HUT67138A - Attenvated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof - Google Patents

Attenvated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof Download PDF

Info

Publication number
HUT67138A
HUT67138A HU9302369A HU9302369A HUT67138A HU T67138 A HUT67138 A HU T67138A HU 9302369 A HU9302369 A HU 9302369A HU 9302369 A HU9302369 A HU 9302369A HU T67138 A HUT67138 A HU T67138A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
prv
virus
vaccine
animal
gpx
Prior art date
Application number
HU9302369A
Other languages
English (en)
Other versions
HU9302369D0 (en
Inventor
Mark D Cochran
Original Assignee
Syntro Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Syntro Corp filed Critical Syntro Corp
Publication of HU9302369D0 publication Critical patent/HU9302369D0/hu
Publication of HUT67138A publication Critical patent/HUT67138A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/245Herpetoviridae, e.g. herpes simplex virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/20Antivirals for DNA viruses
    • A61P31/22Antivirals for DNA viruses for herpes viruses
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983Viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5252Virus inactivated (killed)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16722New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16734Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S424/00Drug, bio-affecting and body treating compositions
    • Y10S424/815Viral vaccine for porcine species, e.g. swine

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

A találmány tárgyát élő vírus-vakcinában alkalmazható, sertésekben álveszettség megbetegedés ellen védettséget létrehozó legyengített álveszettség vírus képezi. A találmány kiterjed az említett vírus olyan alkalmazására, amely lehetővé teszi a vírussal vakcinázott és a vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatok megkülönböztetését.
Vírus DNS izolálására és ennek az izolált DNS-nek bakteriális plazmidokba való klónozására szolgáló eljárások nagymértékben kibővítették a vírus vakcinák készítésének rendelkezésre álló lehetőségeit. A találmány szerinti megoldás klónozott vírus DNS szekvenciák inszertálásokkal, deléciókkal és egyszeri vagy többszörös báziscserékkel való módosítását foglalja magába. A módosított DNS ezután újból a vírusgenomba inszertálható abból a célból, hogy a vírus kórokozó képességét elveszítse. Az így kapott élő vírust ezután vakcinában alkalmazhatjuk a gazdaállatban immunválasz kiváltására, valamint az állatban az adott megbetegedés ellen védettség létrehozására.
A találmány szerinti megoldásnál alkalmazhatók például az állati vírusok egy csoportját alkotó Herpetoviridae vagy herpeszvírusok. Ezek a vírusok genetikai anyagként 100 000-200 000 bázispárból álló DNS-t tartalmaznak. Lényeges, hogy genomjukban néhány olyan régiót azonosítottak, amelyek in vitro sejttenyészetben nélkülözhetőek a vírus replikációjához. Az ezekben a régiókban található DNS módosítása csökkentheti a vírus kórokozó képességét, vagyis legyengítheti a vírust. A timidin-kináz gén inaktiválása következtében például a humán Herpes simplex vírus (13) és a sertés álveszettség vírus. (14) elveszti kórokozó képességét.
Az ismétlődő régió eltávolítása következtében a humán Herpes simplex vírus elveszti kórokozó képességét (16, 17). A Marék-féle betegség vírusában izoláltak egy ismétlődő régiöt, amely vírus okozta daganatképzéssel kapcsolatos (18). A saimiri herpeszvírus egy szakasza hasonlóképpen kapcsolatba hozható daganatképzéssel (19). Az ismétlődő régió egy részének eltávolítása az álveszettség vírus kórokozó tulajdonságának elvesztéséhez vezet (4 877 737 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás, bejelentés: 1989 október 31.). Egyes természetben előforduló vakcina törzsekben kimutatták, hogy az álveszettség vírus egy szakasza a deletálódott (7, 15), és azt találták, hogy ezek a deléciók legalább részben felelőssé tehetők ezen törzsek kórokozó képességének elvesztéséért.
Általában elfogadott az a nézet, hogy a herpeszvírusok a genom különböző részein tartalmaznak nem létfontosságú (nonessential) DNS régiókat és ezen régiók módosítása legyengített vírust eredményezhet, ily módon vakcina készítésére alkalmas, kórokozó képességüket elvesztett törzseket kaphatunk. A vírus legyengítettségének mértéke lényeges a vírus vakcinaként való alkalmazhatóságának szempontjából. Túlságosan legyengített vírust eredményező deléciók olyan vakcinához vezetnek, amely nem vált ki megfelelő immunválaszt. Ismeretes ugyan néhány olyan deléció, amely legyengített vírust hoz létre, a deléciók célravezető kombinációja azonban nem könnyen tekinthető át.
Az álveszettség vírus természetes gazdaszervezete a sertés, amelyben a fertőzés rendszerint nem szembetűnő, de láz, görcsök és bénulás is jellemezheti. Az álveszettség vírus megfertőzi a szarvasmarhát, birkát kutyát, macskát, rókát, valamint a nyércet is, amelyekben a fertőzés rendszerint a gazdaállat pusztulásához vezet. Az álveszettség vírus fertőzés fő látható tünete a heves viszketés, amely általában a gazdaállat érintett részének öncsonkítását eredményezi. Az agyvelőgyulladás tünetei, heves izgatottság, görcsrohamok és bénulás előzik meg a pusztulást, amely a klinikai tünetek felléptét követő néhány napon belül bekövetkezik.
A sertés álveszettség vírus által okozott betegség a közigazgatási hatóságok komoly gondját képezi világszerte. Az Amerikai Egyesült Államokban fertőzött állományból származó sertés csak vágóhidaknak adható el. Az amerikai egyesült államokbeli Mezőgazdasági Minisztérium az álveszettség felszámolására egy mentesítési programot dolgozott ki. A fajlagos megkülönböztető vakcinák és azokat kísérő diagnosztikai vizsgáló módszerek kifejlesztését megelőzően minden álveszettség ellen vakcinázott állatot fertőzöttként kezeltek, és azokkal azonos szabályozó korlátozásoknak vetettek alá. A megkülönböztető vakcinák megjelenésével a rendelkezéseket úgy módosították, hogy lehetővé vált a vakcinázott, nem fertőzött sertések államok közötti szállítása, feltéve, hogy a megkülönböztető vakcina és a diagnosztikai vizsgáló módszer kombinációját a Szövetségi Álveszettség Mentesítési Együttműködési Program [Cooperative State-Federal Pseudorabies Eradication Program, Federal Register, 55. kötet, No. 90, 19245-19253 (1990, május 9.)] alkalmazhatónak ítélte.
• « ·
- 5 A megkülönböztető vakcinák előállítására tett próbálkozások az álveszettség vírus (PRV) valamelyik glükoprötéinjenek deléciójára összpontosítottak. Elméletileg a diagnosztikai markerként kiválasztott glükoproteinnek a következő sajátságokkal kell rendelkeznie: (1) a glükoprotein és az azt kódoló gén ne legyen létfontosságú a fertőző vírus termelődéséhez; (2) a glükoprotein erős és hosszantartó választ váltson ki az állatban; (3) a glükoprotein ne járuljon hozzá a védettséget létrehozó immunválasz kialakulásához. Három glükoprotein, a gD, a gH és a gB(II) (25) nem felelnek meg az első szempontnak. Mindegyiknek van egy olyan megfelelője a Herpes simplex vírusban (HSV), amely létfontosságúnak bizonyult (20). A g63 egy kis mennyiségben jelenlevő glükoprotein, amelytől nem várható erős szerológiai válasz kiváltása (8) . A glll glükoproteinről kimutatták, hogy a neutralizáló ellenanyagok (10) és a sejt közvetítette immunválasz (21) célpontjaként jelentősen hozzájárul a védettséget létrehozó immunitás kialakulásához. A gl ugyancsak neutralizáló ellenanyagok célpontja (22), és valószínűleg szerepet játszik a védettséget létrehozó immunitás kialakulásában. Csupán a gpX felel meg mindhárom elméleti szempontnak (25) .
Jelenleg öt USDA által engedélyezett, módosított élő megkülönböztető PRV vakcina áll rendelkezésre. Ezek a PRV/Marker (SyntroVet Incorporated), a Tolvid (Upjohn), a PRV vakcina (Boehringer Ingelheim), a PRVac (SmithKline Beecham Animál Health) és az OmniMark (Fermenta Animál Health) vakcinák. A fenti vakcinák mindegyikét kísérő diagnosztikai vizsgáló módszer három PRV glükoprotein (gpX, gl vagy glll) egyikére irányul. Mindegyik esetben a diagnosztikus glükoproteint kódoló gént géntechnikai úton módosították, vagy kimutatták róla, hogy természetben előforduló vírusban deletálódott. A PRV/Marker és a Tolvid vakcinákban a gpX a deletált diagnosztikai marker, melyet géntechnikai eljárásokkal módosítottak. A PRV vakcina és a PRVac vakcinák esetében egy természetben előforduló vírusból spontán deletálódott a gl. Az OmniMark vakcinában a glll géntechnikai módosítás következtében deletálódott.
Az álveszettség mentesítési program előrehaladtával nagy értéke lenne egy megerősítő diagnosztikai vizsgáló eljárásnak. Az egyes diagnosztikus antigének eltérő antigenitásának, valamint az egyes állatok immunválasza természetének köszönhetően a diagnosztikus antigén hatására termelődött ellenanyagszint széles határok között változhat. Egy második diagnosztikai markert tartalmazó megerősítő vizsgálatban alkalmazható vakcina nagyon értékes lenne. Két olyan vírus törzset írtak le, amelyekben szerológiai megkülönböztetés céljából két glükoprotein tartalmaz deléciót. Ezek közül az egyiket Kit és munkatársai írták le (4 711 850 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás) és tartalmaz egy géntecnikai úton létrehozott deléciót a glll génben, valamint egy természetes úton létrejött deléciót a gl génben. Amint azt fent ismertettük, mindkét glükoprotein neutralizáló ellenanyagok célpontját képezi, a glll ezenkívül a sejt közvetítette immunitás célpontja is. Mindkét fontos antigén deléciójától az várható, hogy a vakcina hatékonyságát veszélyezteti. A második, Post és munkatársai által ismertetett vírust (25) géntechnikai eljárással állították elő, és a gpX, valamint a gl génekben hordoz deléciót. A szerzők arra a következtetésre jutottak, hogy a vírus hatékonysága lényegesen csökkent a csak gpX glükoproteinben deletált vírussal összehasonlítva. Összefoglalva, a gyakorlat jelenlegi állása szerint egy olyan vírus, amely mind a gpX, mind a gl génekben deléciót tartalmaz, nem lenne vakcinaként hatékony.
A jelenleg rendelkezésre álló termékeket felülmúló vakcinának a következő sajátosságokkal kell rendelkeznie: (1) ne okozzon klinikai tüneteket 3-4 napos malacokban; (2) 95 %-os védettséget hozzon létre bármely életkorú sertésben; (3) tegye lehetővé a szerológiai megkülönböztetést a vadtípusú vírussal fertőzött állatoktól; és (4) tegye lehetővé egy megerősítő diagnosztikai vizsgáló eljárás kidolgozását. A találmány tárgyát ilyen, az eddigieket felülmúló vakcina képezi, amelyet nem várt módon a gpX, valamint a gl gének meghatározott régióinak deletálásával hoztunk létre.
