JP2001523469A - 転写に基づく二本鎖ｄｎａ標的の増幅 - Google Patents
転写に基づく二本鎖ｄｎａ標的の増幅Info
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Abstract
(57)【要約】
本発明は、ＤＮＡ標的を増幅するための転写に基づく増幅方法に関する。本発明の方法によって、等温の転写に基づく増幅法が、二本鎖ＤＮＡを増幅するために提供される。二本鎖ＤＮＡを増幅するための本発明の方法は、前記二本鎖ＤＮＡを、前記二本鎖ＤＮＡに含まれる２つのＤＮＡ鎖の第１鎖の一部に相補的な配列を含み、そしてＲＮＡポリメラーゼによって認識されるプロモーターの配列をさらに含む少なくとも１つのオリゴヌクレオチド；前記二本鎖ＤＮＡに含まれる第２鎖の一部に相補的な配列を含むさらなるオリゴヌクレオチド；ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素；ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素；ＲＮアーゼＨ活性を有する酵素；ＲＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素と接触させる工程、およびこのようにして得られた反応混合物を、増幅が起こるのに十分な時間、適切な条件のもとで維持する工程を含む。本発明による方法は、小さなＤＮＡ分子（例えば、プラスミドＤＮＡ）を増幅するのに特に有用である。驚くべきことに、転写に基づく増幅は、制限酵素でＤＮＡを処理する必要がなく、あるいはさらに重要なことに、加熱することによって取り扱う前に鎖を分離する必要がなく、二本鎖ＤＮＡから始めることができる。等温の転写に基づく増幅反応とともに従来から使用されている試薬はすべて、二本鎖ＤＮＡを含有する出発材料に対して、それが一本鎖ＲＮＡであるかのように、単に使用することができる。本発明により、本質的には同じプロセスが、二本鎖ＤＮＡの等温の転写に基づく増幅に適用できることが今回見出された。本発明の方法は、病原性微生物の小さなＤＮＡ分子を検出するのに特に有用であり、このような検出によって診断が可能になる。特に、ＨＩＶ−１ウイルスの複製途中で形成されるＨＩＶ−１の環状ＤＮＡ分子は、本発明の方法によって検出することができる。そのようなＨＩＶ−１の環状ＤＮＡ分子の検出はウイルスの活性な複製を示しており、これは疾患の進行（すなわち、ＡＩＤＳの発症）と相関し得る。
Description
【０００１】 本発明は、ＤＮＡ標的を増幅するための転写に基づく増幅方法に関する。
【０００２】 核酸増幅法は、分子生物学および組換えＤＮＡ技術の分野で使用されている。
このような方法は、存在量が少なく、そして多くの場合には、広範囲の様々な他
の核酸（ＲＮＡおよびＤＮＡの両方）もまた存在する環境に存在する特定の核酸
配列のコピー数を増やすために使用されている。特に、核酸増幅法は、核酸の検
出または定量を容易にするために使用されており、例えば、感染性疾患、遺伝病
および様々なタイプのガンを診断するために重要である。核酸増幅法はまた、核
酸が微量で存在し得るサンプルが調べられる他の分野、例えば、法廷科学、考古
学または父親鑑定などの分野において用途が見出されている。
このような方法は、存在量が少なく、そして多くの場合には、広範囲の様々な他
の核酸（ＲＮＡおよびＤＮＡの両方）もまた存在する環境に存在する特定の核酸
配列のコピー数を増やすために使用されている。特に、核酸増幅法は、核酸の検
出または定量を容易にするために使用されており、例えば、感染性疾患、遺伝病
および様々なタイプのガンを診断するために重要である。核酸増幅法はまた、核
酸が微量で存在し得るサンプルが調べられる他の分野、例えば、法廷科学、考古
学または父親鑑定などの分野において用途が見出されている。
【０００３】 いくつかの核酸増幅技術が、異なる作用機構に基づいて知られている。核酸増
幅に関する１つの方法は、「ポリメラーゼ連鎖反応」（ＰＣＲ）として知られて
いる。これは、欧州特許出願ＥＰ２００３６２および同ＥＰ２０１１４８に記載
されている。ＰＣＲは、二本鎖ＤＮＡが標的として使用される周期的なプロセス
である。ＰＣＲプロセスの各サイクルは、二本鎖ＤＮＡの標的をその２つの相補
的な鎖に分けることによって開始される。それぞれの鎖に対して、プライマーが
アニーリングし、そして存在するＤＮＡポリメラーゼは、プライマーがアニーリ
ングしたＤＮＡ鎖に沿ってプライマーを伸長させ、その結果、２つの新しいＤＮ
Ａ二重鎖が形成される。反応混合物を加熱すると、このＤＮＡ二重鎖の鎖は再び
分離し、そして新しいＰＣＲサイクルが開始できる。従って、ＰＣＲプロセスに
よって、ＤＮＡ標的の多数のＤＮＡコピーが得られる。一本鎖ＲＮＡがＰＣＲの
所望する標的である場合、ＲＮＡは、最初に逆転写酵素によって二本鎖ＤＮＡに
変換されなければならない。
幅に関する１つの方法は、「ポリメラーゼ連鎖反応」（ＰＣＲ）として知られて
いる。これは、欧州特許出願ＥＰ２００３６２および同ＥＰ２０１１４８に記載
されている。ＰＣＲは、二本鎖ＤＮＡが標的として使用される周期的なプロセス
である。ＰＣＲプロセスの各サイクルは、二本鎖ＤＮＡの標的をその２つの相補
的な鎖に分けることによって開始される。それぞれの鎖に対して、プライマーが
アニーリングし、そして存在するＤＮＡポリメラーゼは、プライマーがアニーリ
ングしたＤＮＡ鎖に沿ってプライマーを伸長させ、その結果、２つの新しいＤＮ
Ａ二重鎖が形成される。反応混合物を加熱すると、このＤＮＡ二重鎖の鎖は再び
分離し、そして新しいＰＣＲサイクルが開始できる。従って、ＰＣＲプロセスに
よって、ＤＮＡ標的の多数のＤＮＡコピーが得られる。一本鎖ＲＮＡがＰＣＲの
所望する標的である場合、ＲＮＡは、最初に逆転写酵素によって二本鎖ＤＮＡに
変換されなければならない。
【０００４】 本発明は、異なる種類の核酸増幅法、すなわち、「転写に基づく増幅技術」に
関連する。この技術は、多数のＲＮＡコピーを、ＲＮＡポリメラーゼによって認
識されるプロモーターを含むテンプレートから転写することを含む。この方法に
よって、多数のＲＮＡコピーが、ＲＮＡポリメラーゼによって認識される機能的
なプロモーターを含むＤＮＡテンプレートから転写される。このコピーは再び標
的として使用され、そのようなコピーから大量のＤＮＡテンプレートが新しく得
られる。そのような方法は、Ｇｉｎｇｅｒａｓ他による国際特許公開ＷＯ８８／
１０３１５に、そしてＢｕｒｇ他による国際特許公開ＷＯ８９／１０５０に記載
されている。等温での転写に基づく増幅技術が、Ｄａｖｅｙ他による欧州特許Ｅ
Ｐ３２３８２２（ＮＡＳＢＡ法に関する）に、Ｇｉｎｇｅｒａｓ他による欧州特
許ＥＰ３７３９６０に、そしてＫａｃｉａｎ他による欧州特許ＥＰ４０８２９５
に記載されている。転写に基づく増幅反応はまた、熱に安定性な酵素を用いて行
うことができる。転写に基づく増幅は、通常、４１℃付近の温度で行われる。こ
のような熱に安定な酵素は、反応をより高い温度で行うことを可能にする。その
ような熱に安定な方法は、東洋紡績（株）の名で出願された欧州特許ＥＰ６８２
１２１に記載されている。
関連する。この技術は、多数のＲＮＡコピーを、ＲＮＡポリメラーゼによって認
識されるプロモーターを含むテンプレートから転写することを含む。この方法に
よって、多数のＲＮＡコピーが、ＲＮＡポリメラーゼによって認識される機能的
なプロモーターを含むＤＮＡテンプレートから転写される。このコピーは再び標
的として使用され、そのようなコピーから大量のＤＮＡテンプレートが新しく得
られる。そのような方法は、Ｇｉｎｇｅｒａｓ他による国際特許公開ＷＯ８８／
１０３１５に、そしてＢｕｒｇ他による国際特許公開ＷＯ８９／１０５０に記載
されている。等温での転写に基づく増幅技術が、Ｄａｖｅｙ他による欧州特許Ｅ
Ｐ３２３８２２（ＮＡＳＢＡ法に関する）に、Ｇｉｎｇｅｒａｓ他による欧州特
許ＥＰ３７３９６０に、そしてＫａｃｉａｎ他による欧州特許ＥＰ４０８２９５
に記載されている。転写に基づく増幅反応はまた、熱に安定性な酵素を用いて行
うことができる。転写に基づく増幅は、通常、４１℃付近の温度で行われる。こ
