗体を使用することができる。このような技術として蛍光活性化細胞選別が挙げられるが、これに限定されない。このような技術を用いると、少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９２％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、さらに９９％が所望の内皮細胞タイプである集団の単離が（所望の内皮細胞タイプが正常内皮細胞でも腫瘍内皮細胞でも全内皮細胞でも）可能になる。抗体は、このような集団を正に選択および負に選択するのに使用することができる。好ましくは、適切なマーカーのうちの少なくとも１個、５個、１０個、１５個、２０個、または２５個が内皮細胞集団によって発現される。
【０１０９】
本明細書で記載のように作成された内皮細胞集団は、腫瘍脈管構造成長の阻害による腫瘍増殖の阻害に適した薬物を特定するための薬物のスクリーニングに使用することができる。
【０１１０】
本明細書で説明したように作成された内皮細胞集団は、内皮細胞増殖の阻害（例えば、腫瘍もしくは他の望ましくない脈管構造の成長の阻害）による腫瘍増殖の阻害などの血管形成の調節に適した候補薬物を特定するための候補薬物スクリーニングに、または内皮細胞増殖を促進し、従って、新しいもしくはさらなる大きな血管もしくは微小脈管構造の成長を刺激するための候補薬物スクリーニングに使用することができる。
【０１１１】
内皮細胞増殖の阻害は、正常な系と比較した、処理された系における既に存在している脈管構造の退縮または新たな血管新生の発達の遅れもしくは新たな血管新生が発達しないことを意味する。内皮細胞増殖を刺激することによって、新たな（血管新生）またはさらなる脈管構造の発達（血管再生）に影響を及ぼすことができる。ある特定の候補薬物の血管形成性および／または抗血管形成性を試験するために様々なモデルスクリーニング系を利用することができる。一般的な試験は、ある特定の候補薬物の内皮細胞応答（例えば、増殖、移動、分化、および／または細胞内相互作用）を測定するアッセイ法を含む。このような試験によって、試験刺激のシグナルおよび影響を研究することができる。一般的なスクリーニングの中には、ヘパラナーゼ阻害、マトリゲル（Ｍａｔｒｉｇｅｌ）上での内皮管形成、引っかきにより誘導される内皮細胞の運動性、血小板由来成長因子による血管平滑筋細胞の増殖、およびラット大動脈輪アッセイ法（これは、１つだけの細胞タイプではなく毛細血管が形成する利点をもたらす）の測定を含むものもある。
【０１１２】
腫瘍内皮細胞および／または正常内皮細胞の増殖を模倣または調節、阻害または刺激する能力について、薬物をスクリーニングすることができる。腫瘍内皮の成長を阻害するが、正常内皮の成長または生存を阻害しない能力について、薬物をスクリーニングすることができる。同様に、ヒト細胞集団（例えば、正常内皮集団または腫瘍内皮細胞集団）と試験物質を接触させ、腫瘍内皮マーカーおよび／または正常内皮マーカーの発現を測定することができる。腫瘍内皮マーカー（ＴＥＭ）の発現を減少させる試験物質は腫瘍の血管形成および増殖を阻害するための候補である。逆に、正常内皮にだけ発現し、腫瘍内皮において発現しないマーカー（ＮＥＭ）をモニターすることができる。このようなＮＥＭの発現を腫瘍内皮および他のヒト細胞において増加させる試験物質は、抗腫瘍薬または抗血管形成薬の候補として特定することができる。ＴＥＭまたはＮＥＭの活性が分かっている場合、活性を減少または増加させる能力について薬剤をスクリーニングすることができる。
【０１１３】
膜貫通領域を含むと特定された腫瘍内皮マーカーの場合、細胞表面で見出されるＴＥＭ受容体に結合することができる薬物候補を特定することが望ましい。ある用途について、未変性のリガンドからの、ＴＥＭ受容体をブロックすることができる薬物候補の特定が望ましい。ある用途について、ＴＥＭ受容体に結合することができる薬物候補の特定は、治療薬または診断薬を送達するための手段として使用することができる。他の用途について、未変性のリガンドの活性を模倣することができる薬物候補の特定が望ましい。従って、膜貫通ＴＥＭ受容体：リガンド複合体の結合を操作することによって、内皮細胞のさらなる発達を促進または阻害し、従って、血管新生を促進または阻害することができる可能性がある。
【０１１４】
分泌型タンパク質であると特定された腫瘍内皮マーカーの場合、分泌型ＴＥＭタンパク質に結合することができる薬物候補を特定することが望ましい。ある用途について、分泌型ＴＥＭとその未変性の受容体との結合を妨げることができる薬物候補の特定が望ましい。他の用途について、未変性の受容体の活性を模倣することができる薬物候補の特定が望ましい。従って、分泌型ＴＥＭ：受容体複合体の結合を操作することによって、内皮細胞のさらなる発達を促進または阻害し、従って、血管新生を促進または阻害することができる場合がある。
【０１１５】
任意の簡便な方法に従って、発現をモニターすることができる。タンパク質またはｍＲＮＡをモニターすることができる。特異的な遺伝子発現をモニターするための当技術分野において周知の任意の技術を使用することができる。このような技術として、ＥＬＩＳＡ、ＳＡＧＥ、マイクロアレイハイブリダイゼーション、ウエスタンブロットが挙げられるが、これに限定されない。単一マーカーの発現変化は、潜在的な血管形成促進剤、抗血管形成剤、または抗腫瘍剤としての有意な影響の基準として使用することができる。しかしながら、腫瘍内皮マーカーまたは正常内皮マーカーなどの関連マーカーのうちの少なくとも５個、１０個、１５個、または２０個の発現を調節することができる試験物質をスクリーニングすることが望ましい場合もある。ＴＥＭタンパク質活性の阻害は薬物スクリーニングとして使用することもできる。この目的のために、ヒトおよびマウスのＴＥＭＳを使用することができる。
【０１１６】
スクリーニング用の試験物質は任意の供給源に由来してもよい。試験物質は、天然産物ライブラリー、コンビナトリアル化学物質ライブラリー、組換えライブラリーによって作成された生物学的産物などでもよい。試験物質の供給源は本発明にとって重要でない。本発明は、他のスクリーニング法において以前に見落とされていた可能性のある化合物および組成物をスクリーニングするための手段を提供する。本発明のマーカーの核酸およびコードされる対応タンパク質は様々な形式で治療に使用することができる。ＮＥＭは、腫瘍または他の異常な脈管構造もしくは望ましくない脈管構造の増殖を制限し、小さくし、縮小し、または阻害するのに使用することができる。ＴＥＭは、脈管構造の成長を刺激するために（例えば、創傷治癒のために）、または閉塞した血管を迂回するために使用することができる。核酸およびコードされるタンパク質は当技術分野において周知の任意の手段によって投与することができる。このような方法として、ポリカチオンを含むリポソーム、ナノスフェア、ウイルスベクター、非ウイルスベクターなどを使用する方法が挙げられるが、これに限定されない。適切なウイルスベクターとして、アデノウイルス、レトロウイルス、およびシンドビスウイルスが挙げられる。投与の形式は、非経口投与、静脈内投与、筋肉内投与、腹腔内投与、局所投与、鼻腔内投与、直腸内投与、気管支内投与などを含む当技術分野において周知の任意のものでよい。
【０１１７】