A találmány tárgyát tehát legyengített, genetikai módosítással létrehozott S-PRV-155 elnevezésű álveszettség vírus (ATCC nyilvántartási szám: VR 2311) képezi. A találmány kiterjed a legyengített, genetikai módosítással létrehozott
S-PRV-155 elnevezésű álveszettség vírus hatásos immunizáló mennyiségét és egy megfelelő hordozóanyagot tartalmazó vakcinára. A találmány tárgyát képezi továbbá egy az álveszettség vírus által okozott betegség ellen állatok immunizálására szolgáló eljárás, amely abban áll, hogy a találmány szerinti vakcina hatásos immunizáló mennyiségét adagoljuk az állatnak. Végül, a találmány kiterjed egy a találmány szerinti vakcinával vakcinázott, valamint a természetben előforduló vad-típusú álveszettség vírussal fertőződött állat megkülönböztetésére szolgáló eljárásra.
A mellékelt 1. ábra az ISU S62/26 PRV törzs jellemzőit mutatja. A PRV genomiális DNS-ének ábrája a különösen hoszszú, a belső ismétlődő, a különösen rövid és a terminális ismétlődő régióit mutatja. Jelöltük a BamHI, az Xbal és a Hindin enzimek restrikciós térképét. A fragmenseket számozással vagy betűkkel jelöltük csökkenő sorrendben. A különösen rövid régiót további részletek bemutatása céljából kinagyítottuk. Néhány gén lokalizációját ugyancsak jelöltük; ezek a glükoprotein II (gll) (24), a glükoprotein III (glll) (23), a timidin-kináz (TK), a közvetlen korai gén (IE), a protein kináz (PK) (3), a glükoprotein X (gpX) (4), a glükoprotein 50 (g50) (5), a glükoprotein 63 (g63) (6) és a glükoprotein I (gl) (6) .
A 2. ábra a 263-58.18 Homológia Vektorba inszertált DNS részletes ismertetése. Az ábra a 263-58.18 plazmidba iktatott DNS fragmensek irányultságát mutatja. Az egyes fragmensek eredetét a táblázatban jelöltük. Szintén jelöltük az egyes fragmensek közötti kapcsolódásnál található szekvenciákat. Mindegyik kapcsolódás esetében ismertettük a fragmensek előállításánál felhasznált restrikciós helyeket, valamint a fragmensek összekapcsolásához felhasznált szintetikus linker szekvenciákat. A mesterséges linker szekvenciákat vastag aláhúzással jelöltük. Ugyancsak megadtuk néhány
- 9 gén kódoló szakaszának, valamint szabályozó elemnek a helyzetét. A kővetkező» jelöléseket alkalmaztuk: a zárójelben levő számok () az 1. ábrán megadott hivatkozáshoz viszonyított aminosavakra vonatkoznak, a szögletes zárójelben [] levő restrikciós helyek pedig az előállítás során megszüntetett hasítási helyek maradékait jelölik. A következő rövidítéseket alkalmaztuk: protein kináz (PK), glükoprotein X (gpX)ι glükoprotein 50 (g50), glükoprotein 63 (g63), álveszettség vírus (PRV), és poliadenilációs jel (pA).
A 3. ábra a 416-09.2H homológia vektorba inszertált DNS részletes ismertetése. A diagram a 416-09.2H plazmidba iktatott DNS fragmensek irányultságát mutatja. Az egyes fragmensek eredetét a táblázatban jelöltük. Szintén jelöltük az egyes fragmensek közötti kapcsolódásnál található szekvenciákat. Mindegyik kapcsolódás esetében ismertettük a fragmensek előállításánál felhasznált restrikciós helyeket, valamint a fragmensek összekapcsolásához felhasznált szintetikus linker szekvenciákat. A mesterséges linker szekvenciákat vastag aláhúzással jelöltük. Ugyancsak megadtuk néhány gén kódoló szakaszának, valamint szabályozó elemnek a helyzetét. A következő jelöléseket alkalmaztuk: a zárójelben levő számok () az 1. ábrán megadott hivatkozáshoz viszonyított aminosavakra vonatkoznak, a szögletes zárójelben [] levő restrikciós helyek pedig az előállítás során megszüntetett hasítási helyek maradékait jelölik. A következő rövidítéseket alkalmaztuk: protein kináz (PK), glükoprotein X (gpX), glükoprotein 50 (g50), glükoprotein 63 (g63) , álveszettség vírus (PRV), és poliadenilációs jel (pA) .
• · · · • · ♦ ·*·· · · ···· ···· ·· ·· ·· ♦· · · ·
- 10 A 4. ábra a 436-86.32K homológra vektorba inszertált DNS részletes ismertetése. Az ábra a 436-86.32K plazmidba iktatott DNS fragmensek irányultságát mutatja. Az egyes fragmensek eredetét a táblázatban jelöltük. Szintén jelöltük az egyes fragmensek közötti kapcsolódásnál található szekvenciákat. Mindegyik kapcsolódás esetében ismertettük a fragmensek előállításánál felhasznált restrikciós helyeket, valamint a fragmensek összekapcsolásához felhasznált szintetikus linker szekvenciákat. A mesterséges linker szekvenciákat vastag aláhúzással jelöltük. Ugyancsak megadtuk néhány gén kódoló szakaszának, valamint szabályozó elemnek a helyzetét. A következő jelöléseket alkalmaztuk: a zárójelben levő számok () az 1. ábrán megadott hivatkozáshoz viszonyított aminosavakra vonatkoznak, a szögletes zárójelben [] levő restrikciós helyek pedig az előállítás során megszüntetett hasítási helyek maradékait jelölik. A következő rövidítéseket alkalmaztuk: protein kináz (PK), glükoprotein X (gpX), glükoprotein 50 (g50), glükoprotein I (gl), álveszettség vírus (PRV) , humán cytomegalovírus (HCMV) és poliadenilációs jel (pA) .
A találmány tárgyát legyengített, géntechnikai úton előállított, S-PRV-155 elnevezésű álveszettség vírus képezi (ATCC nyilvántartási szám: VR 2311). Az S-PRV-155 álveszettség vírust a Mikroorganizmusok Szabadalmi Célból Történő Kölcsönös Letétbe Helyezéséről szóló Budapesti Egyezmény szerint 1991 február 12-én letétbe helyeztük az American Type Culture Collection (ATCC) Szabadalmi Lerakatában (12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20852 U.S.A.) ATCC VR • · • · ·
- 11 2311 nyilvántartási szám alatt. A találmány kiterjed a legyengített, genetikai módosítással létrehozott S-PRV-155 elnevezésű álveszettség vírus hatásos immunizáló mennyiségét, valamint egy megfelelő hordozóanyagot tartalmazó vakcinára. A vakcina inaktivált vagy élő S-PRV-155 álveszettség vírust tartalmazhat.
Az álveszettség vírusa számára (vakcina készítés céljából) ismeretesek megfelelő hordozóanyagok a gyakorlatban, melyek magukba foglalnak proteineket, cukrokat, stb. Megfelelő hordozóanyag például az egy vagy több stabilizáló anyagot, mint például stabilizált, hidrolizált proteint vagy laktózt tartalmazó fiziológiásán pufferolt tápfolyadék.
A találmány szerinti vakcinában általában, az S-PRV-155 vírus hatásos immunizáló mennyisége adagonként körülbelül 103-109 plakképző egység. A hatásos immunizáló mennyiség élő vakcinák esetében előnyösen adagonként körülbelül 104-106 plakképző egység, inaktivált vakcinák esetében 107-109 plakképző egység. Az élő vakcinát előnyösen úgy állítjuk elő, hogy szövettenyésztő folyadékhoz stabilizáló anyagot, például stabilizált, hidrolizált proteint adunk. Az inaktivált vakcina esetében előnyösen a szövettenyésztő folyadékot közvetlenül a vírus inaktiválását követően használjuk.
A találmány tárgyát képezi továbbá egy álveszettség vírus által okozott megbetegedés ellen állatok, különösen sertések immunizálását szolgáló eljárás, amely abban áll, hogy a találmány szerinti vakcina hatásos immunizáló mennyiségét adagoljuk az állatnak. A vakcina bármely, a gyakorlatban járatos személy számára ismert módszerrel adagolható, például izomba, bőr alá, hasüregbe, vagy intravénás injektálással. Más eljárás szerint a vakcina adagolható orron vagy szájon át.
A találmány kiterjed egy a találmány szerinti vakcinával vakcinázott, valamint a természetben előforduló vad-típusú álveszettség vírussal fertőződött állat megkülönböztetésére szolgáló eljárásra. Ez az eljárás magában foglalja az állattól nyert testfolyadék minta vizsgálatát gpX, valamint legalább egy másik, a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatban kifejeződő antigén jelenlétére nézve, és annak meghatározását, hogy a testfolyadék mintában az antigén és a gpX megtalálható-e. A testfolyadékban az antigén jelenléte és a gpX hiánya vakcinával vakcinázott és a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal nem fertőzött állatra utal. A testfolyadékban az antigén és a gpX jelenléte különböző eljárásokkal állapítható meg, például a testfolyadékban az antigénre és a gpX-re fajlagos ellenanyagok meghatározásával. A találmány szerinti vakcinával vakcinázott, valamint a természetben előforduló vad-típusú álveszettség vírussal fertőződött állat megkülönböztetésére szolgáló eljárás magában foglalhatja továbbá a minta vizsgálatát gl jelenlétére nézve. A testfolyadékban az antigén jelenléte és a gl hiánya a vakcinával vakcinázott és a természetben előforduló vad-típusú álveszettség vírussal nem fertőződött állatra utal. A találmány leírásában a természetben előforduló álveszettség vírus alatt olyan álveszettség vírust értünk, amelyet nem módosítottak géntechnikai módszerekkel, ide tartoznak, de azokra • · • ·· ···· · · • · · · ···· • · ·· ·· · · ····
- 13 nem korlátozódnak, vad-típusú álveszettség vírusok, valamint olyan álveszettség vírusok, amelyek a természetben előforduló és spontán deléciót tartalmazó álveszettség vírusok közé tartoznak. A találmány szerint nem létfontosságú gén alatt a vírus replikációban nélkülözhető gént értünk.
A találmány kiterjed továbbá egy a találmány szerinti vakcinával vakcinázott, valamint a természetben előforduló vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állat megkülönböztetésére szolgáló eljárásra. Ez az eljárás magában foglalja az állattól nyert testfolyadék minta vizsgálatát gl, valamint legalább egy másik, a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatban kifejeződő antigén jelenlétére nézve, és annak meghatározását, hogy a testfolyadék mintában az antigén és a gl jelen van-e. A testfolyadékban az antigén jelenléte és a gl hiánya vakcinával vakcinázott és a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal nem fertőzött állatra utal.
Álveszettség vírusok, köztük az S-PRV-155 vírus előállítására, kiválasztására és tisztítására szolgáló eljárásokat a következő, Anyagok és módszerek című fejezetben ismertetjük.
ÁLVESZETTSÉG VÍRUS (PRV) TÖRZSTENYÉSZETEK ELŐÁLLÍTÁSA
Álveszettség vírus (PRV) törzstenyészeteket úgy állítottunk elő, hogy 1 % borjú szérummal kiegészített, 2 mmol/1 glutamint, 100 egység/ml penicillint, és 100 egység/ml streptomycint tartalmazó Dulbecco féle módosított Eagle tápfolyadékban (DME) tenyésztett Verő sejteket (a fenti össze• · · · • ·· · · · · · · ···* * ♦ · · ·· ·· ·· ·· ···♦