のような熱に安定な酵素は、反応をより高い温度で行うことを可能にする。その
ような熱に安定な方法は、東洋紡績（株）の名で出願された欧州特許ＥＰ６８２
１２１に記載されている。
【０００５】 欧州特許ＥＰ３２３８２２、同ＥＰ３７３９６０および同ＥＰ４０８２９５に
記載されているような方法は、等温の連続的な方法である。これらの方法の場合
、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性
、ＲＮアーゼ（Ｈ）活性およびＲＮＡポリメラーゼ活性の４つの酵素活性が、増
幅を達成するために必要である。これらの活性のいくつかは１つの酵素において
一緒にすることができ、従って、通常は、２つまたは３つの酵素が必要とされる
だけである。ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素は、ＤＮＡをＲ
ＮＡテンプレートから合成する酵素である。従って、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメ
ラーゼは、ＤＮＡをＤＮＡテンプレートから合成する。転写に基づく増幅反応に
おいて、ＡＭＶ（ニワトリ骨髄芽球症ウイルス）逆転写酵素またはＭＭＬＶ（モ
ロニーマウス白血病ウイルス）逆転写酵素などの逆転写酵素を使用することがで
きる。そのような酵素は、ＲＮＡおよびＤＮＡの両方に依存性するＤＮＡポリメ
ラーゼ活性を有するが、固有的なＲＮアーゼ活性もまた有する。さらに、大腸菌
のＲＮアーゼＨなどのＲＮアーゼは、転写に基づく増幅反応の反応混合物に加え
ることができる。
記載されているような方法は、等温の連続的な方法である。これらの方法の場合
、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性
、ＲＮアーゼ（Ｈ）活性およびＲＮＡポリメラーゼ活性の４つの酵素活性が、増
幅を達成するために必要である。これらの活性のいくつかは１つの酵素において
一緒にすることができ、従って、通常は、２つまたは３つの酵素が必要とされる
だけである。ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素は、ＤＮＡをＲ
ＮＡテンプレートから合成する酵素である。従って、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメ
ラーゼは、ＤＮＡをＤＮＡテンプレートから合成する。転写に基づく増幅反応に
おいて、ＡＭＶ（ニワトリ骨髄芽球症ウイルス）逆転写酵素またはＭＭＬＶ（モ
ロニーマウス白血病ウイルス）逆転写酵素などの逆転写酵素を使用することがで
きる。そのような酵素は、ＲＮＡおよびＤＮＡの両方に依存性するＤＮＡポリメ
ラーゼ活性を有するが、固有的なＲＮアーゼ活性もまた有する。さらに、大腸菌
のＲＮアーゼＨなどのＲＮアーゼは、転写に基づく増幅反応の反応混合物に加え
ることができる。
【０００６】 ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼは、多数のＲＮＡコピーを、ＲＮＡポリメラ
ーゼによって認識されるプロモーターを含むＤＮＡテンプレートから合成する。
ＲＮＡポリメラーゼの例は、大腸菌ならびにバクテリオファージＴ７、Ｔ３およ
びＳＰ６から得られるポリメラーゼである。転写に基づく増幅法により広く使用
されているＲＮＡポリメラーゼの例は、Ｔ７ポリメラーゼである。従って、多数
コピーのＲＮＡを転写するために使用されるテンプレートに組み込まれるプロモ
ーターは、Ｔ７プロモーターである。通常、プロモーターを含むテンプレートは
、標的配列を含む核酸から出発して作製しなければならない。そのような核酸は
、増幅反応の試験材料として使用される出発材料に存在し得る。出発材料に存在
する核酸は、通常、標的配列を、さらにより長い配列の一部として含有する。さ
らなる核酸配列が、標的配列の３’末端および５’末端の両方に存在していても
よい。増幅反応は、出発材料から得られたこのような核酸、上記の活性を一緒に
提供する適切な酵素類、および少なくとも１つのオリゴヌクレオチド（しかし、
通常は２つのオリゴヌクレオチド）を一緒にすることによって開始させることが
できる。これらのオリゴヌクレオチドの少なくとも１つは、プロモーターの配列
を含まなければならない。
ーゼによって認識されるプロモーターを含むＤＮＡテンプレートから合成する。
ＲＮＡポリメラーゼの例は、大腸菌ならびにバクテリオファージＴ７、Ｔ３およ
びＳＰ６から得られるポリメラーゼである。転写に基づく増幅法により広く使用
されているＲＮＡポリメラーゼの例は、Ｔ７ポリメラーゼである。従って、多数
コピーのＲＮＡを転写するために使用されるテンプレートに組み込まれるプロモ
ーターは、Ｔ７プロモーターである。通常、プロモーターを含むテンプレートは
、標的配列を含む核酸から出発して作製しなければならない。そのような核酸は
、増幅反応の試験材料として使用される出発材料に存在し得る。出発材料に存在
する核酸は、通常、標的配列を、さらにより長い配列の一部として含有する。さ
らなる核酸配列が、標的配列の３’末端および５’末端の両方に存在していても
よい。増幅反応は、出発材料から得られたこのような核酸、上記の活性を一緒に
提供する適切な酵素類、および少なくとも１つのオリゴヌクレオチド（しかし、
通常は２つのオリゴヌクレオチド）を一緒にすることによって開始させることが
できる。これらのオリゴヌクレオチドの少なくとも１つは、プロモーターの配列
を含まなければならない。
【０００７】 転写に基づく増幅法は、試験材料が一本鎖ＲＮＡである場合には特に有用であ
るが、一本鎖ＤＮＡまたは二本鎖ＤＮＡを試験材料として同様に使用することが
できる。転写に基づく増幅法が、標的配列の３’末端および５’末端の両方にさ
らなる配列を有する（「プラス」センスの）一本鎖ＲＮＡを含むサンプルで行わ
れる場合、先行技術において記載されているような方法により都合よく使用され
ている１対のオリゴヌクレオチドは下記のものからなる。
るが、一本鎖ＤＮＡまたは二本鎖ＤＮＡを試験材料として同様に使用することが
できる。転写に基づく増幅法が、標的配列の３’末端および５’末端の両方にさ
らなる配列を有する（「プラス」センスの）一本鎖ＲＮＡを含むサンプルで行わ
れる場合、先行技術において記載されているような方法により都合よく使用され
ている１対のオリゴヌクレオチドは下記のものからなる。
【０００８】 − 標的配列の３’末端にハイブリダイゼーションし得る第１のオリゴヌクレ
オチド（通常は、「プロモーターオリゴヌクレオチド」と呼ばれる）であって、
その５’末端に結合したプロモーター（好ましくは、Ｔ７プロモーター）の配列
を有するオリゴヌクレオチド（このオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーショ
ン部分は、試験材料として使用されたプラスＲＮＡと逆の極性を有する） − 標的配列の３末端を含む第２のオリゴヌクレオチド（「プライマー」）（
このオリゴヌクレオチドはプラスＲＮＡと同じ極性を有する）。
オチド（通常は、「プロモーターオリゴヌクレオチド」と呼ばれる）であって、
その５’末端に結合したプロモーター（好ましくは、Ｔ７プロモーター）の配列
を有するオリゴヌクレオチド（このオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーショ
ン部分は、試験材料として使用されたプラスＲＮＡと逆の極性を有する） − 標的配列の３末端を含む第２のオリゴヌクレオチド（「プライマー」）（
このオリゴヌクレオチドはプラスＲＮＡと同じ極性を有する）。
【０００９】 そのような１対のオリゴヌクレオチドは、適切な活性を有するすべての酵素な
らびに十分な量の必要なリボヌクレオチドおよびデオキシリボヌクレオチドと一
緒に、１つの反応混合物に一緒に入れられ、そして適切な条件（すなわち、適切
な緩衝液条件および適切な温度）のもとで十分な時間保たれるときに、等温の連
続的な増幅反応が始まる。図１には、この分野で知られている転写に基づく増幅
反応の一部について提案されている機構が示されている。この等温の連続的な増
