JP2004035494A

JP2004035494A - ネコ伝染性腹膜炎ワクチン

Info

Publication number: JP2004035494A
Application number: JP2002196290A
Authority: JP
Inventors: Kenji Motokawa; 本川　賢司; Hajime Kusuhara; 楠原　一; Hiroyuki Koyama; 小山　弘之; Tsutomu Hotatsu; 宝達　勉; Setsuo Arai; 荒井　節夫
Original assignee: Kitasato Institute
Current assignee: Kitasato Institute
Priority date: 2002-07-04
Filing date: 2002-07-04
Publication date: 2004-02-05
Anticipated expiration: 2022-07-04
Also published as: JP4242607B2; WO2004004760A1; US20120107390A1; AU2003246274B8; EP1543838A1; EP1543838A4; TWI329515B; US20060083755A1; DE60334226D1; CA2491726C; AU2003246274A1; CA2491726A1; TW200402306A; AU2003246274B2; EP1543838B1

Abstract

【課題】ネコ伝染性腹膜炎（ＦＩＰ）の予防や治療に有効なワクチンの提供。
【解決手段】特定の構造を有するＮ蛋白質、またはその断片を抗原として用いた、ＦＩＰのワクチンが提供された。本発明における望ましい抗原は、特定のＩ型ウイルス株（ＫＵ−２）に由来するＮ蛋白質である。このＮ蛋白質を含むワクチンは、幅広いＦＩＰＶに対して予防効果を与える。また、Ｎ蛋白質は感染増強エピトープを含まないので、安全性が高い。更に、実際のＦＩＰの原因の７０％以上を占めるＩ型ウイルスに対する予防効果を達成することができる。
【選択図】　なし