- 14 tevőket az Irvin Scientific cégtől vagy annak megfelelő szállítótól szereztük be, és ezután teljes DME tápfolyadéknak nevezzük), sejtenként 0,01 plakképző egységet (PFU) tartalmazó fertőzési hányados értékkel fertőztünk. Miután a citopatogén hatás teljesen kialakult, a tápfolyadékot és a sejteket összegyűjtöttük, és a sejteket klinikai centrifugában ülepítettük (3000 rpm, 5 perc) . A sejteket az eredeti térfogat 1/10 mennyiségének megfelelő tápfolyadékban szuszpendáltuk, és egyenlő mennyiségű kétszer autoklávozott fölözött tejet (9 tömeg/térfogat % fölözött tejpor vízben) adtunk hozzá. A vírus mintákat kétszer fagyasztottuk és olvasztottuk, egyenlő térfogatokra szétosztottuk és fagyasztva -70 °C-on tároltuk. A titer rendszerint körülbelül 108 PFU/ml volt.
A PRV TITRÁLÁSA
A PRV titrálásához Verő sejteket oltottunk 60 mm átmérőjű Petri-csészékbe 5 x 105 sejt/ml mennyiségben. A következő napon a növekedést serkentő tápfolyadékot (10 % borjúszérummal kiegészített teljes DME) csészénként 3,0 ml fenntartó tápfolyadékra (1 % borjúszérummal kiegészített teljes DME) cseréltük. A vírus tenyészetekből l:104, ΙΟ5, ΙΟ6, 107 és 108 hígításokat késztettünk fenntartó tápfolyadékban. Ezekből a hígításokból 1,0 ml-t adtunk mindegyik csészéhez. A csészéket 4 óra hosszat 37 ’C-on tartottuk 5 % CO2-t tartalmazó nedves inkubátorban. A tápfolyadékot ezután leszívtuk, és mindegyik csészét 2 mmol/1 glutamint, 100 egység/ml penicillint, 100 egység/ml streptomycint, és 2 % borjúszéru• ·
- 15 mot tartalmazó 2 x Minimál Essential tápfolyadékban (MÉM) oldott, 0,75 %-os végkoncentrációjú, 5 ml térfogatú alacsony olvadáspontú agarózzal rétegeztünk felül. A csészéket 30 percre szobahőmérsékletre helyeztük, hogy az agaróz megdermedjen, ezután 3 napra 5 % CO2-t tartalmazó nedves inkubátorba raktuk 37 °C-ra. A plakkokat megszámoltuk és kiszámítottuk a PFU/ml értékeket.
PRV DNS ELŐÁLLÍTÁSA
A PRV DNS készítmény előállításához 25 cm2 területű palackokban vagy 60 mm átmérőjű Petri-csészékben tenyésztett összefüggő egyrétegű Verő sejt tenyészeteket 1 ml tápfolyadékban szuszpendált 100 mikroliter vírus mintával fertőztünk. Az adszorbció 1-2 óráig tartott 37 ’C-on, 5 % CO2-t tartalmazó nedves inkubátorban. Az adszorbciót követően ehhez 4 ml, 1 % borjúszérummal kiegészített teljes DME tápfolyadékot adtunk. Egy éjszakán át tartó inkubálás után, vagy amikor a sejtek 100 %-ban citopatogén hatást mutattak, a sejteket sejt-kaparóval (Costar védjegy) a tápfolyadékba kapartuk. A sejteket és a tápfolyadékot klinikai centrifugában ülepítettük (3000 rpm, 5 perc). A tápfolyadékot elöntöttük, és a sejt üledéket 0,01 mol/1 Tris-t (pH 7,5), 1 mmol/1 EDTA-t, és 0,5 % Nonidet P-40 -t (NP40) tartalmazó 0,5 ml térfogatú oldatban óvatosan szuszpendáltuk. A mintát 10 percig szobahőmérsékleten inkubáltuk. Tíz mikroliter RNase A (Sigma) törzsoldatot (törzsoldat: 10 mg/ml, 10 percig forralva a DNase inaktiválása céljából) adtunk a mintához. A mintát 5 percig 3000 rpm-n klinikai centrifugában centrifu• · ·« «· · * «* · • «· ·«·· · · «··« Λ · · · •· ·· ·« «· ···«
- 16 gáltuk a magok ülepítése céljából. A DNS üledéket pasteur pipettával, vagy fapálcikával eltávolítottuk és kidobtuk. A felülúszót 25 mikroliter 20 %-os nátrium-dodecil-szulfátot (Sigma), és 25 mikroliter proteináz-K-t (10 mg/ml;
Boehringer Mannheim) tartalmazó 1,5 ml térfogatú Eppendorf csövekbe öntöttük. A mintát megkevertük és 30-60 percig 37 °C-on inkubáltuk. Ehhez a mintával azonos térfogatú vízzel telített fenolt adtunk, és azt vortex keverőn megkevertük. A mintát Eppendorf mini centrifugában teljes sebességen 5 percig ülepítettük. A felső vizes fázist új Eppendorf csőbe vittük át, kétszeres térfogatú -20 °C-os etanolt adtunk hozzá, és a csövet 30 percre -20 °C-ra tettük a nukleinsav kicsapása céljából. A mintát Eppendorf centrifugában 4 °C-on, 5 percig ülepítettük. A felülúszót elöntöttük, és az üledéket egyszer hideg 80 %-os etanollal mostuk.
Az üledéket 17 mikroliter vízben rehidráltuk. Nagyobb mennyiségű DNS előállításához az eljárást úgy módosítottuk, hogy 850 cm2 területű gördülő palackban tenyésztett Verő sejtekből indultunk ki. A DNS-t vízben vagy 0,01 mol/1 Tris-t (pH 7,5), és 1 mmol/1 EDTA-t tartalmazó pufferben tároltuk 4 °C-on.
FENOLOS EXTRAKCIÓ
A fenolos extrakciót bármely alkalmas térfogatú DNS mintával, tipikusan 100 mikroliter-1 ml közötti térfogatú mintával végeztük. A DNS mintát 0,01 mol/1 Tris-t (pH 7,5), és 1 mmol/1 EDTA-t tartalmazó pufferrel hígítottuk, és azonos térfogatú vízzel telített fenolt adtunk hozzá. A mintát vortex keverőn röviden megkevertük, és 3 percre jégre tét··· ·
- 17 tűk. Miután a mintát 3 percig mikrocentrifugában ülepítettük, a vizes fázist új csőbe vittük át, és etanollal kicsaptuk.
ETANOLOS KICSAPÁS
A mintában található DNS-t etanolos kicsapással koncentráltuk. A DNS mintához 1/10 térfogatnyi 3 mol/1 koncentrációjú nátrium-acetátot (pH 7,5), és 3 térfogatnyi hideg etanolt adtunk. A DNS-t 30 percig -70 °C-on vagy egy éjszakán át -20 °C-on hagytuk kicsapódni, majd mikrocentrifugában 15 percig, 4 °C-on ülepítettük. Az üledéket 200 mikroliter hideg 80 %-os etanollal egyszer mostuk, és 10 percig, 4 °C-on ismét ülepítettük. Levegőn való szárítást, vagy liofilezést követően az üledékeket megfelelő mennyiségű pufferben vagy vízben szuszpendáltuk.
RESTRIKCIÓS ENZIMMEL VÉGZETT EMÉSZTÉS
A DNS-t restrikciós enzimekkel hasítottuk a gyártó cég (IBI, BRL, new England Biolabs, stb) által ajánlott puffer felhasználásával. Amennyiben lehetséges volt, a DNS koncentrációját 1 mikrogramm/50 mikroliter alatt tartottuk. Az inkubálást 37 °C-on, 1-4 óráig végeztük.
A DNS AGARÓZ GÉL ELEKTROFORÉZISE
A DNS restrikciós mintájának láthatóvá tétele céljából a DNS-hez 5 mikroliter minta töltő puffért (5 x elektroforézis puffer, 0,01 % brómfenolkék festék, 50 mmol/1 EDTA, és 50 % glicerin) adtunk. A mintát 0,6 %-3,0 % agaróz gélt tartalmazó, horizontális, pufferrel elárasztott elektroforézis készülék egy mintasávjába töltöttük. Az elektroforézis puffer 40 mmol/1 Tris-t, és 10 mmol/1 EDTA-t tartalmazott, a puf««·· ·· ·* ·· ·· • · * « ·* · · · • ·· ··· · · · ···· 4»·· fért ecetsawal pH 7,8-ra állítottuk be, és ehhez szükség szerint 0,5 mikrogramm/ml etidium-bromidot adtunk. A gélt 18 órán át 40-50 Volt feszültségen futtattuk, eltávolítottuk, 0,5 mikrogramm/ml etidium-bromiddal 30 percig festettük, majd a DNS csíkokat hosszú hullámhosszú UV megvilágító készülékkel láthatóvá tettük.
LIGÁLÁS
A DNS-t T4 DNS ligáz (BRL) enzimmel kapcsoltuk össze. A ligációs reakció változó mennyiségű DNS-t (0,2-20 mikrogramm), 20 mmol/1 Tris-t (pH 7,5), 10 mmol/1 MgC12~t, 10 mmol/1 ditiotreitolt (DTT), 200 mikromol/1 ATP-t és 20 egység T4 DNS ligázt tartalmazott 10-20 mikroliter végtérfogatú reakcióelegyben. A ligálást 3-16 órán keresztül, 15 °C-on végeztük.
A DNS SOUTHERN LENYOMAT VIZSGÁLATA
A Southern lenyomat vizsgálathoz a nem radioaktív DNS jelölő és meghatározó készletet (Nonradioaktive DNA Labeling and Detection Kit, Boehringer Mannheim) használtuk. A gyártó által ajánlott eljárást követtük.
DNS TRANSZFEKTÁLÁS REKOMBINÁNS VÍRUS ELŐÁLLÍTÁSÁRA
A módszer Graham és Van dér Eb (1) kalcium-foszfát eljárásán alapszik, amelyben a következő változtatásokat hajtottuk végre. Vírus vagy plazmid eredetű DNS-t 298 mikroliterre hígítottunk 0,01 mol/1 Tris-t (pH 7,5), és 1 mmol/1 EDTA-t tartalmazó pufferben. Ehhez negyven mikroliter 2 mol/1 koncentrációjú CaCl2-t, majd azonos térfogatú 2 x HEPES pufférés sóoldatot (10 g Ν-2-hidroxi-etil-piperazin N'-2-etán-szulfonsav (HEPES), 16 g NaCl, 0,74 g KC1, 0,25 g *·· · ·
- 19 Na2HPO4 x 2Η2Ο, egy liter vízre számítva 2 g dextróz, NaOHval a pH 7,4-re állítva) adtunk. Az elegyet ezután 10 percig jégen inkubáltuk, majd cseppenként hozzáadtuk egy 60 mm átmérőjű Petri-csészében 5 ml tápfolyadék (2 % borjúszérummal kiegészített DME) alatt növekedő, 80 %-ban összefüggő egyrétegű Verő sejttenyészethez. A sejteket négy óra hosszat 37 °C-on, 5 % CO2-t tartalmazó nedves inkubátorban inkubáltuk. A sejteket ezután háromszor 5 ml térfogatú 1 x PBS pufferrel (1,15 g Na2HPŰ4, 0,2 g KH2PO4, 0,8 g NaCl, és 0,2 g KC1 1 liter vízre számítva) mostuk, és 5 ml tápfolyadékkal (2 % borjúszérummal kiegészített DME) fedtük. A sejteket 3-7 napig 37 °C-on inkubáltuk a fentiek szerint, amíg a vírus okozta citopatogén hatás 50-100 %-ban kialakult. A vírusokat a vírus törzstenyészetek esetében fent leírtak szerint ülepítettük. Ezt a vírustenyészetet transzfekciós tenyészetnek neveztük, és ezután rekombináns vírusok jelenlétére vizsgáltuk a Bluogal módszer rekombináns PRV válogatására című fejezetben ismertetettek szerint.
HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA
Ez az eljárás PRV DNS, valamint plazmid homológia vektor DNS között végbemenő homológ rekombináción alapszik, mely folyamat az ezekkel a DNS elemekkel kotranszfektált Verő sejtekben jön létre. Legalább 0,1-1,0 mikrogramm, megfelelő klónozott PRV szekvenciákkal határolt idegen DNS-t tartalmazó plazmid DNS-t (az úgy nevezett homológia vektort) összekevertünk körülbelül 0,3 mikrogramm intakt PRV DNS-sel. A DNS-t 0,01 mol/1 Tris-t (pH 7,5) és 1 mmol/1 EDTA-t tar• . * ·
- 20 talmazó pufferben 298 mikroliterre hígítottuk, és a DNS TRANSZFEKTÁLÁS REKOMBINÁNS VÍRUS ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben (lásd fent) ismertetettek szerint Verő sejtekbe transzferáltuk.
KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA
Homológia vektorok alkalmazása helyett és ahelyett, hogy a rekombináns vírusok előállítását a homológ rekombináció folyamatára bíznánk, a közvetlen ligálásos technikát is kifejlesztettük a PRV módosításására. Ebben az esetben a klónozott idegen DNS-t nem kell ellátnunk határoló PRV DNS szekvenciákkal, annak csupán olyan restrikciós hasítási helyeket kell tartalmaznia, amelyek lehetővé teszik az idegen gén kivágását a plazmid vektorból. A PRV DNS-t egy az előzővel kompatibilis restrikciós enzimmel hasítottuk. A módszer alkalmazásának feltétele az volt, hogy a PRV DNS hasításához felhasznált restrikciós enzim korlátozott számú helyen hasítson, és legalább az egyik hely nem létfontosságú hely legyen. Használtunk Xbal enzimet, amely két helyen hasítja a PRV DNS-t. Hind III enzimet is használtunk, amely négy helyen hasítja a PRV DNS-t. Ugyancsak felhasználhatók az egyéb módszerek segítségével előzőleg beiktatott restrikciós hasítási helyek. A PRV DNS-t 30-szoros moláris feleslegben levő plazmid DNS-sel (tipikus esetben 5 Mg vírus DNS-t 10 μg plazmid DNS-sel) elegyítettünk, és a keveréket a megfelelő restrikciós enzimmel hasítottuk. A DNS elegyet a restrikciós enzimek eltávolítása céljából fenollal extraháltuk, és etanollal kicsaptuk, majd a fent ismertetett ligálási eljárás szerint ligáltuk. Az összekapcsolt DNS elegyet ezután 298 μΐ pufferben (0,01 mol/1 Tris, pH 7,5; 1 mmol/1 EDTA) szuszpendáltuk, és a DNS TRANSZFEKTÁLÁS REKOMBINÁNS VÍRUS ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint Verő sejtekbe transzfektáltuk (lásd fent).
