JP2003155295A - 7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドおよびその製造方法 - Google Patents
7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドおよびその製造方法Info
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Abstract
有用な7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オ
ン−20−カルバルデヒドを高純度で効率よく製造し得
る方法を提供すること。 【解決手段】 3α,7α―ジヒドロキシ−5β−コラ
ン酸および/またはその塩を基質として7α−ヒドロキ
シ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデ
ヒドを生産するシュードモナス(Pseudomona
s)属に属する細菌を、3α,7α−ジヒドロキシ−5
β−コラン酸および/またはその塩を含む培地で培養す
ることを特徴とする7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−
エン−3−オン−20−カルバルデヒドの製造方法。
Description
4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドおよびその
製造方法に関する。本発明により提供される7α−ヒド
ロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバ
ルデヒドは、例えば、下式で示されるスクアラミン(s
qualamine)などの医薬の合成中間体として有
用である。
性菌、真菌などに対する強力な抗菌活性を有するととも
に、抗ガン活性を有することが報告され、新たな抗生物
質として注目されている化合物である[ジャーナル・オ
ブ・オーガニック・ケミストリー(J.Org.Che
m.)、63巻、3786頁(1998年);ジャーナ
ル・オブ・オーガニック・ケミストリー(J.Org.
Chem.)、63巻、8599頁(1998年);W
O 98/24800など参照]。
出されていたが、その抽出効率が0.001〜0.00
2重量%と極めて低いため、化学的合成方法の検討が行
われてきた。スクアラミンの化学的合成方法としては、
1)3β−アセトキシ−5−コラン酸を出発原料とする
方法[テトラヘドロン・レターズ(Tetrahedr
on Lett.)、35巻、8103頁(1994
年)参照]、2)3β−ヒドロキシ−5−コラン酸を出
発原料とする方法[ジャーナル・オブ・オーガニック・
ケミストリー(J.Org.Chem.)、60巻、5
121頁(1995年);WO 94/19366参
照]、3)21−ヒドロキシ−20−メチル−プレグナ
−4−エン−3−オンを出発原料とする方法[WO 9
8/24800;オルガニック・レターズ(Org.L
ett.)、2巻、2921頁(2000年)参照]、
4)スティグマステロールを出発原料とする方法[ジャ
ーナル・オブ・オーガニック・ケミストリー(J.Or
g.Chem.)、63巻、3786頁(1998
年);ジャーナル・オブ・オーガニック・ケミストリー
(J.Org.Chem.)、63巻、8599頁(1
998年);WO 98/24800参照]が知られて
いる。
3)の方法でそれぞれ出発原料として用いる3β−アセ
トキシ−5−コラン酸、3β−ヒドロキシ−5−コラン
酸、21−ヒドロキシ−20−メチル−プレグナ−4−
エン−3−オンはいずれも高価である。また、上記1)
の方法ではスクアラミンを得るまでに17工程を要し、
2)の方法では19工程を要するなど反応操作が煩雑で
ある。したがって、これらの方法はスクアラミンの工業
的に有利な製造方法とは言い難い。
て用いるスティグマステロールは安価に入手可能である
が、スクアラミンの合成までには20工程を要する。ま
た、4)の方法では、3位水酸基を選択的に酸化する工
程で使用する炭酸銀が高価であること、低温下でのオゾ
ン酸化工程を経由するので特殊な反応設備が必要なこ
と、などの問題点が存在しており、この方法も必ずしも
工業的に有利な方法とはいえない。
の合成中間体として有用な化合物を提供することにあ
る。本発明の他の目的は、上記の化合物を、入手容易な
原料より、高純度で効率よく製造し得る方法を提供する
ことにある。
を達成するために鋭意検討を重ねた結果、3α,7α−
ジヒドロキシ−5β−コラン酸および/またはその塩を
原料として選び、該3α,7α−ジヒドロキシ−5β−
コラン酸および/またはその塩を微生物を用いた変換反
応に付すことにより、新規な化合物である7α−ヒドロ
キシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバル
デヒドが高純度で効率よく得られることを見出し、本発
明を完成するに至った。
4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドである。ま
た、本発明は、3α,7α―ジヒドロキシ−5β−コラ
ン酸および/またはその塩を基質として7α−ヒドロキ
