JP2002524045A - α−グルコシダーゼをコードする核酸分子、改質デンプンを合成する植物、その産生方法、その用途および改質デンプン - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、ジャガイモ由来のα−グルコシダーゼ活性を有するタンパク質をコードする核酸分子並びに改質デンプンを合成するトランスジェニック植物細胞および植物に関する。本発明はまた、本発明の核酸分子を含むベクターおよび宿主細胞、本発明の方法を使用して作成される植物細胞および植物、並びに本発明の植物細胞および植物により合成されるデンプンに関する。本発明はまた、前記デンプンの生産方法に関する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 本発明は、ジャガイモのα−グルコシダーゼ活性を有するタンパク質をコード
する核酸分子並びに改質デンプンを合成するトランスジェニック植物細胞および
植物を作成する方法に関する。さらに本発明は、本発明の核酸分子を含むベクタ
ーおよび宿主細胞、本発明の方法からもたらされる植物細胞および植物、本発明
の植物細胞および植物により合成されるデンプン、並びにこのデンプンの生産方
法に関する。 再生可能な原料として植物構成要素に付随する重要性の増加を考慮して、生物
学的研究は、植物ベースの原料を加工産業の必要性に適合させることを試みてい
る。故に、できるだけ多くの分野の用途において使用される再生可能な原料を可
能にするためには、物質の多重性を提供することが必要である。

【０００２】 また、油脂、脂肪およびタンパク質、多糖類は植物由来の重要な再生可能な原
料を構成する。加えて高等植物において最も重要な貯蔵物質の１つであるセルロ
ース、デンプンは、多糖類の中で中心的位置を占める。また、トウモロコシ、米
および小麦、ジャガイモは特にデンプンの生産において重要な役割を果たしてい
る。 多糖類のデンプンは、化学的に均一な単位であるグルコース分子のポリマーで
ある。しかし、これはその重合度およびグルコース鎖の分枝の発生について異な
る、分子の異なる形態の高度な複合混合物でもある。従って、デンプンは均一な
原料を構成するものではない。特に、α−１,４−グルコシド結合したグルコー
ス分子の本質的に未分枝のポリマーであるアミロースデンプンと、これに対し異
った分枝のグルコース鎖の複合混合物から構成されるアミロペクチンデンプンと
は区別されている。分枝は、付加的なα−１,６−グルコシド結合の発生により
生じる。例えばトウモロコシまたはジャガイモなどのデンプン生産に用いられる
典型的な植物において、合成されるデンプンは、約２５％のアミロースデンプン
および約７５％のアミロペクチンデンプンからなる。

【０００３】 分枝の程度によりおおよそ決定されるデンプンの分子構造、アミロース／アミ
ロペクチンの比、平均長さおよび側鎖の分布、およびリン酸基の存在はデンプン
またはその水溶液の重要な機構的特性を決定する。本明細書にて述べるべき機能
的特性の例は、溶解性、退均作用、フィルム形成性、粘度、色安定性、膠化性並
びに結合および接着性である。デンプン顆粒のサイズはまた、種々の用途におい
て重要な特性である。また、高−アミロースデンプンの生成は、特定の用途にお
いて特別な関心事である。さらに、植物細胞中に存在する改質デンプンは、特定
の条件下において植物細胞の挙動を変化させるのに有利であり得る。例えば、そ
の加工、例えばデンプン抽出前の例えば実または根茎などのデンプン含有器官の
貯蔵の間におけるデンプン分解を減少させることが可能である。さらに、改質デ
ンプンの作成が関心事であり、これは加工、例えば食品の生産、例えばトウモロ
コシからのポップコーンやコーンフレーク、またはジャガイモからのフレンチフ
ライ、チップスやポテトパウダーなどによりよく適するこのデンプンを含む植物
細胞または植物器官をもたらす。特にこの状況における格別な関心事は、冷甘味
化[cold sweetening]を減少させること、即ち低温での長期貯蔵における還元糖
（特にグルコース）の放出を減少させることについてのデンプンの改良である。
特にジャガイモは４〜８℃の温度でしばしば貯蔵され、貯蔵の間のデンプン分解
を最小限にする。この間に放出される還元糖、特にグルコースは、フレンチフラ
イやチップスの生産において所望しない褐色化反応（いわゆるMaillard反応）を
もたらす。

【０００４】 植物から単離することができるデンプンは、しばしば化学的改質を用いて、役
割、必要な時期および費用としての特別な産業目的に適合される。故に、その特
性が既に加工産業の特別な要求を満たす、故に経済的および環境的に有利である
、デンプンを合成する植物の作成の可能性を見いだすことが所望されている。 植物交配に加えて、そのような植物を提供する１つの可能性は、組換え法によ
るデンプン生産性植物のデンプン代謝の指向性遺伝子改質である。故に、デンプ
ン合成の改質およびデンプン分解（デンプン代謝）に関わる酵素の特定および特
徴付け並びにそれらの酵素をコードする対応するＤＮＡ配列の単離が必要条件で
ある。 デンプン合成を導く生化学的合成経路は既に知られている。植物細胞において
デンプン合成はプラスチドにて開始される。光合成が活発な組織について、これ
らプラスチドは葉緑体であり、光合成が不活発な組織については、デンプン貯蔵
組織であるアミロプラストである。

【０００５】 デンプン代謝に包含される重要な酵素は、例えば分枝酵素、ＡＤＰグルコース
ピロホスホリラーゼ、顆粒結合デンプン合成酵素、可溶性デンプン合成酵素、脱
分枝酵素、不均化酵素、プラスチドデンプンホスホリラーゼ、Ｒ１−酵素（Ｒ１
タンパク質）、アミラーゼまたはグルコシダーゼである。 本発明の課題は、デンプン合成植物（例えばライ麦、大麦、麦、トウモロコシ
、小麦、サトウモロコシ、ミッレト、サゴ、米、エンドウ豆、マーローファット
、カサバ、ジャガイモ、トマト、菜種、大豆、大麻、亜麻、ヒマワリ、カウピー
、ヤエナリ、豆、バナナまたはアロールート）におけるデンプン代謝を変更させ
るために他のまたは別の組換え手法、または植物細胞を形質転換させうる適する
核酸分子、故に改質した、有利なデンプン種の合成を提供することである。 そのような改質デンプン種は、例えば分枝の程度、アミロース／アミロペクチ
ンの比、リン酸含量、デンプン顆粒のサイズおよび／または側鎖の平均長さおよ
び分布（即ち側鎖構造）についての改良を示す。

【０００６】 本発明の他の課題は、改質デンプン種を合成するトランスジェニック植物の作
成を可能にする方法を提供することである。 驚くべきことに、本発明の核酸分子を用いて形質転換したトランスジェニック
植物は、上述の課題が請求の範囲において特定されている使用形態を提供するこ
とにより達成されるような特別な様式でその物理化学的特性および／またはその
側鎖構造が改質されているデンプンを合成する。 従って、本発明は、ジャガイモのα−グルコシダーゼの機能を有するタンパク
質をコードする核酸分子であって、 ａ) Seq ID NO.２に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする核
酸分子、その誘導体または部分、 ｂ) Seq ID No.１に示される核酸配列を有する核酸分子、その誘導体もしくは
部分またはこれに相当するリボヌクレオチド配列、 ｃ) ａ）またはｂ）の核酸分子とハイブリダイズ、好ましくは特異的にハイブ
リダイズするまたはこれに相補的な核酸分子、および ｄ) そのヌクレオチド配列が遺伝子コードの縮重によりａ）、ｂ）またはｃ）
の核酸分子の配列から逸脱する核酸分子 からなる群から選択される核酸分子に関するものである。

【０００７】 従って、本発明は、β−アミラーゼをコードし、そしてプラスミドＳｔ−ｂ−
Ａｍｙ（ＤＳＭ Ｎｏ.１２３４７）のｃＤＮＡ挿入物を参照してSeq ID No.２
、その誘導体または部分のアミノ酸配列を有する核酸分子に関する。本発明によ
る上述のα−グルコシダーゼは、ジャガイモのデンプン代謝に包含され、そして
デンプン生合成に直接的または間接的に包含される。

【０００８】 本発明の目的のために、本発明のα−グルコシダーゼタンパク質に関しての用
語「誘導体」は、Seq ID No.２に由来し、そして Seq ID No.２の18 H, 25 R, 3
4 G, 37 H, 38 G, 39 V, 41 L, 42 L, 44 S, 45 N, 46 G, 47 M, 48 D, 51 Y, 5
3 G, 55 R, 56 I, 58 Y, 60 V, 61 I, 62 G, 63 G, 65 I, 66 D, 67 L, 68 Y, 7
0 F, 71 A, 72 G, 75 P, 78 V, 81 Q, 83 T, 86 I, 87 G, 88 R, 89 P, 90 A, 9
2 M, 93 P, 94 Y, 95 W, 97 F, 98 G, 99 F, 101 Q, 102 C, 103 R, 105 G, 106
Y, 115 V, 116 V, 119 Y, 120 A, 124 I, 125 P, 126 L, 127 E, 128 V, 129 M,
130 W, 131 T, 132 D, 133 I, 134 D, 135 Y, 136 M, 137 D, 140 K, 141 D, 1
42 F, 143 T, 144 L, 145 D, 146 P, 147 V, 149 F, 150 P, 157 F, 161 L, 162
H, 164 N, 166 Q, 168 Y, 169 V, 171 I, 173 D, 174 P, 175 G, 176 I, 182 Y
, 184 T, 187 R, 188 G, 189 M, 193 V, 194 F 196 K, 197 R, 201 P, 202 Y, 2
04 G, 206 V, 207 W, 208 P, 209 G, 211 V, 212 Y, 214 P, 215 D, 216 F, 217
L, 219 P, 224 F, 225 W, 228 E, 229 I, 232 F, 237 P, 239 D, 240 G, 242 W
, 244 D, 245 M, 246 N, 247 E, 249 S, 250 N, 251 F, 252 I, 254 S, 260 S,
263 D, 265 P, 266 P, 267 Y, 268 K, 269 1, 270 N, 271 N, 272 S, 273 G, 27
7 P, 278 I, 282 T, 284 P, 286 T, 289 H, 291 G, 295 E, 296 Y, 299 H, 300
N, 301 L, 303 G, 305 L, 306 E, 310 T, 313 A, 322 P, 323 F, 325 L, 327 R,
328 S, 329 T, 330 F, 333 S, 334 G, 336 Y, 337 T, 339 H, 340 W, 341 T, 3
42 G, 343 D, 344 N, 345 A, 346 A, 348 W, 350 0, 351 L, 353 Y, 354 S, 355
I, 356 P, 359 L, 361 F, 362 G, 363 L, 364 F, 365 G, 367 P, 368 M, 370 G
, 371 A, 372 D, 373 I, 374 C, 375 G, 376 F, 380 T, 381 T, 382 E, 383 E,
384 L, 385 C, 387 R, 388 W, 389 I, 390 Q, 391 L, 392 G, 393 A, 394 F, 39
5 Y, 396 P, 397 F, 399 R, 400 D, 401 H, 402 S, 406 T, 409 Q, 410 E, 411
L, 412 Y, 414 W, 416 S, 417 V, 418 A, 421 A, 424 V, 425 L, 426 G, 427 L,
428 R, 431 L, 432 L, 433 P, 436 Y, 438 L, 439 M, 440 Y, 442 A, 446 G, 4
48 P, 449 I, 450 A, 451 R, 452 P, 453 L, 455 F, 457 F, 458 P, 460 D, 463
T, 466 I, 469 Q, 470 F, 471 L, 473 G, 477 M, 479 S, 480 P, 482 L, 485 G
, 489 V, 491 A, 492 Y, 494 P, 496 G, 497 N, 498 W, 501 L, 504 Y, 508 V,
513 G, 518 L, 521 P, 523 D, 524 H, 526 N, 527 V, 528 H, 531 E, 532 G, 53
4 I, 537 M, 538 Q, 539 G, 541 A, 543 T, 544 T, 547 A, 550 T, 554 L, 555
L 556 V, 557 V, 559 S, 566 G, 567 E, 568 L, 569 F, 571 D, 579 G, 583 G,
585 W, 586 T, 588 V, 590 F, 603 S, 605 V, 606 V, 611 A, 620 K, 622 T, 62
5 G, 635 Y, 658 F, 664 S, 669 L, 671 G, 674 Fおよび678 Lよりなるアミノ酸
残基の群から選択される、少なくとも１６３アミノ酸残基、好ましくは少なくと
も２２７アミノ酸残基、特に少なくとも２９３アミノ酸残基、特に好ましくは、
約３０９〜３２２アミノ酸残基を含むポリペプチドを包含し、そしてSeq ID No.
２の1 P, 2 K, 3 L, 4 R, 5P, 6R, 7V, 8H, 9P, 10 S, 11 Q, 12H, 13 H, 14 P,
15 I, 16 Q, 17 L, 19 R, 20 P, 21 P, 22 A, 23 L, 24 H, 27 Y, 28 S, 29 F,
30 R, 31 Y, 32 F, 35 V, 36 S, 43 S, 49 I, 50 V, 57 S, 64 L, 84 Q, 91 A,
109 I, 110 D, 112 V, 114 L, 118 S, 122 S, 152 E, 153 R, 154 V, 155 I, 1
56 F, 158 L, 159 R, 163 Q, 165 D, 172 V, 178 I, 180 N, 183 D, 186 R, 198
D, 199 N, 200 M, 203 Q, 205 V, 210 N, 221 T, 222 E, 223 V, 226 R, 230 E
, 231 K, 236 V, 238 F, 243 L, 259 S, 262 F, 275 H, 280 Y, 281 R, 288 T,
293 T, 294 M, 311 Y, 312 S, 316 N, 317 V, 326 V, 331 L, 335 R, 338 S, 36
0 S, 378 S, 404 K, 408 P, 413 S, 420 A, 422 K, 430 Q, 437 M, 444 1, 445
K, 447 T, 461 A, 464 F, 465 D, 468 T, 478 1,481 I, 487 T, 510 L, 511 N,
512 Q, 516 M, 536 V, 548 Q, 549 R, 551 A, 553 K, 558 L, 560 S, 561 S, 56
2 K, 570 V, 573 D, 574 D, 577 Q, 580 R, 581 E, 584 R, 591 N, 592 S, 593
N, 594 I, 595 I, 598 K, 599 I, 601 V, 602 K, 609 R, 612 L, 613 D, 615 G,
616 L, 618 L, 619 E, 623 L, 630 R, 631 G, 632 L, 634 S, 637 L, 638 V, 6
39 G, 641 H, 642 Q, 643 Q, 644 G, 645 N, 646 T, 647 T, 648 M, 649 K, 650
E, 651 S, 652 L, 653 K, 654 Q, 656 G, 657 Q, 659 V, 660 T, 661 M, 666 M
, 668 I, 670 I, 679 Y, 680 I, 681 I, 682 T, 693 H, 700 R, 703 G, 705 H,
706 G, 707 V, 709 L, 710 L, 712 S, 713 N, 714 G, 715 M, 716 D, 718 Y, 72
0 G, 721 R, 722 I, 724 Y, 726 V, 727 I, 728 G, 729 G, 730 I, 731 D, 732
L, 733 Y, 734 F, 735 A, 736 G, 739 P, 742 V, 743 Q, 745 T, 747 I, 748 G,
749 R, 750 P, 751 A, 753 M, 754 P, 755 Y, 756 W, 757 F, 758 G, 759 F, 7
61 Q, 762 C, 763 R, 764 G, 765 Y, 768 V, 769 V, 771 Y, 772 A, 775 I, 776
P, 777 L, 778 E, 779 V, 780 M, 781 W, 782 T, 783 D, 784 I, 785 D, 786 Y
, 787 M, 788 D, 789 K, 790 D, 791 F, 792 T, 793 L, 794 D, 795 P, 796 V,
798 F, 799 P, 804 F, 806 L, 807 H, 808 N, 810 Q, 812 Y, 813 V, 814 I, 81
6 D, 817 P, 818 G, 819 1, 821 Y, 822 T, 824 R, 825 G, 826 M, 828 V, 829
F, 831 Kおよび832 R（本明細書ではアミノ酸の一文字コードにより特定する）
よりなるアミノ酸残基の群から選択される、少なくとも約１〜６９アミノ酸残基
、好ましくは少なくとも１３９アミノ酸残基、特に少なくとも１９４アミノ酸残
基、より好ましくは２４９アミノ酸残基、特に好ましくは約２６３〜２７４アミ
ノ酸残基を包含するポリペプチドを含む。

【０００９】 本発明によれば、α−グルコシダーゼタンパク質（ポリペプチド、アミノ酸配
列）に関しての用語「部分」には、本発明の目的のために、本発明の核酸分子ま
たはその誘導体によりコードされるα−グルコシダーゼの少なくとも約１０〜５
０、好ましくは少なくとも１００、より好ましくは２００、特に好ましくは少な
くとも４００、最も好ましくは約５５０〜６７５のアミノ酸残基から構成される
ポリ−またはオリゴヌクレオチドを包含する。 さらに本発明は、１９９８年７月２４日にＤＳＺＭに寄託されたプラスミドDS
M No.12347のｃＤＮＡ挿入物、またはその誘導体またはその部分、特にコーディ
ング領域、その誘導体またはその部分に従って、Seq ID No.１の核酸分子からな
る核酸分子に関する。

【００１０】 本発明によれば、核酸分子（ヌクレオチド配列，ポリヌクレオチド）に関して
の用語「誘導体」には、本発明の目的のために、Seq ID No.１の4 A, 6 A, 12 A
, 13 C , 17 G, 25 C, 32 A, 34 C, 38 A, 45 T, 47 A, 49 C, 51 T, 56 G, 62
C, 65 C, 68 T, 73 C, 76 G, 77 G, 78 A, 79 T, 97 G, 100 G, 101 G, 106 A,
108 T, 109 C, 110 A, 111 T, 112 G, 113 G, 114 G, 115 G, 116 T, 119 T, 12
2T, 125 T, 127 A, 130 A, 131 G, 132 C, 133 A, 134 A, 135 T, 136 G, 137 G
, 139 A, 140 T, 141 G, 142 G, 143 A, 144 T, 146 T, 151 T, 152 A, 153 T,
157 G, 158 G, 161 A, 162 T, 164 G, 166 A, 167 T, 169 A, 171 T, 172 T, 17
3 A, 174 C, 175 A, 176 A, 178 G, 179 T, 181 A, 182 T, 183 T, 184 G, 185
G, 187 G, 188 G, 191 T, 193 A, 194 T, 195 T, 196 G, 197 A, 200 T, 202 T,
203 A, 206 T, 208 T, 209 T, 211 G, 212 C, 214 G, 215 G, 216 A, 217 C, 2
21 C, 223 C, 224 C, 226 G, 232 G, 233 T, 236 T, 237 G, 239 A, 241 C, 242
A, 243 G, 244 T, 247 A, 248 C, 249 T, 254 T, 256 A, 257 T, 259 G, 260 G
, 263 G, 265 C, 266 C, 268 G, 269 C, 272 C, 274 A, 275 T, 276 G, 277 C,
278 C, 280 T, 281 A, 283 T, 284 G, 285 G, 289 T, 290 T, 292 G, 293 G, 29
7 T, 298 C, 299 A, 301 C, 302 A, 304 T, 305 G, 308 G, 310 T, 313 G, 314
G, 316 T, 317 A, 323 A, 324 T, 326 T, 331 G, 332 A, 335 T, 338 A, 343 G,
344 T, 346 G, 347 T, 349 G, 355 T, 356 A, 357 T, 358 G, 359 C, 360 A, 3
62 A, 365 C, 366 T, 370 A, 371 T, 373 C, 374 C, 377 T, 379 G, 380 A, 382
G, 383 T, 385 A, 386 T, 387 G, 388 T, 389 G, 390 G, 391 A, 392 C, 394 G
, 395 A, 397 A, 398 T, 399 T, 400 G, 401 A, 402 T, 403 T, 404 A, 406 A,
407 T, 408 G, 409 G, 410 A, 411 T, 412 G, 415 T, 418 A, 419 A, 421 G, 42
2 A, 424 T, 425 T, 426 C, 427 A, 428 C, 431 T, 433 G, 434 A, 436 C, 437
C, 439 G, 440 T, 443 A, 445 T, 446 T, 448 C, 449 C, 454 G, 455 A, 459 G,
461 T, 469 T, 470 T, 471 T, 473 T, 478 A, 481 C, 482 T, 484 C, 485 A, 4
89 G, 490 A, 491 A, 492 T, 493 G, 496 C, 497 A, 499 A, 501 A, 502 T, 503
A, 505 G, 506 T, 511 A, 512 T, 515 T, 517 G, 518 A, 519 T, 520 C, 521 C
, 523 G, 524 G, 526 A, 527 T, 536 A, 538 A, 542 C, 544 T, 545 A, 546 T,
547 G, 550 A, 551 C, 553 T, 556 A, 559 A, 560 G, 562 G, 563 G, 565 A, 56
6 T, 567 G, 569 A, 570 A, 575 A, 576 T, 577 G, 578 T, 580 T, 581 T, 584
T, 586 A, 587 A, 590 G, 593 A, 594 T, 597 T, 601 C, 602 C, 604 T, 605 A,
607 C, 610 G, 611 G, 616 G, 617 T, 619 T, 620 G, 621 G, 622 C, 623 C, 6
25 G, 626 G, 631 G, 632 T, 634 T, 635 A, 637 T, 640 C, 641 C, 643 G, 644
A, 646 T, 647 T, 650 T, 653 A, 655 C, 656 C, 659 C, 660 T, 662 C, 663 T
, 670 T, 671 T, 673 T, 674 G, 675 G, 680 A, 682 G, 683 A, 685 A, 686 T,
689 A, 690 G, 694 T, 695 T, 697 C, 701 A, 704 T, 707 T, 709 C, 710 C, 71
3 T, 715 G, 716 A, 717 T, 718 G, 719 G, 722 T, 724 T, 725 G, 726 G, 728
T, 730 G, 731 A, 733 A, 734 T, 735 G, 736 A, 737 A, 739 G, 740 A, 745 T,
746 C, 748 A, 749 A, 751 T, 752 T, 754 A, 755 T, 758 C, 759 T, 760 T, 7
61 C, 764 C, 766 C, 773 C, 778 T, 779 C, 780 T, 782 C, 785 T, 787 G, 788
A, 791 A, 792 T, 793 C, 794 C, 796 C, 797 C, 799 T, 800 A, 802 A, 803 A
, 805 A, 806 T, 808 A, 809 A, 811 A, 812 A, 814 T, 815 C, 817 G, 818 G,
820 G, 829 C, 830 C, 832 A, 833 T, 835 A, 841 A, 844 A, 845 C, 848 T, 85
0 C, 851 C, 854 C, 856 A, 857 C, 860 C, 862 A, 865 C, 866 A, 868 T, 870
T, 871 G, 872 G, 875 A, 883 G, 884 A, 886 T, 887 A, 890 A, 891 T, 892 G,
895 C, 896 A, 897 T, 898 A, 899 A, 902 T, 904 T, 906 T, 907 G, 908 G, 9
14 T, 916 G, 917 A, 918 A, 920 C, 921 T, 924 A, 925 G, 927 C, 928 A, 929
C, 937 G, 938 C, 941 T, 944 T, 953 C, 958 A, 962 G, 964 C, 965 C, 967 T
, 968 T, 971 T, 974 T, 979 A, 980 G, 982 T, 983 C, 985 A, 986 C, 988 T,
989 T, 990 T, 995 G, 997 T, 998 C, 1000 G, 1001 G, 1003 A, 1006 T, 1007
A, 1008 C, 1009 A, 1010 C, 1013 C, 1015 C, 1016 A, 1018 T, 1019 G, 1020
G, 1021 A, 1022 C, 1024 G, 1025 G, 1027 G, 1028 A, 1029 T, 1030 A, 1031
A, 1032 T, 1033 G, 1034 C, 1035 T, 1036 G, 1037 C, 1039 A, 1042 T, 1043
G, 1044 G, 1046 A, 1048 G, 1049 A, 1052 T, 1057 T, 1058 A, 1059 C, 1060
T, 1061 C, 1063 A, 1064 T, 1066 C, 1067 C, 1072 A, 1073 T, 1076 T, 1080
C, 1081 T, 1082 T, 1083 T, 1084 G, 1085 G, 1088 T, 1090 T, 1091 T, 1092
T, 1093 G, 1094 G, 1096 A, 1097 T, 1099 C, 1100 C, 1102 A, 1103 T, 1104
G, 1106 T, 1108 G, 1109 G, 1111 G, 1112 C, 1114 G, 1115 A, 1116 T, 1117
A, 1118 T, 1120 T, 1121 G, 1123 G, 1124 G, 1125 T, 1126 T, 1127 T, 1138
A, 1139 C, 1141 A, 1142 C, 1144 G, 1145 A, 1147 G, 1148 A, 1151 T, 1153
T, 1154 G, 1157 G, 1159 C, 1160 G, 1162 T, 1163 G, 1164 G, 1165 A, 1166
T, 1168 C, 1169 A, 1170 G, 1171 C, 1172 T, 1174 G, 1175 G, 1177 G, 1178
C, 1180 T, 1181 T, 1183 T, 1184 A, 1186 C, 1187 C, 1189 T, 1190 T, 1193
C, 1195 A, 1196 Q, 1198 G, 1199 A, 1201 C, 1202 A, 1204 T, 1205 C, 1208
C, 1213 G, 1216 A, 1217 C, 1220 C, 1225 C, 1226 A, 1228 G, 1229 A, 1231
C, 1232 T, 1234 T, 1235 A, 1240 T, 1241 G, 1242 G, 1243 G, 1244 A, 1246
T, 1247 C, 1249 G, 1250 T, 1252 G, 1253 C, 1254 T, 1256 C, 1259 C, 1261
G, 1262 C, 1264 A, 1267 A, 1270 G, 1271 T, 1274 T, 1276 G, 1277 G, 1279
C, 1280 T, 1281 C, 1283 G, 1292 T, 1294 C, 1295 T, 1297 C, 1298 C, 1301
A, 1306 T, 1307 A. 1309 A, 1313 T, 1315 A, 1316 T, 1317 G, 1318 T, 1319
A, 1321 G, 1322 A, 1324 G, 1325 C, 1328 A, 1331 T, 1333 A. 1336.G, 1337
G, 1339 A, 1342 C, 1343 C, 1345 A, 1346 T. 1348 G, 1349 C, 1351 C, 1352
G, 1354 C, 1355 C. 1357 C, 1358 T, 1360 T, 1362 C, 1363 T, 1364 T, 1367
C, 1369 T, 1370 T, 1372 C, 1373 C, 1376 A, 1378 G, 1379 A, 1387 A, 1388
C, 1390 T. 1393 G, 1396 A, 1397 T, 1403 C, 1405 C, 1406 A, 1407 G, 1408
T, 1409 T, 1412 T. 1415 T, 1417 G, 1418 G, 1420 A, 1422 A, 1424 G, 1427
T, 1429 A, 1430 T. 1431 G, 1433 T, 1435 T, 1436 C, 1438 C, 1439 C, 1444
C, 1445 T, 1448 A, 1450 C, 1453 G, 1454 G, 1456 G, 1463 C, 1465 G, 1466
T, 1470 T. 1471 G, 1472 C, 1474 T, 1475 A, 1477 T, 1480 C, 1481 C, 1486
G, 1487 G, 1488 A, 1489 A, 1490 A, 1492 T, 1493 G, 1494 G, 1496 T, 1501
C, 1502 T, 1504 T, 1508 A, 1510 T, 1511 A, 1514 C, 1520 C, 1522 G, 1523
T, 1527 T, 1533 T, 1537 G, 1538 G, 1540 A, 1544 A, 1547 T, 1549 A, 1552
C, 1559 C, 1561 C, 1562 C, 1565 C, 1567 G, 1568 A, 1569 T, 1570 C, 1571
A, 1575 T, 1577 A, 1578 A, 1579 G, 1580 T, 1582 C, 1583 A, 1586 T, 1588
C, 1591 G, 1592 A, 1593 A, 1594 G, 1595 G, 1597 A, 1600 A, 1601 T, 1604
T, 1605 G, 1606 G, 1609 A, 1610 T, 1611 G, 1612 C. 1613 A, 1614 A, 1615
G, 1616 G, 1619 A, 1621 G, 1622 C, 1625 T, 1626 G, 1627 A, 1628 C, 1630
A, 1631 C, 1636 G, 1639 G, 1640 C, 1645 A, 1648 A, 1649 C, 1652 C, 1654
T, 1658 A, 1660 C, 1661 T, 1664 T, 1666 G, 1667 T, 1669 G, 1670 T, 1675
A, 1676 G, 1689 C, 1690 A, 1692 C, 1696 G, 1697 G. 1699 G, 1700 A, 1703
T, 1705 T, 1706 T, 1709 T, 1711 G, 1712 A, 1715 A, 1717 G, 1724 A, 1727
T, 1732 A, 1733 T, 1735 G, 1736 G, 1745 G, 1746 A, 1747 G, 1748 G, 1750
A, 1753 T, 1754 G. 1755 G, 1756 A. 1757 C, 1760 T, 1762 G, 1763 T, 1765
A, 1768 T, 1769 T, 1775 G, 1776 C, 1781 T. 1783 A, 1789 A. 1796 T, 1802
T, 1807 T. 1808 C, 1809 A, 1810 G, 1811 A, 1813 G, 1814 T, 1816 G, 1817
T, 1828 T, 1830 T, 1831 G, 1832 C, 1836 G, 1845 A, 1846 T, 1848 G, 1851
C, 1853 T, 1855 G, 1858 A, 1859 A, 1862 T, 1864 A, 1865 C, 1868 T, 1871
T, 1873 G, 1874 G, 1876 T. 1877 T, 1881 A, 1890 A, 1894 T, 1897 A, 1901
G, 1908 G. 1925 A. 1929 A, 1945 A, 1953 T, 1958 A. 1966 G, 1972 T, 1973
T, 1976 T, 1984 G. 1988 T, 1990 T. 1991 C, 1997 T, 2006 T, 2009 T, 2011
G, 2012 G. 2020 T, 2021 T, 2024 A, 2027 T および2033 Tからなる群から選択
される、少なくとも４７８ヌクレオチド、好ましくは少なくとも６６８ヌクレオ
チド、特に少なくとも８６０ヌクレオチド，特に好ましくは約９０７〜９４５ヌ
クレオチドからなるポリヌクレオチド、並びにSeq ID No.１の1 C, 10 A, 16 A,
19 G, 21 T, 23 A, 24 C, 26 C, 30 A, 33 A, 36 C, 39 T, 43 A, 48 G, 52 C,
53 A, 54 C, 57 T, 58 C, 59 C, 60 G, 63 G, 64 G, 66 G, 67 C, 69 C, 70 C,
71 A, 72 C, 74 G, 75 G, 80 A, 81 C, 86 T, 88 C, 89 G, 91 T, 93 C, 94 T,
96 C, 99 C, 102 A, 103 G, 104 T, 105 T, 107 G, 123 T, 128 G, 138 C, 145
A, 149 T, 156 G, 170 G, 189 G, 190 T, 192 A, 199 T, 201 G, 264 T, 271 G
, 279 A, 291 C, 294 A, 309 G, 325 A, 327 T, 328 G, 333 T, 334 G, 340 C,
341 T, 342 G, 348 G, 354 T, 363 G, 364 T, 375 G, 384 T, 420 G, 429 A, 43
2 C, 438 A, 444 C, 456 G, 457 C, 458 G, 460 G, 462 A, 464 T, 465 T, 467
T, 468 T, 472 C, 476 G, 477 G, 480 G, 486 T, 487 C, 494 A, 507 A, 513 A,
514 G, 516 A, 522 A, 525 A, 534 C, 537 C, 540 T, 543 A, 549 C, 552 C, 5
57 G, 558 G, 564 C, 573 A, 592 G, 595 A, 596 A, 599 T, 603 C, 608 A, 609
A, 612 G, 614 T, 627 G, 636 T, 639 T, 651 A, 661 A, 665 A, 667 G, 668 T
, 669 A, 678 A, 687 T, 688 G, 692 A, 706 G, 708 A, 727 C, 744 G, 771 A,
774 A, 775 T, 776 C, 783 C, 784 T, 798 C, 807 A, 813 C, 819 C, 825 C, 83
4 C, 838 T, 842 G, 843 A, 855 C, 858 T, 863 C, 864 A, 878 C, 879 A, 881
T, 882 G, 885 G, 888 T, 903 T, 912 A, 931 T, 934 A, 935 G, 940 T, 949 G,
954 T, 957 T, 976 G, 977 T, 987 T, 991 C, 1002C, 1004 G, 1012 T, 1038 T
, 1041 C, 1062 C, 1068 T, 1079 G, 1087T, 1095 A, 1132 A, 1140T, 1161 C,
1167T, 1179 A, 1188 A, 1203 C, 1206 T, 1210 A, 1211 A, 1212 G, 1215 C, 1
223 C, 1224 C, 1239 T, 1258 G, 1263 C, 1265 A, 1275 T, 1278 G, 1287 T, 1
288 C, 1291 T, 1293 A, 1296 T, 1305 T, 1310 T, 1311 G, 1312 C, 1314 T, 1
330 A, 1338 G, 1340C, 1341 T,1344 C, 1347 T, 1353 A, 1356 C, 1386 G, 138
9 A, 1391 T, 1402 A, 1416 C, 1432 A, 1441 A, 1443 A, 1446 T, 1455 A, 145
9 A, 1460 C, 1461 C, 1467 T, 1497 T, 1500 C, 1503 C, 1518 C, 1521 T, 152
8 T, 1530 G, 1531 A, 1534 C, 1535 A, 1546 A, 1557 C, 1563 A, 1566 A, 157
5 A, 1581 A, 1590 T, 1596 G, 1602 A, 1603 T, 1607 T, 1608 C, 1632 A, 164
1 T, 1643A, 1644G, 1 650 T, 1651 G, 1653A, 1657A, 1659A, 1665T, 1668 C,
1672 C, 1678 A, 1680 C, 1681 A, 1683 C, 1684 A, 1695 A, 1698 A, 1704 A,
1708 G, 1718 A, 1719 C, 1738 A, 1743 G, 1749 G, 1751 G, 1752 G, 1 758 G,
1761 A, 1772 A, 1773 C, 1774 A, 1784 T, 1785 T, 1788 C, 1791 T, 1792 A,
1795 A, 1800 G, 1801 G, 1803 T, 1805 A, 1812 G, 1815 T, 1825 C, 1834 C,
1837 G, 1842 A, 1843 G, 1847 T, 1852 C, 1857 A, 1869 A, 1875 A, 1878 T,
1884 T, 1886 T, 1891 G, 1895 T, 1896 G, 1902 C, 1903 T, 1904 A, 1905 T,
1906 G, 1909 C, 1911 T, 1913 T, 1914 T, 1915 G, 1918 T, 1919 C, 1920 A,
1922 A, 1923 C, 1924 C, 1932 G, 1936 A, 1940 C, 1948 G, 1949 A, 1955 T,
1957 A, 1959 G, 1960 C, 1962 G, 1964 G, 1969 C, 1975 G, 1979 C, 1981 A,
1986 A, 1989 C, 1995 G, 1996 A, 2001 A, 2002 A, 2005 T, 2007 G, 2008 A,
2035 T, 2038 A, 2040 C, 2042 T, 2044 A, 2045 C, 2046 T, 2047 T および 2
048 Aからなる群から選択される、少なくとも約１〜９３ヌクレオチド、好まし
くは少なくとも１８７ヌクレオチド、特に少なくとも２６１ヌクレオチド、より
好ましくは少なくとも３３６ヌクレオチド、特に好ましくは約３４５〜３６９ヌ
クレオチドからなるポリヌクレオチドが包含される。

【００１１】 明確に上記している、Seq ID No.１またはSeq ID No.２の本発明によるヌクレ
オチドまたはアミノ酸配列の個々のエレメントの位置の番号において、本発明の
前記配列の誘導体は、個々の配列エレメントの番号が本発明のSeq ID No. 1また
はSeq ID No.２のものから逸脱しうるそれらの配列を意味すると理解されるべき
である。ここで決定的に重要なものは、本発明による配列と少なくとの１つの配
列セクション（部分）との重要な取り決めである。そのような取り決めは、一般
的な専門知識を用いて単純な方法において、例えば適当なコンピュータープログ
ラムを使用する、例えば本発明の配列と比較すべき問題の配列との配列比較（い
わゆる配列アライメント）を実行することにより決定することができる。そのよ
うなコンピュータプログラムは、例えば市販されており（例えばOmiga^(R), Vers
ion 1.1.3. by Oxford Molecular Ltd., Oxford, UK）、ある場合において配列
データベース（例えばEMBL, GenBank）の不可欠な要素であり、例えば同一もし
くは適当である場合には化学的に同等である配列エレメントのもっとも可能性の
ある一致を特定し、そして特に個々の配列エレメントまたは配列セクションのシ
フトをもたらし、故に配列エレメントまたは配列セクションの番号に作用しうる
挿入および／または欠失の存在を考慮に取り入れるものである。 α−グルコシダーゼをコードする本発明の核酸分子に関して、用語「誘導体」
にはさらに、１つ以上のヌクレオチドの付加、欠失、挿入または組換えによりSe
q ID No.１から誘導され、そして上で定義したような条件を満たす核酸分子が包
含される。

【００１２】 α−グルコシダーゼをコードする本発明の核酸分子に関しての、用語「誘導体
」にはさらに、本発明の核酸分子、その誘導体またはその部分の相補的または逆
転した相補的配列（ポリヌクレオチド）が包含される。 α−グルコシダーゼをコードする本発明の核酸分子を参照する、用語「部分」
にはさらに、α−グルコシダーゼまたはその誘導体をコードする本発明の核酸分
子のヌクレオチドの少なくとも約１５〜３５、好ましくは少なくとも約３６〜１
００、特に少なくとも２００、より好ましくは少なくとも４００、特に好ましく
は少なくとも８００、もっとも好ましくは約１４００〜１７００から構成される
ポリまたはオリゴヌクレオチドを包含する。 本発明の好ましい態様において、本発明による用語「誘導体」および／または
「部分」には、ジャガイモから得られるα−グルコシダーゼ遺伝子（即ち、α−
グルコシダーゼをコードする核酸分子）またはα−グルコシダーゼポリペプチド
と機能的および／または構造的に同等である、上で定義したポリヌクレオチドま
たはポリもしくはオリゴペプチドが包含される。用語「機能的および／または構
造的に同等である」は、一般的に問題の発明の分子の機能、適当な場合には生物
学的機能が同一、同等または類似することを意味する。

【００１３】 さらに本発明は、ａ）α−グルコシダーゼ、好ましくはジャガイモ由来のα−
グルコシダーゼの機能を有するタンパク質をコードするヌクレオチド配列または
前記ヌクレオチド配列の部分、およびｂ）分枝酵素、ＡＤＰグルコースピロホス
ホリラーゼ、顆粒結合デンプン合成酵素、可溶性デンプン合成酵素、脱分枝酵素
、不均化酵素、プラスチドデンプンホスホリラーゼ、Ｒ１−酵素、アミラーゼ、
グルコシダーゼの機能を有するタンパク質を構成するＡ群から選択されるタンパ
ク質をコードする１つ以上のヌクレオチド配列、Ａ群から選択されるタンパク質
をコードするヌクレオチド配列の部分からなる組換え核酸分子、並びに前記ヌク
レオチド配列またはその部分の１つとハイブリダイズする核酸分子とハイブリダ
イズする核酸分子、好ましくはデオキシリボ核酸またはリボ核酸分子、特に好ま
しくはｃＤＮＡ分子組に関する。特に好ましいものは、前記ヌクレオチド配列ま
たはその部分と特異的にハイブリダイズする核酸分子である。 ジャガイモのα−グルコシダーゼの機能を有するタンパク質をコードする本発
明の核酸配列はSeq ID No.１に記載されており、そのヌクレオチド配列によりコ
ードされるタンパク質はSeq ID No.２に記載されている。

【００１４】 Seq. ID No.１: cgaatacgaataaccgacgctaaccatcaacgatgggaagtgccggaagaaattctccac cgtccaccaccgccgtcgccgccgtcaacctccaactcctcatcagaaaaccactcccca attaccctctctaacccaaactcagacctagagttcacccttcacaacaccatcccattc agcttcaccgtccgccggcgctccaccggggatactcttttcgatacttcgccggagtta gtcatggggttttgcttctgagtagcaatggcatggatattgtgtatacgggtgatagga ttagttacaaggtgattggagggttaattgatttgtatttctttgccggaccttcgccgg aaatggtggtggatcagtatactcagcttattggtcgtcctgctgctatgccatattggt ctttcggatttcaccaatgccggtggggttacaagaatattgatgatgttgaactggtag tggatagttatgcaaagtctagaataccgctggaggttatgtggactgatattgattaca tggatggttttaaggacttcacactcgatccagttaacttcccactggagcgggtaattt tttttctcaggaagcttcatcagaatgatcagaaatatgtactaatagtagatccaggaa ttagcatcaacaatacatatgacacctataggagaggcatggaagcagatgtcttcataa aacgcgataatatgccctaccaaggggttgtttggccagggaatgtttattatcctgatt ttctaaatccagctactgaagtattttggagaaatgaaattgagaagttccaggatctcg taccttttgatggcctgtggcttgacatgaatgaattgtcaaacttcataacttcccctc ctacaccatcatctacctttgatgatcctccctacaagataaacaactctggcgatcact tgcccatcaattatagaacagttccagccacttctacacattttggtgatacaatggagt ataatgtccataacctttatggattacttgaatctagagccacttatagtgcattggtta atgtcactggtaaaaggccattcattcttgtaagatcaacttttcttggctctggcagat acacgtcacattggactggagataatgctgctacctggaacgatttggcatactccattc ctactatcttgagctttggattgtttggaattccaatggttggagctgatatatgtggtt tttcaagtaacactactgaagagctttgccgccgctggattcagcttggagcattctatc catttgcaagagaccactctgctaaggacacaaccccccaagagctctatagttgggatt cagttgctgcagcagccaagaaagtccttgggctccgatatcagttacttccatactttt atatgcttatgtacgaggcacatataaaagggactcccattgcacgacccctcttcttct ctttccctcaagatgccaagacatttgatatcagcacacagttccttctcggtaaaggtg tcatgatctcacctatacttaagcaaggagcaacctctgttgatgcatatttccctgctg gaaactggtttgacctcttcaattactctcgctctgtgagtttgaatcaaggaacatata tgacacttgacgcaccaccagatcatataaatgtacatgttcgtgaagggaacatattgg tcatgcaaggggaagcaatgacaacacaagctgctcagaggactgcattcaaactccttg tcgtgctgagcagcagcaaaaacagcacaggagaactatttgtggacgatgacgatgagg tgcagatgggaagagagggagggaggtggacgctagttaagtttaacagcaatatcattg gcaataaaattgtggttaaatcagaggttgtgaatggacgatatgcgctggatcaaggat tggtccttgaaaaggtgacattattgggatttgaaaatgtgagaggattgaagagctatg agcttgttggatcacaccagcaagggaacacaacaatgaaggaaagtcttaagcagagtg gacagtttgttactatggaaatctcagggatgtcaatattgatagggaaagagttcaaat tggagctatacatcattacttaacaaatgaattaagttatatacgcttgttgtatgaaat tttctttcatttatcaatgcagtttaatttatgataaaaaaaaaaaaaaaaa

【００１５】 Seq. ID No.２: PKLRPRVHPSQHHPIQLHRPPALHRGYSFRYFAGVSHGVLLLSSNGMDIVYTGDRISYKV IGGLIDLYFFAGPSPEMVVDQYTQLIGRPAAMPYWSFGFHQCRWGYKNIDDVELVVDSYA KSRIPLEVMWTDIDYMDGFKDFTLDPVNFPLERVIFFLRKLHQNDQKYVLIVDPGISINN TYDTYRRGMEADVFIKRDNMPYQGVVWPGNVYYPDFLNPATEVFWRNEIEKFQDLVPFDG LWLDMNELSNFITSPPTPSSTFDDPPYKINNSGDHLPINYRTVPATSTHFGDTMEYNVHN LYGLLESRATYSALVNVTGKRPFILVRSTFLGSGRYTSHWTGDNAATWNDLAYSIPTILS FGLFGIPMVGADICGFSSNTTEELCRRWIQLGAFYPFARDHSAKDTTPQELYSWDSVAAA AKKVLGLRYQLLPYFYMLMYEAHIKGTPIARPLFFSFPQDAKTFDISTQFLLGKGVMISP ILKQGATSVDAYFPAGNWFDLFNYSRSVSLNQGTYMTLDAPPDHINVHVREGNILVMQGE AMTTQAAQRTAFKLLVVLSSSKNSTGELFVDDDDEVQMGREGGRWTLVKFNSNIIGNKIV VKSEVVNGRYALDQGLVLEKVTLLGFENVRGLKSYELVGSHQQGNTTMKESLKQSGQFVT MEISGMSILIGKEFKLELYIIT

【００１６】 本発明のα−グルコシダーゼのヌクレオチド配列は、公知のα−グルコシダー
ゼをコードする分子との配列ホモロジーは低い（Taylor等、1998, Plant J. 13:
419-424; Sugimoto等、 1997, Plant Mol. Biol. 33, 765-768; EMBL Datenbank
-Eintrage: U 22450, P 10253, D 86624）。そのアミノ酸配列は、Seq. ID No.
２との配列アライメントから分かるように、先行技術に記載のα−グルコシダー
ゼとは付加的な５′領域において特に異なる。 Ａ群のタンパク質をコードし、そして本発明に適するヌクレオチド配列は、例
えば可溶性（タイプＩ、II、IIIまたはIV）または顆粒結合デンプン合成酵素の
アイソフォームについては、Hergersberg, 1988, Ph.D. thesis. University of
Cologne; Abel, 1995, Ph.D. thesis, FU Berlin; Abel等、1996, Plant Journ
al 10(6)：981-991; Visser等、1989, Plant Sci. 64:185-192; van der Leij等
、1991, Mol. Gen. Genet. 228：240-248; EP-A-0779363; WO 92／11376; WO 96
／15248; WO 97／26362; WO 97／44472; WO 97／45545; Delrue等、1992, J. Ba
cteriol. 174: 3612-3620; Baba等、1993, Plant Physiol. 103：565-573; Dry
等、1992, The Plant Journal 2,2: 193-202さもなくばEMBLデータベース エン
トリー X 74160; X 58453; X 88789; X 94400に記載され、分枝酵素のアイソフ
ォーム（分枝酵素Ｉ、IIaまたはIIb）、脱分枝酵素のアイソフォーム（分枝酵素
、イソアミラーゼ、プルラナーゼ、Ｒ１酵素）または不均化酵素のアイソフォー
ムについては、例えばWO 92／14827; WO 95／07335; WO 95／09922; WO 96／195
81; WO 97／22703; WO 97／32985; WO 97／42328; Takaha等、1993, J. Biol. C
hem. 268: 1391-1396さもなくばEMBLデータベースエントリーX 83969に記載され
、そしてＡＤＰグルコースピロホスホリラーゼおよびプラスチドデンプンホスホ
リラーゼのアイソフォームについては、例えばEP-A-0368506; EP-A-0455316; WO
94／28146; DE 19653176.4; WO 97／11188; Brisson等、1989, The Plant Cell
1：559-566; Buchner等、1996, Planta 199：64-73; Camirand等、1989, Plant
Physiol. 89 (4 Suppl.) 61; Bhatt & Knowler, J. Exp. Botany 41 (Suppl.)
5-7; Lin等、1991, Plant Physiol. 95: 1250-1253; Sonnewald等、1995, Plant
Mol. Biol. 27：567-576; DDBJ No. D 23280; Lorberth等、1998, Nature Biot
echnology 16：473-477に記載されている。

【００１７】 本発明を参照して使用に適するヌクレオチド配列は、原核生物または真核生物
起源、好ましくは細菌、真菌または植物起源のヌクレオチド配列である。 用語「ヌクレオチド配列の部分」は、本発明の目的において、本発明において
使用される少なくとも１５ ｂｐ、好ましくは少なくとも１５０ ｂｐ、特に好ま
しくは少なくとも５００ ｂｐの長さであるが、５０００ ｂｐ、好ましくは２５
００ ｂｐの長さを超えない、ヌクレオチド配列の部分を意味する。 用語「ハイブリダイゼーション」は、本発明の目的において、慣用されるハイ
ブリダイゼーション条件下、好ましくはストリンジェントな条件下におけるハイ
ブリダイゼーションを意味し、これは例えばSambrook等（Molecular Cloning, A
Laboratory Manual, 2nd Ed. (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press,
Cold Spring Harbor, NY）に記載されている。

【００１８】 「特異的なハイブリダイゼーション」は、特に次の高度にストリンジェントな
条件下で行うのが好ましい： ハイブリダイゼーション緩衝液：２×ＳＳＣ; １０×デンハルト溶液 (フィコ
ール４００＋ＰＥＧ＋ＢＳＡ; 比率１：１：１）; ０.１％ ＳＤＳ; ５mM ＥＤ
ＴＡ; ５０mM Ｎａ₂ＨＰ０₄; ２５０ug／mlニシン精巣ＤＮＡ; ５０ug／ml ｔＲ
ＮＡ; または０.２５Ｍ リン酸ナトリウム緩衝液ｐＨ７.２; １mM ＥＤＴＡ; ７
％ ＳＤＳ ハイブリダイゼーション温度：Ｔ＝５５〜６８℃, 洗浄緩衝液：０.２×ＳＳＣ；０.１％ＳＤＳ および 洗浄温度：Ｔ＝４０〜６８℃

【００１９】 本発明の核酸分子にハイブリダイズする分子には、本発明の核酸分子の断片、
誘導体および対立遺伝子変異体が包含される。断片は、上述のタンパク質の機能
的に活性な部分をコードするのに十分長い核酸分子の部分を意味すると理解され
る。用語「誘導体」は、文脈上、配列が１つ以上に位置において本発明の核酸分
子の配列とは異なるが、これら配列と高いホモロジーを示すことを意味する。ホ
モロジーとは、少なくとも６０％、好ましくは７０％以上、そして特に好ましく
は８５％以上の配列同一性を意味する。本発明の核酸分子について変異体は、欠
失、置換、挿入または組換えにより作成されうるものである。

【００２０】 従って、ホモロジーは、機能的および／または構造的等価性が問題の核酸分子
間またはこれによりコードされるタンパク質間において示されることを意味する
。本発明の核酸分子に相同であり、そしてこれらの分子の誘導体を構成する核酸
分子は、原則として同じ生物学的機能を発揮する改質体を構成するこれら分子の
変異である。これらは、天然に生じた変異、例えば他の植物種または突然変異由
来の配列であり得るし、これら突然変異については天然に生じたかまたは特異的
突然変異誘発により導入することが可能である。さらに変異体は合成配列である
。対立遺伝子変異体は、天然に生じた変異体か、さもなくば合成性変異体または
組換えＤＮＡ技術により作成された変異体である。 本発明の核酸分子はＤＮＡ分子、特にｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡとすること
ができる。本発明の核酸分子はさらに、ＲＮＡ分子とすることができる。本発明
の核酸分子またはその部分は、例えば天然源から得るか、または組換え技術もし
くは合成により作成することができる。

【００２１】 植物細胞において本発明の核酸分子をセンスまたはアンチセンスの向きで発現
させるために、これらは植物細胞における転写を確実にする制御性ＤＮＡエレメ
ントに連結される。これらには、特にプロモーターが包含される。一般的に、植
物細胞において活性な任意のプロモーターが発言に適する。プロモーターは、発
現が構成的であるか、あるいは特別な組織、植物発生時における特別な時期また
は例えば化学的もしくは生物学的に誘導可能な外部要因により決定される特定な
時期におけるものであるというような様式で選択される。形質転換植物に関して
、プロモーターとヌクレオチド配列もまた相同性または異種性とすることができ
る。適するプロモーターの例は、構成的発現についてはカリフラワーのモザイク
ウィルス３５ ＳＲＮＡプロモーターであり、ジャガイモにおける塊茎特異的発
現についてはパタチン[patatin]遺伝子プロモーターＢ ３３（Rocha-Sosa等、19
89, EMBO J. 8：23-29）または光合成の活性な組織においてのみ発現させるプロ
モーター、例えばＳＴ−ＬＳ １プロモーター（Stockhaus等、1987, Proc. Natl
. Acad. Sci. USA 84: 7943-7947; Stockhaus等、1989, EMBO J. 8: 2445-2451
）、または内胚乳特異的発現については小麦ＨＭＧプロモーターもしくはトウモ
ロコシのゼイン遺伝子由来のプロモーターである。

【００２２】 本発明の核酸分子を終止させる終止配列は転写を正確に終了させ、転写物を安
定化させる機能を有すると考えられているポリＡテールを転写物に付加しうるも
のである。そのようなエレメントは文献（Gielen等、1989, EMBO J. 8:23-29を
参照）に記載されており、所望により交換可能である。 本発明の核酸分子は、α−グルコシダーゼ活性またはα−グルコシダーゼとデ
ンプン代謝の少なくとも１つの別の酵素の活性の増大または減少を示す、トラン
スジェニック植物細胞および植物の作成に用いることができる。このために、本
発明の核酸分子は、植物細胞における効果的な転写に必要な制御性核酸配列を備
える適当なベクター中に導入し、そして植物細胞に導入する。一方、細胞中の内
在性α−グルコシダーゼまたは内在性α−グルコシダーゼとＡ群の少なくも１つ
の別のタンパク質の合成を阻害するために本発明の核酸分子を使用することがで
きる。これは、アンチセンスコンストラクト、インビボ突然変異誘発、生じる同
時抑制により、または適切に構築されたリボザイムにより達成することができる
。一方、本発明の核酸分子は、トランスジェニック植物の細胞中においてα−グ
ルコシダーゼゼまたはα−グルコシダーゼとＡ群の少なくも１つの別のタンパク
質を発現させるために使用することができ、従ってその場合には発現した酵素の
細胞内における活性の増加がもたらされる。

【００２３】 加えて、細胞中の内在性α−グルコシダーゼの合成を阻害し、Ａ群の少なくも
１つの別のタンパク質を過剰発現させるために本発明の核酸分子を使用する可能
性が存在する。 最後に、本発明の核酸分子はまた、トランスジェニック植物の細胞中において
α−グルコシダーゼを発現させ、Ａ群の少なくも１つの別のタンパク質を阻害す
るために使用することができる。故に、最後２つの繁発明の態様は、細胞中にお
いてそれぞれ阻害または発現される酵素の活性において同時に阻害および増大が
もたらされる。 さらに本発明は、本発明の核酸分子を含むベクターに関する。

【００２４】 用語「ベクター」には、プラスミド、コスミド、ウィルス、バクテリオファー
ジおよび遺伝子工学において慣用される他のベクターが包含され、これらは本発
明の核酸分子を含み、そして細胞の形質転換に適するものである。そのようなベ
クターは、植物細胞の形質転換に適するものが好ましい。本発明の核酸分子を適
当な場合にフランキング制御領域と一緒に植物細胞のゲノム中に挿入するものが
特に好ましい。例は、アグロバクテリア媒介遺伝子導入において使用することが
できる、ｐＢｉｎＡＲまたはｐＢｉｎＢ ３３などのバイナリーベクターである
。 好ましい態様において、本発明のベクターは、α−グルコシダーゼの機能を有
するタンパク質またはその部分をコードするヌクレオチド配列がセンスまたはア
ンチセンスの向きで存在することにより区別される。 別の好ましい態様において、本発明のベクターは、Ａ群から選択される１つ以
上のタンパク質またはその部分をコードするヌクレオチド配列ががセンスまたは
アンチセンスの向きで存在することにより区別される。

【００２５】 他の好ましい態様において、本発明のベクターは、Ａ群から選択される複数の
タンパク質またはその部分をコードするヌクレオチド配列ががセンスまたはアン
チセンスの向きで存在することにより区別される。 特に好ましくは、本発明のベクターは、原核細胞または真核細胞中における発
現、即ち例えばＲＮＡ、ヌクレオチド配列がセンスの向きで存在するならば翻訳
可能なＲＮＡの転写および合成を確実にする、制御エレメントに連結される。 加えて、分子生物学の通常の技術（例えばSambrook等、1989, Molecular Clon
ing, A Laboratory Manual, 2nd Ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, C
old Spring Harbour, NYを参照）により、種々の突然変異を本発明のＤＮＡ配列
に導入して、改質された生物学的特徴を有するタンパク質の合成を導くことが可
能である。一方、コードするＤＮＡ配列の５′または３′末端からの進行的欠失
によりその配列が作成される欠失変異体を作成して、類似する切断タンパク質の
合成を導くことが可能である。例えば、ＤＮＡ配列の５′または３′末端におけ
るそのような欠失は、酵素の目的産物を関連する輸送または支部なる配列の除去
のために、その元（相同的）のコンパートメントではなく細胞質に局在させるか
、または他のシグナル配列の付加により１つ以上の別（異種）のコンパートメン
トに局在させることが可能である。

【００２６】 一方、変更したアミノ酸配列が例えば酵素活性まあは酵素の制御に影響を与え
る位置に点突然変異を導入することが可能である。故に、例えばＫ_MもしくはＫ_{c at} 値が変更された変異体またはアロステリック制御または共有結合改質を介した
細胞内に正常に存在する制御機構にもはや支配されない変異体を作成することが
可能である。 原核細胞における組換え操作のために、本発明のＤＮＡ配列またはその配列の
部分は、ＤＮＡ配列の組換えにより突然変異誘発または配列の変更を行うプラス
ミド中に導入することができる。分子生物学における標準的方法（上記引用のSa
mbrook等、1989を参照）を用いて、塩基の交換を行うか、または天然もしくは合
成配列を付加しても良い。ＤＮＡ断片を互いに連結するために、アダプターまた
はリンカーを断片に結合させることができる。さらに、適当な制限開裂部位を与
える操作または過剰なＤＮＡもしくはもはや必要ない制限開裂部位を除去する操
作を用いてもよい。挿入、欠失または置換が適当な場合には、インビトロ突然変
異誘発、プライマー修復または連結を用いることができる。一般的に使用される
分析法は配列分析、制限分析、および適当な場合には生化学的および分子生物学
的な他の方法である。

【００２７】 さらに本発明は、本発明の核酸分子または本発明のベクターを含有するか、あ
るいは本発明の核酸分子または本発明のベクターで形質転換した細胞に由来する
宿主細胞、特に原核細胞または真核細胞、好ましくは細菌または植物細胞（例え
ばE. coli、Agrobacterium、Solananceae、Poideae、ライ麦、大麦、オート麦、
トウモロコシ、小麦、サトウモロコシおよびミレット、サゴ、米、エンドウ豆、
マーローファット、カサバ、ジャガイモ、トマト、菜種、大豆、大麻、亜麻、ヒ
マワリ、カウピー、ヤエナリ、豆、バナナまたはアロールートの細胞）に関する
。 さらに本発明は、β−アミラーゼの機能を有するタンパク質をコードする本発
明の組換え核酸分子に加えて、１つ以上のＡ群から選択されるタンパク質をコー
ドする組換え核酸分子もしくはその部分、またはこれらの核酸分子にハイブリダ
イズするヌクレオチド配列を含有する宿主細胞、特に原核細胞または真核細胞、
好ましくは細菌または植物細胞（例えばE. coli、Agrobacterium、Solananceae
、Poideae、ライ麦、大麦、オート麦、トウモロコシ、小麦、サトウモロコシお
よびミレット、サゴ、米、エンドウ豆、マーローファット、カサバ、ジャガイモ
、トマト、菜種、大豆、大麻、亜麻、ヒマワリ、カウピー、ヤエナリ、豆、バナ
ナまたはアロールートの細胞）に関する。

【００２８】 本発明の核酸分子の使用に加えて、本発明の宿主細胞もまた、適当な場合には
、分枝酵素、ＡＤＰグルコースピロホスホリラーゼ、顆粒結合デンプン合成酵素
、可溶性デンプン合成酵素Ｉ、II、III もしくは IV、脱分枝酵素、不均化酵素
、プラスチドデンプンホスホリラーゼ、Ｒ１−酵素（Ｒ１タンパク質）、アミラ
ーゼまたはグルコシダーゼの機能を有するタンパク質をコードするヌクレオチド
配列、その部分および前記ヌクレオチド配列またはその部分の１つとハイブリダ
イズする核酸分子を含む個々のヌクレオチド配列またはベクターを複数の連続的
細胞形質転換において使用する連続的形質転換（いわゆる超形質転換）により作
成することができる。本発明の別の態様は、本発明の核酸分子または本発明のベ
クターを植物細胞のゲノム中に組み込むことからなる、改質デンプンを合成する
トランスジェニック植物細胞の作成方法に関する。

【００２９】 本発明の核酸分子が組換え法により提供されれば、その結果、野生型の植物に
おいて合成されるデンプン関して、例えば構造、含水量、タンパク質含量、脂質
含量、繊維含量、灰分／リン酸含量、アミラーゼ／アミロペクチンの比率、分子
量分布、分枝度、顆粒サイズ、顆粒の形状および結晶化、または物理化学的特性
、例えば粘弾性、吸着特性、膠化温度、粘度、増粘能[thickening capacity]、
溶解性、ゲル構造、透明性、熱安定性、剪断安定性、酸に対する安定性、劣化す
る傾向、ゲル化、凍解安定性、複合体形成性、ヨウ素結合性、フィルム形成性、
接着力、酵素安定性、消化力または反応性などが変更されている、改質デンプン
が合成されるの様な様式で植物の代謝を開始させるか、またはこれを変更させる
ことが可能になる。デンプン代謝に包含されるタンパク質の活性を増加させる、
例えば適する核酸分子を過剰発現させる、または細胞の制御機構にもはや従わな
いおよび／またはその活性に関して異なる温度依存性を示す突然変異体を提供す
ることにより適切に遺伝子改質した植物において収率が増加する可能性もある。
特に顕著な収率の増加は、形質転換した植物のデンプン貯蔵組織の特異的細胞、
例えばジャガイモの場合は茎、トウモロコシまたは小麦の場合は内乳胚における
デンプン代謝に包含される１つ以上のタンパク質の活性を増加させた結果である
。デンプン代謝におけるこれらの可能性の経済的重要性および利益は明らかであ
る。

【００３０】 植物において本発明の核酸分子を発現させる場合、合成されるタンパク質につ
いて、植物細胞の任意の所望のコンパートメントに局在させることが可能である
。特定のコンパートメント（細胞質、液胞、アポプラスト、プラスチド、ミトコ
ンドリア）中に局在させるために、局在させるための輸送またはシグナル配列を
、必要な場合には欠失（除去）し、そして残るコーディング領域を、必要な場合
には問題のコンパートメントに局在させるＤＮＡ配列に連結させなくてはならな
い。そのような配列は知られている（例えば、Braun等., EMBO J. 11 (1992), 3
219-3227; Wolter等、Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85 (1988), 846-850; Sonne
wald等、Plant J. 1 (1991), 95-106を参照） デンプン代謝に包含されるタンパク質の活性が低下した植物細胞の作成は、本
発明の核酸分子を用いて、例えば適するアンチセンスＲＮＡ、同時抑制効果を達
成するセンスＲＮＡの発現により、インビボ突然変異誘発、またはデンプン代謝
に包含されるタンパク質の１つをコードする転写物を特異的に切断する適切に構
築したリボザイムの発現により、好ましくはアンチセンス転写物の発現により達
成することができる。

【００３１】 このため、全てのフランキング配列を包含する、デンプン代謝に包含されるタ
ンパク質をコードする配列の全てを含むＤＮＡ分子、同様にコーディング配列の
部分、これらは最小で１５ ｂｐ、好ましくは少なくとも１００〜５００ ｂｐ、
特に５００ ｂｐ以上を有するが、その部分のみを含むＤＮＡ分子を最初に用い
ることが可能である。原則として、ＤＮＡ分子は、５０００ ｂｐより短いもの
、好ましくは２５００ ｂｐより短いものを用いる。 また、本発明のＤＮＡ分子の配列に高いホモロジーを示すが、完全に同じでは
ないＤＮＡ配列を使用することが可能である。最小のホモロジーは約６５％以上
である。７５％のホモロジー、特に８０％のホモロジーを有する配列を使用する
ことが好ましい。 細胞中の特異的タンパク質の活性を低下させるリボザイムの発現は当業者に知
られており、例えばEP-B1 0321 201に記載されている。植物細胞におけるリボザ
イムの発現は、例えばFeyter等（Mol. Gen. Genet. 250 (1996), 329-338）に記
載されている。

【００３２】 さらに、本発明の植物細胞におけるデンプン代謝に伴うタンパク質の減少は、
いわゆる“インビボ突然変異誘発”により達成することができ、これはＲＮＡ−
ＤＮＡハイブリッドのオリゴヌクレオチド（キメロプラスト）を細胞形質転換に
より細胞に導入する（Kipp P.B.等、Poster Session at the“5th Internationa
l Congress of Plant Molecular Biology, 21-27, September 1997, Singapore;
R.A. Dixon and C.J. Arntzen, Meeting report on“Metabolic Engineering i
n Transgenic Plants", Keystone Symposia, Copper Mountain, CO, USA, TIBTE
CH 15 (1997), 441-447; 国際特許出願WO 95／15972; Kren等、Hepatology 25 (
1997), 1462-1468; Cole-Strauss等、Science 273 (1996), 1386-1389）。 この目的に使用されるＲＮＡ−ＤＮＡオリゴヌクレオチドのＤＮＡ部分の一部
は、内在性タンパク質の核酸配列と相同であるが、内在性タンパク質の核酸配列
と比較して変異を示すかまたは相同性領域に囲まれる異質性領域を含む。 ＲＮＡ−ＤＮＡオリゴヌクレオチドの相同性領域および相同性領域の次の内在
性核酸分子の塩基対が突然変異するか、またはＲＮＡ−ＤＮＡオリゴヌクレオチ
ドのＤＮＡ部分に含まれる異質性領域が植物細胞のゲノムに移入される。これは
、デンプン代謝に伴うタンパク質の活性の低下をもたらす。

【００３３】 また、デンプン代謝にともなう酵素活性は、同時抑制作用により植物細胞中で
低下させることができる。この方法は当業者に知られており、例えばJorgensen
（Trends Biotechnol. 8 (1990), 340-344)、Niebel等（Curr. Top. Microbiol.
Immunol. 197 (1995), 91-103）、Flavell等（Curr. Top. Microbiol. Immunol
. 197 (1995), 43-46）、PalaquiとVaucheret（Plant. Mol. Biol. 29 (1995),
149-159）、Vaucheret等（Mol. Gen. Genet. 248 (1995), 311-317）、de Borne
等（Mol. Gen. Genet. 243 (1994), 613-621）および他の出典に記載されている
。 形質転換植物において、デンプン生合成に伴う複数の酵素の合成を阻害するた
めに、アンチセンスの無機で、適するプロモーターの制御下に関連する酵素をコ
ードする複数の領域を同時に包含するＤＮＡ分子を形質転換に使用することが可
能である。各配列はそれ自体のプロモーターの制御下にあるか、または配列は融
合体として連結プロモーターにより転写させて、問題のタンパク質の合成およそ
同じにまたは異なる程度まで阻害することができる。そのようなコンストラクト
に使用される個々のコーディング領域の長さについて、既に上記したアンチセン
スコンストラクトの作成についてのものはここにも適用される。主に、そのよう
なＤＮＡ分子のプロモーターから開始される転写されたアンチセンス断片につい
ての上限はない。しかし、生じた転写物は原則として２５kbの長さ、好ましくは
１５kbの長さを超えることはない。

【００３４】 本発明の核酸分子は、植物細胞の形質転換および複数の酵素の合成の阻害を可
能にする。 さらに、本発明の核酸分子は、１つ以上のデンプン生合成遺伝子について欠失
または欠損した伝統的な突然変異体（ShannonとGarwood, 1984, in Whistler, B
eMiller and Paschall, Starch: Chemistry and Technology, Academic Press,
London, 2nd Edition: 25-86）に導入することができる。これらの欠損は、例え
ば次のタンパク質に関する：顆粒結合デンプン合成酵素（ＧＢＳＳ Ｉ）および
可溶性デンプン合成酵素（ＳＳＳ Ｉ、II、IIIおよびIV）、分枝酵素（ＢＥ Ｉ
、llaおよびllb）、脱分枝酵素（Ｒ−酵素、イソアミラーゼ、プルラナーゼ）、
不均化酵素、プラスチドデンプンホスホリラーゼ。

【００３５】 故に、本発明は、本発明の核酸分子またはベクターを用いて形質転換した、本
発明の方法により入手可能なトランスジェニック植物およびこの方法にて形質転
換した細胞に由来するトランスジェニック植物細胞に関する。本発明の細胞は本
発明の核酸分子を含有し、これは植物細胞における転写させる制御性ＤＮＡエレ
メント、特にプロモーターに連結するのが好ましい。本発明の細胞は、特にこれ
らの細胞が天然に生じることのない本発明の核酸分子を含有すること、またはの
方法では生じることのない、そのような分子が、細胞のゲノムに組み込まれて存
在していること、即ち異なるゲノム環境であることによって、天然に生じる植物
細胞とは区別することができる。さらに、本発明のトランスジェニック植物細胞
は、適する場合にはその細胞において天然に生じるそのような分子のコピーに加
えて、これらがゲノムに安定的に組み込まれた本発明の核酸分子の少なくとも１
コピーを含有していることによって、天然に生じる植物細胞とは区別することが
できる。細胞に導入する核酸分子が、その細胞に既に天然に生じる分子の付加的
コピーである場合、本発明の植物細胞は、特にこの付加的コピーが天然には生じ
ることのないゲノムの位置に局在していることによって、天然に生じる植物細胞
とは区別することができる。これは、例えばサザンブロット分析によりチェック
することができる。

【００３６】 本発明の好ましい植物細胞は、デンプン代謝にともなう個々の酵素の活性が少
なくとも１０％、特に好ましくは少なくとも３０％、非常に好ましくは少なくと
も５０％増加または低下した植物細胞である。 さらに本発明の植物細胞は、このましくは次の特徴：導入された本発明の核酸
分子が植物細胞に関して異質性の場合、トランスジェニック植物細胞は、導入さ
れた本発明の核酸分子の転写物を示すことの少なくとも１つによって天然に生じ
る植物細胞とは区別される。これは、例えばノーザンブロット分析により検出す
ることができる。例えば、本発明の植物細胞は、導入された本発明の核酸分子に
よりコードされる１つ以上のタンパク質を含有する。これは、例えば免疫学的方
法、特にウェスタンブロット分析により検出することができる。 導入された本発明の核酸分子植物細胞に関して相同性の場合、本発明の細胞は
、例えば本発明の核酸分子の付加的発現に基づいて天然に生じる細胞とは区別す
ることができる。例えば、トランスジェニック植物細胞は、より多いまたはより
少ない本発明の核酸分子の転写物を含有する。これは、例えばノーザンブロット
分析により検出することができる。本明細書において「より多い」または「より
少ない」は、対応する未形質転換細胞より転写物が少なくとも１０％、特に好ま
しくは少なくとも３０％、非常に好ましくは少なくとも５０％多いまたは少ない
ことを意味する。さらに細胞は、本発明のタンパク質含量において相当する増加
および減少（それぞれ少なくとも１０％、２０％または５０％）を示す。トラン
スジェニック植物細胞は、当業者に知られた技術によって完全な植物に再生させ
ることができる。

【００３７】 本発明のトランスジェニック植物細胞を再生させることにより入手可能は植物
および本発明の植物細胞から完全な植物に再生させることによりトランスジェニ
ック植物を作成する方法もまた本発明の要件である。本発明の別の要件は、本発
明のトランスジェニック植物細胞を含有する植物である。主にトランスジェニッ
ク植物は、任意の種の植物、即ち単子葉植物ばかりでなく双子葉植物とすること
ができる。植物は、有用な植物、即ち栄養の目的または技術、主に産業の目的で
栽培される植物であるのが好ましい。これらは、デンプン貯蔵性植物、例えば穀
物（ライ麦、大麦、麦、トウモロコシ、小麦、サトウモロコシ、ミッレト、サゴ
）、米、エンドウ豆、マーローファット、カサバ、ジャガイモ、トマト、菜種、
大豆、大麻、亜麻、ヒマワリ、カウピー、ヤエナリ、豆、バナナまたはアロール
ートなどである。 本発明はまた、本発明の植物の増殖用材料、例えば果実、種子、塊茎、根茎、
植種、挿し木、カリ［calli］、プロトプラスト、細胞培養物などに関する。

【００３８】 デンプン代謝にともなう酵素の酵素活性を変えることは、本発明の方法により
作成される植物中において、改質した構造を有するデンプンの合成が生じる。 多数のクローニングベクターが高等植物中への外来遺伝子の導入の調製に適し
ており、ベクターはE. coliにおける複製シグナルおよび形質転換した細菌細胞
の選択のためのマーカー遺伝子を含有する。そのようなベクターの例は、ｐＢＲ
３２２、ｐＵＣシリーズ、Ｍ １３mpシリーズ、ｐＡＣＹＣ １８４などである
。所望の配列は、適する制限酵素切断部位においてベクターに導入することがで
きる。生じるプラスミドは、E. coli細胞の形質転換に用いる。形質転換したE.
coli細胞は適する培地中で培養し、集菌し、次いで溶解させる。プラスミドを回
収する。得られたプラスミドＤＮＡを特徴づける方法は、一般的には制限酵素分
析、ゲル電気泳動、並びに他の生化学的および分子生物学的方法である（Sambro
ok等、既に引用）。各操作後、プラスミドＤＮＡは切断し、得られたＤＮＡ断片
を他のＤＮＡ配列に連結することができる。各プラスミドＤＮＡは、同じまたは
他のプラスミド中にクローン化することができる。

【００３９】 植物宿主細胞にＤＮＡを導入するために多くの技術が利用可能である。これら
の技術には、形質転換の手法としてのAgrobacterium tumefaciensまたはAgrobac
terium rhizogenesを使用するＴ−ＤＮＡを用いた植物細胞の形質転換、ポリエ
チレングリコール（ＰＥＧ）によるプロトプラストの融合、インジェジェクショ
ン、ＤＮＡエレクトロポレーション、biolistic法または他の可能性によるＤＮ
Ａの導入が包含される。 植物細胞中へのＤＮＡのインジェクションおよびエレクトロポレーションには
、使用するプラスミドまたはＤＮＡ自体に特別な特徴は必要ない。単純なプラス
ミド、例えばｐＵＣ誘導体などを使用することができる。しかし、そのような形
質転換細胞から完全な植物体を再生させるのであれば、選択可能なマーカー遺伝
子の存在が必要とされる。

【００４０】 所望するＤＮＡを植物細胞に導入する方法次第では、別のＤＮＡ配列が必要と
される。例えば、ＴｉまたはＲｉプラスミドを植物細胞の形質転換に使用する場
合、ＴｉまたはＲｉプラスミドＴ−ＤＮＡの少なくとも右側ボーダー、しばしば
左右のボーダーをフランキング領域として導入すべき遺伝子に連結しなければな
らない。アグロバクテリアを形質転換に使用する場合、導入するＤＮＡは特別な
プラスミド、インターメディエイトベクターまたはバイナリーベクターのいずれ
かにクローン化しなければならない。インターメディエイトベクターは、Ｔ−Ｄ
ＮＡにおける配列と相同な配列による相同組換えによって、アグロバクテリアＴ
ｉまたはＲｉプラスミド中に組み込むことができる。前者はまた、Ｔ−ＤＮＡ導
入に必要なｖｉｒ領域を含むが、インターメディエイトベクターはアグロバクテ
リア中では複製することができない。インターメディエイトベクターは、ヘルパ
ープラスミド（接合性）によってAgrobacterium tumefaciensに導入される。バ
イナリーベクターは、E. coliおよびアグロバクテリア中で複製が可能である。
これらは、選択マーカー遺伝子および左右のＴ−ＤＮＡボーダー領域により構成
されるリンカーまたはポリリンカーを含む。これらは、アグロバクテリアを直接
形質転換することができる（Holsters等 (1978) Mol. Gen. Genet. 163: 181-18
7）。宿主細胞として働くアグロバクテリアはｖｉｒ領域を有するプラスミドを
含有しており、ｖｉｒ領域は植物細胞中にＴ−ＤＮＡを導入するために必要であ
る。追加的にＴ−ＤＮＡを存在させることができる。この方法で形質転換したア
グロバクテリアは、植物細胞の形質転換に用いられる。

【００４１】 植物細胞の形質転換へのＴ−ＤＮＡの使用は既に集中的に研究されており、EP
120516; Hoekema, The Binary Plant Vector System Offsetdrukkerij Kanters
B.V., Alblasserdam (1985), Chapter V; Fraley等、Crit. Rev. Plant. Sci.,
4: 1-46 および An等 (1985) EMBO J. 4: 277-287に記載されている。 ＤＮＡを植物細胞に導入するために、植物移植片はAgrobacterium tumefacien
sまたはAgrobacterium rhizogenesと共培養するのが好都合である。次に完全は
植物体は、形質転換細胞を選択するための抗生物質または殺菌剤を含有しうる、
適する培地中の感染植物材（例えば、葉の断片、幹断片、根、さらにプロトプラ
スト、または懸濁培養において増殖した植物細胞）から再生させることができる
。生じた植物は次いで導入したＤＮＡの存在につき試験することができる。バイ
オリスティックな方法を使用するまたはプロトプラスト形質転換による外来ＤＮ
Ａを導入する他の可能性は知られている（例えば、Willmitzer, L, 1993 Transg
enic plants. In: Biotechnology, A Multi-Volume Comprehensive Treatise (H
.J. Rehm, G. Reed, A. Puhler, P. Stadler, eds.). Vol. 2, 627-659, VCH We
inheim-New York-Basle-Cambridgeを参照）。

【００４２】 Ｔｉプラスミドベクター系を介してのAgrobacterium tumefaciensを用いた双
子葉植物の形質転換が確立されているが、より最近の研究は単子葉植物もアグロ
バクテリアに基づくベクターにより形質転換に利用しうることを示唆している（
Chan等、Plant Mol. Biol. 22 (1993), 491-506; Hiei et al., Plant J. 6 (19
94), 271-282）。 また、単子葉植物の形質転換系は、バイオリスティック法による形質転換、プ
ロトプラスト形質転換、部分的浸透性細胞のエレクトロポレーションおよびグラ
スファイバーによるＤＮＡ導入である。 具体的に、別の方法がトウモロコシの形質転換についての文献に記載されてい
る（例えばWO 95／06128、EP 0 513 849、EP 0 465 875を参照）。EP 292 435は
、粘液不含で、もろく顆粒状のトウモロコシのカルスから出発して稔性植物を得
ることができる方法を記載している。この文献において、Shillito等（Bio／Tec
hnology 7 (1989), 581）は、稔性植物の再生能には植物再生能を有する分裂プ
ロトプラスト培養物を作成しうるカルス懸濁培養から出発することが必要である
旨述べている。７〜８ヶ月のインビトロ培養期間の後に、Shillito等は、生存可
能な子孫を有するが、しかし形態学的および繁殖性について異常を有する植物を
得ている。PrioliとSondahl（Bio／Technology 7 (1989), 589）はまた、トウモ
ロコシのプロトプラストから稔性植物を再生し、これを得ることを記載している
。

【００４３】 導入されたＤＮＡが植物細胞のゲノムに一度組み込まれれば、原則としてこれ
はそこで安定であり、元の形質転換細胞の子孫においても保持される。通常これ
は、形質転換した植物細胞に殺菌剤またはカナマイシン、Ｇ ４１８、ブレオマ
イシン、ヒグロマイシンまたはホスフィノトリシン［phosphinotricin］などの
抗生物質に対する耐性を付与する選択マーカーを含む。故に、選択される個々の
マーカーは、導入されたＤＮＡを欠失している細胞から形質転換細胞を選択する
ことを可能にする。 植物内において、形質転換細胞は通常の方法で増殖する（McCormick等, (1986
) Plant Cell Reports 5：81-84を参照）。生じた植物は正常に生長し、同じ形
質転換した生殖細胞または他の生殖細胞とハイブリッドを形成する。生じたハイ
ブリッドは、対応する表現系を有する。 ２世代以上増殖して、表現系を安定に保持させ、そして遺伝させる。また、種
子を播種して、問題の表現系または他の特徴を保持させる。

【００４４】 本発明の別の要件は、本発明の植物細胞、本発明の植物、本発明の植物の部分
または本発明の生殖体を加工または方法に組み入れる、それ自体知られた方法に
おけるデンプンの生産方法である。 植物または植物のデンプン所蔵部分からデンプンを抽出する方法は、当業者に
知られている。トウモロコシの穀粒からデンプンを抽出する方法は、例えばEckh
off等（Cereal Chem. 73 (1996) 54-57）により記載されている。原則として、
産業規模におけるトウモロコシデンプンの抽出は、湿潤ミルにより実施される。
さらに、種々のデンプン貯蔵植物からデンプンを抽出する方法は、例えば「デン
プン：化学および技術（Whistler, BeMillerおよびPaschall編：2nd Edition, A
cademic Press Inc. London Ltd; ISBN 0-12-746270-8; 例えばChapter XII, pa
ges 412-468を参照：トウモロコシおよびサトウモロコシ：生産：Watson著； Ch
apter XIII, pages 469-479：タピオカ、アロールートおよびサゴのデンプン：
生産：Corbishley とMiller著; Chapter XIV, pages 479-490：ジャガイモデン
プン：生産と使用；Mitch著；Chapter XV, pages 491 to 506：小麦デンプン：
生産、改質および使用：KnightとOson著；Chapter XVI, pages 507-528：米デン
プン：生産と使用；RohmerとKiem著）」に記載されている。植物体からデンプン
を抽出する方法において通常使用される装置は、分離器、デカンター、ヒドロサ
イクロン、スプレー乾燥機および凍結床乾燥機である。

【００４５】 本発明の核酸分子が発現するために、本発明のトランスジェニック植物細胞お
よび植物は、野生型植物において合成されるデンプンと比較して、例えば物理化
学的特性について改質されているデンプンを合成する。 本発明の別の要件は、本発明の植物細胞、本発明の植物、本発明の増殖用材料
および本発明の方法から得られるデンプンである。 本発明の別の態様には、飲食物、包装材料または使い捨て製品を製造するため
の産業における本発明のデンプンの使用が包含される。 本発明のデンプンは、当業者に知られた方法により改質することができ、未改
質または改質された形態において、食物部門または非食物部門における種々の用
途に適する。

【００４６】 主に、本発明のデンプンの使用は、２つの重要な部門に分けられる。１つの部
門はデンプンの加水分解物、酵素的または化学的方法により得られる主にグルコ
ースおよびグルコース単位である。これらは、他の化学改質および発酵などの加
工の出発物質として使用される。ここで重要なものは加水分解法の簡易性および
費用のかからない設計であり、これは本質的にアミログルコシダーゼを酵素的に
使用して現在実施されている。実施可能なものは、より少ない酵素を使用するこ
とによる財政上の節約である。これは、デンプンの構造を変えること、例えば粒
子の表面積を増加させること、分枝度を低くして分解性をよくすることまたは使
用する酵素の接触性を制限する立体構造により引き起こされる。

【００４７】 本発明のデンプンをその重合構造のためにいわゆる生のデンプンとして使用し
うる他の部門は、さらに２つの用途に分けられる： １．飲食物産業 デンプンは、非常に多くの飲食物に対する伝統的な添加物であり、その機能は
本質的に水性添加物に結合すること、粘度を上昇させることまたはゲル度を上昇
させることである。重要な特徴は、粘弾性、吸着特性、膠化温度、粘度、増粘能
、溶解性、透明性、ゲル構造、熱安定性、剪断安定性、酸に対する安定性、劣化
する傾向、フィルム形成性、凍解安定性、消化性、および例えば無機または勇気
イオンとの複合体形成性である。 ２．非飲食物産業 重要な部門において、デンプンは助剤として種々の製造法にまたは添加剤とし
て産業製品に使用されている。助剤としてデンプンを使用する場合、特に紙およ
びボード産業を述べなくてはならない。デンプンは主に阻止目的に（支持固体）
、結合重点粒子および微粒子、補強剤としておよび感想のために作用する。さら
に、剛度、強度、音、手触り、光沢、滑らかさ、結合強度および表面についての
デンプンの有益な特徴が応用される。

【００４８】 2.1. 紙および板紙産業 紙の製造方法内には、４つの分野の用途に分けられる：即ち表面、コーティン
グ、貯蔵および噴霧である。消耗の８０％について、表面デンプンが最も多い量
のためであり、８％がコーティングデンプンとして７％がストックデンプンとし
て、および５％がスプレー用デンプンとして使用される。 表面処理についてデンプンに要求されることは、本質的に高い白色性、適合す
る粘度、高い安定な粘度、良好なフィルム形成性および低い粉塵形成性である。
コーティングに使用する場合、固体含量、適合する粘度、高い結合能おおび高い
含量親和性が重要な役割を果たす。添加剤として使用する場合の重要なことは、
紙繊維中における迅速で、均一、ロスのない分布、高い機械強度および完全な保
存性である。デンプンをスプレー部門に使用する場合、また適合する固体含量、
高い粘度および高い結合能が重要である。 2.2. 接着剤産業 デンプンの用途の重要な分野は接着剤産業であり、潜在的な用途は４つのサブ
部門に分けられる：純粋なデンプンペーストとしての使用、特別な化学物質で処
理したデンプンペーストにおける使用、合成樹脂またはポリマー分散体に対する
添加剤としてのデンプンの使用、および合成接着剤に対する増量剤としてのデン
プンの使用である。デンプンを基材とする接着剤の９０％が、段ボールの製造部
門、ペーパーサックおよびバックの製造部門、紙およびアルミニウムに対する複
合材料の製造部門、ボックスボードおよび封筒、切手などに対する糊付け接着剤
の製造部門において使用される。

【００４９】 2.3. 織物および織物保護製品産業 助剤および添加剤としてのデンプンの用途の重要な分野は織物および織物保護
製品の製造部門である。次の４つの用途分野は織物産業内で区別される： 糊付け剤としてのデンプンの使用、即ち滑らかにし、そして縫製時にかかる張力
からの保護材としてバーリング作用を強くするためおよび縫製時の摩擦に対する
抵抗性を高めるための助剤としての使用、織物仕上げ剤として、特に品質を低下
させる前処理、例えば漂白、乾燥などの後の仕上げ剤としてのデンプンの使用、
浸出を抑制するための含量ペーストの製造における濃厚剤としてのデンプンの使
用、並びに縫製のためのチェーン剤に対する添加剤としてのデンプンの使用であ
る。 2.4. 建設材料産業 建設材料におけるデンプンの使用には４つの用途分野がある。例は、石膏しっ
くいボードの製造であり、石膏スラリーに混合したデンプンを水と糊化させ、し
っくいのコアの表面に拡散させて、これがボードとコアを結合させる。用途の他
の分野は、レンダリングおよび鉱物繊維への混合剤である。レデーミックス・コ
ンクリートの場合、デンプン製品は結合を遅延させるために使用される。

【００５０】 2.5. 土質安定化 デンプン製品の限られた市場が、地質を人工的に乱す場合に水からの地質粒子
の一時的保護のために使用される土質安定剤の製造である。現在の認識によれば
、デンプンとポリマーエマルジョンの組合せの製品は浸食および硬化低減作用に
ついて既に使用されている製品と同じであるが、費用が顕著に少なくて済む。 2.6. 作物保護製品および肥料 デンプンを使用する１つの用途の分野は、製品の特別な特性を変化させるため
の作物保護製品にける使用である。故に、デンプンは作物保護製品および肥料の
湿潤性を向上させるため活性成分の放出を制御するため、液体活性成分、揮発性
活性成分および／または悪臭を有する活性成分を微結晶、安定性、形成性物質に
変換するため、不適合化合物を混合するため、並びに分解を減少させることによ
る作用の持続時間を延長させるために使用される。

【００５１】 2.7. 医薬、医学および化粧品産業 別の分野の用途は、医薬、医学および化粧品産業の部門である。医薬産業にお
いて、デンプンは錠剤の結合剤またはカプセル中の結合材を希釈するために使用
される。さらに、デンプンは飲み込んだ後に液体を吸収し、活性成分を放出する
様な程度まで短時間に膨張するため、デンプンは錠剤崩壊剤として使用される。
医学的潤滑粉末および創傷粉末は質の理由からデンプンを基材とする。化粧品部
門において、デンプンは、例えば香料およびサリチル酸などの粉末添加剤のキャ
リヤーとして使用される。デンプンの比較的広い分野の用途が歯磨き粉である。
2.8. 炭および練炭へのデンプンの添加 炭および練炭への添加剤としてのデンプンの用途の分野がある。デンプンの添
加すると、炭は多い量で凝集するか練炭化し、故に練炭が速く崩壊するのを防止
することができる。バーベキュー用炭の場合にはデンプンの添加量は４〜６％で
あり、カロライジングした炭の場合は０.１〜０.５％である。さらに、デンプン
を炭または練炭に添加した場合には有害物質の放出を顕著に減少させるために、
デンプンは結合剤として重要性を与える。

【００５２】 2.9. 鉱石スリックおよび石炭スリック加工 さらにデンプンは、凝集剤として鉱石スリックおよび石炭スリック加工に使用
することができる。 2.10. 鋳物助剤 別の用途分野は、鋳物助剤としての添加剤である。種々の鋳物加工には結合剤
で処理した砂で作られたコアを必要とする。今日主に使用されている結合剤は、
改質デンプン、多くの場合膨張性デンプンで処理したベントナイトである。 デンプンを添加するためには、流動性を上昇させて結合力を向上させる。加え
て、膨張性デンプンは、例えば冷水分散可能で、再水和可能で、用意に砂と混和
して、高い水結合能を有するなど、生産工学の要求を満たす。 2.11. ゴム産業における使用 ゴム産業において、デンプンは技術的および視覚的質の向上のために使用され
る。表面クラスターの向上、手触りおよび外観の向上が理由であり、このためデ
ンプンは冷却硬化の前にゴム剤の粘着性のゴム化した表面を散乱させ、またゴム
の印刷適性を向上させる。

【００５３】 2.12. 革代用品の製造[leather substitutes] 改質デンプンは、さらに革代用品の製造のために販売される。 2.13. 合成ポリマー中におけるデンプン ポリマー部門において、次の用途分野が考えられる：加工法におけるデンプン
分解産物の混入（デンプンは充填材であり、合成ポリマーとデンプンとは直接結
合しない）、またはポリマーの製造におけるデンプン分解産物の混入（デンプン
とポリマーは安定な結合を形成する）である。

【００５４】 純粋に充填材としてのデンプンの使用は、他タルクなどの物質と比較して競合
しない。しかし、デンプンの特別な特性が影響を与え、故に最終製品の特徴のス
ペクトルを顕著に変える場合はこれは異なる。この例は、ポリエチレンなどの熱
可塑性樹脂の加工におけるデンプン産物の使用である。ここで、デンプンと合成
ポリマーは、１：１の比で同時発現することで混合され、マスターバッチを与え
、慣用されるか高技術を用いてこれから種々の製品が粒状ポリエチレンと一緒に
製造される。ポリエチレンフィルム中にデンプンを組み込むことにより、中空体
の場合には物質の透過性が高まり、水蒸気の透過性が向上し、帯電防止作用が向
上し、粘着防止作用が向上し、そして水性インクの印刷適性が向上され得る。現
在の欠点は、透明性が不十分なこと、引張り強さの低下および弾性の低下に関す
る。

【００５５】 他の可能性は、ポリウレタンフォームにおけるデンプンの使用である。デンプ
ン誘導体を適合させ、加工工学を至適化することにより、合成ポリマーとデンプ
ンのヒドロキシル基との直接的な様式における反応を制御することが可能である
。これは、デンプンの使用により次の特性のスペクトルを有するポリウレタンフ
ィルムをもたらす：熱膨張率の低下、収縮作用の低下、圧力伸張の向上、水の取
り込みを変えずに水蒸気の透過性を増加させること、可燃性の低下および根本的
な抗張力の低下、可燃性部分のドロップ形成がないこと、ハロゲンを含まないこ
と、並びに経時変化の低下である。いまだ存在する欠点は、印刷適性の減少およ
び衝撃力の低下である。 製品開発は、いまやフィルムだけに限定されない。パット、スラブおよび皿な
ど５０％以上のデンプン含量の固体ポリマー製品もまた製造することができる。
さらに、デンプン／ポリマー混合物は、その生物分解性が高いことから有益であ
ると考えられる。

【００５６】 デンプングラフトポリマーは、その非常に高い水結合能のために極めて重要と
なっている。これらは、デンプンバックボーンと合成モノマーの側鎖を有する製
造物であり、主にフリーラジカル鎖の機構を用いてグラフトされる。現在入手可
能なデンプングラフトポリマーは、高い粘度と組み合わせて、デンプン１ｇあた
り水１０００ｇまでのよりよい結合および保持能により区別される。これらの超
吸収剤への用途分野は、近年大きく広がり、衛生部門ではおむつおよびパッド製
品、農業部門では例えば種子のコーティングである。 新規な、遺伝子工学により改質されたデンプンの用途ための確固たるものは、
一方では構造、含水量、タンパク質含量、脂質含量、繊維含量、灰／リン酸含量
、アミロース・アミロペクチンの比、分子量分布、分枝度、顆粒サイズ、顆粒の
形状および結晶化であり、他方では次の特性：粘弾性、吸着特性、膠化温度、粘
度、増粘力、溶解性、ゲル構造、透明性、熱安定性、剪断安定性、酸に対する安
定性、劣化する傾向、ゲル化、凍解安定性、複合体形成性、ヨウ素結合性、フィ
ルム形成性、接着力、酵素安定性、消化力および反応性に影響するという特徴で
ある。

【００５７】 組換え法により改質したデンプンの生産は、一方では、化学的または物理的は
変化による他の改質をもはや必要としないように、例えば植物由来のデンプンの
特性を変えることができる。他方では、組換え法により改質したデンプンはさら
に化学改質してもよく、これは上述の用途分野の一部においてさらなる改善をも
たらす。これらの化学的改質は主に知られている。これらは特に、温度および圧
力処理、有機酸または無機酸での処理、酵素的処理、酸化またはエステル化であ
り、例えばリン酸デンプン、硝酸デンプン、硫酸デンプン、キサントゲン酸デン
プン、酢酸デンプンおよびクエン酸デンプンの生成をもたらす。さらに、強酸の
存在下に一価または多価アルコールを用いてデンプンエーテルを製造し、デンプ
ンアルキルエーテル、Ｏ−アリールエーテル、ヒドロキシアルキルエーテル、Ｏ
−カルボキシメチルエーテル、Ｎ−含有デンプンエーテル、Ｐ−含有デンプンエ
ーテル、Ｓ−含有デンプンエーテル、架橋デンプンまたはデンプングラフトポリ
マーを得ることができる。 本発明でデンプンの使用は、産業用途、特に飲食物または包装材および使い捨
て製品の製造である。 実施例は本発明を説明するためのものであり、本発明を限定するものではない
。

【００５８】 使用した略語： ＢＥ 分枝酵素 ｂｐ 塩基対 ＩＰＴＧ イソプロピルβ−Ｄ−チオガラクトピラノシド ＳＳ 可溶性デンプン合成酵素 ＰＭＳＦ フェニルメチルスルホニルフロオリド

【００５９】 実施例にて用いた培地および溶液： Media and solutions used in the examples: ２０×ＳＳＣ １７５.３ｇ ＮａＣｌ ８８.２ｇ クエン酸ナトリウム ２回蒸留したＨ₂Ｏで１０００mlに １０Ｎ ＮａＯＨでｐＨ７.０に調整 緩衝液Ａ ５０mM Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８.０ ２.５mM ＤＴＴ ２mM ＥＤＴＡ ０.４mM ＰＭＳＦ １０％グリセロール ０.１％亜ジチオン酸ナトリウム 緩衝液Ｂ ５０mM Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７.６ ２.５mM ＤＴＴ ２mM ＥＤＴＡ 緩衝液Ｃ ０.５Ｍ クエン酸ナトリウム ｐＨ７.６ ５０mM Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ ７.６ ２.５mM ＤＴＴ ２mM ＥＤＴＡ １０×ＴＢＳ ０.２Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７.５ ５.０Ｍ ＮａＣｌ １０×ＴＢＳＴ １０×ＴＢＳ ０.１％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ ２０ 溶出緩衝液 ２５mM Ｔｒｉｓ ｐＨ８.３ ２５０mM グリシン 透析緩衝液 ５０mM Tｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７.０ ５０mM ＮａＣｌ ２mM ＥＤＴＡ １４.７mM β−メルカプトエタノール ０.５mM ＰＭＳＦ タンパク質緩衝液 ５０mM リン酸ナトリウム緩衝液 ｐＨ７.２ ｌＯmM ＥＤＴＡ ０.５mM ＰＭＳＦ １４.７mM β−メルカプトエタノール

【００６０】 次の方法を実施例において使用した： １. クローニング法 ベクター・ブルースクリプトII SK（Stratagene）をE. coliへのクローニング
に用いた。 植物の形質転換に、遺伝子コンストラクトをバイナリーベクターpBinAR Hyg（
Hofgen & Willmitzer, 1990, Plant Sci. 66：221-230）)およびpBinB 33-Hygに
クローン化した。 ２. 細菌株およびプラスミド E. coli株ＤＨ ５α（Bethesda Research Laboratories, Gaithersburgh, USA
）をブルースクリプトベクターpBluescript II KS（Stratagene）、そしてpBinA
R HygとpBinB 33 Hygコンストラクトに使用した。E. coli株XLI-Blueはインビボ
排除[exclusion] に用いた。

【００６１】 pBinAR プラスミドpBinARは、バイナリーベクタープラスミドpBin 19（Bevan, 1984,
Nucl. Acid Res. 12：8711-8721）の誘導体であり、次のように構築された：カ
リフラワーモザイクウィルスの35 Sプロモーターの6909〜7437ヌクレオチドを含
む529 bpの断片を、プラスミドpDH 51からEcoR I／Kpn I断片として単離（Pietr
zak等、1986）して、pUC 18のポリリンカーのEcoR IとKpn I開裂部位間に連結し
て、プラスミドpUC 18-35 Sとした。制限エンドクヌクレアーゼHind IIIおよびP
vu IIを用いて、プラスミドpAGV 40（Herrera-Estrella等、1983）からＴｉ−プ
ラスミドpTiACH 5（Gielen等、 1984, EMBO J.：835-846）のＤＮＡ（11749〜119
39ヌクレオチド）を含む192 bpの断片を単離した。SphIポリリンカーを用いてPv
u II制限酵素部位を導入した後、断片をpUC 18-35 SのSpH IおよびHind III制限
酵素部位間に連結し、これをプラスミドpA 7とした。さらに、35 Sプロモーター
およびｏｃｓターミネーターを含む全ポリリンカーはEcoR IとHind IIIを用いて
切り出し、適切に開裂させたpBin 19中に連結した。これは、植物発現ベクターp
BinARを生み出した（HofgenとWillmitzer, 1990）。

【００６２】 pBinB 33 Solanum tuberosum patatinのB 33遺伝子のプロモーター（Rocha-Sosa等、198
9）をDra I断片（-1512〜+14ヌクレオチド）として、Sst Iで開裂させ、Ｔ４−
ＤＮＡポリメラーゼを用いて平滑末端にしたベクターpUC 19に連結した。これに
よりプラスミドpUC 19-B 33が得られた。B 33プロモーターは、EcoR IとSma Iを
用いてこのプラスミドから切り出され、適切に開裂させたベクターpBinARに連結
した。これにより植物発現ベクターpBinB 33が得られた。 pBinAR-Hyg プラスミドpA 7（ベクターpBinARの記載を参照）から出発して、35 Sプロモー
ターを含むEcoR I-Hind III断片、ｏｃｓターミネーターおよび35 Sプロモータ
ーとｏｃｓターミネーターの間に位置するポリリンカーの部分を、適切に開裂さ
せたプラスミド pBin-Hygに導入した。 pBinB 33-Hyg プラスミドpBinB 33から出発して、B 33プロモーター、ポリリンカーの部分、
およびｏｃｓターミネーターを含むEcoR I-Hind III断片を切り出し、適切に開
裂させたベクターpBin-Hyg中に連結した。これにより植物発現ベクターpBinB 33
-Hygが得られた。

【００６３】 ３. Agrobacterium tumefaciensの形質転換 ＤＮＡは、Hofgen & Willmitzerの方法（1988, Nucleic Acids Res. 16：9877
）を用いる直接形質転換により導入した。形質転換したアグロバクテリアのプラ
スミドＤＮＡは、Birnboim & Dolyの方法（1979, Nucleic Acids Res. 7：1513-
1523）を用いて単離し、適切な制限酵素で開裂させ、次いでゲル電気泳動により
分析した。

【００６４】 ４. ジャガイモの形質転換 ジャガイモ植物体中へのプラスミドの形質転換（Solanum tuberosum L cv. De
siree, Vereinigte Saatzuchten eG, Ebstorf）は、Agrobacterium tumefaciens
株（Dietze等 (1995) in Gene Transfer to Plants, pp. 24-29, eds.；Potryku
s, I. とSpangenberg, G., Springer Veriag, Deblaere等、1985, Nucl. Acids
Res. 13：4777-4788）を用いて実施した。 メスで乱切した無菌のジャガイモ培養体の小さな葉１０枚は、２％ショ糖を補
足し、そして選択条件下で一晩培養して増殖させた５０mlのAgrobacterium tume
faciensを含む、１０mlのＭＳ培地（Murashige & Skoog (1962) Physiol. Plant
. 15: 473）に移した。培養液を３〜５分間穏やかに震揺した後、２日以上暗室
においてインキュベートした。カルスを誘導した後、次に１.６％グルコース、
５mg／mlナフチル酢酸、０.２mg／mlベンジルアミノプリン、２５０mg／mlクラ
ホラン［claforan］、５０mg／mlカナマイシンおよび０.８％バクトアガーを補
足したＭＳ培地に葉を移した。葉を２５℃そして３０００ Ｌｕｘにて１週間イ
ンキュベートした後、１.６％グルコース、１.４mg／mlゼアチンリポーズ、２０
mg／mlナフチル酢酸、２０mg／mlジベレリン酸、２５０mg／mlクラホラン、５０
mg／mlカナマイシンおよび０.８％バクトアガーを補足したＭＳ培地にこれらを
移し、茎を誘導した。

【００６５】 ５. 植物培養のレジュメ ジャガイモ植物は、次の条件下で温室においた： 明時間 １６時間、２５,０００ Ｌｕｘおよび２２℃にて 暗時間 ８時間、１５℃にて 大気湿度 ６０％ ６. ＤＮＡ断片の放射線標識 ＤＮＡ断片は、Boehringer Mannheim社製(ドイツ国)のＤＮＡランダムプライ
マーラベリングキットを用いてその製品説明に従って放射線標識した。 ７. デンプン合成酵素活性の測定 デンプン合成酵素活性の測定は、Denyer & Smith, 1992, Planta 186:609-617
に記載されるように、ＡＤＰ［¹⁴Ｃグルコース］からメタノール／ＫＣｌに不溶
性の産物中への¹⁴Ｃグルコースの取り込みを測定することにより行った。

【００６６】 ８. 未変性ゲル中における可溶性デンプン合成酵素の検出 未変性ゲル電気泳動により可溶性デンプン合成酵素の活性を検出するために、
ジャガイモ塊茎の組織試料は５０mM Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７.６、２mM DTT、
２.５mM ＥＤＴＡ、１０％グリセロールおよび０.４mM ＰＭＳＦ中にて加水分解
した。ゲル電気泳動は、MiniProtean II チャンバー（BioRAD）にて実施した。
１.５mm厚のゲルのモノマー濃度は７.５％（ｗ／ｖ）であり、２５mM Ｔｒｉｓ
−グリシン ｐＨ８.４をゲル緩衝液および泳動緩衝液として用いた。等量のタン
パク質抽出物を適用し、ゲル当たり１０mAにて２時間分離させた。 次いで活性ゲルは、５０mMトリシン−ＮａＯＨ ＰＨ８.５、２５mM酢酸カリウ
ム、２mM ＥＤＴＡ、２mM ＤＴＴ、１mM ＡＤＰ−グルコース、０.１％（ｗ／ｖ
）アミロペクチンおよび０.５Ｍクエン酸ナトリウム中でインキュベートした。
生成したグルカンをLugol溶液で染色した。

【００６７】 ９. デンプン分析 トランスジェニックジャガイモ植物により生成したデンプンは次の方法により
特徴付けした： ａ) ジャガイモ植物からのデンプン中のアミロース／アミロペクチン比の測定 デンプンは標準的方法によりジャガイモ植物から単離し、アミロース：アミロ
ペクチンの比は、Hovenkamp-Hermelink等（Potato Research 31 (1988) 241-246
）に記載の方法により測定した。 ｂ) リン酸含量の測定 ジャガイモデンプン中において、あるグルコース単位はＣ２、Ｃ３およびＣ６
位の炭素原子にてリン酸化されうる。グルコースのＣ６位におけるリン酸化度を
測定するために、１００mgのデンプンを１mlの０.７Ｍ ＨＣｌ（Nielsen等 (199
4) Plant Physiol. 105: 111-117）中で４時間、９５℃にて加水分解した。次い
で０.７Ｍ ＫＯＨで中和し、５０mlの加水分解物を可視化酵素試験に供してグル
コース−６−リン酸を測定した。試験バッチ（１００Ｍイミダゾール／ＨＣｌ；
１０Ｍ ＭｇＣｌ₂；０.４Ｍ ＮＡＤ；２単位のLeuconostoc mesteroidesのグル
コース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ：３０℃）の吸収における変化を３３４nm
にて観察した。 全リン酸は、Ames, 1996, Methods in Enzymology VIII, 115-118に記載され
るように測定した。

【００６８】 ｃ) アミロペクチン側鎖の分析 デンプン試料中の側鎖の分布および長さを分析するため、１mlの０.１％デン
プン溶液は、１００mMクエン酸ナトリウム緩衝液、ｐＨ３.５中において０.４Ｕ
のイソアミラーゼ（Megazyme International Ireland Ltd., Bray, Ireland）で
３７℃にて一晩消化した。 残りの分析は、特記しない場合、von Tomlinson等、(1997), Plant J. 11:31-
47,に記載されるように実施した。 ｄ) 顆粒サイズの測定 顆粒サイズは、Retsch GmbH社製, Germanyの“Lumosed”光沈降計を用いて測
定した。このため、０.２ｇのデンプンを約１５０mlの水に懸濁させ、すぐに測
定した。製造会社により適用されたプログラムは、平均デンプン密度を１.５ｇ
／ｌと仮定してデンプン顆粒の平均直径を計算した。

【００６９】 ｅ) 膠化特性 デンプンの膠化または粘度特性は、Viscograph E、Brabender OHG社製、ドイ
ツ国または Rapid Visco Analyser, Newport Scientific Pty Ltd., Investment
Support Group, Warriewood NSW 2102, オーストラリアを用いて記録した。Vis
cograph Eを使用する場合、４５０mlの水中のデンプン３０ｇの懸濁物を次の温
度プログラムに供した：３°／分にて５０℃から９６℃まで加熱し、３０分間維
持し、３°／分にて３０℃まで冷却し、再度３０℃で維持する。温度特性は、特
徴的な膠化特性を与えた。 Rapid Visco Analysers (RVA)を用いて測定する場合、２５mlの水中のデンプ
ン２ｇを、次の温度プログラムに供した：５０℃にて６０秒間懸濁し、１２°／
分にて５０℃から９５℃まで加熱し、２.５分間維持し、１２°／分にて９５℃
から５０℃で冷却し、そして再度２分間維持する。ＲＶＡ温度プロフィールは、
最大粘度および最小粘度と最終粘度との差（セットバック、Ｓｅｔ）（表１およ
び図１を参照）を生じた後、最大粘度（Ｍａｘ）、最終粘度（Ｆｉｎ）、膠化温
度、最小粘度（Ｔ）についての試験したデンプンのviscosimetricパラメータを
与えた。

【００７０】 ｆ) ゲル強度の測定 テキスチャー分析機［Texture Analyser］によりゲル強度を測定するために、
２ｇのデンプンを２５mlの水中に膠化させ（ＲＶＡ測定を参照）、空気を除去し
てシールした容器中において２５℃で１４時間貯蔵した。試料は、TA-XT 2 テキ
スチャー分析機（Stable Micro Systems）のプローブ（円形スタンプ）の底面に
マウントし、ゲル強度は次のパラメータ設定を用いて測定した： 試験速度 ０.５mm 浸透厚 ７mm 接触面積（スタンプの） １１３mm² 圧力／接触面積 ２ｇ

【００７１】 １０. グルコース、フルクトースおよびショ糖の測定 グルコース、フルクトースおよびショ糖の含量を測定するために、ジャガイモ
の塊茎の小さい塊茎部分（直径約１０mm）は液体窒素中で凍結し、０.５mlの１
０mM ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７.５；８０％（ｖ／ｖ）エタノール中で８０℃で３０分
間抽出した。可溶性画分を含有する上清を取り出して体積を測定した。上清は、
可溶性の糖の量を測定するために用いた。可溶性のグルコース、フルクトースお
よびショ糖の定量を次の組成のバッチにおいて行った： １００.０mM イミダゾール／ＨＣｌ、ｐＨ６.９ １.５mM ＭｇＣｌ₂ ０.５mM ＮＡＤＰ⁺ １.３mM ＡＴＰ １０〜５０μl 試料 １.０Ｕ グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ

【００７２】 バッチは、室温で５分間インキュベートした。次いで糖は、 １.０単位 酵母ヘキソキナーゼ（グルコースを測定）、 １.０単位 酵母ホスホグルコイソメラーゼ（フルクトースを測定）、およ
び １.０単位 酵母転化酵素（ショ糖を測定） を連続添加した後に３４０nmにおける吸光により分光光度計で測定した。