A közvetlen ligálásos eljárás PRV-ből DNS deletálására is alkalmazható. A megfelelő restrikciós enzim felismerő helyekkel határolt nem létfontosságú” DNS szakasz úgy deletálható, hogy a PRV-t az adott enzimmel hasítjuk, és újból ligáljuk. A közvetlen ligálásos eljárással előállított genetikailag módosított vírusok előfordulási gyakorisága elég magas ahhoz, hogy a válogatás a transzfekciós tenyészetből random kiválasztott plakkok restrikciós enzim emésztésével elvégezhető legyen.
REKOMBINÁNS PRV BLUOGAL MÓDSZERREL VÉGZETT KIVÁLOGATÁSA
Abban az esetben, ha a rekombináns vírusba E. coli bétagalaktozidáz marker gént iktatunk be, a rekombinánsokat tartalmazó plakkokat egyszerű vizsgálattal láthatóvá tehetjük. Ha a plakk vizsgálat során a felső agaróz rétegbe Bluogal™ (Bethesda Research Labs) nevű vegyszert teszünk (200 μg/ml), akkor a béta-galaktozidázt expresszáló plakkok kék színben jelennek meg. A kék plakkokat friss Verő sejtekbe oltottuk, és további kék plakkok izolálásával tisztítottuk. Azoknál a rekombináns vírus előállítási stratégiáknál, amelyeknél az E. coli béta-galaktozidáz marker gént eltávolítottuk, a vizsgálat a hátteret képező szülői kék plakkok közül fehér plakkok tisztítását is magába foglalta. Mindkét esetben a vírusokat tipikusan három plakk tisztítási kör el22 végzésével tisztítottuk.
DELÉCIÓT TARTALMAZÓ VÍRUSOK ELŐÁLLÍTÁSA
A deléciót tartalmazó vírusok előállításának stratégiája magába foglalta mind a homológ rekombinációs, mind a közvetlen ligálásos technikák alkalmazását. Először homológ rekombinációs eljárással egy olyan vírust állítottunk elő, amelyben a deletálandó gént E. coli béta-galaktozidáz marker génnel helyettesítettük. Ezután közvetlen ligálásos technikával egy második vírust állítottunk elő, amelyben a marker gént deletáltuk. A fenti stratégia megvalósíthatóságának a feltétele az, hogy az első vírusba beiktatott marker gént a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett megfelelő restrikciós enzim felismerő helyek határolják. Ennek az eljárásnak az az előnye, hogy mindkét vírus tisztítható a REKOMBINÁNS PRV BLUOGAL MÓDSZERREL VÉGZETT VÁLOGATÁSA című fejezetben ismertetettek szerint. Az első vírust a fehér hátteret képező plakkok közül a kék plakkok, a második vírust a kék plakkok közül a fehér plakkok kiválogatásával tisztíthatjuk. Három különböző homológra vektort állítottunk elő a gpX, valamint a gpl géneket kódoló szakaszok deletálása céljából. Ezeknek a homológra vektoroknak a részletes ismertetése az alábbiakban következik.
A 263-58.18 HOMOLÓGIA VEKTOR
A 263-58.18 plazmidot a gpX gén kódoló szakaszának az álveszettség vírusból való deletálása céljából állítottuk elő. Ez a plazmid egy PRV DNS-sel határolt E. coli bétagalaktozidáz marker gént tartalmaz. A marker géntől 5’ irányban található a PRV DNS egy körülbelül 1330 bázispárból álló fragmense, amely a gpX elsődleges transzlációs termékének első hét aminosavát (4) kódoló szekvenciákkal végződik.
A marker géntől 3' irányban található a PRV DNS egy körülbelül 1800 bázispárból álló fragmense, amely a gpX elsődleges transzlációs termékének utolsó 19 aminosavát (4) kódoló szekvenciákkal kezdődik. Ennek a plazmidnak a HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetettek szerinti alkalmazása során a gpX elsődleges transzlációs termékének 8-479. aminosavait kódoló DNS a marker gént kódoló DNS-sel cserélődik ki. Megjegyzendő, hogy a béta-galaktozidáz (lacZ) marker gén az endogén gpX promoter irányítása alatt működik. A plazmidot a 2. ábrán részletesen ismertetjük. A plazmidot az említett DNS forrásokból szokásos rekombináns DNS technikák alkalmazásával állítottuk elő (2) . A plazmid konstrukcióját a következő forrásokból származó restrikciós fragmensek, valamint a 2. ábrán bemutatott szintetikus DNS fragmensek összekapcsolásával végezhetjük. A plazmid vektor a pSP65 (Promega) egy körülbelül 2792 bázispárból álló Smal-PvuII restrikciós fragmenséből származott. Az 1. fragmenst a PRV 10 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 922 bázispárból álló EcoRV-Sall restrikciós fragmense képezte. A 2. fragmenst a PRV 10 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 412 bázispárból álló Sall-BamHI restrikciós fragmense képezte. A 3. fragmens a pJF751 plazmid (11) egy körülbelül 3347 bázispárból álló BamHI-Ball restrikciós fragmense volt. A 4. fragmenst a PRV 7 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 1803 bázispárból álló Ndel-Stul restrikciós fragmense képezte. Megemlítendő, hogy a B és a D kapcsolódásoknál található Xbal hasítási helyek a plazmidban található egyedüli Xbal hasítási helyek, és lehetővé teszik a marker génnek egy Xbal restrikciós fragmensként való kivágását.
A 416-09.2H HOMOLÓGIA VEKTOR
A 416-09.2H plazmidot a gpl gén kódoló szakaszának az álveszettség vírusból való deletálása céljából állítottuk elő. Ez a plazmid egy PRV DNS-sel határolt E. coli bétagalaktozidáz marker gént tartalmaz. A marker géntől 5' irányban található a PRV DNS egy körülbelül 1884 bázispárból álló fragmense, amely a gpl elsődleges transzlációs termékének első aminosavát kódoló bázispártól (6) 5' irányban, attól körülbelül 46 bázispárra található szekvenciákkal végződik. A marker géntől 3' irányban található a PRV DNS egy körülbelül 1309 bázispárból álló fragmense, amely a gpl elsődleges transzlációs termékének utolsó 105 aminosavát (6) kódoló szekvenciákkal kezdődik. Ennek a plazmidnak a HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetettek szerinti alkalmazása során a gpl elsődleges transzlációs termékének 1-472. aminosavait kódoló DNS a marker gént kódoló DNS-sel cserélődik ki. Megemlítendő, hogy a béta-galaktozidáz (lacZ) marker gén az endogén gpX promoter irányítása alatt működik. A plazmidot a 3. ábrán részletesen ismertetjük. A plazmidot az említett DNS forrásokból szokásos rekombináns DNS technikák alkalmazásával állítottuk elő (2). A plazmid konstrukcióját a következő forrásokból származó restrikciós fragmensek, valamint a 3. áb25 rán bemutatott szintetikus DNS fragmensek összekapcsolásával végezhetjük. A plazmid vektor a pSP19 (Promega) egy körülbelül 3009 bázispárból álló Smal-BamHI restrikciós fragmenséből származott. Az 1. fragmenst a PRV 7 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 1884 bázispárból álló HincII-Dral restrikciós fragmense képezte. A 2. fragmenst a PRV 10 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 412 bázispárból álló Sall-BamHI restrikciós fragmense képezte. A 3. fragmens a pJF751 plazmid (11) egy körülbelül 3347 bázispárból álló BamHI-Ball restrikciós fragmense volt. A 4. fragmenst a PRV 7 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 1309 bázispárból álló Sphl-BamHI restrikciós fragmense képezte. Megemlítendő, hogy a B és a D kapcsolódásoknál található Xbal hasítási helyek a plazmidban található egyedüli Xbal hasítási helyek, és lehetővé teszik a marker génnek egy Xbal restrikciós fragmensként való kivágását.
A 436-86.32K HOMOLÓGIA VEKTOR
A 436-86.32K plazmidot a gpX gén kódoló szakaszának az álveszettség vírusból való deléciója céljából állítottuk elő. Ez a plazmid egy PRV DNS-sel határolt, HCMC közvetlen korai promoterrel rendelkező E. coli béta-galaktozidáz marker gént tartalmaz. A marker géntől 5' irányban található a PRV DNS egy körülbelül 1330 bázispárból álló fragmense, amely a gpX elsődleges transzlációs termékének első hét aminosavát (4) kódoló szekvenciával végződik. A marker géntől 3 * irányban található a PRV DNS egy körülbelül 1800 bázispárból álló fragmense, amely a gpX elsődleges transzlá• ·
- 26 ciós termékének utolsó 19 aminosavát (4) kódoló szekvenciával kezdődik. Ennek a plazmidnak a HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetettek szerinti alkalmazása során a gpX elsődleges transzlációs termékének 8-479. aminosavait kódoló DNS a marker gént kódoló DNS-sel cserélődik ki. A plazmidot a 4. ábrán részletesen ismertetjük. A plazmidot az említett DNS forrásokból szokásos rekombináns DNS technikák alkalmazásával állítottuk elő (2). A plazmid konstrukcióját a következő forrásokból származó restrikciós fragmensek, valamint a 4. ábrán bemutatott szintetikus DNS fragmensek összekapcsolásával végezhetjük. A plazmid vektor a pSP65 (Promega) egy körülbelül 2792 bázispárból álló Smal-PvuII restrikciós fragmenséből származott. Az 1. fragmenst a PRV 10 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 1336 bázispárból álló EcoRV-BamHI restrikciós fragmense képezte. A 2. fragmenst a HCMC E Xbal restrikciós fragmensének (12) egy körülbelül 1191 bázispárból álló Pstl-Avall restrikciós fragmense képezte. A 3. fragmens a pJF751 plazmid (11) egy körülbelül 3002 bázispárból álló BamHI-PvuII restrikciós fragmense volt. Megemlítjük, hogy ez a fragmens két belső PvuII hasítási helyet tartalmaz, ami részleges PvuII emésztést tesz szükségessé.
Más eljárás szerint a fragmenst megkaphatjuk részleges emésztés nélkül két különálló fragmensként. Ezeket a fragmenseket egy körülbelül 2950 bázispárból álló BamHI-Ndel, valamint egy körülbelül 55 bázispárból álló Ndel-PvuII fragmens alkotja. A 3. fragmens az egyedi Ndel hasítási helyeknél összekapcsolt két fragmenssel helyettesíthető. A 4.
• ·
- 27 fragmenst a PRV 7 számú BamHI restrikciós fragmensének (15) egy körülbelül 1803 bázispárból álló Ndel-Stul restrikciós fragmense képezte. Megemlítendő, hogy a B és a D kapcsolódásoknál található Xbal hasítási helyek a plazmidban található egyedüli Xbal hasítási helyek, és lehetővé teszik a marker génnek egy Xbal restrikciós fragmensként való kivágását.
VAKCINÁZÁSI VIZSGÁLATOK SERTÉSEKEN
Az élő, legyengített vírus hatékonyságának vizsgálatára háromnapos korú, álveszettség vírustól mentes sertésállományból származó kocáktól született malacokat használtunk. A malacokat 1 ml, 103-105 plakképző egységet (PFU) tartalmazó vírus-szuszpenzióval oltottuk izomba adva.
A PRV—155 vírust inaktivált vakcinaként is vizsgáltuk. A vírust bináris etiléniminnel legalább 40 órán át, 37 °C-on való kezeléssel inaktiváltuk. Az inaktivált vírus-szuszpenziót egy olaj alapú adjuvánssal elegyítettük, és négyhetes korú malacokba oltottuk.
