JP2003517829A

JP2003517829A - Ｔｗｅａｋ受容体

Info

Publication number: JP2003517829A
Application number: JP2001546669A
Authority: JP
Inventors: ウィリー，スティーヴン，アール．
Original assignee: Immunex Corp
Current assignee: Immunex Corp
Priority date: 1999-12-20
Filing date: 2000-12-19
Publication date: 2003-06-03
Anticipated expiration: 2020-12-19
Also published as: EP1239869A2; WO2001045730A3; WO2001045730A2; EP2298333A3; CA2394015A1; AU2731501A; US20020041876A1; JP5148795B2; US6824773B2; NZ520171A; CA2394015C; EP2298333A2; IL149922A; EP2298334A3; EP2298334A2; AU782067B2; ES2433011T3; EP1239869B1

Abstract

(57)【要約】本発明は、TWEAK受容体ならびにTWEAK受容体に対するアゴニストおよびアンタゴニストを同定して使用する方法を提供する。特に、本発明は、アゴニストおよびアンタゴニストをスクリーニングする方法、ならびに血管形成により媒介される疾患もしくは症状（たとえば、心臓組織もしくは末梢組織の固形腫瘍および血管不全）を治療する方法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】（関連出願の参照）本願は、1999年12月20日出願の米国仮出願第60/172,878号および2000年5月10
日出願の米国仮出願第60/203,347号の優先権を主張する。これらの仮出願はいず
れも、参照により本明細書に組み入れられるものとする。

【０００２】（発明の分野）本発明は、TWEAKタンパク質に対する機能性受容体(TWEAKR)の発見に関するも
のである。より特定的には、本発明は、治療法におけるTWEAKRアゴニストおよび
アンタゴニストの使用、ならびにTWEAKRおよびTWEAK-TWEAKR相互作用に基づくス
クリーニング方法に関する。

【０００３】（発明の背景）A. 血管形成血管形成は、既存の血管から最終的に新しい血管が形成される多段階発生過程
である。この空間的かつ時間的に制御された過程には、既存の血管中のマトリッ
クス接触および支持細胞相互作用のプロテアーゼによる弱体化、それに続く協調
運動、形態学的変化、ならびに既存の血管の平滑筋および内皮細胞の増殖が関与
する。次に、新生細胞は標的組織へと拡張し、続いて細胞間相互作用が生じて、
内皮細胞は平滑筋細胞に囲まれた管を生成する。協調的に、血管の細胞外マトリ
ックスタンパク質の分泌および内皮周囲支持細胞の補充が行われて、構造的一体
性が確保され維持される(たとえば、Daniel et al., Ann. Rev. Physiol. 2000(
62):649, 2000を参照されたい)。血管形成は、常態および病態の両方の生理機能
で重要な役割を果たす。

【０００４】正常な生理学的条件下では、血管形成は、胎児および胚の発生、創傷治癒、器
官再生、ならびに女性生殖系リモデリング過程、たとえば、子宮内膜、黄体、お
よび胎盤の形成、に関与する。血管形成は、特に成体動物において、常態下で厳
しく制御されており、調節制御が混乱すると病的血管形成を起こす可能性がある
。

【０００５】病的血管形成は、炎症性疾患、特定の眼障害、および癌の発症および／または
進行への関与が示唆されてきた。特に、血管形成は固形腫瘍の増殖および存続な
らびにその転移に不可欠であるという考えを支持するいくつかの証拠がある(た
とえば、Folkman, N. Engl. J. Med. 285:1182, 1971; Folkman et al., Nature
339:58, 1989; Kim et al. Nature 362:841, 1993; Hori et al., Cancer Res.
, 51:6180, 1991を参照されたい)。したがって、血管形成阻害剤は、癌の予防(
たとえば、前癌状態の治療)、介入(たとえば、小腫瘍の治療)、および退縮(たと
えば、大腫瘍の治療)に有用である(たとえば、Bergers et al., Science 284:80
8, 1999を参照されたい)。

【０００６】疾患を予防、排除、および軽減すべく血管形成の調節を行うためのさらなる組
成物および方法が必要である。

【０００７】B. TWEAK TREPAおよびApo3Lとも呼ばれてきたTWEAKタンパク質は、腫瘍壊死因子(TNF)フ
ァミリーのメンバーであり、多種多様なヒト組織中で発現される(Chicheportich
e et al., J . Biol. Chem., 272(51):32401, 1997; このほかにWiley, PCT公開
WO 98/35061号, 1998年8月13日を参照されたい)。ほとんどのTNFファミリーメン
バーと同様に、TWEAKは、細胞外C末端ドメインを有するタイプII膜タンパク質で
ある。当初、TWEAKはアポトーシスの弱い誘導物質であるとみなされたが、あと
になって、こうした細胞死の誘導は間接的なものであることが示された(Schneid
er et al., Eur. J. Immunol. 29:1785, 1999)。

【０００８】 Lynchらは、TWEAKが内皮細胞増殖および血管形成を直接誘発することを実証し
た(J. Biol. Chem., 274 (13):8455, 1999)。ピコモル濃度の組換え可溶性TWEAK
は、多数の内皮細胞系および大動脈平滑筋細胞で増殖を誘発し、培養時の血清お
よび増殖因子に対する要件を緩和する。さらに、TWEAKは、ラット角膜ポケット
アッセイで強力な血管形成応答を誘発する。TNFファミリーメンバーはTNF受容体
ファミリーのメンバーを介したシグナル伝達によって生物学的応答を開始するの
で、TWEAK受容体の同定および特性づけに大きな関心が払われてきた。

【０００９】 TWEAKは、DR3、Apo3、WSL-1、TRAMP、もしくはLARDとしてさまざまな名称で知
られる死ドメイン含有受容体に結合して、該受容体を介してシグナルを伝達する
とMarstersらは報告した(Marsters et al.. Current Biology 8(9):525, 1998)
。しかしながら、TWEAKはKym-1細胞に結合して該細胞中でシグナル伝達を行うが
、Kym-1細胞は受容体DR3を発現しないことをSchneiderらは明らかにした(Schnei
der et al., Eur. J. Immunol. 29:1785, 1999)。これらの結果から、まだ同定
されていないTWEAK受容体の存在が示唆される。

【００１０】 TWEAKはin vivoで血管形成を誘発するので、主要な機能性TWEAK受容体を同定
することが特に必要である。ひとたび同定されれば、TWEAK受容体を用いて、血
管形成の調節およびヒト疾患の治療を行うためのTWEAK受容体アゴニストおよび
アンタゴニストのスクリーニングおよび開発を行うことができる。

【００１１】（発明の概要）本発明は、主要な機能性TWEAK受容体の同定および生物学的特性づけに基づく
ものである。以下に記載するように、TWEAK受容体をコードするcDNAが、ヒト内
皮細胞発現ライブラリーから分子クローン化された。

【００１２】ここで同定したTWEAK受容体に対応するDNAおよび推定アミノ酸配列は報告され
たものであるが(たとえば、Katoら, PCT公開WO 98/55508号, 1998年12月10日お
よびIncyte, PCT公開WO 99/61471号, 1999年12月2日)、これらの配列がTWEAKに
対する受容体をコードすることも、コードされたポリペプチドが血管形成の調節
に関与することも、これまで認識されていなかった。同様に、最近、研究者らは
、TWEAK受容体アンタゴニストの作製方法および免疫疾患を治療するための該ア
ンタゴニストの使用方法を特許請求したが、主要なTWEAK受容体の同定も、血管
形成におけるその役割の同定も行っていない(Rennert, PCT公開WO 00/42073O号,
2000年7月20日)。これらの欠陥は、本明細書に記載するように、主要なTWEAK受
容体(TWEAKR)の同定およびその生物学的活性の特性づけを行うによって解決され
た。TWEAKRを同定した結果として、血管形成を調節するための組成物の開発が可
能になるとともに、診断剤および治療剤を同定するためのスクリーニングツール
の提供も行えるようになった。

【００１３】本発明は、血管形成の調節をそのような処置の必要な哺乳動物で行う方法を提
供する。この方法には、TWEAK受容体アンタゴニストもしくはTWEAK受容体アゴニ
ストを含む治療上有効な量の組成物を投与することが含まれる。組成物は、好ま
しくは、製薬上許容される担体を含有し、そして哺乳動物は、好ましくはヒトで
ある。

【００１４】いくつかのより好ましい実施形態では、組成物は、血管形成を抑制し、そして
TWEAK受容体アンタゴニスト、たとえば、可溶性のTWEAK受容体断片、アンタゴニ
スト性抗体、もしくはTWEAK受容体とTRAF分子との相互作用を破壊するアンタゴ
ニスト、を含有する。いくつかの最も好ましい実施形態では、アンタゴニストは
、配列番号7のアミノ酸28〜79もしくは配列番号7のアミノ酸28〜309を含有する
。TWEAK受容体アンタゴニストは、好ましくは血管形成により媒介される疾患も
しくは症状、より好ましくは眼の新生血管形成もしくは固形腫瘍により特性づけ
られる疾患もしくは症状を有する哺乳動物を治療するために使用される。いくつ
かの実施形態では、哺乳動物は、放射線もしくは第2の化学療法剤でさらに処置
される。

【００１５】いくつかのより好ましい実施形態では、組成物は、血管形成を促進し、そして
アゴニスト性抗体のようなTWEAK受容体アゴニストを含有する。TWEAK受容体アゴ
ニストは、好ましくは、心臓組織もしくは末梢組織における血管新生不全を治療
するために、創傷治癒もしくは臓器移植を促進するために、またはバイパス手術
もしくは血管形成術と組み合わせて、使用される。

【００１６】本発明はまた、医療に使用するための可溶性TWEAK受容体断片を含むアンタゴ
ニスト、好ましくは配列番号7のアミノ酸28〜79もしくは配列番号7のアミノ酸28
〜309を含むアンタゴニスト、および可溶性TWEAK受容体断片をコードする核酸を
提供する。また、本発明は、血管形成の調節をそのような処置の必要な哺乳動物
で行う医薬品を調製するための、TWEAK受容体アンタゴニストもしくはTWEAK受容
体アゴニストを含む組成物の使用を提供する。

【００１７】本発明はさらに、血管形成を調節しうる化合物を同定する方法を提供する。こ
の方法には、(a) TWEAK受容体細胞外ドメインに結合する試験化合物を同定する
こと、ここで該試験化合物はTWEAKでない、(b) TWEAKとTWEAK受容体との相互作
用に影響を及ぼす試験化合物を同定すること、および(c) TWEAK受容体とTRAFと
の相互作用を調節する試験化合物を同定すること、が含まれる。本発明には、こ
れらの方法に従って同定された化合物が包含される。

【００１８】本発明はまた、検出可能な標識もしくは化学療法剤を血管組織にターゲッティ
ングする方法を提供する。この方法には、TWEAK受容体に結合する抗体を血管組
織に接触させることが含まれる。いくつかの好ましい実施形態では、抗体は、放
射性同位体、化学発光性もしくは蛍光性化合物、または酵素にコンジュゲートさ
れている。いくつかの好ましい実施形態では、抗体は、サイトトキシンにコンジ
ュゲートされている。

【００１９】（本発明の詳細な説明）本発明は、TWEAK受容体と、TWEAK受容体に対するアゴニストおよびアンタゴニ
ストを同定および使用する方法と、に関する。本発明は、アゴニストおよびアン
タゴニストをスクリーニングする方法ならびに血管形成により媒介される疾患も
しくは症状を治療する方法を提供する。

【００２０】A. 本明細書で使用した略語および用語「4-1BB」および「4-1BBリガンド」(4-1BB-L)とは、特に米国特許第5,674,704
号に記載されているポリペプチドであり、それらの可溶性形態を含む。「bFGF」とは、塩基性繊維芽細胞増殖因子である。「BSA」とは、ウシ血清アルブミンである。「CD40リガンド」(CD40L)とは、特に米国特許第5,716,805号に記載されている
ポリペプチドであり、その可溶性形態を含む。「CHO」とは、チャイニーズハムスター卵巣細胞系である。「DMEM」とは、Dulbeccoの改変イーグル培地(市販されている細胞培養培地)で
ある。「ELISA」とは、酵素結合免疫吸着アッセイである。「Flt3L」とは、Flt3リガンド(特に米国特許第5,554,512号に記載されている
ポリペプチド)であり、その可溶性形態を含む。「HRMEC」とは、一次ヒト腎臓微小血管内皮細胞である。「HUVEC」とは、ヒト臍静脈内皮細胞系統である。「PBS」とは、リン酸緩衝食塩水である。「PMA」とは、ホルボール12-ミリステート-13-アセテートである。「RTK」とは、受容体チロシンキナーゼである。「Tek」(Tie2およびorkとも呼ばれてきた)とは、主に血管内皮で発現されるRT
Kである。ヒトTek(ork)の分子クローニングについては、Zieglerの米国特許第5,
447,860号に記載されている。「Tekアンタゴニスト」については、特に、Cerret
tiら, PCT公開WO 00/75323号, 2000年12月14日に記載されている。「TNFR」とは、腫瘍壊死因子受容体であり、その可溶性形態を含む。「TNFR/F
c」とは、腫瘍壊死因子受容体-Fc融合ポリペプチドである。「TRAIL」とは、TNF関連アポトーシス誘発性リガンド(特に米国特許第5,763,2
23号に記載されているTNFファミリーのタイプII膜貫通ポリペプチド)であり、そ
の可溶性形態を含む。「VEGF」とは、VPFもしくは血管透過性因子としても知られている血管内皮増
殖因子である。

【００２１】B. 可溶性TWEAK受容体ポリペプチド以下の実施例に記載するように、天然のヒトTWEAK受容体cDNAは、129残基ポリ
ペプチド(配列番号4)をコードする配列番号3の配列を有する。このDNA配列を検
討すると、約78アミノ酸の細胞外ドメイン(シグナルペプチドを含む配列番号4の
残基1〜78)、約23アミノ酸の膜貫通ドメイン(配列番号4の残基79〜101)、および
約28アミノ酸の細胞内ドメイン(配列番号4の残基102〜129)を有するポリペプチ
ドであることが予測される。TWEAK受容体配列はまた、Katoら, PCT公開WO 98/55
508号, 1998年12月10日およびIncyte, PCT公開WO 99/61471号, 1999年12月2日に
も報告されている。本明細書中で使用する場合、「TWEAKR」には、これらの配列
を有するポリペプチド、特に、配列番号7のアミノ酸28〜79を含むポリペプチド
、ならびにそれらの天然に存在する変異体が包含される。

【００２２】本発明の１態様において、可溶性TWEAK受容体断片は、血管形成の抑制および/
またはTWEAKRへのTWEAKリガンドの結合の阻害を行うTWEAKRアンタゴニストとし
て使用される。

【００２３】可溶性ポリペプチドは、それらを発現する細胞から分泌させることができる。
可溶性形態のポリペプチドの使用は、特定の用途に有利である。このポリペプチ
ドは分泌されるので、組換え宿主細胞からのポリペプチドの精製は容易である。
また、一般的には、可溶性タンパク質は非経口投与に適している。所望のポリペ
プチドを発現するインタクトな細胞を遠心分離などによって培地から分離して、
培地(上清)中の所望のポリペプチドの存在をアッセイすることにより、分泌され
た可溶性ポリペプチドの同定(およびその非可溶性膜結合対応物との識別)を行う
ことが可能である。培地中に所望のポリペプチドが存在すれば、ポリペプチドが
細胞から分泌されたことになり、したがって、可溶性形態のポリペプチドである
ことがわかる。可溶性ポリペプチドは、いくつかの従来法のいずれかを用いて調
製することが可能である。所望の可溶性ポリペプチドをコードするDNA配列を、
ポリペプチド産生用の発現ベクター中にサブクローン化してもよいし、または所
望のコードDNA断片を化学的に合成してもよい。

