JP2004209261A - リン酸カルシウム材の薄膜製造のための改良焼結方法 - Google Patents

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Abstract

【課題】 骨細胞活性を薄膜上で支えるためのリン酸カルシウム材の薄膜の改良製造方法(最適焼結温度等含む)を提供する。
【解決手段】 焼結すべき材料は、リン酸アンモニウムの溶液を硝酸カルシウムの溶液と合わせてヒドロキシアパタイト含有ゾル−ゲルを形成させることによって調製する。このゾル−ゲルの膜を基層の少なくとも片側に当てがい、基層上にコーティングされた膜を焼結してリン酸カルシウム材の固体膜を形成させる。焼結段階によってヒドロキシアパタイトはαリン酸三カルシウムに変換され、この変換の程度は温度依存性を示す。最適組成は、ヒドロキシアパタイトのαリン酸三カルシウムに対する比率が50:50〜20:80の範囲にあり、焼結温度はこれらの比率が得られるように選ぶ。焼結温度は920℃〜1100℃の範囲から選び、この範囲では選んだ温度が高いほどαリン酸三カルシウムの割合が高い。
【選択図】 なし

Description

本発明は、その薄膜上の骨細胞活性を支えることができるリン酸カルシウム材からなる薄膜製造のための改良方法に関するものである。この薄膜は最適な組成がヒドロキシアパタイト対αリン酸三カルシウムの比が50:50〜20:80の範囲にあるものである。
骨は、無機または鉱物相と、有機マトリックス相と、水とから構成されている複合鉱化系である。無機鉱物相は結晶性リン酸カルシウムで構成されているが、有機マトリックス相は殆どコラーゲンとその他の非コラーゲン性蛋白とから成る。骨の石灰化は、有機相と無機相との緻密な結合に依存し、その結果鉱化した組織が作られる。
骨増殖の過程は構造的及び機械的ストレスに対抗できるように制御されている。骨の形成、維持、再吸収の過程に関与する細胞は、造骨細胞(osteoblast)と、骨細胞(osteocyte)と、破骨細胞(osteoclast)である。造骨細胞は骨の有機マトリックスである類骨(osteoid)を合成し、この類骨はリン酸カルシウム結晶の成長とコラーゲンの集積後石灰化された状態となる。骨細胞は骨無機質と細胞外体液との間のカルシウムとリン酸の流れを制御する。破骨細胞は骨を吸収する機能があり、骨再造形の過程に必須である。骨の形成と吸収の自然のバランスが崩れるとさまざまな骨障害が起こる。破骨細胞活性の増加は、骨粗しょう症、線維性骨炎、ページェット病にみられるような骨密度の低下が特徴的な骨疾患を来すことが証明されている。これらの疾患はすべて骨吸収増加の結果である。
骨細胞機能の制御に関与しているメカニズムを理解するために、骨細胞(bone cell)の正常機能と、さまざまな骨疾患におけるこの活性の混乱の程度も測定できることが重要である。そうすれば異常な骨細胞活性を正常水準内に取り戻すことを目的とする薬剤を同定することができるようになるだろう。
単離した破骨細胞の活性を生体外(in vitro)で直接観察する方法がいくつかの研究グループによって開発されている。骨髄細胞群から単離された破骨細胞を、マッコウクジラぞうげ質(Boyde ら、Brit. Dent. J. 156, 216, 1984)または骨(Chambersら、J. Cell Sci. 66, 383, 1984)などの自然物質の薄い切片上で培養した。後者の研究グループは、この吸収活性は単核食細胞群のその他の細胞にはないことを証明することができた(Chambers及びHorton、Calcif Tissue Int. 36, 556, 1984)。破骨細胞系統の研究にこれらとは別の細胞培養法を利用しようという最近の試みも、やはり皮質薄片を利用することに頼っており(Amano ら及び Kerbyら、Bone & Min. Res. 7(3))、その吸収活性の定量は、さまざまな深度の吸収ピット面積の二次元分析、または吸収容積の立体マッピングに基づいて行われている。このような方法を用いて、比較的厚い下層の吸収を評価するならば、精度はせいぜい50%ほどである。そのうえこれらの分析方法は非常に時間もかかり、非常に専門的な装置と訓練が必要である。さらに、骨またはぞうげ質薄片の調製とその後の検査は、破骨細胞活性の測定法として容易でもなく実用的でもない。
破骨細胞培養のための基層として、人工的なリン酸カルシウム標品を用いることもこれまでほとんど成功しなかった。Jones ら(Anat. Embryol 170, 247, 1984)は、破骨細胞は合成アパタイトを生体外で吸収すると報告したが、この観察所見を裏付ける実験的証拠は提示できなかった。Shimizuら(Bone and Mineral 6, 261, 1989)は、単離した破骨細胞は失活させた骨表面のみ吸収し、合成カルシウムヒドロキシアパタイトは吸収しないと報告している。これらの成績は、機能的破骨細胞は生体外で培養が困難であることを示唆しているものと思われる。