ＴＥＭの特異的な生物学的拮抗薬もまた、治療上の利益を得るために使用することができる。腫瘍または他の異常な脈管構造もしくは望ましくない脈管構造の成長を制限し、阻害し、縮小し、および／または小さくするために、例えば、抗体、ＴＥＭに特異的なＴ細胞、ＴＥＭに対するアンチセンス、およびＴＥＭに特異的なリボザイムを使用することができる。このような拮抗薬は、一般的にこれらのクラスの拮抗薬について当技術分野において周知なように投与することができる。腫瘍増殖を阻害するために、ならびに糖尿病性網膜症、慢性関節リウマチ、乾癬、多発性嚢胞腎（ＰＫＤ）、および病理のために血管形成を必要とする他の疾患を治療するために、抗血管形成性の薬物および薬剤を使用することができる。
【０１１８】
潜在的な抗血管形成化合物もしくは抗腫瘍化合物または抗血管形成療法もしくは抗腫瘍療法を評価するために、ヒトＴＥＭＳに対するマウス対応物をマウス癌モデルまたは細胞系またはインビトロにおいて使用することができる。これらの発現は、効果の表れとしてモニターすることができる。マウスＴＥＭは配列番号：１８２−１８６および１９０−１９４に開示される。マウスＴＥＭは、マウス腫瘍モデルにおいて試験することができる抗体を惹起するための抗原として使用することができる。膜貫通ドメインを有するマウスＴＥＭが、この目的のために特に好ましい。マウスＴＥＭもまた、ヒトオルソログに対してヒトにおいて免疫応答を惹起するためのワクチンとして使用することができる。
【０１１９】
前記の開示は本発明を大まかに説明している。本明細書で開示された全ての参考文献は参照としてはっきりと組み入れられる。以下の特定の実施例を参照することによって、さらに完璧に理解することができる。以下の特定の実施例は例示のためだけに本明細書で示され、本発明の範囲を限定することが意図されない。
【０１２０】
実施例１
結腸直腸癌の脈管構造の視覚化
腫瘍血管形成の問題に取り組むために、ヒト結腸直腸癌の内皮が、これらの癌の発生率が高いこと、増殖が比較的遅いこと、抗新生物薬に対して耐性があることに基づいて選択された。グリア芽細胞腫などの稀に見られる腫瘍タイプが高度に血管化しており、抗血管形成治療の良い標的であると考えられるが、その一方で、ヒト結腸直腸癌および他の一般的な固形腫瘍タイプが増殖するための血管形成の重要性は十分に書類に記録されていない。
【０１２１】
本発明者らは、マーカーとしてフォン・ウィルブランド因子（ｖＷＦ）を使用して結腸直腸癌の血管を染色することから始めた。６個の結腸直腸腫瘍のそれぞれにおいて、この検査は、腫瘍実質全体にわたる高密度の血管を明らかにした（図１ＡおよびＢの例）。興味深いことに、多くの場合、内皮が生細胞の血管周囲カフに囲まれており、周囲に壊死細胞の環がはっきりと分かったので、これらの解析はこれらの血管が腫瘍増殖のために重要であることも実証した（図１Ａの例）。これらの予備研究から結腸腫瘍は血管形成依存性であることが示唆されたが、結腸癌の血管と正常結腸の血管とを区別することができる信頼性の高いマーカーは現在ない。このようなマーカーが存在するかどうかを確かめる１つの方法は、正常組織および新生物組織に由来する内皮における遺伝子発現プロファイルを解析することによる方法である。
【０１２２】
実施例２
内皮細胞の精製
腫瘍内皮および正常内皮における遺伝子発現の包括的な系統立った解析は、少なくとも３つの実験上の障害によって妨げられていた。第１に、内皮は、血管壁成分、ストロマ細胞、および新生物細胞からなる複雑な組織において絡み合っており、このため、解析のためにＥＣを精製する高度な選択手段が必要される。第２に、最近まで、包括的な遺伝子発現プロファイルを明確にするための技術を利用できなった。第３に、腫瘍内で内皮細胞はわずかしかなく、このため、比較的わずかな細胞からの包括的な遺伝子プロファイルの解析に適した方法の開発が必要とされる。
【０１２３】
第１の障害を克服するために、最初に、本発明者らは、ＥＣ精製のために一般的に用いられる内皮マーカーＣＤ３１を用いて、分散されたヒト結腸直腸組織からＥＣを精製することを試みた。これによってＥＣがかなり濃縮されたが、調製物が造血細胞によって汚染もされた（マクロファージによるＣＤ３１の発現が原因である可能性が最も高い）。従って、本発明者らは、最近述べられたＥＣマーカーであるＰ１Ｈ１２を用いてヒト組織からＥＣを精製する新たな方法を開発した。ＣＤ３１と異なり、Ｐ１Ｈ１２は、結腸直腸腫瘍および正常結腸直腸粘膜の両方のＥＣにおいて特異的に発現していた。さらに、既知の細胞表面内皮マーカーパネル（例えば、ＶＥ−カドヘリン、ＣＤ３１、およびＣＤ３４）を用いた正常結腸および結腸癌の免疫蛍光染色によって、Ｐ１Ｈ１２は、微細血管を含む全ての血管を染色したので独特のものであることが明らかになった（図２Ａを参照のこと。データ示さず）。Ｐ１Ｈ１２を用いた選択に加えて、細胞表面タンパク質を破壊することなく隣接するものからＥＣを剥離するのを最適化すること、ならびに抗体カクテルを使用して正および負の親和性精製を使用することが必要であった（図２Ｂ）。正常結腸直腸粘膜および結腸直腸癌から精製されたＥＣは、ＲＴ−ＰＣＲ（図２Ｃ）およびその後の遺伝子発現解析（以下を参照のこと）によって判断されたように上皮細胞および造血細胞を本質的に含まなかった。
【０１２４】
実施例３
腫瘍内皮細胞発現パターンと正常内皮細胞発現パターンの比較
残りの障害を克服するために、ＳＡＧＥ法を改良したものを使用した。ＳＡＧＥでは、個々のｍＲＮＡ転写物と、その３’末端近くの特定の位置に由来する１４塩基対タグを結合させる。各タグの量によって、研究されたｍＲＮＡ集団に存在する転写物レベルの量的尺度が得られる。ＳＡＧＥは既存の発現遺伝子データベースに依存せず、従って、偏りのない遺伝子発現プロファイル図をもたらす。これらの細胞に由来する転写物が、現存するＥＳＴデータベースにおいて十分に示されていることはありそうにもないので、この特徴は、研究中の組織のわずかな部分しか構成しない細胞の解析において特に重要である。本発明者らは、図２Ｂにおいて概説した手順から得られた少数の精製ＥＣに対して使用できるようにＳＡＧＥプロトコールを改良した。結腸直腸癌の精製ＥＣに由来する約１００，０００タグのライブラリーおよび同じ患者からの正常結腸粘膜ＥＣに由来する同様のライブラリーを作成した。これらの約１９３，０００のタグは３２，５００を超える独特の転写物に対応した。造血マーカー、上皮マーカー、および内皮マーカーの発現パターンの調査によって、調製物の純度が確かめられた（図２Ｄ）。
【０１２５】
実施例４
正常内皮マーカーおよび腫瘍内皮マーカー
本発明者らは、次に、全内皮マーカー（ＰＥＭ）（すなわち、他の組織と比較して正常内皮および腫瘍関連内皮の両方で非常に高レベルで発現している転写物）を特定しようとした。このようなＰＥＭを特定するために、腫瘍ＥＣおよび正常ＥＣの両方で同じようなレベルで発現していたタグを、非内皮起源の腫瘍から得られた様々な細胞系に由来する約１８０万のタグと比較した。この単純な比較によって、際立ってＥＣ特異的な（すなわち、非内皮培養細胞と比較してインビボでＥＣにおいて少なくとも２０倍高いレベルで発現している）９３の転写物が特定された。内皮において最も高度かつ特異的に発現していた特徴付けられた遺伝子に対応する１５のタグを表１Ａに示す。これらの１５の最も豊富な内皮転写物のうち１２が、内皮において優勢に発現していると以前に示されているのに対して、他の３つの遺伝子は過去において内皮と関連付けられていなかった（表１Ａ）。これらのデータセットから、タグ発現レベルが減少するにつれてますます優勢になる多くの新規ＰＥＭも明らかになった（表１Ｂ）。