Mind az élő S-PRV-155, mind az inaktivált S-PRV-155 vírussal vakcinázott állatokat a vakcinázás után minden nap megfigyeltük a káros reakciókra (a PRV megbetegedés klinikai tüneteire) nézve. Az élő S-PRV-155 vírussal vakcinázott malacoktól orr-váladék mintákat gyűjtöttünk, és azokból tenyésztést végeztünk annak megállapítása céljából, hogy a vírusok képesek-e ürülni és más állatokra terjedni. Az immunitás fokát a szérumban a PRV ellen termelődött ellenanyagok szintjének meghatározásával, és 3-4 héttel a vakcinázást követően a vakcinázott malacoknak virulens vírussal való fe-
lülfertőzésével határoztuk meg. Az utóbbi esetben a vakcinázott malacokat, valamint nem vakcinázott malacok egy csoportját virulens, pneumotrop PRV törzzsel (VDL4892) oltottuk, a felülfertőzéshez olyan mennyiségű vírust használtunk, amely a nem vakcinázott malacok csoportjának legalább 80 %-ánál PRV megbetegedést okozott. A felülfertőzött állatokat naponta megfigyeltük a megbetegedés tüneteire, valamint az orrváladékon keresztül való vírus ürítésre nézve. A felülfertőzéskor, és a vakcinázást követően 2-3 hétig, egy hetes időközökben szérum mintákat gyűjtöttünk. A szérumot szérum neutralizáló ellenanyagok (SN), gpX ellenes ellenanyagok (HerdChekR; IDEXX Corp.), valamint gpl ellenes ellenanyagok (HerdChekR; IDEXX Corp.; és ClinEase, SmithKline Beecham) jelenlétére vizsgáltuk a gyártó utasításai szerint eljárva.
A találmány szerinti megoldást a következő példákkal szemléltetjük.
1. példa
S-PRV-150
Az S-PRV-150 egy olyan álveszettség vírus, amely a TK génen belül egy deléciót tartalmaz a különösen hosszú régióban, deléciót hordoz az ismétlődő régióban, egy 1460 bázispár nagyságú deléciót tartalmaz a gl kódoló szakaszán belül, és egy 1825 bázispárból álló deléciót hordoz a gpX kódoló szakaszában. Az E. coli béta-galaktozidáz (lacZ gén) gént a gpl gén helyére inszertáltuk, és az a HCMV közvetlen korai promotere irányítása alatt áll.
Az S-PRV-150 vírust az S-PRV-002 vírusból (4 877 737 sz.
- 29 amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás, 1989. október 31.) állítottuk elő három közbülső vírus létrehozásán keresztül. Az első közbülső vírus az S-PRV-070 volt. Ebben a vírusban az ismétlődő régión belül található Xbal hasítási helyeket (lásd 1. ábra) EcoRI hasítási helyekké alakítottuk, hogy lehetővé tegyük a következő lépésekben az egyéb helyeken található Xbal restrikciós helyek felhasználását. Ezt a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA fejezetben ismertetett eljárás segítségével, a CTAGGAATTCC szintetikus oligonukleotidnak az S-PRV-002 vírus Xbal hasítási helyeire való inszertálásával hajtottuk végre. A második, S-PRV-089 nevezetű közbülső vírusban a béta-galaktozidáz marker génnel a gpX deléciót iktattuk be. Ezt a 263-58.18 homológia vektor (lásd anyagok és módszerek), valamint az S-PRV-070 vírus felhasználásával végeztük a HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. A harmadik közbülső vírus esetében (S-PRV-112) a béta-galaktozidáz marker gént (lacZ), Xbal enzimmel végzett emésztéssel eltávolítottuk a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Végül az S-PRV-150 vírust a 416-09.2H homológia vektor (lásd anyagok és módszerek), valamint az S-PRV-153 vírus felhasználásával állítottuk elő HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint.
Az S-PRV-150 vírus szerkezetét BamHI, valamint Xbal enzimekkel végzett restrikciós enzim vizsgálatokkal igazoltuk.
• ·· ···· · · • · · · · · · • · · ·· ·· ····
2. példa
S-PRV-151
Az S-PRV-151 egy olyan álveszettség vírus, amely egy deléciót tartalmaz a TK génen belül a különösen hosszú régióban, deléciót hordoz az ismétlődő régióban, egy 1460 bázispár nagyságú deléciót tartalmaz a gl kódoló szakaszán belül, és egy 1825 bázispárból álló deléciót hordoz a gpX kódoló szakaszában.
Az S-PRV-151 vírust az S-PRV-150 vírusból kaptuk a marker gén (lásd fent) eltávolításával. Ezt az S-PRV-150 Xbal enzimmel való emésztésével értük el a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Az S-PRV-151 vírus szerkezetét BamHI, valamint Xbal enzimekkel végzett restrikciós enzim vizsgálatokkal igazoltuk.
A következő kísérletet végeztük el annak megállapítása céljából, hogy az S-PRV-151 alkalmazható-e vakcinaként álveszettség megbetegedés ellen sertésekben védettség létrehozására. Ebben a kísérletben háromnapos korú malacokat vakcináztunk az S-PRV-151 vírussal izomba adva, a következőkben ismertetettek szerint jártunk el: 4 malacot 104 plakképző egységet (PFU), 4 malacot 106 plakképző egységet tartalmazó vírussal oltottunk. A kísérlet egy öt malacból álló kontroll csoportot is tartalmazott. Az állatokat megfigyeltük, majd a VAKCINÁZÁSI VIZSGÁLATOK SERTÉSBEN című fejezetben ismertetettek szerint azokat felülfertőztük. (Az eredményeket az 1. táblázatban foglaltuk össze.
• · • · • ·· · ·· · · *· · · · • ·· ««· · · · ···· · · · · ·· ·· ·· · ····
- 31 1. táblázat napos korú malacok vakcinázása S-PRV-151 vírussal, és felülfertőzésük virulens PRV-vel.
Vírus Malacok SN ellenanyag3 Felülfertőzést koncentráció száma Vakcina utáni felülfer követó megfigyelések
adagonként tózés után Vírus ürítés*3 klinikai tünetek0 pusztulás
21 nap 14 nap
adagonként 104 PFU 4 <=2 45 41% 100% 20%
adagonként 106 PFU 4 <=2 96 33% 100% 0%
kontroll 5 < 2 10 55% 100% 20%
a = mértani átlag titer (a hígítás reciproka) b = a vírusra nézve pozitív orrváladék minták százalékos aránya c = CNS-t és/vagy légúti tüneteket mutató malacok százalékos aránya.
Ebben a kísérletben mindegyik vakcinázott állat a vakcinázást követően egészséges maradt, és nem ürített vakcina vírust a mandula váladékban; azonban neutralizáló ellenanyagok jelenlétét nem sikerült kimutatni. A virulens vírussal való felülfertőzést követően mindkét csoporthoz tartozó mindegyik vakcinázott állat a PRV betegség klinikai tüneteit mutatta. Az S-PRV-151 vírus három napos malacokban ártalmatlannak bizonyult ugyan, de ez a vírus nem hozott létre védettséget az állatokban.
• ·
3. példa
S-PRV-154
Az S-PRV-154 egy olyan álveszettség vírus, amely egy deléciót tartalmaz a TK génen belül a különösen hosszú régióban, deléciót hordoz az ismétlődő régióban, egy 1460 bázispár nagyságú deléciót tartalmaz a gl kódoló szakaszán belül, és egy 1414 bázispárból álló deléciót hordoz a gpX kódoló szakaszában. Az E. coli béta-galaktozidáz (lacZ gén) gént a gpX gén helyére inszertáltuk, és az a HCMV közvetlen korai promotere irányítása alatt áll.
Az S-PRV-154 vírust az S-PRV-002 vírusból (4 877 737 sz. amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírás, 1989. október 31.) állítottuk elő három közbülső vírus konstrukcióján ke.resztül. Az első közbülső vírus az S-PRV-070 volt. Ebben a ví.rusban az ismétlődő régión belül található Xbal hasítási helyeket (lásd 1. ábra) EcoRI hasítási helyekké alakítottuk, hogy lehetővé tegyük a következő lépésekben az egyéb helyeken található Xbal restrikciós helyek felhasználását. Ezt a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA fejezetben ismertetett eljárás segítségével a CTAGGAATTCC szintetikus oligonukleotidnak az S-PRV-002 vírus Xbal hasítási helyeire való inszertálásával hajtottuk végre. A második, S-PRV-146 nevezetű közbülső vírusban a béta-galaktozidáz marker génnel a gl deléciót iktattuk be. Ezt a 416-09.2H homológia vektor (lásd anyagok és módszerek), valamint az S-PRV-070 vírus felhasználásával végeztük a HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. A harmadik közbülső • · • ·« ··· 4 · · ·*·« ···· ·· ·· ·· W · ·♦·
- 33 vírus esetében (S-PRV-153) a béta-galaktozidáz marker gént (lacZ), Xbal enzimmel végzett emésztéssel eltávolítottuk a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Végül az S-PRV-154 vírust a 436-86.32K homológia vektor (lásd anyagok és módszerek), valamint az S-PRV-153 vírus felhasználásával állítottuk elő HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Az S-PRV-154 vírus szerkezetét BamHI, valamint Xbal enzimekkel végzett restrikciós enzim vizsgálatokkal igazoltuk.
4. példa
S-PRV-155
Az S-PRV-155 egy olyan álveszettség vírus, amely egy deléciót tartalmaz a TK génen belül a különösen hosszú régióban, deléciót hordoz az ismétlődő régióban, egy 1460 bázispár nagyságú deléciót tartalmaz a gl kódoló szakaszán belül, és egy 1414 bázispárból álló deléciót hordoz a gpX kódoló szakaszában. Az S-PRV-155 álveszettség vírust letétbe helyeztük a Mikroorganizmusok Szabadalmi Célból Történő Kölcsönös Letétbe Helyezéséről szóló Budapesti Eyezmény szerint az American Type Culture Collection Szabadalmi Lerakatában (12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20852 U.S.A.) 1991 február 12.-én ATCC VR 2311 nyilvántartási szám alatt.
Az S-PRV-155 vírust az S-PRV-154 vírusból (lásd fent) a marker gén eltávolításával kaptuk. Ezt az S-PRV-154 vírus Xbal enzimmel való emésztésével értük el a KÖZVETLEN LIGÁLÁ« · a ·«· ♦ · « • · · · ··«« ·· · · ·· *· · * * ·
- 34 SOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Az S-PRV-155 vírus szerkezetét BamHI, valamint Xbal enzimekkel végzett restrikciós enzim vizsgálatokkal igazoltuk. A gpX, valamint a gl deléciók meglétét Southern lenyomat módszerrel igazoltuk az illető gének kódoló szakaszának megfelelő próbák segítségével.
A következő kísérletek arra utalnak, hogy az S-PRV-155 vírus alkalmazható vakcinaként álveszettség betegség ellen sertésekben védettség létrehozására, és a vad-típusú fertőzéstől megkülönböztethető immunválaszt vált ki.
Ebben a kísérletben háromnapos korú malacokat vakcináztunk az S-PRV-155 vírussal izomba adva, a következőkben ismertetettek szerint jártunk el: 6 malacot 103 plakképző egységet (PFU), 8 malacot 105 plakképző egységet, és 20 malacot 103'5 plakképző egységet tartalmazó vírussal oltottunk. A kísérletbe két, egyenként öt malacból álló kontroll csoportot is bevontunk. Az állatokat megfigyeltük, majd a VAKCINÁZÁSI VIZSGÁLATOK SERTÉSBEN című fejezetben ismertetettek szerint felülfertőztük őket (lásd 2. táblázat, lent).
«·« ·
C χφ μ i
N <0 fa a χΦ r-H
P
θ' cd Λί •d a •«M
Λ!
Φ μ φ a :3 μ
Háromnapos malacok vakcinázása S-PRV-155 vírussal és felülfertőzés virulens PRV-vel :3 fa φ
μ χΗ >
η χφ μ χΗ μ :3
•d
3
χφ Ό
μ Ό Γ-1
3 r-1 Ρχ
úti σ>
<0 Ν μ
χφ Ρ m
Ρ Φ υ
to Ν μ χΗ
μ η Λ
Μ 0 μ
Φ C C
φ
γΗ <d
:3 •Η υ
rH Ό χ
Φ λ
fa 5
C Ό Ό
Χφ r-4 Γ~Χ
μ úti a
3 Ν θ'
•ΗΛ
η μ μ o
vd N φ γΗ
rH Φ φ fa
Úti 0 μ θ'
C c -H
•d θ' μ
υ Φ c ο
X •H Φ X
cd Ό Λ
> θ'
1 C
μ χφ
φ μ
<H 5
r*4
:3 Φ
<ti «-4 χφ
P Φ
OD fa
Φ μ
P
•r|
μ CD
C vd
Φ N
Md α
8 a χφ
w •*4 μ
υ 3
Λ!
Φ
>
Ο Φ
3χ§ rV Ν Φ φ
Ο Ο Ο ο dP Ο αο
dP dP
ο ο Ο ο Ο
Ο Ο
rH rH
dP dP dP dP dP
γΗ CN Ο σ>
CN rH ιη Γ*
dP dP dP dP dP
ω Γ-* Ο Ο Ο
«—< ΓΊ Ο Ο Ο
rH γΗ γ-1
dP dP
Η Η Ο Ο
2 2 2 ο ο
r4 Μ
Φ Ρ
dP dP dP dP dP
r* CN Ο Ο Ο
Φ Ο σ\ Ο
«Η γΗ
ο Ο Ο ο ο
ο Ο Ο ο ο
ο Ο ο ο ο
ο Ο ω ω
ω ω CN Γ-< CN
ω
Γ- ιη CN ’d* CN
V V
KD 00 ιη ο in
CN
3
Ρ
3 3 Οι
Ρ Ρ
Οι Λ (0 ιη CD
υ o
ΓΟ ιη C ω C
ο ο ρ ο •*4
1—< Η C Η C
Μ
Λ -Η
Ο Φ Μ (0 χφ Ρ χΗ θ' Ή Λ «5
Φ
Ö> φ
Φ rH +> ·γ~ι & Φ •Ρ •Ρ
C Φ φ
•H ω rH 'Φ rH *Φ
a χφ θ' 0>
«3 Ν ω ω
-P Ν Ν
P •Ρ •Η •Η
χφ Μ > >
ε Φ Ή * φ
γ—1 Φ ω
Φ Λ φ
k <—I υ W
Φ Φ Ό C
+> Μ-Ι Ρ •Η
•Η Φ Γ—1
Ρ Φ U
<0 Λ 0 Ό
felülfertőzést követő 14. nap felülfertőzést követő 21. nap vírusra nézve pozitív orrváladék minták százalékos aránya.
• ·* «·· · · · ««·* ·«·· 4 < ·4 ·· ·· ····
Ennél a kísérletnél mindegyik vakcinázott állat egészséges maradt a vakcinázást követően, PRV ellenes szérum-neutralizáló ellenanyagokat termelt, és a mandula váladékban nem ürített vakcina vírust. Virulens vírussal való felülfertőzés után a három vakcinázott csoportba tartozó állatok egyike sem mutatta a PRV betegség tüneteit, míg a kontroll csoportba tartozó állatokban kifejlődtek a PRV betegség klinikai tünetei, és az egyik csoportnál 80 %-t ért el apusztulás.
A vakcinázott és felülfertőzött állatoktól vett szérum mintákat gX HerdChek, valamint a gl HerdChek és ClinEase vizsgálatokkal vizsgáltuk. A várakozásnak mefelelően az S-PRV-155 vírussal vakcinázott állatok a felülfertőzés napjáig szeronegatívok maradtak gpX-re és gl-re nézve. A vakcinázott állatok a vad-típusú vírussal való felülfertőzéskor a vakcinázás révén védettek voltak az álveszettség betegséggel szemben. A felülfertőző törzs azonban tünetmentesen felülfertőzte a vakcinázott állatokat, és ezért azt vártuk, hogy azok a fertőzést követően gpX, valamint gl ellenes ellenanyagokat termeljenek.
Amint azt a 2. táblázat mutatja, az S-PRV-155 vírussal vakcinázott állatok a vad-típusú vírussal való felülfertőzést követő ideig gpX-re és gl-re nézve negatívok maradtak. A felülfertőzést követő 14. nap körül megkezdődött a vakcinázott állatok szerokonvertálódása gpX-re és gl-re nézve. Ezek az eredmények arra utalnak, hogy az S-PRV-155 hatékony vakcina törzs, amely egy egyszerű szérum diagnosztikai eljárás segítségével lehetővé teszi a vakcinázott, valamint a vad-típusú vírussal fertőződött állatok megkülönböztetését.
• ••· ·· ·>♦ ·* ·· • · «· · · · * * • ·· *·· · · · « ν » · · · · «· ·· ·· ·· ····
5. példa
A következő kísérlet azt mutatja, hogy az inaktivált SPRV-155 vírus alkalmazható vakcinaként álveszettség betegség ellen sertésekben védettség létrehozására, és a vad-típusú fertőzéstől megkülönböztethető immunválaszt hoz létre. Öt fiatal szeronegatív malacot vakcináztunk egy alkalommal inaktivált S-PRV-155 vakcinával, és a VAKCINÁZÁSI VIZSGÁLATOK SERTÉSBEN című fejezetben ismertetettek szerint azokat felülfertőztük. Az inaktivált S-PRV-155 vakcina vírus koncentrációja adagonként 107'3 PFU volt (lásd 3. táblázat, alább).
- 38 O CM
in r* táblázat in in rd
O +> rd MO > •H •P 44 <0 G •H
Φ Ui M0
N Μβ c •H
O
Φ >
X o υ <o rH ti ε
Φ > I
(Λ C Φ rH
P •H >
ti +J <0 Φ 4J •«d •P c ti
Λί
O ti i—< ti X φ P Φ Ή fcl
4J U
Φ fa n *ti
N \ti c •r4
O Λ ti >
ti
N <0
ED 'ti
4J
β MŰ 4J
O rσ>
P P o N UÚ c -d υ Λ ni >
CM n
CM
V in
Φ
>1 β Mtí Ρ Φ
Φ ω
> 0
N 44
Φ Ό)
•r-i rd
Φ Φ
Md Ν
•H νο
44 Ν ω
C Φ
<0 > 44
Λ Ν Μθ
M0 Φ Ρ
44 •ο C
O Φ •Η
P ε
a •Η
•H 44 44
Φ C Ό >
Ρ φ Λ Φ rd Ν Φ
ω 44 Μβ ·ΓΙ
νθ ιφ > φ
Ρ rd Ρ Md
Ή Φ Ρ •Η
θ' Ν ο 44
Md Μβ
Λ Ν > C
ω vd Φ
φ Ρ XI
(0 Η Μβ
Ρ «0 Ν 44
φ Ό 0
Ρ Ό Οι rd
•Η rd Φ
«0 Φ Ν
Ρ > VC
Λ Ρ Ν Ν
φ (/]
Ν > C
C 44
44 0 Φ Ο
44 Ρ
•Η 0 Φ
C Ρ 3 rd
φ Φ Ρ rd
Ρ Ν Ή
Ρ 10 >
Ν
β φ Φ Φ
φ Λ 0 Ό
A vakcinázott állatokban a vakcinázást követően PRV ellenes neutralizáló ellenanyagok termelődtek, azonban gpX, valamint gl ellenes ellenanyagok nem. A virulens vírussal való felülfertőzés után egy vakcinázott állat mutatott csupán egy napig tartó tájékozódási zavart. Mind az öt nem vakcinázott kontroliban kifejlődtek az álveszettség betegségre jellemző súlyos központi idegrendszeri tünetek. A felülfertőzést követően legalább a 21. napra a vakcinázott állatok szerokonverziót mutattak az egyik vagy mindkét diagnosztikus antigénre nézve. Ezek az eredmények azt mutatják, hogy az S-PRV-155 vírus inaktivált vakcinában alkalmazva védettséget hoz létre sertésekben az álveszettség megbetegedéssel szemben, és a fertőzött állatokétól megkülönböztethető immunválaszt vált ki.
6. példa
S-PRV-158
Az S-PRV-158 egy olyan álveszettség vírus, amely egy 1460 bázispár nagyságú deléciót tartalmaz a gl kódoló szakaszán belül, és egy 1414 bázispárból álló deléciót hordoz a gpX kódoló szakaszában. Az E. coli béta-galaktozidáz (lacZ gén) gént a gl gén helyére inszertáltuk, és az a HCMV közvetlen korai promoter irányítása alatt áll.
Az S-PRV-158 vírust az S-PRV-000 vírusból (ISU S62/26 PRV törzsből) állítottuk elő két közbülső vírus konstrukcióján keresztül. Az első közbülső vírus az S-PRV-156 volt. Ebben a az első S-PRV-156 nevezetű közbülső vírusban a béta-galaktozidáz marker génnel a gpX deléciót iktattuk be. Ezt a 436-86.32K homológia vektor (lásd anyagok és módszerek), valamint az S-PRV-000 vírus felhasználásával végeztük a HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. A második közbülső vírus esetében (S-PRV-157) a béta-galaktozidáz marker gént (lacZ) Xbal enzimmel végzett emésztéssel eltávolítottuk a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Végül az S-PRV-158 vírust a 416-09.2H homológia vektor (lásd anyagok és módszerek), valamint az S-PRV-157 vírus felhasználásával állítottuk elő HOMOLÓG REKOMBINÁCIÓS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint.
Az S-PRV-158 vírus szerkezetét BamHI, valamint Xbal enzimekkel végzett restrikciós enzim vizsgálatokkal igazoltuk.
7. példa
S-PRV-159
Az S-PRV-159 egy olyan álveszettség vírus, amely egy 1460 bázispár nagyságú deléciót tartalmaz a gl kódoló szakaszán belül, és egy 1414 bázispárból álló deléciót hordoz a gpX kódoló szakaszában.
Az S-PRV-159 vírust az S-PRV-158 vírusból (lásd fent) a marker gén eltávolításával kaptuk. Ezt az S-PRV-158 vírus Xbal enzimmel való emésztésével értük el a KÖZVETLEN LIGÁLÁSOS ELJÁRÁS REKOMBINÁNS PRV ELŐÁLLÍTÁSÁRA című fejezetben ismertetett eljárás szerint. Az S-PRV-159 vírus szerkezetét BamHI, valamint Xbal enzimekkel végzett restrikciós enzim vizsgálatokkal igazoltuk.
A találmány szerinti megoldást szemléltető példák összefoglalása
A találmány tárgyát genetikailag módosított herpesz vírusok alkalmazása képezi állatokban betegség elleni védettség létrehozására. Ezek a vírusok két glükoprotein, a gpX, valamint a gl glükoproteinek delécióját tartalmazzák. A
4. táblázat a fent ismertetett hat deléciót hordozó vírus jellemzőit foglalja össze. A vírus titereket a PRV TITRÁLÁSA című fejezetben ismertetettek szerint határoztuk meg. Az ártalmatlansági, valamint hatékonysági adatokat a VAKCINÁZÁSI KÍSÉRLETEK SERTÉSBEN című fejezetben leírtak szerint állapítottuk meg.
4. táblázat
A gpX. valamint a al deléciót hordozó PRV vírusok
jellemzői
vírus; titer; vakcinázást követő a felülfertőzést követő
PFU/ml; klinikai tünetek; megfigyelések
klinikai pusztulás
tünetek
S-PRV-150 2,30x10® NT NT NT
S-PRV-151 3,80x10® nincs 100 % 20 %
S-PRV-154 1,53x10® NT NT NT
S-PRV-155 1,48x10® nincs 0 % 0 %
S-PRV-158 1,47x10® NT NT NT
S-PRV-159 5,61x10® NT NT NT
- 42 Mind a hat vírus gpX, valamint gl deléciót tartalmaz. Az S-PRV-150 és az S—PRV-151 vírusokban található gpX deléciós régió nagyobb, mint az egyéb vírusokban található gpX deléciók nagysága. Az S-PRV-150, az S-PRV-151, az S-PRV-154, valamint az S-PRV-155 vírusok ugyancsak deléciót hordoznak a TK, valamint az ismétlődő régióban. Az S-PRV-150, az S-PRV154, valamint az S-PRV-158 vírusokban az E. coli béta-galaktozidáz (lacZ) marker gén is megtalálható.
Vizsgálatainkból kitűnik, hogy a deléciók pontos mérete és kombinációja lényeges a gpX, valamint a gl markereket tartalmazó megkülönböztető vakcinák hatékonysága szempontjából. Az S-PRV-150 és az S-PRV-151 vírusok lényegesen csökkent vírus titerrel rendelkeznek. A sejttenyészetekben előállítható vírus titer kritikus kérdés a vakcina előállítása szempontjából. Az S-PRV-150 és az S-PRV-151 vírusok alacsony titere vakcinaként való előállításukat, annak drágasága következtében akadályozza. Az S-PRV-155 és az S-PRV-151 vírusok a sertésekben PRV betegséggel szemben védettséget létrehozó képességük tekintetében is drámaian különböznek. Az S-PRV-151 elégtelen szintű védettséget, míg az S-PRV-155 vírus teljes védettséget hoz létre. Az S-PRV-155 vírusban található deléciók kombinációja felelős azért, hogy ez a vírus törzs kiváló vakcina termék. Ez a termék három napos korú malacokba adva ártalmatlan, védettséget hoz létre minden sertés korosztálynál, és egy, vagy két diagnosztikai marker felhasználásával szerológiai megkülönböztetést tesz lehetővé. A gyakorlat jelenlegi állása szerint váratlan volt a deléciók ilyen kombinációjának kiváló alkalmazhatósága. Az t
- 43 eredmények újak, előre nem láthatóak voltak, és segítséget nyújtanak egy kiváló álveszettség vakcina termék kiválasztásában.
• · «
Irodalomjegyzék
1. F. L. Graham and A. Van dér Eb., Virology 52, 556567, 1973.
2. T. Mániát is, et al., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, 1982.
3. M. van Zijl, et al., J. of Virology 71, 1747-1755,
1990.
4. T. J. Reá, et al., J. of Virology 54, 21-29, 1985.
5. E. A. Petrovskis, et al., J. of Virology 59, 216223, 1986.
6. E. A. Petrovskis, et al., J. of Virology 60, 185193, 1986.
7. Ε. A. Petrovskis, et al., J. of Virology 60, 11661169, 1986.
8. T. Ben-Porat and A. S. Káplán, Virology 41, 265-273, 1970.
9. T. Ben-Porat, et al., J. of Virology 49, 970-979, 1984.
10. T. Ben-Porat, et al., Virology 154, 325-334, 1986.
11. F. A. Ferrari, et al., J. of Bacteriology 161, 556- ' 562, 1985.
12. D. R. Thonsen, et al., Gene 16, 207-216, 1981.
13. R. W. Price and A. Kahn, Infection and Inununity 34, í 571-580, 1981.
• ·
I
14. Ρ. Β. Tenser, et al./ J. of Generál Virology 64, 1369-1373, 1983.
15. B. Lomniczi, et al., J. of Virology 49, 970-979, 1984.
16. B. Roizaan, et al., Cold Spring Harbor Conference on New Approaches to Viral Vaccines, September, 1983.
17. R. L. Thompson, et al., Virology 131, 180-192, 1983.
18. K. Fukuchi, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 751-754, 1985.
19. J. M. Koomey, et al., J. of Virology 50, 662-665, 1984.
20. M. W. Ligás and D. C. Johnson, J. of Virology 62, 1486-1494, 1988.
21. F. Zuckerman, et al., Vaccination and Control of Adjeszky's Disease, pp. 107-117, Ed. J. van Oirschot. Kluwer, London, 1989.
22. T. C. Mettenleiter, et al., Virology 158, 141-146, 1987.
23. A. K. Robbins, et al., J. of Virology 58, 339-347,
1986.
24. A. K. Robbins, et al., J. of Virology 61, 2691-2701,
1987.
25. L. E. Post, et al., J. Repród. Fért. Suppl. 41, 97104, 1990.

Claims (17)

  1. Szabadalmi igénypontok
    1. Legyengített, S-PRV-155 jelű (ATCC nyilvántartási szám: VR 2311) genetikailag módosított álveszettség vírus.
  2. 2. Vakcina, azzal jellemezve, hogy az 1. igénypont szerinti legyengített vírus hatékony immunizáló mennyiségét és egy szokásos hordozóanyagot tartalmaz.
  3. 3. A 2. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a legyengített vírus inaktivált.
  4. 4. A 2. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a legyengített vírus élő.
  5. 5. A 2. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a hordozóanyag egy stabilizáló anyagot tartalmazó, fiziológiásán pufferolt tápfolyadék.
  6. 6. A 2. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a hatékony immunizáló mennyiség adagonként körülbelül
    103- 109 PFU.
  7. 7. A 6. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a hatékony immunizáló mennyiség adagonként körülbelül
    104- 106 PFU.
  8. 8. A 6. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a hatékony immunizáló mennyiség adagonként körülbelül 107-109 PFU.
  9. 9. Eljárás állatok immunizálására álveszettség vírus okozta megbetegedés ellen, azzal jellemezve, hogy a 2. igénypont szerinti vakcina hatékony immunizáló mennyiségét adagoljuk állatoknak.
  10. 10. A 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve.
    • · · · « « t> · · • ·« ·««· · · ·«·« ··»«
    - 47 hogy a vakcinát sertéseknek adagoljuk.
  11. 11. A 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a vakcinát izomba, bőr alá, hasüregbe vagy vénába adott injekcióval adagoljuk.
  12. 12. A 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a vakcinát az orron át adagoljuk.
  13. 13. A 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a vakcinát szájon át adagoljuk.
  14. 14. Eljárás a 2. igénypont szerinti vakcinával vakcinázott, valamint a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatok megkülönböztetésére, azzal jellemezve, hogy egy az állattól nyert testfolyadék mintát gpX-re, valamint legalább egy másik, a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatban normálisan expresszálódó antigénre nézve megvizsgálunk, és az antigén jelenléte és a gpX hiánya alapján megállapítjuk, hogy vakcinával vakcinázott és a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal nem fertőzött állatról van-e szó.
  15. 15. A 14. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az antigén és a gpX jelenlétét a testfolyadékban az antigénre, valamint a gpX-re fajlagos ellenanyagok meghatározásával állapítjuk meg.
  16. 16. A 14. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a mintát gl-re nézve is vizsgáljuk, az antigén jelenléte és a gl hiánya alapján megállapítjuk, hogy vakcinával vakcinázott és a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal nem fertőzött állatról van-e szó.
    ··· · * · • ·
  17. 17. Eljárás a 2. igénypont szerinti vakcinával vakcinázott, valamint a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatok megkülönböztetésére, azzal jellemezve, hogy egy az állattól nyert testfolyadék mintát gl-re, valamint legalább egy másik, a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal fertőzött állatban normálisan expresszálódó antigénre nézve megvizsgálunk, és az antigén jelenléte és a gpX hiánya alapján megállapítjuk, hogy vakcinával vakcinázott és a természetben előforduló, vad-típusú álveszettség vírussal nem fertőzött állatról van-e szó.
HU9302369A 1991-03-01 1992-02-28 Attenvated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof HUT67138A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/663,413 US5240703A (en) 1991-03-01 1991-03-01 Attenuated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HU9302369D0 HU9302369D0 (en) 1994-01-28
HUT67138A true HUT67138A (en) 1995-02-28