シ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデ
ヒドを生産するシュードモナス(Pseudomona
s)属に属する細菌を、3α,7α−ジヒドロキシ−5
β−コラン酸および/またはその塩を含む培地で培養す
ることを特徴とする7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−
エン−3−オン−20−カルバルデヒドの製造方法であ
る。
ドモナス(Pseudomonas)属に属する細菌と
しては、例えばシュードモナス・プチダD4014(P
seudomonas putida D4014)菌
株(FERM BP−205)に変異処理を施して得ら
れたシュードモナス・プチダD4014−A357−3
A(Pseudomonas putida D401
4−A357−3A)菌株(FERM BP−807
0)が挙げられる。
eudomonas putidaD4014)菌株お
よびシュードモナス・プチダD4014−A357−3
A(Pseudomonas putida D401
4−A357−3A)菌株の菌学的性質を以下の表1お
よび表2に示す。
57−3A(Pseudomonas putida
D4014−A357−3A)菌株の親株であるシュー
ドモナス・プチダD4014(Pseudomonas
putida D4014)株は、シュードモナス属
プチダ種(Pseudomonas putida)に
属する細菌であり[特公平3−69918号参照]、一
般に突然変異株はその親株と同じ種に属するものと考え
られていること、および上記の表1に示した菌学的性質
より、シュードモナス・プチダD4014−A357−
3A(Pseudomonas putida D40
14−A357−3A)菌株はシュードモナス属プチダ
種(Pseudomonas putida)に属する
細菌であると判定した。
14−A357−3A(Pseudomonas pu
tida D4014−A357−3A)菌株と命名さ
れ、FERM BP−8070として独立行政法人産業
技術総合研究所、特許生物寄託センターに寄託、保管さ
れている。
−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドの生産
は、3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラン酸および
/またはその塩を基質として、7α−ヒドロキシ−プレ
グナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドを生
産するシュードモナス(Pseudomonas)属に
属する細菌を、3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラ
ン酸および/またはその塩を含む培地で培養することに
より行う。
酸の塩としては、例えば、3α,7α−ジヒドロキシ−
5β−コラン酸のナトリウム塩、カリウム塩などのアル
カリ金属塩またはカルシウム塩、マグネシウム塩などの
アルカリ土類金属塩などが挙げられる。培地中の3α,
7α−ジヒドロキシ−5β−コラン酸および/またはそ
の塩の濃度は、1〜30g/Lの範囲であるのが好まし
く、単離効率、細菌に対する阻害性などの観点からは5
〜20g/Lの範囲であるのがより好ましい。
domonas)属に属する細菌が資化利用できる栄養
源を含有するものであればよい。炭素源としては、3
α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラン酸および/また
はその塩を単一炭素源としてもよく、または3α,7α
−ジヒドロキシ−5β−コラン酸および/またはその塩
にグルコース、グリセリン、ペプトン、肉エキス、酵母
エキスなどを併用してもよい。窒素源としては、例えば
硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニ
ウム、硝酸アンモニウム、硝酸ナトリウム、硝酸カリウ
ムなどの無機窒素源;ペプトン、肉エキス、酵母エキス
などの有機窒素源などが用いられる。また、この他にリ
ン酸水素二カリウム、リン酸二水素カリウム、硫酸マグ
ネシウムなどの無機塩類が添加される。
28〜32℃の範囲であるのが好ましく、29〜31℃
の範囲であるのがより好ましい。また、培地のpHは、
7〜9の範囲であるのが好ましく、7.7〜8.6の範
囲であるのがより好ましい。培養時間は、12時間〜3
日間の範囲であるのが好ましい。培養は、振盪培養また
は通気攪拌培養などの好気条件下に行う。
り、原料である3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラ
ン酸および/またはその塩が細菌により変換され、培養
液中に7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オ
ン−20−カルバルデヒドが蓄積する。この際、蓄積さ
れた7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン
−20−カルバルデヒドは、基質の3α,7α−ジヒド
ロキシ−5β−コラン酸および/またはその塩に比し
て、水に対する溶解度が著しく小さいため、培養液中に