これらの転写物の多くについて、その内皮起源が、ヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）およびヒト皮膚微小血管内皮細胞（ＨＭＶＥＣ）の初代培養物から得られた約４０１，０００転写物のＳＡＧＥ解析によって確かめられた（表１ＡおよびＢ）。これらのＰＥＭのインビボでの発現をさらに実証するために、本発明者らは、比較的低レベルで発現する転写物をヒト組織の凍結切片において検出するのを可能にする、高感度非放射性インサイチューハイブリダイゼーション法を開発した。この解析のために、２つの特徴付けられていないマーカーＰＥＭ３およびＰＥＭ６を選択した。どちらの場合でも、高度に特異的な発現は、正常組織および新生物組織の血管ＥＣにはっきりと限定された（図３ＡおよびＢ。データ示さず）。これらのデータは、培養状態で維持されているＥＣが、インビボで観察される発現パターンを完全に繰り返さないことも示唆している。例えば、ヘビン（Ｈｅｖｉｎ）および他のいくつかのＰＥＭはインビボで腫瘍ＥＣおよび正常ＥＣの両方で高レベルで発現していたが、培養ＨＵＶＥＣまたはＨＭＶＥＣにおいて検出される転写物はほとんどないか、または全くなかった（表１）。ヘビン転写物の供給源は、正常結腸直腸組織および悪性結腸直腸組織でのインサイチューハイブリダイゼーションによって内皮であることが確かめられた（図３Ｃ）。
【０１２６】
表１において報告されたマーカーの多くは、ＥＣと一般的に関連している以前に特徴付けられた遺伝子より著しく高いレベルで発現していた。例えば、上位２５のマーカーは全て細胞１個につき２００コピーを超えて発現していた。対照的に、ＶＥＧＦ受容体（ＶＥＧＦＲ−１およびＶＥＧＦＲ−２）は細胞１個につき２０コピー未満で発現していた。興味深いことに、結腸癌進行中に血管において上方制御されると以前に報告されたＶＥＧＦＲ２（ＫＤＲ）は、正常結腸直腸組織および新生物結腸直腸組織の両方で発現することが見出された（図３ＤおよびＥ）。この遺伝子の特異性の欠如は、ＶＥＧＦＲが正常内皮および腫瘍内皮の両方で細胞１個につき１２コピーで発現していることを示したＳＡＧＥデータと一致した。
【０１２７】
実施例５
腫瘍内皮対正常内皮
本発明者らは、次に、正常組織または新生物組織から得られた内皮において差次的に発現している転写物を特定することを試みた。この比較によって、腫瘍由来内皮より少なくとも１０倍高いレベルで正常由来内皮において優勢に発現する３３のタグが明らかになった。逆に、４６のタグが腫瘍血管において１０倍またはそれ以上高いレベルで発現していた。腫瘍内皮において高レベルで発現していた転写物は、診断目的および治療目的で将来有用である可能性が最も高いので、本発明者らの後の研究はこのクラスに焦点を合わせた。最も差次的に発現していた上位２５のタグのうち、１２のタグが、以前に同定されていた１１個の遺伝子（１つは選択的ポリアデニル化部位を有する）に対応する （表２を参照のこと）。これらの１０個の遺伝子のうち、６個は血管形成中の血管と関連するマーカーとして認められている。残りの１４のタグは特徴付けられていない遺伝子に対応し、これらの大部分がＥＳＴとして寄託されているだけであった（表２）。
【０１２８】
これらの遺伝子の発現パターンを実証するために、本発明者らは、ＥＳＴ配列は入手できるが、他の情報は入手できない９つの腫瘍内皮マーカー（ＢＳＣ−ＴＥＭ１−９；ＴＥＭ１、２、５、９、１６、１７、１９、および２２）に焦点を当てることにした（表２）。これらのタグは、リストに載っている最も差次的に発現しているものの中に含まれ、本発明者らが適切なプローブを入手することができたというだけの理由で選択された。多くの場合、これは、複数回の配列決定およびｃＤＮＡウォーキングによって完全長に近い配列を得ることを必要とした（表２のアクセッション番号を参照のこと）。次いで、ＳＡＧＥライブラリーを構築するために用いられた患者とは異なる２人の患者の正常組織および腫瘍組織から得られた精製ＥＣにおける対応する転写物の発現を評価するために、ＲＴ−ＰＣＲ解析が用いられた。図４Ａに示すように、ＳＡＧＥデータならびに以前の研究に基づいて正常内皮および腫瘍内皮の両方で発現していると予想されたｖＷＦ遺伝子は、両患者からの正常ＥＣおよび腫瘍ＥＣにおいてほぼ同じレベルで発現していたが、精製された腫瘍上皮細胞では発現していなかった。予想通り、ＰＥＭ２はｖＷＦと同様のパターンを示した。対照的に、この解析のために選択された９つ全てのＴＥＭは腫瘍ＥＣにおいて顕著に発現していたが、正常ＥＣでは存在しないか、またはほとんど検出することができなかった（表３および図４Ａの例）。これらのＲＴ−ＰＣＲアッセイ法が極端に感度の高い発現指標であったことに留意することは重要であり、正常内皮において検出可能な転写物が存在しないことと、１００倍に希釈した時でさえも腫瘍内皮ＲＮＡにおいて検出可能な転写物が存在することは、これらの差次的な発現の説得力のある確証的な証拠をもたらす。これらの結果から、これらの転写物は、単に、最初の患者のＥＣにおいて差次的に発現していたのではなく、結腸直腸癌内皮の特徴を一般的に示したことも分かる。
【０１２９】
少数の非内皮細胞がＳＡＧＥおよびＲＴ−ＰＣＲ解析に用いられた細胞集団を汚染し、これらの非内皮細胞が、述べられた転写物の発現の顕著な差の原因となった可能性によって、前記の結果を信用できなくなったと論じることができる。この可能性を排除するために、本発明者らは、正常結腸組織および新生物結腸組織においてインサイチューハイブリダイゼーションを行った。転写物を検出することができたどの場合でも（ＢＳＣ−ＴＥＭ１、３、４、５、７、８、および９；ＴＥＭ１、５、９、１７、および１９）、転写物はＥＣに特異的に局在していた（表３ならびに図４ＢおよびＣの例）。負のインサイチューハイブリダイゼーション結果を解釈する時に注意しなければならないが、どのＴＥＭも、ｖＷＦおよびヘビンがはっきりと発現していても正常結腸直腸組織と関連する血管ＥＣにおいて発現していなかった（表３）。
【０１３０】
実施例６
腫瘍内皮マーカーは複数の腫瘍タイプにおいて発現している
これらの転写物は原発結腸直腸癌の内皮において特異的に発現していたのか、または腫瘍内皮の特徴を一般的に示したのか？この問題に取り組むために、本発明者らは、結腸直腸癌からの肝臓転移、肉腫、ならびに肺、膵臓、乳房、および脳の原発腫瘍において、代表的なＴＥＭ（ＢＳＣ−ＴＥＭ７；ＴＥＭ１７）の発現を研究した。図４に示すように、転写物は、転移癌（図４Ｄ）でも原発癌（図４Ｅ−Ｉ）でも、これらの癌のそれぞれの内皮において特異的に発現することが見出された。他の６つのＴＥＭ（ＢＳＣ−ＴＥＭ１、３、４、５、７、８、および９；ＴＥＭ１、５、９、１７、および１９）の解析から、肺腫瘍、脳腫瘍、および肝臓の転移病巣において同様のパターンが明らかになった（表３を参照のこと）。
【０１３１】
実施例７
腫瘍内皮マーカーは血管新生性である
最後に、本発明者らは、これらの転写物が、腫瘍形成に関連する血管形成状態以外の血管形成状態において発現しているかどうかを問うた。従って、本発明者らは、黄体組織ならびに治癒過程にある創傷に対してインサイチューハイブリダイゼーションを行った。例外はあるが、本発明者らは、これらの転写物が、黄体、および治癒過程にある創傷の肉芽組織の両方において一般的に発現していることを発見した（表３および図４Ｊの例）。研究した全ての組織において、遺伝子の発現は存在しないか、またはＥＣ区画にのみ限定された。
【０１３２】
参考文献および注釈
引用された各参考文献の開示は本明細書にはっきりと組み入れられる。