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明はネコ伝染性腹膜炎ウイルス（ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｖｉｒｕｓ；ＦＩＰＶ）の感染によって起こるネコ伝染性腹膜炎（ＦＩＰ）の予防、あるいは治療に関する。
【０００２】
【従来の技術】
ＦＩＰはウイルス感染と免疫機構が関与した複雑な疾患である。ＦＩＰは、腹腔内化膿性肉芽腫と腹水貯留を特徴とする慢性・進行性疾患である。腹腔内化膿性肉芽腫は、灰白質で隆起した結節を形成する。その病変は腹腔内に限らず全身の臓器に及ぶ。ＦＩＰの病型は臨床・病理学的に腹水型（滲出型）と乾燥型（非滲出型）に分けられる。前者は線維素性腹膜炎とこれに由来する腹水の貯留を特徴とする。また後者は、各種臓器における多発性化膿性肉芽腫形成を特徴とする。しかし、両者は完全に独立しているわけではなく、共存する例も少なくない。感染後どちらの病型に進行するかは感染ネコの細胞性免疫の強さにより決定されると考えられている。
【０００３】
ＦＩＰＶは大きさが約１００〜１５０ｎｍのエンベロープを有するウイルスで、コロナウイルス科のコロナウイルス属に属する。エンベロープの表面には、長さ約２０ｎｍで先端部分が大きくなっているいわゆる王冠に似た突起物（ｓｐｉｋｅ）を持っている。ウイルスのゲノムは１分子の１本鎖ＲＮＡからなり、ウイルスは細胞質で増殖し、小胞体を通って出芽、成熟する。ウイルスは、次の３つの主要構造蛋白質から構成されている。
ｎｕｃｌｅｏｃａｐｓｉｄ　（Ｎ）　ｐｒｏｔｅｉｎ
ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ　（Ｍ）　ｐｒｏｔｅｉｎ
ｐｅｐｌｏｍｅｒ　（Ｓ）　ｐｒｏｔｅｉｎ
【０００４】
ＦＩＰＶは、増殖の遅いＩ型と増殖の早いＩＩ型に分けられる。ＦＩＰＶ　Ｉ型に分類されるウイルス間では、その遺伝子塩基配列にバリエーション　があることが報告されているが、ＦＩＰＶ　ＩＩ型に分類されるウイルスではそういった報告はない。一方で、ネコのＦＩＰＶ感染の約７０％はＩ型のウイルスによると報告されている（宝達ら，　Ａｒｃｈ．　Ｖｉｒｏｌ．　１１７，　８５，　１９９１）。
【０００５】
ＦＩＰの発病機序については、これまで多くの感染実験やウイルス学的、免疫学的研究がなされてきた。その結果、ＦＩＰＶ感染においては、免疫システムが症状の重篤化にも関与していることがわかっている。
マクロファージは、一般にウイルス感染症に対する非特異的な生体防御因子の１つとして重要な役割を果たす。しかし一方では、マクロファージの生体防御機構が感染を増強する場合のあることが明らかにされている。たとえばＦＩＰを含め、いくつかのウイルス感染症においては、抗体が感染を増強する現象が確認されている。すなわち、特異抗体と結合したウイルスがＦｃレセプターを介してマクロファージに侵入し、その結果かえって感染が促進され、症状が悪化することが報告されている。抗体とＦｃレセプターを介するマクロファージへのウイルスの進入は、マクロファージ上のウイルスレセプターを必要としない。
【０００６】
この現象は、抗体依存性感染増強作用（Ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ）と呼ばれる。ＦＩＰＶもマクロファージに感染するウイルスである。そして、上記の抗体依存性感染増強作用でＦＩＰ発症が増強されていることが報告されている。従来のワクチン開発戦略は、主として中和抗体の誘導を目的としてきた。このようなワクチン開発戦略は、ＦＩＰに対してそのまま応用することは難しいと考えられる。
【０００７】
しかしＦＩＰワクチンの研究開発は、これまで主に従来のワクチン開発の戦略に基づいて進められてきた。その際、ＦＩＰにおける抗体依存性感染増強作用のメカニズムを十分考慮しない場合には、必ずしも望ましい結果を得られなかった。以下に、これまでのワクチン開発の試みについて説明する。
【０００８】
これまでにＦＩＰＶの不活化ワクチン、ＦＩＰＶを弱毒化した生ワクチンなど、さまざまなワクチンについてその感染防御効果が調べられてきた。しかし、いずれも十分な効果が得られず、逆に感染を早める結果となった。
１９８０年ＰｅｄｅｒｓｅｎとＢｏｙｌｅは、あらかじめＦＩＰＶ抗体が陽性の子ネコ、あるいは抗体陽性ネコの血清またはその精製ＩｇＧを受身免疫した子ネコは、強毒ＦＩＰＶを腹腔内接種することによって、抗体陰性の子ネコよりもより急速に重篤な症状が起こることを示した。（Ｐｅｄｅｒｓｅｎ　ＮＣ，　Ｂｏｙｌｅ　ＪＦ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ　ｐｈｅｎｏｍｅｎａ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｅｆｆｕｓｉｖｅ　ｆｏｒｍ　ｏｆ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ．　Ａｍ　Ｊ　Ｖｅｔ　Ｒｅｓ．　１９８０　Ｊｕｎ；４１（６）：８６８−７６．）
【０００９】
１９８１年ＷｅｉｓｓとＳｃｏｔｔ　らも、同様に、感染ネコの血清をＳＰＦの子ネコに受身免疫し、腹腔内にウイルスを接種した。彼らの結果も、抗体を受身免疫したネコで、ＦＩＰＶ感染が早まり接種後２４時間で体温が上昇し、それ以後死亡するまで持続した。その生存期間は９〜１０日で、対照の抗体陰性ネコの１４〜５２日より明らかに短かった（Ｗｅｉｓｓ　ＲＣ，　Ｓｃｏｔｔ　ＦＷ．　Ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｍｅｄｉａｔｅｄ　ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ　ｏｆ　ｄｉｓｅａｓｅ　ｉｎ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ：　ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ　ｗｉｔｈ　ｄｅｎｇｕｅ　ｈｅｍｏｒｒｈａｇｉｃ　ｆｅｖｅｒ．　Ｃｏｍｐ　Ｉｍｍｕｎｏｌ　Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ　Ｉｎｆｅｃｔ　Ｄｉｓ．　１９８１；４（２）：１７５−８９．）。
その後、抗体依存性の感染増強作用は他の研究者によっても確認された。現在では抗体によるＦＩＰＶ感染の増強作用が、ＦＩＰのワクチン開発の大きな障害であることは、多くの研究者の間で広く認識されている。
【００１０】
既に述べたように、ＦＩＰＶ　は　Ｎ、Ｍ、およびＳの３つの主要構造蛋白質から構成されている。これまでの研究成果から、中和エピトープと感染増強のエピトープは　Ｓ　蛋白質上に存在し、しかも、両者は密接に関連していることが明らかとなっている。従来のワクチン開発戦略においては、Ｓ蛋白質を抗原とするワクチンの開発が最初に試みられている。しかし、Ｓ　蛋白質を利用した感染防御ワクチンは、同時に感染増強のエピトープを含むことになり、常にその危険性がつきまとうことになる。
【００１１】
事実、ＩＩ型ウイルスの中和に関する抗原決定基をコードする遺伝子（Ｓ　蛋白質）　をワクシニアウイルスに組み込んだ組換えワクチンが作製されたが、感染は防御されず、発症が早まる結果となっている（Ｖｅｎｎｅｍａ　Ｈ，　ｄｅ　Ｇｒｏｏｔ　ＲＪ，　ＨａｒｂｏｕｒＤＡ，　Ｄａｌｄｅｒｕｐ　Ｍ，　Ｇｒｕｆｆｙｄｄ−Ｊｏｎｅｓ　Ｔ，　Ｈｏｒｚｉｎｅｋ　ＭＣ，　Ｓｐａａｎ　ＷＪ．　Ｅａｒｌｙ　ｄｅａｔｈ　ａｆｔｅｒ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｖｉｒｕｓ　ｃｈａｌｌｅｎｇｅ　ｄｕｅ　ｔｏ　ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ｖａｃｃｉｎｉａ　ｖｉｒｕｓ　ｉｍｍｕｎｉｚａｔｉｏｎ．　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　１９９０　Ｍａｒ；６４（３）：１４０７−９．）。更に増殖の遅いタイプＩウイルスからのＳ蛋白質を用いるワクチンについての記載もある（特開平７−３２７６８３）。
【００１２】
一方、アメリカの研究グループによって、温度感受性株の生ウイルスワクチンが開発された。このワクチンは、温度感受性株を鼻腔内に接種し局所の免疫を高めることを目的としている（Ｇｅｒｂｅｒ　ＪＤ，　Ｉｎｇｅｒｓｏｌｌ　ＪＤ，　Ｇａｓｔ　ＡＭ，　Ｃｈｒｉｓｔｉａｎｓｏｎ　ＫＫ，　Ｓｅｌｚｅｒ　ＮＬ，　Ｌａｎｄｏｎ　ＲＭ，　Ｐｆｅｉｆｆｅｒ　ＮＥ，　Ｓｈａｒｐｅｅ　ＲＬ，　Ｂｅｃｋｅｎｈａｕｅｒ　ＷＨ．　Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　ａｇａｉｎｓｔ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｂｙ　ｉｎｔｒａｎａｓａｌ　Ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆａ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ−ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ　ＦＩＰＶ　ｖａｃｃｉｎｅ．　Ｖａｃｃｉｎｅ．　１９９０　Ｄｅｃ；８（６）：５３６−４２．）。おそらく、温度感受性株は高温では増殖できないため、体内に侵入しても、その増殖部位が限局されるものと予測される。
このワクチンはアメリカ、ヨーロッパですでに臨床応用されている。しかし、その効果および安全性の評価は、研究者によって異なっている。ワクチネーションしたネコを実験的に攻撃した場合、その攻撃ウイルス量によっては、逆に感染が増強する場合もあることが報告されている（Ｓｃｏｔｔ，ＦＷ．，　Ｃｏｒａｐｉ，　ＷＶ．，　ａｎｄ　Ｏｌｓｅｎ，　ＣＷ．　Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｓａｆｅｔｙ　ａｎｄ　ｅｆｆｉｃａｃｙ　ｏｆ　Ｐｒｉｍｕｃｅｌｌ−ＦＩＰ　ｖａｃｃｉｎｅ．　Ｆｅｌｉｎｅ　Ｈｌｔｈ　Ｔｏｐ．　１９９２，　７：　６−８．；　Ｓｃｏｔｔ，ＦＷ．，　Ｃｏｒａｐｉ，　ＷＶ．，　ａｎｄ　Ｏｌｓｅｎ，　ＣＷ．　Ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａ　ｍｏｄｉｆｉｅｄ　ｌｉｖｅ　ＦＩＰＶ　ｖａｃｃｉｎｅ　ｕｎｄｅｒ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ．　Ｆｅｌｉｎｅ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ　１９９５，　２３：　７４−７６．）。
【００１３】
また、Ｍ蛋白質やＮ蛋白質をコードする遺伝子をワクシニアウイルスやポックスウイルスに組み込んだ組換えワクチンがＦＩＰ　発症に対してある程度有効であることが報告されている（Ｖｅｎｎｅｍａ　Ｈ，　ｄｅ　Ｇｒｏｏｔ　ＲＪ，　Ｈａｒｂｏｕｒ　ＤＡ，　Ｈｏｒｚｉｎｅｋ　ＭＣ，　Ｓｐａａｎ　ＷＪ．　Ｐｒｉｍａｒｙ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ａｎｄ　ｎｕｃｌｅｏｃａｐｓｉｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｇｅｎｅｓｏｆ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｖｉｒｕｓ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｉｃｉｔｙ　ｏｆ　ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ｖａｃｃｉｎｉａ　ｖｉｒｕｓｅｓ　ｉｎ　ｋｉｔｔｅｎｓ．　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ．　１９９１　Ｍａｒ；１８１（１）：３２７−３５．　；　Ｗａｓｍｏｅｎ　ＴＬ，　Ｋａｄａｋｉａ　ＮＰ，　Ｕｎｆｅｒ　ＲＣ，　Ｆｉｃｋｂｏｈｍ　ＢＬ，　Ｃｏｏｋ　ＣＰ，　Ｃｈｕ　ＨＪ，　Ａｃｒｅｅ　ＷＭ．Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｃａｔｓ　ｆｒｏｍ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｂｙ　ｖａｃｃｉｎａｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ａ　ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ　ｒａｃｃｏｏｎ　ｐｏｘｖｉｒｕｓ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ　ｔｈｅ　ｎｕｃｌｅｏｃａｐｓｉｄ　ｇｅｎｅ　ｏｆ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｖｉｒｕｓ．　Ａｄｖ　Ｅｘｐ　Ｍｅｄ　Ｂｉｏｌ．　１９９５；３８０：２２１−８．）。しかし、このワクチンは組換え生ワクチンであるため、その野外応用には安全性を含め多くの問題をクリアーしなければならない。
このように現時点では、ＦＩＰＶ　感染の防御効果と安全性に関して十分に満足し得るワクチンは開発されていない。
【００１４】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、ＦＩＰの感染予防、あるいは治療に有用なワクチンの提供を課題とする。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
たとえば、従来のウイルス感染症に対するワクチン開発の一般的方法から類推して、ＦＩＰ感染防御のメカニズムとして２つの有力な標的が考えられる。まず、ＦＩＰＶ　は経口・経鼻感染後、粘膜のバリアーを通過し、マクロファージを介して全身へ拡がっていく。粘膜バリアーの通過およびＦＩＰ　症状の発現はウイルスの感染量および病原性の強さにより異なる。そこでＦＩＰＶ　感染防御の第１の標的は粘膜でのウイルス増殖と組織への侵入をおさえることである。
【００１６】
次に、粘膜のバリアーを通過し、食細胞内に持続感染したＦＩＰＶ　を増殖させないためには、細胞性免疫を高めることが必要である。つまりウイルス感染細胞を免疫システムによって排除することができれば理想的である。これがＦＩＰＶ　感染防御の第２の標的である。事実ＦＩＰＶ　に感染耐過したネコは、細胞性免疫が高まっていることが報告されている。
【００１７】
このような背景のもとで、本発明者らは、ウイルス構成蛋白質のうち感染増強エピトープを含まないＮ　蛋白質に注目した。しかし一般に、Ｎ蛋白質はウイルス粒子や感染細胞の表面には存在しないため、Ｎ蛋白質のみの免疫では感染増強を起こさない反面、感染を完全に防御することは難しいと推測された。実際、ＩＩ型ＦＩＰＶのＮ蛋白質をコードする遺伝子を枠にシニアウイルスで発現させた組み換え体がワクチンに利用された報告がある（ＵＳ　５８１１１０４）。しかしこの報告ではその感染予防効果を裏付けるデータは得られていない。したがってこれらの結果は、ＦＩＰＶ　ＩＩ型のＮ蛋白質を抗原として用いても、感染あるいは発症の予防効果に優れたワクチンの開発が困難であることを示していた。
【００１８】
一方、Ｉ型のＮ蛋白質を利用したワクチンについては報告がない。その要因はＩ型は組織培養での増殖速度が遅いため扱いにくいこと、さらにネコに対する病原性がＩＩ型よりも低くＦＩＰ発症率が低いため、感染実験のデザインが難しいことなどから、ＦＩＰワクチンの研究においてＦＩＰＶ　Ｉ型を材料とすることに困難を伴うためである。　しかし、これはＦＩＰＶ　Ｉ型ウイルスに有効なワクチンの開発が重要ではないことを意味しない。というのは、実際の臨床現場でＦＩＰの７０％以上はＩ型ウイルスの感染が原因となっており、ＩＩ型のウイルスが分離される割合は低いのである。
【００１９】
したがって本発明者らは、実用上の効果を期待できるワクチンを得るためには、Ｉ型に由来する抗原の使用が重要な条件となると考えた。そして、ワクチン原料として利用しうる、Ｉ型ウイルス由来抗原について探索を続けた。その結果本発明者らは、Ｉ型のウイルスに由来する特定のアミノ酸配列を有するＮ蛋白質を抗原とするワクチンが、幅広いＦＩＰＶに対する予防効果を与えうることを見出し本発明を完成した。すなわち本発明は、以下に示すＦＩＰの予防あるいは治療用ワクチン、予防あるいは治療方法に関する。更に本発明は、ＦＩＰの検査方法と検査用試薬にも関する。
〔１〕以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質を有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチン。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
〔２〕以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドを有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチン。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
〔３〕ポリヌクレオチドが、ａ）またはｂ）に記載のポリヌクレオチドである〔１〕または〔２〕に記載のワクチン。
〔４〕以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質との結合能を有する抗体を有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用抗体製剤。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
〔５〕〔１〕、〔２〕、および〔３〕のいずれかに記載のワクチンを少なくとも１回ネコに投与するプロセスを含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防のための方法。
〔６〕〔４〕に記載の抗体製剤を少なくとも１回ネコに投与するプロセスを含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防のための方法。
〔７〕以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質とネコの血清をインキュベートし、該蛋白質と結合する抗体を検出する工程を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の検査方法。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
〔８〕以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の検査用試薬。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
【００２０】
【発明の実施の形態】
配列番号：１に示す塩基配列、並びにこの塩基配列によってコードされるアミノ酸配列（配列番号：２）は、ＦＩＰＶのＩ型の株ＫＵ−２に由来する。ＫＵ−２の遺伝子の塩基配列、並びに遺伝子によってコードされているアミノ酸配列は公知である（Ｋ．Ｍｏｔｏｋａｗａ　ｅｔ　ａｌ．　Ｍｉｃｒｏｖｉｏｌ．　Ｉｍｍｕｎｏｌ．，４０／６，　４２５−４３３，　１９９６）。しかしこの遺伝子を利用して、ＦＩＰの予防や治療が可能となることは知られていない。
【００２１】
先に述べたように、ＦＩＰＶのＩ型に分類された株の塩基配列は、株間での相同性が低い。表１に、これまでにＮ蛋白質をコードする遺伝子の塩基配列が特定されたＦＩＰＶの代表的な株や近縁の他のウイルス間の相同性をまとめた。たとえば、ＫＵ−２のＮ蛋白質に対する他の株のＮ蛋白質の相同性は、９２％に満たない。この相同性は、ＩＩ型やネコ・腸コロナウイルスのＮ蛋白質との相同性と同程度である。
【００２２】
つまり、Ｉ型のウイルスは、バリエーションが大きい。Ｎ蛋白質のアミノ酸配列の比較結果を図２に示した。図２からは、各ウイルス間のアミノ酸配列の相違、あるいはＫＵ−２株のアミノ酸配列が、他の株と相違していることが見て取れる。したがって、Ｉ型のいずれかのウイルスを材料として作成したワクチンの予防や治療の効果は、株間で相違すると予測された。このような従来の知見に基づく予測に反し、本発明は、特定の株に由来するウイルス抗原が、幅広い株に対する有効性と、高い安全性とを有するワクチンの製造に有用であるという新規な知見に基づいている。
【００２３】
すなわち本発明は、以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質を有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチンに関する。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
【００２４】
本発明によるワクチンは、ＦＩＰＶのＫＵ−２株由来のＮ蛋白質を有効成分とすることができる。ＫＵ−２株のＮ蛋白質のアミノ酸配列を配列番号：２に、またこのアミノ酸配列をコードする塩基配列を配列番号：１、並びに図１に示した。本発明のワクチンにおける有効成分には、この他、ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、あるいはｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質を用いることができる。なおＩ型に分類された既知のＦＩＰＶのＮ蛋白質と、ＫＵ−２株のＮ蛋白質の相同性は、いずれも９３％未満である。
【００２５】
一般に、高い相同性を有するアミノ酸配列からなる蛋白質の免疫学的な性状は類似する。本発明において、望ましいアミノ酸配列は、配列番号：２に対して、通常９３％以上、より望ましくは９５％以上、更に望ましくは９８％以上、あるいは９９％以上の相同性を有するアミノ酸配列である。
【００２６】
アミノ酸配列の相同性を求める手法は公知である。たとえば、Ｋａｒｌｉｎ　ａｎｄ　ＡｌｔｓｃｈｕｌによるアルゴリズムＢＬＡＳＴ（Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ　９０：５８７３−５８７７，　１９９３）は、アミノ酸配列の相同性を決定するための代表的なアルゴリズムである。このアルゴリズムを実現するプログラムがＢＬＡＳＴＸ（Ａｌｔｓｃｈｕｌ　ｅｔ　ａｌ．　Ｊ．　Ｍｏｌ．　Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４１０，　１９９０）である。ＢＬＡＳＴＸによってアミノ酸配列を解析する場合には、パラメーターはたとえばｓｃｏｒｅ　＝　５０、ｗｏｒｄｌｅｎｇｔｈ　＝　３とする。あるいはＢＬＡＳＴとＧａｐｐｅｄ　ＢＬＡＳＴプログラムを用いる場合には、各プログラムのデフォルトパラメーターを用いることができる。
【００２７】
たとえば実施例においては、表１のホモロジーは、遺伝情報処理ソフトウェアＧＥＮＥＴＹＸのマキシマムマッチングを用いて算出した（Ｔａｋａｓｈｉ　Ｋ　ａｎｄ　Ｇｏｔｈｏ　Ｏ　（１９８４）　Ｊ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ．　９２：　１１７３−１１７７）。パラメーターは次のとおりである。ｍａｔｃｈｉｎｇ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ：ｍａｔｃｈｅｓ＝−１，　ｍｉｓｍａｔｃｈｅｓ＝１ｇａｐｓ＝１，　＊Ｎ＋＝２
その他、Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法（Ｌｉｐｍａｎ　ＤＪ　ａｎｄ　Ｐｅａｒｓｏｎ　ＷＲ　（１９８５）　Ｓｃｉｅｎｃｅ　２２７：１４３５−１４４１）に基づいてホモロジーを決定することもできる。Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法におけるパラメーターは次のとおりである。
ｕｎｉｔ　ｓｉｚｅ　ｔｏ　ｃｏｍｐａｒｅ＝２（ａｍｉｎｏ　ａｃｉｄ）　ｏｒ　５　（ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）
【００２８】
本発明のワクチンの有効成分とする蛋白質のアミノ酸配列において、配列番号：２に記載のアミノ酸配列に導入しうるアミノ酸残基の変異の数は、通常２５以下、あるいは２０以下、望ましくは０−１５、より望ましくは０−５、更に望ましくは０−３である。一般に蛋白質の性質をできるだけ損なわないようにするためには、置換されるアミノ酸は、置換前のアミノ酸と似た性質を有するアミノ酸であることが好ましい。このようなアミノ酸の置換は、保存的置換と呼ばれている。
【００２９】
例えば、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｐｒｏ、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐは、共に非極性アミノ酸に分類されるため、互いに似た性質を有する。また、非荷電性としては、Ｇｌｙ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｃｙｓ、Ｔｙｒ、Ａｓｎ、Ｇｌｎが挙げられる。また、酸性アミノ酸としては、ＡｓｐおよびＧｌｕが挙げられる。また、塩基性アミノ酸としては、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓが挙げられる。
【００３０】
更に本発明のワクチンは、ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列を含む蛋白質を有効成分とすることができる。ワクチンの有効成分は、免疫担当細胞に免疫学的な刺激を与えることができれば、必ずしも抗原蛋白質の全体構造を維持していなくてもよい。一般には１５アミノ酸残基以上を有するポリペプチドによる免疫刺激は、困難を伴わずに検出できるとされる。一方、連続する２０アミノ酸あるいは３０アミノ酸からなるアミノ酸配列は、当該蛋白質に固有のアミノ酸配列を構成するとされている。特に４５アミノ酸残基を越えるアミノ酸配列は、配列番号：２に特異的なアミノ酸配列を構成する。したがって、条件ｅ）を満たす部分アミノ酸配列からなる蛋白質は、ａ）−ｄ）のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列から選択されたアミノ酸配列と同様の抗原刺激を免疫担当細胞に与えることができる。本発明における望ましいポリペプチドは、４５以上、あるいは５０以上、望ましくは５５以上、より望ましくは６５以上のアミノ酸残基を含む、配列番号：２に記載のアミノ酸配列から選択された連続するアミノ酸配列を有するポリペプチドである。
【００３１】
本発明において、望ましい部分アミノ酸配列は、前記ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列中、エピトープとして予測された塩基配列を含むことができる。当業者は、与えられたアミノ酸配列をもとに、エピトープを予測することができる。エピトープは、アミノ酸配列の様々な特徴に基づいて予測される。例えば、親水性／疎水性、電荷、糖鎖結合配列、ジスルフィド結合、蛋白質の二次構造、Ｔ細胞抗原性部位などの情報が、パラメーターの予測に利用される。蛋白質の二次構造は、Ｃｈｏｕ−Ｆａｓｍａｎ法やＲｏｂｓｏｎ法などによって予測することができる。またＴ細胞抗原性部位は、ＩＡパターンやＲｏｔｈｂａｒｄ／Ｔａｙｌｏｒパターンなどに基づいて予測されている。
【００３２】
その他、また、モノクローナル抗体を利用してペプチドマッピングをすることにより実験的にエピトープを特定することこともできる。この方法は、免疫原を構成するアミノ酸配列を構成する部分アミノ酸配列からなるペプチド断片に対する抗体の反応性に基づいて、その抗体が認識するエピトープを決定する方法である。ペプチド断片のアミノ酸配列は、少しづつオーバーラップするようにデザインされる。この解析方法によって、免疫システムが、免疫原として用いた蛋白質の、どのアミノ酸配列を認識したのかを明らかにすることができる。
【００３３】
前記ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質は、ＦＩＰＶの増殖を抑制する免疫応答を誘導する一方、感染増強エピトープを含まない。したがって、安全性と予防効果に優れたワクチンを提供することができる。更に、この蛋白質のエピトープを構成するアミノ酸配列からなる蛋白質断片も同様に、宿主の目的とする免疫応答を誘導しＦＩＰＶの予防効果を達成しうる。
【００３４】
本発明における望ましい蛋白質断片として、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と免疫学的に同等な活性を有する断片を示すことができる。免疫学的に同等とは、宿主に投与されたときに、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質を投与した場合と同等の免疫応答を誘導することを言う。
【００３５】
本発明における蛋白質断片は、単一であることもできるし、異なるアミノ酸配列からなる複数の断片を用いることもできる。したがって、単一では免疫学的に同等といえない断片であっても、複数の断片の組み合せによって免疫学的に同等な活性を示す断片の組み合せは本発明に含まれる。更に、蛋白質断片以外の補助的な成分の組み合せによって免疫学的に同等な活性を達成できる断片を含むワクチンは、本発明に含まれる。
たとえば、特定のアジュバントを配合することによって、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質と免疫学的に同等な活性を示す蛋白質断片を本発明に用いることができる。その他、適当なキャリアー蛋白質との融合蛋白質とすることによって免疫学的に同等な活性を維持する蛋白質断片も、本発明に用いることができる。
【００３６】
投与された蛋白質に対する宿主の免疫応答は、たとえば次のような指標に基づいて比較することができる。
−投与された蛋白質に対する抗体価、
−細胞性免疫の活性化作用
−感染源のチャレンジに対する生体防御機構のレベル
【００３７】
投与された蛋白質に対する抗体価は、各種のイムノアッセイによって測定することができる。より具体的には、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなる蛋白質を感作したプレートに被検動物の血液試料を加え、更に当該動物のイムノグロブリンに対する標識抗体を反応させることによって、抗体価を測定することができる。
【００３８】
また投与された蛋白質による細胞性免疫の活性化作用は、たとえば末梢血中のＴ細胞の活性化の程度をｉｎ　ｖｉｔｒｏで測定することによって評価することができる。具体的には、標的細胞に対する被検Ｔ細胞の攻撃活性を測定する方法として、ＣＴＬ　ａｓｓａｙが知られている。更に最近では、サイトカインやパーフォリンを指標として、Ｔ細胞の活性化レベルを把握する方法も用いられている。Ｔ細胞の活性化の指標には、ＩＬ−２やγ−ＩＦＮなどが用いられる。パーフォリンは、細胞障害性に関与する生体分子である。これらの指標は、ＥＬＩＳＡ、ｒｅａｌ　ｔｉｍｅ　ＰＣＲ、ＥＬＩＳＰＯＴ法などによって測定される。一般に、これらの測定手技は、高度な細胞培養技術を必要とするＣＴＬ　ａｓｓａｙに比べて簡便である。
【００３９】
さらに免疫学的な同等性は、実際に蛋白質を投与した固体に、病原体をチャレンジし、その防御レベルを比較することによって確認することもできる。防御レベルは、病原体を接種後の、体重や体温の変化、あるいは生存日数等に基づいて比較することができる。
【００４０】
本発明における前記ａ）−ｅ）に記載のポリヌクレオチドの由来は制限されない。したがって、天然のポリヌクレオチドであっても、人為的または自発的に変異が導入されたポリヌクレオチドであってもよい。また、人工的にデザインされた配列からなるポリヌクレオチドであってもよい。
天然に由来するポリヌクレオチドには、たとえばＫＵ−２株のポリヌクレオチドや、ＫＵ−２株から誘導された変異株に由来するポリヌクレオチドなどが含まれる。その他、ＫＵ−２株と相同性の高い塩基配列を有するＦＩＰＶに由来するポリヌクレオチドを用いることもできる。一方、本発明における人工的にデザインされたポリヌクレオチドには、たとえばＫＵ−２株の塩基配列に、人為的な変異を導入したポリヌクレオチドを示すことができる。
【００４１】
本発明のポリヌクレオチドは、例えば、公知のハイブリダイゼーション技術（Ｓａｍｂｒｏｏｋ　Ｊ．，　Ｆｒｉｔｓｃｈ，　Ｅ．　Ｆ．，　ａｎｄ　Ｍａｎｉａｔｉｓ　Ｔ．　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｃｌｏｎｉｎｇ　：　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ　（２ｎｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ）．　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ．）を利用して調製することができる。ＤＮＡの単離には、ポリメラーゼ連鎖反応技術　（Ｓａｍｂｒｏｏｋ　Ｊ．，　Ｆｒｉｔｓｃｈ，　Ｅ．　Ｆ．，　ａｎｄ　Ｍａｎｉａｔｉｓ　Ｔ．　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｃｌｏｎｉｎｇ　：　Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ　（２ｎｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ）．　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ．）を利用することもできる。即ち、当業者においては、ハイブリダイゼーション法やＰＣＲ法により、ウイルス由来のＤＮＡなどをスクリーニングしＤＮＡを単離することができる。ハイブリダイゼーション法に必要なプローブや、ＰＣＲ法に必要なプライマーの塩基配列は、例えばＫＵ−２株Ｎ蛋白質のｃＤＮＡ配列（配列番号：１）に基づいて設計することができる。
【００４２】
アミノ酸に変異を導入する方法はよく知られている。例えば、変異ウイルスを含むウイルスライブラリーや、変異Ｎ蛋白質をコードするＤＮＡライブラリー等を作製し、望みのアミノ酸配列をコードするＤＮＡをスクリーニングすることによって単離することができる。あるいは変異の入ったウイルスを自然界からスクリーニングすることもできる。更に、公知の遺伝子工学的技術を用いて、部位特異的に変異を導入することも可能である。部位特異的に変異を導入するためには、例えば、ＳＯＥ（ｓｐｌｉｃｉｎｇ　−　ｂｙ−　ｏｖｅｒｌａｐ−　ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ）−ＰＣＲ法（Ｈｏ，　Ｓ．Ｎ．，　Ｈｕｎｔ，　Ｈ．Ｄ．，　Ｈｏｒｔｏｎ，　Ｒ．Ｍ．，　Ｐｕｌｌｅｎ，　Ｊ．Ｋ．，　ａｎｄ　Ｐｅａｓｅ，　Ｌ．Ｒ．　（１９８９）．　Ｇｅｎｅ　７７，　５１−５９）、Ｋｕｎｋｅｌ法（Ｋｕｎｋｅｌ，　Ｔ．Ａ．　（１９８５）　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ；８２（２）：４８８−９２）法を用いることができる。
【００４３】
本発明のワクチンの有効成分とする蛋白質は、公知の方法によって得ることができる。たとえば前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリクレオチドを適当な発現ベクターに挿入し、宿主細胞に導入することにより発現させることができる。宿主としては、細菌、酵母、昆虫細胞、哺乳動物細胞、あるいは哺乳動物等を示すことができる。より具体的には、細菌では大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　Ｃｏｌｉ）を、酵母では分裂酵母Ｓｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｐｏｍｂｅを、あるいは哺乳動物細胞としてはＣＨＯ細胞やＣＯＳ細胞等を示すことができる。