幅プロセスは、周期的なプロセスとして図１に描かれている。しかし、実際には
、このプロセスのすべての工程は、すべての成分が反応容器中に存在しているの
で同じ温度で起こる。従って、事象の個々の順序は増幅プロセスの基礎となる考
えられる機構をより良く理解するために有益であるようにプロセスが描かれてい
るので、増幅中の反応混合物において実際に起こっていることを実際に反映して
いるとは考えられない。図１に示されているサイクルは、最初の量の一本鎖ＲＮ
Ａで始まると見なすことができる。サイクルに示されているＲＮＡはマイナスセ
ンスＲＮＡである。従って、ＲＮＡは、上記オリゴヌクレオチド対の第２のオリ
ゴヌクレオチドとハイブリダイゼーションすることができる。このマイナスＲＮ
Ａは、通常、増幅反応の出発材料においてはそのようなものとして存在しないが
、例えば、反応混合物のすべての成分が一緒にされている場合、そのようなオリ
ゴヌクレオチドおよび酵素との反応によって出発材料に存在するプラスＲＮＡか
ら得られる。
らびに十分な量の必要なリボヌクレオチドおよびデオキシリボヌクレオチドと一
緒に、１つの反応混合物に一緒に入れられ、そして適切な条件（すなわち、適切
な緩衝液条件および適切な温度）のもとで十分な時間保たれるときに、等温の連
続的な増幅反応が始まる。図１には、この分野で知られている転写に基づく増幅
反応の一部について提案されている機構が示されている。この等温の連続的な増
幅プロセスは、周期的なプロセスとして図１に描かれている。しかし、実際には
、このプロセスのすべての工程は、すべての成分が反応容器中に存在しているの
で同じ温度で起こる。従って、事象の個々の順序は増幅プロセスの基礎となる考
えられる機構をより良く理解するために有益であるようにプロセスが描かれてい
るので、増幅中の反応混合物において実際に起こっていることを実際に反映して
いるとは考えられない。図１に示されているサイクルは、最初の量の一本鎖ＲＮ
Ａで始まると見なすことができる。サイクルに示されているＲＮＡはマイナスセ
ンスＲＮＡである。従って、ＲＮＡは、上記オリゴヌクレオチド対の第２のオリ
ゴヌクレオチドとハイブリダイゼーションすることができる。このマイナスＲＮ
Ａは、通常、増幅反応の出発材料においてはそのようなものとして存在しないが
、例えば、反応混合物のすべての成分が一緒にされている場合、そのようなオリ
ゴヌクレオチドおよび酵素との反応によって出発材料に存在するプラスＲＮＡか
ら得られる。
【００１０】 上記方法の多くの変化体が先行技術に記載されている。図１に示されている反
応図式から、（上記の）第２のオリゴヌクレオチドは、マイナスＲＮＡに相補的
なＤＮＡ鎖の合成を開始させるプライマーとして作用していることが理解され得
る。プロモーター配列を含むオリゴヌクレオチドは、第２のオリゴヌクレオチド
の伸長生成物の３’末端にアニーリングすることができる。このオリゴヌクレオ
チドのプロモーター部分は、第２のオリゴヌクレオチドの伸長生成物を伸長させ
て二本鎖プロモーターを得るためのテンプレートとして作用する。プロモーター
オリゴヌクレオチドの３’末端は、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有す
る酵素（逆転写酵素）によって伸長し得るが、この酵素は必ずしも必要ではない
。プロモーター配列を含有するオリゴヌクレオチドのテンプレートとしての機能
を示すために、このテンプレートは、転写に基づく増幅に関連する先行技術のい
くつか（例えば、Ｇｅｎｐｒｏｂｅ Ｉｎｃ．の欧州特許ＥＰ４０８２９５）で
は「スプライステンプレート」と呼ばれている。そのような「スプライステンプ
レート」の３’末端はブロックすることさえできる。その場合、「スプライステ
ンプレート」がプライマーとして作用する能力は完全に除かれている。
応図式から、（上記の）第２のオリゴヌクレオチドは、マイナスＲＮＡに相補的
なＤＮＡ鎖の合成を開始させるプライマーとして作用していることが理解され得
る。プロモーター配列を含むオリゴヌクレオチドは、第２のオリゴヌクレオチド
の伸長生成物の３’末端にアニーリングすることができる。このオリゴヌクレオ
チドのプロモーター部分は、第２のオリゴヌクレオチドの伸長生成物を伸長させ
て二本鎖プロモーターを得るためのテンプレートとして作用する。プロモーター
オリゴヌクレオチドの３’末端は、ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有す
る酵素（逆転写酵素）によって伸長し得るが、この酵素は必ずしも必要ではない
。プロモーター配列を含有するオリゴヌクレオチドのテンプレートとしての機能
を示すために、このテンプレートは、転写に基づく増幅に関連する先行技術のい
くつか（例えば、Ｇｅｎｐｒｏｂｅ Ｉｎｃ．の欧州特許ＥＰ４０８２９５）で
は「スプライステンプレート」と呼ばれている。そのような「スプライステンプ
レート」の３’末端はブロックすることさえできる。その場合、「スプライステ
ンプレート」がプライマーとして作用する能力は完全に除かれている。
【００１１】 図１は、転写に基づく増幅に関して提案される図式を示す。この図式は、一本
鎖ＲＮＡ転写物の合成を含む。上記のように、増幅され得る核酸を含有する出発
材料は、この特定の形態の核酸を含有し得ない。出発材料は、特定の長さのマイ
ナスＲＮＡを含有しない。その理由は、図１に示されているような事象からなる
提案されたこのサイクルは、おそらくは、出発材料における核酸から最初のＲＮ
Ａ転写工程に至る一連の事象によって進むためである。上記に説明されているよ
うに、転写に基づく増幅法は、一本鎖ＲＮＡから始まる増幅に特に有用である。
オリゴヌクレオチドの１つ、すなわち、プロモーター配列を有するオリゴヌクレ
オチドは、次いで、この一本鎖ＲＮＡにアニーリングすることが考えられ、そし
てＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを有する酵素（逆転写酵素など）によって伸
長される。ＤＮＡ−ＲＮＡ二重鎖がこのようにして得られ、そのＲＮＡ鎖はＲＮ
アーゼＨによって消化することができる。もう一方のオリゴヌクレオチドは、残
ったＤＮＡ鎖にアニリーングし、そしてこの鎖をテンプレートして伸長する。従
って、ＲＮＡポリメラーゼに対する機能的な二本鎖プロモーターを含む二本鎖Ｄ
ＮＡテンプレートを作製することができ、そしてこの二本鎖ＤＮＡテンプレート
から最初の転写工程を行うことができる。このようにして得られた転写物は、図
１に示される提案された反応図式に入れることができる。実際には、サンプル中
の一本鎖ＲＮＡから始まるこの一連のすべての事象は、すべての成分を一緒にし
、そしてこの混合物を、酵素が十分に活性である適切な温度にすると直ちに起こ
る。この方法の実施者は、これらの工程のいずれかを達成するために介入する必
要はない。
鎖ＲＮＡ転写物の合成を含む。上記のように、増幅され得る核酸を含有する出発
材料は、この特定の形態の核酸を含有し得ない。出発材料は、特定の長さのマイ
ナスＲＮＡを含有しない。その理由は、図１に示されているような事象からなる
提案されたこのサイクルは、おそらくは、出発材料における核酸から最初のＲＮ
Ａ転写工程に至る一連の事象によって進むためである。上記に説明されているよ
うに、転写に基づく増幅法は、一本鎖ＲＮＡから始まる増幅に特に有用である。
オリゴヌクレオチドの１つ、すなわち、プロモーター配列を有するオリゴヌクレ
オチドは、次いで、この一本鎖ＲＮＡにアニーリングすることが考えられ、そし
てＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを有する酵素（逆転写酵素など）によって伸
長される。ＤＮＡ−ＲＮＡ二重鎖がこのようにして得られ、そのＲＮＡ鎖はＲＮ
アーゼＨによって消化することができる。もう一方のオリゴヌクレオチドは、残
ったＤＮＡ鎖にアニリーングし、そしてこの鎖をテンプレートして伸長する。従
って、ＲＮＡポリメラーゼに対する機能的な二本鎖プロモーターを含む二本鎖Ｄ
ＮＡテンプレートを作製することができ、そしてこの二本鎖ＤＮＡテンプレート
から最初の転写工程を行うことができる。このようにして得られた転写物は、図
１に示される提案された反応図式に入れることができる。実際には、サンプル中
の一本鎖ＲＮＡから始まるこの一連のすべての事象は、すべての成分を一緒にし
、そしてこの混合物を、酵素が十分に活性である適切な温度にすると直ちに起こ
る。この方法の実施者は、これらの工程のいずれかを達成するために介入する必
要はない。
【００１２】 しかし、転写に基づく増幅法を、標的配列が二本鎖ＤＮＡ（環状または線状の
いずれか）としてのみ含まれる出発材料について行わなければならない場合、当
業者は、出発材料に最初に存在する二本鎖ＤＮＡから一本鎖の核酸を得るための
方法を最初に行わなければ、何も増幅され得ないと予想しよう。当業者は、ＤＮ
Ａは二本鎖形態であるので、当業者のオリゴヌクレオチドはどれもＤＮＡにアニ
ーリングし得ないと予想している。転写に基づく増幅法に関する当業者の知識に
基づいて、この場合に行われる最も妥当なことは、ＤＮＡを分離するために（１
００℃までの）高い温度を加えることによって二本鎖のＤＮＡ鎖を分離し、そし
てオリゴヌクレオチドの一方をこの一本鎖の１つにアニーリングさせることであ
る。現在の転写に基づく増幅法により使用されている酵素は、そのような高い温
度に耐えることができず、そしてそのような場合、ＤＮＡ鎖が分離された後で加
えることできるだけである。オリゴヌクレオチドの１つが一本鎖ＤＮＡにアニリ
ーングして伸長する場合、二本鎖のＤＮＡが再び作製され、そして反応混合物は
、二本鎖ＤＮＡをその分離した鎖に再び融解するのに十分に高い高温に供しなけ
ればならない。再度ではあるが、このような高温は、存在する酵素を失活させ、
そして新しい酵素を、加熱工程が行われた後で再度加えなければならない。第２
のオリゴヌクレオチドを次に加えることができ、そして第１の工程で伸長した（
プロモーター）オリゴヌクレオチドから作製された鎖にアニーリングさせること
ができ、従って、二本鎖の機能的なプロモーターを含む二本鎖ＤＮＡテンプレー
トが得られ、このテンプレートからＲＮＡ転写の第１工程を行うことができる。
得られたＲＮＡ転写物は図１に示されているようなサイクルに入れることができ
、そしてプロセスはさらに等温的であり得る。
いずれか）としてのみ含まれる出発材料について行わなければならない場合、当
業者は、出発材料に最初に存在する二本鎖ＤＮＡから一本鎖の核酸を得るための
方法を最初に行わなければ、何も増幅され得ないと予想しよう。当業者は、ＤＮ
Ａは二本鎖形態であるので、当業者のオリゴヌクレオチドはどれもＤＮＡにアニ
ーリングし得ないと予想している。転写に基づく増幅法に関する当業者の知識に
基づいて、この場合に行われる最も妥当なことは、ＤＮＡを分離するために（１
００℃までの）高い温度を加えることによって二本鎖のＤＮＡ鎖を分離し、そし
てオリゴヌクレオチドの一方をこの一本鎖の１つにアニーリングさせることであ
る。現在の転写に基づく増幅法により使用されている酵素は、そのような高い温
度に耐えることができず、そしてそのような場合、ＤＮＡ鎖が分離された後で加
えることできるだけである。オリゴヌクレオチドの１つが一本鎖ＤＮＡにアニリ
ーングして伸長する場合、二本鎖のＤＮＡが再び作製され、そして反応混合物は
、二本鎖ＤＮＡをその分離した鎖に再び融解するのに十分に高い高温に供しなけ
ればならない。再度ではあるが、このような高温は、存在する酵素を失活させ、
そして新しい酵素を、加熱工程が行われた後で再度加えなければならない。第２
のオリゴヌクレオチドを次に加えることができ、そして第１の工程で伸長した（
プロモーター）オリゴヌクレオチドから作製された鎖にアニーリングさせること
ができ、従って、二本鎖の機能的なプロモーターを含む二本鎖ＤＮＡテンプレー
トが得られ、このテンプレートからＲＮＡ転写の第１工程を行うことができる。
得られたＲＮＡ転写物は図１に示されているようなサイクルに入れることができ
、そしてプロセスはさらに等温的であり得る。
【００１３】 上記から、転写に基づく増幅法を二本鎖ＤＮＡから始めることは冗長なプロセ
スであり得ることが明らかである。転写に基づく増幅法は、実施者が行わなけれ
ばならないいくつかの特定の作業を必要とする；サンプルは加熱および冷却を繰
り返し行わなければならず、そして酵素は各加熱工程の後で補給しなければなら
ない。
スであり得ることが明らかである。転写に基づく増幅法は、実施者が行わなけれ
ばならないいくつかの特定の作業を必要とする；サンプルは加熱および冷却を繰
り返し行わなければならず、そして酵素は各加熱工程の後で補給しなければなら
ない。
【００１４】 あるいは、出発材料中の二本鎖ＤＮＡは、増幅を開始する前にＲＮＡに転写す
ることができる。そのようなさらなる工程は、ポリメラーゼ結合部位とも呼ばれ
ているプロモーター配列の非存在下で二本鎖ＤＮＡをＲＮＡに転写する酵素（例
えば、大腸菌のＲＮＡポリメラーゼ）に基づくことができる。転写に基づく増幅
法によって二本鎖ＤＮＡの増幅を容易にするさらなる工程のそのようなプロセス
は、ＰＣＴ特許出願公開ＷＯ９６０２６６８に記載されている。この手順に記載
されているさらなる工程は、さらなる取り扱い工程を含むだけでなく、さらなる
成分、すなわち、大腸菌のＲＮＡポリメラーゼを使用することもまた含む。
ることができる。そのようなさらなる工程は、ポリメラーゼ結合部位とも呼ばれ
ているプロモーター配列の非存在下で二本鎖ＤＮＡをＲＮＡに転写する酵素（例
えば、大腸菌のＲＮＡポリメラーゼ）に基づくことができる。転写に基づく増幅
法によって二本鎖ＤＮＡの増幅を容易にするさらなる工程のそのようなプロセス
は、ＰＣＴ特許出願公開ＷＯ９６０２６６８に記載されている。この手順に記載
されているさらなる工程は、さらなる取り扱い工程を含むだけでなく、さらなる
成分、すなわち、大腸菌のＲＮＡポリメラーゼを使用することもまた含む。
【００１５】 今回、サンプルが二本鎖ＤＮＡを含む場合に、転写に基づく増幅プロセスが適
用できることが見出された。このプロセスは本質的に等温的であり、そしてこの
プロセスによってＤＮＡの配列を含む大量のＲＮＡ転写物が得られる。
用できることが見出された。このプロセスは本質的に等温的であり、そしてこの
プロセスによってＤＮＡの配列を含む大量のＲＮＡ転写物が得られる。
【００１６】 本発明の方法により、等温の転写に基づく増幅法が、二本鎖ＤＮＡを増幅する
ために提供される。二本鎖ＤＮＡを増幅するための本発明の方法は、前記二本鎖
ＤＮＡを、 − 前記二本鎖ＤＮＡに含まれる２つのＤＮＡ鎖の第１鎖の一部に相補的な配
列を含み、そしてＲＮＡポリメラーゼによって認識されるプロモーターの配列を
さらに含む、少なくとも１つのオリゴヌクレオチド、 − 前記二本鎖ＤＮＡに含まれる第２鎖の一部に相補的な配列を含む、さらな
るオリゴヌクレオチド、 − ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素、 − ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素、 − ＲＮアーゼＨ活性を有する酵素、 − ＲＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素 と接触させる工程、およびこのようにして得られた反応混合物を、増幅が起こる
のに十分な時間、適切な条件のもとで維持する工程を含む。
ために提供される。二本鎖ＤＮＡを増幅するための本発明の方法は、前記二本鎖
ＤＮＡを、 − 前記二本鎖ＤＮＡに含まれる２つのＤＮＡ鎖の第１鎖の一部に相補的な配
列を含み、そしてＲＮＡポリメラーゼによって認識されるプロモーターの配列を
さらに含む、少なくとも１つのオリゴヌクレオチド、 − 前記二本鎖ＤＮＡに含まれる第２鎖の一部に相補的な配列を含む、さらな
るオリゴヌクレオチド、 − ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素、 − ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素、 − ＲＮアーゼＨ活性を有する酵素、 − ＲＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素 と接触させる工程、およびこのようにして得られた反応混合物を、増幅が起こる
のに十分な時間、適切な条件のもとで維持する工程を含む。
【００１７】 本発明による方法は、小さなＤＮＡ分子（例えば、プラスミドＤＮＡ）を増幅
するのに特に有用である。
するのに特に有用である。
【００１８】 本発明の方法は、病原性微生物の小さなＤＮＡ分子を検出するのに特に有用で
あり、そのような検出により診断が可能になる。特に、ＨＩＶ−１ウイルスの複
製途中で形成されるＨＩＶ−１の環状ＤＮＡ分子は、本発明の方法によって検出
することができる。そのようなＨＩＶ−１の環状ＤＮＡ分子の検出はウイルスの
活性な複製を示しており、これは疾患の進行（すなわち、ＡＩＤＳの発症）と相
関し得る。別の適用において、本発明は、クラミジア種に天然に存在するプラス
ミドＤＮＡ分子を検出するために使用することができる。クラミジアのプラスミ
ドはいくつかのビルレンス因子をコードし得る。このことは、プラスミドの検出
は、クラミジア感染の存在を示すだけでなく、感染を引き起こすクラミジア細胞
がいくつかのビルレンス因子を保有することを示すこともまた意味する。
あり、そのような検出により診断が可能になる。特に、ＨＩＶ−１ウイルスの複
製途中で形成されるＨＩＶ−１の環状ＤＮＡ分子は、本発明の方法によって検出
することができる。そのようなＨＩＶ−１の環状ＤＮＡ分子の検出はウイルスの
活性な複製を示しており、これは疾患の進行（すなわち、ＡＩＤＳの発症）と相
関し得る。別の適用において、本発明は、クラミジア種に天然に存在するプラス
ミドＤＮＡ分子を検出するために使用することができる。クラミジアのプラスミ
ドはいくつかのビルレンス因子をコードし得る。このことは、プラスミドの検出
は、クラミジア感染の存在を示すだけでなく、感染を引き起こすクラミジア細胞
がいくつかのビルレンス因子を保有することを示すこともまた意味する。
【００１９】 他のさらなる適用において、本発明の方法は、ＤＮＡの（部分的な）分解およ
び単離を行った後のゲノム配列を増幅するために使用することができる。これは
広範囲に適用され、そのような適用の多くは、ゲノムＤＮＡにおける変異の検出
および同定と関連し得る。このような変異は、ガンの診断、遺伝性疾患の診断、
または疾患に対する素因の診断と関連し得る。
び単離を行った後のゲノム配列を増幅するために使用することができる。これは
広範囲に適用され、そのような適用の多くは、ゲノムＤＮＡにおける変異の検出
および同定と関連し得る。このような変異は、ガンの診断、遺伝性疾患の診断、
または疾患に対する素因の診断と関連し得る。
【００２０】 驚くべきことに、転写に基づく増幅は、制限酵素でＤＮＡを処理する必要がな
く、あるいはさらに重要なことに、加熱することによって取り扱う前に鎖を分離
する必要がなく、二本鎖ＤＮＡから始めることができる。等温の転写に基づく増
幅反応により従来から使用されている試薬はすべて、二本鎖ＤＮＡを含有する出
発材料について、それが一本鎖ＲＮＡであるかのように、単に使用することがで
きる。
く、あるいはさらに重要なことに、加熱することによって取り扱う前に鎖を分離
する必要がなく、二本鎖ＤＮＡから始めることができる。等温の転写に基づく増
幅反応により従来から使用されている試薬はすべて、二本鎖ＤＮＡを含有する出
発材料について、それが一本鎖ＲＮＡであるかのように、単に使用することがで
きる。
【００２１】 本発明による方法により使用される酵素は、転写に基づく増幅法に好適である
としてこの分野で知られている任意の酵素であり得る。反応条件は、一本鎖ＲＮ
Ａを増幅するために広く使用されている先行技術の転写に基づく増幅法と本質的
には同じである。本発明の場合、転写に基づく増幅反応がそれに従って機能する
と考えられる機構の知識に基づいて、本発明の方法が機能し得ないことを当業者
が予想したとしても、本質的には同じプロトコルを二本鎖ＤＮＡの等温的な転写
に基づく増幅に使用できることが今回見出された。
としてこの分野で知られている任意の酵素であり得る。反応条件は、一本鎖ＲＮ
Ａを増幅するために広く使用されている先行技術の転写に基づく増幅法と本質的
には同じである。本発明の場合、転写に基づく増幅反応がそれに従って機能する
と考えられる機構の知識に基づいて、本発明の方法が機能し得ないことを当業者
が予想したとしても、本質的には同じプロトコルを二本鎖ＤＮＡの等温的な転写
に基づく増幅に使用できることが今回見出された。
【００２２】 好ましい実施形態において、ＤＮＡは、増幅用オリゴヌクレオチドの存在下で
、しかし増幅用酵素の非存在下で６５℃に加熱される。酵素は、反応混合物が増
幅反応のインキュベーション温度（すなわち、４１℃）に冷却された後で反応物
に加えられるだけである。本発明の方法の別の実施形態において、ＤＮＡは、２
つの増幅用オリゴヌクレオチドが存在するもとで１００℃に加熱することができ
る。当業者は、オリゴヌクレオチドのアニーリングおよび伸長を行った後、新し
く生成したＤＮＡ鎖は、第２のオリゴヌクレオチドがアニーリングして伸長し得
る前に最初のＤＮＡテンプレートから分離しなければならないという事実のため
に、本発明の方法が機能することを依然として予想していない。ただ１つの加熱
工程を有するこの第２の好ましい実施形態において、酵素は、反応混合物が増幅
インキュベーション温度（すなわち、４１℃）に冷却された後で加えられるだけ
である。
、しかし増幅用酵素の非存在下で６５℃に加熱される。酵素は、反応混合物が増
幅反応のインキュベーション温度（すなわち、４１℃）に冷却された後で反応物
に加えられるだけである。本発明の方法の別の実施形態において、ＤＮＡは、２
つの増幅用オリゴヌクレオチドが存在するもとで１００℃に加熱することができ
る。当業者は、オリゴヌクレオチドのアニーリングおよび伸長を行った後、新し
く生成したＤＮＡ鎖は、第２のオリゴヌクレオチドがアニーリングして伸長し得
る前に最初のＤＮＡテンプレートから分離しなければならないという事実のため
に、本発明の方法が機能することを依然として予想していない。ただ１つの加熱
工程を有するこの第２の好ましい実施形態において、酵素は、反応混合物が増幅
インキュベーション温度（すなわち、４１℃）に冷却された後で加えられるだけ
である。
【００２３】 好ましくは、下記の２つのオリゴヌクレオチドが本発明による方法において使
用される。
用される。
【００２４】 − 二本鎖ＤＮＡの第１鎖において特定の配列にハイブリダイゼーションし得
る第１のオリゴヌクレオチド（通常は、「プロモータープライマー」と呼ばれる
）であって、その５’末端に結合したプロモーター（例えば、Ｔ７プロモーター
）の配列を有するオリゴヌクレオチド、および − 二本鎖ＤＮＡの第２鎖における特定の配列に対して十分に相補的な配列を
含む第２のオリゴヌクレオチド（「プライマー」）。 これらのオリゴヌクレオチドの配列は、それらが互いにハイブリダイゼーション
できないように選ばなければならない。
る第１のオリゴヌクレオチド（通常は、「プロモータープライマー」と呼ばれる
）であって、その５’末端に結合したプロモーター（例えば、Ｔ７プロモーター
）の配列を有するオリゴヌクレオチド、および − 二本鎖ＤＮＡの第２鎖における特定の配列に対して十分に相補的な配列を
含む第２のオリゴヌクレオチド（「プライマー」）。 これらのオリゴヌクレオチドの配列は、それらが互いにハイブリダイゼーション
できないように選ばなければならない。
【００２５】 二本鎖ＤＮＡを上記の２つのオリゴヌクレオチドおよび適切な酵素と接触させ
ることによって、二本鎖ＤＮＡを構成する２つの鎖を分離するためのいくつかの
鎖分離工程を全く必要としない転写に基づく増幅プロセスを行うことができるこ
とは驚くべきことである。本発明の方法によって、二本鎖ＤＮＡの配列の一部で
ある標的配列を含む多数の線状ＲＮＡコピーが得られる。
ることによって、二本鎖ＤＮＡを構成する２つの鎖を分離するためのいくつかの
鎖分離工程を全く必要としない転写に基づく増幅プロセスを行うことができるこ
とは驚くべきことである。本発明の方法によって、二本鎖ＤＮＡの配列の一部で
ある標的配列を含む多数の線状ＲＮＡコピーが得られる。
【００２６】 実施例 緒言 下記の実施例は、本発明の機構および有用性を明らかにする。実施例は限定的
ではなく、そしてそのように見なすべきではない。下記の実施例において使用さ
れている酵素は、ニワトリ骨髄芽球症ウイルス（ＡＭＶ）逆転写酵素、Ｔ７ＲＮ
Ａポリメラーゼおよび大腸菌ＲＮアーゼＨである。類似する活性を有する他の酵
素および他の起源から得られる酵素を使用することができる。異なるプロモータ
ー特異性を有する他のＲＮＡポリメラーゼもまた使用するのに好適であり得る。
ではなく、そしてそのように見なすべきではない。下記の実施例において使用さ
れている酵素は、ニワトリ骨髄芽球症ウイルス（ＡＭＶ）逆転写酵素、Ｔ７ＲＮ
Ａポリメラーゼおよび大腸菌ＲＮアーゼＨである。類似する活性を有する他の酵
素および他の起源から得られる酵素を使用することができる。異なるプロモータ
ー特異性を有する他のＲＮＡポリメラーゼもまた使用するのに好適であり得る。
【００２７】 下記の実施例において使用されたＮＡＳＢＡ反応条件は、２０μｌの容量にお
いて、４０ｍＭのｔｒｉｓ（ｐＨ８．５）、４２ｍＭのＫＣｌ（または、後の実
験では７０ｍＭのＫＣｌ）、１２ｍＭのＭｇＣｌ２、５ｍＭのＤＴＴ、１ｍＭの
各ｄＮＴＰ、２ｍＭのｒＡＴＰ、２ｍＭのｒＣＴＰ、２ｍＭのｒＵＴＰ、１．５
ｍＭのｒＧＴＰ、０．５ｍＭのＩＴＰ、０．２μＭの各オリゴヌクレオチド、３
７５ｍＭのソルビトール、０．１０５ｇ／ｌのＢＳＡ、６．４ユニットのＡＭＶ
−ＲＴ、３２ユニットのＴ７ＲＮＡポリメラーゼ、０．０８ユニットの大腸菌Ｒ
ＮアーゼＨ、および指定量のテンプレートであった。使用したオリゴヌクレオチ
ド配列は例示であり、そして他の配列がこれらの標的配列および他の標的配列に
対して使用されるので限定的ではない。
いて、４０ｍＭのｔｒｉｓ（ｐＨ８．５）、４２ｍＭのＫＣｌ（または、後の実
験では７０ｍＭのＫＣｌ）、１２ｍＭのＭｇＣｌ２、５ｍＭのＤＴＴ、１ｍＭの
各ｄＮＴＰ、２ｍＭのｒＡＴＰ、２ｍＭのｒＣＴＰ、２ｍＭのｒＵＴＰ、１．５
ｍＭのｒＧＴＰ、０．５ｍＭのＩＴＰ、０．２μＭの各オリゴヌクレオチド、３
７５ｍＭのソルビトール、０．１０５ｇ／ｌのＢＳＡ、６．４ユニットのＡＭＶ
−ＲＴ、３２ユニットのＴ７ＲＮＡポリメラーゼ、０．０８ユニットの大腸菌Ｒ
ＮアーゼＨ、および指定量のテンプレートであった。使用したオリゴヌクレオチ
ド配列は例示であり、そして他の配列がこれらの標的配列および他の標的配列に
対して使用されるので限定的ではない。
【００２８】 実施例１ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＨＩＶ−１ｇａｇ１ Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＨＩＶ−１ｇａｇ１ Ｐ１：
【００２９】
【化１】
【００３０】 ＨＩＶ−１ｇａｇ１ Ｐ２：
【００３１】
【化２】
【００３２】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。これらのプライマーは、増幅の
ために、ＨＩＶ−１ゲノムのｇａｇ領域の一部を標的とする。増幅用試験物とし
て、ＨＩＶ−１ゲノムのｇａｇ領域を含むプラスミドＤＮＡのｐＵＣｐ２４を種
々の添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に
記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃へ
の冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった
。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして
、３２Ｐで標識したＨＩＶ−１ｇａｇプローブの５’ＧＡＡ ＴＧＧ ＧＡＴ
ＡＧＡ ＧＴＧ ＣＡＴ ＣＣＡ ＧＴＧ ＣＡＴ Ｇ３’とハイブリダイゼー
ションした。陽性の結果を、増幅において、１０５分子の添加プラスミドＤＮＡ
の感度で得ることができる。同じ結果を、６５℃のインキュベーションを用いる
ことなく同じプロセスで得ることができる。
ために、ＨＩＶ−１ゲノムのｇａｇ領域の一部を標的とする。増幅用試験物とし
て、ＨＩＶ−１ゲノムのｇａｇ領域を含むプラスミドＤＮＡのｐＵＣｐ２４を種
々の添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に
記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃へ
の冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった
。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして
、３２Ｐで標識したＨＩＶ−１ｇａｇプローブの５’ＧＡＡ ＴＧＧ ＧＡＴ
ＡＧＡ ＧＴＧ ＣＡＴ ＣＣＡ ＧＴＧ ＣＡＴ Ｇ３’とハイブリダイゼー
ションした。陽性の結果を、増幅において、１０５分子の添加プラスミドＤＮＡ
の感度で得ることができる。同じ結果を、６５℃のインキュベーションを用いる
ことなく同じプロセスで得ることができる。
【００３３】 実施例２ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＨＰＶ１６ Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＨＰＶ１６ Ｐ１：
【００３４】
【化３】
【００３５】 ＨＰＶ１６ Ｐ２：
【００３６】
【化４】
【００３７】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。これらのプライマーは、増幅の
ために、ＨＰＶ１６ゲノムの一部を標的とする。増幅用試験物として、ＨＰＶ１
６ゲノムの全長を含有するプラスミドＤＮＡのｐＨＰＶ１６を種々の添加量で使
用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に記載されている
酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃への冷却、酵素の
添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった。増幅物をアガ
ロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして、３２Ｐで標識
したＨＰＶ１６プローブの５’ＡＧＴ ＡＣＡ ＡＡＴ ＡＴＧ ＴＣＡ ＴＴ
Ａ ＴＧＴ ＧＣ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅にお
いて、１ｐｇの添加プラスミドＤＮＡの感度で得ることができる。
ために、ＨＰＶ１６ゲノムの一部を標的とする。増幅用試験物として、ＨＰＶ１
６ゲノムの全長を含有するプラスミドＤＮＡのｐＨＰＶ１６を種々の添加量で使
用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に記載されている
酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃への冷却、酵素の
添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった。増幅物をアガ
ロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして、３２Ｐで標識
したＨＰＶ１６プローブの５’ＡＧＴ ＡＣＡ ＡＡＴ ＡＴＧ ＴＣＡ ＴＴ
Ａ ＴＧＴ ＧＣ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅にお
いて、１ｐｇの添加プラスミドＤＮＡの感度で得ることができる。
【００３８】 実施例３ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 トラコーマクラミジア天然プラスミド Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 トラコーマクラミジア天然プラスミド Ｐ１：
【００３９】
【化５】
【００４０】 トラコーマクラミジア天然プラスミド Ｐ２：
【００４１】
【化６】
【００４２】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。これらのプライマーは、増幅の
ために、トラコーマクラミジア（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ
）の天然プラスミドの一部を標的とする。増幅用試験物として、トラコーマクラ
ミジアのプラスミド調製物を、トラコーマクラミジアの封入形成単位（ＩＦＵ）
の量に関して種々の添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミド
ＤＮＡを緒言に記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への
加熱、４１℃への冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーシ
ョンからなった。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上
にブロットして、３２Ｐで標識したトラコーマクラミジア天然プラスミドのプロ
ーブの５’ＣＧＴ ＧＣＧ ＧＧＧ ＴＴＡ ＴＣＴ ＴＡＡ ＡＡＧ ＧＧＡ
Ｔ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅において、０．０
１ＩＦＵに対応するプラスミドＤＮＡの量で得ることができる。
ために、トラコーマクラミジア（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｔｉｓ
）の天然プラスミドの一部を標的とする。増幅用試験物として、トラコーマクラ
ミジアのプラスミド調製物を、トラコーマクラミジアの封入形成単位（ＩＦＵ）
の量に関して種々の添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミド
ＤＮＡを緒言に記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への
加熱、４１℃への冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーシ
ョンからなった。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上
にブロットして、３２Ｐで標識したトラコーマクラミジア天然プラスミドのプロ
ーブの５’ＣＧＴ ＧＣＧ ＧＧＧ ＴＴＡ ＴＣＴ ＴＡＡ ＡＡＧ ＧＧＡ
Ｔ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅において、０．０
１ＩＦＵに対応するプラスミドＤＮＡの量で得ることができる。
【００４３】 実施例４ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 組織因子 Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 組織因子 Ｐ１：
【００４４】
【化７】
【００４５】 組織因子 Ｐ２：
【００４６】
【化８】
【００４７】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。これらのプライマーは、増幅の
ために、ヒト組織因子遺伝子の一部を標的とする。増幅用試験物として、組織因
子遺伝子の一部を含有するプラスミドＤＮＡのｐＵＣ１３−ＴＦを種々の添加量
で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に記載されて
いる酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃への冷却、酵
素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった。増幅物を
アガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして、３２Ｐで
標識した組織因子プローブの５’ＧＴＴ ＣＡＧ ＧＡＡ ＡＧＡ ＡＡＡ Ｃ
ＡＧ ＣＣＡ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅において
、１０３分子の添加プラスミドＤＮＡの感度で得ることができる。
ために、ヒト組織因子遺伝子の一部を標的とする。増幅用試験物として、組織因
子遺伝子の一部を含有するプラスミドＤＮＡのｐＵＣ１３−ＴＦを種々の添加量
で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に記載されて
いる酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃への冷却、酵
素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった。増幅物を
アガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして、３２Ｐで
標識した組織因子プローブの５’ＧＴＴ ＣＡＧ ＧＡＡ ＡＧＡ ＡＡＡ Ｃ
ＡＧ ＣＣＡ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅において
、１０３分子の添加プラスミドＤＮＡの感度で得ることができる。
【００４８】 実施例５ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＣＤ１４ Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＣＤ１４ Ｐ１：
【００４９】
【化９】
【００５０】 ＣＤ１４ Ｐ２：
【００５１】
【化１０】
【００５２】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。これらのプライマーは、増幅の
ために、ヒトＣＤ１４遺伝子の一部を標的とする。増幅用試験物として、ＣＤ１
４遺伝子の一部を含有するプラスミドＤＮＡのｐπＨ３Ｍを種々の添加量で使用
した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に記載されている酵
素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃への冷却、酵素の添
加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった。増幅物をアガロ
ースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして、３２Ｐで標識し
たＣＤ１４プローブの５’ＣＣＡ ＴＧＧ ＡＧＣ ＧＣＧ ＣＧＴ ＣＣＴ３
’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅において、１０３分子の
添加プラスミドＤＮＡの感度で得ることができる。
ために、ヒトＣＤ１４遺伝子の一部を標的とする。増幅用試験物として、ＣＤ１
４遺伝子の一部を含有するプラスミドＤＮＡのｐπＨ３Ｍを種々の添加量で使用
した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に記載されている酵
素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃への冷却、酵素の添
加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった。増幅物をアガロ
ースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして、３２Ｐで標識し
たＣＤ１４プローブの５’ＣＣＡ ＴＧＧ ＡＧＣ ＧＣＧ ＣＧＴ ＣＣＴ３
’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果を、増幅において、１０３分子の
添加プラスミドＤＮＡの感度で得ることができる。
【００５３】 実施例６ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 アクチン Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 アクチン Ｐ１：
【００５４】
【化１１】
【００５５】 アクチン Ｐ２：
【００５６】
【化１２】
【００５７】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。括弧内のヌクレオチドは「縮重
した」位置を示し、括弧内のヌクレオチドのいずれかが存在し得る。これらのプ
ライマーは、増幅のために、ヒトアクチン遺伝子の一部を標的とする。増幅用試
験物として、ＲＮアーゼＡで処理した全ヒトゲノムＤＮＡ（市販のヒト胎盤ＤＮ
Ａ）を４００ｎｇの添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミド
ＤＮＡを緒言に記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への
加熱、４１℃への冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーシ
ョンからなった。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上
にブロットして、３２Ｐで標識したアクチンプローブの５’ＣＴＧ ＴＣＣ Ａ
ＣＣ ＴＴＣ ＣＡＧ ＣＡＧ ＡＴＧ ＴＧＧ Ａ３’とハイブリダイゼーシ
ョンした。陽性の結果は、増幅用試験物としてヒトゲノムＤＮＡを使用して示さ
れ得る。
した」位置を示し、括弧内のヌクレオチドのいずれかが存在し得る。これらのプ
ライマーは、増幅のために、ヒトアクチン遺伝子の一部を標的とする。増幅用試
験物として、ＲＮアーゼＡで処理した全ヒトゲノムＤＮＡ（市販のヒト胎盤ＤＮ
Ａ）を４００ｎｇの添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミド
ＤＮＡを緒言に記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への
加熱、４１℃への冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーシ
ョンからなった。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上
にブロットして、３２Ｐで標識したアクチンプローブの５’ＣＴＧ ＴＣＣ Ａ
ＣＣ ＴＴＣ ＣＡＧ ＣＡＧ ＡＴＧ ＴＧＧ Ａ３’とハイブリダイゼーシ
ョンした。陽性の結果は、増幅用試験物としてヒトゲノムＤＮＡを使用して示さ
れ得る。
【００５８】 実施例７ 高温での変性工程を用いることなくＮＡＳＢＡによるＤＮＡ標的の増幅の可能
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＣＭＶエキソン４ Ｐ１：
性を明らかにするために、下記の２つのオリゴヌクレオチドを、上記のＮＡＳＢ
Ａ反応成分と組み合わせて使用した。 ＣＭＶエキソン４ Ｐ１：
【００５９】
【化１３】
【００６０】 ＣＭＶエキソン４ Ｐ２：
【００６１】
【化１４】
【００６２】 Ｐ１のＴ７プロモーター部分を斜体字で示す。これらのプライマーは、増幅の
ために、ＣＭＶゲノムの一部を標的とする。増幅用試験物として、ＣＭＶ感染Ｈ
ＥＬ細胞の全ＤＮＡをＲＮアーゼＡで処理して、このＤＮＡを、０．１細胞と等
価な添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に
記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃へ
の冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった
。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして
、３２Ｐで標識したＣＭＶプローブの５’ＣＴＧ ＣＴＡ ＴＧＴ ＣＴＴ Ａ
ＧＡ ＧＧＡ ＧＡ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果は、増幅用
試験物として、０．１細胞当量のＤＮＡを使用して示される。
ために、ＣＭＶゲノムの一部を標的とする。増幅用試験物として、ＣＭＶ感染Ｈ
ＥＬ細胞の全ＤＮＡをＲＮアーゼＡで処理して、このＤＮＡを、０．１細胞と等
価な添加量で使用した。使用したプロトコルは、標的プラスミドＤＮＡを緒言に
記載されている酵素以外の上記成分と混合すること、６５℃への加熱、４１℃へ
の冷却、酵素の添加、および４１℃で９０分間のインキュベーションからなった
。増幅物をアガロースゲルで電気泳動し、ナイロンフィルター上にブロットして
、３２Ｐで標識したＣＭＶプローブの５’ＣＴＧ ＣＴＡ ＴＧＴ ＣＴＴ Ａ
ＧＡ ＧＧＡ ＧＡ３’とハイブリダイゼーションした。陽性の結果は、増幅用
試験物として、０．１細胞当量のＤＮＡを使用して示される。
【配列表】
【図１】 図１は、転写に基づく増幅の反応図式である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 スフツキンク，アドリアナ・フレデリーケ オランダ国、エヌ・エル−3991・アー・ヘ ー・ホーテン、ハーベル−オールト・10 Ｆターム(参考） 4B063 QA01 QA19 QQ10 QQ42 QR08 QR14 QR31 QR56 QR62 QR75 QS16 QS24 QS34 QX07 4B064 AF27 CA02 CA12 CA21 CC24 DA13 DA14 DA15
Claims (9)
- 【請求項１】 二本鎖ＤＮＡを増幅するための方法であって、前記二本鎖Ｄ
ＮＡを、 − 前記二本鎖ＤＮＡに含まれる２つのＤＮＡ鎖の第１鎖の一部に相補的な配
列を含む少なくとも１つのオリゴヌクレオチド、前記オリゴヌクレオチドはＲＮ
Ａポリメラーゼによって認識されるプロモーターの配列をさらに含み、 − 前記二本鎖ＤＮＡに含まれる第２鎖の一部に相補的な配列を含む、さらな
るオリゴヌクレオチド、 − ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素、 − ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素、 − ＲＮアーゼＨ活性を有する酵素、 − ＲＮＡポリメラーゼ活性を有する酵素 と接触させる工程、および このようにして得られた反応混合物を、増幅が起こるのに十分な時間、適切な条
件のもとで維持する工程 を含む方法。 - 【請求項２】 前記二本鎖ＤＮＡはプラスミドＤＮＡまたはゲノムＤＮＡで
ある、請求項１に記載の方法。 - 【請求項３】 逆転写酵素が使用される、請求項１または２に記載の方法。
- 【請求項４】 前記逆転写酵素がＡＭＶ逆転写酵素である、請求項３に記載
の方法。 - 【請求項５】 前記プロモーター配列がＴ７プロモーター配列であり、そし
て使用されるＲＮＡポリメラーゼがＴ７ＲＮＡポリメラーゼである、請求項１〜
４のいずれか１項に記載の方法。 - 【請求項６】 異なるＲＮアーゼＨ酵素が使用される、請求項１〜５のいず
れか１項に記載の方法。 - 【請求項７】 前記ＲＮアーゼＨが大腸菌のＲＮアーゼＨである、請求項１
〜６のいずれか１項に記載の方法。 - 【請求項８】 前記ＤＮＡが、前記オリゴヌクレオチドの存在下で６５℃に
加熱され、その後に増幅用酵素が加えられる、請求項１〜７のいずれか１項に記
載の方法。 - 【請求項９】 前記ＤＮＡが、前記の２つの増幅用オリゴヌクレオチドの存
在下、１００℃に一回加熱される、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
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