【００２４】可溶性TWEAKRポリペプチドは、TWEAKR細胞外ドメインの全部もしくは一部分を
含むが、一般的には、細胞表面に該ポリペプチドを保持させる膜貫通ドメインを
欠失している。可溶性ポリペプチドは、膜貫通ドメインの一部分または細胞質ド
メインの全部もしくは一部分を含んでいてもよいが、ただし、ポリペプチドは、
それが産生される細胞から分泌されるものでなければならない。細胞からの分泌
を促進するために、可溶性TWEAKRポリペプチドは、有利には、最初に合成された
ときに天然もしくは異種のシグナルペプチドを含むが、シグナル配列は分泌時に
開裂される。「TWEAKR細胞外ドメイン」という用語は、天然のTWEAKR細胞外ドメ
インの全部もしくは一部分、ならびに関連した形態、たとえば、限定されるもの
ではないが、(a)断片、(b)変異体、(c)誘導体、および(d)融合ポリペプチド、を
包含するものである。血管形成もしくは他のTWEAKR媒介応答を抑制するこれらの
関連形態の能力は、以下に例示されるような方法を用いて、または当技術分野で
公知の他のアッセイを用いて、in vitroもしくはin vivoで調べることが可能で
ある。可溶性TWEAKRポリペプチドの例を以下に提示する。本発明のいくつかの実
施形態では、血管形成もしくは他のTWEAKR媒介応答を抑制するために、TWEAKRへ
のTWEAKの結合を阻止するアンタゴニストとして多量体形態の可溶性TWEAKRポリ
ペプチド(「可溶性TWEAKR多量体」)を使用する。

【００２５】可溶性TWEAKR多量体は、共有結合もしくは非共有結合された多量体であり、二
量体、三量体、もしくはより高次の多量体を包含する。多量体は、異なる可溶性
TWEAKRポリペプチド上のシステイン残基間で形成されたジスルフィド結合によっ
て結合されていてもよい。本発明の１実施形態は、可溶性TWEAKRポリペプチドに
融合されたペプチド部分間の共有結合もしくは非共有結合相互作用を介して連結
された複数の可溶性TWEAKRポリペプチドを含む多量体に関する。そのようなペプ
チドは、ペプチドリンカー(スペーサー)、もしくは多量体化を促進する性質を有
するペプチドであってもよい。ロイシンジッパー、および抗体に由来する特定の
ポリペプチドは、以下でより詳細に記載するように、それに結合した可溶性TWEA
KRポリペプチドの多量体化を促進することのできるペプチドに属する。特定の実
施形態では、多量体は2〜4個の可溶性TWEAKRポリペプチドを含む。

【００２６】いくつかの実施形態では、可溶性TWEAKR多量体は、免疫グロブリンに由来する
ポリペプチドを用いて調製される。抗体由来のポリペプチドの種々の部分(Fcド
メインを含む)に融合された特定の異種ポリペプチドを含む融合タンパク質の調
製については、たとえば、Ashkenaziら(Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:10535,
1991); Byrnら(Nature 344:677, 1990);ならびにHollenbaughおよびAruffo(「
免疫グロブリン融合タンパク質の構築」, Current Protocols in Immunology, S
uppl. 4, pages 10.19.1-10.19.11, 1992)によって報告されている。

【００２７】本発明の好ましい１実施形態は、可溶性TWEAKRをFcポリペプチドに融合させる
ことにより形成された2個の融合タンパク質を含むTWEAKR-Fc二量体に関する。TW
EAKR-Fc融合タンパク質をコードする遺伝子融合体を適切な発現ベクター中に挿
入する。組換え発現ベクターで形質転換した宿主細胞中でTWEAKR-Fc融合タンパ
ク質を発現させ、そして抗体分子のように集合させる。このようにすると、鎖間
ジスルフィド結合がFc部分間に形成されて2価の可溶性TWEAKRを生じる。「Fcポ
リペプチド」という用語には、本明細書中で使用する場合、抗体のFc領域に由来
するポリペプチドの天然形態およびムテイン形態が含まれる。二量体化を促進す
るヒンジ領域を含有するそのようなポリペプチドのトランケート形態も含まれる
。

【００２８】 PCT出願WO 93/10151号に記載されている1種の好適なFcポリペプチドは、ヒトI
gG1抗体のN末端ヒンジ領域からFc領域の天然C末端まで伸長する1本鎖ポリペプチ
ドである。他の有用なFcポリペプチドは、米国特許第5,457,035号およびBaum et
al., EMBO J. 13:3992, 1994に記載されているFcムテインである。このムテイ
ンのアミノ酸配列は、WO 93/10151に提示された天然Fc配列のものと同等である
が、ただし、アミノ酸19はLeuからAlaに変更され、アミノ酸20はLeuからGluに変
更され、そしてアミノ酸22はGlyからAlaに変更されている。このムテインは、Fc
受容体に対する親和性が低減されている。Fc部分を含む融合ポリペプチドおよび
それから形成された多量体は、プロテインAもしくはプロテインGカラムを用いる
アフィニティクロマトグラフィーによって容易に精製されるという利点をもつ。
またFc融合ポリペプチドは、未改変ポリペプチドよりも長いin vivo半減期を提
供しうるので、治療用途に有用である。

【００２９】他の実施形態では、抗体の重鎖もしくは軽鎖の可変部分を可溶性TWEAKRポリペ
プチドで置換してもよい。抗体の重鎖および軽鎖の両方を用いて融合タンパク質
を作製する場合、4個もの可溶性TWEAKRポリペプチドを有する可溶性TWEAKR多量
体を形成することが可能である。

【００３０】このほかに、可溶性TWEAKR多量体としては、ペプチドリンカー(スペーサー)も
しくは多量体化を促進する性質を有するペプチドを含有するかもしくは含有しな
い、複数の可溶性TWEAKRポリペプチドを含む融合タンパク質がある。好適なペプ
チドリンカーとしては、米国特許第4,751,180号、同第4,935,233号、および同第
5,073,627号に記載されているものが挙げられる。当技術分野で公知の従来の方
法を用いて、所望のペプチドリンカーをコードするDNA配列を、TWEAKRをコード
するDNA配列間にそれと同一のリーディングフレームで挿入することが可能であ
る。たとえば、リンカーをコードする化学合成されたオリゴヌクレオチドを、可
溶性TWEAKRをコードする配列間に連結させてもよい。特定の実施形態では、融合
タンパク質は、ペプチドリンカーによって分離された2〜4個の可溶性TWEAKRポリ
ペプチドを含有する。

【００３１】可溶性TWEAKR多量体を調製する他の方法では、ロイシンジッパードメインが使
用される。ロイシンジッパードメインは、それが見いだされるタンパク質の多量
体化を促進するペプチドである。ロイシンジッパーは、当初いくつかのDNA結合
性タンパク質で同定され(Landschulz et al.. Science 240:1759, 1988)、それ
以来多種多様なタンパク質中に見いだされた。既知のロイシンジッパーの中には
、二量体化もしくは三量体化する天然のペプチドおよびそれらの誘導体が含まれ
る。可溶性多量体タンパク質を産生するのに好適なロイシンジッパードメインの
例は、PCT出願WO 94/10308号に記載されている。また肺表面活性物質プロテイン
D(SPD)に由来するロイシンジッパーがHoppe et al. FEBS Lett. 344:191, 1994
に記載されている。Fanslow et al., Semin. Immunol. 6:267, 1994には、ロイ
シンジッパーに融合された異種タンパク質の安定な三量体化を可能にする改変ロ
イシンジッパーの使用についての記載がある。ロイシンジッパーペプチドに融合
された可溶性TWEAKRポリペプチドを含む組換え融合タンパク質は、好適な宿主細
胞中で発現され、そして生成した可溶性TWEAKR多量体は、培養液上清から回収さ
れる。

【００３２】いくつかの用途では、本発明の可溶性TWEAKR多量体は、単量体形態を使用する
よりも優れた特定の利点を提供すると考えられる。たとえば、Fc融合ポリペプチ
ドは典型的には、未改変ポリペプチドと比較して増加したin vivo半減期を呈す
る。

【００３３】本発明には、血管形成もしくは他のTWEAKR媒介応答を抑制する能力を保有する
種々の形態の可溶性TWEAKR多量体の使用が包含される。「可溶性TWEAKR多量体」
という用語は、天然のTWEAKR細胞外ドメインの全部もしくは一部分を含有する多
量体だけでなく関連形態をも包含するものとみなされる。関連形態としては、可
溶性TWEAKRの(a)断片、(b)変異体、(c)誘導体、および(d)融合ポリペプチドから
なる多量体が挙げられるが、これらに限定されるものではない。血管形成もしく
は他のTWEAKR媒介応答を抑制するこれらの関連形態の能力は、実施例に例示され
るような方法を用いてまたは当技術分野で公知の他のアッセイを用いて、in vit
roもしくはin vivoで調べることが可能である。

【００３４】本発明を実施するのに有用な可溶性TWEAKRポリペプチドおよび可溶性TWEAKR多
量体の中には、リガンドに結合する能力および/または血管形成もしくは他のTWE
AKR媒介応答を抑制する能力を保有するTWEAKR変異体が含まれる。そのようなTWE
AKR変異体としては、天然のTWEAKRに実質的に相同であるが1つ以上の欠失、挿入
もしくは置換を有するという点で天然のTWEAKRのものとは異なるアミノ酸配列を
有するポリペプチドが挙げられる。特定の実施形態には、天然のTWEAKR配列と比
較したときに1〜10個のアミノ酸残基の欠失、挿入もしくは置換を含むTWEAKRポ
リペプチドが包含されるが、これらに限定されるものではない。TWEAKRポリペプ
チドの変異体としては、対立形質形態および選択的スプライス形態のような天然
に存在する変異体、ならびにTWEAKRポリペプチドのアミノ酸配列もしくはTWEAKR
ポリペプチドをコードする核酸のヌクレオチド配列を改変することにより構築さ
れた変異体が挙げられる。

【００３５】一般的には、天然のポリペプチド中に存在する1個以上のアミノ酸の置換は、
保存的に行わなければならない。保存的置換の例としては、活性ドメイン(複数
も可)の外側のアミノ酸の置換ならびにTWEAKRの2次および/または3次構造を改変
しないアミノ酸の置換が挙げられる。このほかの例としては、Ile、Val、Leu、
もしくはAlaを互いと置換する場合のように1個の脂肪族残基を他の脂肪族残基で
置換すること、またはLysとArg、GluとAsp、もしくはGlnとAsnを置換する場合の
ように1個の極性残基を他の極性残基で置換すること、あるいはPhe、Trp、もし
くはTyrを互いと置換する場合のように1個の芳香族残基を他の芳香族残基で置換
することが挙げられる。他のそのような保存的置換、たとえば、類似の疎水的特
性を有する全領域の置換などは、当技術分野で公知である。

【００３６】いくつかの好ましい実施形態では、TWEAKR変異体は、天然のTWEAKRのアミノ酸
配列に対してアミノ酸配列が少なくとも約70%同一であり、いくつかの好ましい
実施形態では、TWEAKR変異体は、天然のTWEAKRのアミノ酸配列に対してアミノ酸
配列が少なくとも約80%同一である。いくつかのより好ましい実施形態では、TWE
AKR変異体は、天然のTWEAKRのアミノ酸配列に対してアミノ酸配列が少なくとも
約90%同一であり、いくつかのより好ましい実施形態では、TWEAKR変異体は、天
然のTWEAKRのアミノ酸配列に対してアミノ酸配列が少なくとも約95%同一である
。いくつかの最も好ましい実施形態では、TWEAKR変異体は、天然のTWEAKRのアミ
ノ酸配列に対してアミノ酸配列が少なくとも約98%同一であり、いくつかの最も
好ましい実施形態では、TWEAKR変異体は、天然のTWEAKRのアミノ酸配列に対して
アミノ酸配列が少なくとも約99%同一である。同一性パーセントは、ポリペプチ
ドおよび核酸のいずれについても、目視検査により決定することができる。また
、同一性パーセントは、SmithおよびWaterman (Adv. Appl. Math 2:482, 1981)
によって改訂されたNeedlemanおよびWunsch (J. Mol. Biol. 48:443, 1970)のア
ライメント法を用いて決定してもよい。好ましくは、同一性パーセントは、コン
ピュータープログラム、たとえば、Genetics Computer Groupから入手可能なGAP
コンピュータープログラムのバージョン10.xなどを用いて決定される (GCG; Mad
ison, WI、このほか、Devereux, et al., Nucl. Acids Res. 12:387, 1984も参
照されたい)。GAPプログラムの好ましいデフォルトパラメーターとしては、次の
ものが挙げられる: (1)ヌクレオチドに対して単項比較マトリクス(同一のときは
1、同一でないときは0の値を有する)を使用し、アミノ酸に対して、Schwartzお
よびDayhoff編, Atlas of Protein Sequence and Structure, National Biomedi
cal Research Foundation, pp. 353-358, 1979で説明されているようにGribskov
およびBurgess（Nucl. Acids Res. 14:6745, 1986）の重み付き比較マトリクス
を使用する; (2)各ギャップに対して30(アミノ酸)もしくは50(ヌクレオチド)の
ペナルティーを使用し、各ギャップ中のそれぞれのシンボルに対してさらに1(ア
ミノ酸)もしくは3(ヌクレオチド)のペナルティーを使用する; (3)エンドギャッ
プに対してペナルティーを使用しない; (4)ロングギャップに対して最大ペナル
ティーを使用しない。当業者により用いられている他の配列比較用プログラムを
使用してもよい。TWEAKRの断片の場合には、断片中に存在するTWEAKRの該当部分
を基準にして同一性パーセントが計算される。

【００３７】本発明にはさらに、関連する天然パターンのグリコシル化を受けたかもしくは
受けていない可溶性TWEAKRポリペプチドの使用が包含される。酵母もしくは哺乳
動物の発現系(たとえば、COS-1もしくはCOS-7細胞)で発現されたTWEAKRは、発現
系の選択に応じて、分子量およびグリコシル化パターンが天然のTWEAKRポリペプ
チドと類似していることもあるし、著しく異なることもある。大腸菌のような細
菌の発現系でTWEAKRポリペプチドを発現させると、非グリコシル化分子が得られ
る。また、異なる宿主細胞はポリペプチドを示差的にプロセシングする可能性が
あるため、結果として、さまざまなNもしくはC末端を有するポリペプチドの不均
一混合物が得られることもある。

【００３８】誘導体を作製するために、グリコシル基、脂質、ホスフェート、アセチル基な
どのような他の化学部分を用いて共有結合型もしくは凝集型コンジュゲートを形
成することにより、可溶性TWEAKRポリペプチドの1次アミノ酸構造を改変しても
よい。TWEAKRの共有結合型誘導体は、特定の官能基をTWEAKRアミノ酸の側鎖また
はTWEAKRポリペプチドのN末端もしくはC末端に結合させることにより調製するこ
とが可能である。

【００３９】本発明を実施するのに有用な可溶性TWEAKRの融合ポリペプチドとしては、この
ほかに、新規な多官能性物質を提供する他のポリペプチドが付加されたTWEAKRポ
リペプチドの共有結合型もしくは凝集型コンジュゲートが挙げられる。

【００４０】C. TWEAK受容体抗体本発明の1態様は、TWEAKR細胞外ドメインの抗原エピトープに関する。そのよ
うなエピトープは、抗体、特に以下に詳述されている阻止モノクロナール抗体を
作製するのに有用である。そのようなエピトープもしくはその変異体は、固相合
成、ポリペプチドの化学的もしくは酵素的開裂などの当技術分野で周知の方法を
用いて、または組換えDNA技術を用いて作製することができる。

【００４１】特許請求の範囲に記載された発明には、TWEAKRポリペプチドとの免疫反応を生
じる抗体の組成物および用途が包含される。そのような抗体は、TWEAKRポリペプ
チドに「特異的に結合する」。このことは、抗体が、非特異的結合による相互作
用ではなく抗体の抗原結合部位を介して結合することを意味する。「抗体」とい
う用語は、本明細書中では最も広義に使用され、たとえば、インタクトなモノク
ロナールおよびポリクロナール抗体、さらにはFv、Fab、およびF(ab')₂フラグメ
ントのようなフラグメント、scFvのような1本鎖抗体、および種々の鎖状結合体
が挙げられるが、これらに限定されるものではない。本発明の抗体は、好ましく
は、ヒト化抗体、より好ましくはヒト抗体である。抗体は、さまざまな周知の方
法を用いて調製することが可能である。たとえば、天然のもしくはトランスジェ
ニック免疫レパートリーを有する動物の免疫化、ファージディスプレイ、ハイブ
リドーマおよび組換え細胞培養、ならびにトランスジェニック植物および動物バ
イオリアクターにより調製することが可能であるが、これらに限定されるもので
はない。