【００４４】
これらの宿主への形質転換が可能なベクターには、公知のベクターを利用することができる。中でも、昆虫細胞とバキュロウイルスベクターを用いた発現系は、本発明のワクチンの製造に有用である。
【００４５】
バキュロウイルス（Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ　ｃａｌｉｆｏｒｉｃａ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓ　ｖｉｒｕｓ；ＡｃＮＰＶ）は、昆虫を宿主とする、２本鎖の環状ＤＮＡゲノムを有するウイルスである。感染細胞の核内で作り出される多角体（ｐｏｌｙｈｅｄｒａ）が多くのウイルス粒子を含み、感染源となる。多角体を構成する蛋白質の一つである多角体蛋白質「ポリヒドリン」は、強力なプロモーターによって発現が制御されている。この強力なポリヒドリンプロモーターの活性を利用した発現系が、バキュロウイルス発現系である。
【００４６】
ポリヒドリン遺伝子は、感染の後期には非常に高い発現量を示す。しかし、培養細胞においては、ウイルスの増殖に必須の蛋白質ではない。そこで、ポリヒドリンプロモーターの下流のポリヒドリン遺伝子を外来性遺伝子に組み換えれば、ポリヒドリンと同様の高発現を期待できる。バキュロウイルス発現系は、具体的には、次のようなステップにしたがって構築される。
−外来性遺伝子のトランスファーベクターへのサブクローニング
−組み換えウイルスの調製
−蛋白質の発現
【００４７】
約１３０ｋｂｐの大きさを有するバキュロウイルスゲノムに、外来性遺伝子を直接挿入することは難しい。そこで外来性遺伝子は、まず１０ｋｂ程度のプラスミドからなるトランスファーベクターに挿入される。トランスファーベクターとウイルスＤＮＡを宿主細胞に同時にトランスフェクションし、相同組み換えを利用してウイルスに外来性遺伝子を組み込む。
【００４８】
トランスファーベクターには、バキュロウイルス組み換え用の市販のベクターを利用することができる。たとえば、ｐＶＬ１３９２、あるいはｐＶＬ１３９３（いずれもＰｈａｒｍｉｎｇｅｎ製）、並びにｐＰＡＫ８、あるいはｐＰＡＫ９（いずれもＣｌｏｎｔｅｃｈ製）は、最も良く使われるトランスファーベクターである。その他に、Ｎ末端にシグナル配列を付加できるベクター、ヒスチジンタグを付加できるベクター、あるいは複数のプロモーターを配置したベクターなど、いろいろな機能を付加されたベクターも市販されている。これらの市販のベクターは、いずれも本発明に利用することができる。
【００４９】
感染細胞の培養上清には、組み換えに成功したウイルスと、組み換えが起きていないウイルスの両方が産生されるので、必要に応じて組み換えウイルスを選択することができる。組み換えウイルスは、プラーク形成を利用して選択することができる。すなわち、組み換えウイルスを感染させた細胞は、多角体を形成できないために透明なプラークを形成することを利用して、組み換えウイルスを分離する。組み換えが起きていないウイルスは、大量の多角体を発現するので、白いプラークを形成する。得られた組み換えウイルスは、タイターを上げるために、必要に応じて感染を繰り返して、増幅することができる。
【００５０】
組み換え効率が低い環状野生型ＡｃＮＰＶのＤＮＡに対して、より組み換え効率を向上させた変異ウイルスも実用化されている。たとえば、市販の変異バキュロウイルスを用いた場合には、１００％近い高い組み換え効率が期待できる。その結果、プラーク精製のステップは必須ではなくなっている。具体的には、Ｂａｃｕｌｏ　Ｇｏｌｄ^（ＴＭ）　Ｌｉｎｅａｒｉｚｅｄ　Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ製）や、ＢａｃＰＡＫ６　ｖｉｒａｌ　ＤＮＡ　Ｂｓｕ　３６　Ｉｄｉｇｅｓｔｅｄ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）等の変異バキュロウイルスが市販されている。
【００５１】
バキュロウイルスの組み換えや、蛋白質発現には、昆虫細胞が利用される。最も一般的な宿主細胞は、昆虫細胞株Ｓｆ９である。Ｓｆ９は、Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、あるいはＡＴＣＣなどから購入することができる。その他、Ｓｆ２１（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）、あるいはＨｉｇｈ　ｆｉｖｅ^ＴＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）等の昆虫細胞も本発明に利用することができる。
【００５２】
これらの昆虫細胞は、適当な培地中で維持することができる。培地には、たとえば、Ｇｒａｃｅ　Ｉｎｓｅｃｔ　Ｍｅｄｉｕｍ、ＴＭＮ−ＦＨ　Ｉｎｓｅｃｔ　Ｍｅｄｉｕｍ、あるいはＥｘｃｅｌｌ　４００などの市販の培地を利用することができる。昆虫細胞は、一般に、２７℃前後で培養され、動物細胞のようにＣＯ_２は必須ではない。Ｓｆ９は、単層培養でも浮遊培養でも良く増殖する。
【００５３】
昆虫細胞へのトランスファーベクター、およびバキュロウイルスＤＮＡのトランスフェクションも公知である。具体的には、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ　Ｒｅａｇｅｎｔを使い、トランスファーベクターとバキュロウイルスＤＮＡを細胞に感染させる。感染後、培養を継続すれば、培養上清に組み換えウイルスが産生される。上清中のウイルスを必要に応じて増幅し、更に大量の昆虫細胞に感染させて外来性遺伝子を大量発現させる。発現後の細胞を回収して、外来性遺伝子の発現産物を精製することができる。
【００５４】
バキュロウイルス発現系は、大腸菌などを宿主とする発現系と比較して、一般に、次のような利点を有するとされている。
−発現量が高い
−分子量の大きい蛋白質の発現レベルも比較的高い
−動物細胞における発現と同様の翻訳後修飾が起きる
−複数種の蛋白質の発現と再構成が可能
【００５５】
他方動物細胞発現ベクターとしては、大腸菌における複製に必要な複製遺伝子（ＣｏｌＥ１　ｏｒｉ）　と、哺乳動物細胞での発現を支える複製遺伝子　（ＳＶ４０　ｏｒｉ）　およびＳＶ４０初期プロモーターを持ったベクター等を利用することができる。このような発現ベクターの初期プロモーターの下流に前記ａ）−ｅ）に記載のポリクレオチドを組み込み、大腸菌においてクローニングする。クローニングした発現ベクターを回収し、リン酸カルシウム沈殿法やリポソーム法によって適当な動物細胞（サル腎由来のＣＯＳ細胞など）に形質転換すれば、動物細胞でＮ蛋白質を発現させることができる。
【００５６】
以上のようにして発現させた蛋白質は、公知の手法により精製して純粋な蛋白質とすることができる。精製のために、各種の結合性蛋白質との融合タンパク質としてＮ蛋白質を発現させ、これをアフィニティクロマトグラフィーによって精製する手法を応用することもできる。このような精製方法としては、ヒスチジンタグとの融合タンパク質をニッケルカラムで吸着精製する系等が公知である。アフィニティクロマトグラフィーなどで回収されたＮ蛋白質は、イオン交換クロマトグラフィー等を利用して更に精製することができる。
【００５７】
本発明のワクチンに用いる蛋白質は、遺伝子組み換えによる生産方法の他、ＦＩＰＶを感染させた培養細胞から得ることもできる。ＦＩＰＶの培養には、哺乳動物由来の初代細胞あるいは株化細胞を使用することができる。特にネコに由来する細胞は、ＦＩＰＶの培養に好適である。ネコ由来の株化細胞としては、例えばｆｃｗｆ４細胞やＣＲＦＫ細胞を示すことができる。これらの細胞は、細胞バンクから入手することができる。ネコ株化細胞を用いたＦＩＰＶの培養方法は公知である（Ｈｏｈｄａｔｓｕ　Ｔ，　Ｓａｓａｍｏｔｏ　Ｔ，　Ｏｋａｄａ　Ｓ，　Ｋｏｙａｍａ　Ｈ．　Ａｎｔｉｇｅｎｉｃ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｆｅｌｉｎｅｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓｅｓ　ｗｉｔｈ　ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ　（ＭＡｂｓ）：　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＭＡｂｓ　ｗｈｉｃｈ　ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ＦＩＰＶ　ｓｔｒａｉｎ　７９−１１４６　ａｎｄ　ＦＥＣＶ　ｓｔｒａｉｎ　７９−１６８３．ＶｅｔＭｉｃｒｏｂｉｏｌ．　１９９１　Ｊｕｎ；２８（１）：１３−２４．）。またブタやイヌなど他の動物由来の細胞も使用することができる。
【００５８】
更に、ワクチンに必要な蛋白質は化学的に合成することができる。アミノ酸を順番に結合して目的とするアミノ酸配列を有するオリゴペプチドとする合成方法は、公知である。特に、比較的短いアミノ酸配列からなる蛋白質断片は、容易に化学的に合成することができる。あるいは、化学的な合成が難しい長いアミノ酸配列からなる蛋白質も、オリゴペプチドを相互に連結することによって合成することができる。
【００５９】
得られたＮ蛋白質は、Ｎ蛋白質そのものをワクチンとして使用する他に、薬学的処方を適用して製剤化されうる。例えば、薬理学上許容される担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤などと適宜組み合わせて製剤化することができる。本発明のワクチンには、適宜アジュバントを配合することができる。
【００６０】
本発明のワクチンには、任意のアジュバントを配合することによって、その作用を向上させることができる。本発明に利用することができるアジュバントとして、たとえば次のような成分を示すことができる。
アルミニウム塩などの無機物質、
微生物もしくは微生物由来物質
−ＢＣＧ、
−ムラミルジペプチド、
−百日せき菌
−百日せきトキシン
−コレラトキシンなど
界面活性作用物質
−サポニン、
−デオキシコール酸など、
スクアレンとその関連物質
アジュバントは、単独で使用するか、もしくは複数の物質を組み合わせて使用することができる。ワクチン学の専門家ならば、実験により好適なアジュバントの組み合わせ決定することができる。アジュバントの種類により、主に液性免疫が刺激されるものと細胞性免疫が主に刺激されるものとが知られている。例えば液性免疫を主に刺激するアジュバントとしてリン酸アルミニウムが知られている。一方、Ｑｕｉｌ　Ａ　や　ＱＳ−２１などのサポニン類、百日咳トキシン、コレラトキシンなどは細胞性免疫を刺激しやすいことが知られている。このような情報を参考にしながら、ある抗原との組み合わで使用する好適なアジュバントを選択することができる。
【００６１】
また本発明は、前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドを有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチンに関する。先に述べたようにａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を有する蛋白質は、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチンとして有用である。したがって、前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドを生体に導入し、生体内で発現させることによって、本発明のワクチンの投与と同様の効果を期待できる。
【００６２】
本発明のワクチンにおいて、前記ポリヌクレオチドは、発現可能な状態で生体内に導入される。そのためには、たとえば宿主において機能する発現制御領域の下流に前記ポリヌクレオチドを挿入したベクターとして、生体に導入することができる。発現制御領域として、薬剤感受性を有するプロモーターを用いれば、薬剤の投与によって目的とする遺伝子の発現を誘導することができる。このようなプロモーターとして、例えばカナマイシン感受性のプロモーターが知られている。あるいは、部位特異的に発現が誘導されるプロモーターを用いれば、目的とする遺伝子の発現部位を特定することができる。
【００６３】
抗原をコードする遺伝子を生体に投与し、生体において発現させ、ワクチンとして作用させる手法は遺伝子ワクチンと呼ばれている。遺伝子ワクチンにおいては、発現させるべき抗原をコードする遺伝子が、適当なキャリアーとともにあるいはキャリアーを伴わずに生体内に導入される。適当な緩衝液に浮遊した十分な量のＤＮＡを筋肉内に注射したのみでも蛋白質の発現を誘導できることが知られている。一方キャリアーを用いる場合には、ベクターや人工的な担体が利用される。
【００６４】
ベクターには、ワクシニアウイルス（Ｖａｃｃｉｎｉａ　ｖｉｒｕｓ）などのウイルスベクターが利用される。ワクシニアウイルスは、１８６ｋｂのＤＮＡゲノムを有する、ポックスウイルス属のウイルスである。ワクシニアウイルスは、ワクチン（ｖａｃｃｉｎａｔｉｏｎ）の語源となった種痘ワクチンとして、既に多くのヒトが接種を受けた実績を有している。更にワクシニアウイルスは、核内に移行せず、細胞質内で転写と複製を行うため、導入した遺伝子が宿主のゲノムに組み込まれる危険性が少ない。したがって、ワクチンアウイルスは、科学的に見ても安全性が高いベクターとなりうる。加えてワクシニアウイルスベクターは、液性免疫よりも、細胞性免疫に対する刺激活性が大きいとされている。細胞性免疫を誘導しやすいという特徴は、細胞性免疫の重要性が高いＦＩＰＶの予防や治療において、有利な特徴である。
【００６５】
ワクシニアウイルスの他には、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レトロウイルスなどが遺伝子治療用のベクターとして利用されている。これらのウイルスベクターは、いずれも本発明に利用することができる。
【００６６】
ウイルスベクター以外にも、人工的なキャリアーを用いた遺伝子ワクチンが試みられている。人工的なキャリアーとして、リポソームや金コロイド等を示すことができる。
たとえば正電荷したリポソームを負電荷を有するＤＮＡに吸着させる。ＤＮＡを吸着したリポソームは、生体に投与されると、負電荷を有する細胞表面のリン脂質層に結合する。次いでＤＮＡは、細胞膜への吸着やエンドサイトーシスによって細胞膜内に取りこまれる。このときＤＮＡとしてプロモーターの下流に遺伝子を挿入したベクターを用いれば、当該遺伝子を導入された細胞内において、遺伝子は転写され蛋白質へと翻訳される。金コロイドは、遺伝子銃（ｇｅｎｅ　ｇｕｎ）を使った遺伝子導入に用いられる。すなわち、プラスミド（ｎａｋｅｄ　ＤＮＡ）を付着させた金コロイド粒子を、圧縮ガスを使って高圧接種する。金コロイド粒子が組織に入りこむときに、遺伝子が細胞内へ導入される。遺伝子銃を使った遺伝子の導入方法は、少量のＤＮＡの導入で高い蛋白質発現レベルを達成することができる。つまり、少量のＤＮＡで十分なワクチン効果を達成できることを意味している。
【００６７】
本発明のワクチンの動物への投与は、例えば、動脈内注射、静脈内注射、皮下注射などのほか、鼻腔内的、経気管支的、筋内的、または経口的に当業者に公知の方法により行いうる。投与量は、動物の体重や年齢、投与方法、使用目的などにより変動するが、当業者であれば適当な投与量を適宜選択することが可能である。たとえば、一般にネコのワクチンは、生後８週以降に２〜３週間隔で２回接種される。
本発明のワクチンは、ネコをはじめとするネコ科動物のＦＩＰの予防および／または治療に有用である。疫学的、あるいはウイルス学的なデータに基づいて、野生ネコ科動物のＦＩＰＶも、ネコのそれに近いとされている。したがって、本発明のワクチンは、ネコ科動物においても有効である。
【００６８】
加えて本発明は、前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質との結合能を有する抗体を有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用抗体製剤に関する。
【００６９】
既に述べたとおり、前記ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質は、ＦＩＰＶの増殖を抑制する免疫応答を誘導する一方、感染増強エピトープを含まない。その結果、この蛋白質の利用によって、安全性と予防効果に優れたワクチンを提供することができる。更に、前記ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質との結合能を有する抗体も、宿主への投与によって、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防効果を達成することができる。
これら蛋白質との結合能を有する抗体の投与は、蛋白質の投与によって誘導される免疫応答と類似した状態を、短期的に宿主に与えることができる。その結果、投与された抗体は、ＦＩＰＶの増殖を抑制する。また前記蛋白質が感染増強エピトープを含まないことから、抗体に起因する感染増強は防止できる。
【００７０】
本発明のネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用抗体製は、前記ａ）−ｅ）に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質を抗原として、免疫動物を免疫することによって得ることができる。抗体を得る手法は任意である。たとえば、抗原を適当なアジュバントともに投与し、免疫動物の血液から抗血清を得ることができる。あるいは、免疫動物の抗体産生細胞を回収し、クローニングすることによってモノクローナル抗体を得ることもできる。本発明の抗体製剤は、抗体を投与する動物と同じ種に由来することが望ましい。同じ種に由来する抗体は、安全であり、治療、あるいは予防効果を、より容易に達成することができる。
【００７１】
あるいは、異なる種に由来する抗体分子を、抗体工学的手法を利用して、ネコ化することもできる。たとえば、イムノグロブリンの定常領域をネコイムノグロブリンに置換したキメラ抗体を構築する技術が公知である。より具体的には、ネコイムノグロブリン遺伝子に、任意の動物のイムノグロブリンの可変領域をコードする遺伝子を接合することにより、イムノグロブリンの定常領域のみをネコ由来の蛋白質とすることができる。
【００７２】
イムノグロブリンの定常領域は、可変領域に比べて異物と認識されやすい。したがって、定常領域をネコ由来とすることで、イムノグロブリンの安全性、並びに生体内における安定性を高めることができる。このテクノロジーを利用して、目的とする結合親和性を有する抗体をキメラ化すれば、ネコへの投与に適したイムノグロブリンを得ることができる。
このテクノロジーを利用して、ネコヘルペスウイルスおよびネコカリシウイルスに対するマウス・モノクローナル抗体を　ネコ化したキメラ抗体が商品化されている（Ｕｍｅｈａｓｈｉ　Ｍ，　Ｎｉｓｈｉｙａｍａ　Ｋ，　Ａｋｉｙａｍａ　Ｓ，　Ｋｉｍａｃｈｉ　Ｋ，　Ｉｍａｍｕｒａ　Ｔ，　Ｔｏｍｉｔａ　Ｙ，　Ｓａｋａｇｕｃｈｉ　Ｓ，　Ｍａｋｉｎｏ　Ｈ，　Ｓｈｉｇａｋｉ　Ｔ，　Ｓｈｉｎｙａ　Ｎ，　Ｍａｔｓｕｄａ　Ｊ，　Ｔｏｋｉｙｏｓｈｉ　Ｓ．　Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｍｏｕｓｅ−ｃａｔ　ｃｈｉｍｅｒｉｃ　ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ　ａｇａｉｎｓｔ　ｆｅｌｉｎｅ　ｖｉｒａｌ　ｒｈｉｎｏｔｒａｃｈｅｉｔｉｓ　ａｎｄ　ｆｅｌｉｎｅ　ｃａｌｉｃｉｖｉｒｕｓ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．　Ｓｃｉ．　Ｒｅｐ．　Ｃｈｅｍｏ−Ｓｅｒｏ−Ｔｈｅｒａｐ．　Ｒｅｓ．　Ｉｎｓｔ．，　６：３９−４８　（１９９７））。
【００７３】
更に、ネコイムノグロブリンの超可変領域を、目的とする結合親和性を有する抗体の超可変領域と置換することによって、ネコ化抗体を得ることもできる。イムノグロブリンの可変領域は、抗原決定基との結合親和性を決定する相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍａｎｔａｒｉｔｙ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ；ＣＤＲ）と、それを保持するフレーム領域とによって構成されている。ＣＤＲの構造は極めて高度なバリエーションを有し、超可変領域とも呼ばれている。一方フレーム部分の保存性は高い。抗原との結合親和性は、主にＣＤＲによって決定されていることから、ＣＤＲを置換することによって、イムノグロブリンの結合親和性も変更することができる。
【００７４】
具体的には、フレーム部分にアニールするプライマーをデザインし、ＰＣＲによってＣＤＲをコードしているｃＤＮＡを取得する。得られたｃＤＮＡで、ネコイムノグロブリンのＣＤＲを置換すれば、任意の種のイムノグロブリンから得たＣＤＲを有するネコイムノグロブリンを得ることができる。つまり、目的とする結合親和性を有する任意の種のイムノグロブリンのＣＤＲを、ネコイムノグロブリンのＣＤＲと置換することによって、ネコイムノグロブリンに、必要な結合親和性を導入することができる。
【００７５】
本発明の抗体製剤は、前記ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質に結合能を有する、完全なイムノグロブリン、あるいはその可変領域を有効成分として含有することができる。イムノグロブリンの抗原に対する結合活性は、可変領域によって維持されている。したがって、可変領域のみを有効成分として用いることができる。しかしながら定常領域は、補体との結合活性、リンパ球上のＦｃ受容体との結合活性などの、免疫応答において重要な機能を有していることも事実である。したがって、定常領域を備えたイムノグロブリン分子を有効成分とする抗体製剤は、本発明の抗体製剤として好ましい。
【００７６】
本発明の抗体製剤において、抗体とは、イムノグロブリンそのもののみならず、未精製のイムノグロブリンを含む。したがって、抗血清などのイムノグロブリン含有分画は、抗体に含まれる。一方イムノグロブリンは、抗体を構造的な特徴に基づいて説明するときに用いる用語である。抗体、およびイムノグロブリンは、必要とする結合親和性を有するイムノグロブリンを含む限り、本発明の抗体製剤として利用することができる。したがって、必ずしも精製抗体や、モノクローナル抗体である必要はない。
【００７７】
抗体は、そのまま、あるいは薬学的処方を適用して製剤化されうる。例えば、薬理学上許容される担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤などと適宜組み合わせて製剤化することができる。
本発明の抗体製剤の動物への投与は、例えば、動脈内注射、静脈内注射、皮下注射などのほか、鼻腔内的、経気管支的、筋内的、または経口的に当業者に公知の方法により行いうる。投与量は、動物の体重や年齢、投与方法、使用目的などにより変動するが、当業者であれば適当な投与量を適宜選択することが可能である。
【００７８】
加えて本発明は、本発明のワクチンあるいは本発明の抗体製剤を少なくとも１回ネコに投与するプロセスを含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防のための方法に関する。本発明の方法は、ネコ（Ｆｅｌｉｓ　ｃａｔｕｓ）に属する全てのネコに適用することができる。ワクチンや抗体製剤の調製方法、そして動物への投与方法は、先に述べたとおりである。
【００７９】
本発明のワクチンまたは抗体製剤は、ネコにおけるＦＩＰＶの予防および／または治療に有用である。本発明において、ＦＩＰＶの予防とは、ＦＩＰＶの感染経験の無い動物、あるいは感染の後の発症前の状態に有る動物への予防的な投与によって、発症を阻害する作用を言う。発症の阻害とは、たとえば次のような作用が含まれる。
発症そのものを防ぐ作用、
発症を遅らせる作用、
発症後の症状を軽減する作用
発症後の治癒を早める作用
発症後の延命率を向上させる作用、あるいは
発症した個体から他の個体への感染力を阻害する作用
【００８０】
また本発明における治療とは、発症した個体への投与によって、疾患の症状を緩和する作用を言う。症状の緩和とは、たとえば次のような作用が含まれる。
症状を和らげる作用
治癒を早める作用、あるいは
発症後の延命率を向上させる作用
【００８１】
加えて本発明は、前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質とネコの血清をインキュベートし、該蛋白質と結合する抗体を検出する工程を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の検査方法に関する。実施例に示したように、ＫＵ−２に由来するＮ蛋白質は、ＦＩＰＶの幅広い株の抗血清と強く反応する。このことは、ＫＵ−２のＮ蛋白質が、ＦＩＰＶのワクチンとしての有用性が高いことを示すと同時に、診断用抗原としても有用であることを裏付けている。
【００８２】
ウイルス感染症の診断は、一般に、生体試料中に含まれるウイルス抗原や抗ウイルス抗体を指標として実施される。特に抗ウイルス抗体は、ウイルス抗原が消失した後でも検知できるため、診断指標として重要である。抗ウイルス抗体の検出には、ウイルス抗原が必要である。
【００８３】
一方、先にＦＩＰＶのＩ型に属するウイルスは、構造的な類似性が低いことを示した。そのため、被検動物の抗ＦＩＰＶ抗体の存在を確実に検出するためには、株ごとに異なる蛋白質を用意しなければならない可能性が考えられる。単一の蛋白質では、構造的に異なる抗原に対する抗体を検出できない恐れがある。一方本発明に基づく検査方法によれば、単一の蛋白質を抗原として、異なる株に対する抗血清を、十分な感度で検査することができる。したがって、本発明の検査方法は、ネコＦＩＰＶのスクリーニングに有用である。
【００８４】
すなわち本発明は、前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質とネコの血清をインキュベートし、該蛋白質と結合する抗体を検出する工程を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染のスクリーニング方法を提供する。本発明において、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染のスクリーニング方法とは、不特定多数のネコを対象として、ＦＩＰＶの感染経験を有する可能性のあるネコを見出すための検査方法を言う。
【００８５】
特定の抗原を用いて抗体の検出を行う方法は公知である。たとえば、固相上に抗原を固定し、この抗原に結合する抗体を、抗体を認識する抗体（第２抗体）によって検出することができる。あるいは、試料中に含まれる抗体を固相上に捕捉し、この抗体に抗原を反応させることによって、抗原特異的な抗体の存在を検出することができる。いずれの方法においても、抗体や抗原は、検出を容易にするために標識しておくことができる。抗原や抗体の標識には、酵素、蛍光物質、発光物質、着色粒子、あるいは放射性同位元素などが用いられる。蛋白質に標識成分を結合させる方法は公知である。
【００８６】
その他、抗原を感作した粒子担体の、抗体による凝集を指標として抗体を検出する方法も公知である。粒子凝集を指標とする方法は、固相と液相の分離を必要としないので、大量の試料を連続的に試験する方法として有用である。
【００８７】
前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質に結合する抗体が検出された個体は、ＦＩＰＶの感染経験を有すると診断される。あるいは、抗体価の変化を追跡することで、症状の程度を診断することもできる。たとえば、抗体価の上昇は、ウイルスの増殖に引き続いて起こる。したがって、抗体価が上昇しつつある個体は、ウイルスの増殖を伴っている可能性が高い。症状が軽快した後に抗体価が低下すれば、その個体は回復している可能性が高いと診断される。
【００８８】
本発明はまた、前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の検査用試薬に関する。本発明の試薬における前記ａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質は、上記の各種のイムノアッセイフォーマットに応じて、固相や粒子に固定することができる。また、上記の各種のイムノアッセイフォーマットに応じて、標識抗体、標識を検出するために必要な付加的な試薬、陽性対照、あるいは陰性対照等と組み合せて診断用キットとすることができる。
以下、本発明を実施例に基づいてさらに具体的に説明する。
【００８９】
【実施例】
〔１〕ウイルス蛋白質の精製
ＦＩＰＶ　Ｉ型　ＫＵ−２株の由来：
ワクチン抗原の作製および組換え体の作製には、北里大学獣医畜産学部獣医伝染病学教室においてＦＩＰ発症ネコから分離されたＦＩＰＶ　ＫＵ−２株を使用した。本ウイルスはＦＩＰＶ　Ｉ型に分類される。
ＦＩＰＶ　ＩＩ型ＫＵ−１株の由来：
精製Ｎ蛋白質の作製には、北里大学獣医畜産学部獣医伝染病学教室においてＦＩＰ発症ネコから分離されたＦＩＰＶ　ＫＵ−１株を使用した。本ウイルスはＦＩＰＶ　ＩＩ型に分類される。
ウイルスの培養：
ウイルスはネコ胎児由来株化細胞　ｆｅｌｉｎｅ　ｃａｔｕｓ　ｗｈｏｌｅ　ｆｅｔｕｓ　（ｆｃｗｆ−４）　で培養した。培養液としてＥａｇｌｅｓ　ｍｉｎｉｍｕｍ　ｅｓｓｅｎｔｉａｌ　ｍｅｄｉｕｍ　（Ｅ−ＭＥＭ）　とＬ−１５　ｍｅｄｉｕｍを等量混合した培養液にウシ胎児血清　（ｆｅｔａｌ　ｃａｌｆ　ｓｅｒｕｍ：　ＦＣＳ）　を１０％加えたもの使用した。
【００９０】
ウイルス精製：
１００　ＴＣＩＤ_５０のウイルスを２２５ｃｍ^２のｆｃｗｆ−４細胞に接種し３７℃で１時間吸着後、培養液を加えＣＯ_２インキュベーターで培養した。ＣＰＥを呈した細胞をセルスクレイパーで剥離し回収した。回収した細胞はＮＴＥ緩衝液（１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ　（ｐＨ７．０），１００ｍＭＮａＣｌ，　２ｍＭ　ＥＤＴＡ）で３回洗浄した後ＮＴＥ緩衝液５ｍＬに浮遊させた。浮遊細胞をダウンス型ホモジナイザーで破砕した後、１，５００ｘｇ　１０分間遠心して細胞片を除去した。これを３０％ショ糖ＮＴＥ緩衝液に重層して２００，０００ｘｇ　２時間遠心しウイルス粒子を沈殿させた。沈殿をＮＴＥ緩衝液０．５ｍＬで溶解した後１５，０００ｘｇ　５分間遠心し、その上清をウイルス溶液とした。
【００９１】
蛋白分画：
精製ウイルスにサンプル緩衝液（１００ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ　（ｐＨ６．８），　４％　ＳＤＳ，　２０％　ｇｌｙｃｅｒｏｌ，　０．１％　ＢＰＢ）を加えて１００℃で５分間加熱処理し、１１％ポリアクリルアミドゲルで電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）をおこなった。泳動後のゲルを取り出し、マーカー蛋白質の位置からＮ蛋白質の分子量に相当する位置を判断して、Ｎ蛋白質が含まれる位置のゲルを切り出した。マックスイールドＧＰ蛋白質回収器（ＡＴＴＯ、東京）を用いて切り出したゲルに含まれる蛋白質を回収し、精製Ｎ蛋白質とした。得られた精製Ｎ蛋白質をウェスタンブロット、ＥＬＩＳＡ、皮内反応、およびサブユニットワクチンの抗原として使用した。
【００９２】
〔２〕ＦＩＰＶ　Ｉ型ＫＵ−２株の塩基配列
ウイルスＲＮＡの調製：
ＦＩＰＶ　Ｉ型ＦＩＰＶ　ＫＵ−２株の精製ウイルスにＳＤＳを０．５％加えた後、フェノール抽出、エタノール沈殿をしてＲＮＡを回収した。乾燥したペレットをＲＮａｓｅ　ｆｒｅｅの水に溶解してＲＮＡ溶液とした。
ＲＴ−ＰＣＲ：
クローニングに用いたプライマーの塩基配列を以下に示した。
ＩＭＰｒ−３Ｆ（センス側）５’−ｇｇｇｇａａｔｔｃａａｔｔａａａｇｇｃａａｃｔａｃｔｇｃｃａ−３’（配列番号：３）ＢＥＰ（ｄＴ）_２１（アンチセンス側）５’−ｃｔｇｔｇａａｔｔｃｔｇｃａｇｇａｔｃｃｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔｔ−３’（配列番号：４）
各プライマーにはクローニング用の制限酵素認識配列を付加した。
【００９３】
逆転写酵素反応用緩衝液にマイナス鎖プライマー、逆転写酵素およびウイルスＲＮＡを加えて４２℃で１時間逆転写反応をおこないｃＤＮＡに転写した。ＰＣＲ用緩衝液にＰＣＲ用プライマー、Ｔａｑ　ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅおよびｃＤＮＡを加え、９５℃５ｍｉｎ−（９５℃１ｍｉｎ−５５℃１ｍｉｎ−７２℃２ｍｉｎ）×３０ｃｙｃｌｅ−７２℃５ｍｉｎのＰＣＲを行いｃＤＮＡを増幅した。ＰＣＲ産物の特異性は１％　Ａｇａｒｏｓｅゲル電気泳動で確認した。
【００９４】
Ｃｌｏｎｉｎｇ：
クローニングにはプラスミドベクターｐＵＣ１８を使用した。ＰＣＲ産物をエタノール沈殿後、滅菌蒸留水で溶解し、制限酵素用１０倍緩衝液と制限酵素を加えて消化した。ｐＵＣ１８は同じ制限酵素で消化した後、アルカリフォスファターゼで脱リン酸化した。両者とも１％低融点アガロースゲルで電気泳動後ＤＮＡを含むゲルを切り出し、ＤＮＡを抽出・精製した。
Ｌｉｇａｔｉｏｎ用緩衝液に精製したＰＣＲ産物とベクターのＤＮＡ断片を混合し、ＤＮＡ　Ｌｉｇａｓｅを加えて１５℃で１時間ライゲーション反応をおこなった。環状化したＤＮＡを大腸菌ＪＭ１０９株のコンピテントセルにトランスフォームし、アンピシリン加寒天平板培地にプレーティングして３７℃で一晩培養した。
【００９５】
培地上にできたコロニーを釣菌して１．５ｍＬのアンピシリン加Ｌ−Ｂｒｏｔｈで１晩培養後、プラスミドを抽出して制限酵素で切断し、１％アガロースゲル電気泳動でＤＮＡ断片の大きさを確認して、クローニングの成否を確認した。クローニングされていることを確認した大腸菌を、アンピシリン加Ｌ−Ｂｒｏｔｈ　２５ｍＬで一晩培養し、組換えプラスミドＤＮＡを抽出・精製した。
【００９６】
塩基配列決定：
クローニングしたｃＤＮＡは更にＭ１３ｍｐ１８／１９ファージベクターにサブクローニングし、得られたファージから精製した一本鎖ＤＮＡをシークエンスに使用した。塩基配列は、Ｄｉｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　ｃｈａｉｎ　ｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ法に基づいて、オートシークエンサーで解析した。
塩基配列：
ＦＩＰＶの遺伝子ＲＮＡ　の全長は約２０ｋｂのうち、我々はＫＵ−２株についてその３’末端側の９．２ｋｂの塩基配列を解析した。ＫＵ−２株のＮ蛋白質のｃＤＮＡの塩基配列および推定されるアミノ酸配列を図１に示した。Ｎ遺伝子は開始コドンＡＴＧから終始コドンＴＡＡまで１，１３１塩基のＯＲＦからなり、３７７アミノ酸をコードしており、計算上４２．５ｋＤａの初期蛋白質を発現すると推定された。
【００９７】
ホモロジー：
図２にＦＩＰＶ　Ｉ型に属するＫＵ−２株、Ｂｌａｃｋ株、ＵＣＤ１株、ＦＩＰＶ　ＩＩ型に属する７９−１１４６株、ネコ腸コロナウイルス　ＩＩ型（ＦＥＣＶ）　７９−１６８３株、イヌコロナウイルス（ＣＣＶ）　Ｉｎｓｖｃ１株、ブタ伝染性胃腸炎ウイルス（ＴＧＥＶ）　Ｐｕｒｄｅ株のＮ遺伝子のアミノ酸配列のアライメントを示した。このアミノ酸配列の比較により、ＫＵ−２株の遺伝子には他の６株にはない特徴的なアミノ酸変異が多数存在し、ＫＵ−２独自の配列を持つことが明らかになった。
表１にはＮ蛋白質のアミノ酸配列および塩基配列のホモロジーを示した。表中のホモロジーは、遺伝情報処理ソフトウェアＧＥＮＥＴＹＸのマキシマムマッチングを用いて算出した。パラメーターは次のとおりである（Ｔａｋａｓｈｉ　Ｋ　ａｎｄ　Ｇｏｔｈｏ　Ｏ　（１９８４）　Ｊ．　Ｂｉｏｃｈｅｍ．　９２：　１１７３−１１７７）。
ｍａｔｃｈｉｎｇ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ：ｍａｔｃｈｅｓ＝−１，　ｍｉｓｍａｔｃｈｅｓ＝１ｇａｐｓ＝１，　＊Ｎ＋＝２
【００９８】
【表１】