出願人の公表された国際PCT特許出願第WO94/26872号公報には、薄膜上に骨細胞機能が発生するリン酸カルシウム材の薄膜を形成する焼結工程について述べられている。これは破骨細胞が薄層上で活性を拡大することができる最初の合成材料の薄層であると考えられる。前記出願の中で述べられているように、この薄膜におけるヒドロキシアパタイト対リン酸三カルシウムの好ましい比を得るためには、さまざまな要因を考慮すべきである。そのような要因として次のようなものが挙げられる。
1)ヒドロキシアパタイト含有ゾル−ゲル調製のための試薬の量
2)試薬の混合速度
3)ゾル−ゲル作成時の混合時間と撹拌速度
4)沈澱及び分離の速度と方法
5)ゾル−ゲル製造中の工程環境条件
6)その上に膜を浸せきコーティングするときのゾル−ゲルから基層を除去する速度
7)焼結温度
8)不活性ガス、真空、水蒸気存在下雰囲気など制御した雰囲気での焼結。
したがって、上記の先行PCT特許出願では、ヒドロキシアパタイト対リン酸三カルシウムの広範囲の比率を得るために、これらの要因の多くを10:90から90:10までの比率を達成するように検討する必要があることが示唆された。大気中焼結温度としては約800℃から約1100℃が示唆された。800℃では薄膜は圧倒的にヒドロキシアパタイトが多いこと、即ち約90:10の比率であることが確立された。約900℃の焼結温度では約70:30の比率となった。1000℃ではこの比率は約10:90で、1100℃では薄膜は圧倒的にリン酸三カルシウムが多かった。さらに、1000℃で真空中焼結すると約66:34の比率となることも示唆された。今では好ましい比率は50:50から20:80であることが判明している。最適比率は約333:666である。上記の要因のうち数個の要因を考慮してこのような比率を達成することができる。しかし上記の要因のうち数個の変動を最小限にとどめ、厳密な再現性のある方法で最適な膜組成のための好ましい比率を達成することが望ましい。
出願人の公表されたPCT出願第WO94/26872号公報に記載された標準的方法に従い、発見された厳密な焼結温度と組み合わせてゾル−ゲル形成を行うことにより、上記の最適範囲の選ばれた望ましい比率を達成することができることを、出願人たちは現在見いだした。
本発明の一態様によれば、薄膜上で骨細胞活性を支えることができるリン酸カルシウム材からなる薄膜の製造工程(このとき該薄膜は基層上に作られる)は、i)リン酸アンモニウム溶液と硝酸カルシウム溶液を混合し、ヒドロキシアパタイト含有ゾル−ゲルを形成させることによってゾル−ゲルを調製する段階と、
ii)基層の少なくとも片側にゾル−ゲルの膜を当てがう段階と、
iii)基層にコーティングした膜を焼結し、リン酸カルシウム材の固体膜を形成する段階とを含み、
改良点として、
iv)膜中のリン酸カルシウム材の組成が最適になる温度範囲から選んだ温度で膜を焼結し、この焼結段階は膜のヒドロキシアパタイトをαリン酸三カルシウムに変換する段階であり、そのような変換の程度は温度依存性であること、
v)最適な組成はヒドロキシアパタイト対αリン酸三カルシウムが50:50から20:80の範囲にあること、
vi)焼結温度を920℃から1100℃までの範囲から選ぶが、このとき焼結温度は高いほど、変換比率は上限比率20:80に近づくこと、
を含む。
本発明の他の態様によれば、920℃から950℃のあいだで選択した焼結温度では、比率は50:50から333:666の範囲になる。
本発明の他の態様によれば、1000℃から1100℃のあいだで選択した焼結温度では、比率は333:666から20:80の範囲になる。
本発明の他の態様によれば、約333:666の比率を得るために、焼結温度は、950℃から1000℃の間にあり、好ましくは約975℃である。
50:50から20:80の望ましい範囲内にあるリン酸カルシウム材の薄膜を安定して製造するための重要な改良を本発明は提供する。ヒドロキシアパタイト含量の比率が20%未満になると、αリン酸三カルシウムの存在比が高くなり、可溶性の問題があるため、安定でないことを我々は見いだした。ヒドロキシアパタイトが重量比で約50%をこえると、この膜は安定ではあるが、正常な破骨細胞活性の分析の点で吸収成績の信頼性は低くなる。骨細胞活性の観点から最適比率は333:666であるが、骨細胞活性を詳細に調べた結果では、この比率の許容範囲は50:50から20:80である。出願人たちははからずも、同出願人たちのWO94/26872公開公報に記載された標準的ゾル−ゲル製造法を用い特定の温度で焼結を行うことによって、望みの比率が達成できることを見いだし、このような比率は上記の公表出願にしたがって達成されたが、焼結条件その他のパラメータの変動がこの工程の再現性に影響することを見い出した。
本発明の理解をいっそう促すために、出願人の公開PCT出願第WO94/26872号公報を参照することもでき、その内容は引用することにより本明細書の一部をなすものとする。本発明の改良部分を詳細に説明する前に、前記薄膜のさまざまな背景を述べることが重要である。
本発明に従った適当な支持体に乗せた薄膜は、骨細胞機能的性質の研究と理解を大いに前進させた。本発明に従って作成した膜の構成は、その膜の上でさまざまなタイプの骨細胞の培養を可能にする。表面構成を調節して、破骨細胞活性の研究における膜のリン酸カルシウム材の吸収を、かなりの程度から無視できる程度にまでにすることができる。同様に造骨細胞活性は骨様物質の蓄積を検出することによって研究することができる。破骨細胞による材の吸収を、吸収されたリン酸カルシウム材の消失によって検出できる程じゅうぶんに薄い膜状物質を提供できるため、先行技術に比べて単純で廉価な分析方法が得られる。本発明に従って作成された組成の膜は、骨細胞の生物学的機能をサポートできる。石英やガラスなどの透明な支持基層上に膜を作ることができるという利点があるため、診断過程での評価が容易に行える。
理想的には、膜厚は0.1ミクロンを超えるが、膜厚が0.1ミクロン未満では、離散したボイドのない均一な膜被覆が難しいからである。膜の厚みの上限についてはその最終用途によって所望の厚みでよい。後に考察するつもりであるが、吸収程度は光の透過によって検出され、そのためには厚みが10ミクロン未満の膜が望ましい。望ましくは基層は石英またはその他の熱的に耐性な材質のものがよいが、その理由はこの基層にいったん当てがった膜は、焼結が必要であるからである。その他の材質として、金属、ポリマー、膜材質以外のセラミック材が挙げられる。ガラスを使ってよいのは、望みのタイプの膜を作るに必要な焼結程度を達成するために、ガラス表面を非常に高い温度まで短時間加熱するような表面焼結装置を用いて膜材質を焼結するときである。石英はこれらの温度に容易に耐え、膜材質からリン酸カルシウム材の吸収程度を測定するための光透過性テストを行うのに必要な透明度を有している。
開発されたこの薄膜は、骨細胞活性測定のためのキットなどで使うことができる。この膜は、付着性のリン酸カルシウム薄膜で予めコーティングされた石英基層(またはその他の適当な透明な支持体)で構成された「キット」として具体化され、これは混合した骨細胞群の培養に適した系として細胞培養容器(たとえば24ウェルのマルチウェルプレート即ち直径が約15mmのもので滅菌は随意に行う)の中で使うことができる。この装置は単純であり、通常の実験室装置と通常の使用法のみに頼るもので、定量分析に適し作成経費は安いが通常の取扱いに耐えるほどの強度があり、プラスチック製の展示用箱に(例えば)24試料ずつまとめて包装することができる。この薄膜表面は化学構成が定められその再現性があり、適当な包装材とともに使用すれば運搬に耐えるほどの物理的強度がある。
この装置のいくつかの改変例を特定の用途用に設計することができよう。例えば、それぞれの基層をプラスチック性の支持リングにいれて提供することができよう。このリングは包装間隔保持材として(したがって基層とともに滅菌される)だけでなく、培養基及び細胞が基層自体から拡散するのを防ぎ、したがって吸収活性の定量に都合のよいリップ(縁)としても採用することができるであろう。そのような保護リングは同一培養ウエルに複数の基層を同時に採用することを可能にする積み重ね装置としても利用できるであろう。後者はつぎに循環培地を補給される封入した培養容器に納めることができ、重力環境が低いまたはゼロの場合にも使うこともできよう。
いずれの場合も培養条件は、破骨細胞(単核形または多核形)が機能状態で生存し上記膜の人工的なリン酸カルシウムを吸収すると予測できるようなものである。
これらの基層は、破骨細胞の吸収活性を測定し、疾患進行の結果として、あるいは、培養基において、例えば直接的または間接的に破骨細胞吸収活性に影響すると思われる薬剤のような物質の封入の結果として、この吸収活性程度の変化を監視するのに使用できる。
この装置は、破骨細胞の吸収活性の定量手段として、または造骨細胞の活性による骨様物質の増強の定量手段として利用できる。そのような活性分析は、連続リアルタイム監視中、低速度撮影期間中、エンドポイント決定時に行われる。破骨活性定量のステップは、骨細胞(動物やヒトの)が特定条件下で一つ以上の装置で培養されるという点で上記の監視スケジュールのいずれにも共通である。培養期間は数時間から何日間にも及び、望ましくは約2〜10日間であり(最適時間は細胞の種類及び実験条件によって左右される)、この期間中破骨細胞活性の程度を連続的に監視してもよいし、定期的に監視してもよく、あるいは単に最終のエンドポイント測定の利用により進行中監視は行わないでもよい。同様に造骨細胞活性は骨様物質増強の程度を測定することによって観察できる。
純粋な、または実質的に純粋なヒドロキシアパタイトという条件は膜を作成するうえでより抜きのリン酸カルシウム材であると理解されていたが、我々は、ヒドロキシアパタイトが支配的な膜は破骨細胞及び造骨細胞の正常機能を促すものではなく、事実、破骨細胞存在下では活性はほとんど観察できないことを明らかにした。しかし、ヒドロキシアパタイト及びαリン酸三カルシウムを含むリン酸カルシウム材混合物を提供することによって、吸収の程度は広範囲にわたる。すなわち、αリン酸三カルシウムが支配的な膜では吸収程度が最高であるが、ヒドロキシアパタイトが支配的な膜では吸収の度合いは無視できるほどである。本発明によれば、αリン酸三カルシウムについてのこの理解により、他のリン酸カルシウム膜がその膜上で培養されている破骨細胞の機能的性質を促すことができないということが説明できる。この態様は、例えば光を透過させたり光を反射させる薄膜を提供する本発明のその他の態様と組み合わせて、本発明に従って膜上で培養されている骨細胞の機能的性質を評価するための診断過程の実施を可能にする。