【００７３】

【実施例】

実施例１： ジャガイモα−グルコシダーゼをコードするｃＤＮＡ断片の単離 ジャガイモの腫瘍特異的ｃＤＮＡライブラリー（X ZAP II, Stratagene）の約
３×１０５プラーク形成単位（ｐｆＵｓ）を、製品説明書（Stratagene）に従っ
てインビボにおいて切り出し、ファージミドのストックをE.coli XL 1-MRF細胞
のトランスフェクションに用いた（製品説明書に従った）。プラスミドＤＮＡは
、約５×１０５のそのようなE. coli形質転換体から調製し（先に引用したSambr
ook等を参照）、そしてこれを用いてエレクトロポレーション法（BioRAD, 製品
説明書に従った）によりE. coli株KV 832／pACAGの形質転換した（Abel, G., 19
95, PhD Thesis in the Faculty of Biology of the Technical University of
Berlin）。 KV 832／pACAG形質転換体は、３７℃でＹＴ培地（５ｇ／ＬのＮａＣｌ、８ｇ
／Ｌのトリプトン、５ｇ／Ｌのイーストエクストラクト）において１％グルコー
スおよび１mM ＩＰＴＧを用いて培養した。プラスミドpACAGの存在について選択
するために、培地は１０mg／mlのクロラムフェニコールを含有した。陽性形質転
換体を選択するために、培地は１００mg／mlアンピシリンを含有した。

【００７４】 約１４時間増殖させた後、形質転換細胞のコロニーをヨウ素蒸気により染色し
た。顕著に弱く染色したコロニーのプラスミドＤＮＡは、Birnboim & Doly (197
9)に従って調製して、E.coli DH 5αの形質転換に用いた（既に引用のSambrook
等、1989を参照）。形質転換体のプラスミドＤＮＡを用いてＤＮＡの配列を決定
し、Seq ID No.１として特定した。 この方法で選択したプラスミドは、07.24.98にGerman Collection for Microo
rganisms in Brunswick, FRGにおいてDSM 12348の番号で寄託された。
、そしてCAMV 358プロモーターとｏｃｓターミネーターの間にあり、Solanum tu
berosum由来のβ−アミラーゼをコードし、Seq ID No.１として示される約1300
bpの長さのヌクレオチド配列のAsp 718／BamHI断片を含有している。 ジャガイモ組織の全ＲＮＡは、地下の成長点（約１cm）から標準的方法（Samb
rook等、1989）により調製した。 精製した全ＲＮＡは、ポリＡ＋ＲＮＡの調製（Oligotex、 mRNA精製キット、 製
品の説明書に従った）ための出発物質として用いた。５μgのこのポリＡ＋ＲＮ
ＡをｃＤＮＡライブラリー（X ZAPII, Stratagene）の作製に用いた。

【００７５】 この未増幅ｃＤＮＡライブラリー（プライマリーライブラリー）の約３×１０
５個のプラーク形成単位（pfus）は、プラークを取り上げるために製品の説明書
（Stratagene）に従ってプレート。プラークハイブリダイゼーションに用いた放
射線標識したプローブ（ランダムプライマーＤＮＡラベルキット、製品説明書に
従う）は、Genbank Accession No.T 76451の配列である。フィルターは、４２℃
にて４時間プレハイブリダイゼーション（緩衝液：５×ＳＳＣ、５×デンハルト
、１％ SDS、４０mM リン酸緩衝液、ｐＨ７.２、１００mg／Ｌニシン精巣ＤＮＡ
、２５％ホルムアミド）に供し、次に同じ温度で１４時間ハイブリダイゼーショ
ンに供した。ハイブリダイゼーション後、フィルターは、４２℃にて３×ＳＳＣ
、０.５％ ＳＤＳで３回洗浄し、オートラジオグラフィーに供した。ハイブリダ
イズしたプラークを選択し、単離したファージを製品説明書に従ってインビボ排
除に用いた。細菌のコロニーから得たプラスミドＤＮＡを単離し、配列分析に用
いて、そしてSeq ID No.１として特定した。 この方法で単離したプラスミドＤＮＡは、番号DSM 12347において１９９８年
７月２４日にDeutsche Samrnlung fur Mikroorganismen und Zeilkulturen (DSM
Z) Brunswick, FRG寄託した。

【００７６】 実施例２： プラスミドp 35 SαSS I-Hygの調製 ジャガイモSSS Iをコードする部分的なｃＤＮＡを含む1831 bpのAsp 718／Xba
l断片（Abel, G., (1995) PhD Thesis, Free University of Berlin）は、Asp 7
18とベクターpBinAR-HygのXba I制限酵素部位の間に、35 Sプロモーターに関し
てアンチセンスの向きで挿入した。

【００７７】 実施例３： プラスミドp 35 S-SS I-Kanの調製 ジャガイモSS IIをコードするｃＤＮＡを含む2384 bpのEcoR I断片（先に引用
のAbel、1995を参照）は平滑末端にして、予めSmaIで切断したベクターpBinARに
35 Sプロモーターに関してセンスの向きで導入した。

【００７８】 実施例４： プラスミドp 35 SαSS II-Kanの調製 ジャガイモのSS IIをコードする部分的なｃＤＮＡを含む1959 bpのSma I／Asp
718断片（Abel、1995、この中ではGBSS IIと称されている）は平滑末端にして
、予めSma Iで切断したベクターpBinARに35 Sプロモーターに関してアンチセン
スの向きで導入した。

【００７９】 実施例５： プラスミドpB 33-SS II-Hygの調製 ジャガイモのSS IIをコードするｃＤＮＡを含む2619 bpのSma I／Sal I断片（
先に引用のAbel、1995を参照）は、予めSma IとSal Iで切断したベクターpBinB
33-HygにB 33プロモーターに関してセンスの向きで導入した。

【００８０】 実施例６： プラスミドp 35 SαS III-Hygの調製 ジャガイモのSS IIIをコードするｃＤＮＡを含む4212 bpのAsp 718／Xba I断
片（Abel等、 1996, Plant J. 10(6)：981-991）は、Asp 718とベクターpBinAR-H
ygのXba I制限酵素部位の間に、35 Sプロモーターに関してアンチセンスの向き
で挿入した。

【００８１】 実施例７： プラスミドp 35 S-SS III-Kanの調製 ジャガイモのSS IIIをコードするｃＤＮＡを含む4191 bpのEcoR I断片（先に
引用のAbel等、 1996を参照）は平滑末端にして、予めSmaIで切断したベクターpB
inARに35 Sプロモーターに関してアンチセンスの向きで導入した。

【００８２】 実施例８： プラスミドpB 33αBEαS III-Kanの調製 ジャガイモのBE酵素をコードする部分的なｃＤＮＡを含む1650 bpのHind III
断片（Kossmann等、 1991, Mol. & Gen. Genetics 230(1-2)：39-44）は平滑末端
にして、そしてB 33プロモーターに関してアンチセンスの向きで、SmaIで切断し
たpBinB 33中に導入した。得られたプラスミドはBamH Iで開環させた。ジャガイ
モのSS III酵素をコードする部分的なｃＤＮＡを含む1362 bpのBamH I断片（先
に引用のAbel等、 1996を参照）は、B 33プロモーターに関してアンチセンスの向
きで再度、この制限酵素部位に導入した。

【００８３】 実施例９： プラスミドp 35 SαSS II-αSS III-Kanの調製 ジャガイモのSS IIをコードする部分的なｃＤＮＡを含む1546 bpのEcoRV／Hin
c II断片（先に引用のAbel等、 1995を参照）は、EcoRV／Hinc IIで切断したベク
ターpBluescript II KS中にクローン化して、次いでAsp 718／BamH Iで消化する
ことにより再度切り出し、そして35 Sプロモーターの向きに関してアンチセンス
の向きにて、同じ方法で消化したベクターpBinAR中に導入した。次に、ジャガイ
モのSS IIIをコードする部分的なｃＤＮＡを含む1356 bpのBamH I断片（先に引
用のAbel等、 1996を参照）は、ベクターpBInAR-αSS IIのBamH I制限酵素部位に
再度アンチセンスの向きで導入した。

【００８４】 実施例１０： プラスミドpB 33 αSS IαSS IαSS Ill-Kanの調製 ジャガイモのSS IをコードするｃＤＮＡを含む2384 bpのEcoR I断片（先に引
用のAbel、 1995を参照）は平滑末端にして、ベクターpBinB 33のSma I制限酵素
部位にB 33プロモーターに関してアンチセンスの向きで導入した。ジャガイモの
SS IIIをコードする部分的なｃＤＮＡを含む1362 bpのBamH I断片（先に引用のA
bel等、 1996を参照）は、生じたベクターのBamH I制限酵素部位にB 33プロモー
ターに関して再度アンチセンスの向きで導入した。

【００８５】 実施例１１： プラスミドp 35 SαSS II-Hygの調製 ジャガイモのSS IIをコードする部分的なｃＤＮＡを含む1959 bpのSma I／Asp
718断片は平滑末端にして、そしてpBinAR-HygのSma I制限酵素部位に35 Sプロ
モーターに関してアンチセンスの向きで導入した。

【００８６】 実施例１２： ジャガイモ細胞のゲノム中へのプラスミドの導入 実施例１〜１１にて述べたプラスミドは、個別におよび／または連続して、上
述のように形質転換したジャガイモ細胞を用いて、アグロバクテリアに導入した
。続いて、完全な植物体を形質転換した植物細胞から再生させた。

【００８７】 実施例１３： 改質デンプンの物理化学的特性の特徴付け 形質転換の結果として、トランスジェニック植物は、これにより合成されるデ
ンプンの物理化学的特性において変化を示した。これら植物により生成されるデ
ンプンは、野生型植物において合成されるデンプンとは、ＲＶＡおよびそのクロ
マトグラフィーにおける挙動により測定される、リン酸またはアミロース含量、
粘度または膠化特性について異なっている。

【００８８】

【表１】

【配列表】

【図面の簡単な説明】

【図１】 ＲＶＡ温度特性（粘度 対 時間［分］）の概略図である。粘弾性パラメータＴ
＝膠化温度、膠化開始時における温度；Ｍａｘは最大粘度を示し；Ｍｉｎは最小
粘度を示し；Ｆｉｎは最後の測定時における粘度を示し；ＳｅｔはＭｉｎとＦｉ
ｎの差（Δ）である（セットバック）。

【手続補正書】特許協力条約第３４条補正の翻訳文提出書

【提出日】平成１２年１１月１３日（２０００．１１．１３）

【手続補正１】

【補正対象書類名】明細書

【補正対象項目名】特許請求の範囲

【補正方法】変更

【補正内容】

【特許請求の範囲】

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｎ 5/10 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ Ｃ１２Ｐ 19/04 5/00 Ｃ Ｂ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，Ｅ Ａ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＥＥ， ＧＤ，ＧＥ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，Ｊ Ｐ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ， ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，Ｔ Ｒ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ Ｆターム(参考） 2B030 AA02 AB03 AD07 CA17 CA19 CD03 CD07 CD09 4B024 AA01 AA03 AA05 AA08 BA12 CA04 CA09 CA12 DA01 DA05 DA11 DA12 EA04 FA01 GA11 4B064 AF12 CA02 CA05 CA06 CA11 CC01 CC24 DA01 DA10 DA11 DA16 4B065 AA01X AA58X AA72X AA88X AA88Y AB01 AC14 BA02 CA22 CA31 CA41 CA44 CA53 CA55

Claims (25)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 ジャガイモのα−グルコシダーゼの機能を有するタンパク質
   をコードする核酸分子であって、 ａ) Seq ID NO.２に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする核
   酸分子、その誘導体または部分 ｂ) Seq ID No.１に示される核酸配列を有する核酸分子、その誘導体もしくは
   部分またはこれに相当するリボヌクレオチド配列 ｃ) ａ）またはｂ）の核酸分子とハイブリダイズ、好ましくは特異的にハイブ
   リダイズする核酸分子またはこれに相補的な核酸分子、および ｄ) そのヌクレオチド配列が遺伝子コードの縮重によりａ）、ｂ）またはｃ）
   の核酸分子の配列から逸脱する核酸分子 からなる群から選択される核酸分子。
2. 【請求項２】 ａ) 請求項１に記載のジャガイモのα−グルコシダーゼの
   機能を有するタンパク質をコードする核酸分子および ｂ) 分枝酵素、ＡＤＰグルコースピロホスホリラーゼ、顆粒結合デンプン合成
   酵素、可溶性デンプン合成酵素、脱分枝酵素、不均化酵素、プラスチドデンプン
   ホスホリラーゼ、Ｒ１−酵素、アミラーゼ、グルコシダーゼの機能を有するタン
   パク質を構成するＡ群から選択されるタンパク質をコードする１つ以上のヌクレ
   オチド配列、前記ヌクレオチド配列の部分または前記ヌクレオチド配列とハイブ
   リダイズする核酸分子 を含有する組換え核酸分子。
3. 【請求項３】 デオキシリボ核酸分子である、請求項１または２に記載の核
   酸分子。
4. 【請求項４】 ｃＤＮＡ分子である、請求項２に記載の核酸分子。
5. 【請求項５】 リボヌクレオチド分子である、請求項１に記載の核酸分子。
6. 【請求項６】 請求項１〜５のいずれか１項に記載の核酸分子とハイブリダ
   イズ、好ましくは特異的にハイブリダイズする核酸分子。
7. 【請求項７】 請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子を含むベクタ
   ー。
8. 【請求項８】 可溶性デンプン合成酵素IIIの機能を有するタンパク質をコ
   ードするヌクレオチド配列またはその部分がセンスまたはアンチセンスの向きで
   存在する、請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子を含むベクター。
9. 【請求項９】 Ａ群から選択される１つ以上のタンパク質をコードするヌク
   レオチド配列またはその部分がセンスまたはアンチセンスの向きで存在する、請
   求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子を含むベクター。
10. 【請求項１０】 Ａ群から選択される１つ以上のタンパク質をコードするヌ
    クレオチド配列が部分的にセンスの向きでそして部分的にアンチセンスの向きで
    存在する、請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子を含むベクター。
11. 【請求項１１】 制御エレメントに連結されて転写およびＲＮＡの合成を確
    実にし、場合により原核細胞または真核細胞にて転写可能である、請求項１〜６
    のいずれか１項に記載の核酸分子を含むベクター。
12. 【請求項１２】 請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子または請求
    項７〜１１のいずれか１項に記載のベクターで形質転換された宿主細胞または当
    該細胞由来の細胞。
13. 【請求項１３】 請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子または請求
    項７〜１１のいずれか１項に記載のベクターを植物細胞のゲノム中に組込む、改
    質デンプンを合成するトランスジェニック植物細胞の作成方法。
14. 【請求項１４】 請求項１３に記載の方法により入手可能な植物細胞。
15. 【請求項１５】 請求項１４に記載の細胞から完全な植物体を再生させる、
    改質デンプンを合成するトランスジェニック植物の作成方法。
16. 【請求項１６】 請求項１４に記載の植物細胞を含む植物。
17. 【請求項１７】 植物が有用植物である、請求項１６に記載の植物。
18. 【請求項１８】 植物がデンプン貯蔵性植物である、請求項１６または１７
    に記載の植物。
19. 【請求項１９】 植物が小麦、トウモロコシ、ジャガイモまたは米である、
    請求項１６〜１８のいずれか１項に記載の植物。
20. 【請求項２０】 請求項１６〜１９のいずれか１項に記載の植物の増殖用材
    料。
21. 【請求項２１】 請求項１４に記載の植物細胞、請求項１６〜１９のいずれ
    か１項に記載の植物または請求項２０に記載の増殖用材料を組込む、それ自体知
    られた方法によりデンプンを産生させる方法。
22. 【請求項２２】 請求項１２または１４に記載の細胞、請求項１６〜１９の
    いずれか１項に記載の植物、請求項２０に記載の増殖用材料または請求項２１に
    記載の方法から入手可能なデンプン。
23. 【請求項２３】 工業部門、好ましくは食品、包装材料または使い捨て物品
    の製造工業における、請求項２２に記載のデンプンの使用。
24. 【請求項２４】 トランスジェニック細胞、好ましくは細菌または植物細胞
    の作成のための、請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子または請求項７
    〜１１のいずれか１項に記載のベクターの使用。
25. 【請求項２５】 デンプン生産のための、請求項１４に記載の植物細胞、請
    求項１６〜１９のいずれか１項に記載の植物または請求項２０に記載の増殖用材
    料の使用。