表中のウイルス名は、それぞれ以下のウイルスを示す。また表の数値は、対角線上に記載した１００％の右上が塩基配列の、そして左下がアミノ酸配列の相同性を示す。
ＫＵ−２：ＦＩＰＶのＫＵ−２株／Ｉ型　（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＡＢ０８６８８１）
Ｂｌａｃｋ：ＦＩＰＶのＢｌａｃｋ株／Ｉ型　（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＡＢ０８６９０３）
ＵＣＤ１：ＦＩＰＶのＵＣＤ１株／Ｉ型　（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＡＢ０８６９０２）
ＦＩＰＶ　ｔｙｐｅ　ＩＩ：ＦＩＰＶの７９−１１４６株／ＩＩ型（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃ．＃Ｘ５６４９６）
ＦＥＣＶ：ネコ・腸コロナウイルス（Ｆｅｌｉｎｅ　Ｅｎｔｅｒｉｃ　Ｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓ）の７９−１６８３株　（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ　Ｎｏ．ＡＢ０８６９０４）
ＣＣＶ：イヌ・コロナウイルス（Ｃａｎｉｎｅ　ｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓ）のＣＣＶ　Ｉｎｓａｖｃ−１株（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃ．＃Ｄ１３０９６）
ＴＧＥＶ：伝染性胃腸炎ウイルス（Ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｂｌｅ　ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｉｔｉｓ　ｖｉｒｕｓ）のＰｕｒｄｕｅ株（ＧｅｎＢａｎｋ　Ａｃｃ．＃Ｍ２１６２７，　Ｍ１４８７８）
【００９９】
ＫＵ−２株のＮ蛋白質のアミノ酸配列を他のウイルスと比較した場合、ネコのコロナウイルス即ちＦＩＰＶ　Ｉ型、ＩＩ型、ＦＥＣＶ　ＩＩ型に対しては９０％程度、ＣＣＶとＴＧＥＶに対しては７５％程度であった。またネコのコロナウイルス間で互いに比較した場合でも、それぞれが９０％程度のホモロジーであり、これらのウイルスの間では、遺伝子の多くの部分は保存されているものの、それぞれが独自の遺伝子配列を持つことが示された。
【０１００】
系統樹：
Ｎ遺伝子のアミノ酸配列から作成した系統樹を図３に示した。
Ｎ遺伝子の系統樹解析では、ネコのコロナウイルスであるＦＩＰＶ　Ｉ型、ＦＩＰＶ　ＩＩ型、ＦＥＣＶが一つのグループを形成しており、このグループはイヌ（ＣＣＶ）やブタ（ＴＧＥＶ）のコロナウイルスとは距離が離れていることを示した。ＫＵ−２株のＮ遺伝子は、差は小さいものの、ネコのコロナウイルス内でもっとも離れた進化距離を持っていた。
【０１０１】
〔３〕組換えＮ蛋白質の発現
ＲＴ−ＰＣＲ：
ＦＩＰＶ　ＫＵ−２株の塩基配列を元に、Ｎ蛋白質の全長が発現できるようにＮ蛋白質のＯｐｅｎ　Ｒｅａｄｉｎｇ　Ｆｒａｍｅ　（ＯＲＦ）　の上流と下流にＰＣＲ用プライマーを作製した。プライマーにはクローニング用の制限酵素認識配列（ＢａｍＨ　ＩおよびＳａｌ　Ｉ）を付加した。
ＦＩＰＶ　ＫＵ−２株の精製ウイルスから調製したウイルスＲＮＡを鋳型にして、Ｏｌｉｇｏ　ｄＴプライマーを用いて逆転写反応をおこないｃＤＮＡを合成した。続けて９５℃５ｍｉｎ−（９５℃１ｍｉｎ−５５℃１ｍｉｎ−７２℃２ｍｉｎ）×３０ｃｙｃｌｅ−７２℃５ｍｉｎのＰＣＲを行いｃＤＮＡを増幅した。ＰＣＲ産物の特異性は１％　Ａｇａｒｏｓｅゲル電気泳動で確認した。
【０１０２】
Ｃｌｏｎｉｎｇ：
プラスミドベクターｐＦａｓｔＢａｃ１へのクローニングは、ｐＵＣ１８へのクローニングと同様に実施した。組換え用の制限酵素にはＢａｍＨ　ＩおよびＳａｌ　Ｉを使用した。宿主大腸菌にはＨＢ１０１株を使用した。クローニングされていることを確認した大腸菌は、アンピシリン加Ｌ−Ｂｒｏｔｈ　２５ｍＬで一晩培養し、組換えｐＦａｓｔＢａｃ１プラスミドＤＮＡを抽出・精製した。
【０１０３】
組換えバキュロウイルスの作製：
精製プラスミドＤＮＡを大腸菌ＤＨ１０ＢＡＣ株のコンピテントセルにトランスフェクトし、カナマイシン、テトラサイクリン、ゲンタマイシン、ＩＰＴＧおよびＢｌｕｏ−ｇａｌを加えた寒天平板培地にプレーティングして３７℃で一晩培養した。大腸菌ＤＨ１０ＢＡＣ株はバキュロウイルスシャトルベクターであるｂＭＯＮ１４２７２を有し、組換えｐＦａｓｔＢａｃ１をトランスフェクトしたＤＨ１０ＢＡＣは、Ｎ蛋白質遺伝子をｂＭＯＮ１４２７２に組換えることができる。培地上にできたコロニーのうち白色コロニーを選択して釣菌し、カナマイシン、テトラサイクリン、ゲンタマイシン加Ｌ−Ｂｒｏｔｈ　２５ｍＬで一晩培養して、組換えｂＭＯＮ１４２７２　ＤＮＡを抽出・精製した。
精製した組換えｂＭＯＮ１４２７２　ＤＮＡをＣＥＬＬＦＥＣＴＩＮと混合し、シャーレ上のヨトウガ科由来細胞　ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｕｒｕｇｉｐｅｒｄａ　（ＳＦ−９）　にトランスフェクトした。トランスフェクト後、混合液を取り除き、１０％　ＦＣＳ加ＴＣ−１００培養液　（Ｉｎｓｅｃｔ　Ｍｅｄｉｕｍ）　にて２日間培養した。培養上清中に産生されたバキュロウイルスを回収し、この組換えバキュロウイルスを発現実験に使用した。
【０１０４】
組換え蛋白質の発現：
ＳＦ−９細胞を培養フラスコ（２２５ｃｍ^２）に１〜２×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬで接種し２日間培養した。培養液を除去して組換えバキュロウイルスを接種し、２７℃で１時間吸着後、ＦＢＳ　ｆｒｅｅ　ＴＣ−１００培養液を加え培養した。培養９６時間後に感染細胞を回収してリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ^（−））で洗浄し、０．２％　ＮＰ−４０　加ＲＳＢ液　（０．０１Ｍ　ＮａＣｌ，　０．００１５Ｍ　ＭｇＣｌ_２，　０．０１Ｍ　Ｔｒｉｓ−ＨＣＬ　（ｐＨ７．４））　を４ｍＬ加え細胞を溶解した。これを５，０００ｒｐｍ　１０分間遠心し、沈殿をＰＢＳ^（−）　１ｍＬに浮遊したものを組換えＮ蛋白質として実験に使用した。
【０１０５】
〔４〕特異性の確認
ウェスタンブロット：
作製した抗原にサンプル緩衝液を加えて１００℃で５分間加熱処理した後、１１％ゲルのＳＤＳ−ＰＡＧＥで展開した。ゲルを取り出し、セミドライタイプの転写装置を使用してＰＶＤＦ膜に転写した。転写膜はＰＢＳ^（−）で洗浄した後ＢｌｏｃｋＡｃｅに４℃で一晩浸漬しブロッキングした。
一次血清としてＦＩＰＶ　Ｎ蛋白質に対するモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　Ｅ２２−２）、ＦＩＰＶ　Ｍ蛋白質に対するモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　Ｆ１８−２）およびＦＩＰＶ　Ｓ蛋白質に対するモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　６−４−２）の培養上清を混合したもの使用した。転写膜を培養上清に浸漬して３７℃で２時間反応させた後、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ（−）で３回洗浄した。これらのモノクローナル抗体は以下のとおり公知の抗体である。
Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　Ｅ２２−２およびＣｌｏｎｅ　Ｎｏ．　Ｆ１８−２：
（Ｈｏｈｄａｔｓｕ　Ｔ，　Ｓａｓａｍｏｔｏ　Ｔ，　Ｏｋａｄａ　Ｓ，　Ｋｏｙａｍａ　Ｈ．　Ａｎｔｉｇｅｎｉｃ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｆｅｌｉｎｅｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓｅｓ　ｗｉｔｈ　ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ　（ＭＡｂｓ）：　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＭＡｂｓ　ｗｈｉｃｈ　ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ＦＩＰＶ　ｓｔｒａｉｎ　７９−１１４６　ａｎｄ　ＦＥＣＶ　ｓｔｒａｉｎ　７９−１６８３．Ｖｅｔ
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．　１９９１　Ｊｕｎ；２８（１）：１３−２４．）
Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　６−４−２：
（Ｈｏｈｄａｔｓｕ　Ｔ，　Ｏｋａｄａ　Ｓ，　Ｋｏｙａｍａ　Ｈ．　Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ　ａｇａｉｎｓｔ　ｆｅｌｉｎｅ　ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｐｅｒｉｔｏｎｉｔｉｓ　ｖｉｒｕｓ　ｔｙｐｅ　ＩＩ　ａｎｄ　ａｎｔｉｇｅｎｉｃ　ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｆｅｌｉｎｅ，　ｐｏｒｃｉｎｅ，　ａｎｄ　ｃａｎｉｎｅ　ｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓｅｓ．　Ａｒｃｈ　Ｖｉｒｏｌ．　１９９１；１１７（１−２）：８５−９５．）
【０１０６】
２次血清としてＨＲＰＯ標識ウサギ抗マウスＩｇＧ＋Ｍ＋Ａを使用した。標識抗体を加えた血清希釈液に浸漬して３７℃で１時間反応させた後、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ（−）で３回洗浄した。転写膜を基質液　（０．０２％　ＤＡＢ，　０．００６％　Ｈ_２Ｏ_２，　０．０５Ｍ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ　（ｐＨ７．６））　に５〜２０分程度浸漬して発色させた後、蒸留水で洗浄し反応を停止させた。
ＦＩＰＶ　ＫＵ−２株のＮ蛋白質はそのアミノ酸配列から計算して約４５ｋＤａの発現産物と推定された。実際に昆虫細胞で発現した組換え蛋白質は４０〜４５ｋＤａの位置に特異バンドとして検出され、組換えＦＩＰＶ　Ｎ蛋白質であることを確認した（図４）。また精製Ｎ蛋白質も同様の位置に特異バンドを認めた（図５）。
【０１０７】
ＥＬＩＳＡ：
作製した抗原を固相化用緩衝液（０．１Ｍ炭酸緩衝液）で２倍〜１２８倍まで２倍階段希釈してＥＬＩＳＡプレートに分注し、４℃で一晩静置して固相化した。各ｗｅｌｌは０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ（−）で３回洗浄しＥＬＩＳＡに用いた。
一次血清として抗ＦＩＰＶ　Ｎ蛋白質モノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　Ｅ２２−２）の培養上清を使用した。固相化ｗｅｌｌに培養上清を０．１ｍＬ／ｗｅｌｌで分注し３７℃で１時間反応させた後、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ（−）で３回洗浄した。２次血清としてＨＲＰＯ標識ウサギ抗マウスＩｇＧ＋Ｍ＋Ａを　使用した。標識抗体を加えた血清希釈液で３７℃で１時間反応させた後、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ（−）で３回洗浄した。ＴＭＢ基質液を０．１ｍＬ／ｗｅｌｌ分注し、常温で２０分間の反応後、Ｈ_２ＳＯ_４を０．０５ｍＬ／ｗｅｌｌ加えて４５０ｎｍの吸光度を測定した。
組換えＮ蛋白質（図６）と精製Ｎ蛋白質（図７）は、共に抗ＦＩＰＶ　Ｎ蛋白質モノクローナル抗体に対してのみ抗原量依存的に反応し、その特異性が確認できた。
【０１０８】
〔５〕ワクチンの作製
抗原の調製：
抗原量の測定にはウェスタンブロッティングを用いた。作製した抗原を８倍〜５１２倍まで２倍階段希釈してＳＤＳ−ＰＡＧＥをおこない、抗ＦＩＰＶ　Ｎ蛋白質モノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ　Ｎｏ．　Ｅ２２−２）を使用したウェスタンブロッティングで検出した。検出可能な最も希釈倍率が高いレーンに含まれる抗原量を１ユニットと定め、その希釈の逆数を原液の抗原量とした。ワクチン１用量に１６ユニットの抗原量が含まれるようにＰＢＳ^（−）で希釈して調整した。
【０１０９】
アジュバント：
アジュバントとして日本国内で市販されているネコ用３種混合不活化ワクチンであるフェリドバックＰＣＲ（ＩｎｔｅｒＶｅｔ社）を用いた。本ワクチンにはＡｄｊｕｖａｎｔ　Ｌ８０と水酸化アルミニウムが含まれている。１６ユニット／ｍＬに調整した抗原１ｍＬとフェリドバックＰＣＲ　１ｍＬ（１用量）を混合し、良く混和してワクチンとした。このワクチン２ｍＬを１用量とした。
【０１１０】
〔６〕免疫試験（１）
動物：
実験動物には７〜９ヶ月齢のＳＰＦネコを用いた。組換えＮ蛋白質ワクチンの免疫群に４頭を使用した。攻撃対照群には４頭を使用し、ＳＦ−９細胞を組換えＮ蛋白質の回収方法と同様に処理して得られた抗原を免疫した
【０１１１】
ワクチン接種：
ワクチン１用量を３週間隔で３回、頸部皮下に接種した（図８）。各免疫の直前に採血をして、その血清の抗体価を測定した。
ＥＬＩＳＡによる抗体価測定：
精製Ｎ蛋白質を２単位（およそ１００ｎｇ／ｗｅｌｌ）になるように固相化用緩衝液で希釈してＥＬＩＳＡプレートに分注し、４℃で一晩固相化した。洗浄後、１次血清として採血したネコの血清を抗体希釈液で１００倍に希釈して３７℃１時間反応させた。洗浄後、ＨＲＰＯ標識抗ネコＩｇを３７℃１時間反応した。洗浄後、基質液を加え常温で２０分発色させ、反応停止液を加えて４５０ｎｍで吸光度を測定した。
【０１１２】
組換えＮ蛋白質のワクチンを接種した群のいずれのネコも、２回免疫後３週目（３回目の免疫時）の時点では抗体価の上昇はみられなかったが、３回免疫後４週目（攻撃時）には抗体価の上昇が確認された。このうちＣａｔ　Ｎｏ．２２１では顕著な抗体価の上昇が確認されたが、残りの３頭に関しては弱い反応のみが認められた。対照としてＳＦ−９細胞から調製した抗原を接種した群では４頭ともＥＬＩＳＡ　Ｏ．Ｄ．値の上昇は認められなかった（図９）。
【０１１３】
中和抗体価の測定：
９６　ｗｅｌｌプレートで２倍階段希釈したネコ血清０．０２５ｍＬと２００　ＴＣＩＤ_５０／０．０２５ｍＬに調整したウイルス液を等量混合し、４℃で２４時間反応させた。これにｆｃｗｆ−４細胞を１×１０^６／ｗｅｌｌ加え４８時間培養した。ＣＰＥ（細胞変性効果）を完全に抑制したネコ血清の最高希釈倍数の逆数を中和抗体価とした。
【０１１４】
また、通常抗Ｎ蛋白質抗体は中和活性を持たないため、Ｎ蛋白質の免疫により産生された抗体では抗体単独でＣＰＥを抑制することが難しいと考え、補体を添加した中和試験を実施した。即ち、２００　ＴＣＩＤ_５０／０．０２５ｍＬに調整したウイルス液に１０％ウサギ血清（補体）を加えて同様に反応させた。
組換えＮ蛋白質免疫群の中和抗体価は免疫開始時と３回免疫後４週目（７０日目）のいずれにおいても、補体の存在に関わらず全てのネコにおいて１０倍以下となった。ＳＦ−９細胞抗原接種群においても同様の結果となった（表２）。
【０１１５】
【表２】