意外にも、ゾル−ゲル調製を標準化し非常に特定の焼結温度範囲を選ぶと、所望の比率が達成されるばかりでなく、ゾル−ゲル工程によって調製されるヒドロキシアパタイトがαリン酸三カルシウムに変換されることによって最適な組成が形成されることも示している。これらの好ましい最適化された膜組成にはβ−リン酸三カルシウムはほとんどあるいは全く検出されていない。ヒドロキシアパタイトとαリン酸三カルシウムの組み合わせであるゾル−ゲルを調製する必要は全くない。そうではなく、PCT出願第WO94/26872号公報に記載されているような技法がヒドロキシアパタイトのゾル−ゲル調製に十分である。pHの高い媒質中でヒドロキシアパタイトが生まれる化学反応は次の通りである。
Figure 2004209261
ヒドロキシアパタイトは中性やアルカリ性の媒質中では安定である。この反応媒質を高いpH(通常は約12)とすることが好ましい。リン酸塩溶液をカルシウム溶液に滴加して、三リン酸一水素四カルシウム(tetracalcium monohydrogen triphosphate)の形成を防ぎ、それによって所望のヒドロキシアパタイトの均一な生成物を得る。
ゾル−ゲルがいったん調製されると、さまざまな技法によって基層に薄膜としてそれを当てがうことができる。例えば、浸せきコーティング法(C.J. Brinker他、Fundamentals of Sol-Gel Dip Coating, Thin Solid Films, Vol.201, No.1, 97-108, 1991)は、次のような一連の工程から成る。即ち、基層をゾルまたは溶液から一定速度で除去し、コーティングされた液体膜を適当な温度で乾燥し、膜を最終セラミックに焼成する。
スピンコーティング法の場合、上記ゾル−ゲルを、遠心運動によって溶液を均一に分布するのに十分な速度で回転しているプレート上に滴下する。その後の処理は浸せきコーティング法と同じである。
幸いにも、このほかに上記ゾル−ゲルの薄膜を基層に当てがうために利用できるさまざまな技法がある。これらの技法として、上記ゾル−ゲルのスプレー法、上記ゾル−ゲルのローラーコーティング法、上記ゾル−ゲルの拡散法、上記ゾルーゲルのペイント法などが挙げられる。
個々のサイズの個々のディスクをコーティングする代わりに、広範囲の基層を上記ゾル−ゲルの膜でコーティングすることもできる。そして基層上の膜全体を焼結する。次に格子のような装置をこの膜の上に当てがい、多数の個々の検査域に分ける。この方法に関する改良は出願人の同時出願中の米国出願「骨細胞活性測定に使用するためのマルチウエル骨細胞培養装置」(出願番号第08/518912号、出願日1995年8月24日)に記述されている。
これらのさまざまな技法でゾル−ゲルを当てがう際に、形成される膜の厚みと品質(孔度、微細構造、結晶状態、均一性)は、多数の要因の影響を受ける。そのような要因として、出発ゾルの物性、組成、濃度、基層表面の清浄度、基層の除去速度、焼成温度などがある。一般に厚みは、浸せきコーティング工程については、主として除去速度及びゾル粘度に依存する。ゾルの不均一は肉眼で認められるほどの孔やひびの形成の原因となるため、コーティング操作はゾルの汚染を避けるためにクリーンルームで行うべきである。熱処理段階では、望みの微細構造を作るには高温が必要である。
リン酸カルシウム膜を作成するために浸せきコーティング法を利用する目的は次の三つである。即ち(a)要求品質(均一性、厚み、孔度、など)を持った膜を作ること、(b)生物学的実験用に、透明な基層上に半透明なリン酸カルシウム膜を作ることである。
意外にも、ヒドロキシアパタイトの乾燥膜の焼結は炉の雰囲気を制御する必要なく、標準タイプの高温炉で行うことができることが見いだされた。新しい炉を使うか、他の目的のために前回使用したために炉が汚染されている場合、炉を空にして、焼結温度範囲で数回サイクル運転するのが好ましい。このような炉の予備調整によって揮発物質があれば除かれ、利用準備が整う。これ以外のステップは必要でない。このなじみ運転期間中、及びコーティングした基層の焼結のために正常使用中は、炉には大気があり、大気の存在は工程の妨げとはならず、所望の比率が一定して得られる。これらの条件下、焼結温度は920℃から最高1100℃までで所望の比率50:50〜20:80が得られる。温度が上がればヒドロキシアパタイトからαリン酸三カルシウムへの変換も増加することが認められている。920℃〜950℃の範囲の焼結温度では比率は50:50から333:666に向かって変動する。950℃〜1000℃の範囲内で選ばれた焼結温度では比率は約333:666である。1000℃を超え最高1100℃まで温度を上げると、変換がさらに進み、333:666〜20:80の範囲の比率の組成物が生成する。
好ましい焼結温度は約975℃で、このとき333:666の比率が達成される。
次の諸手順は、焼結薄膜について所望の最適組成を達成するために本発明の好ましい具体例を示す。
手順1
次の手順は有限数の基層ディスクをコーティングするに十分なゾル−ゲルの調製に基づいて行われる。前記の化学反応に従って、溶液Aは硝酸カルシウム、好ましくは硝酸カルシウム四水和物を含む。溶液Bはリン酸アンモニウム、好ましくはオルトリン酸二水素アンモニウム(ammonium dihydrogen orthophosphate)(一塩基酸)を含む。溶液Aを溶液Bと混合して目的のゾル−ゲルである溶液Cを生成する。溶液Aは2回蒸留した水40mlを硝酸カルシウム(Ca(NO)4.722グラムに添加して作成する。この溶液を中等度の速度で硝酸カルシウムすべてを溶解するに充分な時間撹拌するが、これは通常は3分程度である。この溶液に水酸化アンモニア(NHOH)3mlを添加し、さらに約3分間ほど撹拌する。この溶液のpHを調べ、約12のpHであることが望ましい。この溶液に2回蒸留した水37mlを添加し、全溶液量を約80mlとする。この溶液をさらに7分間撹拌し、カバーをかける。
溶液Bは2回蒸留した水60mlを、1.382グラムのNHPOを含む250ml容のビーカーに加えて作成する。このビーカーにカバーをかけ、中等度の速度ですべてのNHPOが溶解するまで3〜4分間撹拌する。この溶液にNHOHを71ml加え、次にこのビーカーにカバーをかけさらに7分間ほど撹拌を続ける。この溶液のpHを調べ、約12のpHが望ましい。これにさらに2回蒸留した水61mlを加え、ビーカーにカバーをする。全溶液量は約192mlとなる。次にこの溶液をさらに7分間撹拌し、カバーをかける。
次に所望のゾル−ゲルを溶液Bと溶液Aとを合わせて作成する。溶液Aの全部を500ml容の試薬瓶に入れる。撹拌を中等度の速度で開始し、溶液Bの全部192mlを、この試薬瓶の中に毎時約256mlの速度で溶液Aに添加する。250mlのビーカー内や移す過程で使用した管などに残っているかもしれない溶液を補充するために過剰の溶液Bを用いてもよい。この添加と溶液Bの溶液Aへの添加が終了したのち、生じた溶液を中等度の速度で約23〜24時間撹拌する。生じたゾル−ゲルに異常な沈澱や塊がないか調べる。異常な沈澱や塊が発生していた場合は、その溶液は廃棄し調製を再び開始しなければならない。次にこのゾルを、このゾルが入っている試薬瓶の壁に存在するかもしれない粒子状の塊が入り込まないように、慎重に別の500mlの試薬瓶に移す。生じたゾルである溶液Cの約240mlを遠心管に入れ、室温で約500rpmで20分間遠心する。遠心後、上清180mlを沈渣を乱さないように廃棄する。約30分間なめらかに回転しながら混合することによって沈渣を静かに再懸濁する。次にこのゾルの粘度を測定し、20〜60cPの範囲であることが好ましい。こうしてゾルは選んだ基層の浸せきコーティングに使える状態になっている。
手順2
好ましい基層としての石英ディスクの洗浄。いくつかのディスクをガラス製ビーカーに入れ、すべてのディスクがおおわれるようにクロム酸洗浄液をこのガラス製ビーカーに入れる。次にこのビーカーに蓋をする。つぎにディスクを水浴中で1時間超音波処理する。上記の酸を水道水で20分間洗い流す。残っている水道水は2回蒸留した水で3回リンスして除去する。2回蒸留水の最後のリンス後、個々のディスクを糸くずのないタオルで拭きとり、石英表面にきずがないか調べる。表面に残っている微粒子があれば必要に応じて圧縮窒素または空気で取り除く。このディスクをカバーをかけたトレー内に無菌環境で保存する。
手順3
好ましい基層としての石英ディスクを手順1で作成したゾルに浸す。ディスクは表面に触れないようにしてつかむ。ディスクは好ましくは機械によってゾルに浸す。ディスクを所定の除去速度でゾルから取り出す。ディスクの片側のコーティングを除去する。次にコーティングされた基層を清潔なペトリ皿に入れ、蓋をし、室温で乾燥する。焼結前に形成された状態の膜は亀裂、塊、ボイドのない均一なものでなければならない。ディスクの面に施されたこの浸漬コーティング工程は他の形の基層、例えば平坦な四角形の石英基層にも適用できると理解される。
手順4
次の焼結工程は、環境温度から少なくとも1100℃までの温度で操作でき、特に800℃〜1100℃のあいだで正確で安定した内部温度を維持するように設計されたさまざまなサイズの標準的実験室用炉で行うことができる。そのような炉として例えばLindbergモデル51744または894−Blue
Mが挙げられる。手順3で作成したコーティングした基層を、標準的セラミック製プレートの上に(上記のLindberg炉では一般に行われるように)の上に、コーティングされた面に触れないようにして、例えばピンセットを用いて慎重に移す。このセラミック製プレートは、多数の基層を炉に入れやすいように、またそこから取り出しやすいように焼結工程中キャリヤーとして用いる。炉温度は望みのHA:αTCP比率を達成するのに必要な温度に設定する。Lindbergモデル894−Blue Mのようなプログラミング可能な炉を用いると、通常は920℃〜1100℃のあいだで選ばれる所望の温度を、典型的な場合1時間をこえることなく炉が維持するように設定することができる。プログラミングできない炉の場合、別個にタイマーを用いて、選んだ温度で必要な焼結時間の終わりに操作者に炉を切るよう警告させる。炉の運転を開始し、必要な操作温度まで加熱していくとき、基層を乗せたセラミック製プレートを、炉が例えば800℃という焼結温度に近づいた時点で炉に入れる。そして炉の扉を直ちに再び閉める。炉が必要な時間のあいだ選んだ操作温度になるようにし、次に運転を自動的または手動で終わらせる。焼結した基層を乗せたセラミック製プレートは炉内温度が約60℃の触れてもがまんできる安全な温度まで冷えてからいつでも取り出してよい。つぎに個々の基層は保存してもよく、最終の用途に向けて包装してもよい。
この改良方法により、ヒドロキシアパタイト/αリン酸三カルシウムの薄膜は、一貫性を確保するためにさまざまな加工パラメータの変動を最小限に抑えれば、一貫して所望の組成を有するものを生産することができる。
本発明の好ましい具体例をここに詳細に述べてあるが、本発明の技術的思想または添付の特許請求の範囲から逸脱することなくこれに変更を加えることができることは、技術に熟練した人たちにより理解されるであろう。

Claims (6)

  1. i)リン酸アンモニウムの溶液を硝酸カルシウムの溶液と混合してヒドロキシアパタイト含有ゾル−ゲルを形成することによるゾル−ゲルの調製段階と、
    ii)前記ゾル−ゲルの膜を基層の少なくとも片側にとりつける段階と、
    iii)上記基層上にコーティングされた上記膜を焼結して上記リン酸カルシウム材の固体膜を形成する段階と
    を含んでなり、
    iv)上記膜内のリン酸カルシウム材の組成を最適にする温度範囲から選んだ温度で上記膜を焼結し、上記焼結段階はヒドロキシアパタイトをαリン酸三カルシウムに変換すること、このときそのような変換の程度は温度依存性であることと、
    v)上記最適化された組成は、ヒドロキシアパタイトのαリン酸三カルシウムに対する比率が50:50〜20:80であることと、
    vi)焼結温度を920℃〜1100℃の範囲から選ぶこと、このとき焼結温度が高いほど、上記変換比率は上限比率20:80に近づくことと
    を特徴とする、リン酸カルシウム材の薄膜を、その上での骨細胞活性を支えるために基層上に作成する方法。
  2. 上記選定温度を950℃〜1000℃とし、約333:666の比率を達成する請求項1に記載の方法。
  3. 上記選定温度を約1100℃とし、20:80の比率を達成する請求項1に記載の方法。
  4. 上記選定温度を920℃〜950℃とし、50:50〜333:666の範囲の比率を達成する請求項1に記載の方法。
  5. 上記選定温度を1000℃〜1100℃とし、333:666〜20:80の範囲の比率を達成する請求項1に記載の方法。
  6. 上記選定温度を約975℃とし、333:666の比率を達成する請求項1に記載の方法。
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007108373A1 (ja) * 2006-03-17 2007-09-27 Kinki University 生体親和性透明シート、その製造方法、及び細胞シート
JP2014172794A (ja) * 2013-03-11 2014-09-22 Shalom:Kk リン酸カルシウム系化合物

Families Citing this family (29)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6069295A (en) * 1996-05-10 2000-05-30 Isotis B.V. Implant material
US6143948A (en) * 1996-05-10 2000-11-07 Isotis B.V. Device for incorporation and release of biologically active agents
NL1004867C2 (nl) * 1996-12-20 1998-06-23 Tno Met vezels versterkt bio-keramisch composietmateriaal.
US6248392B1 (en) 1996-12-20 2001-06-19 Nederlandse Organisatie Voor Toegepast-Natuurwetenschappelijk Ondersoek Tno Method for manufacturing a fiber-reinforced bioactive ceramic implant
JP3275032B2 (ja) * 1997-03-03 2002-04-15 独立行政法人産業技術総合研究所 環境浄化材料及びその製造方法
JP3896437B2 (ja) * 1997-12-08 2007-03-22 独立行政法人産業技術総合研究所 リン酸カルシウム系皮膜の製造方法
KR100353141B1 (ko) * 1998-09-17 2002-09-18 주식회사 오스코텍 고농도 칼슘포스페이트 과포화 용액의 제조 및 이를 이용한 칼슘포스페이트 결정 박막 형성 방법
US7270705B2 (en) * 1999-07-14 2007-09-18 Jiin-Huey Chern Lin Method of increasing working time of tetracalcium phosphate cement paste
US6960249B2 (en) * 1999-07-14 2005-11-01 Calcitec, Inc. Tetracalcium phosphate (TTCP) having calcium phosphate whisker on surface
US7094282B2 (en) * 2000-07-13 2006-08-22 Calcitec, Inc. Calcium phosphate cement, use and preparation thereof
US6840995B2 (en) * 1999-07-14 2005-01-11 Calcitec, Inc. Process for producing fast-setting, bioresorbable calcium phosphate cements
US7169373B2 (en) * 1999-07-14 2007-01-30 Calcitec, Inc. Tetracalcium phosphate (TTCP) having calcium phosphate whisker on surface and process for preparing the same
US6426114B1 (en) * 2000-05-02 2002-07-30 The University Of British Columbia Sol-gel calcium phosphate ceramic coatings and method of making same
US7160382B2 (en) * 2000-07-13 2007-01-09 Calcitec, Inc. Calcium phosphate cements made from (TTCP) with surface whiskers and process for preparing same
US7156915B2 (en) * 2000-07-13 2007-01-02 Calcitec, Inc. Tetracalcium phosphate (TTCP) with surface whiskers and method of making same
WO2002024896A2 (en) * 2000-09-22 2002-03-28 Immunex Corporation Screening assays for agonists or antagonists of receptor activat or of nf-kb
US20030216777A1 (en) * 2002-05-16 2003-11-20 Yin-Chun Tien Method of enhancing healing of interfacial gap between bone and tendon or ligament
JP2005528758A (ja) * 2002-06-04 2005-09-22 コーニンクレッカ フィリップス エレクトロニクス エヌ ヴィ 低圧水銀蒸気放電ランプおよびコンパクトな蛍光ランプ
US7067169B2 (en) * 2003-06-04 2006-06-27 Chemat Technology Inc. Coated implants and methods of coating
US6994726B2 (en) * 2004-05-25 2006-02-07 Calcitec, Inc. Dual function prosthetic bone implant and method for preparing the same
US7163651B2 (en) * 2004-02-19 2007-01-16 Calcitec, Inc. Method for making a porous calcium phosphate article
US7118705B2 (en) 2003-08-05 2006-10-10 Calcitec, Inc. Method for making a molded calcium phosphate article
CA2545185A1 (en) * 2003-11-07 2005-05-26 Calcitec, Inc. Spinal fusion procedure using an injectable bone substitute
JP4586170B2 (ja) 2003-12-09 2010-11-24 富士通株式会社 光触媒活性を有するアパタイト含有膜及びその製造方法
KR100583849B1 (ko) * 2004-01-20 2006-05-26 재단법인서울대학교산학협력재단 인산칼슘 화합물의 폴리메릭 졸 제조방법
KR101369388B1 (ko) 2005-11-14 2014-03-06 바이오메트 쓰리아이 엘엘씨 임플란트 표면상에 이산 나노입자의 증착방법
JP5806466B2 (ja) 2008-01-28 2015-11-10 バイオメット・3アイ・エルエルシー 親水性を向上させたインプラント表面
US8641418B2 (en) 2010-03-29 2014-02-04 Biomet 3I, Llc Titanium nano-scale etching on an implant surface
WO2013142118A1 (en) 2012-03-20 2013-09-26 Biomet 3I, Llc Surface treatment for an implant surface

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB2189815B (en) * 1986-03-24 1990-10-10 Permelec Electrode Ltd Titanium composite materials coated with calcium phosphate compound and process for production thereof
DE3711426A1 (de) * 1987-04-04 1988-10-13 Mtu Muenchen Gmbh Implantat mit bioaktivem ueberzug
EP0322250B1 (en) * 1987-12-23 1991-10-09 Sumitomo Chemical Company, Limited Coating liquor containing hydroxyapatite and method for forming hydroxyapatite coating film using the same
EP0328041B1 (en) * 1988-02-08 1994-09-07 Mitsubishi Chemical Corporation Ceramic implant and process for its production
JPH062154B2 (ja) * 1988-03-30 1994-01-12 工業技術院長 リン酸カルシウム系物質コーティング用粉体、コーティング方法及び複合生体セラミックス
US4990163A (en) * 1989-02-06 1991-02-05 Trustees Of The University Of Pennsylvania Method of depositing calcium phosphate cermamics for bone tissue calcification enhancement
JP2830262B2 (ja) * 1990-01-08 1998-12-02 住友化学工業株式会社 ハイドロキシアパタイト皮膜の形成方法
JPH0653631B2 (ja) * 1990-02-09 1994-07-20 工業技術院長 リン酸カルシウム化合物のコーテイング複合材料及びその製造法
US5266248A (en) * 1990-05-10 1993-11-30 Torao Ohtsuka Method of producing hydroxylapatite base porous beads filler for an organism
GB9310194D0 (en) * 1993-05-18 1993-06-30 Millenium Bioligix Inc Assessment of osteoclast activity

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007108373A1 (ja) * 2006-03-17 2007-09-27 Kinki University 生体親和性透明シート、その製造方法、及び細胞シート
US8454987B2 (en) 2006-03-17 2013-06-04 Kinki University Biocompatible transparent sheet, method for producing the same, and cultured cell sheet used the same sheet
CN101400784B (zh) * 2006-03-17 2013-09-11 学校法人近畿大学 生物体亲和性透明片材及其制造方法以及细胞片
JP2014172794A (ja) * 2013-03-11 2014-09-22 Shalom:Kk リン酸カルシウム系化合物

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