【００４２】ポリクロナールおよびモノクロナール抗体はいずれも、従来の方法により調製
することが可能である。たとえば、Monoclonal Antibodies, Hybridomas: A New
Dimension in Biological Analyses. Kennetら(編), Plenum Press, New York
(1980);およびAntibodies: A Laboratory Manual, HarlowおよびLand(編), Cold
Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, (1988)を参照さ
れたい。

【００４３】本発明のポリペプチドに特異的なモノクロナール抗体を生産するハイブリドー
マ細胞系も、本発明の対象とみなされる。そのようなハイブリドーマは、従来の
方法によって作製することが可能である。そのようなハイブリドーマ細胞系を作
製する方法には、ポリペプチドで動物を免疫すること、免疫された動物から脾臓
細胞を採取すること、該脾臓細胞を骨髄腫細胞系に融合してハイブリドーマ細胞
を生成すること、および使用したポリペプチドと結合するモノクロナール抗体を
生産するハイブリドーマ細胞系を同定することが含まれる。ハイブリドーマによ
り生産されたモノクロナール抗体は、従来の方法によって回収することが可能で
ある。

【００４４】本発明のモノクロナール抗体としては、キメラ抗体(たとえば、マウスもしく
は他の非ヒト生物種で最初に生産された抗体を「ヒト化した」抗体)が挙げられ
る。ヒト化抗体とは、典型的には、非ヒト(たとえば、マウス)抗体の可変領域も
しくは少なくともその相補性決定領域(CDR)を含み、残りがヒト抗体由来の免疫
グロブリン部分である、操作された抗体を指す。キメラ抗体およびさらなる遺伝
子操作モノクロナール抗体を生産する手順については、Riechmannら(Nature 332
:323, 1988)、Liuら(PNAS, 84:3439, 1987)、Larrickら(Bio/Technology 7:934,
1989)、ならびにWinterおよびHarris(TIPS 14:139, May, 1993)に報告されてい
る。そのようなヒト化抗体は、公知の方法により調製することが可能であり、こ
うした抗体をヒトに投与する場合、免疫原性低下の利点が得られる。

【００４５】非ヒト動物中でヒト抗体を生成するために開発されてきた手法を、本発明の抗
体の製造に利用することが可能である。抗体は、部分的にヒト抗体であってもよ
く、好ましくは完全にヒト抗体である。たとえば、1つ以上のヒト免疫グロブリ
ン鎖をコードする遺伝物質が導入されたトランスジェニックマウスを利用するこ
とが可能である。そのようなマウスは、さまざまな方法で遺伝子的に改変されう
る。遺伝子操作を行えば、免疫時に動物により生産される抗体の少なくとも一部
、好ましくは実質的に全部において、内因性免疫グロブリン鎖がヒト免疫グロブ
リンポリペプチド鎖と交換されることになる。

【００４６】 1つ以上の内因性免疫グロブリン遺伝子が種々の手段によって不活性化された
マウスが調製されている。ヒト免疫グロブリン遺伝子は、不活性化されたマウス
遺伝子を交換するようにマウスに導入されている。動物中で生産される抗体には
、動物に導入されたヒト遺伝物質によりコードされるヒト免疫グロブリンポリペ
プチド鎖が組み込まれている。抗体を作製するためにそのようなトランスジェニ
ック動物を生産および使用する方法(「トランスジェニック抗体」と呼ばれるこ
ともある)については、たとえば、米国特許第5,814,318号、同第5,569,825号、
および同第5,545,806号に記載されている。これらの特許は、参照により本明細
書に組み入れられるものとする。

【００４７】D. 抑制性アンチセンス、リボザイムおよび三重らせん法周知のアンチセンス、遺伝子「ノックアウト」、リボザイム、および/または
三重らせん法と組み合わせてTWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子配列を使用
して、TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子発現のレベルを減少させることに
よりTWEAKR遺伝子発現および/またはTWEAK受容体-リガンド相互作用のレベルを
減少させることによって、組織もしくは細胞集団における血管形成の調節を改善
することが可能である。血管形成を調節する能力を含めてTWEAK受容体もしくは
リガンドの遺伝子の活性、発現もしくは合成を調節する能力を呈しうる化合物と
しては、アンチセンス、リボザイムおよび三重らせん分子が挙げられる。そのよ
うな分子は、欠陥のない標的遺伝子もしくは適切な場合には突然変異のある標的
遺伝子のいずれかの活性を低減もしくは阻害するように設計することが可能であ
る。そのような分子を生産および使用する方法は、当業者には周知である。

【００４８】E. TWEAK受容体ポリペプチドの組換え生産本発明で使用されるTWEAKRポリペプチド、たとえば、可溶性TWEAKRポリペプチ
ド、断片、融合ポリペプチドなどは、組換えの発現系を用いて調製することが可
能である。TWEAKRポリペプチドをコードする組換え発現ベクターを用いて形質転
換した宿主細胞(「組換え宿主細胞」)をTWEAKRの発現を促進する条件下で培養し
、そしてTWEAKRを回収する。トランスジェニック植物もしくは動物中で、または
化学合成によって、TWEAKRポリペプチドを生産することもできる。

【００４９】本発明には、本発明で使用されるTWEAKRポリペプチドをコードする核酸分子が
包含される。そのような核酸分子としては、(a)配列番号7の残基28〜79をコード
する核酸およびTWEAKに結合するその断片; (b) (a)の核酸と少なくとも70%、80%
、90%、95%、98%、もしくは99%同一であり、かつTWEAKに結合しうるポリペプチ
ドをコードする核酸;および(c)中程度のストリンジェンシーで(a)の核酸にハイ
ブリダイズし、かつTWEAKに結合しうるポリペプチドをコードする核酸が挙げら
れる。

【００５０】遺伝暗号の縮重により、同一のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列に
かなりの変動がありうる。本発明に係る実施形態としては、中程度のストリンジ
ェンシー条件下(たとえば、5×SSC、0.5% SDS、1.0 mM EDTA (pH 8.0)の前洗浄
溶液、および50℃、5×SSC、一晩のハイブリダイゼーション条件)でTWEAKRをコ
ードするDNA配列にハイブリダイズ可能な核酸配列が挙げられる。当業者であれ
ば、中程度のハイブリダイゼーションストリンジェンシーを構成する塩および温
度のさらなる組み合わせを決定することができる(Sambrook, Molecular Cloning
:A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989; Maniati
s, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory
Press, 1982; およびAusubel、Current Protocols in Molecular Biology, Wil
ey and Sons, 1989ならびに改訂版も参照されたい。これらの文献は参照により
本明細書に組み入れられるものとする)。より高いストリンジェンシーの条件と
しては、ハイブリダイゼーション温度およびハイブリダイゼーション後の洗浄温
度をより高くすること、ならびに/あるいは塩濃度をより低くすることが挙げら
れる。核酸の同一性パーセントは、ポリペプチドに対して先に記載した方法を用
いて、すなわち、目視検査による方法およびGAPのようなコンピュータープログ
ラムを用いる方法により、決定することが可能である。

【００５１】組換えTWEAKRを生産するために、任意の好適な発現系を利用することが可能で
ある。組換え発現ベクターとしては、たとえば、哺乳動物、微生物、ウイルス、
もしくは昆虫の遺伝子に由来する好適な転写および翻訳調節ヌクレオチド配列と
機能しうる形で連結された、TWEAKRポリペプチドをコードするDNAが挙げられる
。調節配列がTWEAKR DNA配列と機能的に関係する場合、ヌクレオチド配列は機能
しうる形で連結されている。したがって、プロモーターヌクレオチド配列がTWEA
KR DNA配列の転写を制御するならば、プロモーターヌクレオチド配列はTWEAKR D
NA配列に機能しうる形で結合されている。調節配列としては、たとえば、転写プ
ロモーター、オペレーター、もしくはエンハンサー、mRNAリボソーム結合部位、
ならびに転写および翻訳の開始および終了を制御する適切な配列が挙げられる。
適切なシグナルペプチドをコードする配列(天然もしくは異種)を発現ベクター中
に組み入れることができる。シグナルペプチドを含む融合タンパク質としてTWEA
KRポリペプチドが最初に翻訳されるように、シグナルペプチドに関するDNA配列(
分泌リーダー、リーダーペプチド、もしくはリーダーを含めてさまざまな名称で
呼ばれている)は、TWEAKR配列とフレーム枠をあわせて融合させることが可能で
ある。対象の宿主細胞中で機能的であるシグナルペプチドは、TWEAKRポリペプチ
ドの細胞外分泌を促進する。シグナルペプチドは、細胞からのTWEAKRの分泌時に
TWEAKRポリペプチドから切断される。

【００５２】 TWEAKRポリペプチドの発現に好適な宿主細胞としては、原核細胞、酵母および
より高等な真核細胞、たとえば、昆虫および哺乳動物の細胞が挙げられる。細菌
、真菌、酵母、昆虫、および哺乳動物の細胞宿主と併用するのに適切なクローニ
ングおよび発現ベクターについては、たとえば、Pouwels et al. Cloning Vecto
rs: A Laboratory Manual, Elsevier, New York, 1985に記載されている。

【００５３】原核生物としては、グラム陰性もしくはグラム陽性の生物、たとえば、大腸菌
もしくは桿菌が挙げられる。形質転換に好適な原核宿主細胞としては、たとえば
、大腸菌、枯草菌、ネズミチフス菌（Salmonella typhimurium）、ならびにシュ
ードモナス属、ストレプトミセス属、およびスタフィロコッカス属のさまざまな
他の種が挙げられる。大腸菌のような原核宿主細胞の場合、原核宿主細胞中での
組換えポリペプチドの発現を促進するために、TWEAKRポリペプチドはN末端メチ
オニン残基を含んでいてもよい。N末端Metは、発現された組換えポリペプチドか
ら切断することが可能である。

【００５４】原核宿主細胞で使用される発現ベクターは、一般的には、表現型選択が可能な
マーカー遺伝子を1つ以上含んでいる。表現型選択が可能なマーカー遺伝子は、
たとえば、抗生物質耐性を付与するかもしくは独立栄養要求性を補完するタンパ
ク質をコードする遺伝子である。原核宿主細胞に有用な発現ベクターとしては、
たとえば、クローニングベクターpBR322(ATCC 37017)のような市販のプラスミド
から誘導されたものが挙げられる。pBR322は、アンピシリンおよびテトラサイク
リン耐性遺伝子を含有しており、したがって、形質転換細胞を同定するための単
純な手段を提供する。適切なプロモーターおよびTWEAKR DNA配列を、pBR322ベク
ター中に挿入する。他の市販のベクターとしては、たとえば、pKK223-3 (Pharma
cia Fine Chemicals, Uppsala, Sweden)およびpGEMI (Promega Biotec. Madison
, WI, USA)が挙げられる。

【００５５】組換え原核宿主細胞用発現ベクターに一般に使用されるプロモーター配列とし
ては、β-ラクタマーゼ(ペニシリナーゼ)、ラクトースプロモーター系(Chang et
al., Nature 275:615, 1978 ; Goeddel et al., Nature 281:544, 1979)、トリ
プトファン(trp)プロモーター系(Goeddel et al., Nucl. Acids Res. 8:4057, 1
980; EP-A-36776)およびtacプロモーター(Maniatis, Molecular Cloning: A Lab
oratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, p.412, 1982)が挙げられる
。特に有用な原核宿主細胞発現系は、ファージλ P_LプロモーターおよびcI857ts
熱不安定性リプレッサー配列を利用する。American Type Culture Collectionか
ら入手可能でλ P_Lプロモーターの誘導体が組み込まれているプラスミドベクタ
ーとしては、プラスミドpHUB2 (大腸菌JMB9株, ATCC 37092に内在)およびpPLc28
(大腸菌RRI株, ATCC 53082に内在)が挙げられる。

【００５６】 TWEAKRポリペプチドはまた、酵母宿主細胞中で、好ましくはサッカロミセス属
(たとえば、S.セレビシエ)由来の酵母宿主細胞中で、発現させることも可能であ
る。ピヒア属もしくはクルイベロミセス属のような他の属の酵母を利用すること
も可能である。酵母ベクターは、多くの場合、2μ酵母プラスミド由来の複製起
点配列、自己複製配列(ARS)、プロモーター領域、ポリアデニル化のための配列
、転写終止配列、および選択可能なマーカー遺伝子を含有するであろう。酵母ベ
クターに好適なプロモーター配列としては、特に、メタロチオネイン、3-ホスホ
グリセリン酸キナーゼ(Hitzeman et al., J . Biol. Chem. 255:2073, 1980)も
しくは他の解糖酵素(Hess et al.. J. Adv. Enzyme Reg. 7:149. 1968:Holland
et al., Biochem. 17:4900, 1978)、たとえば、エノラーゼ、グリセルアルデヒ
ド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラー
ゼ、ホスホフクルトキナーゼ、グルコース-6-リン酸イソメラーゼ、3-ホスホグ
リセリン酸ムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、ホ
スホ-グルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼ、に対するプロモーター
が挙げられる。酵母発現に使用される他の好適なベクターおよびプロモーターに
ついては、Hitzeman、EPA-73、657に詳細に記載されている。このほかに、Russe
llら(J. Biol. Chem. 258:2674, 1982)およびBeierら(Nature 300:724, 1982)に
より報告されたグルコース抑制性ADH2プロモーターがある。大腸菌中で選択およ
び複製を行うためのpBR322由来DNA配列(Amp^r遺伝子および複製開始点)を上記の
酵母ベクターに挿入することにより、酵母と大腸菌の両方で複製可能なシャトル
ベクターを構築することが可能である。

【００５７】組換えポリペプチドの分泌を指令するために、酵母α-因子リーダー配列を利
用することが可能である。α-因子リーダー配列は、多くの場合、プロモーター
配列と構造遺伝子配列との間に挿入される。たとえば、Kurjan et al., Cell 30
:933, 1982; Bitter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81:5330, 1984を参
照されたい。酵母宿主からの組換えポリペプチドの分泌を促進するために好適な
他のリーダー配列は、当業者に公知である。1つ以上の制限部位を含有するよう
に、リーダー配列の3'末端近傍を改変してもよい。このようにすると、構造遺伝
子へのリーダー配列の融合が容易となる。

【００５８】酵母形質転換プロトコルは、当業者に公知である。そのような1つのプロトコ
ルは、Hinnen et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 75:1929, 1978に記載され
ている。Hinnenらのプロトコルでは、0.67%酵母窒素塩基、0.5%カザミノ酸、2%
グルコース、10μg/mlアデニンおよび20μg/mlウラシルからなる選択培地中でTr
p⁺形質転換体が選択される。

【００５９】 ADH2プロモーター配列を含有するベクターにより形質転換された酵母宿主細胞
は、「富栄養」培地中で発現を誘導するために増殖させることが可能である。富
栄養培地の例は、1%酵母抽出物、2%ペプトン、および1%グルコースに、80μg/ml
アデニンおよび80μg/mlウラシルを添加してなる培地である。グルコースが培地
から枯渇すると、ADH2プロモーターの抑制解除が起こる。

【００６０】可溶性TWEAKRポリペプチドなどの組換えTWEAKRポリペプチドを発現させるため
に、昆虫宿主細胞培養系を利用することも可能である。昆虫細胞で異種ポリペプ
チドを生産するためのバキュロウイルス系について、Luckow and Summers, Bio/
Technology 6:47, 1988に概説されている。

【００６１】哺乳動物細胞は、宿主細胞として使用するのに特に好ましい。好適な哺乳動物
宿主細胞系としては、たとえば、サル腎細胞のCOS-7系(ATCC CRL 1651)(Gluzman
et al., Cell 23:175, 1981)、L細胞、C127細胞、3T3細胞(ATCC CCL 163)、チ
ャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、HeLa細胞、およびBHK(ATCC CRL 10)細胞
系、ならびにMcMahanら(EMBO J. 10:2821, 1991)に記載されているようなアフリ
カミドリザル腎細胞系CV 1(ATCC CCL 70)由来のCV1/EBNA細胞系が挙げられる。
治療用ポリペプチドを生産する場合、動物性タンパク質を含有していない培地中
で増殖するように適応させた哺乳動物宿主細胞系を使用することが特に有利であ
る。

【００６２】哺乳動物細胞にDNAを導入するための確立された方法が、Kaufman, R. J., Lar
ge Scale Mammalian Cell Culture, 1990, pp. 15-69に記載されている。Lipofe
ctamine(Gibco/BRL)もしくはLipofectamine-Plusのような市販の試薬を用いる他
のプロトコルを細胞のトランスフェクションに使用することもできる(Felgner e
t al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84:7413. 1987)。このほか、Sambrook et
al. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2 ed. Vol. 1-3, Cold Spring
Harbor Laboratory Press, 1989に記載されているような従来の手順を用いて哺
乳動物細胞をトランスフェクトすべくエレクトロポレーションを使用することも
できる。安定な形質転換体の選択は、当技術分野で公知の方法を用いて、たとえ
ば、細胞傷害性薬物に対する耐性を利用して行なうことができる。Kaufman et a
l., Meth. in Enzymology 185:487, 1990には、ジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR
)耐性などのいくつかの選択スキームが記載されている。DHFR選択に好適な宿主
株は、DHFRを欠損するCHO DX-B11株であってもよい(Urlaub and Chasin, Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 77:4216, 1980)。DHFR cDNAを発現するプラスミドをDX-B
11株に導入することができる。そしてそのプラスミドを含有している細胞だけが
適切な選択培地中で増殖することができる。発現ベクターに組み入れることので
きる選択可能なマーカーの他の例としては、G418およびヒグロマイシンBのよう
な抗生物質に対する耐性を付与するcDNAが挙げられる。このベクターを保有する
細胞は、これらの化合物に対する耐性に基づいて選択することができる。

【００６３】哺乳動物宿主細胞用発現ベクターに対する転写および翻訳制御配列は、ウィル
スゲノムから切り出することができる。一般に使用されるプロモーター配列およ
びエンハンサー配列は、ポリオーマウィルス、アデノウイルス2、シミアンウィ
ルス40(SV40)、およびヒトサイトメガロウィルスに由来する。SV40ウィルスゲノ
ムに由来するDNA配列、たとえば、SV40起点、初期および後期プロモーター、エ
ンハンサー、スプライス部位、ならびにポリアデニル化部位は、哺乳動物宿主細
胞中で構造遺伝子配列を発現させるための他の遺伝的エレメントを提供すべく使
用することができる。ウイルスの初期および後期プロモーターは、いずれもウィ
ルスゲノムから断片として容易に取得されるので特に有用であり、ウイルスの複
製起点を含有することもある(Fiers et al., Nature 273:113, 1978 ; Kaufman,
Meth. in Enzymology. 1990)。SV40ウイルス複製起点部位に位置するBgl I部位
の方向にHind III部位から伸長する約250bpの配列が含まれている限り、より小
さいかもしくはより大きいSV40断片を使用することもできる。

【００６４】哺乳動物発現ベクターからの異種遺伝子の発現を改良することが実証されてい
る他の制御配列としては、CHO細胞由来の発現増強配列エレメント(EASE)のよう
なエレメント(Morris et al., Animal Cell Technology, 1997, pp. 529-534)な
らびにアデノウイルス2由来の三分節リーダー(TPL)およびVA遺伝子RNA (Gingera
s et al., J. Biol. Chem. 257:13475. 1982)が挙げられる。ウイルス起源の内
部リボソームエントリー部位(IRES)配列は、ジシストロン性mRNAの効率的な翻訳
を可能にする(Oh and Sarnow, Current Opinion in Genetics and Development
3:295, 1993 ; Ramesh et al., Nucleic Acids Research 24:2697, 1996)。ジシ
ストロン性mRNAの一部として異種cDNAを発現させ、それに続いて選択可能なマー
カー(たとえば、DHFR)の遺伝子を発現させるようにすると、宿主のトランスフェ
クション能および異種cDNAの発現が改良されることが実証されている(Kaufman,
Meth. in Enzymology, 1990)。ジシストロン性mRNAを利用する例示的な発現ベク
ターは、Mosser et al., Biotechniques 22:150, 1997に記載されているpTR-DC/
GFP、およびMorris et al., Animal Cell Technology, 1997, pp. 529-534に記
載されているp2A5Iである。

【００６５】有用な高発現ベクターpCAVNOTが、Mosley et al., Cell 59:335, 1989に記載
されている。哺乳動物宿主細胞で使用される他の発現ベクターは、Okayamaおよ
びBerg(Mol. Cell. Biol. 3:280, 1983)により開示されたように構築することが
できる。C127マウス乳房上皮細胞中で哺乳動物cDNAを安定に高レベルで発現させ
るのに有用な系は、実質的にCosmanら(Mol. Immunol. 23:935, 1986)の報告に従
って構築することができる。Cosman et al., Nature 312:768, 1984に記載され
ている有用な高発現ベクター(PMLSV N1/N4)は、ATCC 39890として寄託されてい
る。他の有用な哺乳動物発現ベクターは当技術分野で公知である。

【００６６】 TWEAKRポリペプチドを生産するのに利用しうるシグナルペプチドに関して、天
然のTWEAKRシグナルペプチドを使用してもよいし、所望により、それを異種のシ
グナルペプチドもしくはリーダー配列と交換してもよい。シグナルペプチドもし
くはリーダーの選択は、組換えTWEAKRの生産が行われる宿主細胞のタイプのよう
な因子に依存しうる。哺乳動物宿主細胞において機能性である異種シグナルペプ
チドとしては、たとえば、米国特許第4,965,195号に記載されているインターロ
イキン-7(IL-7)のシグナル配列、Cosman et al., Nature 312:768 (1984)に記載
されているインターロイキン-2受容体のシグナル配列; EP 367,566に記載されて
いるインターロイキン-4受容体シグナルペプチド; 米国特許第4,968,607号に記
載されているI型インターロイキン-1受容体シグナルペプチド; およびEP 460,84
6に記載されているII型インターロイキン-1受容体シグナルペプチドが挙げられ
る。

【００６７】突然変異誘発およびポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を含む組換えDNA法を用いて、
当業者は、アミノ酸残基もしくは配列の種々の付加もしくは置換、あるいは末端
もしくは内部の残基または配列の欠失を含むTWEAKRポリペプチド（例えば、TWEA
KR断片、変異体、誘導体、および融合ポリペプチド）をコードするDNA配列を生
産することができる。

【００６８】マウス、ヤギ、ヒツジ、ブタなどのトランスジェニック動物、およびタバコ、
トマト、マメ科植物、イネ科植物、穀物などのトランスジェニック植物は、可溶
性TWEAKRポリペプチドなどのTWEAKRポリペプチドを生産するためのバイオリアク
ターとして使用することが可能である。トランスジェニック動物の場合、乳およ
び/または他の体液に可溶なTWEAKRの発現を促進するシス作用性調節配列に機能
しうる形で連結されたTWEAKRコード配列を含むキメラDNAを構築することが特に
有利である(たとえば、米国特許第5,843,705号; 米国特許第5,880,327号を参照
されたい)。トランスジェニック植物の場合、特定の細胞型、組織、もしくは器
官でTWEAKRを生産することが特に有利である(たとえば、米国特許第5,639,947号
; 米国特許第5,889,189号を参照されたい)。

【００６９】当業者であれば、発現された可溶性TWEAKRポリペプチドを精製する手順が、利
用する宿主系により、また組換えポリペプチドが分泌されるか否かにより変化す
ることはわかるであろう。可溶性TWEAKRポリペプチドは、当技術分野で公知の方
法を用いて、たとえば、濃縮、塩析、イオン交換、疎水的相互作用、アフィニテ
ィー精製、HPLC、もしくはサイズ排除クロマトグラフィーのうち1つ以上のステ
ップを用いて精製することが可能である。Fc部分を含む融合ポリペプチド(およ
びそれから形成される多量体)には、プロテインAもしくはプロテインGカラムを
用いるアフィニティクロマトグラフィーによって容易に精製できるという利点が
ある。

【００７０】F. 治療方法以下に記載されているのは、標的組織中もしくは細胞集団中で血管形成を促進
もしく抑制するために、TWEAK受容体もしくはリガンド、またはTWEAK受容体もし
くはリガンドをコードする遺伝子を利用する方法および組成物である。「処置す
る」、「処置すること」、「処置」、「治療」、「治療用」などの用語は、防止
的治療、予防的治療、改善的治療、および治癒的治療を含むものとする。

【００７１】開示したポリペプチド、組成物、および方法は、血管形成もしくは他のTWEAKR
媒介応答の阻害を、そのような処置の必要な哺乳動物で行うために使用される。
「TWEAKR媒介応答」という用語には、少なくともTWEAKRにTWEAKリガンドが結合
することが一因となって惹起されるか、またはTWEAKがTWEAKRに結合するのを阻
止するとそのことがすべての原因もしくは一因となって阻害もしくは抑制されう
る、任意の細胞的、生理学的、もしく他の生物学的応答が包含される。治療は、
有利には、血管形成により媒介される疾患もしくは症状の発症もしくは再発を防
止するか、または血管形成により媒介される疾患もしくは症状を有する哺乳動物
を治療するために行われる。血管形成により媒介される疾患および症状としては
、眼障害、悪性および転移状態、ならびに炎症性疾患が挙げられるが、これらに
限定されるものではない。

【００７２】本発明により治療しうる眼障害の中には、眼新生血管形成を特徴とする眼疾患
が包含され、具体的には、糖尿病性網膜症(糖尿病の主要な併発症)、末熟児網膜
症(しばしば慢性視力障害に陥り盲目になる危険性の高いこの壊滅的な眼状態は
、未熟児のケア中に生じる重度の併発症である)、血管新生緑内障、網膜芽細胞
腫、水晶体後繊維増殖症、皮膚潮紅、葡萄膜炎、黄斑変性、および角膜移植新生
血管形成が挙げられるが、これらに限定されるものではない。このほかの眼炎症
性疾患、眼腫瘍、および脈絡膜もしくは虹彩新生血管形成に伴う疾患も、本発明
により治療することができる。

【００７３】本発明はまた、固形腫瘍のような悪性および転移状態を治療するために使用す
ることもできる。固形腫瘍には、原発性および転移性の肉腫および癌腫の両方が
包含される。

【００７４】本発明はまた、炎症性疾患、たとえば、限定されるものではないが、関節炎、
リウマチ、乾癬などを治療するために使用することもできる。

【００７５】本発明により治療することのできる他の疾患および症状としては、良性腫瘍お
よび前新生物状態、心筋血管形成、血友病性関節、強皮症、血管癒着、アテロー
ム斑新生血管形成、毛細管拡張症、および創傷肉芽化が挙げられる。

【００７６】血管形成依存性の疾患状態としては、心臓、肝臓、脳などのような任意の組織
もしくは器官の冠状動脈もしくは末梢動脈アテローム性硬化症および虚血が挙げ
られる。これらのタイプの疾患は、血管形成を促進する組成物で治療することが
できる。

【００７７】 TWEAKR細胞外ドメインの断片を含むポリペプチド、可溶性TWEAKR多量体、およ
びTWEAKR細胞外ドメインに結合する抗体のほかに、他の形のTWEAKRアンタゴニス
トを投与することにより治療効果を達成することもできる。他の形のTWEAKRアン
タゴニストとしては、たとえば、TWEAKに対する抗体のような他の抗体、アンチ
センス核酸、リボザイム、ムテイン、アプタマー、およびTWEAKRもしくはTWEAK
を標的とする小分子が挙げられる。

【００７８】所望の予防もしくは治療活性を確認するために、またヒトに投与する前に最適
治療用量を決定するために、本発明に係る方法をin vivo動物モデルで試験する
こともできる。

【００７９】特定の治療方法に有効な特定のTWEAKRアンタゴニストの量は、年齢、処置され
る症状のタイプおよび重症度、体重、所望の治療期間、投与方法、ならびに他の
パラメーターに依存する。有効量は、医師もしくは資格を有する他の医療専門家
によって決定される。典型的な有効量は、約0.01mg/kg体重〜約100mg/kg体重で
ある。いくつかの好ましい実施形態では、用量は約0.1〜50mg/kgであり; いくつ
かの好ましい実施形態では、用量は約0.5〜10mg/kgである。局所的投与の用量は
、典型的には、全身的投与のときよりも低い。いくつかの実施形態では、1回投
与で十分であり; いくつかの実施形態では、TWEAKRアンタゴニストは1日以上に
わたって多数回投与される。

【００８０】 TWEAKRアンタゴニストは、典型的には、1種以上の薬理学的に許容される担体
を含む医薬組成物の形で投与される。製薬上許容される担体としては、希釈剤、
充填剤、佐剤、賦形剤、ならびに投与経路に関して薬学的に許容されるビヒクル
であってもよいし、また、好適な分散剤、湿潤剤、および懸濁化剤を用いて配合
された水性もしくは油性の懸濁液であってもよい。

【００８１】製薬上許容される担体は、一般的には、無菌で発熱物質を含まず、例としては
、水、油、溶媒、塩、糖および他の炭水化物、乳化剤、緩衝剤、抗菌剤、ならび
にキレート化剤が挙げられる。特定の製薬上許容される担体、および活性化合物
と担体との比は、組成物の溶解度および化学的性質、投与の形態、ならびに標準
的な医薬品の取扱いによって決定される。

【００８２】本明細書に記載の組成物は、バイアル、ボトル、管、シリンジ吸入器または1
回もしくは多数回投与用の他の容器に入れることが可能である。そのような容器
は、ガラスもしくは高分子材料、たとえば、ポリプロピレン、ポリエチレン、も
しくはポリ塩化ビニルなどから作製することが可能である。好ましい容器は、シ
ールもしくは他の閉鎖システム、たとえば、1回用量を取り出すために針を貫通
させることが可能であり、次に、針を引き抜いた後、ふたたび密閉しうるゴム栓
などを具備する。注射可能な液体、凍結乾燥製剤、再構成用凍結乾燥製剤もしく
は当技術分野で公知の再構成可能な注射用粉末に用いられるか、またはエーロゾ
ル化組成物を投与するために用いられるそのような容器はすべて、本発明で開示
した組成物および方法に使用されるものとする。

【００８３】 TWEAKRアンタゴニストは、適応症に適した方法で患者に投与される。したがっ
て、たとえば、TWEAKRアンタゴニスト、もしくはその医薬組成物は、静脈内、経
皮、皮内、腹腔内、筋肉内、鼻腔内、硬膜外、経口、局所、皮下、腔内、インプ
ラントからの徐放性放出により、ぜん動経路で、もしくは他の任意の好適な方法
によって投与されうる。非経口投与が好ましい。

【００８４】特許請求の範囲に記載の発明の特定の実施形態では、治療にはさらに、1種以
上の別の化学療法剤で哺乳動物を処置することが含まれる。別の化学療法剤(複
数種も可)は、TWEAKRアンタゴニストの投与前、投与時、もしくは投与後に投与
することが可能である。治療対象の哺乳動物が固形腫瘍を有する場合、2種以上
の化学療法剤を使用することが特に有利である。特許請求の範囲に記載された本
発明のいくつかの実施形態では、治療にはさらに、放射線で哺乳動物を処置する
ことが含まれる。放射線は、近接照射療法や遠隔照射法などで、第2の化学療法
剤(複数種も可)および/またはTWEAKRアンタゴニストの投与前、投与時、もしく
は投与後に投与することが可能である。

【００８５】治療対象の哺乳動物が固形腫瘍を有する場合、当該方法には、好ましくは、TW
EAKRアンタゴニストに加えて、アルキル化剤、代謝拮抗物質、ビンカアルカロイ
ドおよび他の植物由来化学療法剤、ニトロソウレア、抗腫瘍抗生物質、抗腫瘍酵
素、トポイソメラーゼ阻害剤、白金類似体、副腎皮質抑制剤、ホルモン、ホルモ
ン作動薬および拮抗薬、抗体、免疫療法剤、血液細胞因子、放射線療法剤、なら
びに生物学的応答調節剤からなる群より選択された1種以上の化学療法剤を投与
することが含まれる。

【００８６】いくつかの好ましい実施形態では、当該方法には、TWEAKRアンタゴニストに加
えて、シスプラチン、シクロホスファミド、メクロレタミン、メルファラン、ブ
レオマイシン、カルボプラチン、フルオロウラシル、5-フルオロデオキシウリジ
ン、メトトレキセート、タキソール、アスパラギナーゼ、ビンクリスチン、およ
びビンブラスチン、リンフォカインおよびサイトカイン（たとえば、インターロ
イキン、インターフェロン(α、β、もしくはδを含む)、およびTNF）、クロラ
ムブシル、ブスルファン、カルムスチン、ロムスチン、セムスチン、ストレプト
ゾシン、ダカルバジン、シタラビン、メルカプトプリン、チオグアニン、ビンデ
シン、エトポシド、テニポシド、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソル
ビシン、ブレオマイシン、プリカマイシン、マイトマイシン、L-アスパラギナー
ゼ、ヒドロキシウレア、メチルヒドラジン、ミトタン、タモキシフェン、ならび
にフルオキシメステロンからなる群より選択された1種以上の化学療法剤を投与
することが含まれる。

【００８７】いくつかの好ましい実施形態では、当該方法には、TWEAKRアンタゴニストに加
えて、Flt3リガンド、CD40リガンド、インターロイキン-2、インターロイキン-1
2、4-1BBリガンド、抗4-1BB抗体、TNFアンタゴニストおよびTNF受容体アンタゴ
ニスト、TRAIL、VEGFアンタゴニスト、VEGF受容体(FltlおよびFlklもしくはKDR
としても知られるVEGF-R1およびVEGF-R2を含む)アンタゴニスト、Tekアンタゴニ
スト、およびCD148(DEP-1、ECRTPおよびPTPRJとも呼ばれる。Takahashi et al.,
J. Am. Soc. Nephrol. 10:2135-45. 1999を参照されたい)アゴニストからなる
群より選択された1種以上の化学療法剤(種々のその可溶形態を含む)を投与する
ことが含まれる。いくつかの好ましい実施形態では、本発明のTWEAKRアンタゴニ
ストは、BrowderらおよびKlementら(Cancer Research 60:1878, 2000; J. Clin.
Invest. 105(8):R15, 2000 ; このほかBarinaga, Science 288:245, 2000をも
参照されたい)によって報告されているような「調律的(metronomic)治療」の1要
素として、もしくはそれと組み合わせて使用される。

【００８８】本発明のポリペプチド、組成物、および方法は、最初に行う処置として、一次
治療の後に残留する疾患を治療するために、または他の療法、たとえば、化学療
法、外科療法、放射線療法、当技術分野で公知の他の治療法などに対する補助的
治療として、使用することが可能である。

【００８９】本発明の核酸配列を本明細書に開示された方法に従って送達する場合、配列が
細胞に組み込まれて発現されるような送達機構を使用することが有利である。意
図した方法で有利に利用しうる送達系には、たとえば、レトロウイルスおよびア
デノウイルスベクターのようなウイルス送達系、ならびに非ウイルス送達系の使
用が挙げられる。そのような送達系は当業者に周知である。

【００９０】G. スクリーニング方法本明細書に記載のTWEAK受容体は、たとえば、TWEAKRアゴニストおよびアンタ
ゴニストを単離すべく、さまざまなスクリーニング方法で使用することが可能で
ある。TWEAKRアゴニストとは、TWEAKRの生物学的活性を促進する化合物であり、
そしてTWEAKRアンタゴニストとは、TWEAKRの生物学的活性を阻害する化合物であ
る。以下のスクリーニングアッセイによって同定された化合物は、さまざまな疾
患状態を治療すべく血管形成を調節するための組成物および方法で使用すること
ができる。本発明は、(1)標的組織もしくは細胞においてTWEAK受容体もしくはリ
ガンドの遺伝子発現を調節するか、(2) TWEAK受容体-リガンド相互作用を調節し
て血管形成を調節するか、(3) TWEAK受容体もしくはリガンドに結合して血管形
成に影響を及ぼすか、または(4)血管形成のような下流の事象に及ぼす、結合し
たTWEAK受容体-リガンド複合体の影響を妨害もしくは調節する化合物をスクリー
ニングする方法を提供する。

【００９１】 TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子の活性を調節する(すなわち、TWEAK遺
伝子発現のレベルを調節するおよび/またはTWEAK遺伝子産物活性のレベルを調節
する)化合物を同定するように設計されたアッセイを使用することも本発明に包
含されるとみなされる。さらに、TWEAK遺伝子調節配列(たとえば、プロモーター
配列。Platt, 1994, J. Biol. Chem. 269, 28558-28562などを参照されたい)に
結合してTWEAK遺伝子発現のレベルを調節しうる化合物を同定するアッセイを利
用することも可能である。

【００９２】そのようなアッセイでは、たとえば、TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子
の転写および翻訳が行われる対照系を使用して、TWEAK遺伝子の正常な転写もし
くは翻訳に影響を及ぼすことが疑われる試験化合物を含む系と比較することが可
能である。たとえば、心臓細胞によって生産されたTWEAK受容体RNAの単位時間あ
たりの量を測定し、これを用いて、試験化合物がその量に影響を及ぼすかどうか
を判定することができる。この正常な転写量に影響を及ぼすことが疑われる試験
化合物の影響を評価するために、最初に、たとえば、ノーザンブロット法により
心臓細胞培養物中のTWEAK受容体RNAの生産量が決定されるであろう。次に、試験
化合物が存在することを除けば対照培養物のときと同一の条件下で、心臓細胞培
養物に試験化合物を投与することができる。その後、たとえば、ノーザンブロッ
ト法により、試験化合物で処理された培養物中のTWEAK受容体RNAの単位時間あた
りの量を測定し、対照培養細胞によって生産されたTWEAK受容体RNAの量と比較す
ることができる。対照細胞と比較して、試験化合物と接触させた細胞中でTWEAK
受容体RNAが増加していれば、心臓細胞におけるTWEAK受容体遺伝子の転写および
/または翻訳の刺激剤であることが示唆され、減少していれば、心臓細胞におけ
るTWEAK受容体遺伝子の転写および/または翻訳の阻害剤であることが示唆される
。

【００９３】 TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子発現のレベルを決定するために使用す
ることができるとともに、TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子発現のレベル
に及ぼす試験化合物の影響を決定するためのアッセイで使用しうるさまざまな他
の方法が存在する。たとえば、TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子を発現さ
せることが知られているか、もしくは、その可能性のある細胞型もしくは組織（
例えば、心臓等）を、ハイブリダイゼーション法もしくはPCR法を利用して単離
および試験することが可能である。単離される細胞は、細胞培養物に由来するも
のであってもよいし、患者に由来するものであってもよい。培養物から採取され
た細胞の分析は、細胞ベースの遺伝子療法の一部として使用される細胞を評価し
たり、TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子の発現に及ぼす化合物の影響を試
験したりするのに必要なステップとなりうる。そのような分析を行えば、TWEAK
受容体もしくはリガンドの遺伝子発現の活性化もしくは不活性化を含めて、TWEA
K受容体もしくはリガンドの遺伝子の発現パターンの定量的および定性的側面が
明らかになる可能性がある。

【００９４】そのような検出スキームの1実施形態では、対象のRNA分子からcDNA分子が合成
される(たとえば、RNA分子からcDNAへの逆転写によって)。次に、cDNA内の配列
を、PCR増幅反応などのような核酸増幅反応の鋳型として使用する。この方法の
逆転写ステップおよび核酸増幅ステップで合成開始試薬(たとえば、プライマー)
として使用される核酸試薬は、上記のTWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子核酸
セグメントの中から選択される。そのような核酸試薬の好ましい長さは、少なく
とも9〜30ヌクレオチドである。増幅された生成物の検出を行うために、放射能
もしくは非放射能標識ヌクレオチドを用いて核酸増幅を行うことが可能である。
このほか、標準的なエチジウムブロミド染色により、もしくは他の任意の好適な
核酸染色法を利用することにより生成物を目視観測できるように、十分に増幅さ
れた生成物を作製することも可能である。

【００９５】このほか、そのようなTWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子発現アッセイを
「in situ」で、すなわち、生検もしくは切除により得られた患者組織の組織切
片(固定および/または凍結)を用いて直接に行うことが可能であり、その場合、
核酸精製の必要はない。先に記載したTWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子核
酸セグメントは、そのようなin situ手順においてプローブおよび/またはプライ
マーとして使用することができる(たとえば、Nuovo, G. J., 1992, "PCR In Sit
u Hybridization: Protocols And Applications", Raven Press, NYを参照され
たい)。

【００９６】本明細書に記載されているようなアッセイにより同定される化合物は、たとえ
ば、TWEAK受容体-リガンド相互作用による影響を受ける血管形成を調節するのに
有用であると考えられる。TWEAKの影響下にある血管形成を刺激もしくは阻害す
るそのような方法について、本明細書で説明する。

【００９７】このほか、本発明のTWEAK受容体もしくはリガンドのポリペプチドに結合しう
る化合物を同定するようにアッセイ系をデザインすることにより、この相互作用
に起因した血管形成に影響を及ぼすことが可能である。同定された化合物は、た
とえば、標的組織もしくは細胞の血管新生を調節するのに有用であるか、正常な
TWEAK受容体-リガンド相互作用を破壊する化合物を同定すべくスクリーニングを
行うのに利用されるか、またはそれ自体でそのような相互作用を破壊すると考え
られる。

【００９８】 TWEAK受容体もしくはリガンドに結合する化合物を同定するのに使用されるア
ッセイの原理には、2つの成分が相互作用および結合して回収および/または反応
混合物中での検出が可能な複合体を形成するのに十分な条件および時間でTWEAK
受容体もしくはリガンドと試験化合物との反応混合物を調製することが含まれる
。こうしたアッセイはさまざまな方法で行うことができる。たとえば、TWEAK受
容体に結合する化合物をスクリーニングするそのようなアッセイを行う1方法に
は、TWEAK受容体もしくは試験物質を固相に固着させること、および反応終了時
に固相に固着されたTWEAK受容体/試験化合物複合体を検出することが含まれるで
あろう。そのような方法の1実施形態では、TWEAK受容体を固体表面に固着させ、
そして固着させない試験化合物を直接的もしくは間接的に標識してもよい。この
ほか、受容体ではなくTWEAKリガンドに結合する試験化合物をスクリーニングす
るために、これと同一の方法を使用することができる。

【００９９】実際上、マイクロタイタープレートを固相として便利に利用することができる
。固着成分は、非共有結合もしくは共有結合によって固定されうる。非共有結合
は、タンパク質の溶液で単に固体表面を被覆して乾燥させることによって形成し
うる。このほか、固定化抗体、好ましくは、固定されるタンパク質に特異的なモ
ノクロナール抗体を、固体表面にタンパク質を固定するのに使用することが可能
である。あらかじめ表面を調製し保存しておくことも可能である。

【０１００】アッセイを行うために、固着成分を含有する被覆表面に非固定成分を添加する
。反応終了後、生成した複合体がいずれも固体表面に固定された状態で保持され
るような条件下で、未反応成分を除去する(たとえば、洗浄によって)。固体表面
に固定された複合体の検出は、いくつかの方法で行うことができる。前固定され
ない成分が前標識されている場合、表面に固定された標識が検出されれば、複合
体が形成されたことが示唆される。事前固定されない成分が前標識されていない
場合、間接的標識を用いて、たとえば、事前固定されない成分に特異的な標識抗
体を用いて(次に、この抗体を、標識された抗Ig抗体で直接的に標識するかもし
くは間接的に標識することが可能である)、表面に固着された複合体を検出する
ことができる。

【０１０１】このほか、反応を液相中で行い、反応生成物を未反応成分から分離し、そして
複合体を検出することができる。たとえば、TWEAK受容体もしくはリガンドまた
は試験化合物に特異的な固定化抗体を用いて、溶液中に生成したすべての複合体
を固着させ、そしてこうして形成されうる複合体の他の成分に特異的な標識抗体
を用いて、固着された複合体を検出することができる。

【０１０２】 TWEAK受容体もしくはTWEAKリガンドのいずれかに対する結合剤として同定され
た化合物が、以下に記載されているようにTWEAK受容体-リガンド相互作用を妨害
することにより、TWEAK受容体-リガンド相互作用に起因した血管形成を抑制もし
くは促進する能力を、さらに評価することも可能である。その後、血管形成を刺
激もしくは阻害すべく、そのような化合物を治療に使用することが可能である。

【０１０３】開示したTWEAK受容体もしくはリガンドと特異的に相互作用して、これらの分
子間の相互作用を阻害(アンタゴナイズ)もしくは増強(アゴナイズ)する化合物お
よび小分子を同定するクリーニングアッセイにおいて、本発明のTWEAK受容体お
よびリガンドのポリペプチドを使用することが可能である。したがって、たとえ
ば、細胞、無細胞調製物、化学ライブラリー、および天然物混合物に由来するア
ンタゴニストおよびアゴニストを同定するために、本発明のポリペプチドを使用
することも可能である。アンタゴニストおよびアゴニストは、本発明のポリペプ
チドの天然のもしくは改変された基質、リガンド、酵素、受容体などであっても
よいし、本発明のポリペプチドの構造的もしくは機能的模擬体であってもよい。
本発明のTWEAK受容体-リガンド相互作用に対する可能性のあるアンタゴニストと
しては、ポリペプチドの結合部位に結合して占有することにより、それらが相互
作用できないようにし、こうしてそれらの正常な能力を損なうことにより血管形
成を調節する小分子、ペプチド、および抗体が挙げられる。他の可能性のあるア
ンタゴニストは、in vivoでmRNAにハイブリダイズしてmRNAから本発明のポリペ
プチドへの翻訳を阻止しうるアンチセンス分子である。可能性のあるアゴニスト
としては、本発明のTWEAKポリペプチドに結合して、本発明のTWEAKポリペプチド
の開示された相互作用により惹起される血管形成に影響を及ぼす小分子、ペプチ
ドおよび抗体が挙げられる。

【０１０４】小分子のアゴニストおよびアンタゴニストは、通常10K未満の分子量であり、
そして細胞透過の促進、分解に対する抵抗、および生理学的半減期の延長を行う
いくつかの生理化学的および薬理学的性質をもちうる。(Gibbs, "Pharmaceutica
l Research in Molecular Oncology," Cell, Vol. 79, (1994))。本発明のポリ
ペプチドに結合してシグナル伝達カスケードの開始を阻止することにより該ポリ
ペプチドを阻害すべく、抗体(インタクトな分子だけでなく、FabおよびF(ab')₂
フラグメントのような断片も含まれる)を使用することが可能である。抗体はヒ
ト化抗体であることが好ましく、より好ましくは、抗体はヒト抗体である。本発
明の抗体は、さまざまな周知の方法のいずれかを用いて調製することが可能であ
る。

【０１０５】特定のスクリーニング方法が当技術分野で公知であり、そして多くがハイスル
ープット試験システムに広く組み入れられ、短時間内で多数の試験化合物をスク
リーニングすることができるようになっている。アッセイは、タンパク質-タン
パク質結合アッセイ、生化学的スクリーニングアッセイ、イムノアッセイ、細胞
ベースのアッセイなどを含めて、さまざまなフォーマットで行なうことができる
。これらのアッセイフォーマットは、当技術分野で周知である。本発明のスクリ
ーニングアッセイは、化学ライブラリーのスクリーニングに適しており、小分子
薬物候補化合物、抗体、ペプチドならびに他のアンタゴニストおよびアゴニスト
の同定に好適である。

【０１０６】 TWEAK受容体-リガンド相互作用をアンタゴナイズもしくは阻害する分子を同定
する方法の1実施形態には、本発明のポリペプチドを発現する細胞を含有してい
る培地に候補化合物分子を添加すること; 候補化合物分子が存在しなければポリ
ペプチドが相互作用するように該培地の条件を変化させること; ならびに結合お
よび血管形成阻害を観測することが含まれる。TWEAK受容体とリガンドとの結合
は、当技術分野で周知である先に概説した競合結合アッセイにより決定すること
ができる。この結合の血管形成効果は、細胞増殖アッセイにより、たとえば、細
胞密度アッセイもしくは当技術分野で周知の他の細胞増殖アッセイにより決定す
ることができる。次に、候補化合物分子に接触させた細胞の活性を、接触させな
かった同一の細胞と比較して、本発明のTWEAKポリペプチド相互作用に対するア
ゴニストおよびアンタゴニストを同定することが可能である。生物学的活性の測
定は、存在するタンパク質の量の測定(たとえば、ELISA)もしくはタンパク質の
活性の測定のようないくつかの周知の方法によって行なうことが可能である。生
物学的刺激もしくは活性化が減少すれば、アンタゴニストであるとみなされるで
あろう。増加すれば、アゴニストであるとみなされるであろう。

【０１０７】さらに、本発明のTWEAKポリペプチド相互作用に起因した生物学的活性を模擬
する分子を見いだすべく、スクリーニングアッセイをデザインすることが可能で
ある。ポリペプチドの生物学的活性を模擬する分子は、ポリペプチドの生物学的
活性を増強するのに有用であると考えられる。ポリペプチドの生物学的活性を模
擬する治療上有効な薬剤であるかについて化合物を同定するために、最初に、候
補化合物分子がポリペプチドに結合するかを決定しなければならない。次に、結
合する候補化合物分子を生物学的アッセイに付してその生物学的効果を決定する
。その後、候補化合物分子の生物学的効果をポリペプチドのものと比較する。

【０１０８】このほか、試験化合物と正常なTWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子タンパク
質とを含有する反応混合物内の複合体形成を、試験化合物と突然変異のTWEAK受
容体もしくはリガンド遺伝子タンパク質とを含有する反応混合物内の複合体形成
と比較することが可能である。この比較は、正常体ではなく突然変異体であるTW
EAK受容体もしくはリガンド遺伝子タンパク質の相互作用を破壊する化合物を同
定することが望ましい場合に重要であると考えられる。

【０１０９】 TWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子産物と結合パートナーとの相互作用を妨
害する化合物のアッセイは、不均一もしくは均一フォーマットで行うことができ
る。不均一アッセイには、TWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子産物または結合
パートナーのいずれかを固相に固着させて固相に固着された複合体を反応終了時
に検出することが含まれる。均一アッセイでは、全反応が液相中で行なわれる。
いずれの方法においても、反応物の添加順序を変えることにより、試験されてい
る化合物に関するさまざまな情報を得ることができる。たとえば、TWEAK受容体
もしくはリガンド遺伝子産物と結合パートナーとの相互作用を競合などにより妨
害する試験化合物は、試験物質の存在下で反応を行うことにより、すなわち、TW
EAK受容体およびリガンド遺伝子産物の前にもしくはそれと同時に反応混合物に
試験物質を添加することにより、同定することができる。このほか、前形成され
た複合体を破壊する試験化合物、たとえば、複合体の成分のうちの1つを置き換
える、より高い結合定数を有する化合物は、複合体が形成された後、反応混合物
に試験化合物を添加することにより試験することができる。種々のフォーマット
について以下で簡単に説明する。

【０１１０】不均一アッセイ系では、TWEAK受容体もしくはリガンドの遺伝子産物のいずれ
かを固体表面に固着させ、一方、固着させない種を直接的もしくは間接的に標識
する。実際上、マイクロタイタープレートを利用するのが便利である。固着させ
た種は、非共有結合もしくは共有結合によって固定されうる。非共有結合は、TW
EAK受容体もしくはリガンド遺伝子産物の溶液で単に固体表面を被覆して乾燥さ
せることによって形成しうる。このほか、固着される種に特異的な固定化抗体を
、固体表面に種を固着させるのに使用することが可能である。あらかじめ表面を
調製し保存しておくことも可能である。

【０１１１】アッセイを行うために、試験化合物を有するかもしくは有していない被覆表面
に固定種のパートナーを暴露する。反応終了後、未反応成分を除去すると(たと
えば、洗浄によって)、生成した複合体はいずれも固体表面に固定された状態で
保持されるであろう。非固定種が前標識されている場合、固体表面に固着された
複合体の検出は、いくつかの方法で行うことができる。表面に固定された標識が
検出されれば、複合体が形成されたことが示唆される。非固定種が前標識されて
いない場合、間接的標識を用いて、たとえば、事前固定されない種に特異的な標
識抗体を用いて(次に、この抗体を、標識された抗Ig抗体で直接的に標識するか
もしくは間接的に標識することが可能である)、表面に固着された複合体を検出
することができる。反応成分の添加順序に依存して、複合体形成を阻害するかも
しくは前形成された複合体を破壊する試験化合物を検出することができる。

【０１１２】このほか、試験化合物の存在下もしくは不在下で反応を液相中で行い、反応生
成物を未反応成分から分離し、そして複合体を検出することができる。たとえば
、結合性成分のうちの1つに特異的な固定化抗体を用いて、溶液中に生成したす
べての複合体を固着させ、そして他のパートナーに特異的な標識抗体を用いて、
固着された複合体を検出することができる。この場合にも、液相への反応物の添
加順序に依存して、複合化を阻害するかもしくは前形成された複合体を破壊する
試験化合物を検出することができる。

【０１１３】本発明の他の実施形態において、均一アッセイを使用することができる。この
方法では、TWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子産物の前形成複合体が調製され
る。この場合、TWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子産物またはその結合パート
ナーのうちのいずれかを標識するが、標識によって生成されるシグナルは、複合
体形成によりクエンチされる(たとえば、この方法をイムノアッセイに利用したR
ubensteinの米国特許第4,109,496号を参照されたい)。前形成複合体の種のうち
の1つと競合し、それを置き換える試験物質を添加すると、バックグラウンドを
超えるシグナルが生成されるであろう。このようにして、TWEAK受容体もしくは
リガンド遺伝子産物相互作用を破壊する試験物質を同定することができる。

【０１１４】特定の実施形態では、固定を行うべく組換えDNA法を用いてTWEAK受容体もしく
はリガンド遺伝子産物を調製することができる。たとえば、得られる融合タンパ
ク質中で結合活性が保持されるように、pGEX-5X-1のような融合ベクターを用い
て、TWEAK受容体もしくはリガンドコード領域をグルタチオン-S-トランスフェラ
ーゼ(GST)遺伝子に融合させることができる。当技術分野で慣用される方法を用
いて、相互作用性結合パートナーを精製し、モノクロナール抗体を作製すること
ができる。この抗体は、たとえば、当技術分野で慣用される方法により、放射性
同位体<125>Iで標識することができる。不均一アッセイでは、たとえば、GST-TW
EAK受容体もしくはリガンド融合タンパク質をグルタチオン-アガロースビーズに
固着させることができる。次に、相互作用および結合を生じさせるように、TWEA
K受容体もしくはリガンド遺伝子産物を試験化合物の存在下もしくは不在下で添
加することができる。反応終了時、未結合物質を洗浄除去し、標識されたモノク
ロナール抗体を系に添加することにより、複合化された成分に結合させることが
できる。TWEAK受容体およびリガンド遺伝子産物の相互作用は、グルタチオン-ア
ガロースビーズに関連づけられた残存する放射能量を測定することにより検出す
ることができる。試験化合物による相互作用阻害があれば、測定される放射能は
減少するであろう。

【０１１５】このほか、固体グルタチオン-アガロースビーズの不在下で、GST-TWEAK受容体
遺伝子融合タンパク質およびTWEAKリガンド遺伝子産物(またはその逆)を液体中
で一緒に混合することができる。これらの種の相互作用時もしくは相互作用後、
試験化合物を添加することができる。次に、この混合物をグルタチオン-アガロ
ースビーズに添加することができる。そして未結合物質を洗浄除去する。この場
合にも、TWEAK受容体-リガンド遺伝子産物相互作用の阻害の程度は、ビーズに関
連づけられた放射能を測定することにより検出することができる。

【０１１６】本発明の他の実施形態では、一方もしくは両方の全長タンパク質の代わりに、
TWEAK受容体および/またはリガンドタンパク質の結合ドメインに対応するペプチ
ド断片を用いて、以上と同一の方法を利用することができる。当技術分野で慣用
される任意数の方法を使用して結合部位を同定および単離することができる。こ
うした方法としては、タンパク質のうちの1つをコードする遺伝子の突然変異誘
発および共免疫沈降アッセイによる結合破壊のスクリーニングが挙げられるが、
これらに限定されるものではない。次に、複合体中の第2の種をコードする遺伝
子の代償性突然変異を選択することができる。それぞれのタンパク質をコードす
る遺伝子の配列分析を行えば、相互作用結合に関与するタンパク質の領域に対応
する突然変異が明らかになるであろう。このほか、先に本節で記載した方法を用
いて１種のタンパク質を固体表面に固着させ、そしてトリプシンのようなタンパ
ク質分解酵素であらかじめ処理されている標識されたその結合パートナーと相互
作用させてそれに結合させることができる。洗浄後、結合ドメインを含む短鎖標
識ペプチドは、固体物質に会合して保持されうる。このペプチドは、単離してア
ミノ酸配列決定により同定することができる。また、断片をコードする遺伝子に
遺伝子工学的処理を施してタンパク質のペプチド断片を発現させるようにできる
。その後、その結合活性を試験することができ、さらにその精製もしくは合成を
行うことができる。

【０１１７】たとえば、限定されるものではないが、先に本節で説明したように、GST-WEAK
受容体もしくはリガンド融合タンパク質を作製してそれをグルタチオン-アガロ
ースビーズに結合させることによって、TWEAK受容体もしくはリガンド遺伝子産
物を固体物質に固着させることができる。こうして得られた相互作用性結合パー
トナーは、<35>Sのような放射性同位体で標識して、トリプシンのようなタンパ
ク質分解酵素で開裂させることができる。次に、開裂産物を固着GST-TWEAK受容
体融合タンパク質もしくはTWEAKリガンド融合タンパク質に添加して結合させる
ことができる。未結合ペプチドを洗浄除去した後、結合パートナー結合ドメイン
に相当する標識された結合物質を溶出させ、精製し、そして周知の方法によって
アミノ酸配列の分析を行うことができる。このようにして同定されたペプチドは
、合成により生産したり、組換えDNA法を用いて適切な促進性タンパク質に融合
させたりすることができる。

【０１１８】本発明に係るTWEAK受容体-リガンド相互作用がin vivoで生じると、標的とな
る細胞のグループもしくは組織における血管形成を刺激もしくは抑制する事象の
カスケードが開始される。これに続いて、核酸分子、タンパク質、もしくは小分
子のような分子は、このカスケードに影響を及ぼす可能性がある。このようにし
てTWEAK受容体-リガンド相互作用効果を破壊する化合物は、血管形成を制御する
のに有用であると考えられる。

【０１１９】 TWEAK受容体-リガンド相互作用の血管形成効果もしくは抗血管形成効果を妨害
する化合物を同定するのに使用されるアッセイ系の基本原理には、2者を相互作
用結合させて複合体を形成するのに十分な条件および時間で、TWEAK受容体およ
びリガンドを含有する反応混合物を調製することが含まれる。この相互作用の効
果を抑制する化合物の能力を試験するために、試験化合物の存在下および不在下
で反応混合物を調製する。最初に試験化合物を反応混合物に導入してもよいし、
TWEAK受容体-リガンド複合体の添加後に一度に添加してもよい。対照の反応混合
物は、試験化合物なしで、すなわちプラセボと一緒にインキュベートされる。次
に、血管新生に及ぼすTWEAK複合体のなんらかの影響を阻害するかもしくは増強
するかを検出する。対照の反応では正常な血管形成応答を生じるが、試験化合物
を含有する反応混合物では、TWEAK受容体-リガンド相互作用によって開始される
事象のカスケードを化合物が妨害するかが示される。試験化合物を含有する培養
物中で血管形成が増強されれば、TWEAK受容体-リガンド複合体効果の刺激剤であ
ることが示唆される。

【０１２０】（実施例）以下の実施例は、特定の実施形態を例示するためのものであり、本発明の範囲
を限定するものではない。

【０１２１】実施例１ TWEAK受容体の同定 A. TWEAK受容体cDNAの発現クローニング TWEAK受容体cDNAをクローン化するために、成長ホルモンリーダー、ロイシン
ジッパー多量化ドメイン、およびヒトTWEAKのC末端細胞外ドメインをコードする
発現ベクター(Chicheportiche et al.. J. Biol. Chem. 272 (51):32401, 1997
を参照されたい)を構築した。pDC409-LZ-TWEAKと命名されたこの発現ベクターは
、配列番号1のDNA配列を含み、配列番号2のポリペプチドをコードしていた。CV1
-EBNA細胞中への一過性トランスフェクションにより、pDC409-LZ-TWEAK馴化上清
を生産した。ロイシンジッパーに対するマウスモノクロナール抗体と一緒にあら
かじめインキュベートされたポリクロナールヤギ抗マウス抗体で被覆された磁気
ビーズと一緒にこの上清をインキュベートした。空ベクターでトランスフェクト
した細胞から得た上清と被覆ビーズを混合することにより、対照ビーズを作製し
た。

【０１２２】 T175フラスコ中で増殖させたCOS細胞の単層を、HUVEC cDNA発現ライブラリー
由来の複雑度100,000のDNAプール15μgでトランスフェクトした。2日後、この細
胞をフラスコから取り出し、1.5ml結合培地＋5%脱脂粉乳中、3時間、4℃、回転
ホイール上の条件でインキュベートした。対照ビーズを添加することにより細胞
を前清澄化し、4℃でさらに45分間回転させてから、ビーズに結合した細胞を磁
石で取り出した。前清澄化を2〜3回繰り返し、次に、TWEAK被覆ビーズを細胞に
添加して、4℃で30分間回転させた。TWEAKビーズと結合した細胞を磁石により分
離し、PBS中で4回洗浄した。0.1% SDS中で溶解させることにより、プラスミドDN
Aを細胞から抽出し、上清をDH101B細胞にエレクトロポレートした。アンピシリ
ン選択培地上でコロニーを一晩増殖させた。形質転換体をプールし、パニングの
さらなるラウンドに用いるためのプラスミドDNAの供給源として使用した。2ラウ
ンドのパニングを行った後、以下の第B節に記載されているようなスライド結合
プロトコルを用いて、TWEAKに結合する能力に基づき、得られたプールから陽性
クローンを採取した。

【０１２３】ヒトTWEAK受容体(TWEAKRとも呼ばれる)cDNAは配列番号3の配列を有することが
判明した。これは129残基ポリペプチド(配列番号4)をコードする。配列検査から
、約78アミノ酸細胞外ドメイン(シグナルペプチドを含む配列番号4の残基1〜78)
、約23アミノ酸膜貫通ドメイン(配列番号4の残基79〜101)、および約28アミノ酸
細胞内ドメイン(配列番号4の残基102〜129)を有するポリペプチドであると予測
される。TWEAKRは最も小さな既知のTNF受容体ファミリーメンバーである。それ
は、他のTNF受容体ファミリーメンバーの3〜4リピートと比較して、細胞外ドメ
イン中に単一の高システインリピート領域を有している。TWEAKRポリペプチドは
、以前、ヒト肝臓cDNAクローンによりコードされる膜貫通タンパク質として報告
されたが(WO 98/55508さらにはWO 99/61471を参照されたい)、TWEAK受容体とし
ては同定されていなかった。図1中でアライメントにより示されるように、マウ
ス同族体FGF誘導性Fn14(Meighan-Mantha et al., J. Biol. Chem. 274 (46):331
66, 1999)は、ヒトタンパク質と約82%同一である。

【０１２４】新しく同定されたTWEAK受容体を、TWEAKに結合する能力に関して、DR3(Marste
rs et al., Current Biology 8:525, 1998によりTWEAK受容体として同定された)
と並行して試験した。

【０１２５】B. TWEAK受容体はTWEAKに結合する TWEAKR, DR3を含有している発現ベクターもしくはインサートのないベクター(
対照)でCOS細胞のスライドをトランスフェクトした。2日後、ロイシンジッパーT
WEAK細胞外ドメイン融合タンパク質をコードするベクターでトランスフェクトさ
れたCV-1細胞から得た濃縮上清と一緒に細胞をインキュベートした。1時間後、
細胞を洗浄し、ロイシンジッパードメインに対するI-125標識抗体でプローブし
た。スライドを洗浄し、固定し、そしてX線フィルムを用いてオートラジオグラ
フィーを行った。TWEAKRのトランスフェクトされた細胞は、有意量のTWEAKと結
合した。TWEAKは、DR3のトランスフェクトされた細胞にも対照細胞にも結合しな
かった。この実験により、TWEAKに対する主要な受容体は、DR3ではなく、先の第
A節で同定されたTWEAKRポリペプチドであることが確認された。機能性TWEAK受容
体が発見された後、他の研究者もまた、DR3がTWEAKに対する主要な受容体ではな
いと報告した(Kaptein et al., FEBS Lett., 485 (2-3):135. 2000)。TWEAK-TWE
AKR結合相互作用は、Scatchard分析によってさらに特性づけられた。

【０１２６】 CV-1細胞をヒト全長TWEAKでトランスフェクトし、TWEAKを発現しないRaji細胞
と1:30で混合した。125-I標識ヒトTWEAK受容体-Fcの連続希釈物と一緒に細胞を4
℃で2時間インキュベートした。プラスチック管中のファレート油混合物にサン
プルを通してマイクロ遠心分離することにより、未結合および結合プローブを分
離した。上清およびペレットのガンマ線計数を行った。TWEAK受容体に結合するT
WEAKリガンドをScatchard分析にかけたところ、約4.5×10⁸ M^-1の結合親和性定
数(Ka)を示した。

【０１２７】C. TWEAK受容体は心臓組織で強力に発現される TWEAK受容体の発現パターンを決定するために、ノーザンブロット分析を行っ
た。ヒト多組織ノーザンブロットをClontech(Palo Alto. CA)から購入し、TWEAK
受容体コード領域由来のP-32標識ランダムプライムDNAでプローブした。ブロッ
トを洗浄し、X線フィルムを用いてオートラジオグラフィーを行った。その結果
、心臓、胎盤、およびいくつかの骨格筋サンプルで成人TWEAKRが強力に発現され
ることがわかった。さらに、心臓組織中で強力に発現されることから、TWEAKRは
心臓疾患の診断および処置に有用であることが裏付けられる。成体とは対照的に
、胎児の組織はより遍在してTWEAKRを発現し、TWEAKR転写産物は肺および肝臓で
観察された。

【０１２８】実施例２ TWEAKRアンタゴニストおよびアゴニストの調製 TWEAKは血管形成を誘発するので、TWEAKRアゴニスト(アゴニスト抗体など)は
、血管形成を促進するために使用することが可能であり、そしてTWEAKRアンタゴ
ニスト(可溶性受容体、アンタゴニスト抗体など)は、血管形成を阻害するために
使用することが可能である。

【０１２９】A. 可溶性TWEAK受容体-Fc(TWEAKR-Fc)融合ポリペプチドの組換え生産 Fcに融合されたTWEAKR細胞外ドメインをコードする核酸を構築するために、リ
ーダー(シグナルペプチド)を含むTWEAKR由来のN末端79アミノ酸をコードする核
酸を、ヒトIgG1由来のFc部分をコードする核酸に連結させた。この構築物に対す
る配列は、配列番号6(核酸)および配列番号7(アミノ酸)として示される。配列番
号7において、残基1〜27は推定シグナルペプチドであり(細胞からの分泌時に切
断されると推定される。実際の切断部位をN末端配列分析により同定した。以下
を参照されたい。)、残基28〜79は高システインTWEAKR細胞外ドメイン由来であ
り、残基80〜81はBgIIIクローニング部位由来であり、そして残りはFc部分であ
る。哺乳動物発現ベクターへの挿入ならびに哺乳動物宿主細胞中での発現および
哺乳動物宿主細胞からの分泌の際に、この構築物は、TWEAKR-Fcで表されるポリ
ペプチドを生産した。N末端配列分析の結果、TWEAKR-Fcで表される分泌ポリペプ
チドは、配列番号7の残基28(Glu)に対応するN末端を有していることがわかった
。以下の実施例に記述されているようなアッセイを用いて、TWEAKR-Fcの抗血管
形成活性が実証された。マウスTWEAKR細胞外ドメインを用いて、類似のFc融合構
築物を調製した。

【０１３０】B. TWEAKR細胞外ドメインに結合する抗体の生産 BALB/cマウスをTWEAKR細胞外ドメインで免疫し、脾臓細胞を採取し、それを用
いて標準的な手順によりハイブリドーマを調製する。TWEAKRに結合する能力に関
して、ELISAを用いてハイブリドーマ上清をスクリーニングする。単クローン性
を保証すべく陽性物を2回クローン化し、次に、イソタイプ決定を行い、そして
ふたたびTWEAKRへの反応性のアッセイを行う。ヒト免疫グロブリンを発現するト
ランスジェニックマウスを用いてファージディスプレイの使用により、抗体およ
び抗体誘導体の調製も行う。得られた抗体を以下の実施例に記載されているよう
なアッセイにより試験し、TWEAK-TWEAKR相互作用、TWEAKRシグナル伝達、血管形
成、および他の下流の生物学的活性を調節するそれらの能力の特性づけを行う。

【０１３１】アゴニスト抗体は、血管形成のようなTWEAK誘発生物学的活性を促進するため
に使用され、そしてアンタゴニスト抗体は、血管形成のようなTWEAK誘発生物学
的活性を阻害するために使用される。いくつかの用途では、放射性同位体に、植
物、真菌、もしくは細菌に由来するサイトトキシン、たとえば、リシンAもしく
はジフテリアトキシンに、または他の化学毒物に、コンジュゲートすることによ
り、アンタゴニスト抗体の活性を増大させる。また、TWEAKRの組織内分布が限定
されるので、TWEAKRに結合する抗体は、イメージング用または治療薬物を血管中
へ送達するためのターゲット試薬として特に有用である。TWEAKRに結合する抗体
は、たとえば、検出可能な標識もしくは化学療法剤を壁細胞(周細胞および血管
平滑筋細胞)にターゲッティングするために使用することができる。検出可能な
標識としては、放射性同位体、化学発光性化合物および蛍光性化合物、ならびに
酵素が挙げられる。これらの方法は、たとえば、新生物の診断、病期決定、およ
び治療に有用である。

【０１３２】実施例３創傷閉鎖アッセイにおけるTWEAKR-Fcの活性 in vitroでのTWEAKR-Fcによる血管形成の阻害を定量化するために、平面状内
皮細胞移動(創傷閉鎖)アッセイを使用した。このアッセイでは、培養細胞単層中
での円形創傷の閉鎖速度として内皮細胞移動を測定する。創傷閉鎖速度は直線的
に変化し、そしてin vivoで血管形成を刺激もしくは阻害する物質により動的に
制御されている。

【０１３３】 Martin et al., In Vitro Cell Dev Biol 33:261, 1997に記載されているよう
に、一次ヒト腎臓微小血管内皮細胞HRMECを単離し、培養し、そして第3継代で解
凍後に使用した。シリコンチップドリルプレスを用いて、融合性HRMEC単層中に
円形損傷「創傷」(直径600〜800ミクロン)を反復して形成した。創傷形成時、培
地(DMEM + 1% BSA)に、20ng/ml PMA(ホルボール-12-ミリステート-13-アセテー
ト)、EGF(4ng/ml)、および0.150〜5μg/ml TWEAKR-Fc、または40ng/ml EGFと0.1
50〜5μg/ml TWEAKR-Fcと組み合わせた物を追加した。顕微鏡および画像解析ソ
フトウェア(Bioquant, Nashville, TN)を用いて、残留創傷面積を時間(0〜12時
間)の関数として測定した。時間に対してプロットされた残留創傷面積の線形回
帰分析を行うことにより、各薬剤および薬剤の組み合わせについて、相対移動速
度を計算した。結果を図2〜3に示す。

【０１３４】 huIgGもしくは培地+BSAと比較して、TWEAKR-Fcは、用量に応じてPMA誘発内皮
移動を阻害し、5μg/mlで移動速度を無刺激レベルまで低減させた(図2)。huIgG
およびTWEAKR-Fcはいずれも、基底(非誘発)移動を阻害しなかった。HRMEC移動を
EGFで誘発した場合、TWEAKR-Fcは、用量に依存して内皮移動を阻害し、5μg/ml
で移動速度を無刺激レベルまで低減させた(図3)。

【０１３５】実施例4 角膜ポケットアッセイにおけるTWEAKR-Fcの活性 in vivoでのTWEAKR-Fcによる血管形成の阻害を定量化するために、マウス角膜
ポケットアッセイを使用した。このアッセイでは、血管形成もしくは抗血管形成
の活性に関して試験される物質をハイドロンペレット中に遅延放出形態で固定し
、それを麻酔のかけられたマウスの角膜上皮中に形成されたマイクロポケットに
埋植する。血管新生は、血管化角膜縁から通常無血管の角膜への血管内方成長の
外観、密度、および範囲として測定される。

【０１３６】 Kenyon et al., Invest Opthamol. & Visual Science 37:1625, 1996に記載さ
れているように、ハイドロンペレットには、bFGF(90ng/ペレット)、bFGFおよびI
gG(14μg/ペレット、対照)、またはbFGFおよびTWEAKR-Fc(14μg)と共に、スクラ
ルファートが含まれていた。6〜8週齢の雄C57BLマウスの外側角膜縁の中央を1mm
微小切開して設けられた角膜間質のマイクロポケットにペレットを外科的に埋植
した。bFGFに対する新血管応答がピークになる5日後、ペレットを含む経線にお
ける極軸から35〜50°の初期角でZeissスリットランプを用いて角膜を撮影した
。画像をデジタル化して減色フィルターで処理することによって(Adobe Photosh
op 4.0)、定着した微小血管をヘモグロビン量により描写した。画像解析ソフト
ウェア(Bioquant, Nashville, TN)を用いて、血管化した角膜画像の比率、血管
化領域内の血管密度、および全角膜内の血管密度を計算した。

【０１３７】表1に示されているように、TWEAKR-Fc(100 pmol)は、bFGF(3 pmol)誘発角膜血
管形成を阻害し、血管密度をFGF単独もしくはFGF+IgGによって誘発された角膜血
管形成を50%まで低減させた。

【０１３８】

【表１】

【０１３９】実施例５ TWEAK受容体(TWEAKR)細胞質ドメインへの定性的TRAF結合 TRAFファミリーのメンバーは、細胞内シグナル伝達分子である。TRAFファミリ
ーのいくつかのメンバーは、NF-κ-B経路を活性化するシグナル伝達カスケード
を開始して細胞の活性化および増殖を惹起するように、TNF受容体ファミリーの
メンバーと会合することが知られている。細胞内シグナル伝達分子のTRAFファミ
リーのメンバーがTWEAKRの細胞質ドメインに結合するかを試験するために、した
がって、TWEAKRの小さな細胞質ドメインがTRAF経路を介して細胞中へのシグナル
を媒介することができるかを調べるために、定性的in vitro結合アッセイを行っ
た。

【０１４０】 BamHIおよびNotIの部位でpGEX-4T(Amersham Pharmacia Biotech)ベクター中に
適切なインサートをサブクローニングすることにより、グルタチオン-S-トラン
スフェラーゼに融合されたTWEAKRのC末端29アミノ酸からなるGST融合ベクターを
作製した。このベクターからの産物をE. coli中で発現させ、Galibert et al.,
J. Biol. Chem. 273 (51):34120, 1998に記載されるようなセファロースビーズ
に結合させた。同様に構築したビーズをRANK細胞質ドメイン-GST融合タンパク質
で被覆して、正の対照として使用し、GSTだけで被覆されたビーズを負の対照と
して使用した。製造業者のプロトコルに従って、[35S]メチオニン/システイン標
識TRAFタンパク質を網状赤血球溶解物(TNT結合網状赤血球溶解物系, Promega)中
で生産した。標識TRAF分子を含有する網状赤血球溶解物を最初に対照ビーズを用
いて前清澄化し、続いて、結合緩衝液(50mM HEPES[pH 7.4], 250mM NaCl, 0.25%
(v/v) Nonidet P-40, 10%グリセロール, 2mM EDTA)中において記載の融合タンパ
ク質被覆ビーズと一緒に4℃で2時間インキュベートした。結合緩衝液で4回洗浄
した後、結合したTRAF分子をSDS負荷緩衝液中でビーズから溶出させ、SDS-PAGE
で分離し、乾燥させ、そしてX線フィルムに感光させた。

【０１４１】バックグラウンドレベルを超える結合が、TRAFS 1、2、および3で観測された
。バックグラウンドレベルを超える結合は、TRAFS 4、5、および6では観測され
なかった。TWEAKRがTRAF 1、2、および3に結合することができるということは、
TWEAKRがTRAF経路を介して細胞へシグナルを誘導することができ、それによって
、宿主細胞中へ増殖シグナルを伝達しうることが実証される。この実験は、TWEA
KRがTWEAKに対する機能性受容体であるというさらなる証拠を提供する。この実
験はまた、小分子でTRAF-TWEAKR相互作用を破壊することによって、またはTRAF
分子のドミナントネガティブ変異体を使用することによって、シグナル伝達を阻
害することのできるさらなる手段を提示する。

【０１４２】実施例6 内皮細胞増殖アッセイにおけるTWEAKR-Fcの活性 in vitroでのTWEAKR-FcによるbFGFもしくはTWEAK誘発増殖の阻害を定量化する
ために、内皮細胞増殖アッセイを使用した。このアッセイでは、カルセインAMと
呼ばれる細胞標識分子を用いてマイクロタイターウェル中で細胞増殖を4日間行
った後、内皮細胞増殖を測定する。細胞によって発現されたエステラーゼはカル
セインを開裂させる。その結果、485nmで励起したときに蛍光が現れる。未開裂
のカルセインは蛍光を発しない。蛍光の量は、培養ウェル中の内皮細胞の数と直
接関係する。内皮細胞増殖は、多くの場合、in vivoで血管形成を刺激および/ま
たは阻害する物質によって制御される。

【０１４３】一次HUVEC(ヒト臍静脈内皮細胞)を供給業者(Clonetics, Walkersville. MD)か
ら入手し、培養し、そして継代2〜7で使用した。各マイクロタイターウェルに30
00 HUVECを添加することにより内皮細胞基本培地(EBM、増殖因子も血清も含有し
ていない内皮細胞基本培地であり、Dr. Richard Ham at the University of Col
orado, Cloneticsによって開発された培地処方をベースとする)＋0.05%のFBS(ウ
シ胎児血清)中で重複培養を行った。培養開始時、0.08μg/ml〜20μg/ml(TWEAK
誘発に対して0.25〜20μg/ml、FGF2誘発に対して0.08〜6.7μg/ml)の範囲の濃度
のヒトIgG(huIgG、対照)もしくはヒトTWEAKR-Fcの存在下で、FGF-2(繊維芽細胞
増殖因子-2, 10ng/ml)もしくはヒトTWEAK(100ng/ml)を培養物に添加した。HUVEC
含有培養物を37℃、5% CO₂で4日間インキュベートした。培養第4日目、4μMカル
セイン-AMを培養物に添加し、2時間後にウェルの蛍光を評価した。重複ウェルの
平均蛍光(485〜530nm)カウント数±SEMで表した結果を、図4および5に示す。

【０１４４】 TWEAKR-Fcは、用量に依存してTWEAK誘発HUVEC増殖を特異的に阻害したが、そ
れに対して、huIgGは、TWEAK誘発増殖に影響を及ぼさなかった(図4)。このほか
、TWEAKR-Fcは、EBM＋0.05% FBS中での培養で観測されたHUVECの基本増殖を阻害
したが、それに対して、huIgGは基本増殖を阻害しなかった。興味深いことに、T
WEAKR-Fcはまた、2μg/ml超の濃度でFGF-2媒介HUVEC増殖を阻害したが、それに
対して、hulgGは、FGF-2誘発HUVEC増殖応答に影響を及ぼさなかった(図5)。これ
らの結果は、TWEAKR-Fcが、外因性組換えヒトTWEAKの添加によって誘発されたHU
VEC増殖を阻害することを示している。TWEAKR-Fcが血清誘発HUVEC増殖を部分的
に阻害するということは、HUVECが、TWEAKRを介してEC(内皮細胞)の増殖/生存を
促進する内因性TWEAKを生産することを意味する。FGF-2誘発増殖がTWEAKR-Fcで
低下するということは、FGF-2に対するEC応答の少なくとも一部が内因性TWEAK/T
WEAKR相互作用に依存することを意味する。

【０１４５】実施例7 マウス心臓虚血/接合(engraftment)モデルにおけるTWEAKRアンタゴニストによる新生血管形成の阻害一方のマウスドナーから他方の遺伝学的に類似したマウスの耳皮膚へ異所的に
移植された心臓組織が生存するためには、生存を促進すべく移植心臓および周囲
組織による適切な新生血管形成および心筋機能のためのエネルギーが必要である
。移植部位の血管が不適切なものであると、過度の虚血を生じて、心臓組織が損
傷を受けたり、接合組織が障害を起こしたりする。内皮細胞移動および血管形成
に関与する因子をアンタゴナイズする物質は、移植部位における血管形成を減少
させるので、移植組織の機能が制限され、最終的には接合自体が制限される。抗
体やTWEAKR-FcなどのTWEAKRアンタゴニストが新生血管形成に及ぼす影響を示す
ために、異所的な心臓同系移植マウスモデルを使用する。

【０１４６】雌BALB/c(約12週齢)レシピエントに、同一系統のドナーマウス由来の所与の新
生児心臓移植片を提供する。0日目、ドナーの心臓組織をレシピエントの左耳介
に移植し、マウスを2つのグループに分ける。対照のグループにはヒトIgG(Hu Ig
G)を投与し、他方のグループにはTWEAKRアンタゴニストを投与する。いずれも腹
腔内投与である。その処置を5日連続して行った。接合後７日目および14日目、
目視観察しうる拍動をモニターすることにより、移植片の機能を調べる。TWEAKR
アンタゴニストの用量の関数として機能的接合の阻害を調べる。移植部位の浮腫
ならびにホストおよびドナー組織の血管に及ぼすTWEAKRアンタゴニストの影響を
視覚化すべく、移植心臓を組織学的に検査する。

【０１４７】実施例8 TWEAKRアンタゴニストによる腫瘍の治療抗体およびTWEAKR-FcなどのTWEAKRアンタゴニストを、固形腫瘍を有する動物
モデルで試験する。腫瘍の頻度および腫瘍の増殖を測定することにより、TWEAKR
アンタゴニストの効果を決定する。

【０１４８】本明細書に引用されている刊行物中の関連する開示内容は、参照により具体的
に組み込まれるものとする。先に提示した実施例は、本発明の範囲を網羅するも
のでもなければ限定するものでもない。当業者であれば、以上の教示に照らして
変更および修正および変更が可能であることは理解されよう。また、そのような
修正および変更は本発明の範囲内に含まれるものとする。

【配列表】

【図面の簡単な説明】

【図１】ヒトおよびマウスTWEAK受容体ポリペプチド配列の配列アライメントを示す。
上側の配列は、マウスTWEAK受容体ポリペプチド(配列番号5)であり、下側の配列
は、ヒトTWEAK受容体ポリペプチド(配列番号4)である。

【図２】 PMA誘発HRMEC創傷閉鎖に及ぼすTWEAKR-Fcの影響を示す。

【図３】 EGF誘発HRMEC創傷閉鎖に及ぼすTWEAKR-Fcの影響を示す。

【図４】 TWEAK誘発(100 ng/ml)HUVEC増殖に及ぼすヒトTWEAKR-Fcの影響を示す。

【図５】 FGF-2誘発(10 ng/ml)HUVEC増殖に及ぼすヒトTWEAKR-Fcの影響を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｋ 39/395 Ａ６１Ｋ 45/00 ４Ｃ０８４ 48/00 ４Ｃ０８５ 45/00 Ａ６１Ｐ 9/00 ４Ｃ０８６ 48/00 9/10 ４Ｈ０４５Ａ６１Ｐ 9/00 １０３ 9/10 9/14 １０３ 17/02 9/14 35/00 17/02 37/06 35/00 Ｃ１２Ｎ 1/15 37/06 1/19 Ｃ１２Ｎ 1/15 1/21 1/19 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 1/21 Ｃ１２Ｑ 1/02 5/10 Ｇ０１Ｎ 33/15 ＺＣ１２Ｐ 21/02 33/50 ＺＣ１２Ｑ 1/02 33/53 ＤＧ０１Ｎ 33/15 Ｍ 33/50 33/566 33/53 Ｃ０７Ｋ 14/715 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ 33/566 5/00 Ａ // Ｃ０７Ｋ 14/715 Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ，ＴＲ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＢＺ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷＦターム(参考） 2G045 AA34 AA35 AA40 BA11 BB50 DA12 DA13 DA14 DA36 FB02 FB03 4B024 AA01 BA63 CA04 DA02 EA04 GA11 GA18 HA03 4B063 QA01 QA18 QQ20 QR48 QR77 QS12 QX07 4B064 AG20 CA02 CA05 CA06 CA10 CA19 CC24 DA01 4B065 AA26X AA72X AA91X AA93X AB01 AC14 BA02 CA24 CA44 4C084 AA01 AA13 AA16 BA44 ZA36 ZA40 ZA89 ZB08 ZB26 ZC42 4C085 AA14 AA21 CC21 CC23 CC24 4C086 AA01 AA02 EA16 NA14 NA20 ZA36 ZA40 ZA89 ZB08 ZB26 4H045 AA10 AA11 AA20 AA30 BA10 BA41 CA40 DA51 DA86 EA20 FA74

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】血管形成の調節が必要な哺乳動物において血管形成を調節す
る方法であって、治療上有効な量のTWEAK受容体アンタゴニストもしくはTWEAK受
容体アゴニストを含む組成物を投与することを含んでなる、上記方法。
【請求項２】前記組成物が製薬上許容される担体をさらに含む、請求項１
に記載の方法。
【請求項３】前記哺乳動物がヒトである、請求項１または２に記載の方法
。
【請求項４】前記TWEAK受容体が、 (a) 配列番号7のアミノ酸28〜79、および (b) 配列(a)の天然に存在する変異体、からなる群より選択された配列を含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方
法。
【請求項５】請求項１〜４のいずれか１項に従って血管形成を抑制する方
法であって、前記組成物がTWEAK受容体アンタゴニストを含む、上記方法。
【請求項６】前記アンタゴニストが、可溶性の受容体断片、抗体、アンチ
センス核酸、三重らせん形成性核酸、ペプチド、および小分子からなる群より選
択される、請求項５に記載の方法。
【請求項７】前記アンタゴニストが可溶性のTWEAK受容体断片を含む、請
求項６に記載の方法。
【請求項８】前記アンタゴニストがFcポリペプチドもしくはロイシンジッ
パードメインをさらに含む、請求項７に記載の方法。
【請求項９】前記アンタゴニストが、(a) TWEAK受容体の細胞外ドメイン
、または(b) TWEAKに結合しうる(a)の断片もしくは変異体、に融合されたFcポリ
ペプチドを含む、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】前記TWEAK受容体の細胞外ドメインが配列番号7のアミノ酸
28〜79を含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】前記アンタゴニストが配列番号7のアミノ酸28〜309を含む
、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】前記アンタゴニストが、TWEAK受容体の細胞外ドメインに
特異的に結合する抗体を含む、請求項６に記載の方法。
【請求項１３】前記抗体が、モノクロナール抗体、ヒト化抗体、トランス
ジェニック抗体、およびヒト抗体からなる群より選択される、請求項１２に記載
の方法。
【請求項１４】前記抗体が、放射性同位体に、リシンAもしくはジフテリ
アトキシンのような植物、真菌、もしくは細菌由来のトキシンに、または他の化
学毒物にコンジュゲートされている、請求項１２または１３に記載の方法。
【請求項１５】前記アンタゴニストが前記TWEAK受容体とTRAF分子との相
互作用を破壊する、請求項６に記載の方法。
【請求項１６】前記哺乳動物が、血管形成により媒介される疾患もしくは
症状を有する、請求項５〜１５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１７】前記疾患もしくは症状が眼の新生血管形成により特性づけ
られる、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】前記疾患もしくは症状が固形腫瘍である、請求項１６に記
載の方法。
【請求項１９】前記哺乳動物を放射線で処置することをさらに含む、請求
項１６〜１８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２０】前記哺乳動物を第2の化学療法剤で処置することをさらに
含む、請求項１６〜１９のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２１】前記第2の化学療法剤が、アルキル化剤、代謝拮抗物質、
ビンカアルカロイドおよび他の植物由来化学療法剤、ニトロソウレア、抗腫瘍抗
生物質、抗腫瘍酵素、トポイソメラーゼ阻害剤、白金類似体、副腎皮質抑制剤、
ホルモン、ホルモン作動薬、ホルモン拮抗薬、抗体、免疫療法剤、血液細胞因子
、放射線療法剤、ならびに生物学的応答調節剤からなる群より選択される、請求
項２０に記載の方法。
【請求項２２】前記第2の化学療法剤が、シスプラチン、シクロホスファ
ミド、メクロレタミン、メルファラン、ブレオマイシン、カルボプラチン、フル
オロウラシル、5-フルオロデオキシウリジン、メトトレキセート、タキソール、
アスパラギナーゼ、ビンクリスチン、およびビンブラスチン、リンホカインおよ
びサイトカイン、たとえば、インターロイキン、インターフェロン(α、β、も
しくはδを含む)、およびTNF、クロラムブシル、ブスルファン、カルムスチン、
ロムスチン、セムスチン、ストレプトゾシン、ダカルバジン、シタラビン、メル
カプトプリン、チオグアニン、ビンデシン、エトポシド、テニポシド、ダクチノ
マイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ブレオマイシン、プリカマイシン
、マイトマイシン、L-アスパラギナーゼ、ヒドロキシウレア、メチルヒドラジン
、ミトタン、タモキシフェン、ならびにフルオキシメステロンからなる群より選
択される、請求項２０に記載の方法。
【請求項２３】前記第2の化学療法剤が、Flt3リガンド、CD40リガンド、
インターロイキン-2、インターロイキン-12、4-1BBリガンド、抗4-1BB抗体、TNF
アンタゴニストおよびTNF受容体アンタゴニスト、TRAIL、CD148アゴニスト、VEG
Fアンタゴニスト、VEGF受容体アンタゴニスト、ならびにTekアンタゴニストから
なる群より選択される、請求項２０に記載の方法。
【請求項２４】請求項１〜４のいずれか１項に従って血管形成を促進する
方法であって、前記組成物がTWEAK受容体アゴニストを含む、上記方法。
【請求項２５】前記アゴニストが、TWEAK受容体の細胞外ドメインに特異
的に結合するアゴニスト性抗体である、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】前記抗体が、モノクロナール抗体、ヒト化抗体、トランス
ジェニック抗体、およびヒト抗体からなる群より選択される、請求項２５に記載
の方法。
【請求項２７】前記アゴニストが、 (a) 冠状動脈疾患、心筋虚血、心筋梗塞、狭心症、末梢循環不全、肢虚血/再
灌流障害などの心臓組織もしくは末梢組織における血管新生不全を治療するため
に、 (b) 創傷治癒、臓器移植、切断された指もしくは肢の再結合、または血管もし
くは皮膚の移植を促進するために、あるいは (c) バイパス手術もしくは血管形成術と組み合わせて、投与される、請求項２４〜２６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２８】医療に使用するための可溶性のTWEAK受容体断片を含むア
ンタゴニスト。
【請求項２９】 Fcポリペプチドもしくはロイシンジッパードメインをさら
に含む、請求項２８に記載のアンタゴニスト。
【請求項３０】前記アンタゴニストが、(a) TWEAK受容体の細胞外ドメイ
ン、または(b) TWEAKに結合しうる(a)の断片もしくは変異体、に融合されたFcポ
リペプチドを含む、請求項２９に記載のアンタゴニスト。
【請求項３１】前記TWEAK受容体の細胞外ドメインが配列番号7のアミノ酸
28〜79を含む、請求項３０に記載のアンタゴニスト。
【請求項３２】前記アンタゴニストが配列番号7のアミノ酸28〜309を含む
、請求項３１に記載のアンタゴニスト。
【請求項３３】請求項２８〜３２のいずれか1項に記載のアンタゴニスト
をコードする核酸。
【請求項３４】請求項３３に記載の核酸を含む発現ベクター。
【請求項３５】請求項３３に記載の核酸を含む組換え宿主細胞。
【請求項３６】 TWEAK受容体アンタゴニストの産生方法であって、該アン
タゴニストの発現を促進する条件下で請求項３５に記載の宿主細胞を培養するこ
とを含んでなる、上記方法。
【請求項３７】血管形成の調節が必要な哺乳動物において血管形成を調節
する医薬品を調製するための、TWEAK受容体アンタゴニストもしくはTWEAK受容体
アゴニストを含む組成物の使用。
【請求項３８】血管形成を調節しうる化合物を同定する方法であって、TW
EAK受容体の細胞外ドメインに結合する試験化合物を同定することを含み、該試
験化合物がTWEAKではない、上記方法。
【請求項３９】血管形成を調節しうる化合物を同定する方法であって、TW
EAKとTWEAK受容体との相互作用に影響を及ぼす試験化合物を同定することを含ん
でなる、上記方法。
【請求項４０】血管形成を調節しうる化合物を同定する方法であって、TW
EAK受容体とTRAFとの相互作用を調節する試験化合物を同定することを含んでな
る、上記方法。
【請求項４１】内皮細胞の増殖および/または内皮細胞の移動および/また
は血管形成を調節する試験化合物の能力を判定することをさらに含む、請求項３
８〜４０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項４２】前記調節が刺激性である、請求項３８〜４１のいずれか１
項に記載の方法。
【請求項４３】前記調節が抑制性である、請求項３８〜４１のいずれか１
項に記載の方法。
【請求項４４】請求項３８〜４３のいずれか１項に記載の方法に従って同
定された、TWEAKではない化合物。
【請求項４５】 TWEAK受容体へのTWEAKの結合の調節が必要な哺乳動物にお
いてTWEAK受容体へのTWEAKの結合を調節する方法であって、抑制上有効な量の、
(a)可溶性のTWEAK受容体細胞外ドメイン、および(b)TWEAK受容体細胞外ドメイン
に結合する抗体、からなる群より選択されたTWEAK受容体アンタゴニストを含む
組成物を該哺乳動物に投与することを含んでなる、上記方法。
【請求項４６】検出可能な標識もしくは化学療法剤を血管組織にターゲッ
ティングする方法であって、血管組織にTWEAK受容体に結合する抗体を接触させ
ることを含んでなる、上記方法。
【請求項４７】前記抗体が、放射性同位体、化学発光性もしくは蛍光性化
合物、または酵素にコンジュゲートされている、請求項４６に記載の方法。
【請求項４８】前記抗体がサイトトキシンにコンジュゲートされている、
請求項４６に記載の方法。