【０１１６】
細胞性免疫の測定：
ワクチンにより付加された細胞性免疫の程度を確認するために、精製Ｎ蛋白質抗原に対する遅延型過敏反応を皮内反応として測定した。
左の脇腹を剃毛し後７０％エタノールで消毒し、Ｎ蛋白質抗原（０．１ｍｇ／ｍＬ）及びコントロールとしてＰＢＳ^（−）を０．１ｍＬずつ皮内接種した。抗原接種部位は約４ｃｍの間隔をもって接種した。接種後２４、４８、７２、９６時間に接種部位に現れた腫脹の範囲をノギスで測定することにより測定した。
組換えＮ蛋白質免疫群の全てのネコで精製Ｎ蛋白質に対し反応が見られた。Ｃａｔ　Ｎｏ．　２１７では接種後２４時間後から腫脹が認められ、その後反応は低下し９６時間後には消失した。Ｃａｔ　Ｎｏ．　１９１およびＣａｔ　Ｎｏ．　２２１では同様に２４時間後から腫脹が認められ、その後低下したが９６時間後でも２〜３ｍｍ程度の腫脹が認められた。Ｃａｔ　Ｎｏ．　６では７２時間後に腫脹が認められたが最大時で２ｍｍと反応が弱く９６時間後には消失した（図１０）。ＰＢＳ^（−）に対しては、全てのネコにおいて腫脹は認められなかった。この結果から、組換えＮ蛋白質のワクチンにより細胞性免疫が付与されていることが確認できた。
【０１１７】
〔７〕攻撃試験（１）
攻撃方法：
免疫試験（１）のネコに対し、３回目の免疫後４週目に攻撃試験を実施した（図８）。
攻撃用ウイルスとしてＦＩＰＶのＩＩ型である７９−１１４６株を用い、その１０^５ＴＣＩＤ_５０（１ｍＬ）を経口および経鼻により接種した。臨床症状はウイルス接種日から実験終了まで毎日観察した。体温、体重は３日毎に測定した。同じく３日毎に直腸拭い液を採取して後の実験に使用した。また、６日ごとに採血して血清を分離し、後の実験に使用した。
【０１１８】
生存率：
攻撃対照群は４頭中４頭がＦＩＰを発症し、Ｃａｔ　Ｎｏ．　１７０が攻撃後２３日目、Ｎｏ．　１７３が２６日目、Ｎｏ．２１０が３１日目、Ｎｏ．　１６３が４４日目に死亡した。これに対して、組換えＮ蛋白質ワクチン接種群のネコは、Ｃａｔ　Ｎｏ．　１９１がＦＩＰを発症して４８日目に死亡したものの、残りの３頭においては、感染は認められたものの発症を防御することができ、生残した（図１１）。
【０１１９】
体温の推移：
組換えＮ蛋白質抗原免疫群では、攻撃直後に共通して発熱が認められたものの、その後の経過は個体により異なっていた。Ｃａｔ　Ｎｏ．　２１７は接種後３日目に４０℃を越える発熱が認められたが、その後は平熱が続いた。Ｎｏ．　２２１は接種後３日目と２７日目から４２日目にかけて４０℃近いまたは越える発熱が認められたがその後低下した。Ｎｏ．　１９１は３日目と２７日目から３３日目にかけて４０℃を越える発熱が認められ、その後体温は急激に低下し４８日目に死亡した。Ｎｏ．　６は３日目に４０℃を越える発熱が認められたが、その後は平熱が続いた。
一方、攻撃対照群では４頭ともに二峰性の発熱が確認された。Ｃａｔ　Ｎｏ．　１６３は３日目と１８〜２１日目、３０〜３６日目に４０℃近いまたは越える発熱が認められ、その後急激に体温が低下し、４４日目に死亡した。Ｎｏ．　２１０は３日目と１２〜２７日目にかけて４０℃を越える発熱が認められ３１日目に死亡した。Ｎｏ．　１７０は３日目と１５〜１８日目にかけて４０℃に近いまたは越える発熱が認められ、その後急激に体温が低下し２３日目に死亡した。Ｎｏ．　１７３は３日目と１８〜２１日目にかけて４０℃を越える発熱が認められ、その後急激に体温が低下し２６日目に死亡した。
【０１２０】
体重の推移：
組換えＮ蛋白質免疫群のうちＣａｔ　Ｎｏ．　２１７とＮｏ．　６の２頭の体重は順調に増加し、Ｎｏ．　２２１ではわずかな減少が認められたがほぼ一定に維持した。Ｎｏ．　１９１は急激な減少はなかったが徐々に減少し４８日目に死亡した。攻撃対照群では４頭ともにウイルス攻撃後から急激に減少し始め、死亡時まで減少を続けた。
【０１２１】
ＥＬＩＳＡ抗体価：
攻撃後６日毎の血清中の抗体価を精製Ｎ蛋白質を抗原に使用したＥＬＩＳＡにおいて測定した（図１２）。
組換えＮ蛋白質免疫群の４頭のうちワクチン免疫による反応が高かったＣａｔ　Ｎｏ．　２２１は、攻撃直後から抗体価の上昇が始まり１８日目頃にはプラトーに達した。ワクチン免疫による反応が低かった残りの３頭は攻撃後６日目から抗体価が上がり始めたが、やはり１８日目頃にはほぼプラトーに達した。攻撃対照群の抗体価は４頭ともに攻撃後６日目から上がり始めたが、その反応は免疫群に比較して急激ではなく、１２日目では抗体価はあまり上がらなかった。いずれのネコの抗体価も死亡時まで上昇し続けた。
【０１２２】
中和抗体価：
攻撃時、攻撃後１２日目、攻撃後６０日目あるいは死亡時の血清に関して中和試験（補体不使用）を行った（表３）。
【０１２３】
【表３】