析出沈澱する。該7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エ
ン−3−オン−20−カルバルデヒドの分離採取は、例
えば、沈澱している7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−
エン−3−オン−20−カルバルデヒドを含む培養液を
静置し、浮遊している菌体を含む培養液からデカンテー
ションにより分離することにより行うか、遠心分離また
は濾過助剤を用いる操作により得られる、菌体と7α−
ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カ
ルバルデヒドを含む混合物にメタノールを加えて、7α
−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−
カルバルデヒドを溶解させた後、菌体およびその他の不
溶物を除去して得られるメタノール溶液からメタノール
を減圧下に留去させることにより行う。この際、水を加
えてメタノールを留去させると、7α−ヒドロキシ−プ
レグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドは
針状結晶として析出するため、分離回収が容易となる。
3−オン−20−カルバルデヒド、例えば(20S)−
7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−2
0−カルバルデヒドは、その20位ホルミル基を還元す
ることにより(20S)−7α,21−ジヒドロキシ−
20−メチル−プレグナ−4−エン−3−オン(後述の
参考例2参照)に誘導される。この化合物は、さらに、
オルガニック・レターズ(Org.Lett.)、2
巻、2921頁(2000年)に記載された方法により
スクアラミンに変換される。
説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら制限さ
れるものではない。
取得方法 培地1(普通寒天培地)の斜面培地に一晩生育させたシ
ュードモナス・プチダD4014(Pseudomon
as putida D4014、FERMBP−20
5)菌株の1白金耳を、予め試験管に準備した培地2
(ブイヨン液体培地)の10mlに植菌し、30℃、2
00rpsで一晩振盪培養した。得られた培養液の1m
lを予め試験管に準備した培地2(前記のとおり)の1
0mlに植菌し、6時間振盪培養した。得られた培養液
を0.45μmのメンブレンフィルターで無菌的に濾過
集菌し、0.1Mリン酸緩衝液20mlで洗浄した後、
同緩衝液25mlに該フィルターに付着した菌を懸濁さ
せた。得られた菌液のうち4mlに終濃度が50μg/
mlとなるようにN−メチル−N’−ニトロ−N−ニト
ロソグアニジンを添加し、30℃で10分間振盪するこ
とにより、突然変異処理を行った。突然変異処理を施し
た菌液は、直ちに上記のリン酸緩衝液で10倍に希釈
し、これを培地1の平板培地に500〜1000個のコ
ロニーを出現させるように希釈して塗布した後、30℃
で一晩静置培養を行った。出現したコロニーをランダム
に培地1の平板培地に釣菌(50個/プレート)し、翌
日それぞれを培地1(前記のとおり)の斜面培地に植菌
した。こうして得られた生育菌株を、予め滅菌した培地
3(組成:3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラン酸
10g、水酸化ナトリウム1.1g、硝酸アンモニウム
2g、リン酸二水素一カリウム1g、リン酸水素二カリ
ウム6g、硫酸マグネシウム0.5g、ペプトン0.5
g、酵母エキス0.5g、グルコース0.5g、水道水
1L、pH7.8)の10mlを含む試験管に2白金耳
植菌し、30℃、200rpsで24時間、振盪培養し
た。得られたそれぞれの培養液中の生産物を薄層クロマ
トグラフィーにより検定し、目的とする(20S)−7
α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20
−カルバルデヒドを選択的に蓄積している一菌株を見出
し、これをシュードモナス・プチダD4014−A35
7−3A(Pseudomonas putida D
4014−A357−3A)と命名した。
(Pseudomonas putida D4014
−A357−3A)を培地1(前記のとおり)の斜面培
地に植菌し、30℃で1日間培養した。次に、生育した
菌体の2白金耳を3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コ
ラン酸を含む培地3(前記のとおり)の液体培地10m
lに植菌し、30℃で一晩振盪培養した後、得られた培
養液を同組成の培地3(前記のとおり)の100mlが
入った500ml容の坂口フラスコに植菌し、30℃、
200rpsで48時間培養した。なお、培養に供した
3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラン酸の総量は
1.1g(2.8mmol)である。得られた培養液を
5000rpmで30分間、遠心分離し、得られた菌体
と生成物の混合物に水100mlを入れて懸濁させた
後、再度、遠心分離処理を行うことにより該混合物を洗
浄した。該混合物にメタノール200mlを添加して生
成物を溶解した後、濾過して清澄なメタノール溶液を得
た。該メタノール溶液に水30mlを加えた後、ロータ
リーエバポレーターによりメタノールを一部留去し、次
いで、得られた濃縮液を冷却し、晶析した固形物を濾取
し、乾燥することにより、下記の物性を有する(20
S)−7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン−3−オ
ン−20−カルバルデヒド310mg(0.90mmo
l、収率32%)を得た。
プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒド
の一部を取り、これにメタノールを加えて1%溶液と
し、この溶液をODS−80TM(商品名、東ソー株式
会社製、4.6mm×150mm)カラム(カラム温度
40℃、カラムオーブン;Shimadzu CTO−
6A 株式会社島津製作所製)を備えた高速液体クロマ
トグラフィー(ポンプ部;モデル510 ウォーターズ
社製)に注入した。移動相として水/メタノールの容量
比27/73の混合液(リン酸50μl/L添加)を1
ml/分で流し、検出を屈折率方式(検出器;Shod
ex RI−71 昭和電工株式会社製)で行った。得
られたクロマトグラムにおける各ピークの面積比(デー
タ処理;Shimadzu C−R7A plus 株
式会社島津製作所製)から上記(20S)−7α−ヒド
ロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバ
ルデヒドの純度を求めたところ、96%であった。
CDCl3 ,TMS基準,ppm)δ:9.568
(1H,d,J=3.95Hz),5.427(1H,
d,J=1.98Hz),3.97−3.98(1H,
bs),2.635(1H,ddd,J=2.96,
2.96,14.84Hz),2.30−2.55(4
H,m),1.10−2.10(14H,m),1.2
05(3H,s),1.139(3H,d,J=5.9
4Hz),0.769(3H,s)
−プレグナ−4−エン−3−オンの合成 実施例1と同様にして得られた(20S)−7α−ヒド
ロキシ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバ
ルデヒド2.00g(5.81mmol)にエタノール
20mlを加え、攪拌しながら氷冷した。得られた溶液
に、水素化ホウ素ナトリウム0.11g(2.91mm
ol)を加えた後、氷冷下で1時間撹拌した。得られた
反応液に3%塩酸を加えて中和し、エタノールを減圧下
で留去した。残留物に酢酸エチル100mlおよび水2
0mlを加え洗浄し、次いで、水層を分離し、有機層を
無水硫酸ナトリウムで乾燥した後、濾過し、減圧下で濃
縮することにより、下記の物性を有する(20S)−7
α,21−ジヒドロキシ−20−メチル−プレグナ−4
−エン−3−オン1.77g(収率88%)を得た。
CDCl3 ,TMS基準,ppm)δ:5.796
(1H,s),3.965(1H,brd,J=1.9
8Hz),3.632(1H,dd,J=2.96,1
0.88Hz),3.371(1H,dd,J=6.9
2,10.88Hz),2.612(1H,ddd,J
=2.97,2.97,14.84Hz),2.415
(1H,dd,J=2.97,14.84Hz),2.
3−2.5(m,2H),1.0−2.1(m,15
H),1.194(3H,s),1.052(3H,
d,J=6.92Hz),0.740(3H,s).
薬の合成中間体として有用な7α−ヒドロキシ−プレグ
ナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデヒドを高純
度で効率よく製造することができる。
Claims (3)
- 【請求項1】 7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−エン
−3−オン−20−カルバルデヒド。 - 【請求項2】 3α,7α−ジヒドロキシ−5β−コラ
ン酸および/またはその塩を基質として7α−ヒドロキ
シ−プレグナ−4−エン−3−オン−20−カルバルデ
ヒドを生産するシュードモナス(Pseudomona
s)属に属する細菌を、3α,7α−ジヒドロキシ−5
β−コラン酸および/またはその塩を含む培地で培養す
ることを特徴とする7α−ヒドロキシ−プレグナ−4−
エン−3−オン−20−カルバルデヒドの製造方法。 - 【請求項3】 シュードモナス(Pseudomona
s)属に属する細菌がシュードモナス・プチダD401
4−A357−3A(Pseudomonas put
ida D4014−A357−3A)菌株(FERM
BP−8070)である請求項2記載の製造方法。
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---|---|---|---|
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JP2001267025 | 2001-09-04 | ||
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