８． 元々のＥＣ単離プロトコールは、分散された細胞が抗Ｐ１Ｈ１２の代わりに抗ＣＤ３１抗体で染色され、ＣＤ６４およびＣＤ１４に対する磁気ビーズが負の選択に含まれなかった以外は図２Ｂに示すプロトコールと同じであった。これらの２つのＥＣ集団から１２０，０００のＳＡＧＥタグを作成した後に、ＳＡＧＥデータの注意深い解析によって、内皮特異的マーカーに加えて、いくつかのマクロファージ特異的マーカーも存在することが明らかになった。

１１． 必要とされる出発物質の最小量を約５０００万個の細胞から約５０，０００個の細胞（すなわち約１／１０００）に減らすために、本発明者らおよび他の人（３８）は元々のＳＡＧＥプロトコールにいくつかの改良点を導入した。本発明者らの改良「マイクロＳＡＧＥ」プロトコールの詳細な説明は、請求すれば著者から入手することができる。
１２． ９６，６９４および９６，５８８のＳＡＧＥタグ（それぞれ、正常なＥＣおよび腫瘍由来ＥＣに由来する）が解析され、５０，２９８の独特のタグを示した。現行のデータセットにおいて、またはヒトトランスクリプトームで以前に同定された１３４，０００個の転写物（３９）において２回以上観察されたタグだけを考慮することによって、３２，７０３の独特の転写物の控えめな見積りが得られた。
１３． 内皮特異的転写物を同定するために、本発明者らは、各グループにおいて解析されるタグの数を１００，０００に標準化し、本発明者らの解析を、非内皮培養細胞系よりＥＣにおいて少なくとも２０倍高いレベルで発現し、非内皮細胞系および造血画分（約５７，０００タグ）（４１）において転写物１００，０００個につき５コピーより少ない数で存在する転写物に限定した。非内皮細胞系は、合計１４個の異なる癌細胞系（結腸癌、乳癌、肺癌、および膵臓癌を含む）ならびに１つの非形質転換ケラチノサイト細胞系、２つの腎臓上皮細胞系、および正常単球から得られた１．８×１０６のタグからなった。ＰＥＭの完全なリストは、ｗｗｗ．ｓａｇｅｎｅｔ．ｏｒｇ／ａｎｇｉｏ／ｔａｂｌｅ．ｈｔｍで入手することができる。

２６． 非放射性インサイチューハイブリダイゼーションのために、ジコキシゲニン（ＤＩＧ）標識センスリボプローブおよびアンチセンスリボプローブを、５００〜６００ｂｐ産物を増幅し、Ｔ７プロモーターをアンチセンスプライマーに組み込むことによってＰＣＲにより作成した。インビトロ転写は、ＤＩＧ ＲＮＡ標識試薬およびＴ７ ＲＮＡポリメラーゼ（ロシュ（Ｒｏｃｈｅ）、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を用いて行った。凍結組織切片を４％パラホルムアルデヒドで固定し、ペプシンで透過化し、２００ｎｇ／ｍｌのリボプローブと５５℃で一晩インキュベートした。シグナル増幅のために、西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）ウサギ抗ＤＩＧ抗体（ダコ（ＤＡＫＯ）、Ｃａｒｐｉｎｔｅｒｉａ、ＣＡ）を使用して、ビオチン−チラミド（Ｇｅｎｐｏｉｎｔキット、ダコ）の沈着を触媒した。さらなる増幅は、ＨＲＰウサギ抗ビオチン（ダコ）、ビオチン−チラミド、次いで、アルカリホスファターゼ（ＡＰ）ウサギ抗ビオチン（ダコ）を添加することによって達成された。シグナルは、ＡＰ基質ファーストレッドＴＲ／ナフトール（ＡＰ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ Ｆａｓｔ Ｒｅｄ ＴＲ／Ｎａｐｔｈｏｌ ＡＳ−ＭＸ）（シグマ（Ｓｉｇｍａ）Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を用いて検出され、細胞は、特に指定のない限りヘマトキシリンで対比染色された。プローブを作成するために用いられたプライマーのリストを含む詳細なプロトコールは、請求すれば著者から入手することができる。
２７． 平均的な細胞が３００，０００個の転写物を含むと仮定して、細胞１個当たりの転写物コピーを計算した。

３１．内皮特異的転写物は、非内皮培養細胞系（１３）よりインビボでＥＣにおいて少なくとも５倍高いレベルで発現し、非内皮細胞系および造血細胞画分（４１）において転写物１００，０００個につきわずか５コピーで存在する転写物と定義された。次いで、統計学的に異なるレベルの発現（Ｐ＜０．０５）を示す転写物が、以前に説明されたように（４０）、モンテカルロ解析を用いて同定された。次いで、正常内皮において優勢に発現する転写物は、腫瘍内皮より正常内皮において少なくとも１０倍高いレベルで発現する転写物と定義された。逆に、腫瘍内皮転写物は、正常内皮と比較して腫瘍において少なくとも１０倍高かった。差次的に発現する遺伝子の完全なリストについては、ｗｗｗ．ｓａｇｅｎｅｔ．ｏｒｇ／ａｎｇｉｏ／ｔａｂｌｅ２．ｈｔｍおよびｗｗｗ．ｓａｇｅｎｅｔ．ｏｒｇ／ａｎｇｉｏ／ｔａｂｌｅ３．ｈｔｍを参照のこと。

４１． ヒト結腸組織は、患者から外科的に取り出された後、３０分以内に入手した。粘膜固有層を完全な状態のままにして、上皮細胞層を、５ｍＭ ＤＤＴ、次いで１０ｍＭ ＥＤＴＡで処理した後にガラススライドを用いて正常組織から剥がした。コラゲナーゼ中で３７℃で２時間インキュベートした後、細胞を、４００μｍ、１００μｍ、５０μｍ、および２５μｍメッシュに連続して通して濾過し、ＲＢＣをペレット化するために、前もって形成した３０％パーコール勾配に通して遠心分離した。上皮細胞（上皮画分）（これは磁気ビーズに非特異的に結合することが分かっている）を、ＢｅｒＥＰ４結合ダイナビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ）（ダイナル（Ｄｙｎａｌ）、Ｌａｋｅ Ｓｕｃｃｅｓｓ、ＮＹ）を用いて除去した。その後、マクロファージおよび他の白血球（造血画分）を、抗ＣＤ４５、抗ＣＤ１４、および抗ＣＤ６４結合ビーズ（ダイナル）のカクテルを用いて除去した。残りの細胞をＰ１Ｈ１２抗体を用いて染色し、抗マウスＩｇＧ結合磁気ビーズを用いて精製し、ｍＲＮＡ溶解緩衝液中で溶解した。詳細なプロトコールは、請求すれば著者から入手することができる。

【表１】

【表２】

【表３】

【表４】

【図面の簡単な説明】
【図１】結腸直腸癌におけるｖＷＦ発現。インサイチューハイブリダイゼーションによってｖＷＦ（赤色の染色）が血管において検出された。低倍率（図１．Ａ）では、多くの場合、血管は生細胞の血管周囲カフに囲まれており（赤色の矢印）、周囲に壊死細胞の環がはっきりと分かった（黒色の矢印）。高倍率（図１．Ｂ）では、ｖＷＦ（赤色）の発現は血管にはっきりと局在していた。切片をメチルグリーンで対比染色した。
【図２】ヒトの正常組織および悪性組織からの内皮細胞（ＥＣ）の精製。（図２Ａ）。凍結切片の血管（赤色）を、Ｐ１Ｈ１２モノクローナル抗体（ケミコン（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ）、Ｔｅｍｅｃｕｌａ、ＣＡ）を用いた免疫蛍光法によって染色し、ビオチン化ヤギ抗マウスＩｇＧ二次抗体、その後にローダミン結合ストレプトアビジンを用いて検出した。染色された領域は、正常な結腸粘膜の粘膜固有層の中からの領域である。大きな血管（矢じり）および毛細血管（矢印）が陽性であり、造血細胞の染色は検出できなかったことに留意のこと。ウサギポリクローナル抗体（サンタクルーズ（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ）、Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ、ＣＡ）、その後に、アレキサ（ａｌｅｘａ）で標識されたヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体（モレキュラープローブ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅ）、Ｅｕｇｅｎｅ、ＯＲ）を用いて、陰窩の端にあるＥ−カドヘリン陽性上皮細胞（緑色）を同時に視覚化した。共焦点顕微鏡を用いて、切片を６０倍の倍率で画像化した。（図２．Ｂ）コラゲナーゼで分散させた組織から純粋な集団を単離するために、上皮細胞および造血細胞の画分を、磁気ビーズを用いた負の選択によって連続的に除去した。残った細胞をＰ１Ｈ１２で染色し、ＥＣを、磁気ビーズを用いた正の選択によって単離した。（図２．Ｃ）ＥＣ調製物の純度を評価するために用いられたＲＴ−ＰＣＲ解析。半定量ＰＣＲ解析を、結腸直腸癌組織（未分画腫瘍）または正常結腸粘膜から単離された精製ＥＣ（正常ＥＣ画分）もしくは結腸直腸癌から単離された精製ＥＣ（腫瘍ＥＣ画分）から直接作成されたｃＤＮＡに対して行った。上皮特異的マーカーサイトケラチン２０（ＣＫ２０）のＰＣＲ増幅によって、その発現が未分画腫瘍に限定されることが証明された。２つの内皮特異的マーカーであるｖＷＦおよびＶＥ−カドヘリン（ＶＥ−Ｃａｄ）は内皮画分でしか強い増幅を示さず、これによって、純度および（図２．Ｂ）に示された濃縮プロトコールが実証された。遍在性ハウスキーピング酵素ＧＡＰＤＨが全ての試料において観察された。非鋳型（ＮＴ）対照においてシグナルは検出されなかった。ｃＤＮＡ鋳型を、先細のＶ字によって示されるように１：１０、１：１００、１：１０００、１：４０００、および１：４０，０００に希釈した。（図２．Ｄ）４つのグループにまとめられた数種類のＳＡＧＥライブラリーからのタグの量を測定することによって、選択された遺伝子の相対的な発現レベルを求めた。１番目は、２つのインビボ由来ＥＣ調製物（内皮細胞画分）からの約１９３，０００個のタグからなったのに対して、２番目は、負の選択から得られたマクロファージおよび他の白血球（造血画分）を含む約５７，０００個のタグの単一ライブラリーを含んだ。４番目のライブラリーは、培養ＨＵＶＥＣおよびＨＭＶＥＣ（培養内皮細胞）からの約４０１，０００個のタグを含み、４番目は、６つの培養結腸癌細胞系（上皮細胞）からの約７４８，０００個のタグからなった。標準化の後、各マーカーについて最大のタグ数を有するライブラリーに１００％の値を与え、残りの３つのライブラリーの対応する相対的な発現レベルを縦座標にプロットした。高レベルのＣＤ３１が造血細胞に存在することに留意のこと（これは、Ｐ１Ｈ１２の選択性に比べて最初の内皮選択の純度が低いことに起因する可能性が高い）。
【図３】全内皮マーカー（ＰＥＭ）の発現はＥＣに限定される。ＳＡＧＥによって特定されたＰＥＭの内皮起源が、高感度インサイチューハイブリダイゼーションアッセイ法を用いて確かめられた。２つの代表的なＰＥＭであるＰＥＭ３（図３Ａ）およびＰＥＭ６（図３Ｂ）を、それぞれ肺癌および結腸癌において調べることによって、新規ＰＥＭはＥＣに局在することが証明された。ヘビンの発現は、培養ＥＣにおける低レベルの発現にもかかわらず、結腸腫瘍（図３Ｃ）のＥＣにおいて容易に検出された。ＶＥＧＦＲ２の発現は、正常結腸組織（図３Ｄ）および悪性結腸組織（図３Ｅ）のＥＣにおいて容易に検出することができた。
【図４】腫瘍内皮マーカー（ＴＥＭ）の発現。（図４Ａ）ＲＴ−ＰＣＲ解析によって、選択された新規ＴＥＭの腫瘍特異的発現が確かめられた。２人の異なる患者に由来する、負の対照としての精製上皮細胞（対照）または正常結腸粘膜から単離された精製ＥＣ（正常ＥＣ）もしくは結腸直腸癌から単離された精製ＥＣ （腫瘍ＥＣ）から作成されたｃＤＮＡに対して、半定量ＰＣＲ解析を行った。２つの内皮特異的マーカーｖＷＦおよびＰＥＭ６は内皮画分でしか強い増幅を示さなかったが、遍在性ハウスキーピング酵素ＧＡＰＤＨは全ての試料において観察された。ＴＥＭ１（ＢＳＣ−ＴＥＭ１）、ＴＥＭ１７（ＢＳＣ−ＴＥＭ７）、およびＴＥＭ２２（ＢＳＣ−ＴＥＭ９）は、正常ＥＣと比較して腫瘍において特異的に発現していた。ｃＤＮＡ鋳型を、先細のＶ字によって示されるように１：１０、１：１００、１：１０００、および１：１０，０００に希釈した。（図４Ｂ−４Ｊ）ＳＡＧＥによって特定されたＴＥＭの内皮起源が、図３のようにインサイチューハイブリダイゼーションアッセイ法を用いて確かめられた。ＴＥＭ１（ＢＳＣ−ＴＥＭ１）（図４Ｂ）およびＴＥＭ１７（ＢＳＣ−ＴＥＭ７）（図４Ｃ）の発現は、結腸直腸癌のＥＣに高度に特異的であることが証明された。腫瘍の非内皮細胞において検出可能な発現が完全に無いことを示すために、切片を対比染色の非存在下で画像化した。ＥＣにおけるＴＥＭ１７（ＢＳＣ−ＴＥＭ７）の発現は、原発性結腸直腸癌からの肝臓転移病巣（図４Ｄ）、肺癌（図４Ｅ）、乳癌（図４Ｆ）、膵臓癌（図４Ｇ）、および脳癌（図４Ｈ）において、ならびに肉腫（図４Ｉ）において証明された。ＴＥＭ１７（ＢＳＣ−ＴＥＭ７）はまた、黄体の正常な生理学的血管形成中の血管にも局在していた（図４Ｊ）。

Claims (86)

1. １、９、１７、１９および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２３０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む、単離された分子。
2. 無傷の抗体分子である、請求項１記載の単離された分子。
3. 単鎖可変領域（ＳｃＦｖ）である、請求項１記載の単離された分子。
4. モノクローナル抗体である、請求項１記載の単離された分子。
5. ヒト化抗体である、請求項１記載の単離された分子。
6. ヒト抗体である、請求項１記載の単離された分子。
7. 細胞毒性部分に結合している、請求項１記載の単離された分子。
8. 治療部分に結合している、請求項１記載の単離された分子。
9. 検出可能な部分に結合している、請求項１記載の単離された分子。
10. 抗腫瘍剤に結合している、請求項１記載の単離された分子。
11. 血管新生を阻害する方法であって、以下の段階を含む方法：
    血管新生の阻害を必要とする被検体に、１、９、１７、１９、２２、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２３０、２３２、２３８、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む有効量の単離された分子を投与し、それにより血管新生が阻害される段階。
12. 被検体が、血管が新生した腫瘍を有する、請求項１１記載の方法。
13. 被検体が多発性嚢胞腎を有する、請求項１１記載の方法。
14. 被検体が糖尿病性網膜症を有する、請求項１１記載の方法。
15. 被検体が慢性関節リウマチを有する、請求項１１記載の方法。
16. 被検体が乾癬を有する、請求項１１記載の方法。
17. 腫瘍増殖を阻害する方法であって、以下の段階を含む方法：
    腫瘍を有するヒト被検体に、１、９、１７、１９、２２、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２３０、２３２、２３８、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む有効量の単離された分子を投与し、それにより腫瘍増殖が阻害される段階。
18. ９、１７、１９、および４４（それぞれ、配列番号：２１２、２３０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む、単離された分子。