【０１２４】
組換えＮ蛋白質免疫群の中和抗体価は、攻撃時には４頭全てのネコで１０倍以下であった。攻撃後１２日後にはＥＬＩＳＡで高い反応を示したＮｏ．　２２１の中和抗体価は１６０倍であったが、他の３頭は２０〜４０倍であった。攻撃後６０日目あるいは死亡の中和抗体価は、生存した３頭のうち１頭が１６００、２頭が６４００倍、死亡した１頭は６４００倍であった。攻撃対照群の中和抗体価は、攻撃時には４頭ともに１０倍以下、攻撃後１２日目には４頭ともに８０倍、死亡時には８００〜６４００倍であった。免疫群、攻撃対照群あわせて中和抗体価と経過（生死）との相関は認められなかった。
【０１２５】
ウイルス分離：
攻撃後３日毎に採取した直腸拭い液からＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲでウイルス遺伝子を検出することにより、生体内におけるウイルスの増殖を確認した（表４）。
【０１２６】
【表４】

【０１２７】
ウイルスＲＮＡ抽出には市販のキットＳｅｐａ　Ｇｅｎｅ　ＲＶ−Ｒ（三光純薬、東京）を使用した。抽出したＲＮＡに水０．００７ｍＬを加えて溶解し、精製ＲＮＡ溶液とした。精製ＲＮＡ溶液を８０℃、５分間加熱後急冷して熱変性を行った。これに逆転写酵素用緩衝液とプライマーおよび逆転写酵素を混合して４２℃１時間反応しｃＤＮＡを合成した。ＰＣＲ用緩衝液にＰＣＲ用プライマー、Ｔａｑ　ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ及びｃＤＮＡを加え３０　ｃｙｃｌｅのＰＣＲを実施した。ＰＣＲ産物は１％　Ａｇａｒｏｓｅゲル電気泳動で確認し、特定の位置にバンドが検出されたものを陽性と判定した
組換えＮ蛋白質免疫群では２頭でウイルスが検出された。Ｃａｔ　Ｎｏ．１９１は攻撃後１８日目に、Ｎｏ．　６は３日目と１８日目にそれぞれＲＮＡが検出された。攻撃対照群では３頭からウイルスが検出された。Ｃａｔ　Ｎｏ．１６３は１２日目と１５日目に、Ｎｏ．１７０は３日目と９〜１８日目に、Ｎｏ．　１７３は３日目にウイルスが検出された。Ｃａｔ　Ｎｏ．　６、１７０、１７３では攻撃３日目にウイルスが検出されたが、これは攻撃直後の発熱の時期と重なる。ウイルス分離の結果と生死に関しては相関性を確認できなかった。
【０１２８】
〔８〕免疫試験（２）
動物：
６ヶ月齢のＳＰＦネコを使用し免疫試験（１）と同様に実施した。
組換えＮ蛋白質ワクチンの免疫群に４頭、ＦＩＰＶ　ＩＩ型　ＫＵ−１株由来の精製Ｎ蛋白質ワクチンの免疫に４頭、攻撃対照群に４頭を使用した。
ワクチン接種：
ワクチン接種は免疫試験（１）と同様に実施した（図１３）。
ＥＬＩＳＡによる抗体価測定：
組換えＮ蛋白質免疫群では、２回免疫３週目で数頭がわずかな反応を示し、３回免疫４週目には４頭ともに明らかな上昇が認められた（図１４）。精製Ｎ蛋白質免疫群でも２回免疫３週目に数頭がわずかな反応を示し、３回免疫４週目には４頭ともに明らかな上昇が認められ、その値は組換えＮ蛋白質免疫群よりも高かった。一方、対照群では４頭ともに反応は認められなかった。
【０１２９】
中和抗体価の測定：
中和抗体の測定は、免疫開始前と３回免疫４週目（攻撃前）の血清について、補体を使用しない方法でのみ実施した。
組換えＮ蛋白質免疫群、精製Ｎ蛋白質免疫群、対照群のいずれの群においても、免疫前・免疫後ともに全頭で１０倍以下を示し、中和抗体は検出できなかった（表５）。
【０１３０】
【表５】