Family

ID=24661700

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9302369A HUT67138A (en) 1991-03-01 1992-02-28 Attenvated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof

Country Status (12)

Country Link
US (3) US5240703A (hu)
EP (1) EP0573614B1 (hu)
JP (1) JP3247376B2 (hu)
KR (1) KR100245654B1 (hu)
AT (1) ATE165978T1 (hu)
AU (1) AU1573292A (hu)
DE (1) DE69225471T2 (hu)
DK (1) DK0573614T3 (hu)
ES (1) ES2118815T3 (hu)
GR (1) GR3027623T3 (hu)
HU (1) HUT67138A (hu)
WO (1) WO1992015328A1 (hu)

Families Citing this family (58)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5961982A (en) * 1985-09-06 1999-10-05 Syntro Corporation Recombinant herpesvirus of turkeys and uses thereof
US5965138A (en) * 1985-09-06 1999-10-12 Syntro Corporation Recombinant chimeric virus and uses thereof
US5928648A (en) * 1985-09-06 1999-07-27 Syntro Corporation Recombinant herpesvirus of turkeys and uses thereof
US5240703A (en) * 1991-03-01 1993-08-31 Syntro Corporation Attenuated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof
US5853733A (en) * 1993-02-26 1998-12-29 Syntro Corporation Recombinant herpesvirus of turkeys and uses thereof
ATE288483T1 (de) * 1992-07-30 2005-02-15 Akzo Nobel Nv Nicht-verbreitendes lebendes herpesvirusvakzin
EP0619840A1 (en) * 1992-10-06 1994-10-19 Akzo Nobel N.V. Pseudorabies virus vaccine
US5738854A (en) * 1992-10-06 1998-04-14 Akzo Nobel N.V. Pseudorabies virus vaccine
US6875856B2 (en) * 1993-09-24 2005-04-05 Syntro Corporation Recombinant infectious laryngotracheitis virus and uses thereof
EP0659885A1 (en) * 1993-12-21 1995-06-28 Akzo Nobel N.V. Vaccine against viruses associated with antibody-dependent-enhancement of viral infectivity
US7153510B1 (en) * 1995-05-04 2006-12-26 Yale University Recombinant vesiculoviruses and their uses
ATE181112T1 (de) 1995-08-09 1999-06-15 Schweiz Serum & Impfinst Dem genom von minussträngigen rna-viren entsprechende cdna und verfahren zur herstellung von infektiösen minussträngigen rna-viren
ATE512231T1 (de) 1998-02-27 2011-06-15 Univ Pennsylvania Impfstoffe, immuntherapeutika und verfahren zur anwendung derselben
KR20010103788A (ko) * 1999-03-03 2001-11-23 멕코나시 에블린 에이치. 백신 및 유전자요법 조성물 및 이들의 제조 및 사용방법
WO2000066162A1 (en) * 1999-04-30 2000-11-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Mutant human cd80 and compositions for and methods of making and using the same
WO2002006303A2 (en) * 2000-07-14 2002-01-24 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Dna vaccines encoding hiv accessory proteins
AU2002211524B2 (en) * 2000-10-04 2007-03-22 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Highly expressible genes
EP1390802A1 (en) * 2001-04-27 2004-02-25 Novartis AG Automatic lens design and manufacturing system
WO2002100317A2 (en) 2001-05-25 2002-12-19 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Targeted particles and methods of using the same
US7205398B2 (en) * 2002-05-24 2007-04-17 Schering-Plough Animal Health Corporation Eta-1 gene and methods for use
NZ570709A (en) * 2003-06-13 2010-04-30 Univ Pennsylvania Nucleic acid sequences encoding and compositions comprising IgE signal peptide and/or IL-15 and methods for using the same
EP1633372B1 (en) 2003-06-13 2011-11-30 The Trustees of The University of Pennsylvania Vaccines, immunotherapeutics and methods for using the same
WO2005024427A2 (en) * 2003-09-09 2005-03-17 Idexx Laboratories, Inc. Detection of west nile virus infection and vaccination
US20080274140A1 (en) * 2004-11-19 2008-11-06 David B Weiner Vaccines and Methods for Using the Same
CA2636867C (en) * 2006-01-13 2015-12-01 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines and immunotherapeutics using codon optimized il-15 and methods for using the same
US9259463B2 (en) 2006-01-16 2016-02-16 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health & Human Services Chlamydia vaccine
CA3184778A1 (en) 2006-07-28 2008-01-31 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Hiv consensus envelope sequences and methods for using same
CN105535961A (zh) * 2008-04-04 2016-05-04 宾夕法尼亚大学托管会 使用il-28和组合物的疫苗和免疫治疗及其使用方法
JP5744719B2 (ja) * 2008-04-04 2015-07-08 ザ トラスティーズ オブ ザ ユニバーシティ オブ ペンシルバニア チクングニヤウィルスタンパク質の共通配列、これをコードする核酸分子、並びにこれを使用する組成物および方法
US8921536B2 (en) 2008-10-29 2014-12-30 The Trustees Of The University Of Pennsylvania HCV vaccines and methods for using the same
AU2008363596B2 (en) 2008-10-29 2015-04-30 Inovio Pharmaceuticals, Inc Improved HCV vaccines and methods for using the same
US9050287B2 (en) 2009-01-23 2015-06-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines for human papilloma virus and methods for using the same
CA2653478A1 (en) * 2009-01-23 2010-07-23 Gregg Martin Automated wash system for industrial vehicles
CN102821790A (zh) 2009-09-14 2012-12-12 宾夕法尼亚大学托管会 包含IL-15受体α和/或编码IL-15受体α的核酸分子的疫苗和免疫治疗剂,以及其使用方法
KR101851699B1 (ko) 2009-11-02 2018-04-24 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 구제역 바이러스(fmdv) 공통 단백질, 이를 위한 코딩 서열 및 이로부터 만들어진 백신
US8298820B2 (en) 2010-01-26 2012-10-30 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Influenza nucleic acid molecules and vaccines made therefrom
CN102781952B (zh) 2010-02-08 2015-09-02 宾夕法尼亚大学托管会 编码rantes的核酸分子、包含其的组合物以及其使用方法
ES2718846T3 (es) 2010-11-12 2019-07-04 Univ Pennsylvania Antígenos de próstata consenso, molécula de ácido nucleico que los codifica y la vacuna y usos que los comprenden
CA2826199A1 (en) 2011-01-31 2012-08-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Nucleic acid molecules encoding novel herpes antigens, vaccine comprising the same, and methods of use thereof
US9238679B2 (en) 2011-02-11 2016-01-19 The Trustees Of The University Of Pennslyvania Nucleic acid molecule encoding hepatitis B virus core protein and surface antigen protein and vaccine comprising the same
EA037377B1 (ru) 2011-02-11 2021-03-22 Дзе Трастиз Оф Дзе Юниверсити Оф Пенсильвания Вакцина для индукции иммунного ответа на hbv
JP6117781B2 (ja) 2011-07-11 2017-04-19 イノビオ ファーマシューティカルズ,インコーポレイティド 交差防御性アレナウイルスワクチンおよびそれらの使用方法
CA2848658C (en) 2011-10-12 2022-08-02 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines for human papilloma virus and methods for using the same
WO2013062507A1 (en) 2011-10-24 2013-05-02 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Improved hcv vaccines and methods for using the same
KR102277469B1 (ko) 2011-12-12 2021-07-15 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 개선된 il-12 유전적 컨스트럭트 및 백신을 포함하는 조성물, 면역치료제 및 이를 이용하는 방법
KR20140116095A (ko) 2011-12-12 2014-10-01 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 Mrsa pbp2a 및 이의 단편들을 포함하는 단백질, 이를 인코딩한 핵산, 및 mrsa 감염을 예방 및 치료하기 위한 조성물 및 그의 용도
EP2836505B1 (en) 2012-04-10 2019-01-23 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Human respiratory syncytial virus concensus antigens, nucleic acid constructs and vaccines made thereform, and methods of using same
WO2014165291A1 (en) 2013-03-12 2014-10-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Improved vaccines for human papilloma virus and methods for using the same
CN114045295A (zh) 2013-03-15 2022-02-15 宾夕法尼亚大学理事会 口蹄疫病毒(fmdv)共有蛋白、其编码序列以及由其制造的疫苗
AU2014228405B2 (en) 2013-03-15 2017-05-11 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Cancer vaccines and methods of treatment using the same
JP6236144B2 (ja) * 2013-05-31 2017-11-22 普莱柯生物工程股▲ふん▼有限公司 豚ヘルペスウイルス、ワクチン組成物及びその製造方法と応用
CN111560355A (zh) * 2015-03-20 2020-08-21 普莱柯生物工程股份有限公司 一种猪伪狂犬病病毒致弱方法、及其致弱的病毒株、疫苗组合物和应用
CN106834236A (zh) * 2016-02-23 2017-06-13 南京农业大学 猪伪狂犬病毒变异株TK、gE和gI基因缺失毒株及其应用
CN107815441B (zh) * 2017-08-31 2020-05-12 浙江大学 一种ⅱ型伪狂犬病毒减毒株及其制备方法和应用
US11338029B2 (en) 2017-12-13 2022-05-24 Inovio Pharmaceuticals, Inc. Cancer vaccines targeting PRAME and uses thereof
US11235044B2 (en) 2017-12-13 2022-02-01 Inovio Pharmaceuticals, Inc. Cancer vaccines targeting MUC16 and uses thereof
EP3723810A4 (en) 2017-12-13 2022-02-23 Inovio Pharmaceuticals, Inc. ANTI-MESOTHELIN CANCER VACCINES AND THEIR USES
MX2021005257A (es) 2018-11-06 2021-06-18 Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh Composicion inmunogenica contra el subtipo h5 del virus de la influenza aviar.

Family Cites Families (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4769331A (en) * 1981-09-16 1988-09-06 University Patents, Inc. Recombinant methods and materials
NL8303501A (nl) * 1983-10-12 1985-05-01 Centraal Diergeneeskundig Inst Deletiemutant van een herpesvirus en vaccin, dat dit virus bevat.
US4514497B1 (en) * 1983-12-30 1998-02-24 Novagene Inc Modified live pseudorabies viruses
EP0162738A1 (en) * 1984-04-09 1985-11-27 MOLECULAR GENETICS RESEARCH &amp; DEVELOPMENT LIMITED PARTNERSHIP Production of pseudorabies virus subunit vaccines
US5041370A (en) * 1984-05-02 1991-08-20 The Upjohn Company Pseudorabies virus (PRV) gene, host cell, method for detecting animals infected with pseudorabies virus, and kit therefor
US5041536A (en) * 1984-05-02 1991-08-20 The Upjohn Company Pseudorabies virus (PRV) gene
JP2559384B2 (ja) * 1985-07-29 1996-12-04 ジ・アップジョン・カンパニ− ウイルスワクチン
US5068192A (en) * 1986-01-27 1991-11-26 Prutech Research And Development Partnership Attenuated pseudorabies virus which includes foreign DNA encoding an amino acid sequence
US5047237A (en) * 1985-09-06 1991-09-10 Prutech Research And Development Partnership Attenuated pseudorabies virus having a deletion of at least a portion of a gene encoding an antigenic, nonessential protein, vaccine containing same and methods of identifying animals vaccinated with the vaccine
US4877737A (en) * 1985-09-06 1989-10-31 Prutech Research And Development Partnership Attenuated pseudorabies virus which has a deletion in at least a portion of a repeat sequence and vaccine containing same
AU623333B2 (en) * 1986-01-27 1992-05-14 Syntro Corporation Attenuated herpesviruses, herpesviruses which include foreign dna encoding an amino acid sequence and vaccine containing same
US4753884A (en) * 1986-01-28 1988-06-28 Novagene, Inc. Pseudorabies virus mutants, vaccines containing same, methods for the production of same and methods for the use of same
US4711850A (en) * 1986-01-28 1987-12-08 Novagene, Inc. Pseudorabies virus mutants, vaccines containing same, methods for the production of same and methods for the use of same
US4999296A (en) * 1986-04-29 1991-03-12 Novagene, Inc. Thymidine kinase negative insertion mutants of pseudorabies virus and methods for the production of same
US5037742A (en) * 1986-07-18 1991-08-06 E. I. Du Pont De Nemours And Company Pseudorabies virus recombinants and their use in the production of proteins
DE3854190T2 (de) * 1987-07-27 1996-03-28 Syntro Corp Attenuierte herpesviren, herpesviren, die für eine aminosäuresequenz kodierende fremde dns beeinhalten und sie enthaltende impfstoffe.
US5004593A (en) * 1989-04-17 1991-04-02 Mayo Foundation For Medical Education And Research Hexamethylmelamine formulation exhibiting reduced neurotoxicity
US5240703A (en) * 1991-03-01 1993-08-31 Syntro Corporation Attenuated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof

Also Published As

Publication number Publication date
KR100245654B1 (en) 2000-03-02
JP3247376B2 (ja) 2002-01-15
WO1992015328A1 (en) 1992-09-17
EP0573614A4 (en) 1994-09-14
US5451499A (en) 1995-09-19
HU9302369D0 (en) 1994-01-28
JPH06505392A (ja) 1994-06-23
DK0573614T3 (da) 1999-01-25
DE69225471T2 (de) 1999-01-14
EP0573614A1 (en) 1993-12-15
ATE165978T1 (de) 1998-05-15
DE69225471D1 (de) 1998-06-18
US5736319A (en) 1998-04-07
EP0573614B1 (en) 1998-05-13
GR3027623T3 (en) 1998-11-30
ES2118815T3 (es) 1998-10-01
US5240703A (en) 1993-08-31
AU1573292A (en) 1992-10-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HUT67138A (en) Attenvated, genetically-engineered pseudorabies virus s-prv-155 and uses thereof
US5187087A (en) Recominbant herpesvirus of turkeys and live vector vaccines derived thereof
US5223424A (en) Attenuated herpesviruses and herpesviruses which include foreign DNA encoding an amino acid sequence
EP0332677B1 (en) Attenuated herpes viruses, herpes viruses which include foreign dna encoding an amino acid sequence and vaccines containing same
JPH10506782A (ja) 組換え型シチメンチョウヘルペスウイルス、及びその使用
JP2000512844A (ja) ベクターとして鳥類の感染性喉頭気管炎ウイルスを用いた鳥類用組換え生ワクチン
US5741696A (en) Recombinant equine herpesviruses
JP2010187679A (ja) 新規な組換えヘルペスウイルスおよび変異体ヘルペスウイルス
JPH08500969A (ja) 七面鳥の組換えヘルペスウイルス及びそれらの使用
HUT55243A (en) Process for producing recombinant subunite vaccine against pseudolyssa
CA2166371A1 (en) Avian herpesvirus-based live recombinant avian vaccine, in particular against gumboro disease
US5593873A (en) Recombinant infectious bovine rhinotracheitis virus
US5047237A (en) Attenuated pseudorabies virus having a deletion of at least a portion of a gene encoding an antigenic, nonessential protein, vaccine containing same and methods of identifying animals vaccinated with the vaccine
US5874279A (en) Recombinant infectious bovine rhinotracheitis virus
US5731188A (en) Recombinant equine herpesviruses
ZA200210354B (en) BVDV virus-like particles.
JP3964458B2 (ja) 組換え型伝染性喉頭気管炎ウイルスおよびその使用
EP0654089B1 (en) Recombinant equine herpesviruses
JP3529134B2 (ja) 組換えネコヘルペスウイルスのベクターワクチン
US5068192A (en) Attenuated pseudorabies virus which includes foreign DNA encoding an amino acid sequence
CA2113641A1 (en) Recombinant infectious bovine rhinotracheitis virus
US5783195A (en) Recombinant infectious bovine rhinotracheitis virus S-IBR-052 and uses thereof
US6225111B1 (en) Recombinant equine herpesviruses
JPH03228680A (ja) 感染性気管支炎ウイルスワクチン
JPH09505726A (ja) 組換え感染性喉頭気管炎ウイルス及びそれらの使用

Legal Events

Date Code Title Description
DFC4 Cancellation of temporary protection due to refusal