19. 単鎖可変領域（ＳｃＦｖ）である、請求項１８記載の単離された分子。
20. モノクローナル抗体である、請求項１８記載の単離された分子。
21. ヒト化抗体である、請求項１８記載の単離された分子。
22. ヒト抗体である、請求項１８記載の単離された分子。
23. 細胞毒性部分に結合している、請求項１８記載の単離された分子。
24. 治療部分に結合している、請求項１８記載の単離された分子。
25. 検出可能な部分に結合している、請求項１８記載の単離された分子。
26. 抗腫瘍剤に結合している、請求項１８記載の単離された分子。
27. 無傷の抗体分子である、請求項１８記載の単離された分子。
28. ＴＥＭ９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択される、単離および精製されたヒト膜貫通タンパク質。
29. ＴＥＭ９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２１２、２３０、２３２に示される）からなる群より選択される膜貫通ＴＥＭのコード配列を含む、単離および精製された核酸分子。
30. 配列番号：２１１、２２９、および２３１に示されるコード配列から選択されるコード配列を含む、請求項２９記載の単離および精製された核酸分子。
31. ＴＥＭ９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択される膜貫通ＴＥＭのコード配列を含む核酸分子を含む、組換え宿主細胞。
32. 配列番号：２１１、２２９、および２３１に示されるコード配列から選択されるコード配列を含む、請求項３１記載の組換え宿主細胞。
33. 哺乳動物において免疫応答を誘導する方法であって、以下の段階を含む方法：
    哺乳動物に、ＴＥＭ１、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通タンパク質のコード配列を含む核酸分子を投与し、それによりヒト膜貫通タンパク質に対する免疫応答が哺乳動物において誘導される段階。
34. コード配列が、配列番号：１９５、２１１、２１９、２２９、２３１、２３７、２４９、２７０に示される、請求項３３記載の方法。
35. 哺乳動物において免疫応答を誘導する方法であって、以下の段階を含む方法：
    哺乳動物に、ＴＥＭ１、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択される精製されたヒト膜貫通タンパク質を投与し、それによりヒト膜貫通タンパク質に対する免疫応答が哺乳動物において誘導される段階。
36. 内皮細胞の調節に関与するリガンドを同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    試験化合物と、１、９、１３、１７、１９、３０、および４４（配列番号：１９６、２１２、２２０、２３０、２５０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択される単離および精製されたヒト膜貫通タンパク質を接触させる段階；
    単離および精製されたヒト膜貫通タンパク質と、１、９、１３、１７、１９、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２２０、２３０、２５０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子を接触させる段階；
    抗体可変領域を含む分子とヒト膜貫通タンパク質との結合を測定する段階であり、抗体可変領域を含む分子とヒト膜貫通タンパク質との結合を減少させる試験化合物が、内皮細胞の調節に関与するリガンドとして同定される段階。
37. 内皮細胞の調節に関与するリガンドを同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    試験化合物と、１、９、１７、および１９（配列番号：１９６、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通タンパク質を含む細胞を接触させる段階；
    細胞と、１、９、１７、および１９（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２３０、および２３２に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子を接触させる段階；
    抗体可変領域を含む分子と細胞との結合を測定する段階であり、抗体可変領域を含む分子と細胞との結合を減少させる試験化合物が、内皮細胞の調節に関与するリガンドとして同定される段階。
38. ＴＥＭ１、９、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択され、膜貫通ドメインを欠く、ヒト膜貫通タンパク質の可溶型。
39. ヒト膜貫通タンパク質の細胞外ドメインからなる、請求項３８記載の可溶型。
40. 患者における血管新生を阻害する方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者に、請求項３８記載のヒト膜貫通タンパク質の可溶型を投与し、それにより患者における血管新生が阻害される段階。
41. 患者における血管新生を阻害する方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者に、請求項３９記載のヒト膜貫通タンパク質の可溶型を投与し、それにより患者における血管新生が阻害される段階。
42. 患者が、血管が新生した腫瘍を有する、請求項４０記載の方法。
43. 患者が、血管が新生した腫瘍を有する、請求項４１記載の方法。
44. 患者が多発性嚢胞腎を有する、請求項４０記載の方法。
45. 患者が糖尿病性網膜症を有する、請求項４０記載の方法。
46. 患者が慢性関節リウマチを有する、請求項４０記載の方法。
47. 患者が乾癬を有する、請求項４０記載の方法。
48. 患者が多発性嚢胞腎を有する、請求項４１記載の方法。
49. 患者が糖尿病性網膜症を有する、請求項４１記載の方法。
50. 患者が慢性関節リウマチを有する、請求項４１記載の方法。
51. 患者が乾癬を有する、請求項４１記載の方法。
52. 患者における血管新生の領域を特定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者に、１、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子を投与する段階であり、分子が検出可能な部分に結合している段階；および
    患者の中で検出可能な部分を検出し、それにより血管新生を特定する段階。
53. 患者における血管新生をスクリーニングする方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者から集められた体液と、１、９、１７、１９、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２３０、２３２、および２７１に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質の細胞外ドメインに特異的に結合する抗体可変領域を含む分子を接触させる段階であり、分子を用いた、体液中の交差反応物質の検出が、患者における血管新生を示す段階。
54. 患者における血管新生をスクリーニングする方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者から集められた体液と、４、６、７、１０、１２、１４、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９（それぞれ、配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、ならびに２６３に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む分子を接触させる段階であり、分子を用いた、体液中の交差反応物質の検出が、患者における血管新生を示す段階。
55. 患者における血管新生を促進する方法であって、以下の段階を含む方法：
    血管新生を必要とする患者に、４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質を投与する段階であり、それにより患者における血管新生が刺激される段階。
56. 患者における血管新生を促進する方法であって、以下の段階を含む方法：
    血管新生を必要とする患者に、４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質をコードする核酸分子を投与する段階であり、それによりＴＥＭタンパク質が発現され、患者における血管新生が刺激される段階。
57. 患者における血管新生をスクリーニングする方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者から集められた体液中の、４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０（それぞれ、配列番号：２０２、２０６、２０８、２１４、２１８、２２３および２２４、２３４、２４２、２４４、２５２、２５７、２５９、２６１、２６３、ならびに２６５に示される）からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質を検出する段階であり、ＴＥＭタンパク質の検出が患者における血管新生を示す段階。
58. 患者における血管新生をスクリーニングする方法であって、以下の段階を含む方法：
    患者から集められた体液中の、４、６、７、１０、１２、１４、２０、２５、２７、３１、３６、３７、３８、３９、および４０からなる群より選択されるＴＥＭタンパク質をコードする核酸を検出する段階であり、核酸が、それぞれ、配列番号：２０１、２０５、２０７、２１３、２１７、２２１および２２２、２３３、２４１、２４３、２５１、２５６、２５８、２６０、２６２、ならびに２６４に示される核酸からなる群より選択され、ＴＥＭタンパク質の検出が患者における血管新生を示す段階。
59. １４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択されるＮＥＭタンパク質をコードする、単離および精製された核酸分子。
60. 配列番号：２７８、２８２、２８４、および２８８に示されるコード配列を含む、請求項６０記載の核酸分子。
61. 請求項６０記載の核酸を含む、組換え宿主細胞。
62. １４、２２、２３、および３３（それぞれ、配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される、単離および精製されたＮＥＭタンパク質。
63. １４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択されるＮＥＭタンパク質に特異的に結合する抗体可変領域を含む、単離された分子。
64. 血管新生を阻害する方法であって、以下の段階を含む方法：
    血管新生の阻害を必要とする被検体に、１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される有効量のＮＥＭタンパク質を投与する段階であり、それにより血管新生が阻害される段階。
65. 腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    １、２、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、３０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９５、１９７、２０１、２０３、２０５、２０７、２０９、２１１、２１３、２１５、２１７、２１９、２２１および２２２、２２５、２２７、２２９、２３１、２３３、２３５、２３７、２３９、２４１、２４３、２４５、２４７、２４９、２５１、２５３、２５５、２５６、２５８、２６０、２６２、２６６、２６８、２７０、２７２、ならびに２７４に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭ遺伝子を発現する細胞と、試験化合物を接触させる段階；
    細胞のｍＲＮＡと、ｍＲＮＡに相補的な核酸プローブとのハイブリダイゼーションによって、１つまたはそれ以上のＴＥＭ遺伝子の発現を測定する段階；および
    試験化合物が該１つまたはそれ以上のＴＥＭ遺伝子の発現を減少させれば、試験化合物を、腫瘍を治療するための候補薬物として同定する段階。
66. 細胞が内皮細胞である、請求項６６記載の方法。
67. 細胞が、１つまたはそれ以上のＴＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされている組換え宿主細胞である、請求項６６記載の方法。
68. 腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    ２、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、３０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９８、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、および２７５に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質を発現する細胞と、試験化合物を接触させる段階；
    細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の量を測定する段階；および
    試験化合物が該細胞において１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の量を減少させれば、試験化合物を、腫瘍を治療するための候補薬物として同定する段階。
69. 細胞が内皮細胞である、請求項６９記載の方法。
70. 細胞が、１つまたはそれ以上のＴＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされている組換え宿主細胞である、請求項６９記載の方法。
71. 腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    ２、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９８、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、および２７５に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質を発現する細胞と、試験化合物を接触させる段階；
    細胞における１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の活性を測定する段階；および
    試験化合物が該細胞において１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質の活性を減少させれば、試験化合物を、腫瘍を治療するための候補薬物として同定する段階。
72. 細胞が内皮細胞である、請求項７２記載の方法。
73. 細胞が、１つまたはそれ以上のＴＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされている組換え宿主細胞である、請求項７２記載の方法。
74. 腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    試験化合物と、２、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（それぞれ、配列番号：１９８、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、および２７５に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＴＥＭタンパク質をコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞を接触させる段階；
    細胞の増殖を測定する段階；および
    該細胞の増殖を阻害する試験化合物を、腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物として同定する段階。
75. 腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    １４、２２、２３、および３３（それぞれ、配列番号：２７８、２８２、２８４、および２８８に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭ遺伝子を発現する細胞と、試験化合物を接触させる段階；
    細胞のｍＲＮＡと、ｍＲＮＡに相補的な核酸プローブとのハイブリダイゼーションによって、１つまたはそれ以上のＮＥＭ遺伝子の発現を測定する段階；および
    試験化合物が該１つまたはそれ以上のＮＥＭ遺伝子の発現を増加させれば、試験化合物を、腫瘍を治療するための候補薬物として同定する段階。
76. 細胞が内皮細胞である、請求項７６記載の方法。
77. 細胞が、１つまたはそれ以上のＮＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされている組換え宿主細胞である、請求項７６記載の方法。
78. 腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    １４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質を発現する細胞と、試験化合物を接触させる段階；
    細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の量を測定する段階；および
    試験化合物が該細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の量を増加させれば、試験化合物を、腫瘍を治療するための候補薬物として同定する段階。
79. 細胞が内皮細胞である、請求項７９記載の方法。
80. 細胞が、１つまたはそれ以上のＮＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされている組換え宿主細胞である、請求項７９記載の方法。
81. 腫瘍を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    １４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質を発現する細胞と、試験化合物を接触させる段階；
    細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の活性を測定する段階；および
    試験化合物が該細胞における１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質の活性を増加させれば、試験化合物を、腫瘍を治療するための候補薬物として同定する段階。
82. 細胞が内皮細胞である、請求項８２記載の方法。
83. 細胞が、１つまたはそれ以上のＮＥＭをコードする発現構築物でトランスフェクトされている組換え宿主細胞である、請求項８２記載の方法。
84. 腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物を同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    試験化合物と、１４、２２、２３、および３３（配列番号：２７９、２８３、２８５、２８６、２８７、および２８９に示される）からなる群より選択される１つまたはそれ以上のＮＥＭタンパク質をコードする発現構築物でトランスフェクトされた組換え宿主細胞を接触させる段階；
    細胞の増殖を測定する段階；および
    該細胞の増殖を刺激する試験化合物を、腫瘍を有する患者を治療するための候補薬物として同定する段階。
85. 内皮細胞の調節に関与するリガンドを同定する方法であって、以下の段階を含む方法：
    試験化合物と、１、２、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１４、１５、１６、１７、１９、２０、２１、２２、２４、２５、２７、２８、２９、４０、３１、３３、３５、３６、３７、３８、３９、４１、４２、４４、４５、および４６（配列番号：１９６、１９８、２０２、２０４、２０６、２０８、２１０、２１２、２１４、２１６、２１８、２２３および２２４、２２６、２２８、２３０、２３２、２３４、２３６、２３８、２４０、２４２、２４４、２４６、２４８、２５０、２５２、２５４、３５８、２５７、２５９、２６１、２６３、２６７、２６９、２７１、２７３、ならびに２７５に示される）からなる群より選択されるヒト膜貫通ＴＥＭタンパク質を接触させる段階；
    試験化合物とヒト膜貫通タンパク質との結合を測定する段階であり、タンパク質に結合する試験化合物が内皮細胞の調節に関与するリガンドとして同定される段階。
86. 哺乳動物において免疫応答を誘導する方法であって、以下の段階を含む方法：
    哺乳動物に、ＴＥＭ１、９、１３、１７、１９、２２、３０、および４４（それぞれ、配列番号：１９６、２１２、２２０、２３０、２３２、２３８、２５０、および２７１に示される）からなる群より選択される膜貫通タンパク質を発現する細胞を投与し、それによりヒト膜貫通タンパク質に対する免疫応答が哺乳動物において誘導される段階であり、細胞が、膜貫通タンパク質をコードするベクターを含む組換え細胞であるか、または樹状細胞と腫瘍内皮細胞が融合したものである段階。

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