【０１３１】
細胞性免疫の測定：
細胞性免疫を免疫試験（１）と同様に精製Ｎ蛋白質に対する遅延型過敏反応として測定した。結果は各群４頭の平均値として図１５に示した。
組換えＮ蛋白質免疫群では接種後２４時間後から腫脹が認められ、この２４時間をピークとしてその後は徐々に消失した。精製Ｎ蛋白質免疫群では接種後２４時間後から腫脹が認められ、４８時間後に最大となってその後は低下したが、９６時間後でも１ｍｍ程度の腫脹が残った。
【０１３２】
〔９〕攻撃試験（２）
攻撃方法：
免疫試験（２）のネコに対し、攻撃試験（１）と同じ方法でＦＩＰＶ　７９−１１４６を感染させた（図１３）。臨床症状の観察、体温、体重の測定、採血および直腸拭い液採取は攻撃試験（１）と同様に実施した。加えて咽喉頭拭い液を３日毎に採取しウイルス分離に供した。
生存率：
攻撃対照群ではＣａｔ　Ｎｏ．　２４９が攻撃後２３日目に、Ｎｏ．　１７８が２９日目に、Ｎｏ．　１８１が６０日目に死亡したもののＮｏ．　２４４は生残し、結果として４頭中３頭が死亡した（図１６）。これに対し、組換えＮ蛋白質を免疫した群ではＣａｔ　Ｎｏ．　１７７が１９日目に死亡したのみで３頭が生残した。精製Ｎ蛋白質の免疫群ではＣａｔ　Ｎｏ．　１８０が１９日目、Ｎｏ．　１７５が７７日目、Ｎｏ．　２５２が７８日目に死亡し、結果として４頭中３頭が死亡したものの、攻撃対照群に比較すれば延命効果が認められ、ある程度の効果は確認できた。
【０１３３】
体温の推移：
組換えＮ蛋白質免疫群のうちＣａｔ　Ｎｏ．　１７７は攻撃後から体温上昇を続け、１５日目にピークに達した後急激に低下して死亡した。Ｎｏ．　２４２は３日目に発熱した後、一度低下するものの３０日頃から再度発熱ししばらく持続した。他の２頭は感染初期の発熱は認めたもののその後はほぼ平熱に経過した。
精製Ｎ蛋白質免疫群のうちＣａｔ　Ｎｏ．　１８０は攻撃３日目と１２日目に４０度を超える発熱急激に低下し死亡した。Ｎｏ．　２５２は４０℃前後の高熱で推移した後、徐々に体温低下し死亡した。Ｎｏ．　１７５は感染初期の発熱の後はほぼ平熱を維持したものの、７２日目に再度高熱を発し７７日目に死亡した。Ｎｏ．　２４３はほぼ平熱を維持した。攻撃対照群のうちＣａｔ　Ｎｏ．　２４４はほぼ平熱で推移した。死亡した３頭では感染初期の発熱の後１２日目頃に一度低下したが、すぐに再発熱し、死亡する数日前に体温低下するまで持続した。
【０１３４】
体重の推移：
組換えＮ蛋白質免疫群のうち、死亡したＣａｔ　Ｎｏ．　１７７は感染直後から減少を続けた。Ｎｏ．　２４５とＮｏ．　２４７は順調に増加したが、Ｎｏ．　２４２は徐々に減少した。精製Ｎ蛋白質免疫群では、Ｃａｔ　Ｎｏ．１８０は急激に減少して死亡したがＮｏ．２５２　は徐々に減少して死亡した。Ｎｏ．　１７５は体重の増加がみられたもののＮｏ．　２５２と同時期に死亡した。Ｎｏ．　２４３は順調に体重増加した。攻撃対照群では、生残したＣａｔ　Ｎｏ．　２４４はわずかに体重増加がみられたが、死亡した３頭は感染直後から死亡時まで減少し続けた。
【０１３５】
ＥＬＩＳＡ抗体価：
攻撃後６日毎の血清中の抗体価を精製Ｎ蛋白質のＥＬＩＳＡで測定した（図１７）。組換えＮ蛋白質免疫群と精製Ｎ蛋白質免疫群では基本的に違いはなく、攻撃６日目には抗体上昇がみられ１２日目にはプラトーに達した。精製Ｎ蛋白質免疫群のうちＣａｔ　Ｎｏ．　１８０は攻撃時には既に高値であったが、攻撃後さらに上昇した。攻撃対照群では４頭ともに攻撃後１２日目から反応が見られ、３０日目頃にはプラトーに達した。
【０１３６】
中和抗体価：
中和抗体価の推移に関しては組換えＮ蛋白質免疫群、精製Ｎ蛋白質免疫群、攻撃対照群ともに基本的な違いは認められなかった（表５）。いずれのネコも攻撃前には１０倍以下であったが、攻撃後１２日目には１０〜４０倍の抗体価を示し、感染後６０日に生存したものでは３２００〜６４００倍以上となった。６０日以前に死亡したものに関しては、８０〜２００倍で低かったが、抗体が十分に産生される前に死亡したものと考えられた。
【０１３７】
Ｆｃｗｆ４細胞を用いたウイルス分離：
４８穴プレートで培養したｆｃｗｆ−４細胞に咽喉頭拭い液および直腸拭い液をそれぞれ０．０５ｍＬ／ｗｅｌｌ接種し、３７℃で１時間吸着した。細胞面を培養液で洗浄後、維持用ＭＥＭを０．５ｍＬ／ｗｅｌｌ加えて３７℃で培養した。２日以内にＣＰＥが観察できたものを陽性とした。その結果はＲＴ−ＰＣＲとほぼ同様の結果を示した。直腸拭い液からのウイルス分離では攻撃６日目〜１５日目の間に、組換えＮ蛋白質免疫群の２頭と精製Ｎ蛋白質免疫群の１頭が、それぞれ１ないし２日陽性となった（表６）。
【０１３８】
【表６】

咽喉頭拭い液からのウイルス分離では、各群ともに全頭が陽性となり、攻撃後３〜９日目の間ではほとんどの個体からウイルスが分離された（表７）。
【０１３９】
【表７】

【０１４０】
ウイルス分離（ＲＴ−ＰＣＲ）：
攻撃試験（１）における直腸拭い液からのウイルス分離は感度が低かったために、攻撃試験（２）では咽頭喉拭い液からウイルス分離も実施した。直腸拭い液と咽喉頭拭い液は攻撃後３日毎に採取し実験に用いた。直腸拭い液からのＲＴ−ＰＣＲでは攻撃試験（１）とほぼ同様の結果が得られ、組換えＮ蛋白質免疫群では４頭中３頭、精製Ｎ蛋白質免疫群では２頭、攻撃対照群では３頭が、それぞれ１〜２日陽性になった（表６）。咽喉頭拭い液からのＲＴ−ＰＣＲでは各群ともに全頭が陽性となり、攻撃後３〜９日目の間ではほとんどの個体からウイルスが検出された。しかし攻撃後１５日目にはＣａｔ　Ｎｏ．　１８０を除き陰転した（表７）。
【０１４１】
〔１０〕大腸菌発現抗原に対するネココロナウイルス感染ネコ血清の反応性
大腸菌による組換え蛋白質の発現：
大腸菌における発現にはｇｌｕｔａｔｈｉｏｎ　Ｓ−ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ　（ＧＳＴ）　との融合蛋白質を発現するプラスミドベクターｐＧＥＸ−２Ｔ　（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）　を使用した。Ｎ蛋白質の発現にはＦＩＰＶ　Ｉ型であるＫＵ−２株の遺伝子を使用した。Ｎ蛋白質全域が発現するように開始コドンＡＴＧから終始コドンＴＡＡまでをＧＳＴコード領域下流のクローニングサイトに挿入した。Ｓ蛋白質の発現にはＫＵ−２株とＦＩＰＶ　ＩＩ型であるＫＵ−１株の遺伝子を使用した。Ｓ蛋白質のうち、特に株による変異が大きい領域であるシグナルペプチド配列を除くＮ末端の約２５０アミノ酸をコードする領域を、Ｎ蛋白質と同様にクローニングした。トランスフォームを確認した大腸菌を３７℃で２時間培養した後、ＩＰＴＧを１ｍＭ加えて更に３時間培養し、組換え蛋白質の発現を誘導した。この菌液を遠心して菌体を集め、緩衝液で洗浄した後ウェスタンブロッティングアッセイに使用した。ＦＩＰＶ　Ｉ型ＫＵ−２株Ｎ蛋白質とＧＳＴの融合蛋白質をｒＩＥｘＮ　、ＦＩＰＶ　Ｉ型ＫＵ−２株Ｓ蛋白質の一部とＧＳＴの融合蛋白質をｒＩＥｘＳ、ＦＩＰＶ　ＩＩ型ＫＵ−１株Ｓ蛋白質の一部とＧＳＴの融合蛋白質をｒＩＩＥｘＳとした。
【０１４２】
感染ネコ血清：
ＳＰＦネコ５頭に、ＦＩＰＶ　Ｉ型のＫＵ−２株、Ｂｌａｃｋ株、ＵＣＤ１株、ＦＩＰＶ　ＩＩ型の７９−１１４６株、ＦＥＣＶ　ＩＩ型の７９−１６８３株の培養液をそれぞれ接種して感染させ、経時的に採血をして抗体価が最大になった時の血清を感染ネコ血清とした。
【０１４３】
ウエスタンブロット：
作製した抗原にサンプル緩衝液を加えて加熱処理した後、１１％ゲルのＳＤＳ−ＰＡＧＥで展開した。ゲルを取り出してＰＶＤＦ膜に転写し、洗浄後ＢｌｏｃｋＡｃｅに４℃で一晩浸漬しブロッキングした。一次血清として各ネココロナウイルスに感染した感染ネコ血清を使用した。転写膜を一次血清に浸漬して３７℃で２時間反応させた後、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ^（−）で３回洗浄した。２次血清としてＨＲＰＯ標識抗ネコＩｇＧ＋Ｍ＋Ａを使用した。標識抗体を加えた血清希釈液に浸漬して３７℃で１時間反応させた後、０．０５％　Ｔｗｅｅｎ２０加ＰＢＳ^（−）で３回洗浄した。転写膜を基質液　（０．０２％　ＤＡＢ，　０．００６％Ｈ_２Ｏ_２，　０．０５Ｍ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ　（ｐＨ７．６））　に浸漬して発色させた後、蒸留水で洗浄し反応を停止させた。結果は図１８に示した。
【０１４４】
ＦＩＰＶ　Ｉ型であるＫＵ−２株とＢｌａｃｋ株の感染ネコ血清はｒＩＥｘＳ蛋白質とｒＩＥｘＮ蛋白質に反応したが、ＵＣＤ１株感染ネコ血清はｒＩＥｘＮ蛋白質に反応したがｒＩＥｘＳ蛋白質には反応しなかった。ＦＩＰＶ　ＩＩ型である７９−１１４６株の感染ネコ血清はｒＩＩＥｘＳ蛋白質とｒＩＥｘＮ蛋白質に反応した。ＦＥＣＶ　ＩＩ型である７９−１６８３株感染ネコ血清はｒＩＥｘＮ蛋白質にのみ反応した。即ち、ＫＵ−２株の組換えＮ蛋白質はいずれのネココロナウイルス感染血清に対しても良好な反応性を示した。
【０１４５】
【発明の効果】
本発明は、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の治療および／または予防のためのワクチン、並びに方法を提供する。本発明のワクチンは、前記ａ）−ｅ）に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を有する蛋白質を抗原として利用する。これらの蛋白質の利用によって、幅広い株に対する予防および／または治療効果を期待できるワクチンとすることができる。またこれらの蛋白質が感染増強エピトープを含まないため、本発明のワクチンには高い安全性を期待できる。
【０１４６】
ネコ伝染性腹膜炎ウイルスは、発症後は致死的な経過を取ることが多い重篤な感染性疾患である。これまでに様々なワクチンが試みられてきたが、その評価は定まっていない。一方本発明のワクチンは、既知のワクチンに比較して予防効果に優れ、かつ安全性も高い。したがって、本発明のワクチンの、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの予防や治療における有用性は明らかである。
【０１４７】
更に本発明は、前記ａ）−ｅ）に記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を有する蛋白質を抗原として利用する、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の診断方法、並びにそのための試薬を提供する。本発明の診断方法あるいは診断試薬は、幅広い株の感染を、容易にかつ迅速に診断することができる。ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の診断方法に基づくスクリーニングによって、この疾患の感染状況の調査に有用である。感染状況の調査は、ＦＩＰＶの予防医学上、重要な情報となる。
【０１４８】
【配列表】

【図面の簡単な説明】
【図１】ＦＩＰＶのＩ型ＫＵ−２株由来のＮ蛋白質遺伝子の塩基配列、およびアミノ酸配列を示す。
【図２】ＦＩＰＶ　および近縁のウイルスのＮ蛋白質のアミノ酸配列のアライメント結果を示す図。各配列は上から順に、ＦＩＰＶのＩ型ＫＵ−２株、Ｂｌａｃｋ株、ＵＣＤ１株、ＦＩＰＶ　ＩＩ型７９−１１４６株、ＦＥＣＶ　ＩＩ型７９−１６８３株、ＣＣＶ　Ｉｎｓｖｃ１株、およびＴＧＥＶＰｕｒｄｅ株のＮ蛋白質のアミノ酸配列を示す。図中、．．．はＫＵ−２株と同じアミノ酸残基であることを、−はギャップを示す。
【図３】ＦＩＰＶのＩ型ＫＵ−２株、Ｂｌａｃｋ株、ＵＣＤ１株、ＦＩＰＶ　ＩＩ型７９−１１４６株、ＦＥＣＶ　ＩＩ型７９−１６８３株、ＣＣＶ　Ｉｎｓｖｃ１株、およびＴＧＥＶ　Ｐｕｒｄｅ株のＮ遺伝子のアミノ酸配列から計算した系統樹。図中の数字は進化距離を示す。
【図４】ウエスタンブロット法による、バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原の特異性の解析結果を示す写真。図中の矢印はＮ蛋白質のバンドの位置を示す。ａ，ｂ，ｃ，ｄ，ｅ，ｆ，ｇはそれぞれ８倍、１６倍、３２倍、６４倍、１２８倍、２５６倍および５１２倍希釈したバキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原を示す。ｈは精製ＦＩＰＶ可溶化抗原を示す。
【図５】ウエスタンブロット法による、精製ＦＩＰＶ抗原由来Ｎ蛋白質の特異性の解析結果を示す写真。図中の矢印はＮ蛋白質のバンドの位置を示す。ａは精製ＦＩＰＶ抗原由来Ｎ蛋白質、ｃは精製ＦＩＰＶ可溶化抗原を示す。
【図６】ＥＬＩＳＡ法による、バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原の特異性の解析結果を示す図。横軸は抗原の希釈倍数、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を示す。
【図７】ＥＬＩＳＡ法による、精製ＦＩＰＶ抗原由来Ｎ蛋白質の特異性の解析結果を示す図。横軸は抗原の希釈倍数、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を示す。
【図８】免疫試験（１）および攻撃試験（１）の日程を示す図。
【図９】上はＥＬＩＳＡ法による、バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原接種後の抗体価の測定結果を示す図。下はＳＦ−９細胞抗原接種後の抗体価を示す図。図中の数字は実験に用いたネコの番号を示す。横軸は抗原接種後の時間経過、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を示す。
【図１０】バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原免疫ネコにおける遅延型過敏症反応を示す図。図中の数字は実験に用いたネコの番号を示す。横軸は抗原接種後の時間、縦軸は腫脹の範囲を示す。
【図１１】ＦＩＰＶ７９−１１４６株攻撃後の生存率の推移を示す図。横軸は７９−１１４６株接種後の日数、縦軸は生存率を示す。実線はバキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原免疫ネコの生存率、破線はＳＦ−９細胞抗原を接種したネコの生存率を示す。
【図１２】上は、バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原接種群における７９−１１４６株接種後の抗ＦＩＰＶ抗体価の推移を示す図。下は、ＳＦ−９細胞抗原接種群における７９−１１４６株接種後の抗ＦＩＰＶ抗体価の推移を示す図。図中の数字は実験に用いたネコの番号を示す。横軸は、７９−１１４６株接種後の日数、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を示す。
【図１３】免疫試験（２）および攻撃試験（２）の日程を示す図。
【図１４】上はＥＬＩＳＡ法による、バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原接種後の抗体価の測定結果を示す図。中央は精製ＦＩＰＶ抗原由来Ｎ蛋白質接種後の抗体価を示す図。下はＳＦ−９細胞抗原接種後の抗体価を示す図。図中の数字は実験に用いたネコの番号を示す。横軸は抗原接種後の時間経過、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を示す。
【図１５】バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原免疫ネコおよび精製ＦＩＰＶ抗原由来Ｎ蛋白質抗原免疫ネコにおける遅延型過敏症反応を示す図。横軸は抗原接種後の時間、縦軸は腫脹の直径を示す。
【図１６】ＦＩＰＶ７９−１１４６株攻撃後の生存率の推移を示す図。横軸は７９−１１４６株接種後の日数、縦軸は生存率を示す。
【図１７】上は、バキュロウイルス組み換えＮ蛋白質抗原接種群における７９−１１４６株接種後の抗ＦＩＰＶ抗体価の推移を示す図。中央は、精製ＦＩＰＶ抗原由来Ｎ蛋白質抗原接種群における７９−１１４６株接種後の抗ＦＩＰＶ抗体価の推移を示す図。下は、ＳＦ−９細胞抗原接種群における７９−１１４６株接種後の抗ＦＩＰＶ抗体価の推移を示す図。図中の数字は実験に用いたネコの番号を示す。横軸は、７９−１１４６株接種後の日数、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を示す。
【図１８】大腸菌発現抗原に対するネココロナウイルス感染ネコ血清の反応性を調べたウエスタンブロッティングアッセイの結果を示す写真。各レーンは、レーンの上に示した抗原をブロッティングしたフィルターで、その上に記載したコロナウイルス株を感染させたネコの血清を反応させた結果を示している。

Claims

以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質を有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチン。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドを有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用ワクチン。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
ポリヌクレオチドが、ａ）またはｂ）に記載のポリヌクレオチドである請求項１または請求項２に記載のワクチン。
以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなる蛋白質との結合能を有する抗体を有効成分として含有するネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防用抗体製剤。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
請求項１、請求項２、および請求項３のいずれかに記載のワクチンを少なくとも１回ネコに投与するプロセスを含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防のための方法。
請求項４に記載の抗体製剤を少なくとも１回ネコに投与するプロセスを含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスの治療および／または予防のための方法。
以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質とネコの血清をインキュベートし、該蛋白質と結合する抗体を検出する工程を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の検査方法。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、
以下のａ）−ｅ）のいずれかに記載のポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列を含む蛋白質を含む、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス感染の検査用試薬。
ａ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域を含むポリヌクレオチド、
ｂ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｃ）　配列番号：１に記載の塩基配列のコード領域の塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、
ｄ）　配列番号：２に記載のアミノ酸配列をコードする塩基配列と９３％以上の相同性を有する塩基配列を含むポリヌクレオチド、および
ｅ）ａ）−ｄ）に記載されたポリヌクレオチドのいずれかによってコードされるアミノ酸配列から選択された、４５アミノ酸残基以上からなる連続するアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド、